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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Variación aloenzimática y tamaño de poblaciones de haya mexicana (Fagus grandifolia subsp. mexicana) en la Sierra Madre Oriental]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Allozyme variation and population size of haya mexicana (Fagus grandifolia subsp. mexicana) in the Sierra Madre Oriental]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Fagus grandifolia Ehrh. subsp. mexicana (Martínez) E. Murray grows in isolated populations at Sierra Madre Oriental in México. Seven populations of this species were sampled to determine alloenzymatic variation in vegetative buds. A total of ten loci were analyzed on eight enzymatic systems, and 26 alleles were observed. The percentage of polymorphic loci was 62.9 % in average among populations, and the number of alleles per locus was 1.9. Expected and observed heterozygo-sity were 0.202 and 0.253, respectively. Wright's F ST (0.057) showed moderate genetic differentiation. The gene flow rate (Nem) was 5.26 individuals for generation. Nei's genetic distances ranged from 0.001 to 0.027 (average 0.012). Population density ranged from 251 to 416 trees ha-1 in Agua Fría and in the summit of Acatlán Volcano, respectively. A total number of 45 533 adult trees were estimated in the seven populations of F. gradifolia subsp. mexicana. The largest number of trees (14 903) was found at La Mojonera while the shortest one (250) was found at the summit of the Acatlán Volcano. No correlation was found between parameters of genetic diversity and the size and density of populations. Allozyme variation found in the populations of F. grandifolia subsp. mexicana was modérate.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos cient&iacute;ficos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Variaci&oacute;n aloenzim&aacute;tica y tama&ntilde;o de poblaciones de haya mexicana (<i>Fagus grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i>) en la Sierra Madre Oriental</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Allozyme variation and population size of haya mexicana (<i>Fagus grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i>) in the Sierra Madre Oriental</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Diego Montiel&#45;Oscura<sup>1</sup>, Carlos Ram&iacute;rez&#45;Herrera<sup>2</sup>*, Gregorio &Aacute;ngeles&#45;P&eacute;rez<sup>2</sup>, Javier L&oacute;pez&#45;Upton<sup>2</sup> y Pedro Antonio&#45;L&oacute;pez<sup>3</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Comisi&oacute;n Nacional Forestal, Gerencia de Plantaciones Comerciales. Perif&eacute;rico Poniente # 5360. 45019, Col. San Juan de Ocotan, Zapopan, Jalisco.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Postgrado Forestal, Colegio de Postgraduados&#45;Campus Montecillo. Km 36.5 Carr. M&eacute;xico&#45;Texcoco. 56230, Montecillo, Texcoco, Edo. de M&eacute;xico. Tel. 01(595)2&#45;02&#45;46. *Autor para correspondencia</i> (<a href="mailto:kmcramcolpos@gmail.com">kmcramcolpos@gmail.com</a>)</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> Colegio de Postgraduados&#45;Campus Puebla. Km 125.5 Carr. M&eacute;xico&#45;Puebla. 72760, Puebla, Puebla.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 23 de Mayo del 2011    <br> 	Aceptado: 31 de Octubre del 2013</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Fagus grandifolia</i> Ehrh. subsp. <i>mexicana</i> (Mart&iacute;nez) E. Murray crece en poblaciones aisladas en la Sierra Madre Oriental en M&eacute;xico. Siete poblaciones de esta especie fueron muestreadas para determinar la variaci&oacute;n aloenzim&aacute;tica en yemas vegetativas. Se analizaron 10 loci en ocho sistemas enzim&aacute;ticos, donde se observaron 26 alelos. El porcentaje de loci polim&oacute;rficos fue 62.9 % en promedio de poblaciones. El n&uacute;mero promedio de alelos por locus fue 1.9. La heterocigosidad esperada y observada promedio fue de 0.202 y 0.253, respectivamente. El F<sub>ST</sub> de Wright (0.057) indic&oacute; una diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica moderada. El flujo g&eacute;nico (N<sub>em</sub>) fue de 5.26 individuos por generaci&oacute;n. Las distancias g&eacute;nicas de Nei variaron de 0.001 a 0.027, con un promedio de 0.012. La densidad en las poblaciones vari&oacute; de 251 a 416 &aacute;rboles ha<sup>&#45;1</sup> en Agua Fr&iacute;a y en la cima del volc&aacute;n Acatl&aacute;n, respectivamente. En las siete poblaciones de <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> se estim&oacute; un n&uacute;mero total de 45 533 &aacute;rboles adultos. En La Mojonera se encontr&oacute; el mayor n&uacute;mero de &aacute;rboles (14 903), mientras en la cima del volc&aacute;n Acatl&aacute;n hubo el menor (250). No se encontr&oacute; correlaci&oacute;n entre los par&aacute;metros de diversidad gen&eacute;tica con el tama&ntilde;o y densidad de las poblaciones. La diversidad aloenzim&aacute;tica encontrada en las poblaciones muestreadas de <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> fue moderada.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>F. grandifolia subsp. mexicana,</i> heterocigosidad, electroforesis, distancias gen&eacute;ticas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Fagus grandifolia</i> Ehrh. subsp. <i>mexicana</i> (Mart&iacute;nez) E. Murray grows in isolated populations at Sierra Madre Oriental in M&eacute;xico. Seven populations of this species were sampled to determine alloenzymatic variation in vegetative buds. A total of ten loci were analyzed on eight enzymatic systems, and 26 alleles were observed. The percentage of polymorphic loci was 62.9 % in average among populations, and the number of alleles per locus was 1.9. Expected and observed heterozygo&#45;sity were 0.202 and 0.253, respectively. Wright's F<sub>ST</sub> (0.057) showed moderate genetic differentiation. The gene flow rate (Nem) was 5.26 individuals for generation. Nei's genetic distances ranged from 0.001 to 0.027 (average 0.012). Population density ranged from 251 to 416 trees ha<sup>&#45;1</sup> in Agua Fr&iacute;a and in the summit of Acatl&aacute;n Volcano, respectively. A total number of 45 533 adult trees were estimated in the seven populations of <i>F. gradifolia</i> subsp. <i>mexicana.</i> The largest number of trees (14 903) was found at La Mojonera while the shortest one (250) was found at the summit of the Acatl&aacute;n Volcano. No correlation was found between parameters of genetic diversity and the size and density of populations. Allozyme variation found in the populations of <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> was mod&eacute;rate.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>F. grandifolia subsp. mexicana,</i> heterozygosity, electrophoresis, genetic distances.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Fagus grandifolia</i> Ehrh. subsp. <i>mexicana</i> (Mart&iacute;nez) E. Murray es una especie arb&oacute;rea end&eacute;mica de M&eacute;xico que solamente crece en 11 poblaciones peque&ntilde;as y aisladas en los Estados de Tamaulipas, Nuevo Le&oacute;n, San Luis Potos&iacute;, Hidalgo, Puebla y Veracruz (Rodr&iacute;guez&#45;Ram&iacute;rez <i>et al.,</i> 2013). El aprovechamiento maderable, el pastoreo excesivo y la recolecci&oacute;n de le&ntilde;a y de semillas para consumo, son causas posibles que han influido en la reducci&oacute;n del tama&ntilde;o de sus poblaciones y que la han colocado en peligro de extinci&oacute;n (SEMARNAT, 2010). El cambio clim&aacute;tico puede afectar la permanencia de las poblaciones de <i>Fagus grandifolia</i> subsp. <i>mexicana,</i> al igual que a otras especies que crecen en el bosque mes&oacute;filo (T&eacute;llez&#45;Vald&eacute;s <i>et al.,</i> 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La diversidad gen&eacute;tica es importante para que una especie se adapte a los cambios ambientales y pueda sobrevivir al ataque de plagas y enfermedades (White <i>et al.,</i> 2007). Especies con poblaciones peque&ntilde;as, como el caso de <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana,</i> tienden a diferenciarse y suelen tener niveles bajos de diversidad gen&eacute;tica, lo que puede acelerar su proceso de extinci&oacute;n (Hartl y Clark, 2007). Conocer la estructura gen&eacute;tica de las poblaciones de &aacute;rboles forestales es indispensable para entender los mecanismos evolutivos que act&uacute;an y para implementar una conservaci&oacute;n efectiva (Slavov y Zhelev, 2004). Uno de los m&eacute;todos m&aacute;s r&aacute;pidos y baratos para cuantificar la diversidad gen&eacute;tica dentro y entre poblaciones de especies, es el an&aacute;lisis de la variaci&oacute;n aloenzim&aacute;tica a trav&eacute;s de electroforesis (Freeland, 2005). Este an&aacute;lisis permite una evaluaci&oacute;n de la condici&oacute;n de las poblaciones para la toma de decisiones sobre la manipulaci&oacute;n y conservaci&oacute;n de las mismas (Buth y Murphy, 1999).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> se encontr&oacute; una elevada diferenciaci&oacute;n entre poblaciones mediante la t&eacute;cnica RAPD (Rowden <i>et al.,</i> 2004); sin embargo, se incluy&oacute; un n&uacute;mero reducido de poblaciones por lo que es importante conocer la diversidad gen&eacute;tica y estructura gen&eacute;tica de un mayor n&uacute;mero de sus poblaciones naturales y as&iacute; poder proponer una estrategia de conservaci&oacute;n de las mismas. El tama&ntilde;o de las poblaciones de <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> puede influir en una reducci&oacute;n de la diversidad gen&eacute;tica por endogamia y disminuir la capacidad de adaptaci&oacute;n de los individuos a los cambios ambientales, por lo que se puede acelerar su proceso de extinci&oacute;n. Por estas razones, en el presente estudio se plantearon los dos objetivos siguientes: (1) Cuantificar el nivel de variaci&oacute;n aloenzim&aacute;tica dentro y entre siete poblaciones de <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana,</i> y (2) Determinar la relaci&oacute;n entre los par&aacute;metros de diversidad gen&eacute;tica y el tama&ntilde;o y densidad de las poblaciones.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material vegetal</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se recolectaron al menos 10 yemas vegetativas en la parte baja de la copa de cada &aacute;rbol adulto de <i>Fagus grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> en cada una de las siete poblaciones incluidas en el presente estudio (<a href="/img/revistas/rfm/v36n4/a7c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Los &aacute;rboles seleccionados estaban distribuidos en toda la poblaci&oacute;n, con una distancia m&iacute;nima entre &aacute;rboles adultos de 30 m para evitar en lo posible recolectar yemas de &aacute;rboles emparentados. Con la restricci&oacute;n de distancia impuesta y el tama&ntilde;o reducido de algunas poblaciones, se obtuvieron muestras de 17 a 30 individuos adultos en cada poblaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las yemas de cada &aacute;rbol se colocaron en bolsas de pl&aacute;stico, las cuales se identificaron con el nombre de la poblaci&oacute;n y un n&uacute;mero consecutivo dado a cada &aacute;rbol dentro de cada poblaci&oacute;n. Las bolsas se transportaron en una hielera del sitio de recolecta al laboratorio. En el laboratorio las yemas se mantuvieron en refrigeraci&oacute;n hasta que se utilizaron para la purificaci&oacute;n de extractos y posterior electroforesis.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se seleccion&oacute; al azar una yema de cada &aacute;rbol, la cual se coloc&oacute; en una cavidad de una caja de cultivo celular. Para moler cada yema se agregaron 1.5 mL del amortiguador de extracci&oacute;n el cual se elabor&oacute; con 10 g de PVP 40, 10 g de sacarosa, 0.17 g de EDTA Na<sub>2</sub>, 0.15 g de dithiotreitol, 0.02 g de &aacute;cido asc&oacute;rbico, 0.05 g de NAD, 0.035 g NADP y 0.005 g fosfato&#45;5&#45;piodoxal, que fueron disueltos en 10 mL de 1M Tris&#45;HCl (pH 8.0) y 90 mL de agua destilada (NFGEL, 2003). Despu&eacute;s de macerar las yemas, la caja de cultivo celular con las muestras se coloc&oacute; en un ultracongelador a &#45;60 &deg;C hasta su utilizaci&oacute;n en el an&aacute;lisis electrofor&eacute;tico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis aloenzim&aacute;tico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las muestras se descongelaron y en cada cavidad de las cajas de cultivo celular se introdujeron tiras de papel Whatman No. 5 de 12 &#215; 1 mm (mechas). Las mechas saturadas con el sustrato se colocaron en geles de almid&oacute;n a 10 %, sobre los cuales las muestras se sometieron a electroforesis.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se analizaron ocho sistemas enzim&aacute;ticos con un total de 10 loci; cuatro sistemas enzim&aacute;ticos: diaforasa (DIA, E.C.1.6.99), isocitrato deshidrogenasa (IDH, E.C.1.1.1.41), malato deshidrogenasa (MDH, E.C.1.1.1.37), y 6&#45;fosfoglu&#45;conato deshidrogenasa (6&#45;PGDH, E.C.1.1.144), se analizaron con amortiguador para gel y electrodo preparado con &aacute;cido c&iacute;trico 0.040 M y N&#45;(3&#45;aminopropil)&#45;morfolina 0.068 M, pH 6.1 (Wendel y Weeden, 1989). Los cuatro sistemas restantes: fosfoglucoisomerasa (PGI, E.C.5.3.1.9), enzima m&aacute;lica (ME, E.C.1.1.1.40), peroxidasa (PRX, E.C.1.11.1.7) y leucina aminopeptidasa (LAP, E.C.3.4.11.1), se analizaron con amortiguador para gel de L&#45;Histidina 0.005 M, pH 7.0 y amortiguador para electrodo de &aacute;cido c&iacute;trico 0.410 M, pH 7.0 (Wendel y Weeden, 1989).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los loci se identificaron con la abreviatura del sistema enzim&aacute;tico. Cuando se encontr&oacute; m&aacute;s de un locus en el mismo sistema enzim&aacute;tico, &eacute;stos se enumeraron consecutivamente a partir del locus que se desplaz&oacute; m&aacute;s r&aacute;pido. Los alelos dentro de cada locus se enumeraron en forma descendente, de acuerdo con el alelo que se desplaz&oacute; a mayor distancia sobre el gel. La interpretaci&oacute;n de los patrones de bandeo se hizo al tomar como referencia el desplazamiento de muestras de <i>Pinus resinosa</i> Aiton, especie que no tiene variaci&oacute;n aloenzim&aacute;tica (Fowler y Morris, 1977).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Un locus se identific&oacute; como monom&oacute;rfico cuando s&oacute;lo un alelo fue detectado (Falconer, 1989). Un alelo se clasific&oacute; como raro cuando su frecuencia fue menor de 0.05, y como com&uacute;n cuando su frecuencia fue mayor o igual a 0.05 (Marshall y Brown, 1975). Cuando un alelo se encontr&oacute; solamente en una poblaci&oacute;n, &eacute;ste se clasific&oacute; como privado (Neel, 1973).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Tama&ntilde;o y densidad de las poblaciones</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La densidad de individuos de <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> de cada poblaci&oacute;n se estim&oacute; con el m&eacute;todo de cuadrante centrado en un punto (Mitchel, 2007). Los puntos de muestreo en un transepto se establecieron cada 20 m para cada poblaci&oacute;n. En cada punto se traz&oacute; una l&iacute;nea perpendicular al transepto para formar cuatro cuadrantes. En cada cuadrante se midi&oacute; la distancia del &aacute;rbol de <i>Fagus</i> m&aacute;s cercano al punto central que tuviera un di&aacute;metro m&iacute;nimo de 10 cm. La distancia entre el &aacute;rbol y el punto central fue menor a 10 m para evitar que se midiera dos veces. El tama&ntilde;o del transepto y el n&uacute;mero de puntos muestreados vari&oacute; proporcionalmente de acuerdo con el tama&ntilde;o de la poblaci&oacute;n. La densidad (D), expresada en n&uacute;mero de &aacute;rboles por hect&aacute;rea, se obtuvo con la ecuaci&oacute;n: <i>D</i> = <i>1ha</i>* <i>d<sup>&#45;2</sup></i> (Mueller&#45;Dombois y Ellenberg, 1974), en donde es la distancia media entre el punto de origen y cada &aacute;rbol medido.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La poligonal de cada poblaci&oacute;n se traz&oacute; en cartas topogr&aacute;ficas escala 1:50000. Se realiz&oacute; un recorrido en campo para ubicar los l&iacute;mites de cada poblaci&oacute;n, con apoyo de un sistema de posicionamiento global (GPS) y as&iacute; verificar su ubicaci&oacute;n. El &aacute;rea delimitada en la carta topogr&aacute;fica se escane&oacute; y con el programa AutoCad&copy; se estim&oacute; el &aacute;rea de cada poblaci&oacute;n. El tama&ntilde;o de poblaci&oacute;n (n&uacute;mero de individuos) se obtuvo al multiplicar el &aacute;rea por la densidad promedio de cada poblaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Par&aacute;metros gen&eacute;ticos y an&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La variaci&oacute;n gen&eacute;tica dentro de poblaciones se describi&oacute; con cuatro par&aacute;metros (Nei, 1978): 1) Porcentaje de loci polim&oacute;rficos (P); 2) N&uacute;mero promedio de alelos por locus (A); 3) Heterocigosidad observada (Ho); y 4) Heterocigosidad esperada (He). La estructura gen&eacute;tica entre poblaciones se analiz&oacute; mediante el F<sub>ST</sub> de Wright, que mide la proporci&oacute;n de la diversidad gen&eacute;tica total entre poblaciones (Wright, 1965). Las relaciones gen&eacute;ticas entre poblaciones se cuantificaron con las distancias gen&eacute;ticas de Nei (D<sub>N</sub>) (Nei, 1978), y con &eacute;stas se construy&oacute; un dendrograma con el m&eacute;todo UPGMA. La informaci&oacute;n se analiz&oacute; con el programa de c&oacute;mputo POPGENE ver. 1.31 (Yeh <i>et al.,</i> 1997). El flujo gen&eacute;tico (N ) entre poblaciones, medido como el n&uacute;mero de migrantes por generaci&oacute;n, se estim&oacute; a trav&eacute;s de la ecuaci&oacute;n propuesta por Slatkin (1987). Las distancias geogr&aacute;ficas se calcularon con el programa Movable Type Scripts (Veness, 2012). La correlaci&oacute;n entre las distancias gen&eacute;ticas y las distancias geogr&aacute;ficas entre las poblaciones se estim&oacute; con la prueba de Mantel mediante el programa XLSTAT Versi&oacute;n 2013.4.05 (Addinsoft, 2013)</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se calcularon coeficientes de correlaci&oacute;n entre el tama&ntilde;o y densidad de poblaci&oacute;n con cada uno de los par&aacute;metros de diversidad gen&eacute;tica, con el procedimiento PROC CORR del programa estad&iacute;stico SAS (SAS Institute, 2001).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Diversidad aloenzim&aacute;tica</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En todas las poblaciones se observaron 26 alelos en los 10 loci estudiados; el locus 6&#45;PGDH&#45;1 fue monom&oacute;rfico. El n&uacute;mero promedio de alelos fue 19.6 (<a href="/img/revistas/rfm/v36n4/a7c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). El mayor n&uacute;mero de alelos raros se encontr&oacute; en la localidad El Reparo, Hgo., mientras que el menor n&uacute;mero fue cero y se registr&oacute; en la cima del volc&aacute;n Acatl&aacute;n, Ver. &Uacute;nicamente se encontraron alelos privados en la poblaci&oacute;n localizada en Agua Fr&iacute;a, N. L. Algunos alelos se encontraron en pocas poblaciones, por ejemplo: el alelo 1 del locus LAP&#45;1 y el alelo 1 del locus PGI&#45;2 se observaron s&oacute;lo en las poblaciones de Tutotepec II, Hgo. y Agua Fr&iacute;a, N. L.; el alelo 3 del locus ME&#45;1 s&oacute;lo se registr&oacute; en Tutotepec II, Hgo. y en la poblaci&oacute;n localizada en el cr&aacute;ter del volc&aacute;n Acatl&aacute;n, Ver. Lo anterior probablemente se debe a que una fuerza de selecci&oacute;n est&aacute; actuando simult&aacute;neamente en esos loci para reducir o eliminar su frecuencia al&eacute;lica en las poblaciones, o bien a que los alelos son de reciente formaci&oacute;n y no han tenido oportunidad de dispersarse e incrementar sus frecuencias (White <i>et al.,</i> 2007).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El mayor n&uacute;mero de alelos por locus y la mayor heterocigosidad esperada se encontraron en las poblaciones de Tutotepec II, Hgo. y Agua Fr&iacute;a, N. L., respectivamente; los menores valores de estos dos par&aacute;metros se encontraron en la poblaci&oacute;n de La Mojonera, Hgo. (<a href="/img/revistas/rfm/v36n4/a7c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). La hereocigosidad observada vari&oacute; de 0.203 en La Mojonera, Hgo. a 0.310 en la cima del volc&aacute;n Acatl&aacute;n, Ver., con un promedio de 0.253.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de loci polim&oacute;rficos (P) y el n&uacute;mero promedio de alelos por locus (A) entre poblaciones fueron 62.9 % y 1.96, respectivamente (<a href="/img/revistas/rfm/v36n4/a7c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). Los valores de estos par&aacute;metros gen&eacute;ticos fueron moderadamente inferiores a los reportados para otras especies del g&eacute;nero <i>Fagus;</i> por ejemplo, el porcentaje de loci polim&oacute;rficos para <i>F. sylvatica</i> L. y <i>F. grandifolia</i> Ehrh, especies con amplia distribuci&oacute;n en Europa central y Norteam&eacute;rica, fue de 67 y 86 %, respectivamente (Comps <i>et al.,</i> 1990; Kitamura y Kawano, 2001). El n&uacute;mero promedio de alelos por locus reportado en la literatura vari&oacute; entre 2.17 para <i>F. sylvatica</i> y 2.93 para <i>F. grandifolia</i> (G&ouml;m&ouml;ry <i>et al.,</i> 1999; Kitamura y Kawano, 2001).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El valor de heterocigosidad esperada promedio (<i>He</i>) de <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> fue de 0.202, el cual fue comparable con los valores encontrados para otras especies del g&eacute;nero <i>Fagus</i> (0.186 a 0.230) (Kitamura y Kawano, 2001; Chung <i>et al.,</i> 1998), y fue mayor que el encontrado para angiospermas (0.143) (Hamrick <i>et al.,</i> 1992). Estos valores con moderada diversidad gen&eacute;tica interpoblacional en las poblaciones de <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana,</i> en comparaci&oacute;n con otras especies del mismo g&eacute;nero, pudieron deberse al tama&ntilde;o reducido de la mayor&iacute;a de las poblaciones estudiadas. Especies end&eacute;micas o de distribuci&oacute;n restringida por lo general tienen menor diversidad gen&eacute;tica a trav&eacute;s de loci polim&oacute;rficos, n&uacute;mero de alelos por locus y heroci&#45;gosidad, que aquellas que tienen una distribuci&oacute;n amplia (Hamrick y Godt, 1990).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de F<sub>ST</sub> de Wright variaron de 0.002 para el locus 6&#45;PGDH&#45;2 a 0.163 para el locus IDH&#45;1, con un promedio de 0.057 (<a href="#c4">Cuadro 4</a>), rango que indica una diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica moderada con 5.7 % de la diversidad gen&eacute;tica que reside entre poblaciones. Valores de F<sub>ST</sub> de Wright entre 0.05 y 0.15 indican una diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica moderada (Hartl y Clark, 2007). El valor promedio de F<sub>ST</sub> de Wright en el presente estudio fue menor al promedio encontrado en angiospermas (F<sub>ST</sub> = 0.102) (Hamrick <i>et al.,</i> 1992), y est&aacute; dentro del intervalo (0.014 a 0.167) reportado para otras especies del g&eacute;nero <i>Fagus</i> (Comps <i>et al.,</i> 1990; G&oacute;m&oacute;ry <i>et al.,</i> 1999; Kitamura y Kawano, 2001). Por otro lado, el valor de diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica encontrado entre las poblaciones de <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> fue mucho menor al reportado por Rowden <i>et al.</i> (2004) de 0.17 para la misma especie con el uso de RAPD. La diferenciaci&oacute;n de poblaciones por la acci&oacute;n de la deriva gen&eacute;tica se puede detectar con mayor precisi&oacute;n mediante marcadores moleculares neutros tales como RAPD y microsat&eacute;lites (Hartl y Clark, 2007).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c4"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rfm/v36n4/a7c4.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados obtenidos en el presente estudio y los reportados por Rowden <i>et al.</i> (2004) en <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> siguen la misma tendencia que los reportados para <i>Picea abies</i> Karst en la estimaci&oacute;n de diversidad gen&eacute;tica mediante RAPDs y aloenzimas (Bucci y Menozzi, 1995; Giannini <i>et al.,</i> 1991). Sin embargo, en <i>Pseudotsuga menziesii</i> (Mirb.) Franco, la diversidad gen&eacute;tica estimada con el uso de isoenzimas y marcadores gen&eacute;ticos de ADN fue similar (Aagaard <i>et al.,</i> 1998).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El flujo gen&eacute;tico estimado (Nm) entre las poblaciones de <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> fue de 5.26 migrantes por generaci&oacute;n, lo que indica una moderada diferenciaci&oacute;n entre poblaciones. Un inmigrante cada dos generaciones es suficiente para evitar diferenciaci&oacute;n entre poblaciones (Slatkin, 1987); sin embargo, el n&uacute;mero de migrantes aqu&iacute; encontrado puede reflejar migraci&oacute;n ocurrida en el pasado y sobreestimar el n&uacute;mero de migrantes en la presente generaci&oacute;n, como se report&oacute; para <i>Picea mexicana</i> Mart&iacute;nez que crece en poblaciones peque&ntilde;as y aisladas (Ledig <i>et al.,</i> 2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las distancias gen&eacute;ticas de Nei (D<sub>N</sub>) variaron de 0.001 entre las poblaciones de Tutotepec I y Tutotepec II, Hgo. (localizadas a una distancia promedio de 1.7 km una de la otra) a 0.027 entre las poblaciones de la cima del volc&aacute;n Acatl&aacute;n, Ver. y el Reparo, Hgo. (<a href="/img/revistas/rfm/v36n4/a7c5.jpg" target="_blank">Cuadro 5</a>). Las poblaciones localizadas en el Estado de Hidalgo fueron m&aacute;s similares gen&eacute;ticamente entre s&iacute;, pero diferentes a las localizadas en los Estados de Nuevo Le&oacute;n y Veracruz (<a href="/img/revistas/rfm/v36n4/a7f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). Sin embargo, la correlaci&oacute;n entre las distancias gen&eacute;ticas y distancias geogr&aacute;ficas no fue significativa, de acuerdo con la prueba de Mantel cuyo valor fue de 0.36 (p = 0.11). El promedio de 0.012 de las DNs entre las siete poblaciones analizadas fue menor que el promedio de las DNs (0.028) observado por Kitamura y Kawano (2001) en 21 poblaciones de <i>F grandifolia</i> que cubren una distribuci&oacute;n natural amplia en el Este de los Estados Unidos de Am&eacute;rica y Canad&aacute;. Un valor de DN menor de 0.018 se considera bajo, mientras que un valor de DN mayor que 0.15 se considera alto (Nei, 1978).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Tama&ntilde;o y densidad de las poblaciones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El n&uacute;mero estimado de &aacute;rboles de <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> en la siete poblaciones fue 45 533. Este n&uacute;mero fue mayor que el reportado por Williams&#45;Linera <i>et al.</i> (2003) (7986 individuos) quienes estudiaron un menor n&uacute;mero de poblaciones. Sin embargo, el tama&ntilde;o efectivo de la poblaci&oacute;n de <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> puede ser menor al aqu&iacute; estimado, pues en la naturaleza el tama&ntilde;o efectivo de una poblaci&oacute;n puede ser de &uacute;nicamente 10 % del tama&ntilde;o del censo de la poblaci&oacute;n, debido a aspectos como la variaci&oacute;n en el tama&ntilde;o de la familia, traslape de generaciones, n&uacute;mero diferente de descendencia y desigual proporci&oacute;n de machos y hembras (Frankham <i>et al.,</i> 2004).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como consecuencia de lo antes expuesto, las dos poblaciones localizadas en el volc&aacute;n Acatl&aacute;n, en el Estado de Veracruz, se encuentran en un alto riesgo de extinci&oacute;n al contar con un tama&ntilde;o efectivo de poblaci&oacute;n de 25 y 183 individuos adultos que apenas representan 10 % del censo de la poblaci&oacute;n (<a href="/img/revistas/rfm/v36n4/a7c6.jpg" target="_blank">Cuadro 6</a>). Poblaciones con un tama&ntilde;o efectivo menor a 50 individuos pueden ser muy vulnerables como consecuencia de depresi&oacute;n endog&aacute;mica, mientras que poblaciones con tama&ntilde;o efectivo mayor a los 500 individuos retienen su potencial evolutivo (Frankham <i>et al.,</i> 2004).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las correlaciones de los par&aacute;metros de diversidad gen&eacute;tica con la densidad y el tama&ntilde;o de las poblaciones de <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> no fueron significativas, tal vez debido a que se encontr&oacute; un nivel alto de flujo g&eacute;nico (5.26 migrantes por generaci&oacute;n) que mantiene un nivel considerable de diversidad gen&eacute;tica en todas las poblaciones, que incluyen a las poblaciones peque&ntilde;as. El flujo g&eacute;nico es una fuerza evolutiva que evita la acci&oacute;n de la deriva g&eacute;nica y la endogamia que reducen la diversidad gen&eacute;tica en poblaciones peque&ntilde;as (Hartl y Clark, 2007).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores encontrados de diversidad gen&eacute;tica estimada a trav&eacute;s del n&uacute;mero promedio de alelos por locus, porcentaje de loci polim&oacute;rficos y heterocigosidad esperada y observada, y el tama&ntilde;o efectivo de la poblaciones, pueden ser suficiente para la adaptaci&oacute;n de la especies a los cambios ambientales; sin embargo, otros factores relacionados con las actividades econ&oacute;micas pueden conducir a la desaparici&oacute;n de esta especie en un mediano plazo. Se recomienda que la conservaci&oacute;n de las poblaciones de <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> se realice en el ambiente natural donde se han desarrollado evolutivamente (conservaci&oacute;n <i>in situ</i>), ya que esto permitir&iacute;a conservar los procesos de evoluci&oacute;n natural, as&iacute; como las interacciones con otros organismos y los procesos ecol&oacute;gicos en que participan (Primack, 1995).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se sugiere enfatizar los esfuerzos de conservaci&oacute;n en las siete poblaciones estudiadas, las cuales representan 63.6 % de las 11 poblaciones conocidas de <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> en M&eacute;xico (Rodr&iacute;guez&#45;Ram&iacute;rez <i>et al.,</i> 2013). Tambi&eacute;n ser&iacute;a conveniente considerar la conservaci&oacute;n <i>ex situ</i> de germoplasma de cada poblaci&oacute;n para garantizar la repoblaci&oacute;n de &aacute;reas naturales donde &eacute;stas crecen, en caso de que alguna de ellas sufra los efectos de alguna cat&aacute;strofe natural, como incendios, ataque de plagas o huracanes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La diversidad gen&eacute;tica y tama&ntilde;o efectivo de las poblaciones que se encontraron en <i>F. grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> son adecuados para la continua evoluci&oacute;n de la especie. Las poblaciones localizadas en Agua Fr&iacute;a, N. L., cima del volc&aacute;n Acatl&aacute;n, Ver., Tutotepec II y El Reparo, Hgo. tuvieron el mayor nivel de diversidad gen&eacute;tica, mientras que las de la Mojonera y Tutotepec I, Hgo., as&iacute; como el cr&aacute;ter del volc&aacute;n Acatl&aacute;n, Ver. mostraron el menor nivel de diversidad gen&eacute;tica. La diferenciaci&oacute;n de las poblaciones fue moderada debido a la alta tasa de migraci&oacute;n entre poblaciones.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al Fondo de Investigaci&oacute;n para la Educaci&oacute;n SEP&#45;CONACyT por el financiamiento otorgado a trav&eacute;s del proyecto 44872, y a la Direcci&oacute;n de Investigaci&oacute;n del Colegio de Postgraduados (COLPOS) por el financiamiento a trav&eacute;s del Fideicomiso Revocable de Administraci&oacute;n e Inversi&oacute;n No. 167304. Tambi&eacute;n, se agradece a Celestino Flores, Wenceslao Santiago, Iv&aacute;n Zamudio y Oscar Hern&aacute;ndez, por su ayuda en la ubicaci&oacute;n de las poblaciones, recolecta del material vegetativo y toma de datos en campo.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aagaard J E, K V Krutovskii, S H Strauss (1998)</b> RAPDs and allozymes exhibit similar levels of diversity and differentiation among populations and races of Douglas&#45;fir. Heredity 81:69&#45;78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093856&pid=S0187-7380201300040000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Addinsoft (2013)</b> XLSTAT version 2013.4.05. Microsoft Corporation. Paris, France.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093858&pid=S0187-7380201300040000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Bucci G, P Menozzi (1995)</b> Genetic variation of RAPD markers in a <i>Picea abies</i> Karst. population. Heredity 75:188&#45;197.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093860&pid=S0187-7380201300040000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Buth D G, R W Murphy (1999)</b> The use of isozyme characters in systematic studies. Biochem. Syst. Ecol. 27:117&#45;129.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093862&pid=S0187-7380201300040000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Chung H G, J M Chung, M G Chung (1998)</b> Allozyme variation in six flowering plant species characterizing Ullung Island, Korea. J. Japan. Bot. 73:241&#45;247.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093864&pid=S0187-7380201300040000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Comps B, B Thi&eacute;baut, L Paule, D Merzeau, J Letouzey (1990)</b> Allozymic variability in beechwoods <i>(Fagus sylvatica</i> L.) over central Europe: spatial differentiation among and within populations. Heredity 65:407&#45;417.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093866&pid=S0187-7380201300040000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Falconer D S (1989)</b> Introduction to Quantitative Genetics. Wiley. New York, USA. 438 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093868&pid=S0187-7380201300040000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fowler D P, R W Morris (1977)</b> Genetic diversity in red pine: evidence for low genetic heterozygosity. Can. J. For. Res. 7:343&#45;347.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093870&pid=S0187-7380201300040000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Freeland J R (2005)</b> Molecular Ecology. John Wiley &amp; Sons Ltd. Chichester, England. 388 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093872&pid=S0187-7380201300040000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Frankham R, J D Ballou, D A Briscoe (2004)</b> A Primer of Conservation Genetics. Cambridge University Press. New York, USA. 220 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093874&pid=S0187-7380201300040000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Giannini R, M Morgante, G G Vendramin (1991)</b> Allozyme variation in Italian populations of <i>Picea abies</i> (L.) Karst. Silvae Genet. 40:160&#45;166.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093876&pid=S0187-7380201300040000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>G&ouml;m&ouml;ry D, L Paule, R Brus, P. Zhelev, Z Tomovic, J Gracan (1999)</b> Genetic differentiation and phylogeny of beech on the Balkan peninsula. J. Evol. Biol. 12:746&#45;754.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093878&pid=S0187-7380201300040000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Hartl D L, A G Clark (2007)</b> Principles of Population Genetics. 4th ed. Sinauer Associates, Inc. Publishers. Sunderland, MA, USA. 652 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093880&pid=S0187-7380201300040000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Hamrick J L, M J W Godt (1990)</b> Allozyme diversity in plant species. <i>In:</i> Plant Population Genetics, Breeding and Genetic Resources. A H D Brown, M T Clegg, A L Kahler, B S Weir (eds). Sinauer. Sunderland, Mass. pp:43&#45;63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093882&pid=S0187-7380201300040000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Hamrick J L, M J W Godt, S L Sherman&#45;Broyles (1992)</b> Factors influencing levels of genetic diversity in woody plant species. New Forests 6:95&#45;124.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093884&pid=S0187-7380201300040000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Kitamura K, S Kawano (2001)</b> Regional differentiation in genetic components for the American beech, <i>Fagus grandifolia</i> Ehrh., in relation to geological history and mode of reproduction. J. Plant Res. 114:353&#45;368.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093886&pid=S0187-7380201300040000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Ledig F T, P D Hodgskiss, V Jacob&#45;Cervantes (2002)</b> Genetic diversity, mating system, and conservation of a Mexican subalpine relic, <i>Picea mexicana</i> Mart&iacute;nez. Conserv. Genet. 3:113&#45;122.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093888&pid=S0187-7380201300040000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Marshall D R, A H D Brown (1975)</b> Optimum sampling strategies in genetic conservation. <i>In:</i> Crop Genetic Resources for Today and Tomorrow. O H Frankel, J G Hawkes (eds). Cambridge University Press. Cambridge, UK. pp:53&#45;80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093890&pid=S0187-7380201300040000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Mitchel K (2007)</b> Quantitative analysis by the point&#45;centered quarter method. Department of Mathematics and Computer Science, Hobart and Williams Smith Colleges. Geneva, N. Y. Available online: <a href="http://people.hws.edu/mitchell/PCQM.pdf" target="_blank">http://people.hws.edu/mitchell/PCQM.pdf</a> (April 2011).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093892&pid=S0187-7380201300040000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Mueller&#45;Dombois D, H Ellenberg (1974)</b> Aims and Methods of Vegetation Ecology. John Wiley and Sons. New York, USA. 547 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093894&pid=S0187-7380201300040000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Neel J V (1973)</b> "Private" genetic variants and the frequency of mutation among South American Indians. Proc. Nat. Acad. Sci. USA 70:3311&#45;3315.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093896&pid=S0187-7380201300040000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Nei M (1978)</b> Estimation of average heterozygosity and genetic distance from a small number of individuals. Genetics 89:583&#45;590.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093898&pid=S0187-7380201300040000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>NFGEL, National Forest Genetics Laboratory (2003)</b> Standard Operating Procedures for Starch Gel Electrophoresis. USDA&#45;Forest Service. Placerville, CA, USA. 90 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093900&pid=S0187-7380201300040000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Primack R B (1995)</b> A Primer of Conservation Biology. Sinauer Associates. Sunderland, MA, USA. 277 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093902&pid=S0187-7380201300040000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Rodr&iacute;guez&#45;Ram&iacute;rez E Ch, A S&aacute;nchez&#45;Gonz&aacute;lez, G &Aacute;ngeles&#45;P&eacute;rez (2013)</b> Current distribution and coverage of Mexican beech forests <i>Fagus grandifolia</i> subsp. <i>mexicana</i> in Mexico. Endangered Species Res. 20:205&#45;216.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093904&pid=S0187-7380201300040000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Rowden A, A Robertson, T Allnutt, S Heredia, G Williams&#45;Linera, A C Newton (2004)</b> Conservation genetics of Mexican beech, <i>Fagus grandifolia</i> var. <i>mexicana.</i> Conserv. Genet. 5:475&#45;484.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093906&pid=S0187-7380201300040000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>SAS Institute (2001)</b> SAS/PC System for Windows. Version 8.2. SAS Institute. Cary, NC, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093908&pid=S0187-7380201300040000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>SEMARNAT, Secretaria del Medio Ambiente y Recursos Naturales (2010).</b> Norma Oficial Mexicana NOM&#45;059&#45;SEMAR&#45;NAT&#45;2010, Protecci&oacute;n ambiental&#45;Especies nativas de M&eacute;xico de flora y fauna silvestres&#45;Categor&iacute;as de riesgo y especificaciones para su inclusi&oacute;n, exclusi&oacute;n o cambio&#45;Lista de especies en riesgo. Diario Oficial de la Federaci&oacute;n. Jueves 30 de diciembre de 2010. Estados Unidos Mexicanos. Disponible en: <a href="http://www.dof.gob.mx/" target="_blank">http://www.dof.gob.mx/</a> (Abril 2011)</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093910&pid=S0187-7380201300040000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Slatkin M (1987)</b> Gene flow and the geographic structure of natural populations. Science 236:787&#45;792.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093911&pid=S0187-7380201300040000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Slavov G T, P Zhelev (2004)</b> Allozyme variation, differentiation, and inbreeding in populations of <i>Pinus mugo</i> in Bulgaria. Can. J. For. Res. 34:2611&#45;2617.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093913&pid=S0187-7380201300040000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>T&eacute;llez&#45;Vald&eacute;s O, P D&aacute;vila&#45;Aranda, R Lira&#45;Saade (2006)</b> The effects of climate change on the long&#45;term conservation of <i>Fagus grandifolia</i> var. <i>mexicana,</i> an important species of the Cloud Forest in Eastern Mexico. Biodiv. Conserv. 15:1095&#45;1107.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093915&pid=S0187-7380201300040000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Veness C (2012)</b> Movable Type Scripst. Available at: <a href="http://www.movable&#45;type.co.uk/scripts/latlong.html" target="_blank">http://www.movable&#45;type.co.uk/scripts/latlong.html</a> (Agosto 2013).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093917&pid=S0187-7380201300040000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Wendel J F, N F Weeden (1989)</b> Visualization and interpretation of plant isozymes. <i>In:</i> Isozymes in Plant Biology. D E Sortis, P S Soltis (eds). Dioscorides Press. Portland, Oregon. pp:5&#45;45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093919&pid=S0187-7380201300040000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>White T L, W T Adams, D B Neale (2007)</b> Forest Genetics. Cabi Publishing, 1st ed.. Oxfordshire, U.K. 500 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7093921&pid=S0187-7380201300040000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Williams&#45;Linera G, A Rowden, A C Newton (2003)</b> Distribution and stand characteristics of relict populations of Mexican beech (<i>Fagus grandifolia</i> var. <i>mexicana</i>). Biol. 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