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Acta botánica mexicana

versión On-line ISSN 2448-7589versión impresa ISSN 0187-7151

Act. Bot. Mex  no.131 Pátzcuaro  2024  Epub 04-Abr-2025

https://doi.org/10.21829/abm131.2024.2378 

Artículos de investigación

Levantamiento florístico de un bosque mesófilo de montaña en la Sierra Norte de Puebla, México

Floristic survey of a cloud forest in the Sierra Norte of Puebla, Mexico

Arturo Romero-Santamaría1  * 
http://orcid.org/0000-0002-0241-2143

Jenny B. Fermín-Escobar1 
http://orcid.org/0009-0000-5355-9359

J. Daniel Tejero-Diez1  * 
http://orcid.org/0000-0002-7216-4755

1Universidad Nacional Autónoma de México, Facultad de Estudios Superiores Iztacala, Avenida de los Barrios 1, Los Reyes Ixtacala, 54090 Tlalnepantla de Baz, Estado de México, México.


Resumen:

Antecedentes y Objetivos:

La composición de la flora en el bosque mesófilo de montaña (BMM) de la Sierra Norte de Puebla ha recibido muy poca atención, a excepción de trabajos sobre la taxocenosis de los licopodios y helechos o estudios de plantas útiles. El objetivo principal de este estudio es contribuir al conocimiento florístico por medio de documentar las plantas vasculares de un fragmento de BMM ubicado en el municipio Xicotepec, Puebla, México.

Métodos:

Se realizó una recolecta de ejemplares de 2014 a 2016. De cada ejemplar se tomaron los datos de nutrición, hábitat, hábito y forma de vida (FV). Una vez identificadas las muestras, se corroboró su distribución y presencia dentro de instrumentos de conservación y comercio. Se calcularon el Índice de Biodiversidad Taxonómica (IB) y la Proporción de Epífitas (Pe).

Resultados clave:

En total se recolectaron 1476 ejemplares, de los cuales se determinaron 536 especies en 342 géneros y 127 familias. Solo se registraron ocho especies heterótrofas. Los hemicriptófitos y caméfitos son las FV mejor representadas. El IB es de 124.92 (spp/ha). La Pe es de 0.18. Se encontraron 177 especies incluidas en algún instrumento de protección o de comercio. Setenta y siete especies son endémicas a México y seis se restringen a la Sierra Madre Oriental. Además, se encontraron 33 especies introducidas.

Conclusiones:

Aunque existen indicios de impacto en la zona de estudio, la diversidad taxonómica, porcentajes de epífitas y el espectro de formas de vida no están alejados del normal que debería suponer una zona conservada. La alta diversidad de especies contenida en este relicto de BMM, aunado a que se encuentra en una región crítica de conservación, hace que se perfile como una zona de alta prioridad para su preservación. Se espera que este estudio contribuya con información útil para la toma de decisiones y para el conocimiento florístico general de la Sierra Norte de Puebla.

Palabras clave: bosque de niebla; conservación; diversidad; endemismo; formas de vida; municipio Xicotepec de Juárez

Abstract

Background and Aims:

The floristic composition of the cloud forest (CF) in the Sierra Norte of Puebla has received little attention, except for works about the taxocenosis of lycophytes and ferns or studies of useful plants. The principal aim of this study is to aid floristic knowledge by documenting the vascular plants in a fragment of CF in the municipality of Xicotepec de Juárez, Puebla, Mexico.

Methods:

The collection of specimens was realized from 2014 to 2016. For each specimen, the following data were taken: nutrition, habitat, habit and life form (LF). Once the samples were identified, their distribution and presence in conservation and trade instruments were verified. The Taxonomic Biodiversity (IB) and Epiphytic Proportion (Pe) indexes were calculated.

Key results:

A total of 1476 specimens were collected, of which 536 species were identified in 342 genera and 127 families. Only eight heterotrophic plants were recorded. The most abundant LF were hemicryptophytes and chamaephytes. The IB is 124.92 (spp/ha). The Pe is 0.18. In the instruments of protection and trade, 177 species were listed. Seventy-seven species are endemic to Mexico and six to the Sierra Madre Oriental. Furthermore, 33 alien plants were found.

Conclusions:

Even though signs of disturbance were found in the study area, the diversity of taxa, percentages of epiphytes and life form spectrum fall within the normal that must show a conserved area. The high diversity of species contained in this relict of CF, in addition to the fact it is located in a critical conservation area, shows the high priority for protection. We expect this study to contribute with useful information for administrative decisions and for the general floristic knowledge of the Sierra Norte of Puebla.

Key words: conservation; diversity; endemism; life forms; montane cloud forest; municipality Xicotepec de Juárez

Introducción

Es común que en la zona montañosa de México, las áreas protegidas de barlovento o con cañadas en altitudes elevadas, donde el vapor de agua atmosférico se condensa por efectos adiabáticos, se desarrolle el bosque de niebla, o bosque mesófilo de montaña (BMM sensuRzedowski, 1978). Por el simple hecho de que se estima que este tipo de vegetación en México ocupa 0.4% del territorio nacional como vegetación primaria (INEGI, 2009a), el BMM es reconocido como un sistema prioritario para la conservación y restauración, debido al papel vital que desempeña en servicios ambientales ligados al agua, la biodiversidad y otros bienes (Hamilton et al., 1995; Bruijnzeel, 2004; CONABIO, 2010).

Una de las zonas de ocupación más relevantes del BMM en México es la Sierra Norte del estado de Puebla, perteneciente a la región III sensuCONABIO (2010). Esta área forma parte de las Regiones Terrestres Prioritarias (RTPs) Sierra Gorda-Río Moctezuma y Bosques Mesófilos de la Sierra Madre Oriental (SMOr), así como del Área de Importancia para la Conservación de las Aves (AICA) Reserva de la Biosfera Sierra Gorda y Tlanchinol (CONABIO, 2010). Lo anterior se debe a que la Sierra Norte de Puebla está sujeta a un fuerte impacto antrópico donde el cambio de uso de suelo es extensivo y provoca que los mosaicos de vegetación remanentes estén especialmente predispuestos al cambio climático. Por ello, las oportunidades para la conservación de estos mosaicos forestales son en general bajas; el nivel de conocimiento biológico que se tiene de ella puede jugar un papel importante en el futuro de su conservación (CONABIO, 2010; Cruz-Elizalde et al., 2022).

Las masas forestales de la zona sur de la SMOr han recibido especial atención botánica en los estados de Hidalgo (Luna-Vega et al., 1994; Alcántara-Ayala y Luna-Vega, 1997, 2001; Escutia-Sánchez, 2004; Ponce-Vargas et al., 2006) y Veracruz (Luna-Vega et al., 1988; García-Franco et al., 2008; García-De la Cruz et al., 2013; Castillo-Hernández y Flores-Olvera, 2017; Vázquez-Torres, 2000), pero no así los de la región norte de Puebla (Ruiz Jiménez et al., 2012). Sin embargo, la magnificencia del BMM en Puebla ha atraído la atención de los pteridólogos, quienes han generado diversos trabajos en esta taxocenosis (Cerón-Carpio et al., 2006, 2012; Jano-Tolama y Andrés-Hernández, 2011; Mendoza-Ruiz y Ceja-Romero, 2020; Tzompa-Coatl et al., 2022). También han sido prolíficos los estudios relacionados con la flora útil como el de Martínez et al. (2007), en la zona de cafetales en la Sierra Norte de Puebla, México, quienes indican que un total de 319 especies son relevantes y, como el de Freire-Álvarez (2019), quienes, al evaluar los patrones de uso de un BMM y vegetación asociada en San Juan Tahitic (Zacapoaxtla), enlistan una riqueza de 293 especies.

Por lo anterior, el objetivo de este estudio es contribuir al conocimiento florístico del BMM por medio de la documentación de las plantas vasculares de un fragmento de bosque ubicado al oeste de la cabecera municipal Xicotepec de Juárez, Puebla. Se pretende, además, analizar aspectos del valor de conservación a partir de indicadores florísticos.

Materiales y Métodos

Área de estudio

El área elegida para este estudio es un polígono irregular de 73 ha, ubicado al oeste del poblado Xicotepec de Juárez. Las coordenadas extremas son 20°16'12''N, 97°59'24''W (al noroeste) y 20°15'34''N, 97°57'36''W (al sureste). Se trata de la estribación oeste de la Sierra de Xicotepec, constituida por cerros y cárcavas derivadas de los escurrimientos de agua que forma el río Duraznotla, delimitada en el extremo este por la zona urbana y rural de poblado Xicotepec de Juárez, y sitios aledaños como la localidad de Ex-Fábrica al norte y la colonia Duraznotla al sur (Fig. 1). En este polígono se presenta un intervalo de altitud de 326 m, donde la más baja es de 1116 m s.n.m. en la zona periurbana de Xicotepec y la más alta 1442 m en la sierra de Xicotepec. Su acceso es por la carretera federal 130 Huauchinango-Poza Rica (SEDESOL, 2010).

Figura 1: Ubicación del área de estudio en Xicotepec, Puebla, México. 

La zona de estudio forma parte de la subprovincia Carso-Huasteco, en el sur de la SMOr (CONABIO, 2010). El clima es semicálido, húmedo, con lluvias todo el año (CONANP, 2013). De acuerdo con la normal climatológica de Xicotepec de Juárez (CONAGUA, 2023), el agua de precipitación acumulada anual es de 3158 mm, sin tener déficit de humedad. Sin embargo, se observa una diferencia notable en la precipitación entre los meses verano (junio a octubre) y los de invierno-primavera (noviembre a mayo) (Fig. 2). La temperatura promedio anual es 18.4 °C, con los meses más calientes (arriba de 20 °C) entre abril y septiembre y los templados entre octubre y mayo, donde el más frío es enero con 13.1 °C. La fórmula climática de acuerdo con García (2004) es ((A)Ca(fm)(e)gw”). Los suelos presentes en las zonas bajas, al noroeste y sureste del área de estudio, son principalmente acrisoles (INEGI, 2010). Se localizan regosoles en pequeños enclaves de la zona de laderas, al suroeste, centro y noreste (INEGI, 2010). El área de trabajo cuenta con numerosos escurrimientos como arroyos y manantiales, p.ej. Duraznotla. Este sistema de aguas superficiales desemboca en el río Xochipila, el cual drena hacia el este y pasa a formar parte de los ríos San Marcos y Cazones consecutivamente (INEGI, 2009b). El polígono seleccionado como área de trabajo cuenta con una masa forestal mixta, compuesta por encinares y por BMM que se desarrollan en topoformas irregulares de tipo cerril y con laderas empinadas que corresponden a la cadena de montañas que enmarcan al poblado de Xicotepec de Juárez (INEGI, 2024). Esta masa forestal colinda a su vez con potreros, áreas urbanas y huertas de cultivo de plantas ornamentales perennes.

Figura 2: Diagrama ombrotérmico tipo Gaussen, a partir de la normal climatológica de la estación 21127 de Xicotepec de Juárez, Puebla, México, donde se exhibe el comportamiento anual relacionado entre temperatura y lluvia. El cociente P/T es igual a 171.8. 

Trabajo de campo

La recolecta de ejemplares botánicos se hizo en el periodo de agosto de 2014 a abril de 2016. Mediante recorridos libres por diferentes veredas dentro de la zona de estudio y con especial atención para las zonas que mostraban diferencias en su fisonomía, se recogieron y prensaron plantas en floración de acuerdo con los métodos propuestos por Lot y Chiang (1986). Además, a partir de una gradilla de cuadrantes de 500 × 500 m, se hicieron listas (y recolectas) intensivas en el centro de cada cuadro. La eficiencia de recolecta se decidió subjetivamente, cuando la probabilidad de encontrar más especies distintas disminuyó, dado que los ejemplares observados y enlistados pertenecían reiterativamente a las especies previamente recolectadas. Este protocolo ad hoc suele ser más eficiente en el registro de flora que los muestreos estructurados, sistemáticos o al azar, dado que se visitan microambientes y sitios de difícil acceso que dejan mayores avistamientos de especies raras (Gordon y Newton, 2006; Jayakumar et al., 2009). Para cada espécimen, al ser recolectado, se anotaron los datos estándar recomendados en Palmer et al. (1995); el tipo de nutrición de acuerdo con Frías-Castro et al. (2013) (autótrofa, saprófita, hemiparásita y holoparásita); el hábitat donde crece y la forma de vida (FV). Esta última de acuerdo con la propuesta de Raunkiaer (1934), que considera la ausencia o posición de la yema meristemática de reacción al estrés ambiental con relación al substrato (terófito, hemicriptófito, criptófito, caméfito y fanerófito); se consideró las siguientes subcategorías de crecimiento en especímenes fanerófitos: cespitoso, escaposo y lianas.

Trabajo de gabinete

La determinación de los especímenes se realizó por medio del uso de claves dicotómicas de literatura especializada, principalmente Flora del Bajío y de regiones adyacentes y Flora de Veracruz, publicadas por el Instituto de Ecología A.C., así como la consulta de Mickel y Smith (2004) para los pteridobiontes. Los ejemplares nominados se cotejaron por comparación con los tipos en JSTOR Global Plants (JSTOR, 2024). El nombre aceptado y la forma de citar a los autores se copió directamente de POWO (2024) (entrada por el IPNI, 2024) y World Ferns (Hassler, 2024) para evitar errores de transcripción. Algunas familias fueron presentadas a especialistas para su verificación final (ver agradecimientos). Los ejemplares se depositaron en el Herbario Nacional de México (MEXU), de los cuales se otorgaron copias para donación a los herbarios de la Benemérita Universidad de Puebla (HUAP) y del Missouri Botanical Garden (MO) (acrónimos de los herbarios de acuerdo con Thiers, 2021).

Se construyó una base de datos en Microsoft Excel con la información recabada en campo y gabinete de las especies. Con este mismo programa se realizaron los análisis estadísticos mencionados en el siguiente párrafo. La lista de especies obtenida y sus cualidades ambientales y de protección se muestran en el apéndice, bajo un arreglo alfabético y circunscripciones taxonómicas de APG IV para angiospermas (APG, 2016); PPG (PPG I, 2016) para pteridobiontes y Christenhusz et al. (2011) para gimnospermas; todo este conjunto de grupos se subordina a la clase Embryopsida (sensuPirani y Prado, 2012).

Análisis de biodiversidad

Se comparó la riqueza florística con otros estudios similares usando el Índice de Biodiversidad Taxonómica (IB), definido como el número de especies dividido entre logaritmo natural del área:

IB=slnA

donde S es el número de especies registradas y A el área en hectáreas del sitio de estudio (Squeo et al., 1998).

Por su significado como indicador ecológico, se calculó la proporción de plantas epífitas entre el cociente de plantas en este substrato (E) y el total de especies del polígono (S): Pe= E/S (Chávez-Esquivel, 2023). Esta proporción toma valores de 0 a 1, en donde entre más alto el valor, mayor proporción de epífitas existe en un sitio.

Conservación y endemismo

Para conocer las especies bajo algún instrumento de conservación y/o regulación de su comercio, el listado taxonómico obtenido se cotejó con la NOM-059-SEMARNAT-2010 y su actualización más reciente (SEMARNAT, 2010; 2019), la Lista Roja de la IUCN (IUCN, 2023) y los apéndices del CITES (CITES, 2023). La identificación de endemismos se realizó por medio de la consulta de las bases de datos del Catalogue of Life (Catalogue of Life, 2024)), Plants of the World Online (POWO, 2024) y Villaseñor (2016). Las especies exóticas se verificaron por medio del listado de Villaseñor y Espinosa-García (2004).

Resultados

Riqueza florística

En total se recolectaron 1476 ejemplares de plantas vasculares. Una vez determinados, se enlistaron 536 especies en 342 géneros y 127 familias (Fig. 3; Apéndice). Cabe destacar que a nivel de subclase (Embryopsida sensuPirani y Prado, 2012) (Cuadro 1), la riqueza se raciona de la siguiente forma: Lycopodiidae (15 spp.), Polypodiidae (117), Cycadidae (1), Pinidae (1), y Magnoliidae (402). Las 13 familias mejor representadas (con 10 o más especies) representan 49.81% del total y son: Asteraceae (41 spp., 7.64%), Orchidaceae (33, 6.15%), Fabaceae (29, 5.41%), Polypodiaceae (25, 4.66%), Rubiaceae (17, 3.17%), Solanaceae y Poaceae (16, 2.98% c/u), Thelypteridaceae (14, 2.6%), Bromeliaceae, Dryopteridaceae y Melastomataceae (13, 2.42% c/u), Malvaceae (12, 2.23%) y Lamiaceae (9, 1.67%). Por su parte, los 10 géneros más diversos (con cinco o más especies) son Tillandsia L. (10, 1.85%), Solanum L. (9, 1.67%), Pleopeltis Humb. & Bonpl. ex Willd. (8, 1.48%), Elaphoglossum Schott ex J. Sm. (7, 1.3% c/u), Amauropelta Kunze, Asplenium L., Begonia L., Diplazium Sw., Miconia Ruiz & Pav. y Piper L. (6, 1.15% c/u). Estos en conjunto albergan 11.89% del global de 342 géneros. El IB de la zona de estudio ostenta 124.92 (spp./ha).

Figura 3: Especies del bosque mesófilo de montaña de Xicotepec de Juárez, Puebla, México. A. Helosis cayennensis (Sw.) Spreng.; B. Columnea schiedeana Schltdl.; C. Disocactus phyllanthoides (DC.) Barthlott; D. Podocarpus matudae Lundell. Fotografías: J. D. Tejero-Díez. 

Cuadro 1: Diversidad de familias, géneros y especies por clase, de plantas vasculares identificadas en un polígono aledaño a Xicotepec de Juárez, Puebla, México. Subclases subordinadas al concepto de Clase de Embryopsida (sensu Pirani y Prado, 2012). 

Clase Familias Géneros Taxones
Lycopodiidae 2 8 15
Polypodiidae 22 57 117
Cycadidae 1 1 1
Pinidae 1 1 1
Magnoliidae 101 275 402

Nutrición

Solo 1.49% (8 spp.) del total de especies identificadas en la zona de estudio pertenecen a plantas heterótrofas. De estas, las hemiparásitas son las más diversas, puesto que representan tres familias y cinco especies: Loranthaceae (Psittacanthus schiedeanus (Schltdl. & Cham.) G.Don y Struthanthus crassipes (Oliv.) Eichler), Orobanchaceae (Castilleja arvensis Schltdl. & Cham.) y Santalaceae (Phoradendron carneum Urb. y Phoradendron quadrangulare (Kunth) Griseb). Dos especies son saprófitas: Apteria aphylla (Nutt.) Barnhart ex Small (Burmanniaceae) y Voyria flavescens Griseb. (Gentianaceae). El holoparasitismo solo está representado por Helosis cayennensis var. mexicana (Liebm.) B.Hansen (Balanophoraceae). El resto de las especies (528, 98.51%) son autótrofas.

Hábitat

El substrato terrícola-humícola es el más importante al estar ocupado por 428 spp. (81.66%). El segundo en importancia es el corticícola (epífitas) con 99 spp. (18.4%). El resto de las plantas se encuentran en los siguientes substratos: paludícolas y acuícolas (13 spp., 2.41%), rupícolas (3 spp., 0.55%). La proporción de plantas epífitas (Pe) se estimó en 0.18.

Formas de vida

Todas las formas de vida se encuentran en la zona de estudio (Fig. 4). Las más importantes son los caméfitos (189 spp.) y hemicriptófitos (104 spp.), que en conjunto representan 54.46% de la riqueza florística encontrada. Por su parte el grupo de los fanerófitos representa 30.66%, de las cuales las escaposas albergan 81 especies, las lianas o bejucos 12 spp. y las cespitosas a 84 spp. Los terófitos (49 spp.) y criptófitos (38 spp.) están poco representados.

Figura 4: Espectro de formas de vida (en porcentaje) de la flora en Xicotepec de Juárez, Puebla, México. 

Instrumentos de conservación

Las especies que están incluidas bajo algún instrumento de protección son 177 (32.4%) (Apéndice). Con la actualización de la NOM-059-SEMARNAT-2010 (SEMARNAT, 2019) coinciden 16 taxones (2.97%), mientras que con la Lista Roja de la IUCN son 132 (24.53%) y con los apéndices del CITES 41 (7.62%). De las 67 familias con especies incluidas en estas regulaciones, seis son las que contienen cinco o más: Orchidaceae (33 spp.), Fabaceae (17), Asteraceae, Rubiaceae y Solanaceae (8 cada una), Malvaceae (6), las cuales representan 45.19% de este contingente de especies.

Distribución

Al menos 77 especies son endémicas al país, de las cuales seis son endémicas a la SMOr. Vale la pena señalar que 59 spp. son nuevos registros para el estado de Puebla. Por otra parte, 33 spp. son introducidas dentro del área de estudio (Apéndice).

Discusión

Riqueza florística

Las 536 especies de plantas registradas en el fragmento de BMM de Xicotepec representan 10.24% de las reportadas para el estado de Puebla (5232 spp.; Villaseñor (2016)). A su vez, representan 18.57% de la flora del bioma bosque húmedo de montaña de México (sensuVillaseñor y Ortiz, 2014) donde Rodríguez-Acosta et al. (2014) reportaron la presencia de 2886 especies en Puebla.

Las comparaciones florísticas mediante el índice de biodiversidad taxonómica (Squeo et al., 1998) otorgan una perspectiva de interés conservacionista, aunque para ello es un problema común la falta de exactitud en la dimensión del área de estudio, o bien, la delimitación de una formación vegetal debido a su complejidad y traslape con otros tipos de vegetación, como sucede con el BMM (Vargas-Rueda et al., 2021; López-Pérez et al., 2011). Si bien el número de especies obtenidas en este estudio solo es superado por los encontrados en Landa de Matamoros, Querétaro (Cartujano et al., 2002), el Cañón del Río Blanco, Veracruz (Vargas-Rueda et al., 2021) y Jilotepec, Veracruz (Vázquez-Torres et al., 2000), al aplicar la relación logarítmica con el tamaño del área de estudio, Xicotepec en realidad contiene la mayor riqueza de especies de muchas de las zonas estudiadas en la región de influencia (Cuadro 2). Por lo anterior, se puede confirmar que el BMM de Xicotepec es un relicto de enorme importancia en la conservación, ya que alberga 124.92 spp./ha en un espacio reducido de terreno que forma parte de la Región Terrestre Prioritaria de México 102 (CONABIO, 2004).

Cuadro 2: Comparativo de la riqueza de especies y el Índice de Biodiversidad Taxonómica (IB) (cuando el estudio lo permite) con otras localidades que presentan bosque mesófilo de montaña (BMM) en México. NR=No Reportada. 

Estudio Área (ha) Riqueza IB (spp./ha)
Xicotepec, Puebla (este estudio) 73 536 124.92
Reserva del Bicentenario, Zongolica, Veracruz (Castillo-Hernández y Flores-Olvera, 2017) 63 401 96.78
Landa de Matamoros, Querétaro (Cartujano et al., 2002) 5400 774 90.06
Molote, Guerrero (Lozada et al., 2003) 700 458 69.91
Valle de Bravo, Estado de México (López-Pérez et al., 2011) 1870 391 51.9
Lolotla, Hidalgo (Ponce-Vargas et al., 2006) 1022 359 51.8
Sierra de Sultepec, Estado de México (Torres-Zúñiga y Tejero-Díez, 1998) 20,000 507 51.19
Miahuatlán, Oaxaca (Campos-Villanueva y Villaseñor, 1995) 4300 353 42.19
Teocelo, Veracruz (Luna-Vega et al., 1988) 2100 277 36.21
Omiltemi, Guerrero (Jiménez-Ramírez et al., 1993) 3000 244 30.47
Ocuilan, Morelos y Estado de México (Luna et al., 1989) 1220 160 22.51
PN Cañón del Río Blanco, Veracruz (Vargas-Rueda et al., 2021) NR 663 NA
Jilotepec, Veracruz (Vázquez-Torres, 2000) NR 603 NA
Tenango de Doria, Hidalgo (Alcántara-Ayala y Luna-Vega, 1997) NR 452 NA
San Juan Tahitic, Puebla (Freire-Álvarez, 2019) 0.6 219 NA

Evidentemente esta alta diversidad registrada en la zona de estudio se debe a que convergen factores físicos que provocan una variación horizontal y vertical de la cubierta vegetal, tal como la presencia de microambientes topográficos encontrados, a una altitud donde los vientos alisios se condensan dejando una elevada humedad atmosférica y la temperatura se muestra intermedio entre lo cálido y templado. Además, en esta riqueza de flora influye la entrada de especies sinantrópicas, debido a que el área muestreada limita con potreros y el poblado de Xicotepec. En las zonas conservadas, las familias características con mayor representatividad son Orchidaceae, Bromeliaceae, Fagaceae y Rubiaceae, junto con los pteridobiontes (como Polypodiaceae), típicas de sistemas templado húmedo de México, donde el componente de las epífitas es preponderante (CONABIO, 2010). Mientras que, en sitios de pastizal, acahual y bosque secundario, la flora sinantrópica presenta familias dominantes como Asteraceae, Poaceae, Fabaceae y Melastomataceae (Rzedowski, 1993; Colmenero-Robles et al., 2001; Bécquer-Granados, 2004).

Nutrición

En la localidad de estudio solo 1.48% de las plantas son heterótrofas. En general, estas plantas no superan el 3% en los ecosistemas (Nickrent, 2020), pero se vuelven un indicador de impacto cuando la dominancia de las especies parásitas y hemiparásitas afecta al rendimiento del hospedante y termina por provocar cambios en la comunidad vegetal (Press y Phoenix, 2005). Por lo pronto, la proporción de plantas heterotróficas aquí reportada es más o menos similar a otros bosques semejantes circunvecinos (López-Pérez et al., 2011; Castillo-Hernández y Flores-Olvera, 2017; Vargas-Rueda et al., 2021) y, de acuerdo con nuestras observaciones, ninguna de las especies destaca por presentar alta frecuencia-abundancia. Con ello, se puede asegurar que el impacto ambiental aun no afecta la parte profunda de la estructura del bosque. Sin embargo, es de interés conservacionista mantener vigiladas poblaciones de Psittacanthus schiedeanus y Phoradendron quadrangulare, dada su potencialidad como plaga, al ser las más abundantes de entre las parasitas en la zona de estudio.

Hábitat

Evidentemente y en ausencia de afloramientos rocosos o taludes en cuencas húmedas en la localidad, la preferencia del substrato de ocupación por parte de las plantas en la zona estudiada es la terrícola-humícola, substrato que al parecer es donde el BMM tiene su máxima expresión en México, debido a que el rocoso es de índole xerófilo (Cartujano et al., 2002; Ponce-Vargas et al., 2006; Castillo-Hernández y Flores-Olvera, 2017; Vargas-Rueda et al., 2021). En este substrato se establece 81.66% de las especies registradas.

Por otra parte, la ocupación vertical del espacio por parte de la flora epífita es altamente diversa, una característica propia del BMM (Rzedowski, 1978; CONABIO, 2010). En el polígono estudiado este contingente de plantas representa una proporción de 0.18, bastante superior al de otros BMM del país como Zongolica, Veracruz (Pe=0.12; Castillo-Hernández y Flores-Olvera, 2017); Lolotla, Hidalgo (Pe=0.09; Ponce-Vargas et al., 2006) y Tenango de Doria, Hidalgo (Pe=0.06; Alcántara-Ayala y Luna-Vega, 1997).

Esta relación entre epífitas y el total de plantas ayuda a explicar tanto la biodiversidad local derivado de las condiciones especiales de humedad que favorece la ocupación de este substrato (Zotz y Schutlz, 2008; Sanger y Kirkpatrick, 2017), como el tipo de forófitos amigables existentes (Dislich y Mantovani, 2016). Por ejemplo, en el BMM de Avándaro, Estado de México, López-Pérez et al. (2011) reportaron 22 spp. (5.6%), vs. 99 spp. (18.4%) en Xicopetec. Demuestra claramente cómo la diferencia de la humedad atmosférica juega un papel en la estructura de la diversidad propias del BMM, donde ciertas familias comunes (p.ej., familias como Bromeliaceae, Polypodiaceae, Piperaceae y Orchidaceae) tienen diferencias en su presencia taxonómica y de abundancia. El diagrama ombrotérmico de Avándaro muestra un déficit hídrico de los meses de noviembre a abril (López-Pérez et al., 2011). Este factor físico puede ayudar a explicar la diferencia en la diversidad de este grupo funcional, puesto que, en Xicotepec, no existe tal decremento anual. Lo anterior, aunado a la presencia de elementos de agua superficiales y la topografía accidentada, que generan zonas con humedad ambiental muy alta en Xicotepec, permite la presencia no solo de mayor diversidad de las familias antes mencionadas, sino también de taxones de grupos más dependientes de la humedad, como Cyatheaceae, Gesneriaceae y Hymenophyllaceae, ausentes en BMM más estacionales.

Formas de vida

Los espectros de FV como elementos de interpretación climo-dinámica y de impacto son muy aceptados en el mundo (Cain, 1950; Leuschner y Ellenberg, 2017; Di Biase et al, 2021). Sin embargo, en México existen muy pocos trabajos que los contemplen (Frías-Castro et al., 2013). Rzedowski (1978) indicó la universalidad de este instrumento de análisis de formaciones vegetales mexicanas vs. de otras partes en el mundo. En general, en México los hemicriptófitos están bien representados en el clima templado, pero deprimidos en clima cálido vs. lo contrario a fanerófitos arbóreos. Los terófitos lo están en las zonas áridas y ambientes secundarios y los caméfitos en la zona alpina y pastizales de diferente índole. Las desviaciones teóricas de un espectro permiten entonces una interpretación de impacto (Pausas y Austin, 2001; López-Pérez et al., 2011).

El espectro de FV del área de BMM de Xicotepec tiene parecido al de otros BMM (Fig. 5), donde la FV más abundantes son hemicriptófitos, fanerófitos y caméfitos (considerando a las plantas epífitas) (López-Pérez et al., 2011; Rzedowski, 1978). La presencia de hemicriptófitos y caméfitos (104 y 189 spp., respectivamente; equivalentes a hierbas perennes o subarbustos en general) no presentan abundancias altas en zonas donde el dosel se encuentra conservado. Sin embargo, como una de las propiedades de expresión de los bosques templados (Rzedowski, 1978), las hemicriptófitas son de mayor abundancia y riqueza florística en las porciones del norte y este del área de estudio, donde el estrato arbóreo no está consolidado por tener frontera con ambientes antrópicos como el pastoreo.

Figura 5: Espectro de formas de vida (en porcentaje) reportados en bosque de Pinus patula Schltdl. & Cham. (Rzedowski, 1978), Avándaro, Valle de Bravo (López-Pérez et al., 2011) y Xicotepec de Juárez (presente estudio). 

Por lo tanto, la expresión en el espectro de formas de vida de Xicotepec se ve desviada de la normalidad para esta formación vegetal donde hemicriptófitos y fanerófitos escaposos deben predominar (al igual que caméfitos epífitos) (Mueller-Dombois y Ellenberg, 1974; Rzedowski, 1978; Vidal y Reif, 2011; Di Biase et al., 2021). Parte de la explicación de dicha desviación sucede por el impacto antrópico local, que ha sido históricamente importante. Así, un contingente de especies terófitos, hemicriptófitos (herbáceas de ciclo anual y algunas perennes) y caméfitos (subarbustos y algunas herbáceas no epifitas) sobrerrepresentadas están ligadas a zonas abiertas de potreros y veredas (Grime, 2006). Otra forma de vida abundante son los fanerófitos cespitosos (equivalente a arbustos), probablemente debido a la existencia de una extensa línea de borde de bosque, donde suelen dominar con apenas unas cuantas especies arbóreas juveniles de rápido crecimiento como Liquidambar L. y melastomatáceas como Miconia xalapensis (Bonpl.) M.Gómez.

Instrumentos de conservación

Se encontraron 177 especies (Apéndice) coincidentes con las enumeradas en listados de especies sensibles al impacto antrópico, de las cuales destacan: Ceratozamia mexicana Vovides, Avendaño, Pérez-Farr. & Gonz.-Astorga (Apéndice I CITES y Amenazada (A) en la NOM-059-SEMARNAT-2010); Quercus delgadoana S.Valencia, Nixon & L.M.Kelly y Urera martiniana V.W. Steinm. (Endangered (EN) en la Lista Roja de la IUCN) y Alsophila firma (Baker) D.S.Conant En peligro de extinción (P) según la NOM-059-SEMARNAT-2010 (SEMARNAT, 2019). Resulta paradójica la nominación de Nephrolepis cordifolia (L.) C.Presl, contemplada en la NOM-059-SEMARNAT-2010 (SEMARNAT, 2010) en un estado de peligro de extinción ya que es introducida (Tejero-Díez y Torres-Díaz, 2012) y, aunque en la zona de estudio no se comporta como invasora, en otras localidades como Huauchinango, Puebla se ha observado desplazando a la flora local (Tejero-Díez, obs. pers.).

Este conjunto de especies en protección suele ser superior al de otros lugares similares (Castillo-Hernández y Flores-Olvera, 2017; López-Pérez et al., 2011), a excepción del Parque Nacional Cañón del Río Blanco, donde 270 especies se encuentran en alguna categoría de los mismos instrumentos utilizados en este estudio (Vargas-Rueda et al., 2021). Si bien la nominación de especies en listas de prevención se puede considerar deficiente y controvertido, p.ej. el caso del párrafo anterior (Giraudo et al., 2011), son un claro indicador, junto con la consideración de las especies endémicas (siguiente párrafo), del valor biológico del área de estudio (Hobohm y Barker, 2023).

Distribución

De las 536 especies determinadas, 77 son endémicas al país, mientras que fisiográficamente seis especies se encuentran restringidas únicamente a la SMOr, sin haber sido reportadas para el estado de Puebla (Rodríguez-Acosta et al., 2014) (Apéndice). De estas destaca la familia Asteraceae con dos especies: Cirsium lappoides Sch. Bip y Verbesina olsenii B.L. Turner. Las demás familias cuentan con una especie solamente: Woodwardia martinezii Maxon ex Weath. (Blechnaceae), Quercus delgadoana (Fagaceae), Eugenia xilitlensis McVaugh (Myrtaceae) y Urera martiniana (Urticaceae).

Cabe destacar el hallazgo de 59 especies novedosas para el estado de Puebla (Apéndice; Rodríguez-Acosta et al., 2014; Villaseñor, 2016; ). Se reporta la familia Balanophoraceae con Helosis cayennensis (Sw.) Spreng., una planta parásita de raíz, previamente conocida para Veracruz e Hidalgo en la misma región fisiográfica del Carso Huasteco y otros estados (Martínez-Pérez y Acevedo-Rosas, 1995). De un modo similar destaca Voyria flavescens Griseb. Desde luego, este alto número de novedades es en parte debido a la ausencia de estudios florísticos locales.

Por otra parte, la presencia de vegetación inducida de importancia comercial como el café o plantas ornamentales, aunado a la cercanía con el poblado de Xicotepec, auspició el hallazgo de 33 especies exóticas. Si se toma en cuenta la zona de estudio en su extensión total, se puede considerar que este conjunto de especies tiene un efecto aditivo a la diversidad. Sin embargo, es cierto que las plantas invasoras se pueden encontrar de manera recurrente en zonas secundarias, donde el cambio en la estructura de la comunidad y la constante presión ejercida por la actividad humana favorecen su presencia, disminuyendo la diversidad en estos sitios (Vilà et al., 2011).

Este estudio reporta un gran número de especies para una localidad con BMM situada en la Sierra Norte de Puebla. Si bien es un resultado que se esperaba por la relación especial de spp./ha que presenta este tipo de bosque, las presiones antrópicas a las que está sujeto la llevan a considerarla como crítica para la conservación. La presencia de especies alóctonas y un espectro de FV que muestra elevado porcentaje de hábitos impropios a la estructura vegetal impoluta contrastan con la elevada riqueza de la flora, ausencia de plagas forestales, sistema florístico estructural original y un contingente de especies evaluadas como sobresalientes en la conservación. Estas últimas destacan la importancia de considerar la localidad de estudio como un sitio de reservorio de flora o Área Natural Protegida local o estatal, o hasta un parque urbano natural. Actualmente los terrenos están “protegidos” por ser de propiedad privada.

Contribución de autores

JDTD concibió, planeó y financió el proyecto además de vigilar la determinación de ejemplares y el escrito. ARS y JFE realizaron la determinación taxonómica de los ejemplares. ARS se encargó de la redacción del escrito y cartografía con la ayuda de JDTD y JFE. Todos los autores colaboraron en el trabajo de campo, en la revisión y aprobación del escrito final.

Financiamiento

Este estudio forma parte de los proyectos de tesis de licenciatura de ARS y JFE. Se recibió financiamiento de JTD a partir de la beca SNI para la realización del estudio.

Agradecimientos

A Liliana E. Rubio Licona por su apoyo en la corroboración de ejemplares del género Quercus. A Alexander Rojas y Robbin Moran por su apoyo en la recolección de campo y al primero por la determinación de pteridobiontes, sobre todo en el género Elaphoglossum. A los grupos del laboratorio de investigación científica IV de las generaciones 2014 a 2018 por las donaciones de especímenes recolectados en sus proyectos. A los editores y revisores anónimos, especialmente a Allen J. Coombes, curador del herbario BUAP, por sus atinadas observaciones taxonómicas.

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Citar como:

Romero-Santamaría, A., J. B. Fermín-Escobar y J. D. Tejero-Diez. 2024. Levantamiento florístico de un bosque mesófilo de montaña en la Sierra Norte de Puebla, México. Acta Botanica Mexicana 131: e2378. DOI: https://doi.org/10.21829/abm131.2024.2378

Apéndice:

Listado florístico de las especies de plantas vasculares encontradas en el BMM aledaño a Xicotepec de Juárez, Puebla, México. *=Endémica a México, °=Endémica a la SMOr, ᴵ=Introducida, ᴺ=Nuevo registro para el estado de Puebla, S =Saprófito, P =Holoparásito, H= Hemiparásito. Sub=Tipo de substrato, T=terrícola, P=paludícola, C=corticícola, R=rupícola, A=acuícola. F.V.=Forma de vida, Fe=fanerófito escaposo, Fc=fanerófito cespitoso, Ca= caméfito, He=hemicriptófito, Cr=criptófito, T=terófito. Con=Instrumentos de conservación o regulación de comercio, Categorías de riesgo NOM059-SEMARNAT-2010 (SEMARNAT, 2019): Pr=sujetas a protección especial, A=amenazadas, P=en peligro de extinción; Lista Roja (IUCN, 2024): EN=en peligro, VU=Vulnerable, NT=casi amenazada, LC=preocupación menor; CITES (CITES, 2023): I=apéndice I, II=apéndice II. No. de Colecta: AJD=RomeroSantamaría Arturo, Fermín-Escobar Jenny B. y Tejero-Diez J. Daniel; JDTD=Tejero-Díez J. Daniel; Números sin siglas=Fermín-Escobar Jenny B., RomeroSantamaría Arturo y J. Daniel Tejero-Díez. Todos los ejemplares fueron depositados en el herbario MEXU.

Taxones Sub F.V. Con No. colecta
LYCOPODIIDAE
Lycopodiaceae
Diphasiastrum thyoides (Humb. & Bonpl. ex Willd.) Holub T He 1163
Lycopodium clavatum L. T He LC 395, 397, 462, 408, 396
Palhinhaea cernua (L.) Vasc. & Franco T He 390, 394, 409, 393, 483, 391, 392, 410
Phlegmariurus linifolius (L.) B. Øllg. C Ca 653, 402, 403, 404, 1161
Phlegmariurus pithyoides (Schltdl. & Cham.) B. Øllg.ᴺ C Ca 1162
Phlegmariurus taxifolius (Sw.) Á. Löve & D. Löve C Ca 398, 400, 401, 399, 459, 652, 458, 460, 461
Selaginellaceae
Bryodesma sartorii (Hieron.) Soják T He JDTD 01/05/2015-13
Didiclis hoffmannii (Hieron.) Li Bing Zhang & X. M. Zhou T He JDTD 01/05/2015-12
Gymnogynum silvestre (Aspl.) Li Bing Zhang & X.M.Zhou T He 676, 680, 677, 679, 675, 678
Gymnogynum stellatum (Spring) Li Bing Zhang & X.M. Zhou T He 1181, 1182, 682, 503, 504, 681
Selaginella lineolata Mickel & Beitel T He JDTD 01/05/2015-11
Selaginella mixteca Mickel & Beitel* T He 1135
Selaginella polyptera Valdespino*ᴺ T He 1179
Selaginella schiedeana A. Braun* T He 432
Selaginella stenophylla A. Braun T He 1180
POLYPODIIDAE
Anemiaceae
Anemia adiantifolia (L.) Sw. T Cr 253, 623, 621, 622, 252, 619, 620
Anemia mexicana Klotzsch T Cr JDTD 28/09/2012-1
Aspleniaceae
Asplenium alatum Humb. & Bonpl. ex Willd. T Ca JDTD 01/05/2015-7
Asplenium auriculatum Sw. C Ca 249, 625, 250, 430, 251, 277, 419, 457, 626
Asplenium radicans L. T He 1211, 1210, 420
Asplenium serra Langsd. & Fisch. C Ca 1183
Asplenium sessilifolium Desv. C Ca 382
Asplenium sphaerosporum A.R. Sm. C/T Ca 455, 456, 624, 1184
Athyriaceae
Diplazium expansum Willd. T Ca 447
Diplazium hians Kuntzeᴺ T Ca 350, 431, 417
Diplazium lindbergii (Mett.) Christ T Ca 354
Diplazium striatum (L.) C.Presl T Ca 686, 687
Diplazium ternatum Liebm. T Ca 351, 352, 406, 684, 353, 688, 689, 683, 685
Diplazium urticifolium Christ Blechnaceae T Ca 418
Blechnaceae
Blechnum appendiculatum Willd. C/T Ca 631, 630, 632
Blechnum polypodioides Raddi C/T Ca 505, 629, 445, 704, 627, 628, 444
Lomaridium fragile (Liebm.) Gasper & V.A.O. Dittrich T He 1160
Parablechnum falciforme (Liebm.) Gasper & Salino T Ca 482, 480, 481, 708, 709, 710
Parablechnum schiedeanum (Schltdl. ex C.Presl) Gasper & Salino T Ca 254, 256, 255
Woodwardia ×semicordata Mickel & Beitel* T Ca 257
Woodwardia martinezii Maxon ex Weath.*° T Ca 259, 260, 261, 635, 490, 489
Cyatheaceae
Alsophila firma (Baker) D.S. Conant T Fe P, II 415, 484, 713, 424, 262, 1154
Alsophila tryoniana (Gastony) D.S. Conantᴺ T Fe II 387, 1150
Cyathea myosuroides (Liebm.) Domin T Fe II 1151
Cyathea schiedeana (C. Presl) Domin T Fe Pr, II 1148, 411, 507, 1152, 1153
Cyathea tuerckheimii Maxon T Fe Pr, II 712, 425, 638, 362, 711, 636, 639, 413, 637
Cystopteridaceae
Cystopteris fragilis (L.) Bernh. C Ca LC 321
Dennstaedtiaceae
Dennstaedtia distenta (Kunze) T.Moore T Ca 474, 634, 1141, 640, 633, 641
Hypolepis blepharochlaena Mickel & Beitel T Ca 1137
Mucura globulifera (Poir.) L.A.Triana & Sundueᴺ T Ca 1136, 1140, 1138, 1139
Dicksoniaceae
Lophosoria quadripinnata (J.F.Gmel.) C.Chr. T Fc 384, 642, 275, 643, 383, 276, 1185
Dryopteridaceae
Arachniodes denticulata (Sw.) Ching T He 1207, 1208, 1209
Dryopteris cinnamomea (Cav.) C. Chr. T He JDTD 01/05/2015-21
Dryopteris patula (Sw.) Underw. T Ca JDTD 01/05/2015-22
Elaphoglossum affine (M.Martens & Galeotti) T.Mooreᴺ C Ca 466
Elaphoglossum ellipticifolium A.Rojasᴺ C Ca 269, 272, 270, 271
Elaphoglossum lonchophyllum (Fée) T.Mooreᴺ C Ca 323
Elaphoglossum paleaceum (Hook. & Grev.) Sledgeᴺ C Ca 266, 469, 264, 265, 267, 263, 268, 1147
Elaphoglossum peltatum (Sw.) Urb. C Ca 465
Elaphoglossum sartorii (Liebm.) Mickel C/T Ca 646, 647, 467, 1143, 468, 1144
Elaphoglossum viride C.Chr.*ᴺ T He 274, 273
Megalastrum pulverulentum (Poir.) A.R.Sm. & R.C.Moran T Ca 1145, 1142
Polystichum distans Fourn. T Ca 1146
Polystichum hartwegii (Klotzsch) Hieron. T Ca 296, 435, 644, 645, 436
Equisetaceae
Equisetum myriochaetum Schltdl. & Cham. P He 380, 506
Gleicheniaceae
Diplopterygium bancroftii (Hook.) A.R.Sm. T Cr 1178 A, 1178 C, 1178 B
Gleichenella pectinata (Willd.) Ching T Cr 714, 715
Sticherus bifidus (Willd.) Ching T Cr 720, 721, 726, 718, 719, 722, 723, 724, 725
Sticherus furcatus (L.) Ching T Cr 716, 717
Sticherus underwoodianus (Maxon) Nakai T Cr 475
Hymenophyllaceae
Hymenophyllum maxonii Christ ex C.V.Mortonᴺ C He 371, 374, 367, 501, 370, 502
Hymenophyllum polyanthos (Sw.) Sw. C He 368, 369, 378, 375, 651, 377, 389, 650
Hymenophyllum trapezoidale Liebm. C He 426, 372
Polyphlebium angustatum (Carmich.) Ebihara & Dubuisson C He 648, 448, 376, 649
Vandenboschia radicans (Sw.) Copel. C He 373
Lygodiaceae
Lygodium venustum Sw. T Ca 356
Marattiaceae
Marattia weinmanniifolia Liebm. T Ca Pr 364, 428, 363, 427
Nephrolepidaceae
Nephrolepis cordifolia (L.) C.Preslᴵ T Ca P 365, 655, 407, 366, 416, 654
Ophioglossaceae
Cheiroglossa palmata (L.) C. Presl C Ca JDTD 01/05/2015-19
Ophioglossum crotalophoroides Walter T Cr JDTD 01/05/2015-23
Osmundaceae
Osmunda spectabilis Willd. T Ca LC 358, 485, 357, 359, 360
Polypodiaceae
Campyloneurum amphostenon Fée C Ca 319
Campyloneurum angustifolium (Sw.) Fée C Ca 385, 314, 315, 662, 663, 659, 1168
Campyloneurum phyllitidis (L.) C.Presl C Ca A 657, 656, 658, 320
Campyloneurum tenuipes Maxon C Ca 661, 660
Campyloneurum xalapense Fée T He 316, 443
Ceradenia oidiophora (Mickel & Beitel) A.R.Sm.ᴺ T He 450
Melpomene xiphopteroides (Liebm.) A.R.Sm. & R.C.Moranᴺ C Ca 434, 433, 429
Niphidium crassifolium (L.) Lellinger C Ca 479, 405, 525, 664, 312, 446
Pecluma alfredii (Rosenst.) M.G.Price C/T Ca 1165, 1166
Pecluma bourgeauana (E.Fourn.) L.A.Trianaᴺ C/T Ca 526, 311
Pecluma longepinnulata (E.Fourn.) F.C.Assis & Salino C/T Ca 528, 292, 295, 438, 439, 440, 667, 293, 477,
294, 476, 478
Phlebodium pseudoaureum (Cav.) Lellinger C Ca 309, 493, 494, 308, 310, 495, 492
Pleopeltis crassinervata T.Moore C Ca 288, 291, 287, 290, 386, 289
Pleopeltis cryptocarpos (Fée) A.R.Sm. & Tejero C Ca 313, 666, 527
Pleopeltis fallax (Schltdl. & Cham.) Mickel & Beitel C Ca 286, 452, 453, 284, 451, 486, 283, 285, 487
Pleopeltis lepidotricha (Fée) A.R.Sm. & Tejero* C Ca 665
Pleopeltis mexicana (Fée) Mickel & Beitel C He JDTD 4
Pleopeltis plebeia (Schltdl. & Cham.) A.R.Sm. & Tejero C/T Ca 301, 302, 306, 454, 303, 304, 498, 305, 497
Pleopeltis polypodioides (L.) E.G.Andrews & Windham C Ca 307
Pleopeltis villagranii (Copel.) A.R.Sm. & Tejero* C Ca 279, 442, 278, 280, 441
Polypodium eatonii Baker* C Ca 116
Polypodium echinolepis Fée T He 437, 1169
(Kunze) A.R.Sm. C/T Ca 282, 281, 449
Serpocaulon triseriale (Sw.) A.R.Sm. C/T Ca A 381, 299, 361, 298, 300, 297
Terpsichore asplenifolia (L.) A.R.Sm.ᴺ C Ca 317, 318, 421
Psilotaceae
Psilotum ×complanatum Sw. C Ca A 322, 414, 422, 423
Pteridaceae
Adiantum amplum C.Preslᴺ T He 473, 668, 329, 472, 669
Adiantum concinnum Humb. & Bonpl. ex Willd. R He 379
Hemionitis palmata L. T He 324
Llavea cordifolia Lag. T Ca 1156
Mildella intramarginalis (Kaulf. ex Link) Trevis. T He 332, 331
Myriopteris myriophylla (Desv.) J. Sm. R He JDTD 01/05/2015-6
Pellaea ternifolia (Cav.) Link T He 330
Pityrogramma calomelanos (L.) Link T He 327, 670, 326
Pityrogramma trifoliata (L.) R.M.Tryon T He 671, 328
Pteris grandifolia L. T Ca JDTD 01/05/2015-3
Pteris muricella Fée T Ca 1501
Pteris orizabae M.Martens & Galeotti T Ca 674-A, 674-B
Pteris podophylla Sw. T Ca 1155
Pteris quadriaurita Retz.ᴵ T Ca 673, 1158, 672, 1186, 325
Vittaria graminifolia Kaulf. C/T Ca 334, 335, 463, 488, 333, 336, 464, 1157
Tectariaceae
Tectaria heracleifolia Underw. T Ca 355, 690, 691, 941, 1164, 692
Thelypteridaceae
Amauropelta atrovirens (C.Chr.) Salino & T.E.Almeidaᴺ T Ca 1177
Amauropelta cheilanthoides (Kunze) Á.Löve & D.Löve C Ca 340, 341
Amauropelta melanochlaena (C. Chr.) Salino & T. E. Almeida T Ca JDTD 01/05/2015-10
Amauropelta oligocarpa (Humb. & Bonpl. ex Willd.) Pic.Serm. T/P Ca 696, 1172, 695, 697, 694
Amauropelta resinifera (Desv.) Pic. Serm. P Ca 1173
Amauropelta rudis (Kunze) Pic.Serm. T/P Ca 470, 1174
Christella hispidula (Decne.) Holttum T Ca 343, 344, 388, 700, 342, 701, 345, 702, 703,
1175
Christella ovata (R.P.St.John) Á.Löve & D.Löve T Ca 338, 337
Christella patens (Sw.) Holttum T Ca 339
Christella puberula (Baker) Á.Löve & D.Löve T Ca 693, 698, 471, 499, 500
Christella quadrangularis (Fée) Holttum T Ca 0
Goniopteris blanda (Fée) Salino & T.E.Almeidaᴺ T Ca 699
Goniopteris imbricata (Liebm.) Á.Löve & D.Löveᴺ T Ca 1171
Macrothelypteris torresiana (Gaudich.) Chingᴵ T Ca 348, 349, 1176, 346, 347, 1170
CYCADIDAE
Zamiaceae
Ceratozamia decumbens Vovides, Avendaño, Pérez-Farr. & Gonz.- T/R Fc A, I 1218, 971
Astorga
PINIDAE
Podocarpaceae
Podocarpus matudae Lundell T Fe Pr, VU 535, 900, 901, 748
ANGIOSPERMAS (MAGNOLIIDAE )
Magnólidas
Lauraceae
Damburneya salicifolia (Kunth) Trofimov & Rohwer T Fe LC 121, 1215, 1217, 845, 890, 1071, 119, 828,
844, 1216
Persea americana Mill. T Fe LC 120, 755
Piperaceae
Peperomia blanda (Jacq.) Kunthᴺ C Ca 551, 552, 1366
Peperomia cordovana C.DC.*ᴺ C Ca 543
Peperomia obtusifolia (L.) A.Dietr. C Ca 550, 546, 549, 547, 548
Peperomia tenerrima Schltdl. & Cham. C Ca 545, 1367
Piper arboreum Aubl. T Fc 177, 178, 858, 876, 857
Piper auritum Kunth T Fc LC 564, 563
Piper glabrescens (Miq.) C.DC.ᴺ T Fc LC 561, 1368
Piper hispidum Sw. T Fc LC 558, 562, 976, 559, 560
Piper umbellatum L. T Fc 555, 875, 554, 874, 176, 553, 556, 557
Monocotiledóneas
Alstroemeriaceae
Bomarea edulis (Tussac) Herb. T Cr 1300, 3
Amaryllidaceae
Zephyranthes clintiae Traub*ᴺ T Cr 1395
Araceae
Anthurium scandens Engl. subsp. scandens C/T Ca 12, 1206, 1394, 1061, 1382
Arisaema macrospathum Benth.* T Cr 1375
Monstera acuminata K.Koch C/T Ca 14
Monstera deliciosa Liebm. C/T Ca 16
Syngonium podophyllum Schott C/T Ca 907, 13
Xanthosoma robustum Schott P Ca 15, 904
Arecaceae
Chamaedorea oblongata Mart. T Fc A, VU 20, 813
Asparagaceae
Echeandia reflexa (Cav.) Rose T Cr 5, 6, 7
Bromeliaceae
Catopsis sessiliflora (Ruiz & Pav.) Mez C Ca 1333, 1334, 1335, 1331, 1332
Pitcairnia heterophylla (Lindl.) Beer T He 1336
Pseudalcantarea viridiflora (Beer) Pinzón & Barfuss C Ca 1343, 1341, 1342
Tillandsia deppeana Steud. C Ca 1359, 1360
Tillandsia filifolia Schltdl. & Cham. C Ca 1345, 1346
Tillandsia kirchhoffiana Wittm.* C Ca 1339, 1340, 1337, 1338
Tillandsia leiboldiana Schltdl. C Ca 1354, 1355, 43, 1356
Tillandsia limbata Schltdl.* C Ca LC 1357, 1358
Tillandsia multicaulis Steud. C Ca 1344
Tillandsia polystachia (L.) L. C Ca 1353
Tillandsia punctulata Schltdl. & Cham. C Ca 1347, 1352, 1350, 1351
Tillandsia schiedeana Steud. C Ca 1348, 1349
Tillandsia usneoides (L.) L. C Ca LC 565
Cannaceae
Canna indica L. T Cr 1422
Commelinaceae
Commelina diffusa Burm.f.ᴵ T Cr LC 1068, 742, 1004
Gibasis geniculata (Jacq.) Rohwederᴺ T T 54, 55
Gibasis pellucida (M.Martens & Galeotti) D.R.Hunt T He 56, 794
Tradescantia commelinoides Schult. & Schult.f. T Cr 52, 1003, 800, 1002, 793
Tradescantia zanonia (L.) Sw. T He 770, 743
Tripogandra serrulata (Vahl) Handlos T He 53, 741, 751
Costaceae
Costus pictus D.Don T Cr 1006
Cyperaceae
Cyperus planifolius Rich. P He LC 1386, 1430
Eleocharis interstincta (Vahl) Roem. & Schult.ᴺ P He LC 1418
Fimbristylis argillicola Kral* T T 1021
Rhynchospora aristata Boeckelerᴺ T He 1064, 1020, 1398
Rhynchospora radicans (Schltdl. & Cham.) H.Pfeiff. P He 1389, 1390, 1391
Dioscoreaceae
Dioscorea convolvulacea Schltdl. & Cham. T Cr 1402
Heliconiaceae
Heliconia adflexa (Griggs) Standl. T Cr 1496
Heliconia schiedeana Klotzsch* T Cr 910, 733
Hypoxidaceae
Hypoxis decumbens L. T Cr 895, 1213, 112, 1214
Iridaceae
Crocosmia ×crocosmiiflora (Lemoine) N.E.Br.ᴵ T Cr 113
Orchidaceae
Brassia verrucosa Bateman ex Lindl. C Ca II, LC AJD 1440
Cyclopogon elatus (Sw.) Schltr.ᴺ T T II AJD 1447
Cyclopogon luteoalbus (A.Rich. & Galeotti) Schltr.*ᴺ T T II AJD 1449
Cyclopogon saccatus (A.Rich. & Galeotti) Schltr.* T T II AJD 1448
Dichaea glauca (Sw.) Lindl. C Ca II 1325, 1326
Dichaea muricatoides Hamer & Garay C He II 1483
Dichaea squarrosa Lindl. C He II 1323, 1324
Dinema polybulbon (Sw.) Lindl. C Ca II AJD 1465
Elleanthus capitatus (Poepp. & Endl.) Rchb.f. C Ca II 1433
Encyclia parviflora (Regel) Withner*ᴺ C Ca II 1445
Epidendrum anisatum Lex.ᴺ C Ca II 1462, 1463, 1464
Epidendrum lignosum Lex.* C Ca II 1488
Epidendrum lowilliamsii García-Cruz* C Ca II 1320, 1474
Epidendrum ramosum Jacq. C Ca II 1442, 1444, 1443
Govenia greenwoodii Dressler & Soto Arenas* T Cr II 1457
Habenaria floribunda Lindl. P Cr II 1486
Habenaria novemfida Lindl. P Cr II AJD 1452
Habenaria quinqueseta (Michx.) Eaton P Cr II 1484, 1485, 1454, 1455
Habenaria strictissima Rchb.f. P Cr II AJD 1451, 1450
Isochilus bracteatus (Lex.) Espejo & López-Ferr.* C Ca II 1318, 1328, 1329, 1327, 1478, 1477, 1476,
1475
Jacquiniella teretifolia (Sw.) Britton & P.Wilson C Ca II 1471, 1472, 1473, 1469, 1470
Malaxis excavata (Lindl.) Kuntze T Cr II AJD 1440B
Maxillaria meleagris Lindl. C Ca II AJD 1319, AJD 1481
Pleurothallis cardiothallis Rchb.f. C Ca II 1321, 1322, 1479, 1480
Ponera exilis Dressler* C Ca II 1330
Prescottia stachyodes (Sw.) Lindl. T T II AJD 1446, AJD 1436
Prosthechea ochracea (Lindl.) W.E.Higgins C Ca II AJD 1441
Prosthechea pygmaea (Hook.) W.E.Higgins C Ca II 1467, 1466, 1468
Sarcoglottis sceptrodes (Rchb.f.) Schltr.ᴺ T Cr II AJD 1487
Sobralia macrantha Lindl. T Ca II 1456
Stanhopea tigrina Bateman ex Lindl.* C Ca A, II JDTD 01/05/2015-5
Stelis pachyglossa (Lindl.) Pridgeon & M.W.Chase C Ca II AJD 1458
Stelis scariosa (Lex.) Karremans* C Ca II 1458
Poaceae
Arundinella deppeana Nees T T 1024
Cenchrus longisetus M.C.Johnst.ᴵ T He 1027
Dichanthelium laxiflorum (Lam.) Gould T He 1053, 1030, 1034, 1052, 1049, 1050, 1054,
1219, 1031, 1032, 1033, 1051, 1092, 1134,
Dichanthelium viscidellum (Scribn.) Gould T He 1089
Homolepis aturensis (Kunth) Chase T He LC 1026, 1293, 1025, 1035, 1047
Ichnanthus nemorosus (Sw.) Döll T He 1029, 1042, 1041, 1044, 1040, 1093, 1028,
1038, 1039, 1043
Isachne arundinacea (Sw.) Griseb. T Ca 1091
Panicum stramineum Hitchc. & Chaseᴺ T He LC 1090
Paspalum affine Steud. T He 1037, 1048
Paspalum botterii (E.Fourn.) Chase T He 1097
Paspalum conjugatum P.J.Bergius T He LC 1094, 1096, 1095
Rugoloa pilosa (Sw.) Zuloagaᴵ T He 1100, 1098, 1099
Schizachyrium condensatum (Kunth) Nees T He 1087, 1088
Setaria liebmannii E.Fourn. T He 1046, 1045
Setaria parviflora (Poir.) Kerguélen T He LC 1036, 1055
Zeugites americanus Willd. T He 1131
Pontederiaceae
Pontederia cordata L. A He 1070
Smilacaceae
Smilax glauca Walter T Fe 903, 198
Smilax mollis Humb. & Bonpl. ex Willd. T Fe 820
Smilax moranensis M.Martens & Galeotti T Fe 1012, 199, 821, 1013, 200, 1001
Zingiberaceae
Hedychium coronarium J.Koenigᴵ P Cr 244, 867
Renealmia mexicana Klotzsch ex Petersen T Cr 245, 247, 246, 248, 978
Eudicotiledóneas
Acanthaceae
Carlowrightia neesiana (Schauer) T.F.Daniel* T Ca 2
Hypoestes phyllostachya Bakerᴵ T Ca 1205
Justicia chrysostephana (Hook.f.) T.F.Daniel*ᴺ T Ca 1204
Justicia leonardii Wassh.*ᴺ T Ca 970
Justicia pringlei B.L.Rob.*ᴺ T Ca 798
Odontonema callistachyum (Schltdl. & Cham.) Kuntze T Ca 1255, 1256, 782
Ruellia blechum L. T He 761, 781, 919, 1057
Thunbergia alata Bojer ex Simsᴵ T He 1
Actinidiaceae
Saurauia villosa DC. T Fe VU 914, 1411, 600, 1287
Altingiaceae
Liquidambar styraciflua L. T Fe LC 105, 877, 106, 984
Amaranthaceae
Amaranthus hybridus L. T T 982
Amaranthus palmeri S.Watson T He 4
Iresine heterophylla Standl.ᴺ T He 840, 884, 839, 756, 841, 1056
Anacardiaceae
Toxicodendron radicans (L.) Kuntze T Fe LC 908, 921
Apiaceae
Hydrocotyle ranunculoides L.f. T He LC 1189
Apocynaceae
Asclepias curassavica L. T Ca 9, 10, 8, 11, 983
Gonolobus fraternus Schltdl.* T Cr 1190
Araliaceae
Dendropanax arboreus (L.) Decne. & Planch. T Fc 1292
Oreopanax capitatus (Jacq.) Decne. & Planch. T Fe LC 18, 19, 915, 861, 930
Oreopanax xalapensis (Kunth) Decne. & Planch. T Fe LC 17, 618
Asteraceae
Acmella filipes (Greenm.) R.K.Jansenᴺ T T 1114, 1116, 1115, 1119
Ageratina ligustrina (DC.) R.M.King & H.Rob. T Fc LC 516
Ageratina pichinchensis (Kunth) R.M.King & H.Rob. T Ca 1076, 1075, 1103, 1104, 1105
Ageratum corymbosum Zuccagni T Fe 1106
Aldama dentata La Llave T He 518
Alloispermum integrifolium (DC.) H.Rob. T Fc 1117
Archibaccharis schiedeana (Benth.) J.D.Jacks. T Fc 537, 879
Baccharis trinervis Pers. T Fc 1233
Bartlettina sordida (Less.) R.M.King & H.Rob. T Fc NT 1234
Bidens pilosa L. T T 25, 1112, 1113, 1108, 1109, 1239, 1110,
1111
Chamaemelum nobile (L.) All.ᴵ T He LC 1241
Chaptalia texana Greeneᴺ T He 1224, 1222, 1223
Cirsium lappoides Sch.Bip.*° T T 1235
Cirsium mexicanum DC. T He 1236
Clibadium arboreum Donn.Sm. T Fe LC 1077
Cosmos bipinnatus Cav.* T T 1240
Critonia sexangularis (Klatt) R.M.King & H.Rob.ᴺ T T LC 1123
Erechtites valerianifolius (Link ex Spreng.) DC. T T 1125, 1128, 1127, 1126, 1124
Erigeron bonariensis L. T T 24, 22, 23
Erigeron canadensis L. T He 1120, 1121, 1122
Erigeron karvinskianus DC. T He 899, 536
Hieracium fendleri Sch.Bip.ᴺ T He 530
Lactuca graminifolia Michx. T T 1102
Lepidaploa argyropappa (H. Buek) Pruski T Fc 515, 1242, 922
Lepidonia mexicana (Less.) H.Rob. & V.A.Funk* T Fe/Fc 1081, 27, 934, 28, 933
Melampodium divaricatum (Rich.) DC. T T 1238, 21
Mikania cordifolia (L.f.) Willd. T Fe 511, 512, 1084
Mikania pyramidata Donn.Sm. T Fe 1078, 1387, 513, 1086, 1085
Neomirandea araliifolia (Less.) R.M.King & H.Rob. T Fc LC 1424, 517
Neurolaena lobata (L.) Cass. T Ca 1243, 1107
Roldana angulifolia (DC.) H.Rob. & Brettell* T Fc LC 509
Schistocarpha bicolor Less. T Fc 1231, 1232
Schistocarpha eupatorioides (Fenzl) Kuntze T Fc 1118
Senecio callosus Sch.Bip. T He 531
Smallanthus maculatus (Cav.) H.Rob. T Ca 508
Sonchus oleraceus L.ᴵ T T 1101
Tagetes micrantha Cav. T T 1079, 972, 1082, 1080, 1083
Telanthophora grandifolia (Less.) H.Rob. & Brettell T Fe LC 897
Verbesina olsenii B.L.Turner*°ᴺ T Fc 514, 1130, 1129, 1425
Viguiera dentata (Cav.) Spreng. T Ca 510
Youngia japonica (L.) DC.ᴵ T T 1227, 1229, 1226, 1230, 1225, 1228
Balanophoraceae
Helosis cayennensis var. mexicana (Liebm.) B.Hansenᴺ P C Cr 928
Begoniaceae
Begonia fischeri Schrank T He 29, 31, 30
Begonia glabra Aubl. T He 1380
Begonia gracilis Kunth T T 1383
Begonia incarnata Link & Otto* T T 1018
Begonia manicata Brongn. ex J.F.Cels R Cr 1017
Begonia wallichiana Lehm.* T T 32
Betulaceae
Alnus acuminata Kunth T Fe LC 33, 36, 34, 35
Bignoniaceae
Tecoma stans (L.) Juss. ex Kunth T Fe LC 37, 38, 39, 744, 1197
Boraginaceae
Varronia spinescens (L.) Borhidi T Fc LC 40, 41, 1270
Brassicaceae
Raphanus raphanistrum L.ᴵ T T LC 42
Brunelliaceae
Brunellia mexicana Standl. T Fe LC 604, 605, 603, 995, 909
Burmanniaceae
Apteria aphylla (Nutt.) Barnhart ex Small S T T 45, 46, 973, 868, 44, 869
Cactaceae
Disocactus phyllanthoides (DC.) Barthlott* C Ca A, II, VU 1406
Rhipsalis baccifera (J.S.Muell.) Stearn C Ca II, LC 48
Calceolariaceae
Calceolaria mexicana Benth. T He 778, 777
Campanulaceae
Diastatea micrantha (Kunth) McVaugh T T 779
Lobelia cardinalis L. T He LC 977, 71, 72, 68, 69, 70
Lobelia laxiflora Kunth T Ca 1212, 67, 1023
Lobelia sartorii Vatke* T He 1069
Caprifoliaceae
Valeriana candolleana Gardner T Cr 233, 231, 234, 232, 832
Caryophyllaceae
Drymaria laxiflora Benth. T He 607, 608, 49, 609
Celastraceae
Celastrus grenadensis Urb.ᴺ T Fe 610
Celastrus vulcanicola Donn.Sm. T Fe 827, 917, 1314, 539, 1311, 799, 810, 1310,
1313
Quetzalia schiedeana (Loes.) Lundell* T Fe NT 1301, 1305, 1308, 802, 1306, 540, 894, 896,
1302, 1303, 1304, 1307
Zinowiewia integerrima (Turcz.) Turcz. T Fe LC 1309
Cleomaceae
Cochranella pilosa (Benth.) E.M.McGinty & Roalson T Fc 47
Clethraceae
Clethra macrophylla M.Martens & Galeotti* T Fe LC 51, 1264, 1265, 1266, 1268, 759, 758, 757
Clethra schlechtendalii Briq. T Fe 50, 1267
Combretaceae
Combretum fruticosum (Loefl.) Stuntz T Fc JDTD 210
Convolvulaceae
Cuscuta jalapensis Schltdl.*ᴺ C He 1408
Ipomoea hartwegii Benth.*ᴺ T Cr 62
Ipomoea indica (Burm.) Merr. T Cr 57
Ipomoea orizabensis (G.Pelletan) Ledeb. ex Steud. T Cr 60, 59
Ipomoea purpurea (L.) Roth T T 801, 999, 58, 61, 754
Ipomoea trifida (Kunth) G.Don T T LC 992, 1299, 753
Cucurbitaceae
Melothria pendula L. T T/He 1416
Sechium edule (Jacq.) Sw. T Cr 1384
Sicyos longisepalus Cogn.ᴺ T T 787, 788
Dilleniaceae
Curatella americana L. T Fe LC JDTD 64
Ericaceae
Bejaria aestuans Mutis T Fe LC 1062, 63, 918, 729, 1401
Lyonia squamulosa M.Martens & Galeotti* T Fc LC 1014
Vaccinium leucanthum Schltdl. T Fe LC 786, 784, 785, 888
Euphorbiaceae
Acalypha alopecuroidea Jacq.ᴺ T T LC 65, 66
Acalypha schlechtendaliana Müll.Arg. T Fc 1272
Alchornea latifolia Sw. T Fe LC 891, 993, 985, 1065, 1315, 1316, 1317, 883
Cnidoscolus multilobus (Pax) I.M.Johnst. T Fe/Fc LC 64, 814
Croton draco Schltdl. & Cham. T Fe LC 745, 616
Euphorbia graminea Jacq. T T 737, 735, 736, 859, 1198
Ricinus communis L.ᴵ T Fc 746
Fabaceae
Calliandra houstoniana (Mill.) Standl. T Ca LC 78
Cenostigma eriostachys (Benth.) Gagnon & G.P.Lewis T Fe LC JDTD 201
Chamaecrista glandulosa (L.) Greeneᴺ T Fc LC 1426
Chamaecrista nictitans var. jaliscensis (Greenm.) H.S.Irwin & Barneby T T LC 86
Chamaecrista rufa (M.Martens & Galeotti) Britton & Rose T Ca LC 80, 82, 79, 81, 83
Crotalaria incana L. T Fc 87
Crotalaria sagittalis L. T Ca 780
Crotalaria vitellina Ker Gawl.ᴺ T Fc 89, 1429
Desmodium grahamii A.Gray T He LC 967
Desmodium infractum DC. T He 75
Desmodium molliculum (Kunth) DC. T He 965
Desmodium paniculatum (L.) DC. T He 1378, 1379, 1377
Erythrina americana Mill.* T Fe A 1410, 1415
Grona triflora (L.) H.Ohashi & K.Ohashi P He 76, 77
Indigofera subulata var. scabra (Roth) Meikle T Ca 91
Inga edulis Mart.ᴵ T Fe LC 611, 566
Inga inicuil Schltdl. & Cham. ex G.Don T Fe LC 1192, 1191
Mimosa aculeaticarpa Ortega T Fc LC 1372
Mimosa albida Humb. & Bonpl. ex Willd. T Fc LC 597, 96, 97
Mimosa diplotricha C.Wright T Fc 90
Mimosa lacerata Rose* T He 74
Mimosa pudica L. T Ca LC 98
Mucuna pruriens (L.) DC.ᴵ T Fe 567
Phaseolus coccineus L. T T LC 1133
Phaseolus vulgaris L. T T LC 84, 85
Senna atomaria (L.) H.S.Irwin & Barneby T Fe LC JDTD 101
Senna hirsuta (L.) H.S.Irwin & Barneby T Ca 73
Senna septemtrionalis (Viv.) H.S.Irwin & Barneby T Fc LC 88, 95
Trifolium repens L.ᴵ T He LC 773
Fagaceae
Quercus cortesii Liebm. T Fe NT 101
Quercus delgadoana S.Valencia, Nixon & L.M.Kelly*° T Fe EN 956, 947
Quercus germana Schltdl. & Cham.* T Fe LC 1074, 521, 945, 960, 946, 961, 957, 942
Quercus lancifolia Schltdl. & Cham. T Fe LC 102, 1072, 1073
Quercus xalapensis Bonpl.* T Fe LC 520, 949, 962, 948, 952, 953, 958
Garryaceae
Garrya longifolia Rose* T Fe LC 529
Gentianaceae
Voyria flavescens Griseb.ᴺ S T T 838
Gesneriaceae
Columnea schiedeana Schltdl.* C Ca 812, 1067, 739, 740, 811
Moussonia deppeana (Schltdl. & Cham.) Klotzsch ex Hanst.* T Fc 738, 886, 103, 104
Heliotropiaceae
Heliotropium glabrum (L.) Feuillet T Ca 1312
Hypericaceae
Hypericum hypericoides (L.) Crantz T Ca LC 109, 110, 887, 111, 774
Hypericum philonotis Schltdl. & Cham. T Ca 108
Hypericum pratense Schltdl. & Cham. T T 107, 795, 797, 1490, 1489
Lamiaceae
Cantinoa mutabilis (Rich.) Harley & J.F.B.Pastore T He 114
Clerodendrum bungei Steud.ᴵ T Fc LC 1201
Clerodendrum chinense (Osbeck) Mabb.ᴵ T Fc LC 1417
Condea verticillata (Jacq.) Harley & J.F.B.Pastore T Ca 235
Hyptis atrorubens Poit. T Ca 863, 1396, 860, 542, 892, 864
Ocimum carnosum (Spreng.) Link & Otto ex Benth. T He 118, 870, 115, 862, 116, 117
Prunella vulgaris L. T He LC 749, 769
Salvia mexicana L.* T Ca 1397
Stachys boraginoides Schltdl. & Cham.* T He 1203, 1132, 1202
Loganiaceae
Spigelia humboldtiana Cham. & Schltdl. T Ca 1011, 1196, 1009, 1010, 1195
Loranthaceae
Psittacanthus schiedeanus (Schltdl. & Cham.) G.DonH C Fc 730, 848, 852, 847, 849, 850, 851
Struthanthus crassipes (Oliv.) Eichler* H C Fc 1285, 1286
Lythraceae
Cuphea carthagenensis (Jacq.) J.F.Macbr. T Ca 125, 826, 593
Cuphea hyssopifolia Kunth T Ca 124, 594, 595, 123, 822, 122
Cuphea wrightii A.Gray T T 823, 824, 825
Malpighiaceae
Malpighia mexicana A.Juss. T Fe LC 880
Malvaceae
Anoda cristata (L.) Schltdl. T T 925, 129, 128, 130
Cienfuegosia rosei Fryxell T Fc JDTD 4
Corchorus siliquosus L. T Fc/ Ca 878, 829
Heliocarpus americanus L. T Fe LC 1369, 805, 602
Malva sylvestris L.ᴵ T Fc LC 138
Malvaviscus arboreus Dill. ex Cav. T Fc LC 913, 127, 873, 991
Malvaviscus penduliflorus Moc. & Sessé ex DC. T Fc 126
Pavonia schiedeana Steud. T Ca 131, 807, 132, 806, 808
Sida rhombifolia L.ᴵ T Ca 134, 135, 136, 137, 871, 133, 872
Trichospermum mexicanum (DC.) Baill. T Fe LC 228
Triumfetta semitriloba Jacq. T Ca LC 225, 226, 227
Triumfetta grandiflora Vahl T Ca LC 924, 834, 833, 835
Melastomataceae
Blakea laevigata D.Don T Fe 588, 1283, 1282
Chaetogastra naudiniana Decne. T Fc 222
Chaetogastra scabriuscula (Schltdl.) P.J.F.Guim. & Michelang.* T Fc 141, 154, 156, 223, 155, 153, 224
Chaetogastra tortuosa (Bonpl.) DC.* T Fc 221
Heterocentron axillare Naudinᴺ T Fc 139, 140
Heterocentron subtriplinervium (Link & Otto) A.Braun & C.D.Bouché T Fc 158, 159, 157
Miconia galeottii (Naudin) Michelang.* T Fe VU 148, 149, 150, 1276
Miconia glaberrima Naudin T Fc LC 160, 1277
Miconia moorei Wurdack* T Fc 1278, 856, 1279, 1280
Miconia subhirsuta (DC.) M.Gómez T Fe LC 591, 592
Miconia sylvatica Naudin T Fc 161, 162, 1281, 1388, 163, 589, 590
Miconia xalapensis (Bonpl.) M.Gómez T Fe 145, 146, 147, 143, 940, 142, 144, 974
Pleroma urvilleanum (DC.) P.J.F.Guim. & Michelang.ᴵ T Fc 151, 152
Meliaceae
Trichilia hirta L. T Fe LC 881, 966
Moraceae
Dorstenia contrajerva L. T Ca 923 D
Myricaceae
Morella cerifera (L.) Small T Fc LC 997, 617
Myrtaceae
Eugenia xilitlensis McVaugh*°ᴺ T Fe/Fc 1273, 534, 1058, 1059
Psidium cattleyanum Sabineᴵ T Fc 165
Psidium guajava L.ᴵ T Fe LC 164
Oleaceae
Ligustrum lucidum W.T. Aitonᴵ T Fe 1294
Ligustrum sinense Lour.ᴵ T Ca 1295
Onagraceae
Fuchsia paniculata Lindl. T Ca LC 772
Lopezia racemosa Cav. T T 771
Ludwigia nervosa (Poir.) H.Haraᴺ T Ca LC 166, 167, 170
Ludwigia octovalvis (Jacq.) P.H.Raven T Ca LC 169, 168, 996
Oenothera tetraptera Cav. T Ca 598
Orobanchaceae
Castilleja arvensis Schltdl. & Cham.*ᴺ H T Ca 804, 764
Papaveraceae
Bocconia frutescens L. T Fe LC 1421
Passifloraceae
Passiflora sexflora Juss. T Ca 532, 1385
Petiveriaceae
Rivina humilis L. T Fc 171
Phyllanthaceae
Phyllanthus compressus Kunth T Ca 1403, 1404
Phyllanthus mocinoanus Baill. T Fc 1405
Phytolaccaceae
Phytolacca americana L. T Fc 538
Phytolacca icosandra L. T Ca 1373
Plantaginaceae
Plantago australis Lam. T He 175, 174
Platanaceae
Platanus mexicana Moric.* T Fe LC 172, 173
Polemoniaceae
Cobaea stipularis Benth.* T Ca 1000
Polygalaceae
Monnina xalapensis Kunth T Ca LC 1423
Polygala paniculata L. T T 179
Polygonaceae
Persicaria capitata (Buch.-Ham. ex D.Don) H.Grossᴵ T He 775
Persicaria punctata (Elliott) Small T T LC 731, 182, 789, 791, 796, 980, 180, 181, 790
Persicaria virginiana (L.) Gaertn. T T 181
Primulaceae
Ardisia compressa Kunth T Fe/Fc LC 1250, 1248, 1249
Myrsine coriacea (Sw.) R.Br. ex Roem. & Schult. T Fe 727, 1251, 998, 728, 1063
Myrsine juergensenii (Mez) Ricketson & Pipoly T Fe LC 964
Parathesis melanosticta (Schltdl.) Hemsl.* T Fc 1254, 1413
Rhamnaceae
Colubrina triflora Brongn. ex Sweet T Fc LC 1419, 1420
Frangula capreifolia var. grandifolia (M.C.Johnst. & L.A.Johnst.) A.Pool T Fc LC 1298
Gouania polygama (Jacq.) Urb. T Fe 1016
Rosaceae
Agrimonia pringlei Rydb.* T T 819, 184
Potentilla indica (Andrews) Th.Wolf ᴵ T T 183
Prunus brachybotrya Zucc. T Fe LC 1491
Rosa canina L.ᴵ T Ca LC 818
Rubus adenotrichos Schltdl. T Fc 1407
Rubus sapidus Schltdl.* T Fc 926, 533, 817
Rubiaceae
Chomelia brachypoda Donn.Sm. T Fe EN JDTD 69
Coccocypselum hirsutum Bartl. ex DC. T He 570, 571, 572, 893, 569, 192, 568, 975
Crusea calocephala DC. T He 189, 587, 585, 586
Crusea hispida (Mill.) B.L.Rob. T T Pr 188
Galianthe brasiliensis subsp. angulata (Benth.) E.L.Cabral & Bacigalupo T Ca 582, 583, 584, 792, 580, 581, 596, 902
Genipa americana L. T Fe JDTD 01/05/2015-24
Hamelia patens Jacq. T Fc LC 190, 191
Hexasepalum sarmentosum (Sw.) Delprete & J.H.Kirkbr. T Ca 524, 523
Hillia tetrandra Sw. T Fc LC 935, 783
Hoffmannia conzattii B.L.Rob. T Fc LC 1194, 1015, 1193
Oldenlandia microtheca (Cham. & Schltdl.) DC.* T He 994, 579, 599
Palicourea berteroana (DC.) Borhidi T Fc 576, 578, 916, 929, 574, 927, 936, 938, 939,
573, 575, 577, 885, 931, 937
Randia xalapensis M.Martens & Galeotti* T Fc LC 1245, 1247, 1246
Sommera arborescens Schltdl.* T Fc VU 776
Spermacoce alata Aubl.ᴺ T T 193
Spermacoce remota Lam. T Ca LC 185, 186, 865
Spermacoce tenuior L. T Ca 187, 882
Rutaceae
Citrus ×aurantiifolia (Christm.) Swingleᴵ T Fe 1060, 1019
Citrus ×aurantium L.ᴵ T Fe 837
Zanthoxylum foliolosum Donn.Sm. T Fe 194, 1296
Salicaceae
Salix taxifolia Kunth T Fe LC 979, 195, 196, 197
Santalaceae
Phoradendron carneum Urb.* H C Ca 1284
Phoradendron quadrangulare (Kunth) Griseb. H C Ca 855, 853, 854
Scrophulariaceae
Buddleja americana L. T Fe/Fc LC 1269, 816
Solanaceae
Cestrum fasciculatum (Schltdl.) Miers* T Fc LC 1275, 732, 734
Cestrum glanduliferum Kerber ex Francey T Fc LC 606
Cestrum nocturnum L. T Fc LC 768, 906, 766, 765, 767, 981
Lycianthes rantonnetii (Carrière) Bitter ᴵ T He 217
Physalis gracilis Miers T T LC 1008
Physalis stapelioides (Decne. ex Regel) Bitter*ᴺ T Ca 1007, 216
Solanum capsicoides All. T Fc 206, 207
Solanum chrysotrichum Schltdl. T Fc LC 205
Solanum diphyllum L. T Ca 1274, 988-B, 988, 215
Solanum lanceolatum Cav. T Fc LC 987, 204, 986, 203
Solanum myriacanthum Dunal T Ca 209
Solanum nigrescens M.Martens & Galeotti C Ca 213, 212
Solanum pseudocapsicum L. T Ca 202, 218, 989
Solanum schlechtendalianum Walp. T Fc LC 1066, 803, 210, 211
Solanum umbellatum Mill. T Fc 214
Witheringia solanacea L'Hér. T Fc LC 201, 219, 1005
Staphyleaceae
Staphylea insignis (Tul.) Byng & Christenh. T Fe 1290, 842, 1188, 1288, 750, 752, 843, 932,
1187, 1289, 1291
Styracaceae
Styrax glabrescens Benth. T Fe LC 1200, 1271, 1364, 1362, 1199, 1361, 1363,
1365
Symplocaceae
Symplocos coccinea Bonpl.* T Fe Pr, NT 809, 220, 898
Ulmaceae
Trema micranthum (L.) Blume T Fe LC 836, 229, 990, 1414
Urticaceae
Myriocarpa longipes Liebm. T Fc LC 911, 747, 601, 912
Pilea ecboliophylla Donn.Sm.ᴺ C He 831, 866, 230, 1376, 830
Pilea microphylla (L.) Liebm. T He 541
Urera martiniana V.W.Steinm.*°ᴺ T Fc EN 519, 889
Verbenaceae
Lantana camara L. T Ca 236, 237, 239, 238
Lantana hirta Graham T Ca 544
Lippia alba (Mill.) N.E.Br. ex Britton & P.Wilson T Ca 1400, 1399
Lippia mexicana G.L.Nesom T Ca 241
Lippia umbellata Cav. T Ca LC 612
Phyla nodiflora (L.) Greene T He LC 240
Viburnaceae
Sambucus nigra L. T Fe LC 846, 614, 905, 613, 615, 920
Viburnum caudatum Greenm.* T Fe VU 815
Violaceae
Pombalia attenuata (Humb. & Bonpl. ex Willd.) Paula-Souza T He 242
Pombalia verbenacea (Kunth) H.E.Ballard & Paula-Souza* T He 243
Vitaceae
Vitis tiliifolia Humb. & Bonpl. ex Schult. T Fe 1370, 1374, 1381, 1409, 1412

Recibido: 02 de Julio de 2024; Revisado: 09 de Agosto de 2024; Aprobado: 14 de Noviembre de 2024; Publicado: 12 de Diciembre de 2024

*Autores para la correspondencia: tejero@unam.mx y arturo2.0@comunidad.unam.mx

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