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Acta botánica mexicana

versión On-line ISSN 2448-7589versión impresa ISSN 0187-7151

Act. Bot. Mex  no.131 Pátzcuaro  2024  Epub 17-Ene-2025

https://doi.org/10.21829/abm131.2024.2316 

Artículos de investigación

Diversidad de algas marinas bentónicas del litoral de Veracruz, México

Diversity of seaweeds of the coast of Veracruz, Mexico

Luz Elena Mateo-Cid1  2 
http://orcid.org/0000-0001-7585-4826

Á. Catalina Mendoza-González1 
http://orcid.org/0000-0002-2632-6872

Deisy Yazmín García López1 
http://orcid.org/0000-0003-0420-7888

Cynthia Mariana Hernández-Casas1 
http://orcid.org/0000-0003-3325-9441

Issarel Méndez Guzmán1 
http://orcid.org/0009-0002-2875-9425

1Instituto Politécnico Nacional, Escuela Nacional de Ciencias Biológicas, Departamento de Botánica, Carpio y Plan de Ayala s/n, Colonia Santo Tomás, Alcaldía Miguel Hidalgo, 11340 Ciudad de México, México.


Resumen:

Antecedentes y Objetivos:

Los primeros registros de algas marinas bentónicas para el litoral de Veracruz datan de 1846; después de 114 años, ficólogos mexicanos reiniciaron su estudio. Actualmente, se tienen registradas 312 especies. Considerando está riqueza específica, las modificaciones y actualizaciones taxonómicas en diversos grupos, el objetivo de este trabajo fue presentar una lista de las algas marinas del litoral veracruzano organizadas por categorías taxonómicas incluyendo datos de distribución, temporalidad y nuevos registros para el área de estudio.

Métodos:

Se realizaron 92 muestreos durante 18 años, en el nivel intermareal de 11 localidades del litoral, se obtuvieron registros previos desde 1960 a 2020 a través de una revisión bibliográfica y de la colección ficológica del herbario ENCB. El estatus nomenclatural de cada especie y el sistema de clasificación fueron revisados y actualizados. La diversidad α para cada localidad fue calculada con el índice de Shannon-Wiener; también se realizó un análisis de agrupamiento mediante UPGMA con el programa PAST v. 3.

Resultados clave:

El listado ficoflorístico incluye 316 taxones de algas marinas bentónicas distribuidas en 3 Phyla, 6 clases, 31 órdenes, 60 familias y 130 géneros. Cada especie incluye distribución en el litoral de Veracruz, reproducción, estacionalidad, hábitat, observaciones, bibliografía y número de catálogo del herbario ENCB. Los análisis de diversidad α muestran que la mayor diversidad está en las localidades con sustrato predominantemente rocoso con 180 especies. Las lluvias de verano registraron un elevado número de especies (269); Barra de Cazones alberga 181 especies, además, se encontraron 70 registros nuevos; así, el número de taxones aumentó a 391.

Conclusiones:

El listado revela una mayor riqueza específica de algas marinas comparada con la registrada en Yucatán, Campeche y Tabasco. La afinidad fitogeográfica de las algas del litoral de Veracruz es mixta, ya que ahí confluyen taxones tropicales y caribeños. Es necesario mantener un monitoreo constante para determinar cambios de la comunidad de algas para establecer programas de conservación y aprovechamiento.

Palabras clave: conservación; distribución; diversidad alfa; ficoflora; nuevos registros

Abstract:

Background and Aims:

The first records of benthic marine algae for the Veracruz coast date back to 1846; after 114 years, Mexican phycologists restarted their study. There are 312 species recorded for this area. Considering this species richness, as well as the taxonomic modifications and updates that these groups have had, the aim of this work was to present a list of the identified seaweeds organized by taxonomic categories and with data on distribution, temporality and new records for the study area.

Methods:

Ninety-two samplings were carried out over a period of 18 years, at the intertidal level in 11 localities on the Veracruz coast. Previous records from 1960 to 2020 were also obtained through a bibliographic revision and the phycological collection of the ENCB herbarium was reviewed as well. The nomenclatural status of each species and the classification system were reviewed. The α diversity for each locality was calculated with the Shannon-Wiener index; a clustering analysis was also performed using UPGMA with the PAST v. program.

Key results:

The phycofloristic list includes 316 species of benthic marine algae distributed in 3 Phyla, 6 classes, 31 orders, 60 families and 130 genera. Each species includes distribution on the Veracruz coast, reproduction, seasonality, habitat, observations, bibliography and ENCB herbarium catalog number. The α diversity analyzes show that the greatest diversity is in localities with predominantly rocky substrate with 180 species. The summer rains recorded a high number of species (269); Barra de Cazones has the highest number with 181 species, 70 new records were found for the Veracruz coast; with this the number of taxa increased to 391.

Conclusions:

The list reveals a higher specific richness of marine algae compared to that reported in Yucatán, Campeche, and Tabasco. The phytogeographic affinity of the algae of the Veracruz coast is mixed, since tropical and Caribbean taxa converge there. Constant monitoring is necessary to determine changes in the algal community to establish conservation and use programs.

Key words: alpha diversity; conservation; distribution; new records; phycoflora

Introducción

Los primeros registros de algas marinas para el litoral de Veracruz fueron hechos por Liebmann en 1846; 114 años después, Huerta-Múzquiz (1960) enriqueció esta información y registró 48 especies en cinco localidades de la costa de Veracruz (Tuxpan, Playa Hotel Pensiones, Veracruz-Boca del Río, Coatzacoalcos y Montepío), de las cuales 10 corresponden a Phaeophyceae, 24 a Rhodophyta y 14 a Chlorophyta. Posteriormente, Humm y Hildebrand (1962) realizaron un estudio en el litoral del Golfo de México, que incluyó Texas (EUA) y Veracruz, y citaron 32 taxones: 10 de Phaeophyceae, 12 de Rhodophyta y 10 para Chlorophyta, provenientes de siete localidades entre Boca Andrea y Veracruz. Dos años después, Huerta-Múzquiz y Garza-Barrientos (1964) registraron 19 especies de algas para Tuxpan. Más tarde, en un reconocimiento preliminar de las algas marinas del estado de Veracruz, De la Campa-De Guzmán (1965) obtuvo muestras de 16 localidades del estado, siete en arrecifes coralinos, cuatro de lagunas costeras y cinco en playas rocosas y arenosas, y registró 59 especies en la zona litoral, de las cuales hubo 12 en Phaeophyceae, 34 para Rhodophyta y 13 de Chlorophyta. Luego, Sánchez-Rodríguez (1967) hizo un listado ficológico de Montepío que incluyó diez taxones.

Durante 13 años, las investigaciones estuvieron pausadas y fue hasta 1980 cuando se reanudaron y hubo publicaciones referentes a las algas marinas para el litoral de Veracruz, reiniciando con un estudio ficológico de las áreas rocosas de cinco localidades de las estribaciones de la Cordillera Neovolcánica y tres de las estribaciones de la Sierra de los Tuxtlas. Se registraron 116 especies, de las cuales 32 pertenecen a Phaeophyceae, 58 a Rhodophyta y 26 a Chlorophyta (Sánchez-Rodríguez, 1980). En un trabajo del género Dictyopteris J.V. Lamouroux, en México, Mendoza-González y Mateo-Cid (2005) citaron únicamente a D. delicatula J.V. Lamouroux (Dictyotaceae) en Veracruz. De la Cruz-Francisco et al. (2017) registraron 51 especies de macroalgas marinas, 10 para Heterokontophyta, 29 en Rhodophyta y 12 de Chlorophyta. Posteriormente, Landa-Cansigno et al. (2019) documentaron 45 especies de algas en ambientes rocosos de Playa Paraíso, Playa Villa Rica y Playa Muñecos (los cuales están influenciados por las estribaciones del Eje Neovolcánico), 18 taxones corresponden a Chlorophyta, 16 Rhodophyta y 11 Heterokontophyta. Existen dos trabajos enfocados exclusivamente a las algas verdes (Chlorophyta) del litoral de Veracruz, el de Garduño-Solórzano et al. (2005) quienes reportaron 72 especies, y el de García-López et al. (2017) quienes citaron 82 Chlorophyta. Recientemente, García-García et al. (2020), en una actualización taxonómica de las algas rojas bentónicas del Atlántico de México, incluyeron 153 taxones para el litoral veracruzano.

En las investigaciones anteriormente citadas se encuentran registradas 312 especies de algas marinas para el litoral de Veracruz, lo que resalta la riqueza de este grupo de organismos en la región, por lo que el objetivo del presente trabajo es dar a conocer una lista florística de 11 sitios de muestreo, en donde siete localidades han sido poco estudiadas: Barra de Cazones, Lechuguillas, Punta-Delgada-Boca Andrea-Los Muñecos, Villa Rica, El Canal-Escolleras de Alvarado, Punta Puntilla y Playa Hermosa. También se incluyen las escolleras de Tuxpan y El Canal-Escolleras de Coatzacoalcos, Veracruz-Boca del Río y Montepío, aportando nuevos registros de Phaeophyceae, Chlorophyta y Rhodophyta, además de una actualización taxonómica de las algas marinas para la costa de Veracruz.

Materiales y Métodos

Área de estudio

El litoral de Veracruz se encuentra en la llanura costera del Golfo de México, una extensa planicie que abarca desde el sureste de Estados Unidos de América hasta la Península de Yucatán, México (Álvarez-Arellano y Gaitán-Morán, 1994). De norte a sur incluye las subprovincias fisiográficas Cuenca del Bravo, Cuenca del Río Purificación, Cuenca Pánuco-Tuxpan (Tampico-Nautla) y la porción NO de Veracruz; además de la Barra de Tuxpan, que es una isla de barrera localizada entre Tampico y Tuxpan probablemente controlada por la topografía submarina y procesos marinos construccionales (Álvarez-Arellano y Gaitán-Morán, 1994). Otra subprovincia, la Llanura costera veracruzana, se extiende desde Punta Delgada hasta las inmediaciones de Coatzacoalcos, Veracruz. Esta subprovincia al norte incluye parte del extremo oriental de la Cordillera Neovolcánica, mientras que en sus porciones central y sur, a la Planicie Costera de Sotavento (Carranza-Edwards et al., 1975).

La oceanografía física del Golfo de México está relacionada con la circulación de gran escala (Corriente de Lazo), fenómenos de mesoescala (giros anticiclónicos y ciclónicos) que interactúan con el talud y la plataforma continental, así como el clima, influenciado por eventos meteorológicos como ciclones tropicales y nortes (Pereyra et al., 1992). Además de lo anterior, se relaciona con el aporte de numerosos ríos que modifican las características hidrográficas por dilución, procesos de mezcla y transporte de agua con características oceánicas desde el talud hasta la plataforma continental (Monreal- Gómez et al., 2004).

El clima de la región costera de Veracruz de norte a sur incluye desde semiseco muy cálido y cálido (BS1(h’)w(i’) y BS0(h’)w”(x’), respectivamente hasta cálido subhúmedo Aw0(i’)(gw”) y cálido húmedo (Am) (García, 1983). En el Golfo de México la temperatura está determinada por el influjo de la Corriente del Lazo, que transporta aguas superficiales, tiene forma de herradura y fluye en el sentido de las manecillas del reloj transfiriendo aguas cálidas subtropicales del Mar Caribe a través del Estrecho de Yucatán hacia el Golfo de México. La capa superficial del agua de mar (hasta los 200 m de profundidad) presenta temperaturas fluctuantes (de la Lanza Espino y Gómez-Rojas, 2004).

La presencia de frentes polares y nortes en los meses de invierno (diciembre-marzo) propicia que los valores de temperatura oscilen de 15-25 °C y que en el verano (de finales junio a fines de septiembre) alcancen 28 °C; dichas variaciones se deben a la influencia de las corrientes del Lazo y la del Caribe, ambas cálidas. En la costa de Veracruz las mareas son diurnas (de la Lanza Espino y Gómez-Rojas, 2004). Las aguas del Golfo de México tienen una salinidad de 36.5 ups, producto de la mezcla de los giros anticiclónicos con la masa de agua subtropical subsuperficial cuya salinidad es de 36.7 ups a una profundidad de 70 m (de la Lanza Espino y Gómez-Rojas, 2004).

Localidades de muestreo

La ubicación de las 11 localidades se presenta en la Figura 1. En estas localidades se recolectó material ficológico exclusivamente en la zona litoral marina. En el Cuadro 1 se indican las coordenadas de cada localidad, fechas de muestreo, así como datos de fisiografía y geomorfología.

Figura 1: Ubicación del área de estudio y las localidades de muestreo en el estado de Veracruz, México. En el cuadro inferior derecho está la ubicación de Veracruz en México y en el izquierdo, las localidades de muestro ubicadas en la región costera de Veracruz. 

Cuadro 1 Ubicación y características fisiográficas y geomorfológicas de las localidades de muestreo de la zona litoral de Veracruz, México. 

Localidades Coordenadas Fisiografía Exposición al oleaje Sustrato Profundidad Fecha de recolecta mes/año
1. Escolleras de Tuxpan 20°58'22''N 97°18'17''O Escolleras con grandes agregados de rocas Expuesto Rocoso 0-1 m 03, 07, 08, 10/2013; 09/2015; 03, 04, 08, 12/2016; 03, 04, 07/2017
2. Barra de Cazones 20°44'08''N 97°11'41''O Playa arenosa con promontorios rocosos y praderas de pastos marinos Expuesto y protegido Rocoso, con pozas, arenoso y praderas de Thalassia testudinum K.D. Koenig 0-2 m 03, 07, 09, 11/2014; 02, 03, 05, 07, 09, 11/2015; 03, 04/2016; 01, 03, 04, 06, 10/2017; 04, 07, 10, 12/2018; 03, 07, 09, 12/2019; 03/2020
3. Lechuguillas 20°0'22''N 96°34'36''O Playa arenosa con numerosos cantos rodados Expuesto Rocoso y arenoso 0-0.5 m 07, 09/2009; 08, 11/2013; 07, 08/2014; 03, 07/2017
4. Punta Delgada- Boca Andrea-Los Muñecos 19°44'38''N 96°24'27''O Playas arenosas con acantilados, plataformas con pozas intermareales Expuesto Rocoso y arenoso 0-0.5 m 09/2002, 09/2003; 05, 07, 09, 10, 11, 12/2004; 05, 06, 07, 09, 11/2005; 06, 09/2006; 09, 10/2007; 03, 05, 09, 11/2008; 06, 07, 09/2009; 03, 07,10/2012; 03, 04, 05, 08, 09, 10, 11/2013; 07/2014; 09/2015; 04, 09/2016; 05/2017
5. Villa Rica 19°40'14''N 96°23'37''O Playa arenosa con fuerte oleaje, con un macizo rocoso expuesto Expuesto Rocoso con pozas intermareales 0-0.5 m 05, 07, 08, 09, 12/2004; 07/2007; 09/2008; 07/2009; 03/2012; 08/2013; 11/2013; 03/2014; 01, 07, 09, 10/2016; 05, 06, 07, 09/2017; 03, 04, 08, 09, 12/2018; 03, 04, 09/2019; 03/2020
6. Veracruz-Boca del Río 19°09'04''N 96°05'34''O Playas arenosas, pequeños agregados de rocas y praderas de pastos marinos Expuesto y protegido Rocoso, arenoso y praderas de Thalassia testudinum 0-1 m 04/2002;09/2003; 02, 07, 09, 12/2004; 04/2005; 04, 09/2006; 05, 09/2007; 05, 07/2008; 10/2013; 03, 04, 06, 07, 08/2014; 02, 04/2015; 01, 04, 07/2016; 01, 07, 09/2017
7. El Canal- Escolleras de Alvarado 18°47'27''N 95°44'34''O Escolleras con grandes agregados de rocas Expuesto Rocoso 0-0.5 m 06, 07/2014; 04, 06/2015; 04/2016; 07/2017, 05/2018, 2019
8. Punta Puntilla 18°43'00''N 95°17'16''O Playa arenosa, con agregados rocosos dispersos que en ocasiones forman pozas intermareales Expuesto y protegido Rocoso y arenoso 0-1.5 m 07/2004; 07/2009; 04, 08/2014; 04, 06, 07/2015; 05, 08/2016; 04, 05, 06, 07, 11/2017; 05, 09/2018; 05/2019
9. Playa Hermosa 18°39'54''N 95°07'43''O Playa arenosa con una plataforma rocosa en donde se forman pozas intermareales Expuesto y protegido Rocoso y arenoso 0-0.5 m 03, 07/2009; 09, 10/2013; 02, 08/2014; 06, 07/2017; 07/2018
10. Montepio 18°38'44''N 95°05'43''O Playa arenosa con agregados rocosos dispersos y restos de formaciones coralinas Expuesto y protegido Rocoso y arenoso 0-1 m 07/2009; 12/2011; 10/2013; 02, 03, 07/2014; 05/2016; 04, 06, 07/2017
11. Escolleras de Coatzacoalcos- Barrillas-Jicacal 18°09'30''N 94°24'57''O Escolleras formadas por grandes rocas, además de zonas arenosas protegidas y con agregados de rocas Expuesto y protegido Rocoso y arenoso 0-1 m 05, 06/2014; 07, 09/2015; 08/2018

Trabajo de campo y de gabinete

La recolección de material ficológico se realizó en las escolleras de Tuxpan, escolleras de Coatzacoalcos, Veracruz-Boca del Río, Montepío, Barra de Cazones, Lechuguillas, Punta Delgada-Boca Andrea-Los Muñecos, Villa Rica, El Canal-Escolleras de Alvarado, Punta Puntilla y Playa Hermosa (Fig. 1). Se recolectó material desde abril de 2002 hasta marzo de 2020 mediante 92 muestreos: 42 en lluvias, 18 en nortes o lluvias de invierno y 32 en temporada de sequía (Cuadro 1, Apéndice). Los ejemplares se obtuvieron en diferentes sustratos donde las algas marinas pueden establecerse, como son rocas, arena, invertebrados bentónicos (epizoicas), esqueletos de coral y Thalassia testudinum (epífitas).

Los especímenes fueron recolectados a mano con ayuda de espátulas flexibles de acero y alcolanas-picoletas, ambas de marca Truper® (Querétaro, México), en el nivel intermareal. Solo en Barra de Cazones y Villa Rica se recolectó en el submareal por medio de buceo libre hasta una profundidad de 3 m. Las recolectas se hicieron en segmentos de las playas de aproximadamente 500 m lineales de extensión.

Los ejemplares se fijaron en una solución de formaldehido al 5% en agua de mar y se etiquetaron con datos referentes a la localidad de colecta, fecha, sustrato, profundidad y recolectores. El material fue incorporado a la sección ficológica del herbario de la Escuela Nacional de Ciencias Biológicas, Instituto Politécnico Nacional (ENCB) (acrónimo según Thiers, 2023). Para el análisis de las algas se usó un microscopio binocular Olympus CX31RBSF (Guangdong, China). Para distinguir estructuras reproductivas y vegetativas se hicieron cortes longitudinales y transversales de los talos con navajas de doble filo DORCO (Dongyang Razor Company, Seúl, Corea). La descalcificación de los representantes de las familias Liagoraceae, Galaxauraceae, Corallinaceae, Udoteaceae y Polyphysaceae se realizó con ácido nítrico (HNO3) 0.6 M.

Para la identificación de las especies se utilizaron las claves y descripciones referidas en los trabajos de Taylor (1960), Schneider y Searles (1991), Littler y Littler (2000), De Clerck et al. (2006), Dawes y Mathieson (2008), Cho et al. (2008), Won et al. (2009) y Díaz-Tapia et al. (2017). Además, se obtuvo información relativa a los especímenes del herbario ENCB recolectados previamente por otros investigadores y se corrigió la identificación taxonómica de algunos ejemplares. Se realizó una revisión bibliográfica de los estudios llevados a cabo en la región litoral de Veracruz desde 1960 hasta 2020, para obtener los registros de las algas marinas previamente citados para el litoral del estado y con ello cotejarlos con los datos obtenidos en el presente estudio.

Con la información obtenida se elaboró una lista de especies de las algas marinas de la costa de Veracruz que se agrupó por categorías taxonómicas; las familias, géneros y especies se ordenaron filogenética y alfabéticamente. Para cada una de las 316 especies recopiladas en este estudio se incluyeron datos referentes a su distribución, estado reproductivo, hábitat, observaciones de nuevos registros, referencias y número de catálogo del herbario ENCB. El esquema taxonómico de las algas de Veracruz sigue la propuesta de Wynne (2022), y la actualización nomenclatural de todos los taxones se hizo de acuerdo con la base global AlgaeBase (Guiry y Guiry, 2024).

La diversidad α para cada localidad fue calculada mediante índice de Shannon-Wiener, el cual considera que los individuos se muestrean al azar a partir de una población infinita y se asume que todas las especies están representadas en la muestra (Magurran, 1988).

H´= -pilog2pi

Donde H´=diversidad de Shannon Wiener, pi es la proporción de individuos de la misma especie=ni/N, ni=número de individuos de cada especie, N=número total de especies.

Además, se realizó un análisis de agrupamiento (Clúster) mediante UPGMA (ligamiento promedio no ponderado) con el fin de observar qué tan similares son las localidades en términos de presencia/ausencia de especies. Estos análisis fueron realizados en el programa estadístico PAST v. 3 (Hammer et al., 2001).

Feldmann (1937) propuso el índice R/P (número de especies de Rhodophyta entre número de especies de Phaeophyceae) para el estudio de la ficogeografía descriptiva, la cual es una herramienta útil para clasificar la flora algal de una región determinada en función del gradiente latitudinal. Así, un valor de la correlación R/P≥4 se encuentra en regiones tropicales, mientras que si R/P≤2 corresponde con una ficoflora de regiones templado-frías. Posteriormente, Cheney (1977) integró a las Chlorophyta (C) en un índice análogo al de Feldmann (1937), siendo este (R+C)/P y demostró que valores de la relación (R+C)/P≥6 se obtienen en floras tropicales, en tanto que las de mares templados-fríos tienen índices ≤3.

Resultados

Composición florística y factores de la diversidad

Durante el período de estudio (abril de 2002 a marzo de 2020) se identificaron 316 taxones infragenéricos de algas marinas: 48 Heterokontophyta, 175 Rhodophyta y 93 Chlorophyta (Fig. 2) en 11 localidades del litoral de Veracruz (Fig. 1). En Heterokontophyta se ubicó una 1 (Phaeophyceae), con 7 órdenes, 11 familias, 25 géneros y 48 especies; el orden Dictyotales y la familia Dictyotaceae fueron los mejor representados con 23 especies (47.9%) (Fig. 3), 12 de ellas pertenecen al género Dictyota J.V. Lamoroux. Para Rhodophyta se encontraron cuatro clases (Bangiophyceae, Florideophyceae, Compsopogonophyceae y Stylonematophyceae), 18 órdenes, 33 familias, 80 géneros y 175 especies (Apéndice). Los órdenes Ceramiales con 70 taxones (40%) y Corallinales con 20 (11.42%) son los que cuentan con la mayor riqueza específica.

Figura 2: Número de especies por Phylum, indicando la riqueza específica de cada grupo. 

Figura 3: Familias mejor representadas en el área de estudio. 

Las familias con más taxones fueron Rhodomelaceae con 39 (21.71%), seguida de Gracilariaceae con 16 (7.14%) (Fig. 3). Los géneros más diversos fueron Gracilaria Greville (12), Chondria C. Agardh (7), Jania J.V. Lamouroux, Ceramium Roth y Laurencia J.V. Lamouroux, con seis especies cada uno. Bangia Lyngbye, Asparagopsis Montagne, Titanoderma Nägeli, Lithothamnion Heydrich, Melobesia J.V. Lamouroux, Vertebrata S.F. Gray, Gelidiella Feldmann & G. Hamel, entre otros, solo están representados por una especie. Finalmente, Chlorophyta tiene 93 taxones, distribuidos únicamente en la clase Ulvophyceae, con 6 órdenes, 16 familias, 25 géneros y 93 especies. En el orden Cladophorales, hubo 38 taxones, siendo la familia Cladophoraceae (31 spp.), la más diversa. Caulerpaceae (13 spp.) y Ulvaceae (12 spp.), ocupan el segundo y tercer lugar, respectivamente. Caulerpa J.V. Lamouroux es el género con mayor riqueza (13 spp.), seguido de Ulva L. con 11 especies (Apéndice).

La integración del listado florístico permitió reconocer 70 nuevos registros de algas marinas para el litoral de Veracruz; siendo los géneros Dictyota (6), Acrochaetium Nägeli (4), Centroceras Kützing (2), Ceramium (2) y Cladophora Kützing (2), entre otros, los que concentran el mayor número de especies (Apéndice), mientras que Lithophyllum pseudoplatyphyllum J.J. Hernández-Kantun, W.H. Adey & P.W. Gabrielson es nuevo reporte para la porción mexicana del Golfo de México. De los 316 taxones registrados reportados en este trabajo, 246 ya tenían registros previos y 75 no pudieron ser ubicados en el material recolectado ni depositado en el herbario ENCB. Cabe aclarar que algunas de las especies previamente registradas en la zona se consideran dudosas y están señaladas en el Cuadro 2. En virtud de lo anterior, el número de algas marinas bentónicas para la costa del estado de Veracruz aumentó a 391 especies, que representan un incremento de 19.4% del total de macroalgas conocidas previamente en el área de estudio.

Cuadro 2: Especies de algas marinas bentónicas del litoral de Veracruz no ubicadas en este estudio. Referencias: 1=Huerta-Múzquiz, 1960; 2=Humm y Hildebrand, 1962; 3=De La Campa-De Guzmán, 1965; 4=Sánchez-Rodríguez, 1980; 5=Flores-Davis, 1993; 6=Garduño-Solórzano et al., 2005; 7= Ramírez-Rodríguez y Blanco-Pérez, 2011; 8= Lozano-Orozco et al., 2015; 9=García-López et al., 2017; 10=De La Cruz-Francisco et al., 2017; 11=Landa-Cansigno et al., 2019; 12=García-García et al., 2020; 13=García-García et al., 2021. Observaciones: RD-Registro incierto. 

Especies Referencias Observaciones
HETEROKONTOPHYTA
Phaeophyceae
Dictyotales
Dictyotaceae
1. Dictyota canariensis (Grunow) Tronholm 8, 13
2. D. guineënsis (Kützing) P. Crouan & H. Crouan in Mazé & Schramm. 1, 3
3. D. humifusa Hörnig, Schnetter & Coppejans 13
4. Lobophora variegata (J.V. Lamouroux) Womersley ex E.C. Oliveira 1, 13 RD
Ectocarpales
Acinetosporaceae
5. Acinetospora crinita (Carmichael) Sauvageau 5, 13
6. Feldmannia padinae (Buffham) Hamel 5, 13
7. Hummia onusta (Kützing) J. Fiore 13
Scytosiphonaceae
8. Hydroclathrus clathratus (C. Agardh) M. Howe 4, 13
9. Rosenvingea endiviifolia (Martius) M.J. Wynne 5, 13
10. R. floridana (W.R. Taylor) W.R. Taylor 5, 13
Fucales
Sargassaceae
11. Sargassum buxifolium (Chauvin) M.J. Wynne 2, 4
12. S. fluitans (Børgesen) Børgesen 2, 4, 8
13. S. natans (Linnaeus) Gaillon 2, 4, 8
14. S. polyceratium Montagne 8
15. S. vulgare C. Agardh 3, 4, 7, 10, 11 RD
RHODOPHYTA
Florideophyceae
Corallinaceae
16. Corallina officinalis L. 10, 12 RD
Hydrolithaceae
17. Hydrolithon boergesenii (Foslie) Foslie 12
Acrochaetiales
Acrochaetiaceae
18. Acrochaetium pulchellum Børgesen 4, 7, 12
19. A. sagraeanum (Montagne) Bornet 12
Nemaliales
Galaxauraceae
20. Dichotomaria obtusata (J. Ellis & Solander) Lamarck 10, 12
21. Tricleocarpa fragilis (L.) Huisman & R.A. Townsend 4, 7, 12
Liagoraceae
22. Ganonema farinosum (J.V. Lamouroux) K.C. Fan & Yung C. Wang 1, 12
23. G. megagynum (Børgesen) Huisman 1, 12  
24. Liagora viscida (Forsskål) C. Agardh 4, 7, 12  
25. Trichogloea requienii (Montagne) Kützing 12
Nemaliaceae
26. Nemalion longicolle Børgesen 1, 3
Ceramiales
Callithamniaceae
27. Aglaothamnion halliae (Collins) Aponte, D.L. Ballantine & J.N. Norris 12
Ceramiaceae
28. Acrothamnion butlerae (Collins) Kylin 12
29. Centroceras clavulatum (C. Agardh) Montagne 3, 4, 7, 10, 12 RD
30. Ceramium brevizonatum H.E. Petersen 12
31. C. diaphanum (Lightfoot) Roth 4, 12
32. C. leutzelburgii O.C. Schmidth 4, 12
33. C. nitens (C. Agardh) J. Agardh 13
34. C. subtile J. Agardh 12
35. C. virgatum Roth 10, 12
Delesseriaceae
36. Dasya ocellata (Grateloup) Harvey 12
37. Dictyurus occidentalis J. Agardh 2, 12 RD
38. Heterosiphonia gibbesii (Harvey) Falkenberg 4, 7, 12
39. Taenioma nanum (Kützing) Papenfuss 2, 12
Rhodomelaceae
40. Acanthosiphonia echinata (Harvey) A.M. Savoie & G.W. Saunders 12
41. Digenea simplex (Wulfen) C. Agardh 10 RD
42. Chondria sedifolia Harvey 3, 12
43. Herposiphonia pecten-veneris (Harvey) Falkenberg 12
44. Polysiphonia ramentacea Harvey 3, 12
45. Xiphosiphonia pennata (C. Agardh) Savoie & G.W. Saunders 12
Wrangeliaceae
46. Griffithsia globulifera Harvey ex Kützing 4, 7, 12
Gelidiellaceae
47. Millerella pannosa (Feldmann) G.H. Boo & L. Le Gall 4, 7, 12
48. Parviphycus trinitatensis (W.R. Taylor) M.J. Wynne 4, 7, 12
Solieriaceae
49. Wurdemannia miniata (Sprengel) Feldmann & Hamel 4, 7, 12
Gracilariales
Gracilariaceae
50. Gracilaria caudata J. Agardh 10, 12
51. G. cornea J. Agardh 1, 12
52. G. curtissiae J. Agardh 12
53. G. gracilis (Stackhouse) Steentoft, L.M. Irvine & Farnham 12
54. G. mammillaris (Montagne) M.A. Howe 10, 12 RD
55. G. usneoides C. Agardh 12
56. Gracilariopsis sjoestedtii (Kylin) E.Y. Dawson 4, 12  

Temporalidad

El número de taxones encontrados en cada temporada climática está representado en la Figura 4. En general hay alta diversidad en las tres épocas, siendo en las lluvias de verano cuando se ubicó la mayor riqueza con 269 especies, seguida por la temporada seca con 189 y, finalmente, las lluvias de invierno (nortes) con 121 taxones. Con respecto al número de especies por localidad, Barra de Cazones presentó la mayor cantidad (181), seguida de Punta Puntilla (130) y Punta Delgada-Boca Andrea-Los Muñecos (108) y Villa Rica (108) (Fig. 5). Las localidades con la menor riqueza son Coatzacoalcos-Barrillas-Jicacal (47), escolleras de Tuxpan (51) y Lechuguillas (61). Tanto Coatzacoalcos-Barrillas-Jicacal como Tuxpan son escolleras; es decir, un sustrato artificial con grandes bloques de cemento, que sirven para proteger la zona del oleaje y, por lo tanto, no son adecuados para el establecimiento de las algas. Por el contrario, Lechuguillas es una playa mayormente arenosa con cantos rodados, sustratos que en conjunto no favorecen el establecimiento de las algas (Fig. 6).

Figura 4: Número de especies por Phylum documentadas en cada temporada climática (lluvias, nortes y secas). 

Figura 5: Número de especies por localidad de muestreo resaltando la diferencia de la riqueza especifica entre localidades. 

Figura 6: Afinidad de las algas presentes en el litoral de Veracruz, México, por diferentes sustratos indicando el número de especies en cada uno. 

De acuerdo con el análisis de diversidad α, las localidades más diversas son Barra de Cazones (H´=5.198) y Punta Puntillas (H´=4.86), seguidas de Punta Delgada-Boca Andrea-Los Muñecos (H´=4.682), Villa Rica (H´=4.691) y Veracruz-Boca del Río (H´=4.644). Los sitios menos diversos fueron Escolleras de Tuxpan (H´=3.932), Lechuguillas (H´=4.094), El Canal-Alvarado (H´=4.094) y Coatzacoalcos-Barrillas-Jicacal (H´= 3.807) (Fig. 7).

Figura 7: Estimación de la diversidad α (Shannon-Wiener) en Veracruz, México. 

En el análisis de agrupamiento (Clúster) se observan cinco grupos (Fig. 8). En el primero, se encuentran las localidades Barra de Cazones, Villa Rica, Punta Delgada-Boca Andrea-Los Muñecos y Punta Puntillas con un porcentaje de similitud de 58%. En el Grupo II se agrupan Veracruz-Boca del Río, Playa Hermosa y Montepío con 59% de similitud entre ellas. En el grupo III están Lechuguillas y Coatzacoalcos-Barrillas-Jicacal con 80%; finalmente, los grupos IV y V están conformados únicamente por El Canal-Alvarado y Escolleras de Tuxpan, respectivamente, localidades con 8% de similitud, siendo esta la más baja (Fig. 8).

Figura 8: Análisis de agrupamiento UPGMA mediante similitud de Bray Curtis. 1. Escolleras de Tuxpan, 2. Barra de Cazones, 3. Lechuguillas, 4. Punta Delgada-Boca Andrea-Los Muñecos, 5. Villa Rica, 6. Veracruz-Boca del Río, 7. El Canal-Escolleras Alvarado, 8. Punta Puntilla, 9. Playa Hermosa, 10. Montepío, 11. Escolleras de Coatzacoalcos-Barrillas-Jicacal. 

Sustrato

La preferencia que tienen las especies de algas documentadas en este estudio por un determinado sustrato está representada en la Figura 6. El mayor número de taxones se encontró en rocas (180), seguido de aquellos con hábito epífito sobre diversas macroalgas (51), exclusivas del pasto marino Thalassia testudinum (6), epífitas de otras algas o pastos marinos (10), epizoicas (10), en arena (10). Por último, las parásitas y endófitas están representadas con una especie cada una. Además, se ubicaron 63 especies que habitan en todo tipo de sustrato (orgánico e inorgánico). De ellas, 30 habitan en rocas y son epífitas de otras algas, ocho crecen sobre invertebrados y rocas; seis en rocas y arena; seis sobre rocas, arena e invertebrados; cinco en rocas, pastos y otras macroalgas; tres en rocas, invertebrados y T. testudinum; dos en sustrato rocoso y T. testudinum; una en rocas, arena y epizoica; una epizoica y epífita de algas y rocas; y una epizoica y epífita de T. testudinum y otras algas. El análisis de diversidad α sustenta estos resultados, ya que en uno de los grupos obtenidos en el diagrama de agrupamiento (grupo I), están las cuatro localidades que registraron la mayor diversidad (Fig. 8.) y tienen en común el sustrato predominantemente rocoso.

Biogeografía

Los resultados del presente estudio fueron analizados con los índices de Feldmann (1937) y Cheney (1977); luego se compararon con lo registrado por otros autores para Isla Cozumel (Mateo-Cid y Mendoza-González, 2008); Isla Mujeres (Mendoza-González et al., 2007), Caribe mexicano (Cetz-Navarro et al., 2008), litoral de Campeche (Mateo-Cid et al., 2013), litoral de Tabasco (Mendoza-González et al., 2017) y costa de Yucatán (Ortegón-Aznar y Tejera, 2022). El Cuadro 3 contiene los resultados obtenidos de los índices de Feldmann y Cheney aplicados a las seis regiones antes mencionadas, las cuales muestran que tienen una semejanza fitogeográfica tropical para ambos índices. Por otro lado, los índices calculados en este estudio muestran que las algas marinas del litoral de Veracruz presentan afinidad mixta. Con base en lo anterior, hubo especies con distribución netamente tropical y/o caribeña como Porolithon antillarum (Foslie & Howe) Foslie & Howe, Neogoniolithon propinquum (Foslie) Me. Lemoine, Avrainvillea mazei G. Murray & Boodle, Penicillus capitatus Lam., Hypnea musciformis (Wulfen in Jacq) J.V. Lamouroux, Gracilaria blodgettii Harvey, Dictyota pulchella Hörnig & Schnetter, Padina gymnospora (Kützing) Sonder, Chaetomorpha antennina (Bory) Kützing, Codium isthmocladum Vickers y Ulva lactuca L., entre otros, así como especies con distribución en la costa del Atlántico de Estados Unidos de América, entre ellas, Halymenia floridana J. Agardh, Streblonema invisibile Hoyt y Hecatonema floridanum (W.R. Taylor) W.R. Taylor y finalmente, taxones con distribución en aguas templadas como son Myrionema strangulans Greville y Phyllodictyon anastomosans (Harvey) Kraft y M.J. Wynne. Los géneros Dictyota J.V. Lamouroux, Padina Adanson, Chnoospora J. Agardh, Sargassum C. Agardh, Acanthophora J.V. Lamouroux, Alsidium C. Agardh, Palisada K. W. Nam, Gracilaria, Caulerpa J.V. Lamouroux y Ulva L. son comunes en el litoral veracruzano, algunas especies representativas de estos se ilustran en las Figuras 9 y 10.

Cuadro 3: Índices de Feldmann y Cheney para algunos ambientes marinos del litoral del Golfo de México y Caribe mexicano. Referencias: 1=Mendoza-González et al. (2007); 2=Mateo-Cid y Mendoza-González (2008); 3=Cetz-Navarro et al. (2008); 4=Ortegón-Aznar y Tejera (2022); 5=Mateo-Cid et al. (2013); 6=Mendoza-González et al. (2017)

Localidad/estado Índice de Feldmann (R/P) Afinidad fitogeográfica Índice de Cheney (R+C)/P Afinidad fitogeográfica
Isla Mujeres, Quintana Roo1 4.50 Tropical 7.15 Tropical
Isla Cozumel, Quintana Roo2 4.40 Tropical 7.04 Tropical
Caribe mexicano (Quintana Roo)3 4.51 Tropical 7.08 Tropical
Litoral del estado de Yucatán4 6.00 Tropical 9.00 Tropical
Litoral de Campeche5 5.37 Tropical 9.30 Tropical
Litoral de Tabasco6 4.42 Tropical 6.73 Tropical
Litoral de Veracruz (este estudio) 3.64 Mixta 5.58 Mixta

Figura 9: Especies comunes de algas pardas y rojas en el área de estudio. A. Dictyota ciliolata Sonder ex Kützing, B. Padina boergesenii Allender & Kraft, C. Chnoospora minima (Hering) Papenfuss, D. Sargassum cymosum, E. Jania subulata (Ellis & Solander) Sonder, F. Acanthophora spicifera (Vahl) Børgesen, G. Alsidium triquetrum (S.G. Gmelin) Trevisan, H. Palisada perforata (Bory de Saint-Vincent) K.W. Nam. Fotografías: Luz Elena Mateo Cid y A. Catalina Mendoza-González. 

Figura 10: Especies comunes de algas rojas y verdes en el área de estudio. A. Gracilaria flabelliformis (P. Crouan & H. Crouan) Fredericq & Gurgel, B. G. blodgettii Harvey, C. Caulerpa mexicana Sonder ex Kützing, D. C. racemosa var. macrophysa (Sonder ex Kützing) W.R. Taylor, E. C. sertularioides (S. Gmelin) M. Howe, F. Ulva lactuca L. Fotografías: Luz Elena Mateo Cid y A. Catalina Mendoza-González. 

Reproducción

La etapa reproductiva de las algas estudiadas se presenta en el apéndice. Con mayor frecuencia se registró la fase tetraspórica, superando a la fase gamética masculina o femenina. De las 316 especies documentadas en este estudio, 73.89% (235) estaban en etapa fértil y 26.1% (82) en estado vegetativo, como es el caso de los representantes de los géneros Ulva, Caulerpa y Bryopsis J.V. Lamouroux, entre otros. En 170 taxones se encontró la fase esporofítica, mientras que la gametofítica estuvo presente únicamente en 15, como fue el caso de los géneros Dictyota, Padina, Sargassum y Gracilaria. Finalmente, 22 taxones se hallaron tanto en fase esporofítica (esporofito y carpoesporofito) como gametofítica; esto ocurrió en especies de los géneros Chondria, Palisada y Polysiphonia (Apéndice).

Epifitismo

Se registraron 67 especies epífitas, 10 de ellas corresponden a Heterokontophyta, 47 a Rhodophyta y 10 a Chlorophyta (Fig. 11); en la temporada de lluvias únicamente hubo dos especies de Heterokontophyta, 19 de Rhodophyta y tres de Chlorophyta. En la época de secas se encontraron seis especies de Heterokontophyta, cuatro en Rhodophyta y una de Chlorophyta. Finalmente, durante los nortes hubo una especie de Rhodophyta que es exclusiva de esta temporada; sin embargo, hay especies que se encontraron en más de una temporada climática (Fig. 12). Once especies fueron registradas en las tres (una Heterokontophyta, nueve Rhodophyta y una Chlorophyta), 16 se encontraron tanto en lluvias como en secas (una de Heterokontophyta, 11 Rhodophyta y cuatro de Chlorophyta) y cuatro durante las lluvias y nortes (tres Rhodophyta y una Chlorophyta).

Figura 11: Número de especies de algas epífitas de otras algas o pastos marinos agrupadas por Phylum. 

Figura 12: Número de especies de algas epífitas de otras algas o pastos marinos compartidas y exclusivas de cada temporada climática, agrupadas por Phylum. 

Discusión

Composición florística y factores de la diversidad

De los 312 taxones infragenéricos de algas marinas bentónicas citados previamente para el litoral de Veracruz, 246 fueron ubicados en la zona de estudio y, además, otros 70 corresponden a nuevos registros. De estos últimos, uno es nuevo para el litoral del Golfo de México, 12 para el litoral (previamente citados para la región insular) y 57 lo son para Veracruz (incluye tanto el litoral como la región insular). Se registran taxones citados previamente por Huerta-Múzquiz (1960), Humm y Hildebrand (1962), De La Campa-De Guzmán (1965), Sánchez-Rodríguez (1980), Garduño-Solórzano et al. (2005), Ramírez-Rodríguez y Blanco-Pérez (2011), García-López et al. (2017), De La Cruz-Francisco et al. (2017), Landa-Cansigno et al. (2019)) y García-García et al. (2020, 2021), que no fueron ubicados en el presente estudio (Cuadro 2). Su ausencia obedece a varias razones, pero destacan tanto el hecho de que algunas especies han sido excluidas por el tipo y número de muestreos realizados previamente por otros investigadores, como por el uso de nombres erróneamente aplicados. Esto último debido a que varios géneros como Cladophora, Ulva, Caulerpa, Bryopsis, Dictyota, Padina, Jania, Lithophyllum Philippi, Gracilaria y Laurencia J.V. Lamouroux se encuentran en una situación taxonómica compleja, pues para identificarlos se utilizan características vegetativas y reproductivas que se sobreponen entre ellas o incluso las claves taxonómicas no son lo suficientemente claras. Además, la incidencia de eventos climáticos (como huracanes), el incremento en la densidad poblacional y las construcciones urbanas pueden modificar la fisiografía de las playas y con ello, la riqueza y composición de comunidades algales, como ocurrió en el caso particular del litoral de Campeche (Mateo-Cid et al., 2013).

Otro ejemplo es el señalado por Martínez-Rivera et al. (2020), quienes mencionaron que el litoral constituye uno de los ambientes más frágiles de la tierra. Por lo tanto, es muy vulnerable a experimentar desequilibrios en su balance sedimentario, especialmente cuando la dinámica de los sedimentos o su medio de transporte son alterados considerablemente por la actividad humana. Estos mismos autores indicaron que, por ejemplo, en el caso de la península de Yucatán, por su posición geográfica y el relieve relativamente llano, la península está expuesta a fenómenos meteorológicos que históricamente han afectado su litoral. A su vez, los procesos de planeación urbana e infraestructura no han sido bien diseñados, por lo que la combinación de factores naturales y antrópicos están causando un paulatino retroceso de la línea de costa. Dentro de las causas naturales, se demostró que la temporalidad de los eventos (como el huracán Gilberto de categoría cinco) tienen incidencia directa sobre las modificaciones experimentadas por Punta Cancún en 1988. Mientras que en los factores antrópicos se detectó la ubicación de infraestructura urbana u hotelera a escasos metros de la línea de costa (Martínez-Rivera et al., 2020). Este último elemento de mala planeación urbana impide la disipación de la energía del oleaje o de las penetraciones del mar acelerando los procesos erosivos. Otra causa antrópica referida en los casos de estudios analizados está relacionada con la infraestructura portuaria de Chelem-Progreso (Martínez-Rivera et al., 2020). Ambos ejemplos pueden ser utilizados para explicar las afectaciones naturales o antrópicas que ocurren a lo largo del litoral del Golfo de México, incluyendo Veracruz.

Por otro lado, la gran cantidad de nuevos registros reportados en el presente estudio (Apéndice) puede atribuirse a varios factores, entre ellos a la realización de 92 muestreos en 11 localidades durante un periodo de 18 años, tres de ellas con pocos registros o sin ellos (Lechuguillas, El Canal-Escolleras de Alvarado, Playa Hermosa). Además, el trabajo se realizó durante las tres temporadas climáticas (lluvias de verano, lluvias de invierno (nortes) y secas) y se tomaron en consideración las epífitas, lo que permitió recolectar y enlistar un mayor número de especies. Por lo tanto, es posible que el incremento en el esfuerzo de muestreo reditúe en la recolecta y hallazgo de nuevos registros.

El número de algas marinas bentónicas conocidas para el litoral de Veracruz se incrementó de 312 a 391 especies. Esto indica que se trata de un área con alta riqueza específica, comparada con la zona costera de otros estados ubicados en el Golfo de México como son Campeche (211 especies; Mateo-Cid et al., 2013), Tabasco (172 taxones; Mendoza-González et al., 2017; Quiroz-González et al., 2017, 2018) y Yucatán (254 spp.; Ortegón-Aznar y Tejera, 2022). La alta diversidad de especies encontrada en el litoral veracruzano puede deberse al tipo de sustrato presente en las localidades de muestreo, el número de colectas realizadas, así como la minuciosa revisión de especímenes que permitió identificar un elevado número de epifitas (67), que en conjunto representan 21.6% del total de especies registradas.

En las familias mejor representadas resaltan Cladophoraceae, Caulerpaceae y Ulvaceae en Chlorophyta. Cladophora fue el género con el mayor número de especies (17), seguido de Caulerpa (13) y Ulva (11). Cladophora y Caulerpa coinciden con lo reportado por Garduño-Solórzano et al. (2005)), así como Ortegón-Aznar y Aguilar-Perera (2014) para el Golfo de México y litoral de Yucatán, respectivamente. Cladophora es un género de ambientes dulceacuícolas y marinos, con amplia distribución en todo el mundo (Lee, 2008); al igual que Caulerpa, solo que este género predomina en mares tropicales y subtropicales (Carruthers et al., 1993); siendo la península de Yucatán uno de sus tres centros de diversidad a nivel mundial (Espinoza-Ávalos et al., 2015). Sin embargo, en el litoral del Golfo de México aún no se han realizado estudios monográficos de Caulerpa. Ulva también es un género muy diverso, común en las costas de mares tropicales y lagunas costeras de México (Garduño-Solórzano et al., 2005; García-López et al., 2017), lo que explicaría su notable presencia en el área de estudio.

Por el contrario, algunos de los géneros registrados en el presente estudio, como Derbesia Solier, Phaeophila Hauck, Ulvella P. Crouan & H. Crouan, Boodlea G. Murray & De Toni y Parvocaulis S. Berger, U. Fettweiss, S. Gleissberg, L.B. Liddle, U. Richter, H. Sawitzky & G.C. Zuccarello, son poco diversos (Guiry y Guiry, 2024); la mayoría de ellos tienen ciclos de vida cortos, generalmente de algunas semanas a tres o cuatro meses. Por ejemplo, las especies del género Derbesia tienen ciclos digenéticos en donde la fase gametofítica es un talo vesicular inconspicuo que prevalece la mayor parte del tiempo, siendo la fase esporofítica macroscópica y de corta duración (Mateo-Cid y Mendoza-González, 1993). En el caso del género Phaeophila, los talos son pequeños y epífitos por lo que pasan desapercibidos y los registros de especies resultan escasos (Mateo-Cid et al., 2013). También se encontraron especies como Caulerpa prolifera (Forsskål) J.V. Lamouroux, Chaetomorpha linum (O.F. Müller) Kützing, Cladophora vagabunda (L.) C. Hoek, Ulva flexuosa Wulfen y Rhizoclonium riparium (Roth) Harvey, que Garduño-Solórzano et al. (2005) y Espinoza-Ávalos et al. (2015) han identificado en el Golfo de México como eurihalinas, las cuales tienen la capacidad de tolerar condiciones extremas de salinidad y con ello, sobrevivir en hábitats cambiantes.

De los registros previos para el litoral de Veracruz (Huerta-Múzquiz, 1960; Humm y Hildebrand, 1962; De La Campa-De Guzmán, 1965; Sánchez-Rodríguez, 1980; Garduño-Solórzano et al., 2005; Ramírez-Rodríguez y Blanco-Pérez, 2011; García-López et al., 2017; De La Cruz-Francisco et al., 2017; Godínez-Ortega et al., 2009, 2019; Landa-Cansigno et al., 2019; García-García et al., 2020, 2021), 75 especies previamente registradas en la zona, no se ubicaron en las muestras recolectadas (Cuadro 2). Lo anterior puede obedecer a diferentes razones; entre ellas, el cambio en los hábitats donde actualmente existe mayor influencia humana que ha transformado la arquitectura del paisaje, tal como lo mencionó Chong-Garduño (2015). Este autor indicó que la expansión de la ciudad y zona conurbada de Veracruz ha derivado en un área fragmentada debido a la urbanización, lo que ha impactado al medio natural particularmente a los servicios ecosistémicos que ofrecen manglares, lagunas costeras y litorales.

Algunos de los registros previos no encontrados en el presente estudio se consideran dudosos (Cuadro 2). Por citar algunos ejemplos, un trabajo del género Sargassum enfocado en su caracterización morfológica y molecular reveló que de las 16 especies previamente registradas en el Golfo de México y el Caribe mexicano, 10 formaron una politomía única con baja divergencia genética al emplear tres marcadores (mitocondrial, de cloroplasto y núcleo), lo cual indicaría que pertenecen a la misma especie (González-Nieto et al., 2020). Además, en varios estudios realizados a nivel mundial se ha demostrado que Sargassum es un género con alta plasticidad fenotípica, ya que la identificación de especies se basa únicamente en morfología, derivando en una sobreestimación de su diversidad en todo el mundo (González-Nieto et al., 2020).

Otro ejemplo es Dictyota, género que incluye 12 taxones, la delimitación de cada una de sus especies se basó en características morfológicas y reproductivas, dando como resultado que la identificación de los individuos fuera complicada. Aunado a eso, los tipos de ramificación del talo y de los ápices en algunos géneros de la familia Dictyotaceae, como Dictyota y Canistrocarpus De Paula & De Clerck, están influenciados por la luz, los nutrientes y la temperatura, entre otros factores (Bogaert et al., 2020). Lo anterior sugiere que la identificación de especies usando caracteres morfológicos puede no ser adecuada debido a la alta plasticidad fenotípica presente en Dictyota (Lozano-Orozco et al., 2015; 2016).

Estudios anteriores que intentaron esclarecer la naturaleza polifilética del orden Cladophorales, se centraron en las relaciones intragenéricas y no entre especies (Leliaert et al., 2007, Boedeker et al., 2012). Sin embargo, Taylor et al. (2017) sí analizaron las relaciones interespecíficas y sus resultados respaldaron aún más la necesidad de hacer revisiones taxonómicas de Cladophora y “Siphonocladus”, que además involucren a Chaetomorpha y Rhizoclonium, pues concluyen que la morfología de los géneros del orden Cladophorales no es filogenéticamente informativa ya que no refleja la evolución de este linaje.

Temporalidad

Las diferencias en la riqueza específica entre las localidades de muestreo pueden ser explicadas por el tipo de ciclo de vida de las especies identificadas, los cambios de los factores ambientales y el sustrato disponible para su establecimiento y desarrollo. Por ejemplo, Barra de Cazones, localidad donde se realizaron 34 muestreos, presentó el número más alto de especies (181) debido a que cuenta con una extensa proporción de sustrato rocoso (plataformas con pozas intermareales), arenoso y praderas del pasto marino Thalassia testudinum, que en conjunto favorecen el establecimiento de algas marinas (Ortegón-Aznar et al., 2001; Mateo-Cid et al., 2013). Barra de Cazones, que se encuentra influenciada por el Río Cazones, es una comunidad con importante actividad pesquera, presencia de basura tanto en el mar como en la playa y mal olor en el agua, pero dichos factores parecen no limitar el establecimiento y desarrollo de un gran número de especies.

Punta Puntilla, donde se hicieron 18 muestreos, tiene el segundo lugar en número de taxones (130), esto por la presencia de sustrato rocoso y arenoso. En Punta Delgada-Boca Andrea-Muñecos, Villa Rica, Veracruz-Boca del Río, Playa Hermosa y Montepío, se hicieron 39 muestreos y también se encontró un elevado número de especies, lo cual está relacionado con el tipo de sustrato de cada localidad, que es rocoso con extensas playas arenosas. Lechuguillas presenta una zona de cantos rodados y sustrato areno-limoso que causa movilidad, lo que implica que sea poco estable para muchas algas.

Las escolleras de Tuxpan, El Canal-Escolleras de Alvarado y Coatzacoalcos-Barrillas-Jicacal mostraron la menor riqueza específica comparada con el resto de las localidades. Lo anterior debido a tres factores: menor número de muestreos realizados (Tuxpan con 12, ocho en El Canal-Alvarado y cinco en Coatzacoalcos), aunado a que son zonas con escolleras y una proporción importante de sustrato arenoso. Las tres localidades comparten una problemática común de descargas residuales e industria pesquera, que contribuyen al aumento de nutrientes disueltos en el agua. Estos resultados concuerdan con los obtenidos en el análisis de agrupamiento, y a su vez explican porqué el estado de Veracruz se caracteriza por poseer hábitats heterogéneos a lo largo de toda su línea de costa, resultando en ambientes formados por playas arenosas. Algunas de ellas con praderas de Thalassia testudinum, áreas rocosas, areno-rocosas, plataformas con pozas intermareales (Garduño-Solórzano et al., 2005). Por lo tanto, esta variedad de ambientes puede explicar la mayor diversidad en localidades como Barra de Cazones, Punta Delgada-Boca Andrea-Los Muñecos, Villa Rica y Punta Puntilla, sitios caracterizados por ser principalmente rocosos.

Las playas rocosas por sí mismas son zonas con una gran estabilidad, ya que las rocas permanecen a lo largo del tiempo permitiendo que los organismos también persistan (Salazar-Vallejo y González, 1990). Por otro lado, la diversidad α también evidenció que las localidades con la menor diversidad son Tuxpan, Lechuguillas, El Canal-Escollera de Alvarado y Coatzacoalcos-Barrillas-Jicacal; es decir, aquellas que presentan sustratos artificiales, contrario a lo que mencionó Taylor (1960) al señalar que sustratos como las escolleras, exhiben una alta diversidad algal. Esta discordancia puede deberse a diversos factores, entre ellos, el esfuerzo de muestreo y la accesibilidad a los sitios de recolecta como indicaron Landa-Cansigno et al. (2019).

Factores como salinidad, temperatura, iluminación, sustrato, pH y actividades antrópicas, entre ellas la sobrepesca o desarrollo urbano frente a las costas, afectan de manera temporal el desarrollo de las comunidades algales (Hughes, 1994; Ortegón Aznar y Aguilar Perera, 2014). La mayor riqueza y composición de especies se registró en la temporada de lluvias (269), resultado que coincide con los de Ortega et al. (2001) y Callejas-Jiménez et al. (2005). En ambos trabajos se indica que existe una mayor disponibilidad de luz (Lalli y Parson, 1997), debido a que en el verano los días son más largos y las mareas vivas ocurren en la mañana y en la noche (Mendoza-González et al., 1994), hay aguas más cálidas, transparentes y muy poca o nula turbulencia debida al oleaje (Ortegón Aznar y Aguilar Perera, 2014).

La temporada de nortes se caracteriza por un incremento en la movilidad de las masas de agua hacia la línea de costa, turbulencia, poca visibilidad subacuática y baja radiación solar (Lalli y Parson, 1997; Mateo-Cid et al., 2013). Características que afectan el crecimiento de muchas especies que carecen de buena sujeción (Ortegón y Aguilar, 2014), y solo aquellas que estén bien arraigadas al fondo pueden mantenerse, como ocurre con el género Caulerpa (Garduño-Solórzano et al., 2005). En contraste, Mateo-Cid et al. (2013) registraron la mayor riqueza específica para el litoral de Campeche en la temporada de secas. En el caso de Veracruz no fue así, una probable explicación es que en esta temporada las mareas vivas ocurren desde el mediodía hasta al atardecer, esto implica que las macroalgas quedan expuestas en los momentos del día en que la radiación solar es mayor y esto se traduce en condiciones estresantes; por lo tanto, en una baja riqueza específica (Mendoza-González et al., 1994).

Finalmente, con respecto a los taxones encontrados en las tres temporadas climáticas, resulta importante mencionar que el hecho de hallarlos en cualquier temporada permite considerar la posibilidad de explotarlos económicamente o evaluarlos como bioindicadores de la calidad del agua. Tal es el caso de Sargassum cymosum C. Agardh, Ulva lactuca, U. compressa L., Gracilaria apiculata P. Crouan & H. Crouan y G. blodgettii, que como en el caso de las especies de Ulva reportadas en este estudio, ya han sido utilizadas como indicadoras de materia orgánica rica en nitrógeno, fósforo, cloruros, así como tolerantes a los desechos domésticos ricos en ellos (de la Lanza Espino y Hernández-Pulido, 2000); además, Sargassum y Gracilaria, son géneros potencialmente productores de alginato y agar, respectivamente.

Sustrato

La naturaleza física del sustrato influye en el establecimiento, distribución y composición de algas marinas (Santelices, 1977; Garduño-Solórzano et al., 2005). En el presente estudio la mayor riqueza específica se encontró en rocas (179 especies), seguido de las epífitas (67), en sustratos diversos (57) y arenoso (10). Diversos autores (Cetz-Navarro et al. (2008), Mateo-Cid et al. (2013), Dreckmann y Sentíes (2014), García-López et al. (2017) y Quiroz-González et al. (2017, 2018)) concuerdan con la gran riqueza presente en el sustrato rocoso para el litoral del Golfo de México, ya que este favorece el desarrollo de muchas especies de Heterokontophyta, Rhodophyta y Chlorophyta (Apéndice, Fig. 6). Asimismo, Taylor (1960) señaló que las rocas expuestas al oleaje son sitios que albergan una gran diversidad, propiciando el establecimiento de las comunidades algales. Otros autores como Garduño-Solórzano et al. (2005) también señalan que la mayor riqueza específica se encuentra en sustratos rocosos y arenosos; además, ubican una menor diversidad en aquellos de origen animal, vegetal y artificial. Mención especial merecen las Ulvophyceae, particularmente las algas verdes sifonadas como son Caulerpa, Codium y Halimeda, que desarrollan largos rizoides o estolones mediante los cuales forman una matriz estabilizadora del sedimento que les permite fijarse fuertemente al sustrato (Ortegón y Aguilar, 2014).

En cuanto al sustrato artificial, su presencia es propiciada por influencia antrópica que cada vez es mayor, debido a la construcción de escolleras y muelles en donde especies como Chaetomorpha antennina, Cladophora laetevirens (Dillwynn) Kützing, Ulva flexuosa, U. compressa y U. lactuca, han conseguido adaptarse (Garduño-Solórzano et al., 2005).

Biogeografía

Los taxones encontrados en el área de estudio representan una ficoflora mixta (Cuadro 3), en la cual conviven elementos que tienen una distribución tropical predominante entre ellos: Hypnea spinella (C. Agardh) Kützing, Grateloupia gibbesii Harvey, Heterosiphonia crispella (C. Agardh) M.J. Wynne, Jania capillacea Harvey, Lithophyllum stictiforme (Areschoug) Hauck, Liagora ceranoides J.V. Lamouroux, Gayliella transversalis (F.S. Collins y Hervey) T.O. Cho & Fredericq, Ulva lactuca, U. compressa, Cladophora vagabunda, Chaetomorpha antennina, Dictyota ciliolata Sonder ex Kützing, Padina boergesenii Allender & Kraft y Colpomenia sinuosa (Mertens ex Roth) Derbès & Solier, entre otros (Mateo-Cid et al., 2013; García-García et al., 2020, 2021); con algunos cuya distribución ocurre en aguas más norteñas, como son: Halymenia floridana, Herponema tortugense y Streblonema invisibile (Schneider y Searles, 1991).

Es importante resaltar que los resultados aquí presentados contrastan con lo sugerido por Garduño-Solórzano et al. (2005) en su trabajo de distribución geográfica y afinidad por el sustrato de algas verdes en el Atlántico mexicano. En él, refieren que a lo largo de las costas de la vertiente existen dos provincias: la Caribeña, que corresponde a la ficoflora tropical de las costas de Quintana Roo hasta Veracruz, y la provincia Caroliniana, cuya flora tiene afinidad con aguas subtropicales y es pobre en especies; siendo Cabo Rojo, Veracruz, la frontera que separa la costa tropical y subtropical de México (Garduño-Solórzano et al., 2005).

En el presente estudio, Barra de Cazones, localidad ubicada en el norte de Veracruz, registró el mayor número de taxones del litoral. Además, hay más similitud florística de los taxones ubicados en Veracruz con localidades de la región caribeña de México. Por ejemplo, en un trabajo de algas rojas para el Atlántico de México, García-García et al. (2020) señalaron que de las 451 especies catalogadas únicamente 101 se encuentran en el Golfo de México, mientras que 115 se distribuyen solo en el Caribe mexicano y las 247 restantes están en ambas regiones. Eso sugiere un considerable intercambio florístico que atribuyen a la corriente que pasa por el canal de Yucatán como la fuente proveedora de especies al litoral de Veracruz desde Quintana Roo; por ello, ambos estados son florísticamente afines (García-García et al., 2020).

Finalmente, García-García et al. (2021) comentaron que 62% de las especies de algas pardas han sido registradas tanto en el Golfo de México como en el Caribe mexicano, mientras que 23% son exclusivas del Golfo y 15% solo están en el Caribe, por lo que el alto porcentaje de taxones compartidos entre ambas regiones sugiere nuevamente un elevado intercambio florístico, así como una mayor diversidad de algas pardas en Quintana Roo y Veracruz. Por lo anterior, es posible inferir que las algas marinas bentónicas que habitan el litoral de Veracruz pueden ser consideradas como un conjunto ficoflorístico en el que se sobreponen taxones tropicales y caribeños, principalmente.

Reproducción

En el presente estudio, de 48 especies documentadas de Phaeophyceae, 42 se encontraron en estado reproductivo, hecho que coincide con lo registrado por Mendoza-González et al. (2000), Mateo-Cid et al. (2000, 2013) y Ávila-Ortiz et al. (2011). Estudios experimentales y observaciones de campo sugieren que la luz y la temperatura, o la combinación de ambas, a menudo inducen la fertilidad en las algas marinas (Liu et al., 2017).

Con relación a la fenología reproductiva del orden Dictyotales, la proporción y distribución temporal de los gametofitos generalmente se considera muy reducida (Phillips, 1988). Tronholm et al. (2008) encontraron también una dominancia de esporofitos en Dictyota dichotoma (Hudson) J.V. Lamouroux, mencionando que, en algunas estaciones del año, los gametofitos podían constituir hasta 30% de las poblaciones. En ese mismo trabajo, solo una especie de Dictyotales presentó fase gametofítica, mientras que en 19 se encontraron esporofitos. Este hallazgo concuerda con otros estudios (Phillips, 1988; Montañés et al., 2006; Ávila-Ortiz et al., 2011).

De los 175 taxones de Rhodophyta registrados en el presente estudio, 123 estaban en fase tetrasporofítica. Esto indica que es la etapa reproductiva mejor representada en las especies aquí documentadas; además, coincide con los resultados obtenidos por Mateo-Cid y Mendoza-González (1991) y Mateo-Cid et al. (2013, 2019). Mendoza-González y Mateo-Cid (1992), al igual que Magalhães y de Castro-Nunes (2002), mencionaron que la dominancia de una fase reproductiva puede estar influenciada por los cambios temporales de factores ambientales a nivel local. Estos datos permiten considerar que la generación esporofítica tiene una supervivencia más larga con respecto a la gametofítica y a otros mecanismos de reproducción, como la propagación vegetativa o la apomeiosis (Ardito y Gómez, 2005). Las etapas sexuales estuvieron poco representadas en Rhodophyta, pues solo se encontraron 19 especies con espermacios y ocho con carpogonios. De acuerdo con Santelices (1977), la reproducción asexual tiene la ventaja de requerir un menor gasto de energía para la formación de esporas y su diseminación rápida, en comparación con los gametos, que solo están presentes cuando las condiciones del medio son adversas.

Referente a las 93 especies de Chlorophyta, 66 de ellas se encontraron en estado vegetativo, coincidiendo con los resultados de Saad-Navarro y Riosmena-Rodríguez (2005) y Mateo-Cid et al. (2013), quienes reportaron una mayor proporción de Ulvophyceae en fase vegetativa que en estado reproductivo, para las costas de Baja California Sur y Campeche, respectivamente. Esto se debe a que las algas de la clase Ulvophyceae cuentan con fases sexuales con un periodo de vida corto, por lo que los eventos reproductivos de manera sexual son efímeros (Mateo-Cid et al., 2013). Asimismo, las estructuras de reproducción son poco evidentes y su formación se lleva a cabo rápidamente; además, a partir de estas ocurre una pronta liberación de gametos móviles (Cocquyt et al., 2010). Incluso algunos de los taxones ubicados en el presente estudio podrían haberse encontrado en estadios juveniles.

Epifitismo

El Phylum Rhodophyta resaltó por tener la mayor cantidad de algas epífitas con 46 especies (Fig. 11); esto coincide con diversos estudios previos (Borowitzka et al., 2006; Mateo-Cid et al., 2015; Quiroz-González et al., 2023), particularmente en la temporada de lluvias, ya que aumenta la cantidad de luz clara, factor que influye en la abundancia de epífitas (Borowitzka et al., 2006); también la poca accesibilidad a ella, ya que las algas rojas tienen la capacidad de desarrollarse en condiciones de poca luz. Lo anterior no sucede con las especies de Heterokontophyta debido a que el mayor número de epífitas de este grupo se hallaron durante la temporada de secas, cuando hay mayor disponibilidad de luz. La dominancia de algas rojas epífitas en las tres temporadas climáticas (Fig. 12) refiere también el equilibrio en los factores bióticos y abióticos presentes en el área de estudio; de otra forma se podría inferir la influencia de condiciones inusuales como el enriquecimiento de nutrientes que resulta en la abundancia de especies de Chlorophyta o Cyanobacteria (Borowitzka et al., 2006).

En el presente estudio se determinó que la morfología de los talos epífitos de Rhodophyta es filamentosa, lo cual coincide con los resultados obtenidos por Arrontes (1990) y Quiroz-González et al. (2023), quienes mencionaron que las rodofitas presentan crecimiento rápido, reproducción temprana, tallas pequeñas y ciclo de vida corto (Ortuño-Aguirre y Riosmena-Rodríguez, 2007), características que las hacen competitivas en la adquisición de un sustrato (Kasim et al., 2020).

Estudios como el de Garduño-Solórzano et al. (2005) también indican un alto grado de epifitismo de géneros de la familia Cladophoraceae; además de especies como Phaeophila dendroides (P.L. Crouan y H.M. Crouan) Batters y Ulvella lens P.L. Crouan y H.M. Crouan, las cuales también fueron encontradas como epífitas en el presente trabajo. Se ha observado que el establecimiento de algas epífitas sobre diferentes forofitos o basibiontes depende tanto de factores climáticos estacionales como de aspectos biológicos; entre ellos, el tipo de superficie, rugosa o lisa, o la producción de sustancias extracelulares como estrategia de defensa ante la herbivoría, que las vuelven poco atractivas para las epífitas (Round, 1981).

En otros estudios (Dreckmann y Sentíes, 1994; Mateo-Cid et al., 2013, 2015; Quiroz-González et al., 2018, 2023), también se reporta un alto grado de epifitismo en algas rojas como Digenea mexicana G.H. Boo & D. Robledo (como D. simplex (Wulfen) C. Agardh en Mateo-Cid et al. (2013)), la cual fue encontrada en este estudio como basibionte de especies pertenecientes a los géneros Chaetomorpha, Cladophora, Rhizoclonium, Dictyota, Feldmannia, Polysiphonia, Gayliella y Centroceras. El alto grado de epifitismo puede atribuirse a que la mayoría de las epífitas crecen sobre macroalgas como Sargassum cymosum C. Agardh, Padina gymnospora, Palisada perforata (Bory) K.W. Nam, Alsidium triquetrum (S.G. Gmelin) Trevisan y Codium taylorii P.C. Silva, entre otras. Por esto, Santelices (1977) sugirió que la longevidad del basibionte debe ser suficientemente amplia para permitir a las epífitas completar su ciclo de vida.

La importancia biológica de las algas epífitas radica en que participan en la cadena y redes tróficas de diversos organismos marinos que habitan en los litorales intermareales (Ramírez-Rodríguez y Blanco-Pérez, 2011). Además, la interacción epífita-basibionte presenta efectos negativos como la reducción de energía lumínica y, por tanto, de la actividad fotosintética del hospedero (Ortuño-Aguirre y Riosmena-Rodríguez, 2007).

Conclusiones

El análisis y la integración de estudios previos con los resultados obtenidos en el presente trabajo permiten inferir la importancia de realizar inventarios ficoflorísticos en regiones del litoral mexicano poco o ya estudiadas, ya que posibilitan conocer aspectos ecológicos de las comunidades de algas registradas anteriormente, utilizando herramientas como análisis moleculares que facilitan la resolución de identidad de algunas especies registradas en el litoral veracruzano. Es necesario realizar monitoreos a corto y mediano plazo de las poblaciones de algas marinas como una estrategia que ayude a determinar las posibles variaciones de la ficoflora, ya sea por condiciones climáticas naturales tales como huracanes, períodos de lluvias o sequías intensos, los efectos del incremento de la temperatura en el mar, las actividades de turismo, pesquerías y urbanización en las zonas costeras para establecer programas de conservación y aprovechamiento.

Agradecimientos

A Rocio Nava-Olvera, Miguel Alejandro Valencia Torres, Alfonso Gerardo Adrián Garduño-Acosta, José Alfredo Pérez Salgado, Teresa Hernández Ortiz y Julio A. Acosta Calderón por el apoyo en el trabajo de campo. Agradecemos a los revisores anónimos cuyas observaciones mejoraron el manuscrito. A Patricia Martínez Chavero, por su invaluable apoyo en el trabajo de campo en Barra de Cazones. A Ivonne Zavala García por la edición técnica de algunas figuras.

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LEMC y ACMG planearon y diseñaron el estudio. LEMC, ACMG, DYGL, CMHC e IMG recolectaron y determinaron el material ficológico. LEMC, ACMG, DYGL, CMHC y IMG realizaron los análisis. LEMC, ACMG, DYGL, IMG y CMHC contribuyeron a la interpretación. LEMC escribió el manuscrito con la ayuda de ACMG, CMHC y DYGL. Todas las autoras contribuyeron a la discusión, revisión y aprobación del manuscrito final.

Financiamiento

Se reconoce al Instituto Politécnico Nacional (Proyectos de investigación SIP-20121517, 20131415, 20140606, 20150767, 20164772, 20180491, 20195092, 20195127, 20200095 y 2020254), por facilitar las instalaciones, equipo necesario y financiamiento económico parcial para el desarrollo de este estudio. La primera y segunda autora agradecen la beca otorgada por la Comisión de Operación y Fomento de Actividades Académicas (COFAA) y del Estímulo al Desempeño de los Investigadores (EDI).

Apéndice

Apéndice.  Algas marinas bentónicas del litoral de Veracruz, México (2002-2020). Simbología: Localidades: 1=Escolleras Tuxpan, 2=Barra de Cazones, 3=Lechuguillas, 4=Punta Delgada-Boca Andrea-Los Muñecos, 5=Villa Rica, 6=Veracruz-Boca del Río, 7=El Canal-Escolleras de Alvarado, 8=Punta Puntilla, 9=Playa Hermosa, 10=Montepío, 11=Coatzacoalcos-Barrillas-Jicacal. Estacionalidad: Ll=lluvias: junio, 2009, 2014, 2015, 2017; julio, 2004, 2005, 2007, 2009, 2010, 2013, 2014, 2015, 2017, 2018, 2019; agosto, 2004, 2013, 2014, 2016, 2018; septiembre, 2002, 2003, 2004, 2005, 2006, 2007, 2008, 2009, 2013, 2014, 2015, 2016, 2017, 2018, 2019; octubre, 2004, 2007, 2012, 2013, 2016, 2017, 2018, N=Nortes (lluvias de invierno): noviembre, 2004, 2005, 2008, 2013, 2014, 2015, 2017; diciembre, 2004, 2011, 2012, 2016, 2018, 2019: enero, 2016, 2017; febrero, 2004, 2014, 2015; S=secas: marzo, 2008, 2009, 2008, 2012, 2013, 2014, 2015, 2016, 2017, 2018, 2019, 2020; abril, 2002, 2005, 2006, 2013, 2014, 2015, 2016, 2017, 2018, 2019; mayo, 2004, 2005, 2008, 2013, 2014, 2015, 2016, 2017, 2018, 2019). Reproducción: Zp=zoosporangios (Chlorophyta); Esp=esporangios (Phaeophyceae); Sv=segregación vegetativa; Mn=monosporangios; Te=tetrasporangios; Po=polisporangios; Ci=carpoesporofito; Gm=gametangios; ♀=carpogonios; ♂=espermacios (Rhodophyta); An=anteridios; Og=oogonios; Pp=propágulos; Plu=plurangios; Un=unangios (Heterokontophyta: Phaeophyceae); Ve=vegetativo. Hábitat: R=rocoso; Pm=pozas intermareales; Ar=arenoso; Epi/Sw=Epífito de otras macroalgas; Epi/Th=epífito de Thalassia testudinum K.D. Koenig; Ez=epizoico; Par=parasito; End=endófito. Observaciones: NRV=nuevo registro para Veracruz (zona insular y litoral); NRVL=nuevo registro para el litoral de Veracruz; NRA=nuevo registro para la costa del Atlántico de México. Referencias: A=este estudio. B=Huerta-Múzquiz (1960). C=Humm y Hildebrand (1962). D=De La Campa-De Guzmán (1965). E=Sánchez-Rodríguez (1980). F=Flores-Davis (1993). G=Garduño-Solórzano et al. (2005). H=Godínez-Ortega et al. (2009). I=Ramírez-Rodríguez y Blanco-Pérez (2011). J=Lozano-Orozco et al. (2015). K=García-López et al. (2017). L=De La Cruz-Francisco et al. (2017). M=Landa-Cansigno et al. (2019). N=García-García et al. (2020); O=García-García et al. (2021). En el caso de los números de folio del herbario ENCB que incluyen letras, es porque pertenecen a la colección anexa del herbario. Además, en el caso de los números que incluyen al inicio Rh, Ph o Ch es porque Rh corresponde a Rhodophyta, Ph a Heterokontophyta y Ch a Chlorophyta, y el tamaño de la muestra no es adecuada para prensa y herborizar, por ello se incluyen en el herbario de esta manera, las laminillas están resguardadas en cajas de preparaciones. 

Estacionalidad   Reproducción        
Especies Localidades Hábitat Observaciones Referencias Número folio Herbario ENCB
Ll N S Ll N S        
HETEROKONTOPHYTA                    
Phaeophyceae
Dictyotales
Dictyotaceae
1. Canistrocarpus cervicornis (Kützing) De Paula & De Clerck 2, 3, 4, 5, 6, 8, 9, 10, 11 x x x Esp Esp Ve R, Epi/Sw A, D, E, L, M, O 21284, 21458, 21520, 21598, 21656, 22247, 22248, 22963, 24724, 25583, 25584, 25585, 27081
2. C. cervicornis f. pseudohamatus (Cribb) M.J. Wynne 2, 5, 8 x x Esp Ve R NRV A 22908, 23440, 24725, 25586, 25587, 25588, 27082
3. Dictyopteris delicatula J.V. Lamouroux 2, 4, 5, 6, 8, 9 x x x Esp Ve Ve R, Pm, Ez Epi/Th A, B, D, E, M, O 21018, 21529, 21562, 22250, 23441, 23473, 24227, 24728, 25515, 25590, 25593, 25596, 25611, 26834, 27083, 27084
4. D. jamaicensis W.R. Taylor 4, 8 x Esp R A, L 17746, 21751, 23405
5. Dictyota bartayresiana J.V. Lamouroux 5, 9, 10 x x Ve Ve R A, E, M, O 20593, 25598, 25599, 25600
6. D. ciliolata Sonder ex Kützing 2, 4, 5, 6, 8, 9, 10 x x x Esp An Ve R A, D, E, L, M, O 18535, 21537, 21762, 22252, 22919, 24199, 24348, 25602, 25603, 25604, 26214, 27085
7. D. chalchicueyecanensis Lozano-Orozco & Sentíes 8 x Esp R A, I, O 22418
8. D. crenulata J. Agardh 8 x Ve R A, D, O 25606
9. D. dichotoma (Hudson) J.V. Lamouroux 3, 4, 5 x Esp R A, D, E 19819, 19820, 19968, 22968
10. D. friabilis Setchell 2, 5, 8, 9, 10 x x Ve Esp R, Pm NRV A 23485, 24349, 25607, 25608, 26827
11. D. hamifera Setchell 2 x Esp Epi/Sw NRV A 24350
12. D. implexa (Desfontaines) J.V. Lamouroux 8 x Esp R A, D, E 25609
13. D. jamaicensis W.R. Taylor 5 x Ve R NRV A 25610
14. D. menstrualis (Hoyt) Schnetter, Hörnig & Weber-Peukert 4, 6 x x x Esp Ve Ve R, Epi/Sw NRVL A 18985, 19987, 21410, 21436, 21516
15. D. pinnatifida Kützing 6 x x Esp Esp R NRV A 21517, 21554
16. D. pulchella Hörnig & Schnetter 2, 8 x x Esp Esp R NRVL A 19814, 22251
17. Lobophora declerckii N.E. Schultz, C.W. Schneider & L. Le Gall 2, 4, 5 x x Esp Ve R, Pm A 17295, 19970, 25612, 27088
18. Padina boergesenii Allender & Kraft 2, 4, 5, 6, 9, 10 x x Esp Esp R, Pm A, M, O 17299, 18973, 19947, 21242, 21419, 21470, 21476, 22245, 23603, 25616, 27090, 27091, 27092
19. P. gymnospora (Kützing) Sonder 2, 3, 4, 5, 6, 8, 9, 10, 11 x x x Esp Ve Ve R A, D, E, L, M, O 18569, 19804, 21241. 21273, 21298, 21333, 21425, 21478, 21722, 21733, 22244, 22946, 23443, 24200, 24287, 24351, 24352, 24730, 25620, 25621, 27093
20. P. pavonica (L.) Thivy 8, 10 x Ve R A, D, E, L 21753, 24228
21. P. sanctae-crucis Børgesen 5 x Esp R A, E 24353
22. Spatoglossum schroederii (C. Agardh) Kützing 2, 4 x x Esp Ve R A, B, D, E, O 17295, 21302, 21310, 25631, 27094
23. Stypopodium zonale (J.V. Lamouroux) Papenfuss 4 x Esp R A, D, E 22920
Sphacelariales
Sphacelariaceae
24. Sphacelaria novae-hollandiae Sonder 2, 5, 8, 10 x x Pp Pp R, Epi/Sw A, E, J, O 19984, 23446, 25471, 25539, 25622, 26105, 26106, 26836, 27082
25. S. rigidula Kützing 2, 4, 5, 8 x x x Pp Pp Pp R, Epi/Sw, Epi/Th A, E, J, O 14765, 17601, 22945, 24346, 24380, 25550, 25628, 26108, 26838, 27118, 27119
26. S. tribuloides Meneghini 4, 5, 7, 8, 10 x x Pp Pp R A, E, I, O 19713, 19824, 24384, 26109, 26110, 26836, 26838, 27120
Asterocladales
Asterocladaceae
27. Asterocladon rhodochortonoides (Børgesen) S. Uwai, C. Nagasato, T. Motomura & K. Kogame 2, 5, 10 x Plu Epi/Sw, Epi/Th NRV A 20974, 21242, 22975
Ectocarpales
Acinetosporaceae
28. Feldmannia duchassaingiana (Grunow) Aisha & Shameel 2, 4, 9 x x Plu Plu R A, E, O 21594, 21651, 22174, 27166
29. F. irregularis (Kützing) G. Hamel 1, 2, 3, 4, 5, 6, 8, 9 x x x Plu Plu Plu R, Epi/Sw, Epi/Th A, E, O 22238, 22921, 24216, 24326, 25455, 25456, 25457, 25458, 25619, 27167, 27168, 27169
30. F. mitchelliae (Harvey) H.S. Kim 2, 3, 4, 7, 8, 9, 10 x x x Plu Plu Plu R, Epi/Sw A, E, O 11700, 21542, 21628, 21658, 24215, 27170, 27171
31. Herponema tortugense (W.R. Taylor) W.R. Taylor 3, 6, 8 x Plu Epi/Sw Epi/Th NRV A 21600
Chordariaceae
32. Cladosiphon occidentalis Kylin 2 x Plu Epi/Th A 27079
33. C. zosterae (J. Agardh) Kylin 6 x Un Epi/Th A PhA-17-R
34. Hecatonema floridanum (W.R. Taylor) W.R. Taylor 2, 8 x Plu Epi/Sw NRV A 22239, 26214
35. Kuetzingiella elachistaeformis (Heydrich) M. Balakrishnan & Kinkar 1, 2, 3, 4, 5, 6, 8, 11 x x x Plu Plu Plu Epi/Sw Epi/Th A, B, E 19714, 19943, 21103, 21461, 21684, 21733, 22235, 22245, 22281, 22414, 25517, 25581, 25623, 27093
36. Myrionema strangulans Greville 2, 8 x Plu Epi/Sw A, O 22945, 27080
37. Streblonema invisibile Hoyt 8 x Plu End NRV A 22425
Ectocarpaceae
38. Ectocarpus rallsiae Vickers 2, 6, 7, 8 x x Plu Plu Epi/Th, Epi/Sw A, E 21398, 21596, 21685, 23406, 25631, 26212, 27098
39. E. siliculosus (Dillwyn) Lyngbye 1, 2, 3, 4, 5, 6, 8, 9, 10, 11 x x x Plu Plu Plu R, Epi/Sw NRVL A 17312, 21328, 21413, 21522, 21650, 21702, 21738, 22875, 22969, 23454, 23507, 25630, 25634
40. E. variabilis Vickers 5 x Plu R A, E 18114
Scytosiphonaceae
41. Chnoospora minima (Hering) Papenfuss 2, 3, 4, 5, 9 x x x Ve Ve Ve R A, E, L, M 18526, 18531, 21261, 21461, 21523, 22338, 22916, 23454, 23455, 24383, 26091, 26094, 27106, 27107, 27109
42. Colpomenia sinuosa (Mertens ex Roth) Derbès & Solier 2, 3, 4, 5, 8, 9 x x x Un Ve Un R A, B, D, E, I, L 18534, 19717, 19815, 21254, 21262, 21519, 22340, 22540, 23453, 26098, 26099, 26102, 27110, 27111, 27113, 27114, 27115
43. Rosenvingea sanctae-crucis Børgesen 6 x Ve Epi/Sw A, O 22971
Fucales
Sargassaceae
44. Sargassum cymosum C. Agardh 2, 4, 5, 8, 9 x x x Og An Og R A, D 21469, 22948, 23445, 24233, 24380, 24381, 26083, 26084, 26085, 26086, 26087, 27099, 27100
45. S. filipendula C. Agardh 2, 4, 5, 8 x x x Og An Ve R A, B, D, E, I, L 18958, 19943, 21247, 21258, 21280, 21460
Ralfsiales
Neoralfsiaceae
46. Neoralfsia expansa (J. Agardh) P.E. Lim & H. Kawai ex Cormaci & G. Furnari 2, 3, 4, 5 x x Un Un R A, E 19666, 20582, 21092, 26840, 27104, 27105
Scytothamnales
Asteronemataceae
47. Asteronema breviarticulatum (J. Agardh) Ouriques & Bouzon 2, 4, 5, 7, 9, 10, 11 x x x Plu Plu Plu R A, E 17311, 19386, 19720, 19971, 21433, 21454, 21592, 21626, 22962, 25464, 25465, 25466, 25467, 25468, 23073, 27074, 27075
Bachelotiaceae
48. Bachelotia antillarum (Grunow) Gerloff 2, 4, 10 x x x Plu Ve Plu R A, E 21412, 21527, 21640, 23523, 25470, 25630, 26064
RHODOPHYTA
Bangiophyceae
Bangiales
Bangiaceae
49. Bangia fuscopurpurea (Dillwyn) Lyngbye 2, 3, 5, 8, 10 x x x Ve Mn R, Epi/Sw NRVL A 21251, 21371, 21393, 22226, 22965, 25572, 25619, 26007, 26740, 27005
Florideophyceae
Corallinales
Corallinaceae
50. Jania capillacea Harvey 2, 5, 8 x x Te Te R, Pm, Epi/Sw A, N 25622, 25641, 26048, 27002
51. J. cubensis Montagne ex Kützing 2, 3, 4, 5, 11 x x x Te Te Te R, Epi/Sw A, B, D, E, I, M, N 19662, 20289, 22393, 25027, 25030, 27004, 27047
52. J. pedunculata var. adhaerens (J.V. Lamouroux) A.S. Harvey, Woelkerling & Reviers 5, 9, 10, 11 x x Te Ve R, Epi/Sw A, B, E, M, N 20278, 23461, 24686, 27088
53. J. rubens (L.) J.V. Lamouroux 3, 4, 5, 8, 9, 10, 11 x x x Te Ve Te R, Epi/Sw A, E, I, M, N 17965, 18344, 20099, 21194, 21335, 23461, 24208, 26830
54. J. subulata (Ellis & Solander) Sonder 2, 4, 5, 8, 9, 10 x x x Te Ve Ve R, Epi/Sw A, E, I, M, N 17926, 20100, 20937, 21194, 21314, 22835, 23831, 24208, 24687, 25031, 25033, 26831, 27001, 27002
55. Pneophyllum confervicola (Kützing) Y.M. Chamberlain 4 x Te ♂ Epi/Sw Epi/Th NRV A 20813, 21193
56. P. fragile Kützing 2, 5 x Te Epi/Sw A, E, H, M 4918, 26149
Hydrolithaceae
57. Hydrolithon farinosum (J.V. Lamouroux) D.L. Penrose & Y.M. Chamberlain 2, 3, 4, 5, 6, 8, 9, 10 x x x Te Te Epi/Sw Epi/Th A, M 18624, 19324, 19726, 20307, 21089, 21193, 21600, 22939, 23798, 24377, 24376, 25523, 25587, 25616, 25624, 25643, 26028, 27090
Lithophyllaceae
58. Amphiroa beauvoisii J.V. Lamouroux 10 x x Te Ve R A, K, M 20059, 20279
59. A. fragilissima (Linnaeus) J.V. Lamouroux 5 x Ve R, Epi/Sw A, E, H, M 24200
60. A. rigida J.V. Lamouroux 10 x Ve R A, M 26217, 27010
61. Lithophyllum corallinae (P.L. Crouan & H.M. Crouan) Heydrich 4, 5 x Ci ♀ R A, M 20244, 24688
62. L. kaiseri (Heydrich) Heydrich 2, 8, 10 x x Te Ci R A, J 24689, 25614, 26217
63. L. pseudoplatyphyllum J.J. Hernández-Kantun, W.H. Adey & P.W. Gabrielson 8 x x Ci R NRA A 26218
64. L. stictiforme (Areschoug) Hauck 6, 9 x x Te Te R A, M 20249, 20275
65. Titanoderma pustulatum (J.V. Lamouroux) Nägeli 2, 3, 5, 7, 8, 9 x x x Te ♀♂ Te Epi/Sw A, M 20598, 21347, 21648, 24380, 25628, 26027, 26035, 26038, 26953, 27011
Porolithaceae
66. Harveylithon munitum (Foslie & M. Howe) A. Rösler, Perfectti, V. Peña & J.C. Braga 4 x Bi R NRV A 23361
67. Porolithon antillarum (Foslie & Howe) Foslie & Howe 4 x Te R A, M 25001
Spongitidaceae
68. Neogoniolithon propinquum (Foslie) Me. Lemoine 4 x x Te Te R NRVL A 24689, 24692
69. Spongites yendoi (Foslie) Y.M. Chamberlain 3, 9 x Te R NRV A 20294, 22396
Hapalidiales
Hapalidiaceae
70. Melobesia membranacea (Esper) J.V. Lamouroux 4, 6 x x Te Te Epi/Th A, E, I, N 21443, 22943
71. Lithothamnion sejunctum Foslie 5 x Te R NRV A 26220
Hildenbrandiales
Hildenbrandiaceae
72. Hildenbrandia rubra (Sommerfelt) Meneghini 7, 8 x x Te Te R A, E, H, M 20273, 23824, 26198, 26833
Acrochaetiales
Acrochaetiaceae
73. Acrochaetium catenulatum M. Howe 8 x Mn Epi/Sw NRV A 21221
74. A. crassipes (Børgesen) Børgesen 2, 3, 4, 5, 7, 8, 9, 10 x x x Mn Mn Mn Epi/Sw A, E, H, M 25462, 25463, 25519, 25520, 25522, 25546, 25549, 25611, 26974, 27098, 27120, 27124
75. A. globosum Børgesen 2 x Mn Epi/Sw NRV A 22194
76. A. hoytii F.S. Collins 7 x Mn Epi/Sw NRV A 22175
77. A. microscopicum (Nägeli ex Kützing) Nägeli 1, 2, 3, 4, 5, 8, 9, 10, 11 x x x Mn Mn Mn Epi/Sw A, M 19713, 19825, 21292, 21305, 21394, 21426, 21434, 21733, 21745, 22908, 24281, 25520, 25560, 26837
78. Acrochaetium sanctae-thomae Børgesen 2 x Mn Epi/Th NRV A RhA-19/A
Colaconematales
Coleconemataceae
79. Colaconema dasyae (Collins) Stegenga, I. Mol, Prud’homme van Reine & Lokhorst 2, 3, 4, 8, 9 x x Mn Mn Epi/Sw NRV A 21291, 25526, 25619, 25630
80. C. daviesii (Dillwyn) Stegenga 2, 3, 4, 7, 8 x x Mn Mn Epi/Sw A 21305, 21571 21668, 21460, 24970, 25630
81. C. gracile (Børgesen) Ateweberhan & Prud’homme 1 x Mn Epi/Sw A 22235
82. C. hallandicum (Kylin) Afonso-Carillo, Sanson, Sangil & Díaz- Villa 2, 3, 4, 8, 9, 10 x x x Mn Mn Mn Epi/Sw, Epi/Th A, E, H, M 20987, 21264 21788, 22393, 22537, 25521, 26953, 27005 27129
83. C. hypneae (Børgesen) A.A. Santos & W.N. Moura 2, 3, 5, 6, 8 x x x Mn Mn Mn Epi/Sw A, M 21237, 21600, 22429, 22908, 26993, 27137, 27139
84. C. savianum (Meneghini) R. Nielsen 3, 4, 5, 7, 11 x Mn Epi/Sw A, M 19947, 21250, 21292, 21471, 21800, 25520, 26014
85. C. thuretii (Bornet) P.W. Gabrielson 7 x Mn Epi/Sw NRV A 21491, 21609
Nemaliales
Galaxauraceae
86. Galaxaura rugosa (J. Ellis & Solander) J.V. Lamouroux 2, 6, 8, 9, 10 x x Ci ♀ R, Pm A, D, K, M 18305, 19656, 19659, 20177, 22385, 23800, 23825, 25035, 25036
87. Tricleocarpa cylindrica (J. Ellis & Solander) Huisman & Borowitzka 8 x R A, E, H, M 21221
Liagoraceae
88. Helminthocladia calvadosii (J.V. Lamouroux ex Duby) Setchell 4, 8 x x Ve ♂ ♀ R NRV A 22425, 26967
89. Liagora ceranoides J.V. Lamouroux 4, 8, 10 x x R A, E, H, L, M 19741, 19806, 22426, 22973, 24204, 26968,
90. Titanophycus validus (Harvey) Huisman, G.W. Saunders & A.R. Sherwood 10 x Ci ♀ R A, B, E, H, M 22975
Liagoropsidaceae
91. Liagoropsis schrammii (P. Crouan & H. Crouan) Doty & I.A. Abbott 5, 8 x Ci ♂ R A, B, M 26039, 26040
Scinaiaceae
92. Scinaia complanata (Collins) A.D. Cotton 2 x Ci R A, B, D, M 24733, 26090
93. Scinaia halliae (Setchell) Huisman 2 x x Ve Ci R NRV A 21673, 22335, 23452
Bonnemaissoniales
Bonnemaisoniaceae
94. Asparagopsis taxiformis (Delile) Trevisan 5 x Te Epi/Sw A, K, M RhA-18-L
Ceramiales
Callithamniaceae
95. Aglaothamnion cordatum (Børgesen) Feldmann-Mazoyer 1, 8 x     Te ♂     Epi/Sw   A, M 19741, 21601
96. Callithamnion corymbosum (J.E. Smith) Lyngbye 1, 2, 4, 5, 7, 8, 9 x x x Te, Ci, ♂     R, Epi/Sw   A, M 19973, 20912, 21566, 21675, 22371, 24329, 25479, 25480, 26741, 26742, 27082
97. Spyridia aculeata subsp. complanata (J. Agardh) Hommersand 2 x Te R, Pm A 26743, 26927
98. Spyridia clavata Kützing 2, 6 x x Te Ve R A, D, H 21978, 21979, 25476, 27126
99. S. filamentosa (Wulfen) Harvey 2, 6 x x x Te Te Te R, Pm A, B, D, H, M 24191, 25477, 26928, 26929, 27127
100. S. hypnoides (Bory de Saint-Vincent) Papenfuss 1, 2, 3, 6 x x Te Ve R, Pm A, B, D, H, K, M 19988, 21567, 21818, 25478, 26222
Ceramiaceae
101. Antithamnion antillanum Børgesen 5 x Te Epi/Sw NRV A 25608
102. Antithamnionella elegans (Berthold) J.H. Price & D.M. John 7 x Te Epi/Sw NRV A 22185
103. Centroceras gasparrinii (Meneghini) Kützing 2, 4, 5, 7, 8, 9, 10, 11 x x x Te Ci Te R, Pm Epi/ Sw A, L, M 21311, 21526, 2167,1 21790, 22187, 22188, 22412, 22946, 25500, 25501, 25502, 25503, 25508, 26045, 26817, 27129, 27130
104. C. hyalacanthum Kützing 2, 4, 6, 7 x Te R NRV A 21577, 21723, 21785, 22771
105. C. micracanthum Kützing 3, 4, 6, 8, 9 x x Te Ci Epi/Sw NRV A 19945, 21672, 21830, 22873
106. Ceramium brevizonatum var. caraibicum H.E. Petersen & Børgesen 1, 2, 4, 5, 6, 9 x x Te Ci ♂ Epi/Sw A, M 21102, 21423, 22189, 22300, 24211, 24353, 26818
107. C. cimbricum H.E. Petersen 10, 11 x Te R NRV A 21825, 22259
108. C. cimbricum f. flaccidum (H.E. Petersen) Furnari & Serio 2, 8, 10 x x Te Te R, Epi/Sw A, K, M 22259, 26932, 26949, 26951, 27093, 27132
109. C. codii (H. Richards) Mazoyer 5 x Te Epi/Sw NRV A 19973
110. C. corniculatum Montagne 5, 8 x Ci Te Epi/Sw A, H 27047, 27132
111. C. cruciatum F.S. Collins & Hervey 2, 5, 8, 9, 11 x x Te Te Epi/Sw A, H, L, N 20599, 22273, 22426, 25509, 25510, 26027, 26833, 26933, 27132
112. Gayliella dawsonii (A.B. Joly) Barros-Barreto & F.P. Gomes 1, 2 x x Te Te Epi/Sw NRV A 9217, 26743, 26817
113. G. flaccida (Harvey) T. O. Cho & L. J. McIvor 2, 4, 5, 6, 8, 9, 10 x x x Te Te R, Epi/Sw A, N 19730, 19814, 20974, 22158, 22191, 22883 22924, 23436, 24191, 24204, 24221, 26048
114. G. mazoyerae T.O. Cho, Fredericq & Hommersand 1, 2,8, 9 x x Te Te Epi/Sw A, E, N 22190, 22922, 22923, 24330
115. G. transversalis (F.S. Collins & Hervey) T.O. Cho & Fredericq 2, 5, 8, 10 x x Te Te ♂ R, Pm, Epi/Sw, Epi/Th NRV A 20974, 22192, 23444, 25513, 25514, 25602, 26831, 26934, 26936
Delesseriaceae
116. Caloglossa leprieurii (Montagne) G. Martens 2, 7 x x Te Te R A, L, N 21404, 22240, 22918, 25582, 26946
117. Dasya corymbifera J. Agardh 1, 2, 4, 5 x x x Te Te R NRV A 19021, 19726, 20991, 21754, 22241, 23439, 23504, 23505, 25578, 26947, 26948
118. D. pedicellata (C. Agardh) C. Agardh 1 x Ve R A, M, N 21330
119. Heterosiphonia crispella (C. Agardh) M.J. Wynne 5, 8, 9 x Te Epi/Sw NRV A 24291, 24293, 25622
Rhodomelaceae
120. Acanthophora muscoides (Linnaeus) Bory de Saint-Vincent 6, 11 x x Te Te R A, N 18235, 22295, 24371
121. A. spicifera (Vahl) Børgesen 1, 2, 6, 8, 11 x x x Te Ci Te R, Pm A, B, D, L, N 21248, 21564, 21720, 22294, 24205, 24229, 24230, 24372, 26043, 26044, 26045, 26971
122. Alsidium seaforthii (Turner) J. Agardh 2, 4, 5, 6 x x Te Ve R A, B, D, E, I, L, N 16765, 17044, 18522, 19049, 21657, 22315, 22316, 26046,
123. A. triquetrum (S.G. Gmelin) Trevisan 2, 4, 5, 8, 9, 10 x x x Te Ve Ve R, Pm A, B, D, E, I, L, M, N 18584, 19039, 21283, 21580, 21826, 22299, 22301, 23459, 24291, 24373, 24374, 26048, 26827, 26974, 26975
124. Bostrychia radicans (Montagne) Montagne 2, 7 x Te R A, E, I, N 22296, 26828
125. B. tenella (J.V. Lamouroux) J. Agardh 4 x x Te Te R A, B, N 21424
126. Bryocladia cuspidata (J. Agardh) De Toni 2, 3, 4, 7, 8, 9, 11 x x x Te Te Ci R A, E, I, N 21237, 21269, 21565, 21566, 21625, 21755, 22318, 22905, 22906, 23458, 26051, 26052, 26979, 26980
127. B. thyrsigera (J. Agardh) F. Schmitz 2, 7 x x Ci Ve R NRV A 22297, 22298
128. Chondria atropurpurea Harvey 2, 6 x x Te Ci R A, L 21632, 24206
129. C. baileyana (Montagne) Harvey 2, 6 x x Te Te Epi/Sw NRV A 21795, 26053, 27144
130. C. capillaris (Hudson) M.J. Wynne 2 x Te R A, B, D, N 24207
131. C. curvilineata Collins & Hervey 6 x Te Epi/Th A, N 24231
132. C. dasyphylla (Woodward) C. Agardh 6 x x x Te Te Te R, Pm, Epi/Sw A, N 18232, 22319, 23171
133. C. leptacremon (Melvill ex G. Murray) De Toni 2, 6, 10 x x Te Te R, Epi/Th A, N 21410, 24195, 24292, 26981
134. C. polyrhiza F.S. Collins & Hervey 2, 8, 11 x x Te Te R, Epi/Sw A, N 21733, 22429, 26982
135. Digenea mexicana G.H. Boo & D. Robledo 2, 4. 5, 6, 8, 9, 10 x x x Te Te R, Pm A, B, D, E, I, L, M, N 17058, 19816, 21260, 21306, 21324, 21530, 21654, 22430, 23461, 23462, 24208, 24293, 24375, 26054, 26058
136. Herposiphonia secunda (C. Agardh) Ambronn 10 x Te Epi/Sw A, N 21242
137. H. tenella (C. Agardh) Ambronn 2 x x Te Te Epi/Sw A, E, I, N RhA-20/K, 26983
138. Laurencia caraibica P.C. Silva 2, 5, 9, 10 x x Te Te R A, N 22327, 24209, 26060, 26061, 26829
139. L. dendroidea J. Agardh 4, 8, 9, 10 x x x Te Te Te R NRV A 21325, 21471, 21489, 22431, 22882, 24376, 26985
140. L. microcladia Kützing 2, 5 x x Te R A, D, E, I, N 19716, 22323, 23484, 26062
141. L. obtusa (Hudson) J.V. Lamouroux 2, 4, 5, 8, 9, 10 x x x Te Ci ♂ Te R A, B, D, E, I, L, N 18053, 20442, 21510, 21511, 21794, 22324, 22326, 23482, 23483, 24324, 26064, 26986, 26987
142. Melanothamnus ferulaceus (Suhr ex J. Agardh) Díaz-Tapia & Maggs 2, 3, 6, 8 x x x Te Ci Te R A, E, I, N 16690, 21231, 21558, 22330, 22331, 23477, 23487, 24206, 24210, 26065, 26988
143. M. gorgoniae (Harvey) Díaz-Tapia & Maggs 6 x x Te Ci ♂ Epi/Th A, N 21512, 21597
144. M. sphaerocarpus (Børgesen) Díaz-Tapia & Maggs 3, 5, 6, 7, 8 x x Te Te R, Epi/Sw A, N 21519, 21573, 21671, 21760, 26066, 26989
145. Osmundaria obtusiloba (C. Agardh) R.E. Norris 2 x x Te Ve R A, D, E, I, N 22329, 22372, 23481, 24377
146. Palisada corallopsis (Montagne) Sentíes, Fujii & Díaz-Larrea 6 x Ve R A, N 21730
147. P. flagellifera (J. Agardh) K.W. Nam 2, 9 x x Te Ci ♂ R NRV A 20845, 21538, 23486, 24211
148. P. perforata (Bory de Saint-Vincent) K.W. Nam 2, 4, 10 x x x Te Ci Ve R A, B, D, E, I, L, N 18525, 21711, 21793, 22883, 23485, 24378, 24379, 26990
149. Polysiphonia atlantica Kapraun & J.N. Norris 1 x Te R, Ez A, D, N 22881
150. P. binneyi Harvey 2, 6, 7, 8 x x Te Ci R, Epi/Th A, N 21226, 21482, 22328, 22540, 22949, 27145,
151. P. havanensis Montagne 5 x Te Epi/Sw A, N 24353
152. P. sertularioides (Grateloup) J. Agardh 10 x Te Epi/Sw NRV A 24195
153. P. subtilissima Montagne 1, 2, 6, 7, 8 x x Te Te R, Epi/Sw A, E, I, L, N 18234, 21571, 22432, 22947, 24292, 24320, 24970, 26991
154. P. villum J. Agardh 2, 7 x Te Epi/Sw A 21290, 21486, 21758
155. Vertebrata foetidissima (Cocks ex Bornet) Díaz-Tapia & Maggs 6 x Te R A, N 24232
156. Wilsonosiphonia howei (Hollenberg) D. Bustamante, Won & T.O. Cho 2 x x Te Te R NRV A 26210, 26992, 27146
157. Yuzurua poiteauii (J.V. Lamouroux) Martin-Lescanne 2, 4, 9, 10 x x Te Te R A, N 19967, 21264, 21467, 22960,
158. Y. poiteauii var. gemmifera (Harvey) M.J. Wynne 8 x Te R NRV A 22433
Wrangeliaceae
159. Anotrichium tenue (C. Agardh) Nägeli 8 x Te Epi/Sw Epi/Th A, N 25525
160. Pleonosporium boergesenii (A.B. Joly) R.E. Norris 2, 8 x x Po Po R, Epi/Sw A, N 21801, 26995
161. P. borreri (Smith) Nägeli 2 x Po R A, N 22896
162. Ptilothamnion speluncarum (F.S. Collins & Hervey) D.L. Ballantine & M.J. Wynne 2, 4 x x   Po Po   Epi/Sw   A, E, I 21481, 24214
163. Spermothamnion macromeres Collins & Hervey 2 x Po R NRV A 22156
164. Spongoclonium caribaeum (Børgesen) M.J. Wynne 1, 2, 8 x x Po Po ♂ R, Epi/Sw A, N RhV-16_LE/01, 26996, 26997
165. Wrangelia argus (Montagne) Montagne 2, 4, 5, 8, 9, 10 x x x Te Te Te R, Epi/Sw A, E, I, L, N 18149, 19373, 21235, 21236, 21434, 21513, 21514, 21667, 22434, 22983, 23444, 23448, 24325, 24295, 26127, 26998, 26999
Gelidiales
Gelidiaceae
166. Gelidium americanum (W.R. Taylor) Santelices 2, 3, 4, 5, 7, 8, 9, 10 x x x Te Ci Ve R, Pm A, E, I, N 18502, 21239, 21240, 21331, 21485, 21487, 21709, 22259, 22925, 22926, 24355, 25638, 25639, 26008, 26950, 26952, 26953
167. G. corneum (Hudson) J.V. Lamouroux 2, 9 x x Te Te R A, M, N 21799, 22157, 22157
168. G. crinale (Hare ex Turner) Gaillon 2, 3, 5, 7, 8 x x x Te Ci Te R A, N 21555, 21599, 21630, 22263, 24354, 26011, 26954, 26955
169. G. crinale var. platycladum W.R. Taylor 2 x Te R NRV A RhV-19-D
170. G. floridanum W.R. Taylor 7 x Ve R A, E, I, N 24360
171. G. pusillum (Stackhouse) Le Jolis 1, 2, 4, 5, 8, 9, 10 x x x Te Ci Te R, Epi/Sw A, D, I, N 21251, 21472, 21563, 21602, 21721, 26957
Gelidiellaceae
172. Gelidiella acerosa (Forsskål) Feldmann & G. Hamel 2, 9 x Te R, Pm A, I, N 22924, 24201
173. Parviphycus setaceus (Feldmann) J. Afonso-Carrillo, M. Sanson, C. Sangil & T. Díaz-Villa 8 x Te R NRVL A, N 26012
Pterocladiaceae
174. Pterocladiella caerulescens (Kützing) Santelices & Hommersand 11 x Te R A, N 21631
175. P. capillacea (S.G. Gmelin) Santelices & Hommersand 9 x Te R A, E, I, N 21483
176. P. sanctarum (Feldmann & Hamel) Santelices 2, 4 x x Te Te R A 21662, 22158, 27142
Gigartinales
Cystocloniaceae
177. Hypnea cervicornis J. Agardh 2, 8 x x Ve R A, B, D, E, I, N 23489, 24196, 26938
178. H. cornuta (Kützing) J. Agardh 6 x Te R A, B, D, I, N 22940, 24340
179. H. musciformis (Wulfen in Jacquin) J. V. Lamouroux 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9 x x x Te Ci Te R, Pm, Epi/Sw A, B, D, E, I, L, N 19023, 21581, 21670, 21725, 21743, 22229, 22230, 22231, 22941, 23444, 23509, 23510, 24197, 24286, 24341, 24342, 24343, 25567, 25568, 26819, 26940, 26941
180. H. spinella (C. Agardh) Kützing 2, 3, 5, 6, 7, 8, 11 x x Te Te R, Pm, Epi/Sw A, D, H, I, M, N 17537, 20992, 22222, 22226, 22380, 22942, 22416, 23444, 23495, 24198, 24345, 25574, 26945
181. H. valentiae (Turner) Montagne 1, 2, 3, 4, 5, 8 x x Te Ve R A, I, N 21582, 21829, 22232, 22233, 22234, 22380, 25575, 25576, 25577
182. Hypneocolax stellaris Børgesen 7 x Te Par NRVL A PRh-18/C1
Gigartinaceae
183. Chondracanthus acicularis (Roth) Fredericq 4, 6, 8 x Te R A, D, I, N 21252, 24361, 26013, 26964
Phyllophoraceae
184. Gymnogongrus griffithsiae (Turner) Martius 2, 3, 6, 7, 8, 9 x x Ci Ci R A, N 21507, 21763, 22427, 22428, 26825, 26969,
185. G. tenuis J. Agardh 2, 6, 7, 8 x x Ci Ci R A, D, E, I, N 17471, 21290, 21508, 21572, 21739, 22292, 22293, 26970, 27000
Solieriaceae
186. Agardhiella subulata (C. Agardh) Kraft & M.J. Wynne 1, 6 x x Ci Te R A, B, D, N 21528, 21707, 22904, 23456, 24315, 24385,
187. Solieria filiformis (Kützing) P.W. Gabrielson 6 x Te R NRVL A 21475
Gracilariales
Gracilariaceae
188. Gracilaria apiculata P. Crouan & H. Crouan 1, 2, 6, 7, 8 x x x Ci Te Te R A, M, N 22876, 23407, 23501, 24362, 24363, 26014, 26015, 26960
189. G. blodgettii Harvey 2, 3, 6 x x x Te Te Ci R A, D, I, N 16666, 21286, 21329, 21427, 21635, 22270, 22877, 24202, 24364, 26020, 26820, 26961
190. G. bursa-pastoris (S.G. Gmelin) P.C. Silva 6 x Te R A, B, D, N 22266
191. G . cervicornis (Turner) J. Agardh 2, 5, 6 x x Ci Te R A, B, D, E, I, L, N 16669, 18180, 20895, 21297, 21534
192. G. cylindrica Børgesen 2, 6, 11 x x Ci Te R A, B, D, L, N 19238, 19975, 21590, 23490
193. G. damicornis J. Agardh 5, 6 x x Te Ci R A, B, D, I, N 16672, 27140
194. G. domingensis (Kützing) Sonder ex Dickie 1, 2, 6 x x Te Te R A, E, I, N 21506, 21606, 21712, 22378
195. G. flabelliformis (P. Crouan & H. Crouan) Fredericq & Gurgel 1, 2, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 11 x x Ci R A, M, N 21304, 21468, 21603, 21717, 21800, 22272, 22878, 22928, 23494, 23498, 24288, 24365, 26021, 26024, 26962
196. G. flabelliformis subsp. simplex Gurgel, Fredericq & J.N. Norris 6, 8 x Ci R NRV A 22929, 24367
197. G. foliifera (Forsskål) Børgesen 7 x Ci R A, K, N 26029
198. G. tikvahiae McLachlan 2, 6 x x Ci Te R A, N 21661, 22274
199. G. venezuelensis W.R. Taylor 2 x Te R A, B, N 22275
200. Gracilariopsis cata-luziana C.F.D. Gurgel, S. Fredericq & J.N. Norris 6 x Ve R A, N 21402, 21593
201. Gr. lemaneiformis (Bory de Saint-Vincent) E.Y. Dawson, Acleto & Foldvik 2, 6 x x x Ci Te Te R A, E, I, L, N 17042, 21489, 21573, 21687, 22277, 23497
202. Gr. longissima (S.G. Gmelin) Steentoft, L.M. Irvine & Farnham 6 x x Te Ci R A, B, N 24203, 24289
203. G. tenuifrons (C.J. Bird & E.C. Oliveira) Fredericq & Hommersand 2, 6 x Te ♀ R A, N 22279, 22280, 26031, 26033, 27141
Halymeniales
Halymeniaceae
204. Grateloupia cuneifolia J. Agardh ex Kützing 1 x Ci R NRV A 21220
205. G. gibbesii Harvey 1 x x Te Te R NRV A 21219, 22931, 24321
206. G. subpectinata Holmes 1, 2, 3, 6, 7, 10 x x x Te Te Te R A, N 21488, 21563, 21644, 21748, 22281, 22374, 24358, 24359, 26822
207. G. pterocladin (M.J. Wynne) S. Kawaguchi & H.W. Wang 1, 2, 3, 7, 8 x x Te Te R A, N 20598, 21265, 21491, 21492, 21493, 21741, 22284, 23408, 23444, 23488, 26036
208. Halymenia floridana J. Agardh 2 x x Te Ci Ci R, Ez NRV A 21203, 26965, 26966
Peyssonneliales
Peyssonneliaceae
209. Peyssonnelia armorica (P.L. Crouan & H.M. Crouan) Weber Bosse 9, 10 x Te Ez, Epi/Sw NRV A 20264, 26621
210. P. conchicola Piccone & Grunow 6 x Te R NRV A 24691
211. P. rubra (Greville) J. Agardh 2, 8, 9, 10 x x Te Te R A, N 20294, 21204, 21313, 23805, 27012
Rhodymeniales
Champiaceae
212. Champia parvula (C. Agardh) Harvey 6 x x Te Ci Epi/Sw, Epi/Th A, D, E, I, N 16764, 21559, 22237, 24222
213. C. parvula var. prostrata L.G. Williams 6, 11 x Te R NRVL A 21560, 21627
Lomentariaceae
214. Ceratodictyon intricatum (C. Agardh) R.E. Norris 2, 4, 5, 7, 8, 10, 11 x x Te Ve R, Epi/Sw NRVL A 21642, 21827, 21831, 2277,9 22287, 23480, 24368, 26826
215. C. planicaule (W.R. Taylor) M.J. Wynne 2, 3, 6, 8 x x Te Ve R NRVL A 22424, 23479, 24369, 24370, 26041
216. C. variabile (J. Agardh) R.E. Norris 9 x x Ve Ve R A, N 21301, 21734
217. Hooperia divaricata (Durant) M.J. Wynne, C.W. Schneider & G.W. Saunders 1 x Te R NRV A 22286
Compsopogonophyceae                      
Erythropeltidales
Erythrotrichiaceae
218. Erythrocladia irregularis Rosenvinge 2, 5, 7, 9 x x Ve Ve Epi/Sw A, E, N 21575, 21583, 27043
219. Erythrotrichia carnea (Dillwyn) J. Agardh 1, 2, 3, 4, 5, 7, 8, 9, 10, 11 x x x Ve Mn Mn Epi/Sw, Epi/Th A, E, I, N 20786, 20845, 20937, 21237 20937, 21264, 21292, 21305, 21355, 21423, 21434, 21575, 21595, 21634, 21641, 22197, 22929, 22907, 25471, 25532, 25611, 26007, 27074
220. Sahlingia subintegra (Rosenvinge) Kornmann 1, 2, 3, 4, 5, 7, 8, 9, 11 x x x Ve Mn Ve Epi/Sw A, E, I, N 20974, 20987, 21253, 21292, 21368, 21423, 21575, 22194, 22221, 25519, 25522, 27032, 27039, 27139
Stylonematophyceae
Stylonematales
Stylonemataceae
221. Bangiopsis subsimplex (Montagne) F. Schmitz 9 x Ve Epi/Sw NRV A 25630
222. Chroodactylon ornatum (C. Agardh) Basson 2, 8 x Ve Epi/Sw A, N RhV/15/A1
223. Stylonema alsidii (Zanardini) K.M. Drew 2, 3, 4, 5, 6, 8, 9 x x x Ve Mn Ve Epi/Sw A, E, I, N 19726, 19947, 21237, 21423, 21471, 21589, 21605, 22908, 25526, 26830, 26993
CHLOROPHYTA
Ulvophyceae
Bryopsidales
Bryopsidaceae
224. Bryopsis halliae W.R. Taylor 4, 6 x Sv R A, K 21365, 24328
225. B. hypnoides J.V. Lamouroux 1, 4, 6, 8 x x Sv Ve R A, F, G, I, K 19738, 21676, 21677, 22222
226. B. pennata (Kützing) Collins & Hervey 2, 3, 4, 7, 8, 9 x x x Ve Ve Ve R, Pm, Ez A, E, F, G, I, K 19395, 21268, 21363, 21364, 21570, 21678, 21783, 22178, 22907, 24189, 25474
227. B. pennata var. leprieurii (Kützing) Collins & Hervey 1 x Ve R NRV A 26211
228. B. pennata var. secunda (Harvey) Collins & Hervey 2, 4, 5, 6, 7, 10 x x Ve Ve R, Ez A, J 22177, 24219, 26813, 26814, 27017, 27018
229. B. plumosa (Hudson) C. Agardh. 1, 2, 6 x x Ve Ve R A, G, I, K 24218, 25475, 27019, 27020
230. B. ramulosa Montagne 1 x Ve R A, F, G, I, K 1119
231. Trichosolen duchassaingii (J. Agardh) W.R. Taylor. 1, 4, 5, 6, 8, 9 x x Sv Sv R, Ez A, K 21243, 21601, 22180, 22974, 26212, 27021
232. T. longipedicellatus (H.L. Blomquist & Díaz-Piferrer) D.M. John 8 x Gm R NRV A 27022
Codiaceae
233. Codium decorticatum (Woodward) M.A. Howe 6, 10 x x Gm Gm R A, G, I, K 19791, 24195
234. C. isthmocladum Vickers 5, 6 x Gm R A, G, I, K 10459, 25563
235. C. isthmocladum subsp. clavatum (Collins & Hervey) P.C. Silva 8 x x Gm Gm R NRV A 22413, 22534, 24284, 25565
236. C. cf. simplex DeNotaris 4, 5, 6, 8, 9 x x Gm Gm R A, K 19973, 21287, 21464, 22238
237. C. taylorii P.C. Silva 5, 6, 9, 10 x x x Gm Gm Gm R, Pm A, D, E, G, I, K 19400, 19730, 20153, 22917, 24339
Caulerpaceae
238. Caulerpa ambigua Okamura 4 x x Ve Ve R A, E, G, I, K 24190, 24220
239. C. chemnitzia (Esper) J.V. Lamouroux 1, 2, 4, 5, 6, 8, 9, 10 x x x Ve Ve Ve R, Ar A, E, F, G, I, K, M 16568, 21415, 21450, 21553, 21645, 21653, 21653, 22369, 22409, 22909, 23520, 25481, 25482, 25483, 25484, 25485, 27023, 27024
240. C. cupressoides (West) C. Agardh. 6 x x Ve Ve Ar A, G, I, K 16900, 21416, 24331
241. C. cupressoides var. turneri Weber Bosse 6 x Ve Ar A, K 20840
242. C. lamourouxii (Turner) C. Agardh 3, 5, 6 x x x Ve Ve Ve R, Ar A, K 21259, 21421, 21457, 25487
243. C. mexicana Sonder ex Kützing 1, 2, 5, 6 x x x Ve Ve Ve R, Ar, Ez A, F, G, I, K, L 16879, 21225, 21655, 21692, 22181, 22531, 23434, 25489, 25490, 25491, 25492, 26817, 27025
244. C. microphysa (Weber-van Bosse) Feldmann 2, 4 x x Ve Ve R, Ar A, G, I, J, K, M 19821, 21881, 27026
245. C. prolifera (Forsskål) J.V. Lamouroux 2 x Ve R, Pm A, G, I, J, L 25493
246. C. racemosa (Forsskål) J. Agardh 4, 5, 6, 11 x x Ve Ve R A, E, F, G, I, K, M 18037, 19822, 21368, 24726
247. C. racemosa var. macrophysa (Sonder ex Kützing) W.R. Taylor 4, 8 x x Ve Ve R A, E, L 22410, 24189
248. C. sertularioides (S. Gmelin) M. Howe 1, 2, 3, 4, 5, 6, 8, 9, 10, 11 x x x Ve Ve Ve R, Pm, Ar A, F, G, I, K, M 20842, 20860, 21367, 21401, 21422, 21675, 22184, 22911, 23435, 23519, 24332, 24333, 25494, 25495, 25496, 25497, 27029, 27031
249. C. sertularioides f. brevipes (J. Agardh) Svedelius 2 x Ve R, Ar A, K, M 25499
250. C. sertularioides f. longiseta (Bory) Svedelius 1, 2, 6, 8 x x Ve Ve R, Ar A, K 21701, 21797, 22533, 22368, 24224, 24334
Dichotomosiphonaceae
251. Avrainvillea mazei G. Murray & Boodle 9 x Ve Ar, Pm NRV A ChV-M-17
Halimedaceae
252. Halimeda opuntia (Linnaeus) J.V. Lamouroux 6 x x x Ve Ve Ve Ar A, E, G, I 18794, 20533, 23784
253. H. scabra M.A. Howe 4 x Ve Ar A, F, G, I, K, M 20577
254. H. tuna (J. Ellis & Solander) J.V. Lamouroux 4, 10 x x Ve Ve Ar A, E, G, I, J 19649, 20262
255. Penicillus capitatus Lamarck 4, 11 x Ve Ar A, G, I 18948, 22365
256. Rhipocephalus phoenix (J. Ellis & Solander) Kützing 3 x Ve R A, G, I, K 21349
257. R. phoenix f. longifolius A. Gepp & E. Gepp 4, 6 x x Ve Ve Ar A, E, K 18959, 22366
Cladophorales
Anadyomenaceae
258. Anadyomene stellata (Wulfen) C. Agardh 4, 9, 10 x x x Ve Ve Ve R, Pm A, B, D, E, F, G, I, K 19972, 21377, 21378, 22176, 22903, 24327, 25460, 25461
Boodleaceae
259. Boodlea composita (Harvey) F. Brand 2, 8 x x Sv Sv R A 27013, 27014
260. Cladophoropsis fasciculata (Kjellman) Wille 8 x Sv R NRV A 27015
261. C. membranacea (Bang ex C. Agardh) Børgesen 2, 5, 10, 11 x x Sv Sv R A, E, G, I, K 22221, 23522, 25472, 25473, 27016
262. C. macromeres W.R. Taylor 4, 8 x x Sv Sv R A, G, I, K 21244, 21557, 25471
263. Phyllodictyon anastomosans (Harvey) Kraft & M.J. Wynne 2, 8, 11 x x Ve Sv R A, K 21623, 24217
Cladophoraceae
264. Chaetomorpha aerea (Dillwyn) Kützing 2, 3, 7, 9, 11 x x Ve Ve R A, D, E, G, I, K, L 21239, 21356, 21362, 21613, 22197, 22197, 22966, 25518
265. C. antennina (Bory) Kützing 1, 2, 3, 4, 5, 7, 9, 10, 11 x x x Ve Ve Ve R A, E, F, G, I, K, L, M 19823, 20987, 21234, 21238, 21267, 21305, 21455, 21612, 21740, 22196, 22195, 22198, 23437, 24281, 24282, 24335, 25523, 27032, 27033, 27034
266. C. brachygona Harvey 7, 11 x Ve R A, B, D, G, I, K 21588
267. C. clavata Kützing 2 x Ve A, G, K 26213
268. C. gracilis Kützing 2, 5 x Ve Epi/Sw A, G, I, L 25557, ChV-A03
269. C. ligustica (Kützing) Kützing 5 x Ve Epi/Sw A, G, K 27035
270. C. linum (O.F. Müller) Kützing 2, 7 x Ve Epi/Sw A, G, I, K 22199
271. C. minima F.S. Collins & Hervey 9, 11 x x Ve Ve Epi/Sw A, K 22198, 25630
272. C. nodosa Kützing 1, 2, 5 x x Ve Ve R, Pm NRV A 21737, 25468, 25524, 26828
273. C. tortuosa (Dillwyn) Kleen 1, 2, 7 x x Ve R, Epi/Sw NRV A, E, F, G, I, K 21451, 23514, 27036
274. C. vieillardii (Kützing) M.J. Wynne 2 x Ve Epi/Sw A, K 21452
275. Cladophora albida (Nees) Kützing 2, 4 x Ve R A, K 21578, 21822
276. C. aokii Yamada 2 x Ve R NRV A 25527
277. C. catenata Kützing 8 x Ve R A, G 27037
278. C. coelothrix (Hudson) Kützing 2 x Ve R A, G 25528
279. C. crispula Vickers 2, 10 x Ve R, Epi/Sw NRVL A 21819, 24351
280. C. crucigera Grunow 2, 3, 7 x x Ve Ve R A, K 21224 22201 22964
281. C. dalmatica Kützing 2 x Zp R A, G, I, K, M 25529
282. C. flexuosa (O.F. Müller) Kützing 4, 10   x x   Ve Ve R   A, D, G, I, K, M 21366, 23491
283. C. fracta (O.F. Müller ex Vahl) Kützing 4 x     Ve     R   A, K 22206
284. C. glomerata var. crassior (C. Agardh) Hoek 2, 4, 8, 9, 10 x Zp R, Pm A, B 19711, 19732, 24287, 25531
285. C. hutchinsiae (Dillwyn) Kützing 2, 7, 10 x x x Zp Zp Ve R A, K 20846, 22202, 21358, 23169
286. C. laetevirens (Dillwyn) Kützing 2, 5, 6, 8, 9 x x x Ve Ve Ve R A, K 21403, 22915, 24283, 25532, 25533, 25534, 25536
287. C. lehmanniana (Lindenberg) Kützing 2, 3, 8 x Ve R A, K 21750, 24223, 26815, 21624
288. C liebetruthii Grunow in Piccone 2, 4 x Ve R A, K 24192
289. C. liniformis Kützing 2 x Ve R A, K 21359
290. C. prolifera (Roth) Kützing 2, 4, 8 x x Ve Ve R, Pm A, E, G, I, K, L 21360, 22200, 22411, 24337, 25538
291. C. sericea (Hudson) Kützing 2, 3, 4, 5, 7, 8, 9, 10, 11 x x x Ve Ve Zp R A, K 20595, 20843, 21355, 21390, 21430, 21636, 21821, 22218, 22220, 22914, 23170, 24193, 25539, 26816
292. C. vagabunda (L.) Hoek 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11 x x x Zp Ve Ve R, Pm A, B, D, E, F, G, I, K, L 12558, 20605, 21285, 21292, 21327, 21361, 21400, 21426, 21432, 21575, 21583, 21641, 21708, 22204, 22965, 23438, 23515, 24338, 25543, 25547, 25549, 27041, 27043
293. Rhizoclonium riparium (Roth) Harvey 2, 5, 6, 8, 9, 10, 11 x x x Ve Ve Ve Epi/Sw, Epi/Th A, E, F, G, I, M 21266, 21414, 21824, 22535, 23462, 23513, 24194, 24225, 24375, 25536, 25544, 25553, 25555, 25556, 25557, 26056, 26828, 27075
294. Willeella brachyclados (Montagne) M.J. Wynne 1, 2, 4, 5, 7, 8, 9, 10 x x x Zp Zp Zp R, Pm A, B, D, G, I, K 19825, 19826, 20974, 21376, 21680, 23512, 24226, 25559, 25560, 25561, 25562, 27043, 27044
Siphonocladaceae
295. Dictyosphaeria cavernosa (Forsskål) Børgesen 4 x x Ve Ve R A, B, G, I, K, M 19980, 21781
296. D. ocellata (M.A. Howe) Olsen-Stojkovich 4, 5, 10 x x Ve Ve R A, F, G, I, K 24212, 24382, 27047
Dasycladaceae
297. Cymopolia barbata (L.) J.V. Lamouroux 3, 4, 5, 6, 9 x x x Gm Gm Gm R A, B, D, E, G, I, K, L, M 19044, 20974, 21263, 21579, 23502, 21552, 24346, 24347, 25581
Polyphysaceae
298. Parvocaulis polyphysoides (P.L. Crouan & H.M. Crouan) S. Berger, U. Fettweiss, S. Gleissberg, L.B. Liddle, U. Richter, H. Sawitzky & G.C. Zuccarello 6 x x Gm Gm R, Ez A, G, I, K 19673, 20578
Ulotrichales
Ulotrichaceae
299. Ulothrix flacca (Dillwyn) Thuret 2, 9 x x Ve Ve Epi/Sw A, G, I 10450, 22197
300. Urospora penicilliformis (Roth) Areschoug 2 x Esp R A, K 21246
Ulvales
Kornmanniaceae
301. Blidingia marginata (J. Agardh) P.J.L. Dangeard ex Bliding 2, 6 x Ve R A, K, J 21222, 22289
302. B. minima (Nägeli ex Kützing) Kylin 5, 7, 11 x Ve R, Epi/Sw A, G, I 14405, 21351, 24346
Phaeophilaceae
303. Phaeophila dendroides (P.L. Crouan & H.M. Crouan) Batters 2, 3, 4, 5, 6, 8, 9, 10, 11 x x Ve Ve Epi/Sw A, G, K 0987, 21192, 21292, 22433, 22965, 24366, 25560, 25562
Ulvaceae
304. Ulva chaetomorphoides (Børgesen) Hayden, Blomster, Maggs, P.C. Silva, M.J. Stanhope & J.R. Waaland 2, 5, 9 x x Ve Ve Epi/Sw, Epi/Th A, K 21263, 25630
305. U. clathrata (Roth) C. Agardh 11 x Ve R, Ez A, C, G, I, K 22343
306. U. compressa L. 2, 3, 5, 6, 7, 8, 10, 11 x x x Ve Ve Ve R, Ez, Epi/ Th A, D, G, I, K 21233, 21294, 21371, 21382, 21384, 21648, 21714, 22342, 22537, 22979, 23449, 24197, 24323, 26112, 26113, 26114, 27049
307. U. flexuosa Wulfen 1, 2, 3, 5, 6, 7, 8, 9, 10 x x x Ve Ve Ve R, Ez A, B, D, E, G, I, K, L, M 21105, 21373, 21392, 21396, 21398, 21429, 21568, 21629, 21713, 21824, 22350, 22375, 22951, 27051, 27052, 27121
308. U. intestinalis L. 2, 3, 4, 6, 7, 8, 11 x x x Zp Ve Zp R, Ez A, D, G, I, K 19969, 21387, 22344, 22540, 23701, 24316, 24319, 26116, 26118, 26119
309. U. lactuca L. 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11 x x x Zp Ve Zp R, Pm, Ez A, B, E, F, G, I, K, L, M 10452, 20841, 21021, 21249, 21385, 21540, 21715, 21789, 22354, 22357, 23447, 23450, 24386, 27053, 27054
310. U. linza L. 6, 7, 11 x x Ve Ve R A, G, K 14259, 21101, 22346
311. U. paradoxa C. Agardh 1, 2, 11 x x Ve Ve R, Epi/Sw NRV A, D 22348, 27058, ChV-21-C, 27122
312. U. profunda W.R. Taylor 6, 8 x x Ve Ve R A 21282, 21395, 21397, 24213
313. U. prolifera O.F. Müller 1 x Ve R A, E 21453
314. U. rigida C. Agardh 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11 x x x Esp Ve Ve R, Pm, Ez, Epi/Sw, Epi/Th A, E, G, I, K, M 18530, 19739, 21372, 21388, 21824, 22347, 22361, 22539, 22957, 22982, 23460, 23462, 24234, 24235, 24317, 24387, 24388, 24389, 24390, 26114, 26120, 26125, 27061, 27062
Ulvellaceae
315. Ulvella lens P.L. Crouan & H.M. Crouan 1, 2, 5, 8, 9, 10 x x Ve Ve Epi/Sw A, E, F, G, I 21634, 22965, 24281, 24284, 25562
316. U. viridis (Reinke) R. Nielsen, C.J. O'Kelly & B. Wysor 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 10 x   x Zp   Ve Epi/Sw   A, K 20987, 21368, 21560, 21573, 22205, 25519, 25545

Recibido: 06 de Febrero de 2024; Revisado: 07 de Marzo de 2024; Aprobado: 28 de Mayo de 2024; Publicado: 12 de Junio de 2024

2Autor para la correspondencia: luzmcyd@gmail.com

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