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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización bioquímica de variedades domesticadas de chayote Sechium edule (Jacq.) Sw. comparadas con parientes silvestres]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Given the great biological variation in the infraspecific complex of Sechium edule, biochemical characterization of the fruit is needed; therefore, the objective of this study was characterizing one wild and seven domesticated varieties of S. edule fruits. The samples were taken from the Banco Nacional de Germoplasma in Huatusco, Veracruz, Mexico, during a period of three years. The assessed variables were: pigment content (chlorophyll and carotenoids), terpenic compounds, ascorbic acid, total soluble solids, titratable acidity, and epidermis color; principal components and hieralchical analysis was conducted for their evaluation. The results showed that there is biochemical variation among varieties having a common ancestor in wild relative chayote. Among the cultivated varieties there are four levels of variation that allow for grouping by higher biochemical similarity.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Caracterizaci&oacute;n bioqu&iacute;mica de variedades domesticadas de chayote <i>Sechium edule</i> (Jacq.) Sw. comparadas con parientes silvestres</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Biochemical characterization of domesticated varieties of chayote <i>Sechium edule</i> (Jacq.) Sw. fruits compared to wild relatives</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Jorge Cadena I&ntilde;iguez<sup>1</sup>; Marco Soto Hern&aacute;ndez<sup>1</sup>; Ma. de Lourdes Ar&eacute;valo Galarza<sup>1</sup>; Carlos Hugo Avenda&ntilde;o Arrazate<sup>2&para;</sup>; Juan Francisco Aguirre Medina<sup>2</sup>; Lucero del Mar Ruiz Posadas<sup>1</sup></b></font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Colegio de Postgraduados, km 36.5 carretera M&eacute;xico&#45;Texcoco, Montecillo Estado de M&eacute;xico. C. P. 56230. M&Eacute;XICO.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>2</i></sup> <i>Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias. Campo Experimental Rosario Izapa, km 18 carretera Tapachula a Cacaohatan,</i> <i>Tuxtla Chico, Chiapas. C.P. 30870, M&Eacute;XICO. Correo&#45;e:</i> <a href="mailto:fltogeneticarlos@hotmail.com">fltogeneticarlos@hotmail.com</a> <i>(<sup>&para;</sup>Autor para correspondencia)</i>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 15 de noviembre, 2010.    <br> 	Aceptado:18 de abril, 2011.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dada la amplia variaci&oacute;n biol&oacute;gica del complejo infraespec&iacute;fico de <i>Sechium edule,</i> se realiz&oacute; una caracterizaci&oacute;n bioqu&iacute;mica de frutos de siete variedades domesticadas y un pariente silvestre; la muestra fue tomada del Banco Nacional de Germoplasma en Huatusco, Veracruz, M&eacute;xico, por un periodo de tres a&ntilde;os. Las variables evaluadas fueron: contenido de pigmentos (clorofila y carotenoides), compuestos terp&eacute;nicos, &aacute;cido asc&oacute;rbico, s&oacute;lidos solubles totales y acidez titulable, as&iacute; como color de la epidermis; se realiz&oacute; un an&aacute;lisis por componentes principales y jer&aacute;rquicos. Dentro de las variedades domesticadas, existen cuatro niveles de variaci&oacute;n que permitieron agruparlas por su similitud bioqu&iacute;mica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Pigmentos, clorofila, s&oacute;lidos solubles totales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Given the great biological variation in the infraspecific complex of <i>Sechium edule,</i> biochemical characterization of the fruit is needed; therefore, the objective of this study was characterizing one wild and seven domesticated varieties of S. <i>edule</i> fruits. The samples were taken from the Banco Nacional de Germoplasma in Huatusco, Veracruz, Mexico, during a period of three years. The assessed variables were: pigment content (chlorophyll and carotenoids), terpenic compounds, ascorbic acid, total soluble solids, titratable acidity, and epidermis color; principal components and hieralchical analysis was conducted for their evaluation. The results showed that there is biochemical variation among varieties having a common ancestor in wild relative chayote. Among the cultivated varieties there are four levels of variation that allow for grouping by higher biochemical similarity.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> Pigments, chlorophyll, total soluble solids.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Sechium</i> edule(Jacq.) Sw. (chayote) es una especie domesticada por las culturas precolombinas de Am&eacute;rica central, e introducida a diferentes pa&iacute;ses por los Espa&ntilde;oles debido a su adaptatividad (Reinecke, 1898). Cook (1901) reconoci&oacute; dos variedades de chayote de acuerdo al color del epicarpio: verde y blanco; creciendo en &aacute;reas fr&iacute;as y heladas de las islas del Caribe; se ha encontrado que nombr&oacute; cinco "variedades", que fueron descritas por sus variaciones morfol&oacute;gicas como Redondo Blanco, Largo Blanco, Puntiagudo Verde, Ancho Verde y Verde Ovalado, en M&eacute;xico la gente clasifica al chayote por color (negro: verde obscuro, verde: verde brillante, y blanco: amarillo crema), apariencia (liso o espinoso), y sabor (simple, dulce, y amargo) (Cadena&#45;I&ntilde;iguez <i>et al.,</i> 2007). Es ampliamente utilizado debido a su valor nutrimental, los frutos inmaduros pueden ser consumidos en ensaladas y son una buena fuente de vitamina C. Pueden ser tambi&eacute;n hervidos, fritos, cocinados al vapor, o rellenos y horneados. Las hojas j&oacute;venes y zarcillos son tambi&eacute;n consumidos, y las semillas pueden ser salteadas en mantequilla y servidas como aperitivos (Lira&#45;Saade, 1996; Aung and USDA&#45;ARS, 1998). Sin embargo, la caracterizaci&oacute;n bioqu&iacute;mica del chayote ha sido hecha a partir de un solo tipo, por tanto es importante definir la composici&oacute;n qu&iacute;mica de variedades menos conocidas y promover su uso alimenticio. Dentro de la variaci&oacute;n de <i>S. edule</i> est&aacute;n: color, apariencia y sabor del fruto, que han sido atribuidas al proceso de domesticaci&oacute;n (Cadena&#45;I&ntilde;iguez <i>et al.,</i> 2008). En el presente estudio se evalu&oacute; una muestra etnogr&aacute;fica de siete variedades domesticadas y una silvestre de S. <i>edule,</i> con el objetivo de caracterizarlas con base en siete par&aacute;metros bioqu&iacute;micos en sus frutos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material vegetal</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Frutos de siete variedades domesticadas y una silvestre de <i>S. edule,</i> fueron utilizadas y nombradas de acuerdo con la clasificaci&oacute;n aplicadas por el Banco Nacional de Germoplasma de <i>Sechium edule</i> (BANGESE&#45;M&eacute;xico). El BANGESe se localiza en el Centro Regional Universitario Oriente (CRUO) de la Universidad Aut&oacute;noma Champingo (UACh) en Huatusco, Veracruz, M&eacute;xico (19&deg;08'48' N y 97&deg;57'00" E). La vegetaci&oacute;n de bosque Mes&oacute;filo de Monta&ntilde;a (bosque nubloso) (a 1,340 m de altitud) y temperatura media anual de 19 &deg;C y 85 % de humedad relativa, con 2,250 mm de precipitaci&oacute;n anual. Los suelos son luvisoles v&iacute;tricos, ricos en nutrientes, de fertilidad moderada, textura gruesa y fragmentos de vidrio volc&aacute;nico, y pH de ligeramente &aacute;cidos a &aacute;cidos (4.3&#45;6.5), ricos en materia org&aacute;nica, bajos en calcio y altos en hierro, manganeso y zinc (Cadena&#45;I&ntilde;iguez <i>et al.,</i> 2006). Las principales caracter&iacute;sticas de los frutos de chayote fueron sabor, color, espinas y tama&ntilde;o. Cuatro variedades tuvieron sabor simple, tres de las cuales fueron verde obscuro (<i>Nigrum spinosum, Nigrum xalapensis, Nigrum levis</i>), y uno fue verde claro (<i>Virens levis</i>); tres fueron amarillos, considerados ligeramente dulces (<i>Albus minor, Albus dulcis, Albus levis</i>), y un verde obscuro que fue amargo (tipo silvestre) (<a href="/img/revistas/rcsh/v17nspe2/a5c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). &Uacute;nicamente <i>N. spinosum</i> y su pariente silvestre tuvieron espinas (<a href="#f1">Figura 1</a>). Frutos de todas la variedades fueron cosechados hasta su madurez fisiologica (18 &plusmn; 2 d posterior a la Antesis) (Cadena&#45;I&ntilde;iguez <i>et al.,</i> 2007), pero el silvestre lleg&oacute; a al madurez fisiol&oacute;gica, cuando los frutos (a&uacute;n en a la planta) dejaron de crecer, lo que ocurri&oacute; 28 &plusmn; 4 d despu&eacute;s de la antesis. Las caracter&iacute;sticas evaluadas fueron: contenido relativo de pigmentos, cucurbitacinas totales, &aacute;cido asc&oacute;rbico, s&oacute;lidos solubles totales, acidez titulable y color de la epidermis.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v17nspe2/a5f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cuantificaci&oacute;n de pigmentos</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los frutos (176 frutos, 22 por variedad) fueron perforados con un puntal c&oacute;nico de 13 mm de di&aacute;metro, en cuatro puntos equidistantes (submuestras), dos en la regi&oacute;n ecuatorial y dos en el &aacute;rea dorsal. El grosor de cada submuestra fue estandarizado a 25 mm con un vernier y pesados inmediatamente. Se determinaron clorofila a, b, y carotenoides totales de acuerdo con Lichtenthaler y Wellburn (1983). Las submuestras de cada fruto fueron maceradas con 6 mL de acetona al 80 % (v/v) y depositados en frascos con tapa de rosca, en obscuridad total envolvi&eacute;ndolos con papel aluminio. Las muestras fueron centrifugadas a 500 <i>x</i> g (&#45; 4 &deg;C) durante 5 min (Beckman GS&#45;15 R). La absorbancia de 2.5 mL del sobrenadante fue evaluada en un espectrofot&oacute;metro (PYE, UNICAM SP8&#45;100), a 663, 646 y 470 nm para determinar clorofila a, b y carotenoides totales, respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Extracci&oacute;n de terpenos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se recolectaron frutos <i>in situ</i> durante el ciclo primavera&#45;verano de 2002 a 2005. La extracci&oacute;n fue realizada adaptando el m&eacute;todo propuesto por Afifi <i>et al.</i> (1999). El tama&ntilde;o de muestra fue: 992 g del pariente silvestre, 1,077 g de <i>V. levis,</i> 1,512 g de <i>N. xalapensis,1,913</i> g de <i>N. spinosum,</i> 1,878 g de <i>N. levis,</i> 1956 g de <i>A. dulcis,</i> 1,804 g de <i>A. minor</i> y 1,984 g de <i>A. levis.</i> Las muestras procesadas siempre incluyeron epidermis, espinas y semillas. El tejido segmentado fue homogeneizado con etanol al 96 % y mantenido a temperatura ambiente (22 &deg;C &plusmn; 1) durante 72 h; los residuos del tejido fueron decantados y el disolvente eliminado con vac&iacute;o. El residuo l&iacute;quido fue particionado con 4 x 250 mL de &eacute;ther et&iacute;lico y el extracto analizado mediante cromatografia en capa fina con tolueno&#45;acetato de etilo 3:1 como fase m&oacute;vil. La placa fue visualizada con una l&aacute;mpara UV/ VIS y &aacute;cido vainillin&#45;fosf&oacute;rico para desarrollar el color, sugerido por Wagner y Bladt (1996), los colores detectados fueron: rojo, rosa, violeta, caf&eacute; y verde obscuro. Las manchas fueron detectadas por comparaci&oacute;n de los valores de retenci&oacute;n (rf) en la placa de acuerdo con Dinan <i>et al.</i> (1997) y Afifi <i>et al.</i> (1999). Los compuestos terp&eacute;nicos fueron cuantificados con base en la diferencia del peso final del extracto et&eacute;reo y el de la muestra original, se obtuvieron dos repeticiones por variedad. Se utilizaron cucurbitacinas B y P (terpenos) como un extracto de referencia previamente obtenido de los frutos de chayote silvestre (<i>Sechium compositum</i>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Color</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El color fue determinado con un color&iacute;metro Hunter&#45;Lab/D25&#45;PC2, calibrado con un plato blanco. Las mediciones fueron reportadas en el sistema CIE *L*a*b. Para estos valores se calcul&oacute; el matiz y &aacute;ngulo crom&aacute;tico (McGuire, 1992). cada fruto fue medido en ambos lados de su regi&oacute;n ecuatorial, en 475, 505, 232, 232, 688, 976, 548, y 78 frutos de <i>A. minor, A. levis, A. dulcis, N. spinosum, N. xalapensis, V. levis, N. levis,</i> y el pariente silvestre, respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>&Aacute;cido Asc&oacute;rbico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; el m&eacute;todo de determinaci&oacute;n mediante 2,6 indofenol diclorofenol. (AOAC, 1980). Se examinaron cinco gramos de pulpa (Epicarpo y Mesocarpo) de 50 frutos de <i>A. minor, A. levis, A. dulcis, V. spinosum, N. xalapensis, V. levis, N. levis</i> y 30 de su pariente silvestre. Cada fruto fue homogeneizado con 50 mL de &aacute;cido ox&aacute;lico (5 g&#183;L<sup>&#45;1</sup>). Cinco mililitros del homogeneizado filtrado fueron removidos y titulados con una soluci&oacute;n de 2, 6 diclorofenol indofenol (20 mg&#183;L<sup>&#45;1</sup>), hasta que el color rosa se mantuvo estable durante 1 min. La cantidad de &aacute;cido asc&oacute;rbico mediante la curva de referencia de &aacute;cido asc&oacute;rbico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Contenido de s&oacute;lidos solubles</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de s&oacute;lidos solubles (CSS) fue determinado con un refract&oacute;merto digital (Atago&#45;100, Jap&oacute;n) en 25 frutos por variedad. Se hicieron cortes en dos &aacute;reas de la regi&oacute;n ecuatorial de cada fruto a una profundidad de &plusmn; 2.5 cm (epicarpo y mesocarpo), y subsecuentemente exprimidos con una tela.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Acidez titulable</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se a&ntilde;adieron 100 mL de agua destilada a 10 g de fruta y fueron licuados. Cincuenta frutos por variedad: <i>A. minor, A. levis, A. dulcis, N. spinosum, N. xalapensis, V. levis, N. levis</i> y 30 frutos del pariente silvestre fueron evaluados tomando cada fruto como una repetici&oacute;n. Posteriormente, la mezcla fue te&ntilde;ida y 10 mL de la soluci&oacute;n fueron titulados con una soluci&oacute;n de hidr&oacute;xido de sodio 0.01 N, se utilizaron dos gotas de fenoftale&iacute;na en una soluci&oacute;n en alcohol al 1% como indicador.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico y tama&ntilde;o de muestra</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El muestreo se realiz&oacute; por 3 a&ntilde;os (2002 &#45; 2005), empleando el m&eacute;todo sugerido por Sukhatme (1970), con un intervalo de confianza de 95 %. Para el an&aacute;lisis de las caracter&iacute;sticas bioqu&iacute;micas, se utiliz&oacute; el an&aacute;lisis de componentes principales (ACP) junto con le procedimiento PRINCOMP del sistema SAS V8 (SAS, 1988). El an&aacute;lisis de conglomerado jer&aacute;rquico fue generado con el m&eacute;todo de ligamiento promedio (UPGMA por sus siglas en ingl&eacute;s) para obtener un dendrograma (Rohlf, 1993). El an&aacute;lisis de varianza se bas&oacute; en los datos de cada variedad de clorofila, compuestos terp&eacute;nicos, s&oacute;lidos solubles y &aacute;cido asc&oacute;rbico; las medias de cada variable fueron comparadas mediante el an&aacute;lisis de Tukey (<i>P</i>&lt;0.05) con el sistema SAS V8 (SAS, 1988).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La composici&oacute;n de la epidermis de los frutos amarillos contiene pigmentos como clorofila a (Chl<sub>a</sub>), b (Chl<sub>b</sub>), y carotenoides totales (Ct), mientas que en variedades con frutos verdes &uacute;nicamente se detectaron Chl<sub>a</sub> y Chl<sub>b</sub> (<a href="#c2">Cuadro 2</a>). La concentraci&oacute;n de Chl<sub>a</sub> y Chl<sub>b</sub> en el pariente silvestre fue mayor comparado con las variedades domesticadas. El fruto de las variedades amarillas <i>A. minor, A. levis y A. dulcis</i> tuvieron hasta 100 veces menos contenido respecto al pariente silvestre, y diez veces menos, comparados con las variedades domesticadas de fruto verde; excepto por <i>N. levis,</i> todas la variedades mostraron menores concentraciones de Chl<sub>a</sub> que de Chl<sub>b</sub> (<a href="#c2">Cuadro 2</a>). Sin embargo, en el presente estudio los diferentes Ct est&aacute;n involucrados en la fotoprotecci&oacute;n, dado que la capacidad de disipar el exceso de energ&iacute;a luminosa esta correlacionada con la concentraci&oacute;n de carotenos y xantofilas en tejidos fotosint&eacute;ticos (Murchie <i>et al.,</i> 1999). Lo anterior puede estar relacionado con el hecho de que la epidermis de frutos de <i>S. edule</i> tienen estomas adem&aacute;s de pigmentos (Cadena&#45;I&ntilde;iguez <i>et al.,</i> 2006), que podr&iacute;an contribuir a la obtenci&oacute;n de CO<sub>2</sub> necesario para su crecimiento mediante el intercambio gaseoso, y fotos&iacute;ntesis; por tanto, similar a cualquier otro presente en tejido fotosint&eacute;tico, mecanismos de fotoprotecci&oacute;n presentes en la epidermis de los frutos (Blanke y Lovat, 1993).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v17nspe2/a5c2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La concentraci&oacute;n de clorofila registrada en las variedades domesticadas de frutos verdes mostr&oacute; que existe variaci&oacute;n de acuerdo con la epidermis del fruto. Por ejemplo, <i>A. levis, N. xalapensis, N. spinosum y V. levis</i> presentaron 0.2826, 0.2421, 0.1762, y 0.1312 mg&#183;g<sup>&#45;1</sup>, respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La variaci&oacute;n de color empezando por el pariente silvestre al fruto verde obscuro, a los frutos verde claro como V. .levis, posiblemente con transici&oacute;n al color amarillo. El color expresado como &deg;Hue fue 222.9 para <i>N. xalapensis,</i> 201.1&nbsp;para <i>N. spinosum,</i> 198.4 para el pariente silvestre, 167.2&nbsp;para <i>N. levis,</i> y 126.5 para <i>V. levis.</i> El fruto amarillo fue de 68.3 &deg; de matiz para <i>A. minor,</i> 67.3 para <i>A. dulcis,</i> y 60.8 para <i>A. levis.</i> Los valores &gt;160 fueron equivalentes a verde obscuro y verde muy obscuro, el intervalo entre 120 y 130 corresponden a verde claro, donde los valores &lt; 90 corresponden a amarillo y crema.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presencia de espinas en la epidermis de los frutos fue registrada &uacute;nicamente en <i>N. spinosum</i> y el pariente silvestre. La variaci&oacute;n del color del fruto es atribuido a cambios en el contenido y tipo de pigmentos como clorofila y xantofilas (Hendry, 1993), mientras que la presencia de espinas puede ser atribuible a menor concentraci&oacute;n de &aacute;cido giber&eacute;lico (AG). De acuerdo con Cadena&#45;I&ntilde;iguez <i>et al.</i> (2008), la aplicaci&oacute;n de GA<sub>3</sub> (31 mg&#183;kg<sup>1</sup>) despu&eacute;s de la antesis para analizar los frutos de <i>V. levis</i> promueve el desarrollo de espinas, similar a las observadas en <i>N. spinosum</i> y el pariente silvestre; una vez que el AG<sub>3</sub> deja de ser aplicado, la ocurrencia de espinas desapreci&oacute;, esto sugiere alg&uacute;n tipo de ajuste en la ruta metab&oacute;lica de la s&iacute;ntesis de AG<sub>3</sub>, en la ruta de metabolismo secundario.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El sabor del fruto es uno de los valores etnobot&aacute;nicos distintivos de las variedades de chayote. Las cucurbitacinas son los metabolitos responsables por el caracter&iacute;stico sabor amargo de sus frutos. Estos metabolitos son terpenoides tetraciclicos, presentes en plantas en forma de gluc&oacute;sidos, en el chayote, de acuerdo con los valores rf (0.1&#45;041) se encontr&oacute; que el 59 % fue de este tipo (Dinan <i>et al.,</i> 1997). Las variedades con la mayor cantidad de compuestos terp&eacute;nicos fue la del pariente silvestre (1.456 mg g<sup>&#45;1</sup>), seguido por <i>N. levis</i> (0.660 mg&#183;g<sup>&#45;1</sup>), <i>N. xalapensis</i> (0.195 mg&#183;g<sup>&#45;1</sup>), <i>N. spinosum</i> (0.190 mg&#183;g<sup>&#45;1</sup>), y <i>V. levis</i> (0.116 mg&#183;g<sup>&#45;1</sup>). Las variedades amarillas tuvieron la menor concentraci&oacute;n; siendo sus valores menores que los de los domesticados verdes, y mucho menores respecto al de los frutos silvestres, con valores de 0.027 a 0.088 mg&#183;g<sup>&#45;1</sup>. Respecto de los compuestos terp&eacute;nicos, clorofila y carotenoides, se considera que las variedades durante su proceso de coevoluci&oacute;n con los humanos podr&iacute;an haber incorporado ciertas modificaciones el la ruta biosint&eacute;tica de estos metabol&iacute;tos; por ejemplo, los frutos amarillos tuvieron menor contenido de Chl<sub>a</sub> y Chl<sub>b</sub> comparados con los frutos verdes; sin embargo, fueron los &uacute;nicos que contuvieron Ct y una menor concentraci&oacute;n de terpenos (Balliano <i>et al.,</i> 1982). Esto podr&iacute;a ser atribuido a un posible ajuste en la la ruta de el &aacute;cido mevalonico (AMV), ya que generalmente todos los compuestos terpenoides naturales, como las cucurbitacinas y carotenoides, biosintetisan el AMV (Bramley, 1997). A trav&eacute;s de la ruta de la acetil CoA mediante un intermediario com&uacute;n. Estudios realizados en <i>Cucumis sativum</i> demostraron que en la ruta metab&oacute;lica de las cucucrbitacinas, unidades de isoprenos son compartidas como precursores de diferentes metabolitos, as&iacute; que si la planta requiriere elaborar un metabolito en mayor cantidad, esta utilizar&aacute; las unidades de isoprenoides existentes, reduciendo la s&iacute;ntesis de otros compuestos . En este contexto, la plasticidad qu&iacute;mica habr&iacute;a permitido a las variedades de <i>S. edule</i> ajustar su contenido de cucurbitasnas para as&iacute; poder sintetizar una mayor cantidad de caroteniodes en frutos amarillos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">M&aacute;s del 90% del CSS en frutos de <i>S. edule</i> est&aacute; constituido por fructosa y glucosa en el mesocarpo, adem&aacute;s de raffinosa y sacarosa en los cotiledones, que pueden dar al fruto un ligero sabor dulce (Aung <i>et al.,</i> 1992). El contenido de solidos solubles (10.9 &deg;Brix) y compuestos terp&eacute;nicos (1.456 mg&#183;g<sup>&#45;1</sup>) en el Chayote silvestre fue la m&aacute;s alta dentro de todo el grupo. En otras variedades silvestres del g&eacute;nero <i>Sechium,</i> tal como <i>Sechium compositum</i> y S. <i>chinantlense,</i> valores de 10.6 y 10.3 &deg;Brix han sido reportados en frutos frescos (datos no mostrados). Sin embargo, tienen un fuerte sabor amargo, que podr&iacute;a ser un rasgo distintivo de las variedades silvestres de <i>Sechium,</i> una clasificaci&oacute;n informal describe a <i>A. minor, A. dulcis,</i> y <i>A. levis,</i> como ligeramente dulces, con valores de 7.66, 7. 21 y 8.08 &deg;Brix, pero al mismo tiempo tuvieron el menor rendimiento en compuestos terp&eacute;nicos (0.027, 0.039 and 0.088 mgg<sup>&#45;1</sup>). El contenido de CSS en las variedades verdes de fruto verde, <i>V. levis, N. xalapensis,</i> y <i>N. spinosum</i> fue de 5.14, 9.93 y 6.93 %, localizado como un grupo intermedio entre el silvestre y la amarilla. La acidez titulable fue baja, fluctu&oacute; entre 0.028 y 0.059, y las variedades verdes mostraron hasta el doble del porcentaje de acidez de las variedades amarillas. Respecto del &aacute;cido asc&oacute;rbico (Asc) en frutos, el grupo de chayote amarillo tuvo las mayores concentraciones (0.0742 &#45; 0.0782 mg&#183;g<sup>&#45;1</sup>), mientras que los verdes domesticados mostraron valores desde 0.0495 hasta 0.0676 mg&#183;g<sup>&#45;1</sup>, y los frutos silvestres 0.0399 mg&#183;g<sup>&#45;1</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El sabor del chayote es una caracter&iacute;stica de la clasificaron etnobot&aacute;nica con una gran variabilidad entre variedades. El sabor amargo del pariente silvestre podr&iacute;a estar basado en un mayor contenido de compuestos triterp&eacute;nicos (como cucurbitasinas), mientras que el ligero sabor dulce de los frutos amarillos podr&iacute;a estar relacionado a una mayor cantidad de CSS, menor contenido triterp&eacute;nico, y menor acidez. La variaci&oacute;n de color y sabor evaluadas en los frutos de variedades de <i>S. edule</i> podr&iacute;an ser tambi&eacute;n producto de ajustes en el MVA, dado el hecho de que las semillas del silvestre no son viv&iacute;paras, no as&iacute; las de variedade verde y amarilla domesticada (Cadena&#45;I&ntilde;iguez <i>et al.,</i> 2008). Esto podr&iacute;a ser atribuible de nuevo, al ajuste en el contenido de cucurbitacina y AG, dado que las cucurbitacinas has sido identificadas como antagonistas de la acci&oacute;n de la AG, hormona relacionada al proceso de germinaci&oacute;n (Zehhar <i>et al.,</i> 2002), y particularmente en S. <i>edule.</i> Aung y USDA&#45;ARS (1998) determinaron que la germinaci&oacute;n se estimula con la aplicaci&oacute;n de giberilinas, y podr&iacute;a sugerir que, a mayor concentraci&oacute;n de cucurvitacinas en los frutos, menor el contenido de AG, y en consecuencia menor precocidad en la germinaci&oacute;n. A este respecto, es relevante que el pariente silvestre, la &uacute;nica variedad silvestre, registr&oacute; la mayor concentraci&oacute;n de cucurbitacinas y no presenta viviparidad.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis previo sugiere una relaci&oacute;n entre las variedades, asumiendo que el silvestre es el punto de referencia del ajuste bioqu&iacute;mico de las variedades domesticadas. Los resultados el ACP mostraron que 92.5 % de la variaci&oacute;n es explicada por los tres primero componentes principales (CP). Las caracter&iacute;sticas que contribuyeron a la variaci&oacute;n de el PC1 fueron relacionadas con el contenido de &aacute;cido asc&oacute;rbico, Chla y Chlb; en el CP2, hubo solidos solubles y Chla, Analmente en el CP3, Ct y acidez titulable (<a href="/img/revistas/rcsh/v17nspe2/a5c3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>). La dispersi&oacute;n de variedades PC1 vs PC2, y PC1 vs PC3 muestra la variaci&oacute;n de el pariente silvestre y el agrupamiento de frutos amarillos junto con los verdes claro (<a href="/img/revistas/rcsh/v17nspe2/a5f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). El dendrograma de agrupamiento demuestra que las variedades de S. edule se encuentran bioqu&iacute;micamente relacionadas, siendo el silvestre el ancestro de las domesticadas (<a href="/img/revistas/rcsh/v17nspe2/a5f3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>). Se podr&iacute;a considerar que las variedades de fruto amarillo, basados en la posici&oacute;n en la que cada variedad mantiene en la relaci&oacute;n, muestra un mayor grado de cambio bioqu&iacute;mico; ellos son, sin embargo, los que han sido sujetos a menor presi&oacute;n de selecci&oacute;n por cultivo extensivo. Por ello, los cambios junto con la domesticaci&oacute;n podr&iacute;an ser el resultado de un proceso de especiaci&oacute;n adaptativa en vista de cambios ambientales, cuyos efectos secundarios podr&iacute;an verse reflejados en modificaciones de color, sabor, apariencia (espinas), y compuestos secundarios (cucucrbitacinas, clorofila, carotenoides y &aacute;cido asc&oacute;rbico) (Cadena&#45;I&ntilde;iguez <i>et al.,</i> 2008).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Existe evidencia bioqu&iacute;mica para explicar parcialmente la variaci&oacute;n de color, sabor, y apariencia en los frutos del chayote. Las variedades cultivadas mantienen una estrecha relaci&oacute;n bioqu&iacute;mica con su pariente silvestre, y registran diferencias en metabolitos secundarios, esto reafirma las caracter&iacute;sticas usadas para distinguir los diferentes tipos de chayote por el consumidor.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores desean agradeces al Sistema Nacional de Recursos Fitogen&eacute;ticos (SNICS&#45;SINAREFI&#45;SAGARPA) por el apoyo econ&oacute;mico para este proyecto y al M.C. Marcos V. V&aacute;zquez Hern&aacute;ndez por su asistencia t&eacute;cnica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">AFIFI, M. S.; ROSS, S. A.; SOHLY, M. A.; NAEEM, Z. E.; HALAWEISH, F. T. 1999. Cucurbitacins of <i>Cucumis prophetarum.</i> J. Chem. Ecol. 25: 847&#45;859.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671237&pid=S1027-152X201100050000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">AOAC. 1980. Association of Official Analytical Chemist. <i>In:</i> Official Methods of Analysis. HORWITZ, W. (ed). 12th edition. Washington, D. C. 1094 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671239&pid=S1027-152X201100050000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">AUNG, L. H.; RIJ, R. E.; FOUSE, D. C.; LINDEGREN, J. E. 1992. Postharvest fruit respiration and soluble sugars changes of <i>Sechium edule</i> Swartz. Phyton 53: 125&#45;134.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671241&pid=S1027-152X201100050000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">AUNG, L. H.; USDA&#45;ARS. 1998. Bioregulators on postharvest sprout growth of <i>Sechium edule</i> Sw. Am. Soc. Plant Biol. (abstract no. 598).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671243&pid=S1027-152X201100050000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BALLIANO, G.; CAPUTO, O; VIOLA, F.; DELPRINO, L.; CATTEL, L. 1982. The transformation of 10a&#45;cucurbita&#45;5,24&#45;dien&#45;3&szlig;&#45;ol into cucurbitacin C by seedlings of <i>Cucumis sativus.</i> Phytochemistry 22: 909&#45;913.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671245&pid=S1027-152X201100050000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BLANKE, M. M.; LOVAT, C. J. 1993. Anatomy and transpiration of the avocado Inflorescence. Ann. Bot. 71 (6): 543&#45;547.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671247&pid=S1027-152X201100050000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BRAMLEY, M. P. 1997. Isoprenoid metabolism. <i>In:</i> Plant Bioche postharvest management and pharmacological characteristics of <i>Sechium edule</i> (Jacq.) Sw. Fresh Produce, Global Sci. Books 1: 41&#45;52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671249&pid=S1027-152X201100050000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CADENA&#45;I&Ntilde;IGUEZ, J.; AVENDA&Ntilde;O&#45;ARRAZATE, C. H.; SOTO&#45;HERN&Aacute;NDEZ, M.; RUIZ&#45;POSADAS, L. M.; AGUIRRE&#45;MEDINA, J. F.; AR&Eacute;VALO&#45;GALARZA, M. L. 2008. Infraspecific variation of <i>Sechium edule</i> (Jacq.) Sw. in the state of Veracruz, Mexico. Genet. Resour. Crop Evol. 55: 835&#45;847.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671251&pid=S1027-152X201100050000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">COOK, O. F. 1901. The chayote: A tropical vegetable. pp. 7&#45;31. Bull. No. 28. Division of Botany, U.S. Department of Agriculture, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671253&pid=S1027-152X201100050000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">DINAN, L. P.; WHITING, J. P.; GIRAULT, R.; LAFONT, T. S.; DHADIALLA, D. E.; CRESS, B.; MUGAT, C.; ANTONIEWSKI, J. A. 1997. Cucurbitacins are insect steroid hormone antagonists acting at the ecdysteroid receptor. Biochem. J. 327: 643&#45;650.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671255&pid=S1027-152X201100050000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HENDRY, A. F. G. 1993. Plant pigments. pp. 181&#45;196. <i>In:</i> Plant Biochemistry and Molecular Biology. John Wiley &amp; Sons Ltd. U. K.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671257&pid=S1027-152X201100050000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">LICHTENTHALER, H.; WELLBURN, A. R. 1983. Determinations of total carotenoids and chlorophylls a and b of leaf extracts in different solvents. Biochem. Soc. Trans. 11: 591&#45;592.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671259&pid=S1027-152X201100050000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">LIRA&#45;SAADE, R. 1996. Chayote. Sechium edule (Jacq.) Sw. Promoting the conservation and use of underutilized and neglected crops. 8. IPGR, Gatersleben/International Plant Genetic Resources Institute, Rome, Italy. 57 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671261&pid=S1027-152X201100050000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">McGUIRE, R. G. 1992. Reporting of objective color measurements. HortScience27: 1254&#45;1255.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671263&pid=S1027-152X201100050000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MURCHIE, E. H.; CHEN, Y. Z.; HUBBART, S.; PENG, S. B.; HORTON, P. 1999. Interactions between senescence and leaf orientation determine <i>in situ</i> patterns of photosynthesis and photoinhibition in field grow rice. Plant Physiol. 119: 553&#45;563.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671265&pid=S1027-152X201100050000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">REINECKE, F. 1898. Die Flora der Samanoa&#45;Inseln. Englers Botany J. 23:237&#45;368.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671267&pid=S1027-152X201100050000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ROHLF, F. J. 1993. NTSYS&#45;pc. Numerical taxonomy and multivariate analysis system. Exeter Software v. 2.0. Applied Biostatistics Inc., New York.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671269&pid=S1027-152X201100050000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SAS. 1988. SAS/STAT User guide: Statistics, Ver. 6, 4<sup>th</sup>vol 1 and 2. SAS Institute, Inc. Cary, New York, USA. 1028 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671271&pid=S1027-152X201100050000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SUKHATME, V. P. 1970. Teor&iacute;a de encuestas por muestreo con aplicaciones. Fondo de Cultura Econ&oacute;mica, M&eacute;xico. 495 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671273&pid=S1027-152X201100050000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">WAGNER, H.; BLADT, S. 1996. Plant drugs analyses, a thin layer chromatography atlas. Second Edition. Springer. Alemania. pp. 94&#45;96.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671275&pid=S1027-152X201100050000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ZEHHAR, N.; INGOUFF, M.; BOUYA, D.; FER, A. 2002. Possible involvement of gibberellins and ethylene in <i>Oroban cheramosa</i> germination. Eur. Soc. Weed Res. 42: 464&#45;469.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6671277&pid=S1027-152X201100050000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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