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<journal-title><![CDATA[Revista mexicana de ciencias pecuarias]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización molecular de Mycobacterium avium subespecie paratuberculosis en bovinos y ovinos de Mexicali, Baja California, México]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The present study is the first report of the isolation and molecular typing of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis (Map) in cattle and sheep in Mexicali-Baja California; region with serological history of paratuberculosis in small ruminants. In this study, 5 blood samples of sheep and 1 from cattle showing signs sugestive of paratuberculosis were analyzed; serology results showed positive reaction to the Map ELISA with a reason s/p greater than 70 % for all samples. Fecal culture was also performed, three isolates were obtained , two from sheep and one from cattle, all were identified as Map according to the PCR IS900 and f57 and typified as type C on Map, by testing PCR IS1311 and analysis of endonucleases of restriction (IS1311 PCR-REA). The data obtained in this study confirmed the presence of Map in this region and contribute to the knowledge of its distribution within the country; in addition, confirms the presence of Map type C in cattle and sheep. More studies involving a larger number of animals, as well as the inclusion of techniques that allow for the subtyping of Map are require to learn about the biodiversity of this Mycobacterium in Baja California.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Notas de investigaci&oacute;n</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Caracterizaci&oacute;n molecular de <i>Mycobacterium avium</i> subespecie <i>paratuberculosis</i> en bovinos y ovinos de Mexicali, Baja California, M&eacute;xico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Molecular characterization of <i>Mycobacterium avium</i> subspecies <i>paratuberculosis</i> from sheep and cattle in Mexicali, Baja California, Mexico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Magnolia Correa Mu&ntilde;oz<sup>a</sup>, Gerardo Medina Basulto<sup>a</sup>, Tomas Renter&iacute;a Evangelista<sup>3</sup>, Francisco Monge Navarro<sup>a</sup>, V&iacute;ctor Gonz&aacute;lez Vizcarra<sup>a</sup>, Gilberto L&oacute;pez Valencia<sup>a</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>a</sup> Instituto de Investigaciones en Ciencias Veterinarias, Aut&oacute;noma de Baja California M&eacute;xico. Carretera Mexicali&#45;San Felipe Km. 3.5 S/N Fracc. Laguna Campestre 21386. Mexicali, Baja California, M&eacute;xico. Tel/Fax: (686)5.63.69.06.</i> <a href="mailto:gilbertolopez@uabc.edu.mx">gilbertolopez@uabc.edu.mx</a><i>. Correspondencia al &uacute;ltimo autor.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el 20 de septiembre de 2012.    <br> 	Aceptado el 8 de febrero de 2013.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este es el primer reporte sobre aislamiento y tipificaci&oacute;n molecular de <i>Mycobacterium avium</i> subespecie <i>paratuberculosis</i> (<i>Map</i>) en ganado bovino y ovino en Mexicali&#45;Baja California; regi&oacute;n con antecedentes serol&oacute;gicos de paratuberculosis en peque&ntilde;os rumiantes. Se analizaron cinco muestras de ovinos y uno de bovino provenientes de animales que presentaban signos compatibles con paratuberculosis. Los resultados de serolog&iacute;a mostraron reacci&oacute;n positiva al ELISA con una raz&oacute;n S/P (densidad &oacute;ptica (DO) del suero problema sobre la DO del suero testigo positivo), superior al 70 % en tres de las muestras de ovinos y la de bovino. Mediante el cultivo bacteriol&oacute;gico se obtuvieron tres aislamientos, dos de origen ovino y uno de origen bovino, los cuales fueron identificados como <i>Map</i> seg&uacute;n la PCR IS900 y f57 y tipificados como Tipo C de Map, mediante el ensayo de PCR IS 1311 y an&aacute;lisis de endonucleasas de restricci&oacute;n (IS1311 PCR&#45;REA). Los datos obtenidos en este estudio confirman la presencia de <i>Map</i> en la regi&oacute;n, y contribuyen al conocimiento de su distribuci&oacute;n en el pa&iacute;s, as&iacute; como tambi&eacute;n confirman la presencia del tipo C de <i>Map</i> en el ganado bovino y ovino; sin embargo se requiere de m&aacute;s estudios que incluyan una mayor cantidad de animales, as&iacute; como la inclusi&oacute;n de t&eacute;cnicas que permitan la subtipificaci&oacute;n de Map, para conocer acerca de la biodiversidad de esta micobacteria en Baja California.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Mycobacterium avium,</i> Subspecie <i>paratuberculosis,</i> Aislamientos, Cepas tipo C.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The present study is the first report of the isolation and molecular typing of <i>Mycobacterium avium</i> subspecies paratuberculosis (Map) in cattle and sheep in Mexicali&#45;Baja California; region with serological history of paratuberculosis in small ruminants. In this study, 5 blood samples of sheep and 1 from cattle showing signs sugestive of paratuberculosis were analyzed; serology results showed positive reaction to the Map ELISA with a reason s/p greater than 70 % for all samples. Fecal culture was also performed, three isolates were obtained , two from sheep and one from cattle, all were identified as Map according to the PCR IS900 and f57 and typified as type C on Map, by testing PCR IS1311 and analysis of endonucleases of restriction (IS1311 PCR&#45;REA). The data obtained in this study confirmed the presence of Map in this region and contribute to the knowledge of its distribution within the country; in addition, confirms the presence of Map type C in cattle and sheep. More studies involving a larger number of animals, as well as the inclusion of techniques that allow for the subtyping of Map are require to learn about the biodiversity of this <i>Mycobacterium</i> in Baja California.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>Mycobacterium avium,</i> Subespecie paratuberculosis, Isolates, Strains C.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Mycobacterium avium</i> subspecie <i>paratuberculosis</i> (<i>Map</i>) es el agente etiol&oacute;gico de la enfermedad de Johne o paratuberculosis (Ptb), la cual ocasiona una enteritis granulomatosa cr&oacute;nica que causa p&eacute;rdidas econ&oacute;micas a la industria pecuaria<sup>(1)</sup>. Fenot&iacute;picamente los aislamientos de <i>Map</i> se distinguen por la lentitud en su crecimiento, la dependencia a la micobactina<sup>(2)</sup> y por la pigmentaci&oacute;n que es t&iacute;pica s&oacute;lo de algunos aislamientos de origen ovino<sup>(3)</sup>. Para la identificaci&oacute;n de <i>Map</i> a nivel genot&iacute;pico se utiliza la secuencia de inserci&oacute;n IS<i>900</i> (IS900)<sup>(4)</sup>, la cual junto con el resultado positivo de otros blancos espec&iacute;ficos de <i>Map</i> como f57<sup>(5)</sup>, confirman su presencia en un aislamiento. Por otro lado, las diferencias genot&iacute;picas encontradas en las cepas de Map, han sido utilizadas para caracterizarlas en dos grandes grupos: Tipo bovino o Tipo "C" del ingl&eacute;s <i>cattle</i> y Tipo ovino o Tipo "S", del ingl&eacute;s sheep<sup>(6)</sup>. Aunque la t&eacute;cnica m&aacute;s utilizada para la tipificaci&oacute;n de <i>Map</i> ha sido el ensayo de los Polimorfismos de longitud de fragmentos de restricci&oacute;n, basado en IS900 (IS900&#45;RFLP)<sup>(7)</sup>. Otras t&eacute;cnicas como la PCR y el an&aacute;lisis de enzimas de restricci&oacute;n basado en los polimorfismos de la secuencia de inserci&oacute;n <i>1311 (IS1311</i> PCR&#45;REA)<sup>(8,9)</sup>, proporciona un m&eacute;todo f&aacute;cil y r&aacute;pido para distinguir entre los dos grandes grupos de las cepas de <i>Map.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico, existen pocos estudios moleculares de identificaci&oacute;n y tipificaci&oacute;n de Map; la primera identificaci&oacute;n molecular se realiz&oacute; en caprinos, por medio del ensayo IS<i>900</i>&#45;RFLP en el Valle de M&eacute;xico<sup>(10)</sup>. Este estudio revel&oacute; la presencia de <i>Map</i> del Tipo C1, uno de los tipos m&aacute;s diseminados a nivel mundial entre las diferentes especies de animales<sup>(7)</sup>. Investigaciones posteriores realizadas en muestras de leche de ganado caprino y bovino en la zona central de M&eacute;xico, encontraron que adem&aacute;s del Tipo C otros tipos de <i>Map</i> como el I y el S tambi&eacute;n estaban presentes en estas especies<sup>(11)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La Ptb tambi&eacute;n ha sido detectada en otras regiones del pa&iacute;s como: San Luis Potos&iacute;, Guanajuato, Quer&eacute;taro, Distrito Federal, Estado de M&eacute;xico, Veracruz y Jalisco; en donde por medio de metodolog&iacute;as como cultivo bacteriol&oacute;gico, PCR IS<i>900</i> y PCR IS<i>900</i> anidada, se identific&oacute; <i>Map</i> en muestras de ovinos y caprinos<sup>(12,13)</sup>. Aunque en estos estudios no se realiz&oacute; la tipificaci&oacute;n de <i>Map,</i> sus resultados indican que la Ptb en M&eacute;xico est&aacute; afectando a rumiantes de diferentes especies. De igual manera, otro reporte documenta la presencia de la Ptb en ganado bovino, ovino y caprino en 16 estados del pa&iacute;s<sup>(14)</sup>, indicando la amplia distribuci&oacute;n de la enfermedad en el territorio nacional. En Baja California, estado fronterizo con los Estados Unidos no se cuenta con estudios previos sobre aislamientos y caracterizaci&oacute;n molecular de <i>Map.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo del presente estudio fue evidenciar la presencia de <i>Map</i> en ganado bovino y ovino en el Municipio de Mexicali, Baja California y realizar la caracterizaci&oacute;n molecular de las cepas encontradas. Se muestrearon cinco ovejas de 2 a&ntilde;os de edad, con cr&iacute;as en lactancia y con signos compatibles con la Ptb de un reba&ntilde;o dedicado a la venta de pie de cr&iacute;a ubicado al noroeste de la ciudad de Mexicali, Baja California. El mencionado reba&ntilde;o hist&oacute;ricamente ha mostrado animales con signos compatibles con la Ptb desde el 2009. El estudio tambi&eacute;n incluy&oacute; una muestra de una vaca Holstein, gestante, de 3 a&ntilde;os de edad, y que tambi&eacute;n presentaba signos compatibles con la Ptb. Esta &uacute;ltima muestra se tom&oacute; de un hato dedicado a la venta de pie de cr&iacute;a de bovinos ubicado al oriente de la ciudad de Mexicali, Baja California.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A todos los animales se les tomaron muestras de sangre completa por punci&oacute;n yugular y excremento directamente del &aacute;mpula rectal, empleando guantes est&eacute;riles. Las muestras fueron almacenadas a &#45;70 &deg;C, hasta su procesamiento. Las muestras de suero obtenidas se probaron por medio del kit comercial Pourquier&reg;ELISA Paratuberculosis Antiboy Screening (Institut Pourquier, Francia). Para el desarrollo de la prueba y la interpretaci&oacute;n de los resultados, se siguieron las instrucciones del fabricante. Los puntos de corte para cada muestra se calcularon con base en la raz&oacute;n de la densidad &oacute;ptica (DO) del suero problema sobre la DO del suero testigo positivo, y se expresa como S/P. Una muestra con una raz&oacute;n S/P igual o menor al 60 % se consider&oacute; negativa, entre el 60 y 70 % dudosa y mayor al 70 % positiva. La muestra obtenida del bovino se proces&oacute; de forma individual mientras que las muestras provenientes de los ovinos se procesaron en dos grupos: el grupo 1 conten&iacute;a excremento de los ovinos 1 y 2, los cuales presentaban emaciaci&oacute;n severa: el grupo 2 conten&iacute;a excremento de los ovinos 3, 4 y 5, los cuales al momento de la toma de las muestras presentaban caquexia (<a href="/img/revistas/rmcp/v4n4/a6c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Para cada grupo se pesaron 2 g de excremento individualmente, se homogenizaron y de ah&iacute; se tomaron 2 g para la realizaci&oacute;n del cultivo bacteriol&oacute;gico, seg&uacute;n la metodolog&iacute;a descrita por Harris <i>et</i> <i>al</i><sup>(15)</sup>; con una modificaci&oacute;n relacionada con la concentraci&oacute;n del antibi&oacute;tico, el cual se utiliz&oacute; en una diluci&oacute;n de 1:2. Las muestras procesadas se sembraron por duplicado en los medios de cultivo Middlebrook 7H11 (M7H11) suplementado con yema de huevo, Lowenstein&#45;Jensen (LJ) y Middlebrook 7H9 (M7H9); con y sin suplemento de 2 ug/ml de micobactina (Institut Pourquier). Los in&oacute;culos se incubaron a 37 &deg;C y su crecimiento se verific&oacute; cada semana hasta la observaci&oacute;n de colonias. Despu&eacute;s del crecimiento primario, se aisl&oacute; una colonia que se diluy&oacute; en 150 &#956;l de agua destilada est&eacute;ril y fue sometida a ciclos seriados de enfriamiento y calentamiento para la obtenci&oacute;n de un lisado, del cual se utilizaron 5 &#956;l para las reacciones de amplificaci&oacute;n<sup>(16)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La identificaci&oacute;n de <i>Map</i> se realiz&oacute; empleando los marcadores moleculares <i>IS900</i> y f57 y la tipificaci&oacute;n por medio del an&aacute;lisis IS<i>1311</i> PCR&#45;REA. Todas las reacciones de PCR se hicieron a un volumen final de 50 ul utilizando como testigo positivo la cepa referencia de <i>Map</i> ATCC19698 y como testigo negativo agua grado biolog&iacute;a molecular (SIGMA). Las mezclas de PCR se amplificaron en un termociclador iCycler (BioRad). Los productos se visualizaron en geles de agarosa al 2% y te&ntilde;idos con bromuro de etidio a una concentraci&oacute;n final de 0.5 &#956;g/ml. Para la PCR IS900 se utilizaron los iniciadores MP10&#45;1 (5'&#45; ATGCGCCACGACTTGCAGCCT&#45;3') y MP11.1 (5'&#45;GGCACGGCTCTTGTTGTAGTCG&#45;3'); descritos por Kawaji <i>et</i> <i>al</i><sup>(17)</sup> que amplifican un fragmento de 183 pb. La mezcla consisti&oacute; de: 1U de <i>Taq</i> polimerasa, 20 mM Tris&#45;HCl, 50 mM de KCl, 2.5 mM de MgCl<sub>2</sub>, 2.5 mM de una mezcla de dNTP's y 20 pmol de cada iniciador. Las condiciones de amplificaci&oacute;n fueron las descritas por el autor<sup>(17)</sup>. Se llev&oacute; a cabo tambi&eacute;n un PCR para f57, para el cual se utilizaron los iniciadores F57 (5'&#45;CCTGTCTAATTCGATCACGGACTAGA&#45;3') y R57 (5'&#45; TCAGCTATTGGTGT ACCGAATGT&#45;3'); descritos por Vansnick <i>et</i> <i>al</i><sup>(5)</sup> que amplifican un fragmento de 432 pb. La mezcla consisti&oacute; de: 1 U de <i>Taq</i> polimerasa, 20 mM Tris&#45;HCl, 50 mM de KCl, 1.6 mM de MgCl<sub>2</sub>, 2.0 mM de una mezcla de dNTP's y 20 pmol de cada iniciador. Las condiciones de la amplificaci&oacute;n fueron las descritas por el autor<sup>(5)</sup>. La tipificaci&oacute;n de los aislados se llev&oacute; a cabo por medio de un PCR IS<i>1311,</i> para el cual se utilizaron los iniciadores M56 (5'&#45;GCGTGAGGC TCTGTGGTG AA&#45;3') y M119 (5'&#45;ATGACGACCGCTTGGGAGAC&#45;3'); descritos por Marsh <i>et al</i><sup>(9)</sup> que amplifican un fragmento de 608 pb. La mezcla consisti&oacute; de: 2 U de <i>Taq</i> polimerasa, 20 mM Tris&#45;HCl, 50 mM de KCl, 2.5 mM de MgCl<sub>2</sub>, 2.0 mM de una mezcla de dNTP's y 0.8 uM de cada iniciador. Las condiciones de la amplificaci&oacute;n fueron las indicadas por el autor<sup>(9)</sup>. El an&aacute;lisis de restricci&oacute;n enzim&aacute;tica se realiz&oacute; en un volumen final de 30 &#956;l, el cual consisti&oacute; de 1 &#956;l de la enzima <i>Hinf</i> I, 2.0 &#956;l del buffer <i>FastDigest&reg;10X</i> (Fermentas), 10 ul del amplificado IS<i>1311</i> y agua destilada est&eacute;ril. La digesti&oacute;n se realiz&oacute; por 1 h a 37 &deg;C y los fragmentos se visualizaron por electroforesis en gel de agarosa al 3.5 % y tinci&oacute;n con bromuro de etidio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La interpretaci&oacute;n de los resultados se realiz&oacute; seg&uacute;n lo reportado por Marsh<sup>(9)</sup>, donde un aislado es clasificado como perteneciente al Tipo C, si presenta un patr&oacute;n de digesti&oacute;n correspondiente a los fragmentos de 67, 218, 285 y 323 pb. Las cepas del tipo S son definidas por las bandas de 285 y 323 pb.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los seis animales analizados en este estudio presentaban s&iacute;ntomas compatibles con la Ptb al momento de la toma de las muestras (<a href="/img/revistas/rmcp/v4n4/a6c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). El an&aacute;lisis por ELISA mostr&oacute; que los ovinos 1, 2 y 4 as&iacute; como el bovino, resultaron positivos con una raz&oacute;n S/P superior al 70 %. Los ovinos 3 y 5 fueron negativos al ELISA al mostrar una raz&oacute;n S/P menor al 70 %. El cultivo primario obtenido a partir del grupo 1, no creci&oacute; en ninguno de los medios s&oacute;lidos utilizados. Debido a lo anterior, se procedi&oacute; a la identificaci&oacute;n de <i>Map</i> por PCR a partir del cultivo l&iacute;quido M7H9 suplementado con micobactina. Una vez confirmada la presencia de <i>Map</i> por PCR, se inocul&oacute; una placa de petri con medio Middlebrook 7H10 (M7H10) con y sin suplemento de micobactina, observ&aacute;ndose un escaso crecimiento de colonias (ocho colonias) solamente en el medio que conten&iacute;a micobactina, despu&eacute;s de cinco semanas de incubaci&oacute;n. Las colonias en este medio presentaron morfolog&iacute;as hemisf&eacute;ricas, lisas y opacas. El aislamiento obtenido a partir del grupo 2 creci&oacute; &uacute;nicamente en el medio M7H11 suplementado con micobactina; el tiempo de crecimiento fue de seis semanas, el n&uacute;mero de colonias bacterianas aisladas fue escaso (12 colonias) de color semejante al medio de cultivo y con morfolog&iacute;a similar a las observadas en el grupo 1. El aislamiento de la muestra de origen bovino, se obtuvo s&oacute;lo en el medio LJ suplementado con micobactina, despu&eacute;s de seis semanas de cultivo; sin embargo a diferencia de los aislados de origen ovino, estas colonias se observaron transl&uacute;cidas, brillantes, muy peque&ntilde;as, hemisf&eacute;ricas, abundantes y distribuidas en toda la superficie del medio.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La identificaci&oacute;n molecular de <i>Map</i> en los tres aislamientos se realiz&oacute; mediante la PCR <i>IS900</i> y f57, a partir de una sola colonia. Para el caso del grupo 1, la identificaci&oacute;n de <i>Map</i> se realiz&oacute; tanto del cultivo primario en medio M7H9 como de una colonia obtenida posteriormente en el medio M7H10 suplementado con micobactina. Los resultados de las PCR IS900 y f57 fueron positivos para todos los casos, confirm&aacute;ndose la presencia de <i>Map</i> en los tres aislamientos (<a href="/img/revistas/rmcp/v4n4/a6c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). La tipificaci&oacute;n de los aislamientos identificados como <i>Map,</i> se realiz&oacute; por medio del ensayo <i>IS1311</i> PCR&#45;REA, el cual nos permiti&oacute; identificar el polimorfismo presente en el nucle&oacute;tido 223 caracter&iacute;stico de las cepas tipo C y ausente en las cepas del tipo S (<a href="#f1">Figura 1</a> y <a href="/img/revistas/rmcp/v4n4/a6c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>)<sup>(9,10)</sup>.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcp/v4n4/a6f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados aqu&iacute; mostrados son el primer reporte de aislamientos y tipificaci&oacute;n de <i>Map</i> en el Municipio de Mexicali Baja California, regi&oacute;n en donde se ha encontrado una seroprevalencia del 7.8 % en ganado ovino y del 2.5 % en ganado caprino<sup>(18)</sup>. Los animales muestreados en este estudio pertenec&iacute;an a distintos ranchos, los cuales presentaban factores de riesgo para la infecci&oacute;n por <i>Map</i> tales como ser hatos abiertos, tener antecedentes de animales con signos compatibles con la Ptb, malas condiciones de higiene en los corrales y la convivencia de animales enfermos con sanos dentro del mismo corral. Adicionalmente, estos animales eran hembras en las cuales estaba comprometido su estado hormonal debido a que se encontraban en estado de gestaci&oacute;n o ten&iacute;an cr&iacute;as en lactancia. Dichas condiciones de estr&eacute;s, han sido reportadas como favorables para la aparici&oacute;n de los signos cl&iacute;nicos de la Ptb, los cuales en bovinos suelen presentarse a los 2 a&ntilde;os mientras que para peque&ntilde;os rumiantes estos s&iacute;ntomas pueden aparecer antes de esta edad<sup>(19,20)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis serol&oacute;gico, mostr&oacute; resultados positivos para las muestras del bovino y tres de los cinco ovinos, con razones S/P superiores al 70 %. Los animales que presentaron los t&iacute;tulos m&aacute;s altos de anticuerpos se encontraban en avanzado estado de la enfermedad. Los ovinos que resultaron negativos al ELISA, no presentaban emaciaci&oacute;n ni la presencia de excremento pastoso observado en los otros animales; es posible que estos animales no se encontraran infectados por <i>Map</i> y la caquexia observada pudo haber sido ocasionada por causas no determinadas; sin embargo se debe tener en cuenta la baja sensibilidad del ELISA cuando se prueban muestras de animales que est&aacute;n en estadio subcl&iacute;nico de la enfermedad, as&iacute; como tambi&eacute;n la variabilidad del hu&eacute;sped relacionada con la producci&oacute;n de anticuerpos y prote&iacute;nas enterop&aacute;ticas en respuesta a la infecci&oacute;n por <i>Map</i><sup>(21,22)</sup><i>.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los cultivos bacteriol&oacute;gicos de origen ovino presentaron mayores dificultades para lograr el aislamiento comparado con el cultivo de origen bovino. Inicialmente, no se logr&oacute; obtener crecimiento alguno en los cultivos de muestras individuales de excremento ovinas. La dificultad en aislar <i>Map</i> a partir de excremento ovino ha sido reportada por otros estudios<sup>(23,24)</sup>, donde factores tales como bajas concentraciones de micobacterias excretadas, la presencia de ac&uacute;mulos densos de excremento<sup>(23)</sup> o la inactivaci&oacute;n de <i>Map,</i> durante el proceso de descontaminaci&oacute;n, pueden interferir con la obtenci&oacute;n del aislamiento. En la b&uacute;squeda de condiciones que favorecieran el crecimiento bacteriano, se redujo en un 50 % la concentraci&oacute;n del antibi&oacute;tico aplicado a las muestras durante el procesamiento de las mismas y se tom&oacute; la mayor cantidad posible de materia fecal por lo cual se conformaron grupos. Es posible que estas modificaciones pudieran haber influido positivamente en la obtenci&oacute;n de los aislamientos de <i>Map</i> de origen ovino<sup>(25,26)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con respecto a los cultivos primarios de <i>Map,</i> se observ&oacute; que los tres aislamientos presentaron dependencia a la micobactina. El aislamiento primario obtenido en el grupo 1 se logr&oacute; solo en el medio de cultivo l&iacute;quido M7H9. Este tipo de medio ha sido recomendado particularmente para muestras de origen ovino debido a que producen crecimiento m&aacute;s r&aacute;pido con una mejor sensibilidad anal&iacute;tica y diagn&oacute;stica, comparado con los resultados obtenidos en medio s&oacute;lido<sup>(24,27,28)</sup>. Despu&eacute;s de identificar <i>Map</i> por PCR en el medio de cultivo l&iacute;quido, realizamos una resiembra en medio 7H10, observ&aacute;ndose crecimiento de colonias solamente en el medio suplementado con micobactina, comprob&aacute;ndose as&iacute; la dependencia a dicho sider&oacute;foro.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El aislamiento primario obtenido a partir del grupo 2, se logr&oacute; solamente en el medio de cultivo M7H11 y el aislamiento de origen bovino, en el medio LJ. En ambos casos, se detect&oacute; crecimiento de colonias a las seis semanas de incubaci&oacute;n. Los medios de cultivo de donde se aislaron y el tiempo de crecimiento, son caracter&iacute;sticos de las cepas del tipo C de <i>Map;</i> comprob&aacute;ndose el hecho de que el tiempo de crecimiento de una cepa de <i>Map,</i> se correlaciona con el tipo de cepa, mas no con el origen del hu&eacute;sped<sup>(29)</sup>. Igualmente la morfolog&iacute;a de las colonias observadas en el medio de cultivo en donde creci&oacute; cada aislamiento, coinciden con las descripciones reportadas por otros estudios<sup>(29)</sup>. La utilizaci&oacute;n de medios s&oacute;lidos y l&iacute;quidos, nos permiti&oacute; aumentar la posibilidad de obtener cultivos primarios, lo cual concuerda con lo reportado anteriormente por Whinttington <i>et</i> <i>al</i><sup>(30)</sup>, quienes propusieron que para asegurar el &eacute;xito de los cultivos de <i>Map</i> se deben incluir varios tipos de medios de cultivo, ya que de lo contrario se estar&iacute;a afectando la sensibilidad diagn&oacute;stica de los mismos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La identificaci&oacute;n de <i>Map,</i> realizada mediante la PCR IS<i>900</i> y f57, fue necesaria para confirmar la presencia de MAP, ya que se pueden encontrar elementos similares a IS<i>900</i> (IS<i>900&#45;</i>like) en otras micobacterias<sup>(31)</sup>, lo cual podr&iacute;a conducir a la obtenci&oacute;n de resultados falsos positivos<sup>(5)</sup>. De igual manera, el an&aacute;lisis de tipificaci&oacute;n realizado mediante el ensayo IS<i>1311</i> PCR&#45;REA, permiti&oacute; clasificar a los tres aislamientos como tipo C de <i>Map;</i> cepa que ha mostrado tener un amplio rango de hu&eacute;spedes. En distintos estudios de tipificaci&oacute;n molecular de <i>Map</i> realizados en otras regiones de M&eacute;xico, tambi&eacute;n se ha encontrado este tipo de cepa en ganado caprino y bovino<sup>(10,11)</sup>. En estos estudios se utilizaron metodolog&iacute;as de tipificaci&oacute;n diferentes a la empleada en este trabajo, como IS900&#45;RFLP y PCR tipo espec&iacute;fico. El ensayo IS<i>1311</i> PCR&#45;REA permite tambi&eacute;n tipificar a las cepas de <i>Map.</i> La amplificaci&oacute;n de un fragmento de 608 pb de IS<i>1311</i> combinado con el an&aacute;lisis de restricci&oacute;n enzim&aacute;tica con <i>Hinfl,</i> pone de manifiesto la mutaci&oacute;n presente en el nucle&oacute;tido 223 (C/T), presente en algunas copias de IS<i>1311</i> en cepas del tipo C y ausente en las del tipo S<sup>(8,9)</sup>. Aunque los tipos C y S obtenidos mediante esta t&eacute;cnica corresponden con los descritos por IS<i>900</i>&#45;RFLP<sup>(8)</sup>, IS<i>1311</i> PCR&#45;REA no permite subtipificar a las cepas de <i>Map.</i> La subtipificaci&oacute;n de <i>Map,</i> es importante ya que nos permite el rastreo del origen de un brote y su diseminaci&oacute;n, as&iacute; como otras inferencias epidemiol&oacute;gicas<sup>(6)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se envi&oacute; DNA de los aislados al Instituto Nacional de Tecnolog&iacute;a Agropecuaria (INTA) en Argentina, quienes, seg&uacute;n la metodolog&iacute;a reportada por Thibault <i>et</i> <i>al</i><sup>(32)</sup> llevaron a cabo un ensayo de unidades repetitivas intercaladas micobacterianas &#45; repeticiones en t&aacute;ndem de n&uacute;mero variable (MIRU&#45;VNTR). Como resultado se obtuvo un patr&oacute;n INMV2 solamente para el aislamiento de origen bovino, mientras que para los dos aislamientos de origen ovino los resultados no fueron concluyentes, ya que solamente en uno de ellos se pudieron amplificar algunos de los locus que contempla la prueba de tipificaci&oacute;n (A.K. Gioffr&eacute;, comunicaci&oacute;n personal). En M&eacute;xico, no se conocen estudios de genotipificaci&oacute;n de <i>Map</i> por medio de esta t&eacute;cnica; sin embargo distintos reportes muestran que es uno de los patrones predominantes que circulan en varios pa&iacute;ses de Europa y tambi&eacute;n en Argentina<sup>(32,33)</sup>. Por lo tanto este resultado indicar&iacute;a que al menos, uno de los genotipos m&aacute;s frecuentes est&aacute; presente en el pa&iacute;s.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados presentados en este estudio confirman la presencia del tipo C de <i>Map</i> en el ganado bovino y ovino en la regi&oacute;n; sin embargo, no se descarta la presencia de otros tipos de <i>Map.</i> Lo anterior hace necesario el desarrollo de m&aacute;s estudios con la inclusi&oacute;n de t&eacute;cnicas adicionales de subtipificaci&oacute;n como IS<i>900</i> RFLP o MIRU&#45;VNTR y la incorporaci&oacute;n de una mayor cantidad de animales tanto dom&eacute;sticos como silvestres, para lograr un mejor conocimiento acerca de la biodiversidad de <i>Map,</i> las din&aacute;micas de transmisi&oacute;n y las fuentes de infecci&oacute;n en esta regi&oacute;n fronteriza.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se agradece a la Dra. Andrea Gioffr&eacute; del Instituto Nacional de Tecnolog&iacute;a Agropecuaria (INTA) de Buenos Aires Argentina, por la realizaci&oacute;n del an&aacute;lisis MIRU&#45;VNTR. Durante el desarrollo de este estudio, el primer autor fue estudiante de doctorado con beca CONACYT, correspondiente a la Convocatoria enero&#45;junio 2009.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Harris NB, Barletta RG. <i>Mycobacterium avium</i> subsp. <i>paratuberculosis</i> Veterinary Medicine. Clin Microbiol Rev 2001;14:489&#45;512.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147461&pid=S2007-1124201300040000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Cocito C, Gilot P, Coene M, de Kesel M, Poupart P, Vannuffel P. Paratuberculosis. Clin Microbiol Rev 1994;7(3):328&#45;45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147463&pid=S2007-1124201300040000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Stevenson K, Hughes VM, de Juan L, Inglis NF, Wright F, Sharp JM. Molecular characterization of pigmented and nonpigmented isolates of <i>Mycobacterium avium</i> subsp. <i>paratuberculosis.</i> J Clin Microbiol 2002;40:1798&#45;1804.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147465&pid=S2007-1124201300040000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Collins DM, Gabric DM, De Lisle GW. Identification of a repetitive DNA sequence specific to <i>Mycobacterium paratuberculosis. FEMS</i> Microbiol <i>Letters</i> 1989;51:175e 178.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147467&pid=S2007-1124201300040000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Vansnick E, De Rijk P, Vercammen F, Geysen D, Rigouts L, Portaels F. Newly developed primers for the detection of <i>Mycobacterium avium</i> subspecies <i>paratuberculosis.</i> Vet Microbiol 2004;100:197&#45;204.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147469&pid=S2007-1124201300040000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Collins DM, Gabric DM, de Lisle GW. Identification of two groups of <i>Mycobacterium paratuberculosis</i> strains by restriction endonuclease analysis and DNA hybridization. J Clin Microbiol 1990;28(7):1591&#45;1596.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147471&pid=S2007-1124201300040000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Pavlik I, Horvathova A, Dvorska l, Bartl J, Svastova P, de Maine R, <i>et al.</i> Standardisation of restriction fragment length polymorphism analysis for <i>Mycobacterium avium</i> subspecies <i>paratuberculosis.</i> J Microbiol Methods 1999;38:155&#45;167.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147473&pid=S2007-1124201300040000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Whittington RJ, Marsh I, Choy E, Cousins D. Polymorphisms in <i>IS1311,</i> an insertion sequence common to <i>Mycobacterium avium</i> and <i>M. avium</i> subsp. <i>paratuberculosis,</i> can be used to distinguish between and within these species. Mol Cell Prob 1998;12:349&#45;358.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147475&pid=S2007-1124201300040000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Marsh I, Whittington RJ, Cousins D. PCR&#45;restriction endonuclease analysis for identification and strain typing of <i>Mycobacterium avium</i> subsp. <i>paratuberculosis</i> and <i>Mycobacterium avium</i> subsp. <i>avium</i> based on polymorphisms in <i>IS1311.</i> Mol Cell Prob 1999;13:115&#45;126.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147477&pid=S2007-1124201300040000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Ch&aacute;vez&#45;Gris GG, Trigo&#45;Tavera FJ, Svastova P, Pavlik I. Genetic polimorphism identification from <i>Mycobacterium avium</i> subspecie <i>paratuberculosis</i> in goats in Central Mexico. Vet Mex 2004;35:75&#45;82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147479&pid=S2007-1124201300040000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Favila&#45;Humara LC, Ch&aacute;vez&#45;Gris GG, Carrillo&#45;Casas EM, Hern&aacute;ndez&#45;Castro R. <i>Mycobacterium avium</i> subsp. <i>paratuberculosis</i> detection in Individual and bulk tank milk samples from bovine herds and caprine flocks. Foodborne Pathog Dis 2010;7(4):351&#45;355.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147481&pid=S2007-1124201300040000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Est&eacute;vez&#45;Denaives I, Hern&aacute;ndez&#45;Castro R, Trujillo&#45;Garc&iacute;a AM, Ch&aacute;vez&#45;Gris GG. Detection of <i>Mycobacterium avium</i> subsp. <i>Paratuberculosis</i> in goat and sheep flocks in Mexico. Small Rumin Res 2007;72:209&#45;213.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147483&pid=S2007-1124201300040000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Jaimes NG, Santill&aacute;n MA, Hern&aacute;ndez OA, C&oacute;rdova D, Guzm&aacute;n CC, Arellano B, <i>et al.</i> Detection of <i>Mycobacterium avium</i> subspecies <i>paratuberculosis</i> by nested&#45;PCR of ovine fecal samples. Vet Mex 2008;39(4):377&#45;386.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147485&pid=S2007-1124201300040000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Consejo T&eacute;cnico Consultivo Nacional de Salud Animal (CONASA). Plan estrat&eacute;gico del programa para la atenci&oacute;n de la paratuberculosis en ganado bovino, ovino y caprino en M&eacute;xico. 2010 &#91;en l&iacute;nea&#93; <a href="http://www.conasamexico.org.mx/conasa/pdf/" target="_blank">http://www.conasamexico.org.mx/conasa/pdf/</a>. Consultado 27 jul, 2012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147487&pid=S2007-1124201300040000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Harris B, Robbe&#45;Austerman S, Dykema P, Fett K, Stuber T, Stokes K. Laboratory Methods for isolation and identification of <i>Mycobacterium avium</i> spp. <i>paratuberculosis</i> (Johne's Disease). Manual for isolation and identification of <i>Mycobacterium paratuberculosis.</i> USDA; 2009.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147489&pid=S2007-1124201300040000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Garrido JM, Cortabarria N, Oguiza JA, Aduriz G y Juste RA. Use of a PCR method on fecal samples for diagnosis of sheep paratuberculosis. Vet Microbiol 2000;77:379&#45;86.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147491&pid=S2007-1124201300040000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Kawaji S, Taylor DL, Mori Y, Whittington RJ. Detection of <i>Mycobacterium avium</i> subsp. <i>paratuberculosis</i> in ovine faeces by direct quantitive PCR has similar or greater sensitivity compared to radiometric culture. Vet Microbiol 2007;125(1&#45;2):36&#45;48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147493&pid=S2007-1124201300040000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Correa MMM, Rodr&iacute;guez CJL, L&oacute;pez VG, Renter&iacute;a ETB, Hori&#45;Oshima S. "Seroprevalence of paratuberculosis in small ruminants in Mexicali, Baja California". VII Simposio Fronteras del Conocimiento en Tuberculosis y otras Micobacteriosis "Dr. Joseph Colston". VTTB02. Hermosillo, Sonora. 26&#45;30 marzo, 2012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147495&pid=S2007-1124201300040000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Chiodini RJ, Van Kruiningen HJ, Merkal RS. Ruminant paratuberculosis (Johne's disease): The current status and future prospects. Cornell Vet 1984;74:218&#45;62.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147497&pid=S2007-1124201300040000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Garc&iacute;a&#45;Mar&iacute;n JF, P&eacute;rez V, Garc&iacute;a de Jal&oacute;n JA, De las Heras M, Barber&aacute; M, Fern&aacute;ndez de Luco D, <i>et al.</i> Diagn&oacute;stico de casos cl&iacute;nicos de paratuberculosis ovina y caprina. Med Vet 1994;11(9):491&#45;502.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147499&pid=S2007-1124201300040000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Gumber S, Eamens G, Whittington RJ. Evaluation of a Pourquier ELISA kit in relation to agar gel immunodiffusion (AGID) test for assessment of the humoral immune response in sheep and goats with and without Mycobacterium paratuberculosis infection. Vet Microbiol 2006;115(1&#45;3):91&#45;101.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147501&pid=S2007-1124201300040000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Attili AR, Ngu&#45;Ngwa V, Preziuso S, Pacifici L, Domesi A, Cuteri V. Ovine Paratuberculosis: A seroprevalence study in dairy flocks reared in the Marche Region, Italy. Vet Med Int 2011;2011:782&#45;875.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147503&pid=S2007-1124201300040000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Collins DM, Hilbink F, West DM, Hosie BD, Cooke MM, de Lisle GW. Investigation of <i>Mycobacterium paratuberculosis</i> in sheep by faecal culture, DNA characterization and the polymerase chain reaction. Vet Rec 1993;133:599&#45;600.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147505&pid=S2007-1124201300040000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. Whittington RJ, Marsh I, Mcallister S, Turner MJ, Marshall DJ, Fraser CA. Evaluation of modified BACTEC 12B radiometric medium and solid media for the culture of <i>Mycobacterium avium</i> subsp. <i>Paratuberculosis</i> from sheep. J Clin Microbiol 1999;37:10771083.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147507&pid=S2007-1124201300040000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Whittington RJ, Fell S, Walker D, McAllister S, Marsh I, Sergeant E, <i>et al.</i> Use of pooled fecal culture for sensitive and economic detection of <i>Mycobacterium avium</i> subsp. <i>paratuberculosis</i> infection in flocks of sheep. J Clin Microbiol 2000;38:2550&#45;2556.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147509&pid=S2007-1124201300040000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. Kalis CH, Hesselink JW, Barkema HW, Collins MT. Culture of strategically pooled bovine fecal samples as a method to screen herds for paratuberculosis. J Vet Diagn Invest 2000;12:547&#45;551.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147511&pid=S2007-1124201300040000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27. Cousins DV, Evans RJ, Francis BR. Use of BACTEC radiometric culture method and polymerase chain reaction for the rapid screening of faeces and tissues for <i>Mycobacterium paratuberculosis.</i> Aust Vet J 1995;72:458&#45;462.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147513&pid=S2007-1124201300040000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28. Eamens GJ, Whittington RJ, Marsh IB, Turner MJ, Saunders V, Kemsley PD, <i>et al.</i> Comparative sensitivity of various faecal culture methods and ELISA in dairy cattle herds with endemic Johne's disease. Vet Microbiol 2000;77:357&#45;367.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147515&pid=S2007-1124201300040000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29. de Juan L, &Aacute;lvarez J, Romero B, Bezos J, Castellanos E, Aranaz A, <i>et al.</i> Comparison of four different culture media for isolation and growth of type II and type I/III <i>Mycobacterium avium</i> subsp. <i>paratuberculosis</i> strains isolated from cattle and goats. Appl Environ Microbiol 2006;72(9):5927&#45;32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147517&pid=S2007-1124201300040000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30. Whittington RJ. Factors Affecting Isolation and Identification of <i>Mycobacterium avium</i> subsp. <i>paratuberculosis</i> from fecal and tissue samples in a liquid culture system. J Clin Microbiol 2009;47(3):614&#45;622.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147519&pid=S2007-1124201300040000600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">31. Englund S, Bolske G, Johansson KE. An IS900&#45;like sequence found in a Mycobacterium sp. other than <i>Mycobacterium avium</i> subsp. <i>paratuberculosis. FEMS</i> Microbiol Lett 2002; 209:267&#45;271.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147521&pid=S2007-1124201300040000600031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">32. Thibault VC, Grayon M, Boschiroli ML, Hubbans C, Overduin P, Stevenson K, <i>et al.</i> New variable&#45;number tandem&#45;repeat markers for typing <i>Mycobacterium avium</i> subsp. <i>paratuberculosis</i> and <i>M. avium</i> strains: comparison with <i>IS900</i> and <i>IS1245</i> restriction fragmentlength polymorphism typing. J Clin Microbiol 2007;45:2404&#45;10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147523&pid=S2007-1124201300040000600032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">33. Gioffr&eacute; A, Correa M, Alvarado&#45;Pinedo MF, Montenegro V, Vaca J, Morsella C, <i>et al.</i> Exploiting multiple&#45;locus variable number tandem repeat analysis to evaluate strain diversity of <i>M. avium</i> complex in Argentina. Proc 11th International Colloquium on Paratuberculosis. 2012:264.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8147525&pid=S2007-1124201300040000600033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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