Editor asociado: Diego Santiago Alarcón

El gorrión altiplanero o de Worthen (Spizella wortheni) es una ave endémica del altiplano mexicano que no realiza movimientos migratorios y habita áreas semi-desérticas, en el ecotono de pastizal y matorral (^{Rising 1996}, ^{Canales-del-Castillo et al. 2010}). Históricamente tuvo una distribución más amplia desde el centro al norte de México y sur de EUA (^{Wege et al. 1993}); sin embargo, en los últimos 35 años sólo se han tenido registros en un área restringida dentro de los límites de los estados de Nuevo León, Coahuila, Zacatecas y San Luis Potosí (^{Wege et al. 1993}, ^{Canales-del-Castillo et al. 2010}, ^{Canales-Delgadillo et al. 2015}). Su tamaño poblacional se estima en al menos 100 individuos (^{Birdlife 2016}), lo cual se debe muy probablemente a los mismos factores que han afectado a otras poblaciones de aves de pastizal en Norteamérica, como la reducción y fragmentación de su hábitat por la conversión a zonas agrícolas y el sobrepastoreo (^{Dinerstein et al. 2000}, ^{Askins et al. 2007}, ^{Estrada-Castillón et al. 2010}). Dicha restricción distribucional y poblacional ha sustentado su protección como especie en peligro de extinción por las leyes mexicanas (NOM-059-SEMARNAT-2010) (^{SEMARNAT 2010}), y su inclusión bajo la misma categoría en la Lista Roja de Especies Amenazadas por organizaciones internacionales (^{Birdlife 2016}). El conocimiento de su biología es escaso, y se ha centrado en generar información actualizada sobre su distribución, tamaño poblacional, hábitat y éxito reproductivo (e.g.^{Canales-del-Castillo et al. 2010}, ^{Canales-Delgadillo et al. 2015}); sin embargo, poco se ha explorado sobre otros aspectos de su historia natural.

• ^{Rising 1996}
  A guide to the identification and natural history of the sparrows of the United States and Canada, 1996
  Rising, J.D. 1996. A guide to the identification and natural history of the sparrows of the United States and Canada. Academic Press. Bath, Avon, Great Britain.
• ^{Canales-del-Castillo et al. 2010}
  New breeding localities of Worthen’s Sparrows in northeastern Mexico

  Journal of Field Ornithology, 2010
  Canales-del-Castillo, R., J.I. González-Rojas, I. Ruvalcaba-Ortega, Á. García-Ramírez. 2010. New breeding localities of Worthen’s Sparrows in northeastern Mexico. Journal of Field Ornithology 81(19):5-12.
• ^{Wege et al. 1993}
  The distribution and status of Worthen’s Sparrow Spizella wortheni: a review

  Bird Conservation International, 1993
  Wege, D.C., S.N.G. Howell, A.M. Sada. 1993. The distribution and status of Worthen’s Sparrow Spizella wortheni: a review. Bird Conservation International 3(3):211-220.
• ^{Wege et al. 1993}
  The distribution and status of Worthen’s Sparrow Spizella wortheni: a review

  Bird Conservation International, 1993
  Wege, D.C., S.N.G. Howell, A.M. Sada. 1993. The distribution and status of Worthen’s Sparrow Spizella wortheni: a review. Bird Conservation International 3(3):211-220.
• ^{Canales-del-Castillo et al. 2010}
  New breeding localities of Worthen’s Sparrows in northeastern Mexico

  Journal of Field Ornithology, 2010
  Canales-del-Castillo, R., J.I. González-Rojas, I. Ruvalcaba-Ortega, Á. García-Ramírez. 2010. New breeding localities of Worthen’s Sparrows in northeastern Mexico. Journal of Field Ornithology 81(19):5-12.
• ^{Canales-Delgadillo et al. 2015}
  Nuevos registros de distribución del gorrión de Worthen Spizella wortheni en San Luis Potosí, México

  Acta Zoológica Mexicana, 2015
  Canales-Delgadillo, J.C., L. Chapa-Vargas, J.A. Carlos Gómez, J. Arreola Aguirre. 2015. Nuevos registros de distribución del gorrión de Worthen Spizella wortheni en San Luis Potosí, México. Acta Zoológica Mexicana 31(2):313-317.
• ^{Birdlife 2016}
  Species factsheet: Spizella wortheni, 2016
  Species factsheet: Spizella wortheni
• ^{Dinerstein et al. 2000}
  Ecoregion-based conservation in the Chihuahuan Desert: A biological assessment, 2000
  Dinerstein, E., D. Olson, J. Atchley, C. Loucks, S. Contreras-Balderas, R. Abell, E. Iñigo, E. Enkerlein, C. Williams, G. Castilleja. 2000. Ecoregion-based conservation in the Chihuahuan Desert: A biological assessment. World Wildlife Fund and others.
• ^{Askins et al. 2007}
  Conservation of grassland birds in North America: understanding ecological processes in different regions

  Ornithological Monographs, 2007
  Askins, R.A., F. Chávez-Ramírez, B.C. Dale, C.A. Haas, J.R. Herkert, F.L. Knopf, P.D. Vickery. 2007. Conservation of grassland birds in North America: understanding ecological processes in different regions. Ornithological Monographs 64(1):1-46.
• ^{Estrada-Castillón et al. 2010}
  Clasificación de los pastizales halófilos del noreste de México asociados con perritos de la pradera (Cynomys mexicanus): diversidad y endemismo de especies

  Revista Mexicana de Biodiversidad, 2010
  Estrada-Castillón, E., L. Scott-Morales, J.A. Villarreal-Q., E. Jurado-Ybarra, M. Cotera-C., C. Cantú-A., J. García-P. 2010. Clasificación de los pastizales halófilos del noreste de México asociados con perritos de la pradera (Cynomys mexicanus): diversidad y endemismo de especies. Revista Mexicana de Biodiversidad 81(2):401-416.
• ^{SEMARNAT 2010}
  Norma Oficial Mexicana. NOM-059- SEMARNAT-2010. Protección Ambiental - Especies Nativas de México de Flora y Fauna Silvestre - Categorías de Riesgo y Especificaciones Para su Inclusión, Exclusión o Cambio-Lista de Especies en Riesgo

  Diario Oficial de la Federación, 2010
  SEMARNAT (Secretaría de Medio Ambiente y Recursos Naturales). 2010. Norma Oficial Mexicana. NOM-059- SEMARNAT-2010. Protección Ambiental - Especies Nativas de México de Flora y Fauna Silvestre - Categorías de Riesgo y Especificaciones Para su Inclusión, Exclusión o Cambio-Lista de Especies en Riesgo. Diario Oficial de la Federación. 30 de diciembre de 2010.
• ^{Birdlife 2016}
  Species factsheet: Spizella wortheni, 2016
  Species factsheet: Spizella wortheni
• ^{Canales-del-Castillo et al. 2010}
  New breeding localities of Worthen’s Sparrows in northeastern Mexico

  Journal of Field Ornithology, 2010
  Canales-del-Castillo, R., J.I. González-Rojas, I. Ruvalcaba-Ortega, Á. García-Ramírez. 2010. New breeding localities of Worthen’s Sparrows in northeastern Mexico. Journal of Field Ornithology 81(19):5-12.
• ^{Canales-Delgadillo et al. 2015}
  Nuevos registros de distribución del gorrión de Worthen Spizella wortheni en San Luis Potosí, México

  Acta Zoológica Mexicana, 2015
  Canales-Delgadillo, J.C., L. Chapa-Vargas, J.A. Carlos Gómez, J. Arreola Aguirre. 2015. Nuevos registros de distribución del gorrión de Worthen Spizella wortheni en San Luis Potosí, México. Acta Zoológica Mexicana 31(2):313-317.

Las enfermedades infecciosas en vida silvestre impactan en la salud y limitan el tamaño de las poblaciones, por ejemplo, reduciendo la supervivencia (^{Martínez-de la Puente et al. 2010}); además de ser un factor que actúa negativamente junto con otros fenómenos estocásticos, demográficos y relativos a las actividades humanas, lo cual incrementa el riesgo de extinción en especies vulnerables (^{Brooke et al. 2008}), por lo que el monitoreo de agentes infecciosos debe ser considerado en los planes de manejo (^{Bertram et al. 2015}). Con el objetivo de incrementar el conocimiento en esta especie y realizar una primera aproximación sobre la importancia del parasitismo para la viabilidad de la misma, evaluamos la composición e intensidad de parásitos en heces fecales y sangre, así como la cuantificación diferencial de leucocitos.

• ^{Martínez-de la Puente et al. 2010}
  The blood parasite Haemoproteus reduces survival in a wild bird: a medication experiment

  Biology Letters, 2010
  Martínez-de la Puente, J., S. Merino, G. Tomás, J. Moreno, J. Morales, E. Lobato, S. García-Fraile, E.J. Belda. 2010. The blood parasite Haemoproteus reduces survival in a wild bird: a medication experiment. Biology Letters 6(5):663-665.
• ^{Brooke et al. 2008}
  Synergies among extinction drivers under global change

  Trends in Ecology & Evolution, 2008
  Brook, B.W., N.S. Sodhi, C.J. Bradshaw. 2008. Synergies among extinction drivers under global change. Trends in Ecology & Evolution 23(8):453-460.
• ^{Bertram et al. 2015}
  Coccidian parasites and conservation implications for the endangered Whooping Crane (Grus americana)

  PloS One, 2015
  Bertram, M.R., G.L. Hamer, K.F. Snowden, B.K. Hartup, S.A. Hamer. 2015. Coccidian parasites and conservation implications for the endangered Whooping Crane (Grus americana). PloS One 10(6):e0127679.

Capturamos 11 individuos, con redes de niebla, en el Rancho El Compromiso, en el límite sureño del valle de La Soledad en el municipio de Galeana, Nuevo León, México (Figura 1). Tomamos una muestra fecal de cada individuo, la cual fue preservada en formol al 10%. En el laboratorio analizamos las muestras fecales mediante la técnica de flotación y recuento directo en solución salina saturada y seguimos los protocolos previamente descritos (^{Kahn y Scott 2010}). Para obtener los oocistos por gramo de heces fecales (o.g.h.) o huevo por gramo de heces fecales (h.g.h.), determinamos la cantidad de parásitos presentes en una submuestra de 50 mg de la muestra fecal, mediante observación al microscopio con objetivos de 40x y 100x. Calculamos la prevalencia mediante el cociente del número de individuos positivos entre el total analizados. A su vez determinamos los intervalos de confianza al 95% (IC95%) con el método Blaker’s, el cual es adecuado para su estimación cuando no se tiene información sobre la prevalencia en la población (^{Reiczigel et al. 2010}). Estimamos la intensidad de la infección como el promedio de los valores o.g.h. y h.g.h. y su intervalo de confianza del 95% con 2000 replicaciones bootstrap. Ambos cálculos los realizamos con el programa Quantitive Parasitology QPweb (^{Reiczigel y Rózsa 2005}). Debido a que la toma de muestras sanguíneas puede tener un efecto negativo sobre la sobrevivencia si no se considera el tamaño del ave (^{Brown y Brown 2009}), únicamente tomamos una muestra sanguínea de 30 µl en un tubo capilar con heparina de un solo individuo. Dicho volumen representa el 0.25% de la masa corporal del ave, considerando un promedio de masa de 11.98±0.68 g para la especie (datos de este estudio). Asimismo, el tiempo en que manipulamos al individuo capturado fue menor a los 30 min para evitar un incremento en los niveles de leucocitos (^{Cīrule et al. 2012}). En campo realizamos los frotis sanguíneos, los cuales dejamos secar a temperatura ambiente, para luego fijarlos con metanol al 100%; posteriormente, en el laboratorio los teñimos con el colorante Giemsa durante 55 min. Realizamos la búsqueda de parásitos sanguíneos examinando entre 100-150 campos a 100x, mientras que el conteo diferencial de leucocitos lo hicimos identificando en el frotis 100 células blancas siguiendo el criterio de identificación de ^{Campbell (1995)} y reportamos los valores porcentuales de cada tipo de célula observada (^{Vleck et al. 2000}, ^{Valkiunas 2004}).

• ^{Kahn y Scott 2010}
  The Merck Veterinary Manual, 2010
  Kahn, C.M., L. Scott (eds.). 2010. The Merck Veterinary Manual, 10a. ed. Merck. Whitehouse Station, N.J., EUA.
• ^{Reiczigel et al. 2010}
  Exact confidence limits for prevalence of a disease with an imperfect diagnostic test

  Epidemiology and infection, 2010
  Reiczigel, J., J. Földi, L. Ózsvári. 2010. Exact confidence limits for prevalence of a disease with an imperfect diagnostic test. Epidemiology and infection 138(11):1674-1678.
• ^{Reiczigel y Rózsa 2005}
  Quantitative Parasitology 3.0, 2005
  Reiczigel J., L. Rózsa. 2005. Quantitative Parasitology 3.0. Budapest. Distributed by the authors
• ^{Brown y Brown 2009}
  Blood sampling reduces annual survival in cliff swallows Petrochelidon pyrrhonota

  The Auk, 2009
  Brown, M.B., C.R. Brown. 2009. Blood sampling reduces annual survival in cliff swallows Petrochelidon pyrrhonota. The Auk 126(4):853-861.
• ^{Cīrule et al. 2012}
  A rapid effect of handling on counts of white blood cells in a wintering passerine bird: a more practical measure of stress?

  Journal of Ornithology, 2012
  Cīrule, D., T. Krama, J. Vrublevska, M.J. Rantala, I. Krams. 2012. A rapid effect of handling on counts of white blood cells in a wintering passerine bird: a more practical measure of stress? Journal of Ornithology 153(1):161-166.
• ^{Campbell (1995)}
  Avian Hematology and Cytology, 1995
  Campbell, T.W. 1995. Avian Hematology and Cytology, 2a. ed. Iowa State University Press. Ames, Iowa, EUA.
• ^{Vleck et al. 2000}
  Stress, corticosterone, and heterophil to lymphocyte ratios in free-living Adelie penguins

  The Condor, 2000
  Vleck, C.M., N. Vertalino, D. Vleck, T.L. Bucher. 2000. Stress, corticosterone, and heterophil to lymphocyte ratios in free-living Adelie penguins. The Condor 102(2):392-400.
• ^{Valkiunas 2004}
  Avian Malaria Parasites and other Haemosporidia, 2004
  Valkiunas, G. 2004. Avian Malaria Parasites and other Haemosporidia, 1a. ed. CRC Press. Boca Ratón, Florida, EUA.

A partir del análisis coproparasitoscópico de 11 muestras del gorrión altiplanero reportamos dos phylum (Apicomplexa y Nematoda), tres familias (Cryptosporiidae, Eimeriidae y Ascarididae) y tres géneros de parásitos intestinales. Encontramos que 10 de las 11 (93%) muestras presentaban al menos un taxón parasitario. El género Cryptosporidium presentó la mayor prevalencia con 63.6% (IC95% =33.3-86.5%), seguido por Eimeria con un 54.5% (IC 95% =25.6-80.1%), y finalmente por Ascaradia con 9.1% (IC 95% = 0.5-40.1%). La intensidad de la infección fue relativamente baja con rangos que oscilaron de 20-120 o.g.h. en Cryptosporidum ( x - =85.71; IC 95% =48.6-109); 20-160 o.p.g. en Eimeria ( x - =73.33; IC 95% =43.3-117), y 20 h.g.h. en el único individuo que presentó Ascaridia.

La prevalencia de Eimeria spp. ya ha sido reportada para Passeriformes silvestres (^{Yabsley 2008}, ^{Berto et al. 2011}), incluyendo a dos especies en el continente americano de la familia Tyrannidae: Casiornis rufus y Myiarchus ferox (^{Berto et al. 2008}, ²⁰⁰⁹); mientras que parásitos del género Cryptosporidium han sido reportados en más de 30 especies de aves (^{Sréter y Varga 2000}), incluyendo al gorrión Zonotrichia capensis (^{Nakamura et al. 2014}).

• ^{Yabsley 2008}
  Eimeria

  Parasitic Diseases of Wild Birds, 2008
  Yabsley, M.J. 2008. Eimeria. Pp. 162-180. En C.T. Atkinson, N.J. Thomas y D.B. Hunter (eds.) Parasitic Diseases of Wild Birds. Wiley-Blackwell. Oxford, U.K.
• ^{Berto et al. 2011}
  Coccidia of new world passerine birds Aves: Passeriformes: a review of Eimeria Schneider, 1875 and Isospora Schneider, 1881 Apicomplexa: Eimeriidae

  Systematic Parasitology, 2011
  Berto, B.P., W. Flausino, D. McIntosh, W.L. Teixeira-Filho, C.W.G. Lopes. 2011. Coccidia of new world passerine birds Aves: Passeriformes: a review of Eimeria Schneider, 1875 and Isospora Schneider, 1881 Apicomplexa: Eimeriidae. Systematic Parasitology 80(3):159-204.
• ^{Berto et al. 2008}
  Eimeria divinolimai sp. n. (Apicomplexa: Eimeriidae) in the rufous casiornis Casiornis rufus Vieillot, 1816 Passeriformes: Tyrannidae in Brazil

  Revista Brasileira Parasitologia Veterinaria, 2008
  Berto, B.P., W. Flausino, I. Ferreira, C.W.G. Lopes. 2008. Eimeria divinolimai sp. n. (Apicomplexa: Eimeriidae) in the rufous casiornis Casiornis rufus Vieillot, 1816 Passeriformes: Tyrannidae in Brazil. Revista Brasileira Parasitologia Veterinaria 17(1):33-35.
• ²⁰⁰⁹
  New species of Eimeria Schneider, 1875 and Isospora Schneider, 1881 (Apicomplexa: Eimeriidae) from the short-crested flycatcher Myiarchus ferox (Gmelin) (Passeriformes: Tyrannidae) in South America

  Systematic Parasitology, 2009
  Berto, B.P., H.R. Luz, W. Flausino, I. Ferreira, C.W.G. Lopes. 2009. New species of Eimeria Schneider, 1875 and Isospora Schneider, 1881 (Apicomplexa: Eimeriidae) from the short-crested flycatcher Myiarchus ferox (Gmelin) (Passeriformes: Tyrannidae) in South America. Systematic Parasitology 74(1):75-80.
• ^{Sréter y Varga 2000}
  Cryptosporidiosis in birds. A review

  Veterinary Parasitology, 2000
  Sréter, T., I. Varga. 2000. Cryptosporidiosis in birds. A review. Veterinary Parasitology 87(4): 261-279.
• ^{Nakamura et al. 2014}
  Diagnosis of gastric cryptosporidiosis in birds using a duplex real-time PCR assay

  Veterinary Parasitology, 2014
  Nakamura, A.A., C.G. Homem, A.M.J. da Silva, M.V. Meireles. 2014. Diagnosis of gastric cryptosporidiosis in birds using a duplex real-time PCR assay. Veterinary Parasitology 205(1):7-13.

En este estudio, ambos coccidios presentaron una alta prevalencia, la cual pudiera estar relacionada con tres factores: primero, el gorrión altiplanero es una especie particularmente gregaria fuera de su temporada reproductiva, forrajea en parvadas monoespecíficas o mixtas (^{Canales-Delgadillo et al. 2008}). Este comportamiento social representa un mayor riesgo de infección comparado con aquellas especies que se alimentan en solitario, dado que un solo individuo infectado con coccidios pudiera contaminar con sus heces los sitios de forrajeo (^{McQuistion et al. 2000}, ^{Dolnik et al. 2010}). Segundo, las aves gregarias con un forrajeo en suelo presentan una mayor prevalencia e intensidad en las infecciones de coccidios, que aquellas especies forrajeras de follaje o aéreas (^{Dolnik et al. 2010}). Finalmente, esta especie se alimenta principalmente en los pastizales, los cuales se encuentran fragmentados y adyacentes a zonas rurales, y en donde la interacción con aves de corral es frecuente (RCC observación personal). Respecto al impacto que tiene la coccidiosis en las aves silvestres, esta enfermedad se presenta principalmente durante la época reproductiva, cuando puede ocasionar pérdida de peso y reducción del éxito reproductivo (^{Yabsley 2008}), así como una disminución en la calidad de los caracteres sexuales secundarios (^{Horak et al. 2004}, ^{Pap et al. 2011}). Sin embargo, en la mayoría de los casos las infecciones no presentan problemas significativos, especialmente cuando la intensidad de la infección es baja (^{Lindsay y Blagburn 2008}, ^{Yabsley 2008}).

• ^{Canales-Delgadillo et al. 2008}
  Observations on flocking behavior of Worthen’s Sparrows Spizella wortheni and occurrence in mixed-species flocks

  The Wilson Journal of Ornithology, 2008
  Canales-Delgadillo, J.C., L.M. Scott-Morales, M.C. Correa, M.P. Moreno. 2008. Observations on flocking behavior of Worthen’s Sparrows Spizella wortheni and occurrence in mixed-species flocks. The Wilson Journal of Ornithology 120(3):569-574.
• ^{McQuistion et al. 2000}
  The prevalence of coccidian parasites in passerine birds from South America

  Transactions of the Illinois State Academy of Science, 2000
  McQuistion, T.E. 2000. The prevalence of coccidian parasites in passerine birds from South America. Transactions of the Illinois State Academy of Science 93(3):221-227.
• ^{Dolnik et al. 2010}
  The effect of host foraging ecology on the prevalence and intensity of coccidian infection in wild passerine birds

  Ardea, 2010
  Dolnik, O.V., V.R. Dolnik, F. Bairlein. 2010. The effect of host foraging ecology on the prevalence and intensity of coccidian infection in wild passerine birds. Ardea 98(1):97-103.
• ^{Dolnik et al. 2010}
  The effect of host foraging ecology on the prevalence and intensity of coccidian infection in wild passerine birds

  Ardea, 2010
  Dolnik, O.V., V.R. Dolnik, F. Bairlein. 2010. The effect of host foraging ecology on the prevalence and intensity of coccidian infection in wild passerine birds. Ardea 98(1):97-103.
• ^{Yabsley 2008}
  Eimeria

  Parasitic Diseases of Wild Birds, 2008
  Yabsley, M.J. 2008. Eimeria. Pp. 162-180. En C.T. Atkinson, N.J. Thomas y D.B. Hunter (eds.) Parasitic Diseases of Wild Birds. Wiley-Blackwell. Oxford, U.K.
• ^{Horak et al. 2004}
  How coccidian parasites affect health and appearance of greenfinches

  Journal of Animal Ecology, 2004
  Horak, P., L. Saks, U. Ots, P.F. Surai, K.J. McGraw. 2004. How coccidian parasites affect health and appearance of greenfinches. Journal of Animal Ecology 73(5):935-947.
• ^{Pap et al. 2011}
  The Effect of Coccidians on the condition and immune profile of molting House Sparrows Passer domesticus

  The Auk, 2011
  Pap, P.L., C.I. Vágási, G.Á. Czirják, A. Titilincu, A. Pintea, G. Osváth, A. Fülöp, Z. Barta. 2011. The Effect of Coccidians on the condition and immune profile of molting House Sparrows Passer domesticus. The Auk 128(2):330-339.
• ^{Lindsay y Blagburn 2008}
  Cryptosporidium

  Parasitic Diseases of Wild Birds, 2008
  Lindsay, D.S., B.L. Blagburn. 2008. Cryptosporidium. Pp. 195-203. En C.T. Atkinson, N.J. Thomas y D.B. Hunter (eds.) Parasitic Diseases of Wild Birds. Wiley-Blackwell. Oxford, UK.
• ^{Yabsley 2008}
  Eimeria

  Parasitic Diseases of Wild Birds, 2008
  Yabsley, M.J. 2008. Eimeria. Pp. 162-180. En C.T. Atkinson, N.J. Thomas y D.B. Hunter (eds.) Parasitic Diseases of Wild Birds. Wiley-Blackwell. Oxford, U.K.

Por su parte, los nemátodos Ascaridia son comunes en las aves de corral, silvestres en cautiverio, aves de presa y en algunas aves silvestres. Los efectos negativos que tienen sobre las aves son diarrea y deshidratación (para una revisión véase ^{Fedynich 2008}). La baja prevalencia del nemátodo del género Ascaridia spp. en nuestro estudio (n=1) es muy similar a la reportada en el pinzón mexicano (Haemorhous mexicanus) con un 4% (^{Hartup et al. 2004}). Uno de los riesgos por infección de nemátodos en Passeriformes es el gremio alimenticio, en donde las aves insectívoras y omnívoras muestran una mayor prevalencia de helmintos (68.8-88.7%) en comparación con aves granívoras (11.1%; ^{Borgsteede et al. 2000}). Aunque el gorrión altiplanero es principalmente granívoro, durante la época reproductiva y al igual que otros gorriones (e.g.^{Best 1977}, ^{Maher 1979}), se alimenta primordialmente de larvas y adultos de insectos y otros invertebrados (Carmona-Gómez comunicación personal), lo que aunado a la interacción con heces contaminadas de las aves de traspatio puede ser un factor de riesgo (^{Hernández-Divers et al. 2006}).

• ^{Fedynich 2008}
  Heterakis y Ascaridia

  Parasitic Diseases of Wild Birds, 2008
  Fedynich, A.M. 2008. Heterakis y Ascaridia. Pp. 388-412. En C.T. Atkinson, N.J. Thomas y D.B. Hunter (eds.) Parasitic Diseases of Wild Birds. Wiley-Blackwell. Oxford, UK.
• ^{Hartup et al. 2004}
  Health survey of House Finches Carpodacus mexicanus from Wisconsin

  Avian Diseases, 2004
  Hartup, B.K., B. Stott-Messick, M. Guzy, D.H. Ley. 2004. Health survey of House Finches Carpodacus mexicanus from Wisconsin. Avian Diseases 48(1):84-90.
• ^{Borgsteede et al. 2000}
  A study of the helminth fauna of birds belonging to the Passeriformes in the Netherlands

  Acta Parasitológica, 2000
  Borgsteede, F.H.M., A. Okulewicz, J. Okulewicz. 2000. A study of the helminth fauna of birds belonging to the Passeriformes in the Netherlands. Acta Parasitológica 45(1):14-21.
• ^{Best 1977}
  Nestling biology of the field sparrow

  The Auk, 1977
  Best, L.B. 1977. Nestling biology of the field sparrow. The Auk 94(3):308-319.
• ^{Maher 1979}
  Nestling diets of prairie passerine birds at Matador, Saskatchewan, Canada

  Ibis, 1979
  Maher, W.J. 1979. Nestling diets of prairie passerine birds at Matador, Saskatchewan, Canada. Ibis 121(4):437-452.
• ^{Hernández-Divers et al. 2006}
  A survey of selected avian pathogens of backyard poultry in Northwestern Ecuador

  Journal of Avian Medicine and Surgery, 2006
  Hernández-Divers, S.M., P. Villegas, F. Prieto, J.C. Unda, N. Stedman, B. Ritchie, R. Carroll, S.J. Hernández-Divers. 2006. A survey of selected avian pathogens of backyard poultry in Northwestern Ecuador. Journal of Avian Medicine and Surgery 20(3):147-58.

El conteo diferencial de leucocitos realizado coincidió con el individuo en el que se detectó coccidios (Eimeria spp. 20 o.g.h.) y helmintos (Ascaris spp., 20 h.g.h.) en el cual se observó que los linfocitos son el grupo celular más abundante (L=63%), seguido de heterófilos (H=30%), basófilos (B=5%), monocitos (M=2%) y sin observación de eosinófilos (E). La relación heterófilo/linfocito (H/L) fue de 0.48. A pesar de la infección los valores se encuentran en el rango de media previamente reportado para otras especies de las familias Emberizidae y Passerellidae: Emberiza cirlus (L=56.29, H=37.4, E=5.59, M=0.59, H/L=0.66; ^{Figuerola et al. 1999}), Zonotrichia capensis (L=71.4, H=20.2, E=2.3, B=3.1 M=2.9, H/L=0.30; ^{Ruiz et al. 2002}), Pipilo aberti (L=39.8, H=51.3, E=7.5, B=0.6, M=1.4, H/L=0.91; ^{Fokidis et al. 2008}) y Spizella breweri (L=55, H=37.25, E=2.25, B=1, M=4.5, H/L=0.88, datos obtenidos en un estudio paralelo al presente no publicados). La relación entre el conteo de los eosinófilos en aves con infecciones intestinales es ambigua; a pesar de que se ha se ha mostrado una asociación limitada entre nemátodos y el número de eosinófilos, los estudios experimentales con antígenos parasitarios no indujeron esosinofilia, y en el caso de inoculación de coccidias los niveles de eosinófilos circulantes en sangre se mantuvieron bajos (revisado en ^{Rose et al. 1979} y ^{Mitchell et al. 2008}). A su vez, dado que los valores provienen de una sola muestra, deben considerarse como informativos.

• ^{Figuerola et al. 1999}
  Blood parasites, leucocytes and plumage brightness in the Cirl Bunting, Emberiza cirlus

  Functional Ecology, 1999
  Figuerola, J., E. Muñoz, R. Gutiérrez, D. Ferrer. 1999. Blood parasites, leucocytes and plumage brightness in the Cirl Bunting, Emberiza cirlus. Functional Ecology 13(5):594-601.
• ^{Ruiz et al. 2002}
  Hematological parameters and stress index in rufous-collared sparrows dwelling in urban environments

  The Condor, 2002
  Ruiz, G., M. Rosenmann, F.F. Novoa, P. Sabat. 2002. Hematological parameters and stress index in rufous-collared sparrows dwelling in urban environments. The Condor 104(1):162-166.
• ^{Fokidis et al. 2008}
  Interspecific variation in avian blood parasites and haematology associated with urbanization in a desert habitat

  Journal of Avian Biology, 2008
  Fokidis, B.H., E.C. Greiner, P. Deviche. 2008. Interspecific variation in avian blood parasites and haematology associated with urbanization in a desert habitat. Journal of Avian Biology 39(3): 300-310.
• ^{Rose et al. 1979}
  Peripheral blood leucocyte response to coccidial infection: a comparison of the response in rats and chickens and its correlation with resistance to reinfection

  Immunology, 1979
  Rose, M.E., P. Hesketh, B.M. Ogilvie. 1979. Peripheral blood leucocyte response to coccidial infection: a comparison of the response in rats and chickens and its correlation with resistance to reinfection. Immunology 36(1):71.
• ^{Mitchell et al. 2008}
  Avian hematology and related disorders

  Veterinary Clinics of North America: Exotic Animal Practice, 2008
  Mitchell, E.B., J. Johns. 2008. Avian hematology and related disorders. Veterinary Clinics of North America: Exotic Animal Practice 11(3):501-522.

A pesar de la alta prevalencia, la baja carga parasitaria encontrada en los individuos de esta especie no muestra indicios de que los parásitos intestinales sean un factor limitante para la viabilidad de la especie. Sin embargo, los resultados obtenidos en este estudio deberían tomarse con precaución, dado que el conteo de parásitos intestinales puede variar dependiendo del método de muestreo (^{Villanúa et al. 2006}). Asimismo, un estudio más extensivo debería realizarse en la mayor parte de su distribución, incluyendo áreas sub-urbanas donde el gorrión coexiste con aves de corral, y podrían representar un mayor riesgo de infección (^{Deem et al. 2012}) y a lo largo de la época reproductiva, cuando, dado el esfuerzo y desgaste energético asociado, las aves son más susceptibles a éstas debido a la inmunosupresión.

• ^{Villanúa et al. 2006}
  Avoiding bias in parasite excretion estimates: the effect of sampling time and type of feces

  Parasitology, 2006
  Villanúa, D., L. Pérez-Rodríguez, G. Gortázar, U. Höfle, J. Viñuela. 2006. Avoiding bias in parasite excretion estimates: the effect of sampling time and type of feces. Parasitology 133(02): 251-259.
• ^{Deem et al. 2012}
  Diseases of poultry and endemic birds in Galapagos: implications for the reintroduction of native species

  Animal Conservation, 2012
  Deem, S.L., M.B. Cruz, J.M. Higashiguchi, P.G. Parker. 2012. Diseases of poultry and endemic birds in Galapagos: implications for the reintroduction of native species. Animal Conservation 15(1):73-82.