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<publisher-name><![CDATA[Universidad Nacional Autónoma de México, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Desarrollo ovárico y su relación con las concentraciones séricas de 17&#946;-estradiol y 17&#945;-hidroxi- 4-pregnen-3-ona en hembras de primera maduración de pez blanco, Chirostoma humboldtianum (Atheriniformes: Atherinopsidae)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Association between ovarian development and serum concentrations of 17&#946;-estradiol and 17&#945;-hydroxy-4-pregnen-3-one in first maturation females of the shortfin silverside fish, Chirostoma humboldtianum (Atheriniformes: Atherinopsidae)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Se analizó el primer ciclo reproductivo de 50 hembras de pez blanco, Chirostoma humboldtianum (Valenciennes), en condiciones de cultivo. Se describieron los estadios de desarrollo ovárico y los índices gonadosomático (IG) y hepatosomático (IH). Se realizó una descripción histológica de los ovarios y se midieron los niveles séricos del estradiol (E2) y de la 17&#945;-hidroxi -4-pregnen-3-ona (17-P4) por radioinmunoanálisis. Los resultados mostraron una primera época reproductiva de más de seis meses. Las hembras iniciaron sus desoves a la edad de un año. Se identificaron cuatro estadios de maduración ovárica (estadios I al IV) en la época de desoves y uno más (V) en la época no reproductiva, este último no tuvo un patrón de desarrollo definido. Los valores de los índices IG e IH mostraron una relación lineal positiva con el peso corporal únicamente en la época reproductiva (r² = 0.74 y r² = 0.86, P < 0.05, respectivamente). El análisis histológico de los ovarios indicó que la especie se clasifica como sincrónica por grupos múltiples. Los primeros estadios de maduración gonadal fueron caracterizados por ovarios cuyas poblaciones foliculares estuvieron compuestas predominantemente por folículos previtelinos. Conforme avanzó el proceso de maduración, se observaron todos los estadios de desarrollo folicular, con tendencia al incremento de folículos vitelinos y maduros. Durante el estadio I, las concentraciones de las hormonas esteroides sexuales circulantes de estradiol (E2) y de la 17&#945;-hidroxi-4-pregnen-3-ona (17-P4) fueron altas (2.5 ± 0.7 ng/mL de E2 y 2.4 ± 0.3 ng/mL de 17-P4), se observó un decremento durante el estadio II y los valores más altos se registraron en el estadio IV (7.6± 2.1 ng/mL de E2 y 1.8 ± 0.9 ng/mL de 17-P4). Este mismo patrón fue observado durante la época de no desoves (ANDEVA P < 0.05); estos resultados son los primeros hallazgos en la fisiología reproductiva del pez blanco, los cuales sugieren una temprana actividad esteroidogénica en hembras inmaduras, además de que esta especie conserva su capacidad hormonal en la época posdesove, sustentada en su composición folicular. Lo anterior ayudará para comprender mejor los mecanismos involucrados en los procesos reproductivos y servirá de base para lograr su reproducción controlada y la obtención de huevos y larvas en condiciones de cultivo.]]></p></abstract>
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<kwd lng="en"><![CDATA[Shortfin Silverside]]></kwd>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Hormonas esteroides sexuales]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos cient&iacute;ficos</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Desarrollo ov&aacute;rico y su relaci&oacute;n con las concentraciones </b><b>s&eacute;ricas de 17&beta;&#150;estradiol y 17&alpha;&#150;hidroxi&#150; 4&#150;pregnen&#150;3&#150;ona en </b><b>hembras de primera maduraci&oacute;n de pez blanco, <i>Chirostoma </i></b><b><i>humboldtianum </i>(Atheriniformes: Atherinopsidae)</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Association between ovarian development and serum concentrations of <b>17&beta;&#150;</b>estradiol and 17&alpha;&#150;hydroxy&#150;4&#150;pregnen&#150;3&#150;one in first maturation females of the shortfin silverside fish, <i>Chirostoma humboldtianum </i>(Atheriniformes: Atherinopsidae)</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Guillermo Artemio Blancas Arroyo*      Irene de los &Aacute;ngeles Barriga Sosa**      Tom&aacute;s Morato Cartagena** Carlos Manuel Romero Ram&iacute;rez**      Jos&eacute; Luis Arredondo Figueroa**</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>* Carrera de Biolog&iacute;a, Facultad de Estudios Superiores Zaragoza, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, Av. 5 de Mayo y Fuerte de Loreto, Colonia Ej&eacute;rcito de Oriente, M&eacute;xico, D. F., 09230, correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:guiblaro@aol.com">guiblaro@aol.com</a></i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>** Planta Experimental de Producci&oacute;n Acu&iacute;cola, Departamento de Hidrobiolog&iacute;a y Departamento de Biolog&iacute;a de la Reproducci&oacute;n, Divisi&oacute;n de CBS, Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana&#150;Iztapalapa, Av. San Rafael Atlixco 186, Colonia Vicentina, 09340, M&eacute;xico, D.F., Apartado postal, 55&#150;535, Tel.: (01) 5804 6585 y (01) 5804 4708, Fax: (01) 58044740, correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:afjl@xanum.uam.mx">afjl@xanum.uam.mx</a> y <a href="mailto:crr@xanum.uam.mx">crr@xanum.uam.mx</a></i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Correspondencia: </b>    <br>   <i>Dr. Jos&eacute; Luis Arredondo Figueroa,     <br>   Tel.: (01) 5804 6585; fax: (01) 5804 4738; </i>    <br> correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:afjl@xanum.uam.mx">afjl@xanum.uam.mx</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el 1 de agosto de 2006    <br>   Aceptado el 18 de octubre de 2007.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">The first reproductive cycle of 50 females of the shortfin silverside, <i>Chirostoma humboldtianum </i>(Valenciennes) in culture conditions was analyzed. Ovarian developmental stages, gonadosomatic (GI) and hepatosomatic (HI) indexes were described. Histo&#150;logical description of the ovaries and quantification of estradiol serum levels (E2) and 17&alpha;&#150;hydroxy&#150;4&#150;pregnen&#150;3&#150;one (17&#150;P4) by radioinmune assay were performed. Results showed a first reproductive season longer than six months. Females initiated spawning at the age of one year. Four ovarian maturation stages (I to IV) were determined during the spawning season and one (V) during the non&#150;spawning season, the last one showed a non&#150;defined pattern of development. The GI and HI indexes values indicate a positive lineal relation to body&#150;weight only during the reproductive season (r<sup>2</sup> = 0.74 and r<sup>2</sup> = 0.86, P <u>&lt;</u> 0.05, respectively). Histological analysis of the ovaries indicated that the species correspond to the pattern described as group&#150;synchronous with multiple spawnings. The follicular population showed reproductive activity during the first stages of maturation with a predominant population of pre&#150;vitellogenic follicles. As the ovarian maturation increased, the presence of all the follicular developmental stages was observed, with a tendency of an increase of vitellogenic and mature follicles. The concentration of circulating sexual steroid hormones of estradiol (E2) and 17&alpha;&#150;hydroxy&#150;4&#150;pregnen&#150;3&#150;one (17&#150;P4) were high during stage I (2.5 &plusmn; 0.7 ng/m L and 2.4 &plusmn; 0.3 ng/mLfor E2 and 17&#150;P4, respectively); a decrease was observed during stage II, and the highest values were observed in stage IV (7.6 &plusmn; 2.1 ng/mL for E2 and 1.8 &plusmn; 0.9 ng/mL for 17&#150;P4). The same pattern was observed during non&#150;spawning season (ANOVA P &lt; 0.05), these results are the first findings on the reproductive physiology of the shortfin silverside fish, suggesting an early steroidogenic activity in immature females. Furthermore, the species maintains its hormonal capacity during the post&#150;spawning season, as it is supported by their follicular composition. The aforementioned will allow to have a better understanding of the mechanisms involved in their reproductive processes and to improve the mechanisms utilized to control their reproduction and for the production of eggs and larvae in culture conditions.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: Shortfin Silverside; <i>Chirostoma humboldtianum, </i>Ovarian Development; Sexual Steroid Hormones.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se analiz&oacute; el primer ciclo reproductivo de 50 hembras de pez blanco, <i>Chirostoma humboldtianum </i>(Valenciennes), en condiciones de cultivo. Se describieron los estadios de desarrollo ov&aacute;rico y los &iacute;ndices gonadosom&aacute;tico (IG) y hepatosom&aacute;tico (IH). Se realiz&oacute; una descripci&oacute;n histol&oacute;gica de los ovarios y se midieron los niveles s&eacute;ricos del estradiol (E2) y de la 17&alpha;&#150;hidroxi &#150;4&#150;pregnen&#150;3&#150;ona (17&#150;P4) por radioinmunoan&aacute;lisis. Los resultados mostraron una primera &eacute;poca reproductiva de m&aacute;s de seis meses. Las hembras iniciaron sus desoves a la edad de un a&ntilde;o. Se identificaron cuatro estadios de maduraci&oacute;n ov&aacute;rica (estadios I al IV) en la &eacute;poca de desoves y uno m&aacute;s (V) en la &eacute;poca no reproductiva, este &uacute;ltimo no tuvo un patr&oacute;n de desarrollo definido. Los valores de los &iacute;ndices IG e IH mostraron una relaci&oacute;n lineal positiva con el peso corporal &uacute;nicamente en la &eacute;poca reproductiva (r<sup>2</sup> = 0.74 y r<sup>2</sup> = 0.86, P &lt; 0.05, respectivamente). El an&aacute;lisis histol&oacute;gico de los ovarios indic&oacute; que la especie se clasifica como sincr&oacute;nica por grupos m&uacute;ltiples. Los primeros estadios de maduraci&oacute;n gonadal fueron caracterizados por ovarios cuyas poblaciones foliculares estuvieron compuestas predominantemente por fol&iacute;culos previtelinos. Conforme avanz&oacute; el proceso de maduraci&oacute;n, se observaron todos los estadios de desarrollo folicular, con tendencia al incremento de fol&iacute;culos vitelinos y maduros. Durante el estadio I, las concentraciones de las hormonas esteroides sexuales circulantes de estradiol (E2) y de la 17&alpha;&#150;hidroxi&#150;4&#150;pregnen&#150;3&#150;ona (17&#150;P4) fueron altas (2.5 &plusmn; 0.7 ng/mL de E2 y 2.4 &plusmn; 0.3 ng/mL de 17&#150;P4), se observ&oacute; un decremento durante el estadio II y los valores m&aacute;s altos se registraron en el estadio IV (7.6&plusmn; 2.1 ng/mL de E2 y 1.8 &plusmn; 0.9 ng/mL de 17&#150;P4). Este mismo patr&oacute;n fue observado durante la &eacute;poca de no desoves (ANDEVA P &lt; 0.05); estos resultados son los primeros hallazgos en la fisiolog&iacute;a reproductiva del pez blanco, los cuales sugieren una temprana actividad esteroidog&eacute;nica en hembras inmaduras, adem&aacute;s de que esta especie conserva su capacidad hormonal en la &eacute;poca posdesove, sustentada en su composici&oacute;n folicular. Lo anterior ayudar&aacute; para comprender mejor los mecanismos involucrados en los procesos reproductivos y servir&aacute; de base para lograr su reproducci&oacute;n controlada y la obtenci&oacute;n de huevos y larvas en condiciones de cultivo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: Pez blanco; <i>Chirostoma humboldtianum; </i>Desarrollo ov&aacute;rico; Hormonas esteroides sexuales.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La reproducci&oacute;n en los peces tele&oacute;steos, como en todos los vertebrados, est&aacute; controlada por ritmos biol&oacute;gicos end&oacute;genos,<sup>1</sup> y &eacute;ste es un proceso que demanda una coordinaci&oacute;n fisiol&oacute;gica, la cual, a su vez, est&aacute; regulada por el eje hipot&aacute;lamo&#150;hip&oacute;fisis&#150;g&oacute;nadas y estimulado por factores ambientales como el fotoperiodo y la temperatura.<sup>2</sup> La asociaci&oacute;n entre el desarrollo gonadal y niveles plasm&aacute;ticos de hormonas esteroides ha demostrado ser una herramienta importante para comprender el control endocrino de la reproducci&oacute;n en los peces. Se sabe que en las hembras de peces tele&oacute;steos, la vitelog&eacute;nesis y la maduraci&oacute;n folicular son reguladas por las gonadotropinas GtH I y GtH II a trav&eacute;s de hormonas esteroides que son secretadas por las c&eacute;lulas foliculares que rodean al ovocito. La funci&oacute;n principal del 17&beta;&#150;estradiol (E2) es estimular la s&iacute;ntesis hep&aacute;tica de la vitelogenina (VTG) y de lipoprote&iacute;nas, que son acumuladas en el ovocito. Los esteroides C21, como la 17,20&beta;&#150;dihidroxi&#150;4&#150;pregnen&#150;3&#150;ona (17,20&beta;&#150;P<sub>4</sub>) y la 17,20&beta;,21&#150;triihidroxi&#150;4&#150;pregnen&#150;3&#150;ona (17,20&beta;,21&#150;P4), a su vez, inducen la maduraci&oacute;n, por lo que son llamadas hormonas inductoras de la maduraci&oacute;n (HIM).<sup>3&#150;9</sup> El estradiol circulante interviene en la regulaci&oacute;n positiva y negativa de la secreci&oacute;n de las gonadotropinas en la hip&oacute;fisis y en la formaci&oacute;n y liberaci&oacute;n de la hormona liberadora de las gonadotropinas (GnRH) en el hipot&aacute;lamo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En las hembras de peces tele&oacute;steos, los niveles circulantes de E2 disminuyen despu&eacute;s de que se ha completado el crecimiento del ovario y el desarrollo de los ovocitos, cuando la hembra se encuentra preparada para el desove, hay incremento de la gonadotropina II (GtH II), que induce la activaci&oacute;n del proceso esteroidog&eacute;nico y s&iacute;ntesis y liberaci&oacute;n de la HIM.<sup>2,10&#150;13</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El pez blanco pertenece al g&eacute;nero <i>Chirostoma </i>y son peces end&eacute;micos de la Meseta Central de M&eacute;xico, donde sustentan la pesca ancestral en M&eacute;xico. En condiciones naturales, el pez blanco de la especie <i>C. humboldtianum </i>presenta una amplia temporada reproductiva con desoves m&uacute;ltiples.<sup>14,15</sup> Sin embargo, los conocimientos de su biolog&iacute;a reproductiva son escasos. Particularmente en hembras, el conocimiento del proceso es fundamental para el control de la reproducci&oacute;n, sobre todo en especies que presentan dificultades en su cultivo, como los peces blancos.<sup>14</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aqu&iacute; se presenta el primer ciclo reproductivo de hembras de <i>C. humboldtianum </i>criadas en cautiverio, los estadios de maduraci&oacute;n ov&aacute;rica y cambios en la composici&oacute;n folicular asociados con los niveles circulantes de 17&beta;&#150;estradiol (E2) y la 17&alpha;&#150;hydroxi&#150;4&#150;pregnen&#150;3&#150;ona (17&#150;P4), durante las &eacute;pocas de desove y de descanso reproductivo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material y m&eacute;todos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Reproductores</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los progenitores de <i>C. humboldtianum </i>fueron inicialmente capturados de una poblaci&oacute;n silvestre en la presa "Las Tasas", municipio de Jocotitl&aacute;n, Estado de M&eacute;xico, M&eacute;xico, y mantenidos en condiciones de cultivo en las instalaciones de la Planta Experimental de Producci&oacute;n Acu&iacute;cola (PExPA), facilitadas por la Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana&#150;Iztapalapa (UAM&#150;I). La poblaci&oacute;n en estudio (F1) consisti&oacute; en peces de sexo indistinto (n = 226). Los organismos fueron agrupados en tres cohortes de acuerdo con su edad: la cohorte 1, de 10 meses, n = 158 y con promedio de longitud total (LT) y peso (PT) de 94.2 &plusmn; 1.6 mm y 6.6 &plusmn; 1.6 g, respectivamente; cohorte 2, de 11 meses, n = 42 y con LT y PT de 116.8 &plusmn; 0.5 mm y 11.5 &plusmn; 1.9 g, respectivamente; cohorte 3, de 12 meses, n = 26 organismos, con LT y PT de 133.9 &plusmn; 2.3 mm y 19.6 &plusmn; 6.9 g, respectivamente. Cada cohorte fue cultivada por separado en un estanque de cuatro mil L de capacidad. Cada estanque contaba con un sistema cerrado de recirculaci&oacute;n, la calidad del agua y estrategias de alimentaci&oacute;n fueron las recomendadas por Mares y Morales<sup>16</sup> y Blancas <i>et al.</i><sup>14,</sup><sup>17</sup> El sexo de todos los peces fue determinado manualmente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Desarrollo ov&aacute;rico</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se capturaron 50 hembras de todos los cohortes (30 en la temporada reproductiva y 20 durante la &eacute;poca de descanso). El estudio del desarrollo ov&aacute;rico inici&oacute; con los peces de 10, 11 y 12 meses de edad. Las hembras se anestesiaron con benzoca&iacute;na diluida en alcohol et&iacute;lico al 1.6%, y sus pesos y longitudes totales se registraron con una balanza digital<a href="#unas">*</a> de 0.1 g de precisi&oacute;n y un icti&oacute;metro graduado en mil&iacute;metros, respectivamente. Se extrajeron los ovarios y el h&iacute;gado de cada hembra, y se pesaron en una balanza anal&iacute;tica<a href="#unas">**</a> de 0.0001 g de precisi&oacute;n, de igual forma se registr&oacute; el color y la apariencia de los ovarios. Se midi&oacute; el porcentaje de espacio visceral (PEV) ocupado por los ovarios mediante el m&eacute;todo volum&eacute;trico;<sup>18</sup> con estos valores se calcularon los &iacute;ndices gonadosom&aacute;tico (IG) y hepatosom&aacute;tico (IH) de acuerdo con Tyler y Sumpter.<sup>19 </sup>Se caracterizaron los estadios de madurez ov&aacute;rica de acuerdo con Sol&oacute;rzano,<sup>20</sup> quien indica una clasificaci&oacute;n para peces del mismo g&eacute;nero.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Composici&oacute;n folicular</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se describi&oacute; el an&aacute;lisis histol&oacute;gico para los 50 pares de ovarios, que se conservaron en soluci&oacute;n Bouin,<sup>21</sup> luego se procedi&oacute; a su deshidrataci&oacute;n, aclaraci&oacute;n, prefunci&oacute;n y a su inclusi&oacute;n en parafina<a href="#unas">***</a> de punto de fusi&oacute;n de 49 a 50&deg;C. Se efectuaron cortes transversales de 8 u de profundidad utilizando un micr&oacute;tomo Microm;<a href="#unas">****</a> despu&eacute;s, los cortes se desparafinaron, se ti&ntilde;eron con hematoxilina de Harris&#150;Eosina amarillenta (H&#150;E) y finalmente se conservaron en resina Merk.<sup>22</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para describir la estructura histol&oacute;gica de los ovarios, las preparaciones histol&oacute;gicas se observaron con un microscopio &oacute;ptico.<a href="#unas"><img src="/img/revistas/vetmex/v39n1/a6s1.jpg" border="1"></a> De acuerdo con lo descrito por Wallace y Selman,<sup>23</sup> se realiz&oacute; la identificaci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de los distintos estadios de desarrollo folicular. Se identificaron los siguientes estadios: <i>a) </i>cromatina nuclear = fol&iacute;culos primarios (FP); <i>b) </i>perinuclear = fol&iacute;culos secundarios (FS); <i>c) </i>alv&eacute;olo cortical = fol&iacute;culos terciarios (FT); <i>d) </i>estado vitelog&eacute;nico = fol&iacute;culos vitelinos (FV), y <i>e) </i>estado de maduraci&oacute;n = fol&iacute;culos maduros (FM). Para conocer la composici&oacute;n folicular que caracteriza cada estadio de maduraci&oacute;n ov&aacute;rica, se necesitaron cinco preparaciones histol&oacute;gicas de ovarios en el estadio de maduraci&oacute;n ov&aacute;rica I, nueve en el estadio II, 14 en el estadio III y 12 en el estadio IV, para lo cual se identificaron y contaron 100 fol&iacute;culos de cada estadio de desarrollo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Hormonas esteroides</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se analizaron 35 muestras de suero. A causa del poco volumen recolectado, nueve de ellas fueron muestras compuestas de sueros de hembras que presentaron el mismo estadio de madurez ov&aacute;rico y composici&oacute;n folicular. Las hormonas esteroides se evaluaron mediante la t&eacute;cnica de radioinmunoan&aacute;lisis (RIA), basada en los principios metodol&oacute;gicos descritos por Herrera <i>et al.</i><sup>24</sup> y Carolsfeld <i>et al.,</i><sup>25</sup> empleando H<sup>3</sup> y anticuerpos altamente espec&iacute;ficos. La sangre fue recolectada mediante punci&oacute;n cardiaca y se obtuvo el suero por centrifugaci&oacute;n (15 min a 805 <i>g y </i>4&deg;C). Las muestras de suero se purifIcaron con filtros<a href="#unas">*****</a> y se obtuvo 80% de recuperaci&oacute;n de cada esteroide. Cada muestra de suero purificada se recuper&oacute; en dos fracciones: una con etanol y la otra con agua destilada, el alcohol fue evaporado para despu&eacute;s unir ambas fracciones (1 mL). Finalmente, el suero se diluy&oacute; a un volumen final de 2 mL con Gel&#150;PBS (0.2 M, 17.6 g de NaCl y 2.0 g de gelatina/L). Las curvas est&aacute;ndar fueron sensibilizadas hasta 5 pg/mL. Se tomaron al&iacute;cuotas de 400 uL por duplicado para evaluar con RIA y por separado el E2 y la 17&#150;P4. El an&aacute;lisis se realiz&oacute; conforme a cada estadio de madurez ov&aacute;rica y composici&oacute;n folicular para ambas &eacute;pocas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La base de datos fue capturada en el software Excel. Se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de correlaci&oacute;n (AC) para verificar las correspondencias del IG e IH con respecto al peso total de la hembra para las &eacute;pocas reproductiva y de descanso.<sup>26</sup> Se emple&oacute; un an&aacute;lisis exploratorio de datos (AED) de diagrama de cajas,<sup>27</sup> para conocer la conducta de los niveles hormonales entre s&iacute; y en ambas temporadas.<sup>28</sup> Se utiliz&oacute; una prueba de ANDEVA de una sola v&iacute;a no param&eacute;trica para determinar diferencias significativas entre los niveles hormonales encontrados conforme a cada estadio de desarrollo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Primera &eacute;poca reproductiva en las hembras</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La poblaci&oacute;n (las tres cohortes de edad) present&oacute; una temporada reproductiva de seis meses (del 28 de enero al 15 de agosto, 2003). La &eacute;poca reproductiva inici&oacute; con las hembras de un a&ntilde;o de edad, cohorte 3 (<a href="#f1">Figura 1</a>); mientras tanto, las hembras de la cohorte 2 iniciaron a la edad de 11 meses y tres semanas. De la misma forma, las hembras de la cohorte 1, con diez meses de edad, tuvieron sus primeras etapas de desove hasta que alcanzaron un a&ntilde;o de edad.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v39n1/a6f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El n&uacute;mero de etapas de desove por cada cohorte indic&oacute; una significativa participaci&oacute;n de las hembras de mayor edad, la cual correspondi&oacute; a las cohortes 2 y 3, con 33 y 32 puestas, respectivamente, en tanto que las hembras m&aacute;s j&oacute;venes tuvieron un total de 12 puestas. La cohorte 3 present&oacute; una pausa de seis semanas sin desoves (del 10 de mayo al 2 de julio), en el transcurso de la &eacute;poca reproductiva. Asimismo, las hembras de la cohorte 2 se caracterizaron por presentar actividad continua y las hembras de la cohorte 1 tuvieron discreta pero constante actividad (menor n&uacute;mero de desoves).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Desarrollo ov&aacute;rico</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con los resultados del IG, el PEV ocupado por los ovarios y la actividad sexual (desoves), fue posible distinguir durante la &eacute;poca de desoves cuatro estadios de maduraci&oacute;n gonadal (I, II, III y IV) y un estadio m&aacute;s durante la &eacute;poca de descanso sexual (V) (<a href="/img/revistas/vetmex/v39n1/a6c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Sin embargo, este &uacute;ltimo estadio estuvo caracterizado por ovarios que presentaron valores de IG y PEV similares a los estadios del I al III de la &eacute;poca reproductiva.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de IG e IH m&aacute;ximos y m&iacute;nimos fueron 0.2 a 7.1 y 0.9 a 2.9, respectivamente, durante la &eacute;poca reproductiva, y de 0.3 a 3.5 y 1.2 a 2.2 en las hembras en la temporada no reproductiva, respectivamente. Ambos &iacute;ndices mostraron durante la &eacute;poca reproductiva una relaci&oacute;n positiva con el peso corporal en el AC (r<sup>2</sup> = 0.74, P <u>&lt;</u> 0.05 y r<sup>2</sup> = 0.89, P  <u>&lt;</u> 0.05, para el IG e IH, respectivamente), no as&iacute; en la &eacute;poca de descanso (r<sup>2</sup> = 0.3, P  <u>&lt;</u> 0.05 y r<sup>2</sup> = 0.17, P  <u>&lt;</u> 0.05).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Composici&oacute;n folicular</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis histol&oacute;gico en el pez blanco mostr&oacute; que en esta especie las hembras en sus g&oacute;nadas conten&iacute;an fol&iacute;culos en todos los estadios de desarrollo, tanto previtelinos (FP, FS y FT) como vitelinos (FV y FM). Durante la &eacute;poca de desove, se observaron cambios en los porcentajes de los diferentes fol&iacute;culos, lo que reflej&oacute; su actividad reproductiva. Los ovarios inmaduros estuvieron caracterizados por la dominancia de fol&iacute;culos primarios y secundarios, y mientras continuaba el proceso de maduraci&oacute;n ov&aacute;rica, se increment&oacute;, sin un patr&oacute;n definido, el n&uacute;mero de fol&iacute;culos vitelinos y maduros. El reclutamiento de fol&iacute;culos primarios estuvo presente en todos los estadios de maduraci&oacute;n ov&aacute;rica (estadios II al V) (<a href="/img/revistas/vetmex/v39n1/a6f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). Una composici&oacute;n folicular similar se registr&oacute; durante la &eacute;poca de descanso reproductivo, con la diferencia de que en este periodo no hubo hembras con ovarios bien desarrollados (estadio V). De las 30 hembras analizadas durante la &eacute;poca de desoves, 13 mostraron un estadio de maduraci&oacute;n ov&aacute;rica I; siete en estadio II; cuatro en estadio III y seis en estadio IV. Mientras tanto, durante la &eacute;poca de no desoves, las 20 hembras analizadas se encontraban en el estadio de desarrollo ov&aacute;rico V (<a href="/img/revistas/vetmex/v39n1/a6c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Hormonas esteroides sexuales</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los niveles circulantes de hormonas esteroides de E2 y de la 17&#150;P4 detectados en las hembras del pez blanco, fluctuaron entre 0.56 a 9.68ng/mL y de 0.53 a 2.55 ng/mL, respectivamente. La <a href="#f3">figura 3</a> muestra los niveles hormonales promedio, agrupados de acuerdo con los estadios de maduraci&oacute;n ov&aacute;rica. Se detectaron niveles circulantes importantes en hembras inmaduras (estadio I) durante la temporada de desoves, alcanzando 2.5 &plusmn; 0.7 ng/mL de E2 y 2.4 &plusmn; 0.3 ng/mL de 17P4; se detectaron niveles en el estadio II de 1.7 &plusmn; 0.2 ng/mL de E2 y 0.9 &plusmn; 0.2 ng/mL de 17&#150;P4; y nuevamente en el estadio III, se observ&oacute; incremento con niveles de 2.8 &plusmn; 0.6 ng/mL de E2 y 1.4 &plusmn; 0.5 ng/mL de 17&#150;P4. Los valores altos de E2 se detectaron en el estadio IV (7.5 &plusmn; 2.1 ng/mL), mientras que los niveles de 17&#150;P4 fueron similares al estadio II (1.8 &plusmn; 0.9 ng/mL).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v39n1/a6f3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante la temporada no reproductiva, los ovarios estaban en el estadio V (posdesove). Sin embargo, los niveles promedio detectados de E2 y 17&#150;P4 en las hembras con estado ov&aacute;rico similar al del estadio I fueron de 1.9 &plusmn; 1.4 ng/mL y 1.9 &plusmn; 0.5 ng/mL, respectivamente. Estos valores disminuyeron a 1.5 &plusmn; 0.6 ng/mL de E2 y 1.3 &plusmn; 0.5 ng/mL de 17&#150;P4 en hembras con un estadio similar al de la etapa II, e incrementando de nuevo en las hembras con estado similar al estadio III (1.9 &plusmn; 0.0 ng/mL de E2 y 1.6 &plusmn; 0.0 ng/mL de 17&#150;P4). No se detect&oacute; diferencia significativa (P <u>&lt;</u> 0.05) entre los valores de niveles hormonales comparando hembras con estadios similares de desarrollo entre ambas temporadas. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="/img/revistas/vetmex/v39n1/a6f4.jpg" target="_blank">figura 4</a> se contrasta la composici&oacute;n folicular de los cuatro estadios de maduraci&oacute;n descritos durante la &eacute;poca de desoves, asociados con los niveles circulantes de E2 y 17&#150;P4. Las hembras inmaduras en el estadio I mostraron exclusivamente fol&iacute;culos previtelinos, principalmente fol&iacute;culos primarios y secundarios (40% y 43%, respectivamente), los cuales se asocian con niveles hormonales mayores a 2 ng/mL de ambas hormonas. Las hembras con g&oacute;nadas en el estadio II muestran un elevado n&uacute;mero de fol&iacute;culos previtelinos y aparecen los primeros vitelinos y maduros (7% y 3%, respectivamente); estas condiciones acompa&ntilde;aron un descenso en los niveles hormonales. Las hembras en el estadio III se caracterizaron por la presencia de fol&iacute;culos primarios (42%), un aumento en el porcentaje de fol&iacute;culos vitelinos y maduros (15% y 6%, respectivamente), acorde con el incremento en los niveles hormonales observados (E2 y 17&#150;P4). Las hembras con g&oacute;nadas en el estadio IV presentaron fol&iacute;culos en todos los estadios, con presencia significativa de fol&iacute;culos vitelinos y maduros (21% y 11%), lo cual coincidi&oacute; con los niveles elevados de hormonas, particularmente de E2.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La &eacute;poca reproductiva del pez blanco es amplia y var&iacute;a dependiendo del h&aacute;bitat y de la especie.<sup>14,15,17</sup> Los estudios de biolog&iacute;a pesquera con <i>C. humboldtianum </i>indican que la &eacute;poca reproductiva en poblaciones silvestres es de seis meses, con algunos meses de intensa actividad, mientras que para otras especies de "peces blancos" se registran dos &eacute;pocas de desoves.<sup>15</sup> Los datos encontrados con estos peces en cautiverio en los &uacute;ltimos cuatro a&ntilde;os mostraron que la temporada reproductiva est&aacute; representada s&oacute;lo por una &eacute;poca de desoves durante el a&ntilde;o, la cual da inicio en los primeros meses del propio a&ntilde;o (con incremento gradual de temperatura y fotoperiodo) y se extiende hasta julio y agosto; en ella, la hembra tiene varios desoves y gran desgaste metab&oacute;lico.<sup>14,17</sup> Como se indica en la <a href="#f1">Figura 1</a>, durante la temporada reproductiva, las hembras de mayor edad y tama&ntilde;o tuvieron constante actividad, mientras que las de menor edad inician sus desoves cuando el resto de la poblaci&oacute;n la disminuye.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La edad de primera reproducci&oacute;n en estas especies tambi&eacute;n var&iacute;a de acuerdo con el h&aacute;bitat y con las condiciones ambientales.<sup>14,15</sup> Los informes en ese sentido mencionan que las hembras alcanzan la madurez sexual cuando presentan intervalo de longitud total de 81 a 130 mm.<sup>29</sup> En este estudio se encontr&oacute; que las hembras inician su reproducci&oacute;n al alcanzar, en promedio, 133.9 &plusmn; 2.3 mm de talla, que corresponde a un a&ntilde;o de edad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este estudio el proceso de la primera maduraci&oacute;n sexual de las hembras se observ&oacute; a trav&eacute;s del desarrollo y crecimiento de sus ovarios. En la &eacute;poca reproductiva, el IG fue el par&aacute;metro que permiti&oacute; caracterizar cada estadio de maduraci&oacute;n ov&aacute;rica. Tyler y Sumpter<sup>19</sup> mencionan que el IG en peces tele&oacute;steos con desoves sincr&oacute;nicos alcanza valores hasta de 40, mientras que en las especies desovadoras asincr&oacute;nicas este valor es cercano a 14. En <i>C. humboldtianum </i>se obtuvieron valores de IG cercanos a 8, menores al valor que la incluir&iacute;a dentro del grupo de desovadores asincr&oacute;nicos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se conoce que los peces hembras pueden incrementar su peso corporal hasta 90% a causa de la acumulaci&oacute;n de la vitelogenina en sus ovocitos,<sup>19,23,30,31 </sup>muchos aspectos pueden ser explicados de acuerdo con los resultados de Zou <i>et al.</i><sup>32</sup> y Kwon,<sup>33</sup> quienes mencionan que la s&iacute;ntesis de la vitelogenina por los hepatocitos pudiera estar directamente infl uida por una estimulaci&oacute;n rec&iacute;proca entre somatotropina y prolactina. De acuerdo con lo anterior, en este estudio se observ&oacute; que las hembras de mayor talla mostraron intensa actividad reproductiva y una relaci&oacute;n lineal directa entre el IG con el peso corporal. Por lo contrario, en la temporada de descanso reproductivo, el IG no mostr&oacute; un patr&oacute;n definido, presentando valores menores a 5 y una relaci&oacute;n no lineal con el PC. En lo que respecta al IH, en &eacute;ste no existi&oacute; una relaci&oacute;n directa con el peso de la hembra.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las hembras de <i>C. humboldtianum </i>mostraron fol&iacute;culos previtelinos y vitelinos durante los diferentes estadios de desarrollo ov&aacute;rico. Lo anterior explica la estrategia reproductiva de la especie, y coincide con otros informes histol&oacute;gicos.<sup>29,34</sup> Sin embargo, a diferencia de otros estudios, la clasificaci&oacute;n de los estadios de maduraci&oacute;n gonadal propuesta en esta investigaci&oacute;n (<a href="/img/revistas/vetmex/v39n1/a6c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>), se encuentra respaldada por las observaciones histol&oacute;gicas y muestra el proceso gradual de la primera madurez gonadal. El constante reclutamiento de los fol&iacute;culos primarios (<a href="/img/revistas/vetmex/v39n1/a6c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>) indica la presencia de "bancos de ovogonias" durante todo el periodo de vida sexual, caracter&iacute;stica propia de los peces tele&oacute;steos y de algunos anfibios.<sup>35</sup> Los desoves constantes indican presencia de hembras con distinta composici&oacute;n folicular a lo largo de la temporada reproductiva, en virtud de que al ser liberados los ovocitos maduros, otros fol&iacute;culos contin&uacute;an con el proceso de ovog&eacute;nesis, que es caracter&iacute;stico de los desovadores de tipo sincr&oacute;nico por grupos.<sup>19</sup> De acuerdo con los datos histol&oacute;gicos y patr&oacute;n de desoves, la descripci&oacute;n que hace Pankhurst<sup>36</sup> de esta especie debe ser considerada como sincr&oacute;nica por grupos m&uacute;ltiples, a pesar de los valores de IG presentados en este estudio. Por lo tanto, para definir el patr&oacute;n del modelo reproductivo y desarrollo ov&aacute;rico, se sugiere emplear necesariamente un an&aacute;lisis histol&oacute;gico y no &uacute;nicamente basarse en el IG.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En contraste, en la &eacute;poca de recuperaci&oacute;n sexual, las hembras muestran g&oacute;nadas posdesove o recrudescentes (estadio V), que permanecieron en el mismo estadio de desarrollo que ten&iacute;an cuando termin&oacute; la temporada reproductiva. Estas observaciones pudieran indicar que los ovarios detienen su proceso de ovog&eacute;nesis, conservan su poblaci&oacute;n folicular y muy probablemente su capacidad esteroidog&eacute;nica. Lo anterior est&aacute; basado en los recientes hallazgos, en la que se muestra que esta especie detiene su actividad reproductiva cuando las condiciones ambientales (fotoperiodo y temperatura) son igualadas artificialmente a las de la &eacute;poca de descanso sexual, y reanudan con sus desoves si las condiciones ambientales nuevamente se tornan favorables.<sup>14</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los niveles hormonales de E2 y de la 17&#150;P4 encontrados en <i>C. humboldtianum, </i>parecen apoyar lo anterior. Al comparar a las hembras con estados similares de desarrollo ov&aacute;rico, entre la &eacute;poca de desoves y la de descanso reproductivo; se encontr&oacute;, al igual que con la composici&oacute;n folicular, que los niveles hormonales eran similares para ambas temporadas (ANDEVA P &lt; 0.05), lo que sugiere que en la temporada de no desoves, los ovarios mantienen su capacidad esteroidog&eacute;nica, la cual es sostenida por su poblaci&oacute;n folicular. Sin embargo, las hembras no alcanzan su m&aacute;ximo estado de madurez, debido probablemente al gran gasto metab&oacute;lico que les infringi&oacute; la temporada de desoves y los cambios en las condiciones ambientales naturales de temperatura y fotoperiodo. Por lo tanto, el seguimiento de los niveles hormonales desde etapas juveniles hasta el final de su vida reproductiva pudiera ser un campo muy interesante para futuras investigaciones.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los niveles hormonales encontrados en este estudio indican actividad esteroidog&eacute;nica temprana (estadio I), que difiere de otros hallazgos, en los cuales se sostiene que la m&aacute;xima capacidad esteroidog&eacute;nica que se debe a las capas foliculares bien desarrolladas, propias de fol&iacute;culos vitelinos y maduros que caracterizan a las g&oacute;nadas maduras.<sup>8&#150;10,37,38</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Diversas evidencias en el campo de la endocrinolog&iacute;a en peces enfatizan el papel que desempe&ntilde;an las c&eacute;lulas de la teca en la s&iacute;ntesis de la 17&#150;P4, y la subsiguiente participaci&oacute;n de las c&eacute;lulas de la granulosa para transformarla en 17,2OP&#150;P<sub>4</sub>, y en 17,200, 21&#150;P4; mientras que por otra v&iacute;a metab&oacute;lica, en las c&eacute;lulas de la granulosa es transformada la 17&#150;P4 a E2 v&iacute;a testoste&#150;rona.<sup>10,37,38</sup> En este estudio, la poblaci&oacute;n folicular para las hembras en el estadio I, estuvo caracterizada por la ausencia de fol&iacute;culos vitelinos y maduros, as&iacute; como por la presencia de fol&iacute;culos primarios y secundarios, que no muestran desarrollo completo de sus paredes foliculares; sin embargo, s&iacute; presentan niveles hormonales significativos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los estudios de Nakamura y Nagahama<sup>39</sup> en algunos c&iacute;clidos y especies de salm&oacute;nidos, coinciden con lo aqu&iacute; notificado; estos investigadores siguieren una actividad hormonal temprana como requisito necesario para iniciar el proceso de diferenciaci&oacute;n gonadal y, adem&aacute;s, mostraron que las c&eacute;lulas productoras de esteroides aparecen inicialmente al mismo tiempo que ocurre la diferenciaci&oacute;n gonadal en tilapia <i>(Oreochromis </i><i>niloticus) </i>y salm&oacute;n (<i>Oncorhynchus rhodurus). </i>Asimismo, con ayuda de procedimientos inmunohistoqu&iacute;micos, ha sido evidente la actividad aromatizante en c&eacute;lulas productoras de esteroides en ovarios inmaduros de <i>Oreochromis niloticus.5 </i>Recientemente, Grier<sup>40</sup> informa que desde el inicio de la ovog&eacute;nesis, las ovogonias que est&aacute;n a&uacute;n en el epitelio germinal, ya se encuentran rodeadas de c&eacute;lulas prefoliculares visibles s&oacute;lo por microscop&iacute;a electr&oacute;nica. Estas evidencias pudieran explicar los niveles encontrados en g&oacute;nadas inmaduras en la presente investigaci&oacute;n, y apoyar la tesis de una temprana actividad aromatizante en las incipientes estructuras foliculares. Recientemente, para una especie neotropical mexicana <i>(Petenia splendida), </i>P&eacute;rez<sup>41 </sup>informa sobre la presencia de niveles significativos de estradiol en hembras en cuyos ovarios tambi&eacute;n se presentan principalmente fol&iacute;culos previtelinos. Asimismo, existen evidencias en la producci&oacute;n o conversi&oacute;n extragonadal de hormonas esteroides en c&eacute;lulas del cerebro, lo cual implica un importante papel en el control de desarrollo gonadal,<sup>42</sup> situaci&oacute;n que sugiere una interrogante posterior al proceso de diferenciaci&oacute;n sexual; &iquest;En qu&eacute; momento inicia la s&iacute;ntesis de los esteroides gonadales en los "peces blancos"?</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La disminuci&oacute;n de los niveles hormonales circulantes observada en hembras con ovarios en el estadio II, en los cuales se aprecian algunos fol&iacute;culos vitelinos y maduros, indica la posible influencia reguladora que tienen los niveles hormonales circulantes a nivel del hipot&aacute;lamo y de la hip&oacute;fisis, los cuales posiblemente inhiben la liberaci&oacute;n GnRH y de las gonadotropinas, y, por lo tanto, su consecuente acci&oacute;n a nivel gonadal. Van Oordt y Goos<sup>43</sup> mencionan que bajas concentraciones de hormonas en la sangre son suficientes para la producci&oacute;n y mantenimiento de fol&iacute;culos vitelog&eacute;nicos, pero no suficientes para la ovulaci&oacute;n y maduraci&oacute;n espont&aacute;nea. Este control endocrino coincide con los resultados obtenidos en este estudio para esta especie de pez blanco.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este art&iacute;culo constituye la primera contribuci&oacute;n al conocimiento del proceso anat&oacute;mico&#150;funcional de las g&oacute;nadas en hembras de Pez Blanco (<i>C. humboldtianum) </i>durante su primer ciclo reproductivo, y sustenta la hip&oacute;tesis de una temprana actividad en la s&iacute;ntesis de esteroides gonadales, as&iacute; como el mantenimiento de su capacidad esteroidog&eacute;nica durante la &eacute;poca de no desoves, que se apoya en la poblaci&oacute;n folicular como pre&aacute;mbulo a la pr&oacute;xima temporada reproductiva, o a un est&iacute;mulo ambiental favorable para la reproducci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores agradecen a Gabriela L&oacute;pez y a Erica G&oacute;mez L&oacute;pez su ayuda en el trabajo endocrinol&oacute;gico, y a X&oacute;chitl Guzm&aacute;n Garc&iacute;a por su apoyo en el proceso histol&oacute;gico. El primer autor agradece la beca que tuvo del Consejo Nacional de Ciencia y Tecnolog&iacute;a, de M&eacute;xico, con matr&iacute;cula 153056.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Munro  AD.   General  introduction.   In:   Munro  AD, Scort AD, Lam TJ, editors. Reproductive seasonality in Teleosts environmental influences. Boca Raton Florida: CRC Press, 1990:1&#150;11.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140690&pid=S0301-5092200800010000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Redding JM, Pati&ntilde;o R. Reproductive physiology. In: Evans DH, editor. The physiology of fishes. Boca Raton Florida: CRC Press,1993:503&#150;534.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140691&pid=S0301-5092200800010000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Young G, Kagawa H, Nagahama Y. Secretion of aromatizable &#916;<sub>4</sub> androgens by thecal layers during estradiol&#150;17&#946; production by ovarian follicles of amago salmon <i>(Oncorhynchus rhodurus) in vitro. </i>Biom Res 1982; 3:659&#150;667.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140692&pid=S0301-5092200800010000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Kagama H, Young G, Nagahama Y. <i>In vitro </i>estradiol&#150;17 beta and testosteona production by ovarian follicles of the goldfish, <i>Carassius auratus. </i>Gen Comp Endocrinol 1984; 54:139&#150;143.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140693&pid=S0301-5092200800010000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Kobayashi M, Aida K, Hanya U. Hormone changes during the  ovulatory cycle in goldfish.  Gen  Comp Endocrinol 1988; 69:301&#150;339.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140694&pid=S0301-5092200800010000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Smith JS, Thomas P. Brinding characteristics of the hepatic estrogen receptor of the spotted seatrout, <i>Cynascion nebulosus. </i>Gen Comp Endocrinol 1990; 77:29&#150;42.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140695&pid=S0301-5092200800010000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Yoshikuni M, Nagahama Y. Endocrine regulation of gametogenesis in fish. Bull Inst Zool Acad Sin Mon 1991; 16:139&#150;172.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140696&pid=S0301-5092200800010000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Nagahama Y.  17&#945;, 20&#946;&#150;dihydroxy&#150;4&#150;pregnen&#150;3&#150;one a maturation&#150;inducing hormone in fish oocytes: Mechanisms of synthesis and action. Steroids 1997; 62:190&#150;196.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140697&pid=S0301-5092200800010000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Devlin HR, Nagahama Y. Sex determination and sex differentiation in fish: an overview of genetic, physiological, and environmental influences. Aquaculture 2002; 208:191&#150;364.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140698&pid=S0301-5092200800010000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Nagahama Y. Endocrine control of oocyte maturation. In: Norris DO, Jones RE, editors. Hormones and reproduction in fishes, amphibians and reptile. Nueva York: Plenum, 1987:171&#150;201.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140699&pid=S0301-5092200800010000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Swanson P, Suzuki K, Kawauchi H, Dickhoff WW. Isolation and characterization of two Coho salmon gonadotropins   GTH I and GTH II. Biol Reprod 1991; 44, 29&#150;38.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140700&pid=S0301-5092200800010000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Thomas, P. Hormonal control of final oocyte maturation in sciaenid fishes. In: Davey KG, Peter RE, Tobe SS, editors.  Perspectives in comparative Endocrinology. Ottawa Canada: National Research Council of Canada, 1994:619&#150;625.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140701&pid=S0301-5092200800010000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Pati&ntilde;o R. Manipulations of the reproductive system of fishes by means of exogenous chemicals. Prog Fish&#150;Cult 1997; 59:118&#150;128.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140702&pid=S0301-5092200800010000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Blancas&#150;Arroyo G, Figueroa&#150;Lucero G, Barriga&#150;Sosa I, Arredondo&#150;Figueroa JL. Effects of an artificial photothermal cycle on the reproduction of shortfin silverside, <i>Chirostoma humboldtianum, </i>Valencienne, 1835  (Pisces: Atherinopsidae). Aquaculture 2004; 241: 575&#150;585.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140703&pid=S0301-5092200800010000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Paulo MP, Figueroa LG, Soria BM. Peces dulceacu&iacute;colas mexicanos XIX <i>Chirostoma humboldtianum </i>(Atherinifor&#150;mes: <i>Atherinopsidae) </i>. Zool Inf 2000;3:59&#150;74.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140704&pid=S0301-5092200800010000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Mares BG, Morales PJJ. Contribuci&oacute;n al estudio del cultivo de pescado blanco <i>Chirostoma estor estor </i>en el centro Regional   de   Investigaci&oacute;n   Pesquera   de   P&aacute;tzcuaro, Michoac&aacute;n. En: Rojas CP, Fuentes CD, editores. Historia y avances del cultivo de pescado blanco. M&eacute;xico DF; Instituto Nacional de la Pesca, 2003:43&#150;154.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140705&pid=S0301-5092200800010000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Blancas&#150;Arroyo G, Figueroa&#150;Lucero G, Barriga&#150;Sosa I, Arredondo&#150;Figueroa JL. Primeras experiencias sobre el manejo de reproductores de Pez Blanco <i>(Chirostoma humboldtianum </i>Valenciennes,  1935)   bajo  condiciones controladas. Memorias del II Congreso Iberoamericano Virtual de Acuicultura CIVA 2003; 2003 agosto&#150;febrero 2004;   Universidad   de   Zaragoza,   Espa&ntilde;a:   Universidad de Zaragoza, Agosto   2003:30&#150;42. Disponible en: <A href=http://www.revistaaquatic.com/civa2003/coms/listado.asp?cod=38 target="_blank">http://www.revistaaquatic.com/civa2003/coms/listado.asp?cod=38</A></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140706&pid=S0301-5092200800010000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Rodr&iacute;guez GM. T&eacute;cnicas de evaluaci&oacute;n cuantitativa de la madurez gon&aacute;dica en peces. M&eacute;xico DF: AGT, 1992.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140707&pid=S0301-5092200800010000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Tyler CR, Sumpter, LP. Oocyte growth and development in teleosts. Rev Fish Biol Fisheries 1996; 6:287&#150;318.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140708&pid=S0301-5092200800010000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Sol&oacute;rzano PA. Contribuci&oacute;n al conocimiento de la biolog&iacute;a del charal prieto <i>(Chirostoma bartoni, </i>Jord&aacute;n y Evermann, 1896) del lago de P&aacute;tzcuaro, Michoac&aacute;n. M&eacute;xico DF: Secretar&iacute;a de Pesca, 1961.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140709&pid=S0301-5092200800010000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Uria GE, Moncayo LME, Garibay GR. Desarrollo y madurez testicular del charal <i>Chirostoma humboldtianum </i>(Pisces: Atherinidae), del embalse Huapango, Estado de M&eacute;xico. Hidrobiol&oacute;gica 1998; 8(Supl 1):9&#150;18.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140710&pid=S0301-5092200800010000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Lee GL. Manual of histological staining methods of Armed Forces Institute of Pathology. 3<sup>rd</sup> ed. New York; McGraw&#150;Hill Book Co, 1974.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140711&pid=S0301-5092200800010000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Wallace RA, Selman K. Ultrastructural aspects of oogenesis and oocyte growth in fish and amphibians. J Electron Micros Techn 1990; 16:175&#150;201.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140712&pid=S0301-5092200800010000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. Herrera DMR, Luna MM, Romero RC. Obtenci&oacute;n de anticuerpos con la progesterona y estradiol, estandarizaci&oacute;n del radioinmunoan&aacute;lisis y validaci&oacute;n en sueros de rumiantes. Vet M&eacute;x 1993; 24:223&#150;230.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140713&pid=S0301-5092200800010000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Carolsfeld J, Scott AP, Collins PM, Sherwood NM. Reproductive steroids during maturation in a primitive Teleost, the Pacific Herring <i>(Clupea harengus pallasi). </i>Gen Comp Endocrinol 1996; 103:331&#150;348.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140714&pid=S0301-5092200800010000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. Zar JH. Biostatistical Analysis. Nueva Jersey USA: Prentice&#150;Hall Englewood Cliffs, 1999.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140715&pid=S0301-5092200800010000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27. StataCorp. Stata statistical software (computer program); Release 8.0., Texas (USA): College Station, 2003.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140716&pid=S0301-5092200800010000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28. Salgado&#150;Ugarte IH. El an&aacute;lisis exploratorio de datos biol&oacute;gicos. Fundamentos y aplicaciones. M&eacute;xico DF: Facultad de Estudios Superiores&#150; Zaragoza, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, 1992.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140717&pid=S0301-5092200800010000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29. C&aacute;rdenas RR. Cultivo de pez blanco <i>Chirostoma humboldtianum. </i>Consideraciones para su producci&oacute;n. In: Rojas CP, Fuentes CD, editores. Historia y avances del cultivo de pescado blanco. M&eacute;xico DF; Instituto Nacional de la Pesca, 2003:191&#150;210.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140718&pid=S0301-5092200800010000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30. Tyler CR. Vitellogenesis in salmonids. In:  Scott AP, Sumpter JP, Kime DE, Rolfe L, editors. Reproductive Physiology of Fish. United Kingdom England: Sheffield University Press, 1991:295&#150;299.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140719&pid=S0301-5092200800010000600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">31. Carnevali O, Mosconi G, Cambi A, Ridolfi S, Zanuy S, Polzonetti&#150;Magni AM. Changes of lysosomal enzyme activities in sea bass <i>(Dicentrarchus labrax)  </i>eggs and developing embryos. Aquaculture 2001; 202:249&#150;256.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140720&pid=S0301-5092200800010000600031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">32. Zou JJ, Trudeau VL, Cui Z, Brechin J, Mackenzie K, Zhu Z <i>et al. </i>Estradiol stimulates growth hormone production in female goldfish. Gen Comp Endocrinol 1997; 106:102&#150;112.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140721&pid=S0301-5092200800010000600032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">33. Kwon HC. Effects of estradiol and pituitary hormones on <i>in vitro </i>vitellogenin synthesis in the eel, <i>Anguilla japaniza. J </i>Korean Fish Soc 1997; 30:282&#150;290.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140722&pid=S0301-5092200800010000600033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">34. Moncayo ER, Escalona GC, Segura GV. Los peces blancos del Lago de Chapala. Caracter&iacute;sticas Generales. En: Rojas CP, Fuentes CD, editores. Historia y avances del cultivo de pescado blanco. M&eacute;xico DF; Instituto Nacional de la Pesca, 2003:51&#150;78.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140723&pid=S0301-5092200800010000600034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">35. Tokarz RR. Oogonial proliferation, oogenesis, and folliculogenesis in onmammalian vertebrates. In: Takashima F, Hibiya T, editors. An atlas of fish histology. Normal and pathological features. Tokyo Japan: Gustav Fischer Verlag, 1978.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140724&pid=S0301-5092200800010000600035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">36. Pankhurst NW. Reproduction. In: Black KD, Pickering AD, editors. Biology of Farmed Fish. Florida USA: Sheffield Academic Press, 1998:1&#150;18.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140725&pid=S0301-5092200800010000600036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">37. Fostier A, Jalabert B, Billard R, Breton B, Zohar Y. The gonadal steroids. In: Hoar AWS, Randall DJ, Donaldson EM, editors. Fish Physiology. Orlando Florida: Academic Press, 1983:277&#150;372.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140726&pid=S0301-5092200800010000600037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">38. Lee WK, Yang SW. Relationship between ovarian development and serum levels of gonadal steroid hormones, and induction of oocyte maturation and ovulation in the cultured females Karean spotted sea bass <i>Lateolabrax  maculatus   </i>(Jeom&#150;nong&#150;eo).   Aquaculture   2002; 207;169&#150;183.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140727&pid=S0301-5092200800010000600038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">39. Nakamura M, Nagahama Y. Ultrastructural study on the differentiation and development of steroid&#150;producing cells during ovarian differentiation in the amago salmon, <i>Oncorhynchus   rhodurus.   </i>Aquaculture   1993; 112:237&#150;251.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140728&pid=S0301-5092200800010000600039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">40. Grier H. Ovarian germinal epithelium and folliculogenesis in the Common Snook, <i>Centropomus undecimalis </i>(Teleostei: Centropomidae). J Morphol 2000; 243:265&#150;281.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140729&pid=S0301-5092200800010000600040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">41. P&eacute;rez VMH. Estudio histiol&oacute;gico y endocrino de los ciclidos Neotropicales, Tenguayaca, Petenia splendida y la Mojarra Pinta, <i>Parachromis (Cichlasoma) managuensis </i>del Sudeste de M&eacute;xico (tesis doctoral). M&eacute;xico (D F): Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana, 2006.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140730&pid=S0301-5092200800010000600041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">42. Callard GV, Manz L, Petro Z, Claiborne JB. Brain estrogen biosynthesis and estrogen conjugating system in the sculpin <i>(myoxocephalus). </i>Bull Mount Desert Island Biol Lab 1982; 22:41&#150;43.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140731&pid=S0301-5092200800010000600042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">43. Van Oordt PGWJ, Goos HJTH. The African catfish, <i>Clarias gariepinus, </i>a model for the study of reproductive endocrinology in Teleosts. Aquaculture 1987; 63:15&#150;26.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140732&pid=S0301-5092200800010000600043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>NOTAS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><a name="unas"></a>* OHAUS, modelo GT 4800, Estados Unidos de Am&eacute;rica.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">** OHAUS, modelo AP 110S, Estados Unidos de Am&eacute;rica. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">*** Paraplast-Merk, Estados Unidos de Am&eacute;rica.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana">**** Modelo HM 315, Leica, Walldorf, Alemania.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><img src="/img/revistas/vetmex/v39n1/a6s1.jpg"> Olympus CX31, Olympus, Corporate Center Drive, Melville, Estados Unidos de Am&eacute;rica. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">***** Sep&#150;Park C18, Waters&#150; Corporation, Estados Unidos de Am&eacute;rica.</font></p>     ]]></body>
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