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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The parasitoid Anagyrus kamali Moursi is used in biological control programs against Pink Hibiscus Mealybug (PHM) Maconellicoccus hirsutus (Green). However, detailed studies on its impact in field conditions are needed. This study evaluated natural and induced parasitism of A. kamali against PHM on teak shoots covered with organza sleeves under field conditions in Bahía de Banderas, Nayarit, México. The treatments were 1) exclusion of natural enemies, 2) natural parasitism, and 3) induced parasitism (A. kamali). The effect of the treatments was determined by recording the numbers of PHM nymphs, adult females and ovisacs as well as the number of parasitoid mummies 15 and 30 d after treatments were established. The parasitoid A. kamali regulated the population growth of PHM on the sprouts covered with organza sleeves under field conditions. The average reduction of the pest was 96.5 % in 30 d. Natural parasitism was negligible in regulating the pest and did not prevent its increase; this was attributed to interference of ants and to the negative impact of hyperparasitoids.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Protecci&oacute;n vegetal </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="4">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Parasitismo natural e inducido de <i>Anagyrus kamali </i> sobre la cochinilla rosada en brotes de teca, en Bah&iacute;a de Banderas, Nayarit</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b><font size="3">Natural and induced parasitism of <i>Anagyrus kamali</i> against pink hibiscus mealybug on teak shoots in Bahia de Banderas, Nayarit</font></b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>F&eacute;lix Garc&iacute;a&#150;Valente<sup>1</sup>, Laura D. Ortega&#150;Arenas<sup>1,*</sup> , H&eacute;ctor Gonz&aacute;lez&#150;Hern&aacute;ndez<sup>1</sup>, Juan A. Villanueva&#150;Jim&eacute;nez<sup>2</sup>, Jos&eacute; L&oacute;pez&#150;Collado<sup>2</sup> , Alejandro Gonz&aacute;lez&#150;Hern&aacute;ndez<sup>3</sup> , Hugo C. Arredondo&#150;Bernal<sup>4</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Entomolog&iacute;a, Campus Montecillo, Colegio de Postgraduados. 56230. Montecillo, Estado de M&eacute;xico. *Autor responsable:</i> (<a href="mailto:ladeorar@colpos.mx">ladeorar@colpos.mx</a>). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Agroecosistemas Tropicales, Campus Veracruz, Colegio de Postgraduados. 91700. Veracruz, Veracruz. </i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> Facultad de Ciencias Biol&oacute;gicas, Universidad Aut&oacute;noma de Nuevo Le&oacute;n. 66450. San Nicol&aacute;s de los Garza, Nuevo Le&oacute;n. </i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>4</sup> Centro Nacional de Referencia de Control Biol&oacute;gico. 28120. Tecom&aacute;n, Colima.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: Junio, 2008.    <br> Aprobado: Mayo, 2009.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El parasitoide <i>Anagyrus kamali </i>Moufsi se utiliza en programas de control biol&oacute;gico de la cochinilla fosada del hibisco (CRH), <i>Maconellicoccus hirsutus </i>Green; sin embargo, se requieren estudios detallados sobre su impacto en condiciones de campo. En el presente estudio se evalu&oacute; el parasitismo natural e inducido de <i>A. kamali </i>sobre CRH en brotes de teca, cubiertos con bolsas de tela de organza en condiciones de campo, en Bah&iacute;a de Banderas, Nayarit, M&eacute;xico. Los tratamientos fueron: 1) exclusi&oacute;n de enemigos naturales; 2) parasitismo natural; 3) parasitismo inducido (<i>A. kamali</i>). El efecto de los tratamientos se determin&oacute; registrando la cantidad de ninfas, hembras adultas y ovisacos de la CRH, as&iacute; como el n&uacute;mero de momias de los parasitoides, 15 y 30 d despu&eacute;s de establecidos los tratamientos. El parasitoide <i>A. kamali </i>regul&oacute; el crecimiento poblacional de la CRH en los brotes de teca cubiertos con bolsas de tela de organza en condiciones de campo. La disminuci&oacute;n promedio de la plaga fue 96.5 % en 30 d. El parasitismo natural fue incipiente en la regulaci&oacute;n de la plaga, y no evit&oacute; su incremento, lo cual se atribuye a la interferencia de las hormigas y al impacto negativo de los hiperparasitoides.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras Clave: </b><i>Anagyrus kamali, Tectona grandis, Maconellicoccus hirsutus, </i>control biol&oacute;gico, piojos harinosos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The <i>parasitoid Anagyrus kamali </i>Moursi is used in biological control programs against Pink Hibiscus Mealybug (PHM) <i>Maconellicoccus hirsutus </i>(Green). However, detailed studies on its impact in field conditions are needed. This study evaluated natural and induced parasitism of <i>A. kamali </i>against PHM on teak shoots covered with organza sleeves under field conditions in Bah&iacute;a de Banderas, Nayarit, M&eacute;xico. The treatments were 1) exclusion of natural enemies, 2) natural parasitism, and 3) induced parasitism (<i>A. kamali</i>). The effect of the treatments was determined by recording the numbers of PHM nymphs, adult females and ovisacs as well as the number of parasitoid mummies 15 and 30 d after treatments were established. The parasitoid <i>A. kamali </i>regulated the population growth of PHM on the sprouts covered with organza sleeves under field conditions. The average reduction of the pest was 96.5 % in 30 d. Natural parasitism was negligible in regulating the pest and did not prevent its increase; this was attributed to interference of ants and to the negative impact of hyperparasitoids.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b><i>Anagyrus kamali, Tectona grandis, Maconellicoccus </i><i>hirsutus, </i>biological control, mealybugs.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cochinilla rosada del hibisco (CRH) es nativa del sur de Asia o Australia (Roltsch <i>et al., </i>2000) y se distribuye en regiones tropicales y subtropicales del mundo (Sagarra y Peterkin, 1999). Afecta a m&aacute;s de 200 hospederos incluidos en 70 familias de plantas (Padilla, 2000; Meyerdirk <i>et al, </i>2003) y ocasiona problemas econ&oacute;micos por el da&ntilde;o directo en las plantas hospederas y por su importancia como plaga cuarentenaria (Kairo <i>et al, </i>2000; Cermeli <i>et al, </i>2002). Los m&eacute;todos de combate f&iacute;sicos y qu&iacute;micos tienen un &eacute;xito limitado en el control de la CRH (Cermeli <i>et al, </i>2002; Persad y Khan, 2002). Sin embargo, en su habitat nativo la CRH es raramente una plaga y se mantiene en niveles bajos sin causar da&ntilde;o econ&oacute;mico debido a la presencia de enemigos naturales eficientes (Goolsby <i>et al, </i>2002).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Anagyrus kamali </i>Moursi (Hymenoptera: Encyrtidae) es un parasitoide usado en programas internacionales para el control biol&oacute;gico de la CRH. Se introduce junto con otros enemigos naturales como los depredadores <i>Cryptolaemus montrouzieri </i>Mulsant y <i>Scymnus coccivora </i>Ramakrishna Ayyar (Cole&oacute;ptera: Coccinellidae) y los parasitoides <i>Giranusoidea indica </i>Shafee, Alam y Agarwal (Hymenoptera: Encyrtidae) y <i>Allotropa </i>sp. nr. <i>mecridae </i>(Hymenoptera: Platygas&#150;teridae). Hay resultados exitosos en Egipto (Bartlett, 1978; Abd&#150;Rabou, 2005), en Antigua y Barbuda, Bahamas, Barbados, Dominica, Grenada, Jamaica, St. Kitts y Nevis, St. Thomas, St. Vincent y Granadinas, Sta. Lucia, Trinidad y Tobago, US Islas V&iacute;rgenes (Sagarra y Peterkin, 1999; Kairo <i>et al, </i>2000; Gautam, 2003), Puerto Rico (Michaud y Evans, 2000; Serme&ntilde;o y Navarro, 2000) y California, EE.UU. (Roltsch <i>et al, </i>2006), atribuidos principalmente a la actividad de <i>A. kamali. </i>Esta especie es un endoparasitoide solitario que tambi&eacute;n como adultos se alimenta de su hu&eacute;sped, contribuyendo a la mortalidad de la CRH (Kairo <i>et al, </i>2000). Este insecto par&aacute;sita ninfas de segundo y tercer instar, pero prefiere a las hembras adultas y pone un promedio de 40&#150;60 huevos durante su vida (Sagarra y Vincent, 1999; Sagarra <i>et al, </i>2001). Se liberan en promedio 1500 a 2000 individuos, cuando las poblaciones de la CRH son bajas (menor a 10 CRH/brote de 5 cm). El resultado de control se puede apreciar en las poblaciones de la CRH de 6 a 8 meses despu&eacute;s de su liberaci&oacute;n (Santiago&#150;Islas <i>et al, </i>2008).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico la CRH se detect&oacute; en 1999 en Mexicali, Baja California (Roltsch <i>etal, </i>2000), y en 2004 en Bah&iacute;a de Banderas, Nayarit y Puerto Vallar&iacute;a, Jalisco (SAF, 2004). Por tanto, el gobierno mexicano, con base en los resultados exitosos de programas de control biol&oacute;gico en otros pa&iacute;ses, implemento la liberaci&oacute;n del depredador <i>C. montrouzieri </i>y el parasitoide <i>A. kamali </i>para el control de la CRH, con dos introducciones del parasitoide <i>G. indica, </i>en los estados de Nayarit y Jalisco (Santiago&#150;Islas <i>et al, </i>2008).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las poblaciones de CRH han disminuido, pero se necesita estudiar en condiciones de campo la contribuci&oacute;n relativa de cada uno de los enemigos naturales liberados para controlar la CRH (Kairo <i>et al., </i>2000). Por tanto, el objetivo de este trabajo fue evaluar el parasitismo natural e inducido de <i>A. kamali </i>sobre <i>M. hirsutus, </i>en brotes de teca <i>Tectona grandis </i>L. (Verbenaceae) infestados artificialmente con CRH en Bah&iacute;a de Banderas, Nayarit.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODO </b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este trabajo se hizo en 7 ha de una plantaci&oacute;n de teca, principal hospedero de la CRH en Nayarit, con una edad de 6 a&ntilde;os, ubicada a 20&deg; 45' 16" N y 105&deg; 16' 47" O, en el ejido San Vicente, municipio de Bah&iacute;a de Banderas, de febrero a mayo de 2006.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dada la importancia cuarentenaria de la CRH, las pruebas se hicieron en bolsas de tela de organza para prevenir la diseminaci&oacute;n de la plaga. Se seleccionaron 40 &aacute;rboles de teca y en cada uno se seleccion&oacute; un brote (longitud 15 a 20 cm) con hojas terminales (5 cm) a una altura de 1.2 a 1.5 m. En cada brote se eliminaron los insectos con un pincel y despu&eacute;s el brote se cubri&oacute; con una bolsa de tela de organza de 50&times;60 cm. Ovisacos de CRH fueron recolectados en frutos de guan&aacute;bana de una plantaci&oacute;n localizada en el ejido de la Cruz de Huanacaxtle, municipio de Bah&iacute;a de Banderas, a 5 km de la plantaci&oacute;n de teca. Los ovisacos se revisaron en el laboratorio con un microscopio para eliminar huevos de insectos depredadores y piojos harinosos diferentes a la CRH y se aislaron en c&aacute;psulas de gelatina. Cada brote de teca se infest&oacute; con tres ovisacos de CRH, colocados entre las dos hojas terminales, antes de cerrar las bolsas de organza.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La densidad de ninfas de CRH por brote se calcul&oacute; con un conteo 15 d despu&eacute;s de la emergencia. En esta ocasi&oacute;n se eliminaron los brotes con mielecilla, fumagina y contaminaci&oacute;n por otros piojos harinosos, y se seleccionaron 18 brotes para continuar con las observaciones.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evaluaron tres tratamientos 9 d despu&eacute;s del conteo inicial, sobre ninfas de tercer instar y adultos de CRH: 1) mantener las bolsas cerradas para registrar el crecimiento poblacional de la CRH, sin la presencia de enemigos naturales que afectaran su desarrollo (exclusi&oacute;n de enemigos naturales) (testigo); 2) abrir las bolsas en el extremo superior para permitir el libre acceso de los enemigos naturales de CRH presentes en la plantaci&oacute;n (parasitismo natural); 3) introducir en las bolsas tres hembras y tres machos del parasitoide <i>A. kamali, </i>de 2 d de emergidos, las cuales se mantuvieron cerradas (parasitismo inducido). Los parasitoides se obtuvieron del Laboratorio de Reproducci&oacute;n de Organismos Ben&eacute;ficos en el municipio de Bah&iacute;a de Banderas, operado por el &Aacute;rea de Control Biol&oacute;gico de la Campa&ntilde;a Contra la CRH.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cada brote de teca se registr&oacute; la cantidad de ninfas, hembras adultas y ovisacos de CRH, 15 y 30 d despu&eacute;s de iniciar los tratamientos. En los brotes donde se permiti&oacute; el acceso de enemigos naturales y aqu&eacute;llos donde se liber&oacute; el parasitoide, tambi&eacute;n se cuantific&oacute; el n&uacute;mero de momias de <i>A. kamali </i>y de otros parasitoides. En el segundo conteo (30 d) adem&aacute;s se recolectaron las momias de los insectos parasitados y se colocaron en c&aacute;psulas de gelatina a temperatura ambiente (28 &plusmn;2 &deg;C) en el laboratorio; los parasitoides emergidos fueron conservados en alcohol al 70 %. Tambi&eacute;n se recolectaron los depredadores observados en los brotes infestados. Los conteos se realizaron cuidadosamente para no da&ntilde;ar los brotes y evitar introducci&oacute;n o fuga de insectos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dise&ntilde;o experimental fue completamente al azar y la unidad experimental fue un brote de teca con un promedio inicial de 250.1&plusmn;56.1 CRH, con seis repeticiones por tratamiento. Los conteos poblacionales de CRH (ninfas y hembras) se analizaron con el procedimiento MIXED para mediciones repetidas en el tiempo, con la estructura de covarianza ARH(1) seleccionada de acuerdo con los criterios AICC (Criterio de Informaci&oacute;n de Akaike) y BIC (Criterio de Informaci&oacute;n Bayesiano) (Litell <i>et al., </i>1998; SAS Institute, 2004). Se utiliz&oacute; la opci&oacute;n LSMEANS para calcular las medias por m&iacute;nimos cuadrados (por tratamiento, por tiempo e interacci&oacute;n), y la opci&oacute;n SLICE para realizar pruebas de efectos simples de los tratamientos para cada fecha de muestreo. Adem&aacute;s, se compar&oacute; el efecto de los tratamientos sobre la densidad poblacional de CRH mediante contrastes usando SAS 9.1 (SAS Institute, 2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N </b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El parasitoide <i>A. kamali </i>disminuy&oacute; la poblaci&oacute;n de CRH (<a href="#f1">Figura 1</a>) en los brotes de teca 30 d despu&eacute;s de su inclusi&oacute;n en las bolsas (F = 6.17; gl 2, 45; p = 0.004); en contraste, la poblaci&oacute;n de CRH aument&oacute; en los brotes donde se excluy&oacute; a los enemigos naturales y en aqu&eacute;llos donde se permiti&oacute; su libre acceso. Tambi&eacute;n hubo diferencia en la densidad poblacional de CRH a los 15 y 30 d (F = 5.57; gl 2, 45; p = 0.006), as&iacute; como interacci&oacute;n entre los tratamientos y los tres per&iacute;odos de registro (F = 2.38; gl 4, 45;p=0.065).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v43n7/a7f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el conteo 15 d despu&eacute;s de establecer los tratamientos (<a href="#f1">Figura 1</a>) hubo una disminuci&oacute;n general de CRH. En los brotes sin presencia de enemigos naturales la poblaci&oacute;n disminuy&oacute; 47&#150;3 %, y en aqu&eacute;llos donde se permiti&oacute; el acceso de los enemigos naturales la disminuci&oacute;n fue 40.9 %. En cambio, la mayor reducci&oacute;n (72.3 %) se registr&oacute; en los brotes donde se liber&oacute; el parasitoide <i>A. kamali. </i>En los tres casos, &#126;50 % de la reducci&oacute;n se atribuye a la mortalidad natural de los machos de la CRH, ya que tienen el aparato bucal atrofiado y viven pocos d&iacute;as; adem&aacute;s, la relaci&oacute;n sexual es aproximadamente 0.40 machos por 0.60 hembras (Sagarra y Vincent, 1999; Persad y Khan, 2002; Meyerdirk <i>et al, </i>2003).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los brotes con bolsa cerrada, sin presencia de enemigos naturales y en el tratamiento donde se liber&oacute; <i>A. kamali, </i>se observ&oacute; abundante mielecilla excretada por la CRH, la cual ocasion&oacute; un r&aacute;pido desarrollo de fumagina que pudo interferir con el crecimiento adecuado de la CRH y la actividad de los parasitoides. Al respecto, Gonz&aacute;lez&#150;Hern&aacute;ndez <i>et al </i>(1999) reportan que <i>Pheidole megacephala </i>(F.) (Hy&#150;menoptera: Formicidae) ayuda a remover excesos de mielecilla producida por el piojo harinoso de la pina <i>Dysmicoccus brevipes </i>(Cocckerell) (Hemiptera: Pseu&#150;dococcidae), de lo contrario esto provoca la muerte de los estados ninfales m&oacute;viles de esa especie. Sin embargo, en el tratamiento de parasitismo inducido el promedio de momias por brote fue 11.1, es decir, la actividad de <i>A. kamali </i>fue responsable de la disminuci&oacute;n de la poblaci&oacute;n en 22 %. La disminuci&oacute;n de CRH en este estudio fue menor que el 79.3 <i>% </i>de reducci&oacute;n registrado en ramas de hibisco <i>Hibiscus rosa&#150;sinensis </i>L. (Malvaceae), en Trinidad y Tobago, principalmente por la actividad del parasitoide <i>A. kamali </i>19 d despu&eacute;s de liberado, aunque tambi&eacute;n se observ&oacute; la presencia del depredador <i>Cycloneda sangu&iacute;nea </i>(L.) (Cole&oacute;ptera: Coccinellidae) (Morais, 1998). En el presente estudio en los brotes donde se permiti&oacute; acceso de los enemigos naturales el promedio de momias por brote fue 3.6, aunque tambi&eacute;n se detect&oacute; la presencia del depredador <i>Diomus </i>sp. (Cole&oacute;ptera: Coccinellidae). El control ejercido por estos enemigos naturales contribuy&oacute; de forma incipiente en la reducci&oacute;n de la plaga. En estos brotes se observaron hormigas que realizaban labores de limpieza que no permitieron la acumulaci&oacute;n de mielecilla ni el desarrollo de fumagina, adem&aacute;s de interferir con la actividad de los enemigos naturales.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el conteo a los 30 d se registr&oacute; una diferencia importante en la densidad poblacional de CRH entre los tratamientos (<a href="#f1">Figura 1</a>). La mayor poblaci&oacute;n ocurri&oacute; en los brotes sin enemigos naturales y fue 6.7 veces mayor que la densidad inicial, constituida por 96.8 % de ninfas, 0.6 % de hembras y 2.5 % de ovisacos. Esto manifiesta la alta capacidad reproductiva y de adaptaci&oacute;n de la CRH que, de no presentarse un factor que regule sus poblaciones, puede afectar seriamente a sus hospederas preferenciales (teca, <i>Tectona grandis </i>L.; hibisco, <i>Hibiscus rosa&#150;sinensis; </i>guan&aacute;bana, <i>Annona muricata </i>L.). En Egipto la CRH caus&oacute; da&ntilde;os severos sobre <i>Hibiscus </i>spp. (Malvaceae) (incluyendo algod&oacute;n, <i>Gossypium </i>sp.), mora (<i>Rubus glaucus</i>) y otros hospederos (Bartlett, 1978; Sagarra y Peterkin, 1999). En Puerto Rico, las infestaciones iniciales de CRH ocasionaron que 80 % de los brotes de hibisco murieran en poco tiempo (Michaud y Evans, 2000).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La misma tendencia de crecimiento de la CRH se present&oacute; en los brotes donde se permiti&oacute; a los enemigos naturales libre acceso y fue estad&iacute;sticamente similar a la poblaci&oacute;n del tratamiento sin enemigos naturales. La poblaci&oacute;n del tratamiento con parasitismo natural fue 5.3 veces mayor que la densidad inicial, constituida por 99.8 % de ninfas, 0.01 % de hembras adultas y 0.1 % de ovisacos. Por tanto, la actividad de los enemigos naturales presentes no redujo significativamente el crecimiento poblacional de CRH, ya que a pesar de ser menor a la registrada en el tratamiento testigo, no se evit&oacute; su incremento.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Un factor detrimental a la actividad de los enemigos naturales pudo ser la alta poblaci&oacute;n de hormigas, observada en 50 % de los brotes. Las hormigas protegen a los piojos harinosos de sus enemigos naturales, a cambio de tomar la mielecilla que excretan. Esta simbiosis interfiere en la efectividad de los enemigos naturales (Bartlett, 1978; Gonz&aacute;lez&#150;Hern&aacute;ndez <i>et al., </i>1999). Seg&uacute;n Bach (1991), la hormiga cabezona <i>P megacephala </i>presenta una relaci&oacute;n mutualista con la escama <i>Coccus viridis </i>Green (Hemiptera: Coccidae); las poblaciones m&aacute;s altas de la escama estuvieron en plantas de <i>Pluchea indica </i>(L.) (Asteraceae) con hormigas y adem&aacute;s, la tasa de mortalidad por parasitismo y otros factores fue muy baja. En plantaciones de pina (<i>Ananas comosus</i>) los piojos harinosos <i>Dysmicoccus brevipes </i>y <i>D. neobrevipes </i>(Beardsley) son atendidos por varias especies de hormigas, principalmente <i>P. megacephala, </i>las cuales interfieren en la actividad del parasitoide <i>Anagyrus ananatis </i>Gahan (Gonz&aacute;lez&#150;Hern&aacute;ndez <i>et al., </i>1999). En el presente trabajo, a pesar de la presencia de hormigas y de los hiperparasitoides <i>Signiphora </i>sp., <i>Chartocerus </i>sp. (Hymenoptera: Sig&#150;niphoridae), <i>Cheiloneurus </i>sp., <i>Prochiloneurus </i>sp. (Hymenoptera: Encyrtidae) y <i>Aprostocetus minutus </i>Howard (Hymenoptera: Eulophidae), el parasitismo natural registrado fue 64.0 momias por brote 30 d despu&eacute;s de abrir las bolsas de organza, lo cual sugiere que los parasitoides respondieron al aumento poblacional de la CRH. Tambi&eacute;n se registr&oacute; un menor promedio de ovisacos por brote en comparaci&oacute;n con el testigo, lo cual afect&oacute; el potencial reproductivo de la CRH; esto &uacute;ltimo pudo ser ocasionado por la actividad de los depredadores coccin&eacute;lidos observados (<i>Diomus </i>sp.).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los parasitoides adultos observados en los brotes con bolsa abierta durante el estudio fueron <i>A. kamali </i>y <i>G. indica. </i>En el conteo realizado a los 30 d hubo 61.1 y 5.9 % de adultos de A <i>kamali y G. indica; </i>sin embargo, en el material colocado en c&aacute;psulas de gelatina la proporci&oacute;n de parasitoides primarios emergidos fue baja (<a href="#f2">Figura 2</a>) y no se present&oacute; <i>G indica. </i>Esto &uacute;ltimo debido a que las poblaciones de la CRH en Bah&iacute;a de Banderas, Nayarit son bajas principalmente por la acci&oacute;n reguladora de <i>A. kamali </i>liberado anteriormente (Santiago&#150;Islas <i>etal., </i>2008).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v43n7/a7f2.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad de los parasitoides primarios en el control de la CRH fue alterada por los hiperparasitoides nativos (<a href="#f2">Figura 2</a>). Roltsch <i>et al. </i>(2006) reportan que durante el segundo a&ntilde;o del programa de control de la CRH en California, EE.UU., el impacto de los hiperparasitoides nativos como <i>Marrieta </i>sp. (Hymenoptera: Aphelinidae) y <i>Chartocerus </i>sp.,  sobre  las   especies   de  parasitoides  primarios introducidos, particularmente <i>A. kamali, </i>fue 30 a 60 %. Posteriormente el impacto sobre <i>A. kamali </i>disminuy&oacute; debido a que el hiperparasitismo guarda una relaci&oacute;n denso&#150;dependiente con las densidades absolutas de CRH y de su parasitoide primario.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La densidad poblacional m&aacute;s baja de CRH se present&oacute; en los brotes donde se liber&oacute; al parasitoide <i>A. kamali </i>dentro de las bolsas de organza, la cual fue significativamente diferente en relaci&oacute;n con los registros de los brotes sin enemigos naturales (F = 11.29; gl 1, 45; p = 0.001). La actividad del parasitoide ocasion&oacute; una disminuci&oacute;n de 96.5 % en la poblaci&oacute;n de CRH con respecto a la poblaci&oacute;n inicial, constituida 30 d despu&eacute;s de establecidos los tratamientos por 81.9 % de ninfas y 18.1 % de ovisacos. Serme&ntilde;o y Navarro (2000) reportan reducciones similares en las islas St. Kitts, St. Thomas y St. Croix; sin embargo, las disminuciones ocurrieron 20 a 24 meses despu&eacute;s de la liberaci&oacute;n de <i>A. kamali </i>al ambiente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El tiempo de evaluaci&oacute;n en el presente trabajo fue un mes; por tanto, la variaci&oacute;n en el tiempo del impacto del parasitoide pudo ser influida por las condiciones de desarrollo del estudio, como las bolsas de tela de organza y la poblaci&oacute;n de CRH en los brotes de teca compuesta por ninfas de tercer instar y hembras en preoviposici&oacute;n, estados preferidos por el parasitoide (Sagarra y Vincent, 1999). Adem&aacute;s, en condiciones de campo <i>A. kamali </i>puede parasitar un menor n&uacute;mero de hu&eacute;spedes para evitar eliminarlo y asegurar el futuro de su descendencia, lo cual proporciona una regulaci&oacute;n continua a largo plazo (Sagarra <i>et al., </i>2000). En los brotes donde se liber&oacute; el parasitoide se registr&oacute; un promedio de 76.2 momias por brote y la mayor cantidad de momias en un brote fue de 138. En tres de las unidades experimentales se elimin&oacute; la poblaci&oacute;n de CRH y en las otras tres la reducci&oacute;n poblacional vari&oacute; de 77.4 a 99&#150;0 %. Estos resultados coinciden con los obtenidos en Puerto Rico, el Caribe y California, EE.UU., donde el parasitoide <i>A. kamali </i>ocasion&oacute; disminuciones poblacionales de la CRH de 88 a 99 % (Serme&ntilde;o y Navarro, 2000; Roltsch <i>et al, </i>2006).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aunque el dise&ntilde;o del presente estudio no refleja condiciones totales de campo, ya que se usaron bolsas de tela para aislar los brotes de teca, s&iacute; plantea el alto potencial que tiene <i>A. kamali </i>como agente de control biol&oacute;gico de la CRH. Adem&aacute;s, se advierte la capacidad de las hormigas simbiontes para reducir la efectividad de los parasitoides liberados. Por tanto, es importante implementar estrategias para reducir la interferencia de hormigas antes de realizar las liberaciones inundativas del parasitoide.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El parasitoide <i>A. kamali </i>regul&oacute; el crecimiento poblacional de la CRH en los brotes de teca cubiertos con bolsas de tela de organza en condiciones de campo. La disminuci&oacute;n promedio de la plaga fue 96.5 % en 30 d.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El parasitismo natural fue incipiente en la regulaci&oacute;n de la plaga y no evit&oacute; su incremento, lo cual se atribuye a la interferencia de las hormigas y al impacto negativo de los hiperparasitoides.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">A la Direcci&oacute;n General de Sanidad Vegetal (DGSV), al Comit&eacute; Estatal de Sanidad Vegetal de Nayarit (CESAVENAY) y al Laboratorio de Producci&oacute;n de Organismos Ben&eacute;ficos del Programa Regional Emergente contra la Cochinilla Rosada del Hibisco en Nayarit y Jalisco, SENASICA&#150;SAGARPA por el apoyo otorgado.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA </b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Abd&#150;Rabou, S. 2005. The effect of augmentative releases of indigenous parasitoid, <i>Anagyrus kamali </i>(Hymenoptera: Encyrtidae) on populations of <i>Maconellicoccus hirsutus </i>(Hemiptera: Pseudococcidae) in Egypt. Arch. Phytopathol. Plant Protection 38: 129&#150;132.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536784&pid=S1405-3195200900070000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bach, E. C. 1991. Direct and indirect interactions between ants (<i>Pheidole megacephala</i>), scales (<i>Coccus viridis</i>) and plants (<i>Pluchea indica</i>). Oecologia 87: 233&#150;239.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536785&pid=S1405-3195200900070000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bartlett, B. R. 1978. Pseudococcidae. <i>In: </i>Clausen, C. P. (ed). Introduced Parasites and Predators of Arthropod Pest and Weeds: a World Review. Agriculture Handbook No. 480. USDA. Washington, D. C. pp: 137&#150;170.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536786&pid=S1405-3195200900070000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cermeli M., P. Morales V., F. Godoy, R. Romero, y O. C&aacute;rdenas. 2002. Presencia de la cochinilla rosada de la cayena <i>Maconellicoccus hirsutus </i>(Green) (Hemiptera: Pseudococcidae) en Venezuela. Entomotr&oacute;pica 17: 103&#150;105.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536787&pid=S1405-3195200900070000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gautam, R. D. 2003. Classical biological control of pink hibiscus mealybug, <i>Maconellicoccus hirsutus </i>(Green) in the Caribbean. Plant Protection Bull. 55: 1&#150;8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536788&pid=S1405-3195200900070000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez&#150;Hern&aacute;ndez, H., M. W. Johnson, and N. J. Reimer. 1999. Impact of <i>Pheidole megacephala </i>(F.) (Hymenoptera: Formicidae) on the biological control of <i>Dysmicoccus brevipes </i>(Cockerell) (Homoptera: Pseudococcidae). Biol. Control 15: 145&#150;152.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536789&pid=S1405-3195200900070000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Goolsby, A. J., A. A. Kirk, and D. E. Meyerdirk. 2002. Seasonal phenology and natural enemies of <i>Maconellicoccus hirsutus </i>(Hemiptera: Pseudococcidae) in Australia. Florida Entomol. 85: 494&#150;498.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536790&pid=S1405-3195200900070000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kairo, M. T. K., G. V. Pollard, D. D. Peterkin, and V. F. L&oacute;pez. 2000. Biological control of the hibiscus mealybug, <i>Maconellicoccus hirsutus </i>Green (Hemiptera: Pseudococcidae) in the Caribbean. Integrated Pest Manag. Rev. 5: 241&#150;254.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536791&pid=S1405-3195200900070000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Littell, R. C., P. R. Henry, and C. B. Ammerman. 1998. Statistical analysis of repeated measures data using SAS procedures. J. Anim. Sci. 76: 1216&#150;1231.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536792&pid=S1405-3195200900070000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Meyerdirk D. E., R. Warkentin, B. Attavian, E. Gersabeck, A. Francis, M. Adams, and G. Francis. 2003. Manual del Proyecto para el Control Biol&oacute;gico de la Cochinilla Rosada del Hibisco. Traducci&oacute;n al espa&ntilde;ol por el IICA en acuerdo con el USDA. 2a. Ed. USDA&#150;IICA. San Jos&eacute;, Costa Rica. 214 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536793&pid=S1405-3195200900070000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Michaud, J. P., and G. A. Evans. 2000. Current status of pink hibiscus mealybug in Puerto Rico including a key to parasitoid species. Florida Entomol. 83: 97&#150;101.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536794&pid=S1405-3195200900070000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Morais, M. 1998. Releases of the parasitic wasp <i>Anagyrus kamali </i>(Hymenoptera: Encyrtidae) in the field to control pink mealybug, <i>Maconellicoccus hirsutus </i>(Green) (Hemiptera: Pseudococcidae) and preliminary results on efficacy. <i>In: </i>Persad, C., and D. Johnston (eds). Management Strategies for the Control of the Hibiscus Mealybug. Proceedings of the 1st Seminar on the Hibiscus Mealybug. Centeno, Trinidad and Tobago, pp: 44&#150;49.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536795&pid=S1405-3195200900070000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Padilla M., R. 2000. Bioecolog&iacute;a de la cochinilla rosada y su riesgo de ingreso en Honduras. Manejo Integrado de Plagas 57: 10&#150;22.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536796&pid=S1405-3195200900070000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Persad, A., and A. Khan. 2002. Comparison of life table parameters for <i>Maconellicoccus hirsutus, Anagyrus kamali, Cryptolaemus montrouzieri </i>and <i>Scymnus coccivora. </i>BioControl 47: 137&#150;149.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536797&pid=S1405-3195200900070000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Roltsch, W. J., D. E. Meyerdirk, and R. Warkentin. 2000. Pink hibiscus mealybug biological control in Imperial Valley. <i>In: </i>Woods, D. M. (ed). Biological Control Program. California Department of Food and Agriculture, Plant Health and Pest Prevention Services, Sacramento, California, pp: 14&#150;18.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536798&pid=S1405-3195200900070000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Roltsch, W. J., D. E. Meyerdirk, R. Warkentin, E. R. Andress, and K. Carrera. 2006. Classical biological control of the pink hibiscus mealybug, <i>Maconellicoccus hirsutus </i>(Green), in southern California. Biol. Control 37: 155&#150;166.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536799&pid=S1405-3195200900070000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SAF (Sistema de Alerta Fitosanitaria). 2004. Detecci&oacute;n de la cochinilla rosada del hibisco (<i>Maconellicoccus hirsutus </i>Green), en el municipio de Bah&iacute;a de Banderas, Nayarit, M&eacute;xico. Noticias sobre brotes de plagas del Sistema de Alerta Fitosanitaria de la NAPPO, 8 de marzo de 2004. <a href="http://www.pestalert.org/ViewArchNewsStory.cfm?nid=297" target="_blank">http://www.pestalert.org/ViewArchNewsStory.cfm?nid=297</a> Consultado 14 de septiembre de 2005.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536800&pid=S1405-3195200900070000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sagarra, L. A., and D. D. Peterkin. 1999. Invasion of the Caribbean by the hibiscus mealybug, <i>Maconellicoccus hirsutus </i>Green (Homoptera: Pseudococcidae). 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Effect of host density, temperature, and photoperiod on  the  fitness  of <i>Anagyrus  kamali,   </i>a  parasitoid  of the hibiscus mealybug <i>Maconellicoccus hirsutus. </i>Entomolog&iacute;a Experimentalis et Applicata 96: 141&#150;147.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536803&pid=S1405-3195200900070000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sagarra, L. A., C. Vincent, and R. K. Stewart. 2001. Body size as an indicator of parasitoid quality in male and female <i>Anagyrus kamali </i>(Hymenoptera: Encyrtidae). Bull. Entomol. 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Manual T&eacute;cnico: Identificaci&oacute;n de Insectos de la Superfamilia Coccoidea, con Especial &Eacute;nfasis en Cochinilla Rosada del Hibisco <i>Maconellicoccus hirsutus </i>(Green). OIRSA. Universidad de El Salvador. San Salvador. 73 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=536807&pid=S1405-3195200900070000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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