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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Influencia de micorrizas arbusculares Glomus spp. En el crecimiento y acumulación de cobre en girasol Helianthus annuus L.]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The copper (Cu) mining activity in Chile generates large amounts of toxic wastes that pollute soils; an alternative to recuperate these soils is to use mycorrhizae, soil microorganisms adapted to this condition, to inoculate plant roots. The objective of this study was to determine the influence of arbuscular mycorrhizae (AM) of the Glomus spp. genus on the growth and accumulation of Cu in sunflower (Helianthus annuus L.). In the Aconcagua River basin, central Chile, soil samples polluted by Cu were collected; soils 1 and 2 of the Catemu Valley and soil 3 of the Puchuncaví Valley. In these soils, inoculated (M+) and not inoculated (M-) with AM sunflower seeds were planted. After 50 d, dry biomass was measured, as well as mycorrhizal colonization and Cu concentration in the plant tissues. The soils presented a sandy-loam texture and were characterized by 3.5 to 12.8 % of organic matter, pH 6.7 to 6.9, total Cu 382 to 7678 mg kg -1, and Cu available 72 to 574 mg kg -1. The greatest growth of plants occurred in M+ treatments (p&#8804;0.05) as compared to their M- witnesses. There was a significant decrease (p&#8804; 0.05) in colonization (67, 32 and 58 %) when increasing the Cu in the soil and M+ plants presented a higher capacity to accumulate Cu (285-697 mg kg -1) in the three soils as compared to their M witnesses. The Cu accumulation was higher in the root than in the aerial tissue. It is concluded that the AMs (Glomus spp.) contributed to the growth and accumulation of Cu in sunflower, favoring the processes of soil recuperation.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[fitoestabilización y Helianthus annuus L]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Agua&#45;suelo&#45;clima</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Influencia de micorrizas arbusculares <i>Glomus</i> spp. En el crecimiento y acumulaci&oacute;n de cobre en girasol <i>Helianthus annuus</i> L.</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Influence of arbuscular mycorrhizal <i>Glomus</i> spp. On growth and accumulation of copper in sunflower <i>Helianthus annuus</i> L.</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Paulina A. Casta&ntilde;&oacute;n&#45;Silva<sup>1</sup>, Michael A. Venegas&#45;Urrutia<sup>1</sup>, Mar&iacute;a G. Lobos&#45;Valenzuela<sup>2</sup>, Hern&aacute;n J. Gaete&#45;Olivares<sup>1,3</sup></b>*</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Depto. Biolog&iacute;a y Ciencias Ambientales, Facultad de Ciencias, Universidad de Valpara&iacute;so. Av. Gran Breta&ntilde;a 1111, Playa Ancha, Valpara&iacute;so, Chile.</i></font></p>          ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Depto. Qu&iacute;mica y Bioqu&iacute;mica, Facultad de Ciencias, Universidad de Valpara&iacute;so. Av. Gran Breta&ntilde;a 1111, Playa Ancha, Valpara&iacute;so, Chile.</i></font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>3</i></sup><i> Centro de Investigaci&oacute;n y Gesti&oacute;n de Recursos Naturales CIGREN, Facultad de Ciencias, Universidad de Valpara&iacute;so. Av. Gran Breta&ntilde;a 1111, Playa Ancha, Valpara&iacute;so, Chile.</i> <i>*Autor responsable. </i>(<a href="mailto:castanon.paulina@gmail.com">castanon.paulina@gmail.com</a>) (<a href="mailto:mvenegas.mv@gmail.com">mvenegas.mv@gmail.com</a>) (<a href="mailto:hernan.gaete@uv.cl">hernan.gaete@uv.cl</a>) (<a href="mailto:gabriela.lobos@uv.cl">gabriela.lobos@uv.cl</a>).</font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: enero, 2012.    <br> 	Aprobado: abril, 2013.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad minera del cobre (Cu) en Chile genera grandes cantidades de desechos t&oacute;xicos que contaminan los suelos; una alternativa para recuperar estos suelos es utilizar micorrizas, microorganismos del suelo adaptados a esta condici&oacute;n para inocular las ra&iacute;ces de las plantas. El objetivo del presente estudio fue determinar la influencia de micorrizas arbusculares (MA) del g&eacute;nero Glomus spp. en el crecimiento y la acumulaci&oacute;n de Cu de girasol (Helianthus annuus L.). En la cuenca del r&iacute;o Aconcagua, Chile central, se recolectaron muestras de suelo contaminados con Cu; los suelos 1 y 2 del Valle de Catemu y el suelo 3 del Valle de Puchuncav&iacute;. En esos suelos, inoculados (M<sup>+</sup>) y no inoculados (M<sup>&#45;</sup>) con MA se sembraron semillas de girasol. A los 50 d se midi&oacute; la biomasa seca, colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica y concentraci&oacute;n de Cu en los tejidos de las plantas. Los suelos presentaron una textura franco&#45;arenosa, 3.5&#45;12.8 % materia org&aacute;nica, pH 6.7&#45;6.9, Cu total 382&#45;7678 mg kg <sup>&#45;1</sup>, y Cu disponible 72&#45;574 mg kg <sup>&#45;1</sup>. El mayor crecimiento de las plantas se present&oacute; en los tratamientos M<sup>+</sup> (p&#8804;0.05) respecto a sus testigos M<sup>&#45;</sup> . Hubo una disminuci&oacute;n significativa (p&#8804; 0.05) en la colonizaci&oacute;n (67, 32 y 58 %) al aumentar el Cu en el suelo y las plantas M<sup>+</sup> presentaron mayor capacidad para acumular Cu (285&#45;697 mg kg <sup>&#45;1</sup>) en los tres suelos respecto a sus testigos M<sup>&#45;</sup> . La acumulaci&oacute;n de Cu fue mayor en la ra&iacute;z que en el tejido a&eacute;reo. Se concluye que las MA (Glomus spp.) contribuyen al crecimiento y la acumulaci&oacute;n de Cu en girasol y favoreciendo los procesos de recuperaci&oacute;n de suelos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica, fitoestabilizaci&oacute;n y <i>Helianthus annuus</i> L.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The copper (Cu) mining activity in Chile generates large amounts of toxic wastes that pollute soils; an alternative to recuperate these soils is to use mycorrhizae, soil microorganisms adapted to this condition, to inoculate plant roots. The objective of this study was to determine the influence of arbuscular mycorrhizae (AM) of the <i>Glomus</i> spp. genus on the growth and accumulation of Cu in sunflower <i>(Helianthus annuus</i> L.). In the Aconcagua River basin, central Chile, soil samples polluted by Cu were collected; soils 1 and 2 of the Catemu Valley and soil 3 of the Puchuncav&iacute; Valley. In these soils, inoculated (M<sup>+</sup>) and not inoculated (M<sup>&#45;</sup>) with AM sunflower seeds were planted. After 50 d, dry biomass was measured, as well as mycorrhizal colonization and Cu concentration in the plant tissues. The soils presented a sandy&#45;loam texture and were characterized by 3.5 to 12.8 % of organic matter, pH 6.7 to 6.9, total Cu 382 to 7678 mg kg <sup>&#45;1</sup>, and Cu available 72 to 574 mg kg <sup>&#45;1</sup>. The greatest growth of plants occurred in M<sup>+</sup> treatments (p&#8804;0.05) as compared to their M<sup>&#45;</sup> witnesses. There was a significant decrease (p&#8804; 0.05) in colonization (67, 32 and 58 %) when increasing the Cu in the soil and M<sup>+</sup> plants presented a higher capacity to accumulate Cu (285&#45;697 mg kg <sup>&#45;1</sup>) in the three soils as compared to their M witnesses. The Cu accumulation was higher in the root than in the aerial tissue. It is concluded that the AMs <i>(Glomus</i> spp.) contributed to the growth and accumulation of Cu in sunflower, favoring the processes of soil recuperation.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> mycorrhizal colonization, phytostabilization and <i>Helianthus annuus</i> L.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los suelos agr&iacute;colas cercanos a las actividades mineras en la cuenca del r&iacute;o Aconcagua, en Chile central, se caracterizan por presentar concentraciones altas de metales entre los que destaca el cobre (&Aacute;vila <i>et al.,</i> 2010), que proviene de las emisiones de material part&iacute;culado de la fundici&oacute;n y refiner&iacute;a Ventana, en concentraciones de 104 a 530 mg Cu kg<sup>&#45;1</sup> (De Gregori <i>et al.</i> 2003). El cobre (Cu) es un nutriente esencial pero en altas concentraciones puede ser t&oacute;xico para la biota animal y vegetal asociada al suelo (Adriano, 2001). Por tanto, hay inter&eacute;s creciente por manejar estos suelos, reducir el riesgo ecol&oacute;gico y recuperar las zonas impactadas. Entre las alternativas de manejo de estos suelos destaca la fitorremediaci&oacute;n para lo cual se usa un grupo de plantas metal&oacute;filas (Pollard <i>et al.,</i> 2002), que pueden crecer en suelos con metales. Estas plantas poseen mecanismos espec&iacute;ficos que les permiten acumular m&aacute;s de 1000 mg kg<sup>&#45;</sup><sup>1</sup> de Cu sin presentar s&iacute;ntomas visibles de toxicidad (Lasat, 2000), por lo que son una alternativa para recuperar suelos contaminados por actividades mineras (Ginocchio y Baker, 2004).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto acumulador de algunas plantas puede ser potenciado con el uso de microorganismos del suelo, como las micorrizas arbusculares (MA), que est&aacute;n estrechamente relacionados con las ra&iacute;ces de las plantas (Novoa <i>et al.,</i> 2010). El efecto en la tolerancia y la acumulaci&oacute;n de metales que tienen las MA depende de las propiedades f&iacute;sicas y qu&iacute;micas de los suelos y el tipo de planta hospedera (Chen <i>et al.,</i> 2007). El girasol <i>(Helianthus annuus</i> L.) es un rizofiltrador potencial de cadmio, n&iacute;quel, cobre, cinc, cromo, plomo y radiois&oacute;topos; adem&aacute;s es micotr&oacute;fica del g&eacute;nero <i>Glomus</i> spp. (Davies <i>et al.,</i> 2001) y absorbe metales en mayor cantidad en sus ra&iacute;ces que en sus brotes (Christie <i>et al.,</i> 2004). Por tanto, el objetivo de este estudio fue determinar la influencia de MA del g&eacute;nero <i>Glomus</i> spp. sobre el crecimiento y la acumulaci&oacute;n de Cu en plantas de girasol creciendo en suelos agr&iacute;colas cercanos a la actividad minera en la cuenca del r&iacute;o Aconcagua.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para este experimento se recolectaron tres muestras de suelo en zonas agr&iacute;colas con actividad minera de cobre en las localidades de Catemu (suelo 1 y suelo 2; Valle Catemu) y Puchuncav&iacute; (suelo 3; Valle Puchuncav&iacute;), en la cuenca del r&iacute;o Aconcagua, Regi&oacute;n de Valpara&iacute;so, Chile. Las muestras de suelo fueron compuestas, se tomaron de suelo superficial (hasta 20 cm de profundidad) 20 kg por muestra, y se transportaron en bolsas pl&aacute;sticas al laboratorio de Ecotoxicolog&iacute;a y Medio Ambiente de la Universidad de Valpara&iacute;so. Las muestras se secaron en estufa (modelo LDO&#45;150N, Labtech Hebro, Santiago, Chile) a 40 &deg;C por 24 h (Sadzawka <i>et al.,</i> 2006). Para evitar la presencia de MA nativas u otros microorganismos que pudieran interferir en el experimento y alterar las mediciones, los suelos se esterilizaron 20 min, en autoclave, durante 2 d (Novoa <i>et al;</i> 2010).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las propiedades f&iacute;sicas y qu&iacute;micas de los suelos se determinaron en triplicado: 1) textura por el m&eacute;todo del hidr&oacute;metro simplificado de acuerdo con Sheldrick y Wang (1993); 2) porcentaje de materia org&aacute;nica (MO) por el m&eacute;todo de calcinaci&oacute;n en mufa a 550 &deg;C y diluci&oacute;n con &aacute;cido clorh&iacute;drico (HCl) (Sadzawka <i>et al.,</i> 2007); 3) concentraci&oacute;n de f&oacute;sforo (P) disponible por el m&eacute;todo de Olsen mediante una extracci&oacute;n con una soluci&oacute;n de bicarbonato de sodio 0.5 N a pH 8.5; 4) P en el extracto por espectroscop&iacute;a de absorci&oacute;n molecular con el m&eacute;todo de azul de metileno y con &aacute;cido asc&oacute;rbico como reductor (Sadzawka <i>et al.,</i> 2006); 5) pH con un potenci&oacute;metro digital (modelo Q&#45;400m2, QUIMIS, Diadema, Sao Paulo, Brasil) seg&uacute;n la metodolog&iacute;a de Jackson (1964); 6) concentraci&oacute;n total y disponible de Cu mediante espectroscop&iacute;a de emisi&oacute;n at&oacute;mica con plasma acoplado inductivamente (ICP) (modelo AES OPTIMA 2000 DV, Perkin Elmer&reg;, EE.UU.); 7) digesti&oacute;n de suelos para determinar de Cu total se realiz&oacute; con una mezcla de &aacute;cidos y oxidantes (HNO3, HCl, H2O2 y HOO4) (Sadzawka <i>et al.,</i> 2005), y esta metodolog&iacute;a fue validada con Material de Referencia Certificado (Montana Soil NIST 2710 y San Joaqu&iacute;n Soil NIST 2709, EE.UU.); 8) Cu disponible se determin&oacute; luego de la extracci&oacute;n desde el suelo con &aacute;cido die&#45;tilentriam&iacute;n pentac&eacute;tico (0.05M DTPA+0.01MCaCl<sub>2</sub>+0.1M trietanolamina, a pH 7.3) con 2 h de agitaci&oacute;n con movimiento rec&iacute;proco (Lindsay y Norvell, 1978).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El experimento se realiz&oacute; entre julio y diciembre del 2010 y en agosto del 2010 se sembraron semillas de girasol desinfectadas (80 % germinaci&oacute;n), marca Vilmorin, e inoculadas con MA comerciales (MYCOSYM TRI&#45;TON&reg; de MYCOSYM International Company AG de producci&oacute;n en M&aacute;laga, Espa&ntilde;a, con oficinas comerciales en Basilea, Suiza), un producto granular compuesto principalmente de arcilla, como material portador. El dise&ntilde;o experimental fue de bloques al azar con base en los tratamientos M<sup>+</sup> y M<sup>&#45;</sup>. En cada uno de los tres suelos se aplicaron dos tratamientos: inoculados (M<sup>+</sup> ) y no inoculados (M<sup>&#45;</sup>) con MA, con cuatro repeticiones cada uno. Se usaron envases de pl&aacute;stico de 1.5 kg y en cada uno se agreg&oacute; 1 kg de suelo y tres semillas de girasol; la unidad experimental fue las tres plantas germinadas de cada envase de pl&aacute;stico. En los tratamientos M<sup>+</sup> se agregaron 3 g de in&oacute;culo de MA alrededor de las semillas. Las condiciones experimentales fueron de invernadero: temperatura ambiente (25 &deg;C&plusmn;2), 50 % humedad relativa (&plusmn;2 %) y fotoperiodo 14 h luz y 10 h oscuridad. Los riegos se hicieron cada 2 d con 22 mL de agua potable para cada unidad experimental (Ginocchio y Narv&aacute;ez, 2002). Una vez por semana en cada planta se midi&oacute;: altura, di&aacute;metro del tallo y n&uacute;mero de hojas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las plantas de girasol se cosecharon en la etapa fen&oacute;logica principio de floraci&oacute;n (a los 50 d), se lavaron con agua potable, se sumergieron en una soluci&oacute;n de HCl 0.1 mol L<sup>&#45;</sup><sup>1</sup> y se enjuagaron con agua desionizada (Sadzawka <i>et al.,</i> 2007). Despu&eacute;s fueron secadas 48 h en estufa (modelo LDO&#45;150N, Labtech Hebro, Santiago de Chile) a 60 &deg;C, se pesaron en una balanza anal&iacute;tica (modelo AAA SERIES L, Adam Equipment, EE.UU.) (Ginocchio y Narv&aacute;ez, 2002) y se determin&oacute; la biomasa seca a&eacute;rea (hoja y tallo) y radical. El porcentaje de colonizaci&oacute;n mico&#45;rr&iacute;zica se evalu&oacute; cortando fragmentos de 1 cm de ra&iacute;z secundaria de las plantas de girasol M<sup>+</sup> (reci&eacute;n cosechadas). Estas ra&iacute;ces se clarificaron en hidr&oacute;xido de potasio (KOH) al 2.5 % p:v<sup>&#45;</sup><sup>1</sup>, se lavaron con HCl 1 % para eliminar los excesos de KOH y se ti&ntilde;eron con azul tripano 0.05 % p:v<sup>&#45;</sup><sup>1</sup> (Phillips y Hayman, 1970). Las ra&iacute;ces te&ntilde;idas se distribuyeron al azar en una placa petri cuadriculada y el porcentaje de colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica se evalu&oacute; con un microscopio estereosc&oacute;pico (modelo StemiDV4, Zeiss, Nueva York, EE.UU.) seg&uacute;n el m&eacute;todo de intercepci&oacute;n de l&iacute;nea (Giovanetti y Mosse, 1980). La concentraci&oacute;n de Cu total en los tejidos a&eacute;reos y radicular de las plantas de girasol, M<sup>+</sup> y M<sup>&#45;</sup>, se determin&oacute; mediante ICP (modelo AES OPTIMA 2000 DV, Perkin Elmer<sup>&reg;</sup>, EE.UU.). Para la digesti&oacute;n de los tejidos se us&oacute; una mezcla &aacute;cida&#45;oxidante (HNO<sub>3</sub>/H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>/ HClO<sub>4</sub>) (Sadzawka <i>et a</i>l., 2005). La metodolog&iacute;a para determinar Cu total en muestra vegetal fue validada con Material de Referencia Certificado (Virginia Tobacco Leaves CTA&#45;VTL&#45;2 y Spinach Leaves SRM 1570<sup>a</sup>, EE.UU.).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar las diferencias significativas entre los tratamientos M<sup>+</sup> y M se us&oacute; un ANDEVA de una v&iacute;a con la prueba de Tukey (p&#8804;0.05), y para determinar la relaci&oacute;n entre el Cu disponible y el Cu total se realiz&oacute; una correlaci&oacute;n lineal de Pearson. Estos an&aacute;lisis se realizaron con el programa minitab 15 (Minitab, State College, Pennsylvania, EE.UU.). Los resultados se muestran como media &plusmn; desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (DE).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los suelos presentaron textura franco&#45;arenosa (<a href="/img/revistas/agro/v47n4/a1c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>) y fueron clasificados como Entisoles (Soil Survey Staff, 1999). Al aumentar la MO la concentraci&oacute;n de Cu total y disponible disminuye en los suelos, lo cual se debe a la alta afinidad de la MO por los iones de Cu, disminuyendo su biodisponibilidad (Kabata&#45;Pendias y Pendias, 2000). El pH fue levemente &aacute;cido y al disminuir, el Cu total y disponible aument&oacute; en el suelo. La concentraci&oacute;n de P disponible fue mayor en los suelos 2 y 3 (66 y 48 mg kg<sup>&#45;</sup><sup>1</sup>) comparados con el suelo 1 (17 mg kg <sup>&#45;</sup><sup>1</sup>). De acuerdo con estos valores el suelo 1 presentar&iacute;a la mayor limitaci&oacute;n para el crecimiento de las plantas ya que el P es un factor limitante (S&aacute;nchez, 1976), pero seg&uacute;n la clasificaci&oacute;n de V&aacute;squez (1997) todos los suelos corresponder&iacute;an a clase alta (&gt;11 mg kg <sup>&#45;1</sup>). El Cu total en los suelos vari&oacute; de 382 a 7678 mg kg<sup>&#45;1</sup>, superando lo reportado por De Gregori <i>et al.</i> (2003) en el mismo sector (104530 mg kg <sup>&#45;</sup><sup>1</sup>), lo cual sugiere una acumulaci&oacute;n de Cu en el tiempo. Las concentraciones de Cu disponible variaron de 72 a 578 mg kg <sup>&#45;</sup><sup>1</sup>, correlacion&aacute;ndose significativamente con el Cu total (r = 0.95).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El in&oacute;culo de MA coloniz&oacute; el sistema radicular de las plantas en los tres suelos (<a href="#f1">Figura 1</a>). La colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica disminuy&oacute; a medida que aument&oacute; la concentraci&oacute;n de Cu en los suelos, lo cual podr&iacute;a deberse a un efecto inhibitorio del Cu que puede reducir el n&uacute;mero de esporas y la colonizaci&oacute;n de las ra&iacute;ces de las plantas (Leyval <i>et al.,</i> 2002). Estos resultados indican que las MA son tolerantes a concentraciones de 382 a 7678 mg kg <sup>&#45;</sup><sup>1</sup>.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v47n4/a1f1.jpg"></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las plantas de girasol de los tratamientos M<sup>+</sup> de los tres suelos presentaron mayor crecimiento (p&#8804;0.05) comparado con sus testigos; estos resultados son similares a los observados por Davies <i>et al.</i> (2001), quienes reportan mayores alturas, di&aacute;metros de tallos y n&uacute;mero de hojas en plantas de girasol M<sup>+</sup> . Las alturas y los di&aacute;metros de los tallos fueron menores en los suelos 2 y 3, lo cual se podr&iacute;a deber a que estos suelos presentaron las mayores concentraciones de Cu (<a href="/img/revistas/agro/v47n4/a1c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>), ya que seg&uacute;n Peralta <i>et al.</i> (2004), el Cu afecta el metabolismo de las plantas causando menor crecimiento. La bio&#45;masa seca a&eacute;rea y radical fue mayor (p&#8804;0.05) en los tratamientos M<sup>+</sup> (<a href="/img/revistas/agro/v47n4/a1c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>), lo cual es similar a lo encontrado por Novoa <i>et al.</i> (2010) quienes indican que la biomasa seca a&eacute;rea y radical fue mayor en alfalfa con MA del g&eacute;nero <i>Glomus</i> spp. Las plantas de girasol del suelo 1 presentaron el crecimiento mayor y la concentraci&oacute;n menor de P (17.1 mg kg <sup>&#45;</sup><sup>1</sup>) (<a href="/img/revistas/agro/v47n4/a1c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>), lo que pudo ayudar al crecimiento porque la adici&oacute;n de cantidades bajas de P es compatible e incluso complementaria con las MA en la estimulaci&oacute;n del crecimiento de las plantas (Saggin y Siqueria, 1996).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las concentraciones de Cu total en los tejidos de girasol variaron de 174 a 697 mg kg <sup>&#45;1</sup> (<a href="/img/revistas/agro/v47n4/a1c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>), lo que corresponde a concentraciones excesivas y t&oacute;xicas para cultivos agr&iacute;colas porque los intervalos permitidos de Cu en tejido vegetal para su normal crecimiento y desarrollo son 5 a 20 mg kg <sup>&#45;</sup><sup>1</sup> (Adriano, 2001). Las plantas de girasol M<sup>+</sup> presentaron la acumulaci&oacute;n mayor de Cu y es similar a lo reportado por Novoa <i>et al.</i> (2010), quienes indican absorciones mayores de Cu en plantas de alfalfa inoculadas con MA del g&eacute;nero <i>Glomus</i> spp. El an&aacute;lisis de los resultados sugiere que las MA favorecen la absorci&oacute;n de Cu por el girasol y adem&aacute;s disminuyen su paso al tejido a&eacute;reo fitoestabilizando el metal. Esta respuesta se puede atribuir a la funci&oacute;n de la simbiosis micorr&iacute;zica, porque las MA tienen como primera barrera dos mecanismos para hacer frente a las concentraciones altas de Cu: 1) su exudado denominado glomalina (prote&iacute;na producida por las MA) relacionada directamente con la concentraci&oacute;n de Cu en el suelo porque esta prote&iacute;na se acumula en mayor cantidad en ambientes con concentraciones de Cu altas y, adem&aacute;s, ayudar&iacute;a a atrapar los metales en la ra&iacute;z en 28 %; y 2) su pared celular (quitina) cargada negativamente, la cual adsorbe los metales en su superficie por diferencia de carga, restringiendo el movimiento del metal al tejido a&eacute;reo (Cornejo <i>et al.,</i> 2008).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El crecimiento mayor, en t&eacute;rminos de altura y biomasa, y la acumulaci&oacute;n de cobre hacen al girasol, en asociaci&oacute;n con MA del g&eacute;nero <i>Glomus</i> spp., una especie potencial para la recuperaci&oacute;n de suelos contaminados con Cu.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A Patricia D&iacute;az G. del Laboratorio de Qu&iacute;mica Ambiental del Departamento de Qu&iacute;mica y Bioqu&iacute;mica por el apoyo anal&iacute;tico. Al Centro de Investigaci&oacute;n y Gesti&oacute;n de Recursos Naturales CI&#45;GREN de la Universidad de Valpara&iacute;so y al Proyecto FONDECYT N&deg; 11080235.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adriano, D. C. 2001. Trace Elements in Terrestrial Environments: Biogeochemistry, Bioavailability, and Risks of Metals. 2<sup>nd</sup> ed. New York: Springer&#45;Verlag. 866 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576551&pid=S1405-3195201300040000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">&Aacute;vila, G., H. Gaete, M. E. Hidalgo, y A. Neaman. 2010. Evaluaci&oacute;n de la toxicidad de cobre en suelos a trav&eacute;s de biomarcadores de estr&eacute;s oxidativo en <i>eisenia foetida.</i> Quim. Nova 33 (3): 566&#45;570.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576553&pid=S1405-3195201300040000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chen, B., Y. Zhu, J. Duan, X. Xiao, and S. Smith. 2007. Effects of the arbuscular mycorrhizal fungus <i>Glomus mosseae</i> on growth and metal uptake by four plant species in copper mine tailings. Environ. Poll. 147: 374&#45;380.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576555&pid=S1405-3195201300040000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Christie, P., X. Li, and B. Chen. 2004. Arbuscular mycohrriza can depress translocation of zinc to shoots of host plants in soils moderately polluted with zinc. Plant Soil 261: 209&#45;217.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576557&pid=S1405-3195201300040000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cornejo, P., S. Meier, y F. Borie. 2008. Utilizaci&oacute;n de hongos micorr&iacute;zicos arbusculares comoalternativapara la recuperaci&oacute;n de suelos contaminados por actividad minera. Gesti&oacute;n Ambiental 16: 13&#45;26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576559&pid=S1405-3195201300040000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Davies, F. T., R. Puryear, D. Jeffrey, J. Newton, N. Egilla, and G. Saraiva. 2001. Mycorrhizal fungi enhance accumulation and tolerance of chromium in sunflower <i>(Helianthus annuus</i> L.). Plant Physiol. 158 (6): 777&#45;786.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576561&pid=S1405-3195201300040000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">De Gregori, I., E. Fuentes, M. Rojas, H. Pinochet, and M. Potin&#45;Gautier. 2003. Monitoring of copper, arsenic and antimony levels in agricultural soils impacted and non&#45;impacted by mining activities, from three regions in Chile. J. Environ. Monitor. 5: 287&#45;295.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576563&pid=S1405-3195201300040000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ginocchio, R., and A. Baker. 2004. Metallophytes in Latin America: A remarkable biological and genetic resource scarcely known and studied in the region. Rev. Chil. Hist. Nat. 77: 185&#45;194.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576565&pid=S1405-3195201300040000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ginocchio, R., y J. Narv&aacute;ez. 2002. Importancia de la forma qu&iacute;mica y la matriz del sustrato en la toxicidadpor el cobre en <i>Noticastrumsericeum</i> (Less.) Less. ex Phil. Rev. Chil. Hist. Nat. 75 (3): 603&#45;612.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576567&pid=S1405-3195201300040000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Giovanetti, M., and B. Mosse. 1980. An evaluation of techniques for measuring vesicular&#45;arbuscular mycorrhizal infection in roots. New Phytol. 84: 489&#45;500.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576569&pid=S1405-3195201300040000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jackson, M. L. 1964. An&aacute;lisis Qu&iacute;mico de Suelos. Ediciones Omega, Barcelona, Espa&ntilde;a. 633 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576571&pid=S1405-3195201300040000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kabata&#45;Pendias, A. S., and H. Pendais. 2000. Trace Elements in Soils and Plants. CRC Press, Ann Arbor, Michigan. 432 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576573&pid=S1405-3195201300040000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lasat, M. 2000. The use of plants for the removal of toxic metals from contaminated soil. American Association for the Advancement of Science, Environmental Science and Engineering Fellow, Washington, D.C., USA. 33 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576575&pid=S1405-3195201300040000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Leyval, C., E. Joner, and C. K. Del Val. 2002. Potencial of arbuscular mycorrhiza for bioremediation. Mycorrhiza 7 (2):175&#45;186.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576577&pid=S1405-3195201300040000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lindsay, W. L., and W. A. Norvell. 1978. Development of a DTPA soil test for zinc, iron, manganese and copper. Soil Sci. Soc. Amer. J. 42: 421&#45;428.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576579&pid=S1405-3195201300040000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Novoa, D., S. Palma, and H. Gaete. 2010. Effect of arbuscular mycorrhizal fungi glomus spp. inoculation on alfalfa growth in soils with copper. Chilean J. Agric. Res.70 (2): 259&#45;265.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576581&pid=S1405-3195201300040000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Peralta, J., G. De la Rosa, J. Gonz&aacute;lez, and J. Gardea. 2004. Effects of the growth stage on the heavy metal tolerance of alfalfa plants. Adv. Environ. Res. 8: 679&#45;685.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576583&pid=S1405-3195201300040000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Phillips, J. M., and D. S. Hayman. 1970. Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular&#45;arbuscular mycorrizal fungi for rapid assessment of infection. Trans. Br. Mycol. Soc. 55: 58&#45;161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576585&pid=S1405-3195201300040000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pollard, J. A., K. D. Powell, F. A. Harper, and J. A. C. Smith. 2002. The genetic basis of metal hyperaccumulation in plants. Critical Rev. Plant Sci. 21: 539&#45;566.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576587&pid=S1405-3195201300040000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sadzawka, A., M. A. Carrasco, R. Demanet, H. Flores, R. Grez, M. L. Mora, y A. Neaman. 2007. M&eacute;todos de an&aacute;lisis de tejidos vegetales. Segunda Edici&oacute;n. Instituto de Investigaciones Agropecuarias, Serie Acta N&deg; 40, Santiago de Chile. 13 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576589&pid=S1405-3195201300040000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sadzawka, A., M. A. Carrasco, R. Grez, M. L Mora, H. Flores, y A. Neaman. 2006. M&eacute;todos de An&aacute;lisis de Suelos Recomendados para los Suelos de Chile. Santiago: Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias. (INIA. Serie actas, 34). 164 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576591&pid=S1405-3195201300040000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sadzawka, A., M. Carrasco, R. Grez, y M.L. Mora. 2005. M&eacute;todos de an&aacute;lisis de compost. Santiago Chile: Instituto de Investigaciones Agropecuarias Centro Regional de Investigaci&oacute;n La Platina. Vol. Serie Actas INIA N&deg; 30. 142 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576593&pid=S1405-3195201300040000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Saggin J&uacute;nior, O. J., y J. O. Siqueira. 1996. Micorrizas arbusculares emcafeeiro. <i>In:</i> Siqueira, J. O. (ed). Avan&ccedil;osem Fundamentos e Aplica&ccedil;&atilde;o de Micorrizas. Lavras: Universidade Federal de Lavras. pp: 203&#45;254.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576595&pid=S1405-3195201300040000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">S&aacute;nchez, P. 1976. Properties and Management of Soil in the Tropic. John Wiley and Sons. New York. 220 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576597&pid=S1405-3195201300040000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sheldrick, B. H., and C. Wang. 1993. Soil sampling and methods of analysis. <i>In:</i> Carter, M. (ed). Particle Size Distribution. Canadian Society of Soil Science, Lewis Publishers, Boca Raton, Florida, USA. pp: 499&#45;511.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576599&pid=S1405-3195201300040000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Soil Survey Staff (Washington, USA). 1999. Soil Taxonomy: A Basic System of Soil Classification for Making and Interpreting Soil Surveys. Washington: U.S. Dept. of Agriculture, Natural Resources Conservation Service. 869 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576601&pid=S1405-3195201300040000100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">V&aacute;zquez, A. A. 1997. Gu&iacute;a para interpretar el an&aacute;lisis qu&iacute;mico del agua y suelo. Segunda edici&oacute;n. Departamento de Suelos. Universidad Aut&oacute;noma de Chapingo. M&eacute;xico. 29 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=576603&pid=S1405-3195201300040000100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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