Presencia de Xanthomonas albilineans (Ashby) Dowson en caña de azúcar en La Chontalpa, Tabasco, México

Presence of Xanthomonas albilineans (Ashby) Dowson in sugarcane crops in La chontalpa, Tabasco, México

H. Salomón García-Juárez¹, Carlos F. Ortiz-García¹*, Sergio Salgado-García¹, Apolonio Valdez-Balero¹, Hilda V. Silva-Rojas² y Werner R. Ovalle-Sáenz³

¹ Campus Tabasco, Colegio de Postgraduados. Periférico Carlos A. Molina S/N. 86500, H. Cárdenas, Tabasco, México. *Autor de correspondencia (cfortiz@colpos.mx)

³ Centro Guatemalteco de Investigación y Capacitación de la Caña de Azúcar. Km. 92.5 Carretera Escuintla-Mazatenango. Santa Lucia, Escuintla, Guatemala.

Recibido: 13 de Noviembre del 2014
Aceptado: 4 de Septiembre del 2015

Resumen

Una de las enfermedades agresivas de la caña de azúcar es la escaldadura de la hoja causada por Xanthomonas albilineans (Xa). En las zonas cañeras del estado de Tabasco, México, no se tienen registros de afectaciones por Xa. Por ello el objetivo de este trabajo de investigación fue determinar la presencia de X. albilineans en los principales clones comerciales, y conocer la dispersión de la enfermedad en la zona cañera de La Chontalpa, Tabasco. Se llevó a cabo un muestreo dirigido para cinco clones (MEX 69-290, MEX 79-431, MEX 68-P-23, CP 72-2086 y RD 75-11), cuatro tipos de suelo (Cambisol, Vertisol, Gleysol y Fluvisol) y dos rangos de lluvia (1793-1936 mm y 1937-2085 mm). Un total de 105 plantaciones fueron seleccionadas y georreferenciadas, y se colectaron 10 tallos de cada una. El jugo extraído de las partes de los tallos se impregnó en una membrana de nitrocelulosa, que luego se revelaron por el método de inmunoensayo de adsorción de gota. Los resultados muestran la presencia de Xa en los tallos de tres clones asintomáticos (MEX 69-290, MEX 68-P-23 y MEX 79-431) con incidencias ≥ 10 % en cuatro plantaciones muestreadas. La distribución de la enfermedad fue en agregado, y ahora localizada al sur de la zona de producción cañera. La enfermedad está en un periodo sintomatológico de latencia en los clones positivos que se consideran tolerantes, que carecen de síntomas visuales en las plantas colectadas. Xa fue aislado de clones de caña de azúcar susceptibles (EMEX00-21 y CXZ7564) con síntomas foliares de "línea de lápiz". El análisis molecular mediante amplificación de un fragmento de 16S rDNA (1392 pb) dio similitudes máximas con las secuencias de Xa registradas en el Genbank. Este estudio constituye el primer reporte de la presencia de Xa en Tabasco, México, confirmado a nivel molecular.

Palabras clave: Xanthomonas albilineans, escaldadura de la hoja, caña de azúcar.

One of the aggressive diseases of sugarcane is leaf scald caused by Xanthomonas albilineans (Xa). Despite some studies, the State of Tabasco is not known to be affected by Xa. Therefore, the objective of this work was to search for Xa in Tabasco, México, and its distribution. We selected a sugarcane production zone located in La Chontalpa region and carried out a direct sampling in five sugarcane clones (MEX 69-290, MEX 79-431, MEX 68-P-23, CP 72-2086 and RD 75-11), four soil types (Cambisol, Vertisol, Gleysol and Fluvisol) and two rainfall regimes (1793-1936 mm and 1937-2085 mm). A total of 105 sites were selected and located. Samples of 10 stalks were randomly selected in each plantation. Juice extracted from stalk pieces was impregnated on a nitrocellulose membrane, and then revealed by the "Dot blot immunoassay" method. Results showed the presence of Xa in the stems of three asymptomatic clones (MEX 69-290, MEX 68-P-23 y MEX 79-431) with incidences ≥ 10 % in four sampling sites. The distribution of the disease was of the aggregated type, and currently located only at the southern part of the sugarcane production zone. The disease is now in a symptomatic latent period in the positive clones considered tolerant, which lack visual symptoms in the sampling sites. The Xa isolated from two susceptible sugarcane clones (EMEX00-21 and CXZ7564) showed the "pencil lines" symptom in leaves. The molecular analysis performed by amplifying a segment of the 16S rDNA (1392 bp). Maximal similarities were found when compared to sequences of Xa registered in the GenBank. This study is the first report of the presence of Xa in Tabasco, México, confirmed at molecular level.

Key words: Xanthomonas albilineans, leaf scald, sugarcane.

INTRODUCCIÓN

La escaldadura de la hoja es una enfermedad vascular ocasionada por la bacteria Xanthomonas albilineans (Ashby) Dowson, que fue detectada por primera vez en la década de 1920 en las investigaciones de Wilbrink (1920) en Java, y Northh (1926) en Australia y Fiji (Ricaud y Ryan, 1989). Un aspecto importante de esta enfermedad es que presenta tres formas de expresión de los síntomas (crónica, aguda y latente), que dependen del grado de resistencia del clon infectado (Tokeshi, 1980). Las formas crónica y aguda se manifiestan en clones susceptibles. La forma crónica se caracteriza por la presencia de líneas finas de 0.5 mm de ancho, de bordes bien definidos que se desarrollan en las nervaduras secundarias de las hojas conocidas como "líneas de lápiz", así como la emisión de brotes laterales que según Ovalle (2012) inician desde la base o la parte media del tallo hacia el ápice.

Rott y Davis (2000) consideran que la forma aguda se caracteriza por el marchitamiento súbito de las plantas las cuales mueren repentinamente sin haber presentado otro tipo de síntomas; mientras que la forma latente presenta un periodo de incubación muy largo en plantas infectadas en el ciclo de plantilla y manifiesta síntomas hasta el año siguiente en el ciclo de soca, lo que dificulta detectar su llegada y favorece la diseminación de la bacteria. La diseminación se da fundamentalmente por el empleo de tallos infectados como fuente de semilla, de instrumentos de corte y maquinaria agrícola infectados con la bacteria (Ricaud y Ryan, 1989). Esta enfermedad, en fase aguda, reduce los rendimientos de campo, afecta la calidad de los jugos y sobre todo produce pérdidas estimadas entre 90 y 100 % (Hoy y Grisham, 1994).

En México la escaldadura de la hoja se detectó por primera vez en 1992 en el clon MEX 64-1487 cultivado en el estado de Veracruz (Irvine et al., 1993). Luego Flores (1997) reportó la presencia de dicha enfermedad en los estados de Veracruz, Morelos y Chiapas, en donde la región cañera de Cardel y Úrsulo Galván en Veracruz fue la más afectada al haber causado la eliminación de 800 ha sembradas con el clon susceptible MEX 64-1487. Ello dio origen a estudios del comportamiento genético de los principales clones comerciales cultivados en México ante esta enfermedad. Así, Chávez (2000) reportó al clon CP 72-2086 como resistente, a los clones MEX 69-290 y MEX 68-P-23 como tolerantes, y a los clones RD 75-11 y MEX 79-431 como moderadamente resistentes. Por su parte, Huerta et al. (2003) calificaron a los clones MEX 69-290, MEX 68-P23 y MEX 64-1487 como susceptibles, a los clones CP 72-2086 y RD 75-11 como resistentes, y al clon MEX 79-431 como parcialmente resistente; aunque ambos estudios se realizaron en la misma región cañera y con la misma metodología.

Pese a esto, 27,800 ha de la zona cañera de La Chontalpa en el estado de Tabasco están cultivadas con dichos clones, lo que de acuerdo con Rott y Davis (2000) y Salgado et al. (2009) hace que la zona sea de alta vulnerabilidad al ataque en la forma latente de X. albilineans. Con base en lo anterior y a los señalamientos de tallos con algunos síntomas semejantes a los descritos para dicha enfermedad, sin la existencia de evidencia científica que hubiesen confirmado la presencia de la bacteria X. albilineans, se desarrolló la presente investigación con el objetivo de determinar la presencia de X. albilineans en los principales clones comerciales, y de conocer la dispersión de la enfermedad en la zona cañera de La Chontalpa, Tabasco.

Área de estudio y puntos de muestreo

El estudio se llevó a cabo en la zona productora de caña de La Chontalpa, que es zona de abasto de los ingenios azucareros Presidente Benito Juárez con 18,360 ha y Santa Rosalía con 10,903 ha (INFOCAÑA, 2014). Dicha zona está en el polígono ubicado entre las coordenadas 17° 15' y 17° 40' N y 90° 59' y 94° 06' O, cuyo clima es cálido húmedo [Am(i')g], con promedios anuales de temperatura y precipitación de 26 ^oC y 2163 mm, respectivamente (Salgado et al., 2009).

El muestreo dirigido para sondear la heterogeneidad ambiental se hizo considerando tres factores: cinco clones comerciales mayormente cultivados (MEX 69-290, MEX 79-431, MEX 68-P-23, CP 72-2086 y RD 75-11), cuatro tipos de suelo (Cambisol, Vertisol, Gleysol y Fluvisol), y dos rangos de lluvia (1793-1936 y 1937-2085 mm). En cada combinación de condiciones se hicieron tres observaciones, sin embargo en una zona no se encontró el tipo de suelo Fluvisol por lo que la toma de muestras se hizo sólo en 105 plantaciones. Los puntos de muestreo y su ubicación en el área de estudio se predeterminaron al sobreponer tres mapas: el del estudio edafoclimático regional, el de georreferenciación de las plantaciones de caña de azúcar, y el mapa de suelos a escala 1:50,000, todos ellos desarrollados en el estudio del SIRDF para la caña de azúcar en dicha región (Salgado et al., 2009).

Muestreo y procesamiento de las muestras

Las plantaciones correspondientes a cada sitio de muestreo predeterminado se ubicaron con el apoyo de un geoposicionador (GPSmap® 62, Garmin; Taiwan) y a la vez se verificó in situ que la edad de la plantación preseleccionada fuese mayor a siete meses. En cada plantación, de forma sistemática se colectó un tallo primario o secundario, de 10 macollos diferentes. De cada uno de los 10 tallos colectados sólo se empleó el tercio distal (punta) para obtener un trozo de entrenudo de 5 cm de largo, del cual se extrajo el jugo mediante presión ejercida con un compresor (TRUPER® COMP-25L, México). El jugo se depositó en una caja Petri estéril y de ahí se obtuvo una alícuota de 2.5 μL para ser impregnado en una membrana de nitrocelulosa de 0.45 μM (Millipore HAWG047S60®, Germany).

Las muestras impregnadas se fijaron introduciendo las membranas en un horno (RIOSSA H-33^TM, México) por 1 h a 70 + 1 ^oC. Luego, las membranas se procesaron conforme al método descrito por Harrison y Davis (1988) modificado para X. albilineans por Ovalle y García (2010). Así, los espacios libres de la membrana se saturaron con una solución de lactosa, seguido de la fijación del primer anticuerpo antiXa LgG policlonal (Montpellier, Francia; CIRAD Bios/UMR Bgpi) para X. albilineans, a una concentración de 1:5000 por 1 h. Asimismo se fijó el segundo anticuerpo anticabra lgG anticonejo (SIGMA-ALDRICH®, USA) conjugado con fosfatasa alcalina en concentración de 1:10000 por maltosa alcalina en solución amortiguadora TBS, por 1 h. Después de los lavados se procedió al revelado de la membrana mediante incubación en 20 mL del sustrato de trabajo, en oscuridad.

Los espacios de deposición de jugo en la membrana que al ser revelados dieron color azul, como sucede en el espacio del testigo positivo, se registraron como muestras positivas e indicaron que en dicho sitio de muestreo existen tallos infectados con la bacteria X. albilineans. El testigo positivo fue una suspensión de la bacteria de X. albilineans.

La bacteria se aisló a partir de tejido foliar con el síntoma "línea de lápiz" con la metodología descrita por Deán (1974). La presencia de la bacteria en el tejido foliar se detectó mediante observación de flujo bacteriano en un microscopio compuesto de contraste de fases (Carl Zeiss Axiostas plus®, Germany). Las muestras se fraccionaron en trozos de 3 cm x 3 mm, y con los bordes previamente impermeabilizados con barniz para uñas, se desinfestaron en una solución de hipoclorito de sodio a 3 % durante 5 min, y luego se lavaron tres veces en agua destilada estéril. Los trozos así preparados se cortaron en segmentos más pequeños (± 2 mm de largo) sobre dos porta-objetos previamente colocados en cruz y con una película de 330 µL de agua estéril, y se dejó en reposo por 5 min. Con una pipeta Pasteur se colectó la suspensión bacteriana y se depositó en cajas Petri con medio agar-nutritivo, y luego fue distribuida con un asa de Digralsky. Las cajas Petri se incubaron a 30 ºC, por un periodo de 10 d en oscuridad.

Identificación molecular de Xanthomonas albilineans

La extraccion de ADN se realizó a partir de colonias puras de la bacteria con 10 d de incubación, conforme al protocolo de Doyle y Doyle (1990). El ADN obtenido fue amplificado mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR, por sus siglas en inglés) con los iniciadores 8F (5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3') y 1492R (5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3'), que según Janda y Abbott (2007) amplifican un fragmento de 1500 pares de bases (bp). Los productos de PCR amplificados se limpiaron con la enzima ExoSap-IT (Affimetrix, USA) de acuerdo con el fabricante. Posteriormente, en un secuenciador (Applied Biosystems I Prims, modelo 3130 xl, Foster City, CA, USA) de cuatro capilares, la secuencia de bases de ambas hebras se determinaron por electroforesis capilar con los iniciadores externos 8F y 1492R, y también con los iniciadores internos 514F (5'-GTGCCAGCMGCCGCGG-3') y 800R (5'-CTACCAGGGTATCTAAT-3'). Las secuencias correspondientes a la región 16S rDNA se ensamblaron para crear una secuencia consenso con la opción Cap (Contig assembly program) con el programa BioEdit V.7.0.9.1 (Hall, 1999), la que se comparó con secuencias depositadas en la base de datos de GenBank (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/) mediante la opción BLASTN (Zhang et al., 2000).

Análisis de datos

El patrón de distribucion espacial de la enfermedad se determinó con el índice de Morisita (Badii et al., 2011), el cual se calcula con la ecuación I_δ = [∑n_i (n_i-1) / n (n-1)] N, donde I_δ es el índice de Morisita, n_i es el número de individuos en la iésima unidad muestral, n es el número de individuos en todas unidades muestrales, y N es el número de unidades muestrales. Los valores de I_δ menores, iguales o mayores de 1 indican distribuciones de tipo uniforme, aleatoria y agregada, respectivamente. Además, se hizo la prueba de significancia del índice de Morisita por medio de la ecuación Fc = [I_δ (n-1) + N–n]/(N-1).

La distribucion espacial observada en las plantaciones que resultaron positivas se representó en el mapa generado en el progrma Arc.GIS® versión 9.3 (ESRI, Redland, CA, USA), a escala 1:500,000, para lo cual se emplearon y sobrepusieron capas de los factores de suelo y precipitación según Salgado et al. (2009). El porcentaje de la incidencia de tallos infectados por plantación (sitio de muestreo) se calculó tomando en cuenta el número de tallos positivos a la bacteria y el total de tallos analizados, con la ecuación donde: I, n, N, corresponden a: el porcentaje de incidencia de la bacteria en tallos, el número de muestra con reaccion positiva en el analisis serológico, y número total de plantas en el punto de muestreo (Huerta et al., 2003).

Las secuencias nucleotídicas codificantes del gen 16S rDNA de otras especies de Xanthomonas, así como de bacterias que afectan al cultivo de la caña de azúcar, descritas y depositadas en la base de datos del National Center for Biotechnology Information (http://www.ncbi.nlm.nih.gov), se alinearon con la secuencia del fragmento amplificado de la cepa aislada. Los alineamientos múltiples de secuencias nucleotídicas se hicieron con el programa CLUSTAL W2 (http://www.ebi.ac.uk/Tools/msa/clustalw2/). El alineamiento resultante fue empleado para hacer un dendrograma de similitud con el programa MEGA versión 6.05 (Tamura et al., 2013) que utiliza el método de agrupamiento de Neightborth-joining (Saitou y Nei, 1987) con el índice Poisson (P), para lo cual se hicieron 1000 aleatorizaciones tipo de arranque.

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

Presencia y distribución espacial de las plantaciones con X. albilineans

En la Figura 1 se ubicaron las 105 plantaciones muestreadas, con base en los resultados de las pruebas serológicas: positivas (punto verde) y negativas (punto negro). Las cuatro plantaciones que resultaron positivas evidencian la presencia de X. albilineans en la zona cañera de La Chontalpa, Tabasco. Es relevante hacer notar que tres de los cuatro sitios positivos se ubican en el área sudoeste de la zona, aproximadamente a 2.5 km de distancia entre sí. El cuarto sitio de muestreo positivo se ubica a 9 km al de los otros sitios positivos, en la zona centro del área cañera.

Como el valor de índice de Morisita calculado (I_δ = 10.5) es mayor a 1, entonces el patrón de la distribución espacial de los sitios positivos es de tipo agregado, resultado que fue ratificado por la prueba de F en la que se rechazó la hipótesis nula (Ho: I_δ = 1), según lo propuesto por Badii et al. (2011). Al respecto, Taylor (1984) considera que la dispersión agregada es la más comúnmente encontrada en la naturaleza.

Se puede inferir entonces que las plantaciones detectadas positivas con la bacteria se integran en un arreglo de tipo agregado, aunque la dispersión de la bacteria por sí misma no se rija con mecanismos autónomos. Más bien, la dispersión de la bacteria a grandes distancias dependen de la intervención humana, mediante el movimiento de semilla vegetativa infectada y el empleo de herramienta contaminada con la bacteria en labores de campo y zafra (Ricaud y Ryan, 1989). A nivel parcelario, la dispersión puede darse por efecto combinado de viento y lluvia fuertes, los cuales pueden romper los tejidos de tallos infectados y permitir la exposición de la bacteria, la cual es arrastrada por el agua y el viento (Flores, 1977; Ovalle, 2012), en cuyo caso la dispersión sería más bien de contagio.

En este contexto, la llegada de la bacteria al estado de Tabasco se explicaría por la introducción de material vegetativo infectado. Reportes previos de la presencia de la bacteria en México, la ubicaron primeramente en la región cañera de Cardel, Veracruz (Irvine et al., 1993); posteriormente en la Estación de Hibridación en Tuxtla Chico, Chiapas (Flores, 1997); y luego en los estados de Morelos y Oaxaca (Chávez, 2000). Introducciones de varetas de caña de azúcar de 53 clones en diciembre de 2006, que fueron integradas al banco de germoplasma del Programa de Selección de Variedades del Campo Experimental Regional del Centro de Investigación y Desarrollo de la Caña de Azúcar (CIDCA C. A.), provenían de Chiapas (42) y Veracruz (11) ambos reportados con X. albilineans (Flores 1997; Gonzáles-Jiménez et al., 2011). Paralelamente se hicieron introducciones a La Chontalpa, de clones de caña de Chiapas y de Colombia (Besosa y Estrada, 2011), y aunque los clones colombianos pasaron un periodo cuarentenario en CIDCA C. A., desde 1993 Colombia tiene problemas con X. albilineans (Victoria et al., 1995).

Si bien no se puede precisar el año y punto de llegada de la bacteria a Tabasco, las evidencias permiten inferir que X. albilineans pudo ser introducida en material propagativo depositado en alguno de los dos bancos de germoplasma de la región, ya que en ninguno de los reportes se menciona la aplicación de tratamientos hidrotérmicos al menos en el sitio de llegada. Según Huerta et al. (2003), los estudios moleculares de diversidad genética podrían servir para dilucidar el origen de las cepas existentes en Tabasco, a partir del aislamiento de distintas procedencias.

Los análisis de las 210 muestras tomadas por clon (10 tallos por 21 sitios) indican que los clones CP 72-2086 y RD 75-11 fueron negativos a la bacteria, lo que podría ser debido a la condición genética del clon, como fue reportado por Chávez (2000) y Huerta et al. (2003), o a que estos clones aún no han estado en contacto con la bacteria (Victoria, 1995). En contraste, los clones MEX 69-290, MEX 68-P-23 y MEX 79-431 tuvieron tallos positivos a la bacteria; los clones MEX 69-290 y MEX 79-431 fueron detectados positivos en un tallo por plantación, respectivamente; mientras que en el clon MEX 68-P-23 se detectaron tres tallos con reacción positiva, provenientes de dos plantaciones. Este último clon ha sido relacionado con X. albilineas (Irvine et al., 1993; Flores, 1997; Chávez, 2000; Huerta et al., 2003). Además, los cuatro sitios encontrados con tallos positivos cuentan con clones diferentes, lo que permite suponer que se tratan de puntos aislados de dispersión de la bacteria, derivados de un foco primario aún no identificado.

Aunque se conoce que la severidad de la enfermedad dependen de las condiciones ambientales y del estado fisiológico del cultivo de la caña de azúcar (Rott y Davis, 2000), los resultados obtenidos en los cuatros sitios de dispersión de ningún modo pueden ser atribuidos a condiciones particulares de menor régimen de lluvia o por efecto de los suelos Cambisol, Gleisol o Vertisol, ya que las plantaciones positivas corresponden a clones distintos y apenas representan 4 % del área de estudio. Por tanto, es más probable que su presencia en tales sitios se deba a la dispersión humana, y que el foco original sea uno de los sitios positivos o que esté muy cerca de éstos en el sur de la zona cañera de Tabasco.

Porcentaje de incidencia de X. albilineans

La incidencia mínima detectada en general varió en un rango de 10 a 20 % en las cuatro plantaciones que resultaron positivas (Cuadro 1). Así, mientras que las plantaciones de los clones MEX 69-290 y de MEX 79-431 mostraron incidencias mínima de 10 % en un punto de muestreo, las dos plantaciones positivas el clon MEX 68-P-23 mostraron incidencia de 10 y 20 %.

El desconocimiento de los cañeros acerca de la presencia de la bacteria en la región parece explicar la falta de tratamiento térmico a la semilla previo a la siembra, y la alta vulnerabilidad de la composición clonal de la región cañera de La Chontalpa advertida por Salgado et al. (2009). De acuerdo con Ricaud y Ryan (1989), en esta circunstancias se favorece la dispersión regional de la bacteria y pone en riesgo la producción regional sobre todo de los clones susceptibles, dado que la escaldadura influye negativamente en el desarrollo de los retoños y causa pérdidas del rendimiento de campo que varían entre 15 y 20 % (Rott y Davis, 2000).

Además, la escaldadura podría causar pérdidas indirectas debido a los costos de resiembra de las zonas afectadas, por la obligada obtención de material libre por medio de termoterapia o cultivo de tejidos, y por la selección de clones resistentes (Rott y Davis, 2000). Por ejemplo, la aparición de la escaldadura de la hoja en Louisiana, EE. UU. provocó la pérdida de clones prometedores que se encontraban en proceso de selección, lo que ha llevado a modificar las estrategias de mejora varietal (Hoy y Grisham, 1994).

Al considerar el reducido número de plantaciones detectadas positivas (4/105), la baja incidencia de tallos infectados por plantación y la ausencia de síntomas en las plantaciones muestreadas que corresponden a clones ubicados como tolerantes (Chávez, 2000), podría indicar que la bacteria se está expresando en forma latente, como describen Flores (1997), Tokeshi (1980) y Rott y Davis (2000). Por la detección de la bacteria aquí realizada y la baja proporción de plantaciones portadoras, es tiempo oportuno para tomar acciones de manejo integral de dicha enfermedad, como propusieron Fucikovsky (2002) y Ovalle (2012). En dicho manejo integral se debe contemplar la utilización de semilla sana proveniente de semilleros certificados libres de bacteria, o en su defecto aplicar tratamientos hidrotérmicos a semillas de 3 a 4 yemas (pretratamiento a 50 ºC por 10 min, reposo por 8 a12 h, y tratamiento a 51 ºC por 1 h); en adición, habría que establecer prácticas de desinfección de las herramientas de corte y de la maquinaria agrícola empleada en la zafra de varios predios (Victoria et al., 1995).

Aislamiento de X. albilineans

El síntoma "líneas de lápiz", típico de la fase crónica de la enfermedad, a partir del cual se aisló la bacteria, se ilustra en la Figura 2a, y el cultivo de colonias bacterianas de X. albilineans visibles después de 7 d de incubación se ilustra en la Figura 2b. Tales colonias eran circulares, de 1 mm de diámetro, de bordes lisos y de color claro y no mucoides, tal como las describen Alvez et al. (2011).

El RADN obtenido de las colonias bacterianas se amplificó mediante PCR con los iniciadores 8F y 1492R. La visualización de los productos de PCR mediante electroforesis en gel de agarosa, mostró la amplificación de la región 16S rDNA. Un aislamiento de X. albilineans obtenido en 2014 en la región cañera de La Chontalpa, de plantas sintomáticas del clon EMEX00-21 del Banco de germoplasma del Campo Experimental Regional del CIDCA C. A., presentó máxima asociación con las secuencias (AB248364, AB248374, NR074403, X95918) de X. albilineans depositadas en el Gen Bank (Figura 3).

Este resultado confirma la presencia X. albilineans y la manifestación de la enfermedad escaldadura de la hoja en la zona cañera de La Chontalpa, Tabasco. De esta forma se prueba la hipótesis acerca de la presencia de este patógeno causante de la escaldadura de la hoja, y es el primer reporte de su presencia en Tabasco. Por ello conviene tomar las medidas de manejo antes descritas para evitar una mayor diseminación. Además, se recomienda efectuar estudios adicionales para determinar el nivel de virulencia y agresividad de las cepas de X. albilineans, para sustentar una alerta temprana destinada a proteger la industria de la caña de azúcar de la región.

CONCLUSIONES

Se confirmó la presencia de las bacterias Xanthomonas albilineans, agente causal de la escaldadura de la hoja, en infecciones latentes en los clones MEX 69-290, MEX 68-P-23 y MEX 79-431. Asimismo, su distribución se limitó a la parte sudoeste del área de estudio, con incidencia máxima de 20 %, en cuatro puntos de dispersión.

AGRADECIMIENTOS

Al personal del Ingenio Presidente Benito Juárez y del Ingenio Santa Rosalía, por el apoyo brindado en la toma de muestras, en particular a los Ingenieros José Juan y José Gabriel García que nos acompañaron en la localización de las plantaciones comerciales seleccionadas, así como al CONACYT y a la línea de investigación LPI2 del Colegio de Postgraduados por el apoyo económico otorgado.

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