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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Funcionalidad antibacteriana y antioxidante de extractos hidroalcohólicos de Phellinus merrillii]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[En los últimos años las industrias de alimentos, farmacéutica y cosmética se han enfocado en la búsqueda de compuestos naturales con propiedades antimicrobianas y antioxidantes, los cuales se obtienen principalmente de plantas. Sin embargo, recientemente los hongos han sido considerados foco de estudio para la extracción de estos compuestos. Es por ello que el objetivo del presente trabajo fue evaluar la capacidad antibacteriana y antioxidante de extractos metanólicos fraccionados (polar y no polar) del hongo Phellinus merrillii. El extracto metanólico sin fraccionar presentó el mayor contenido de fenoles (913.91 mg de equivalentes de ácido gálico/g, mgEAG/g), flavonoides totales (563.83 mg de equivalentes de quercetina/g, mgEQ/g), la concentración eficiente más baja para inhibir el 50% del radical libre DPPH (0.1767 g/L) y el mayor porcentaje de inhibición contra Staphylococcus aureus, Escherichia coli O157:H7, Salmonella enterica Choleraesuis y Listeria monocytogenes. Seguido de la fracción no polar con valores de 254.50 mgEAG/g, 179.44 mgEQ/g y 0.7238 g/L, y la fracción polar 254.50 mgEAG/g, 163.98 mgEQ/g y 1.1767 g/L. Adicionalmente, la inhibición bacteriana correlacionó positivamente con el contenido de fenoles, flavonoides y actividad antioxidante para todos los extractos. Por ello, el hongo P. merrillii podría ser una fuente de extractos con propiedad antibacteriana y antioxidante.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Contribuciones</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Funcionalidad antibacteriana y antioxidante de extractos hidroalcoh&oacute;licos</b> <b>de <i>Phellinus merrillii</i></b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Antibacterial and antioxidant functionality of hydroalcoholic <span style="font-family:&quot;Verdana&quot;,&quot;sans-serif&quot;">extracts from</span></b> <b><i>Phellinus merrillii</i></b></font></p>      <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Juan Manuel Leyva, Julio Jesumar P&eacute;rez&#45;Carl&oacute;n, Gustavo Adolfo Gonz&aacute;lez&#45;Aguilar, Mart&iacute;n Esqueda, Jes&uacute;s Fernando Ayala&#45;Zavala*</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Coordinaci&oacute;n de Tecnolog&iacute;a de Alimentos de Origen Vegetal, Centro de Investigaci&oacute;n en Alimentaci&oacute;n y Desarrollo, A.C., Carretera a la Victoria</i> <i>km. 0.6. Apartado Postal 1735. Hermosillo (83000), Sonora, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p> 	    <p><b><font size="2" face="verdana">* </font></b><font face="verdana" size="2"><b>Autor para correspondencia:</b>    <br>     J. Fernando Ayala&#45;Zavala: <a href="mailto:jayala@ciad.mx">jayala@ciad.mx</a></font></p>      <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido 18 de octubre 2012;    <br> 	Aceptado 22 de mayo 2013.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recently the food, pharmacy and cosmetic industries have focused on the search for natural compounds with antimicrobial and antioxidant properties, commonly these compounds are obtained from plants. Nowadays, macroscopic fungus are being considered for the extraction these compounds. For this reason, the objective of the present work was to evaluate the antibacterial and antioxidant capacity of fractionated methanolic extracts (polar and non&#45;polar) from <i>Phellinus merrillii</i>. The non&#45;fractionated methanolic extract showed the highest content of phenolics (913.91 mg gallic acid equivalents/g, mgGAE/g), flavonoids (563.83 mg quercetin equivalents/g, mgQE/g), the lowest efficient concentration to inactivate the 50% of the free radical DPPH (0.1767 g/L), and the highest inhibition percent against <i>Staphylococcus aureus</i>, <i>Escherichia coli</i> O157:H7, <i>Salmonella enterica</i> Choleraesuis and <i>Listeria monocytogenes</i>. Followed by the non&#45;polar fraction with values 254.50 mgGAE/g, 179.44 mgQE/g and 0.7238 g/L, and the polar fraction 254.50 mgGAE/g, 163.98 mgQE/g and 1.1767 g/L. Moreover, the antibacterial activity correlated positively with the total phenolic, flavonoid content and antioxidant activity for all the extracts. Therefore, <i>P. merrillii</i> could be a source of antibacterial and antioxidant extracts.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> Basidiomycetes, natural products, total phenolics, free radicals, antibiotic.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los &uacute;ltimos a&ntilde;os las industrias de alimentos, farmac&eacute;utica y cosm&eacute;tica se han enfocado en la b&uacute;squeda de compuestos naturales con propiedades antimicrobianas y antioxidantes, los cuales se obtienen principalmente de plantas. Sin embargo, recientemente los hongos han sido considerados foco de estudio para la extracci&oacute;n de estos compuestos. Es por ello que el objetivo del presente trabajo fue evaluar la capacidad antibacteriana y antioxidante de extractos metan&oacute;licos fraccionados (polar y no polar) del hongo <i>Phellinus merrillii</i>. El extracto metan&oacute;lico sin fraccionar present&oacute; el mayor contenido de fenoles (913.91 mg de equivalentes de &aacute;cido g&aacute;lico/g, mgEAG/g), flavonoides totales (563.83 mg de equivalentes de quercetina/g, mgEQ/g), la concentraci&oacute;n eficiente m&aacute;s baja para inhibir el 50% del radical libre DPPH (0.1767 g/L) y el mayor porcentaje de inhibici&oacute;n contra <i>Staphylococcus aureus</i>, <i>Escherichia coli</i> O157:H7, <i>Salmonella enterica</i> Choleraesuis y <i>Listeria monocytogenes</i>. Seguido de la fracci&oacute;n no polar con valores de 254.50 mgEAG/g, 179.44 mgEQ/g y 0.7238 g/L, y la fracci&oacute;n polar 254.50 mgEAG/g, 163.98 mgEQ/g y 1.1767 g/L. Adicionalmente, la inhibici&oacute;n bacteriana correlacion&oacute; positivamente con el contenido de fenoles, flavonoides y actividad antioxidante para todos los extractos. Por ello, el hongo <i>P. merrilli</i>i podr&iacute;a ser una fuente de extractos con propiedad antibacteriana y antioxidante.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">    <br> 	<b>Palabras clave:</b> Basidiomycetes, productos naturales, fenoles totales, radicales libres, antibi&oacute;tico.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad antimicrobiana y antioxidante de una gran variedad de compuestos fen&oacute;licos de origen natural a partir de diferentes plantas han sido estudiados en detalle (Rodriguez&#45;Vaquero <i>et al.,</i> 2010). Estos compuestos desempe&ntilde;an un papel importante en la protecci&oacute;n contra agentes pat&oacute;genos, reacciones de oxidaci&oacute;n y pueden retrasar el crecimiento de microorganismos. Los compuestos fen&oacute;licos presentes en plantas como el &aacute;cido g&aacute;lico y &aacute;cido el&aacute;gico presentan capacidad para inhibir el crecimiento de hongos y bacterias (Zambuchini <i>et al.,</i> 2008). Por otro lado, el uso de extractos de hongos como antioxidantes se est&aacute; volviendo cada vez m&aacute;s popular (Mau <i>et al.,</i> 2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estudios recientes se han centrado en hongos de la divisi&oacute;n Basidiomycota, debido a la amplia gama de compuestos biol&oacute;gicamente activos que han sido aislados a partir de &eacute;stos (Muszynska <i>et al.,</i> 2011; Balakumar <i>et al.,</i> 2011). En especial los hongos del g&eacute;nero <i>Phellinus,</i> son conocidos por su uso en la medicina tradicional de la cultura China (Muszynska <i>et al.,</i> 2011). Los cuerpos fruct&iacute;feros de estos hongos representan una fuente importante de fenoles, flavonoides, vitaminas y alcaloides con capacidad antioxidante y antibacteriana (Balakumar <i>et al.,</i> 2011). Adicionalmente se ha considerado el cultivo sumergido de estos hongos para la obtenci&oacute;n de extractos ricos en compuestos fen&oacute;licos (Jung <i>et al.,</i> 2008). El potencial biotecnol&oacute;gico de estos hongos se refleja en el reciente aumento del n&uacute;mero de patentes de sus aplicaciones como fuente de antioxidantes y antimicrobianos en farmacia y cosm&eacute;tica. Se patent&oacute; el uso del compuesto Phellinsina aislado de extractos de <i>Phellinus</i> sp. para uso en la prevenci&oacute;n y tratamiento de enfermedades cardiovasculares, inhibiendo la oxidaci&oacute;n de lipoprote&iacute;nas de baja densidad (LDL), proponiendo su uso m&eacute;dico y alimentario (Kim <i>et al.,</i> 2010). Otra de las patentes publicadas es la generaci&oacute;n de extractos inmunomoduladores a partir de cultivos sumergidos de una mezcla de hongos, de los cuales resaltan <i>Phellinus pini</i> y <i>Phellinus linteus</i> (Kristiansen, 2006). Adicionalmente se ha patentado el efecto antimicrobiano y antioxidante de extractos de distintos hongos <i>(P. linteus)</i> y plantas con la finalidad de tratar el acn&eacute; y fotoenvejecimiento (Maloney y Barger, 2010). Una aplicaci&oacute;n en la industria alimentaria se refleja en la patente que plantea la adicci&oacute;n de extractos de micelio de distintos hongos dentro de estos <i>P. linteus,</i> para la formulaci&oacute;n de una bebida tipo caf&eacute; con potencial antioxidante, el cual fue probado sobre l&iacute;neas celulares de c&aacute;ncer (Hammond <i>et al.,</i> 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estudios previos sobre diferentes especies de <i>Phellinus</i> mostraron alta actividad antioxidante en sus extractos metan&oacute;licos, destacando el hongo <i>Phellinus merrillii</i> (Murr.) Ryv. (Ayala&#45;Zavala <i>et al.,</i> 2012a). Dicho extracto present&oacute; el mayor contenido de fenoles y flavonoides totales, as&iacute; como un menor EC<sub>50</sub> para la inactivaci&oacute;n del radical libre DPPH, comparado con extractos de los hongos <i>Phellinus badius</i> (Cooke) G. Cunn, <i>Phellinus fastuosus</i> (L&eacute;v.) Ryv. y <i>Phellinus grenadensis</i> (Murr.) Ryv. La actividad antioxidante y antibacteriana de extractos naturales depende del disolvente usado para la extracci&oacute;n (Yang <i>et al.,</i> 2009). Algunos procedimientos para la extracci&oacute;n de estos compuestos implican el uso de grasas y aceites, disolventes org&aacute;nicos, soluciones alcalinas y di&oacute;xido de carbono supercr&iacute;tico (Pokorny y Korczak, 2001). Los disolventes alcoh&oacute;licos han sido com&uacute;nmente empleados para extraer compuestos fen&oacute;licos de fuentes naturales; &eacute;stos dan un alto rendimiento del extracto total aunque no son altamente selectivos para compuestos fen&oacute;licos. Particularmente mezclas de alcoholes/agua han mostrado ser m&aacute;s eficientes en la extracci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos que el disolvente individual (Yilmaz y Toledo, 2006). Diferentes estudios muestran que el contenido de fenoles en los extractos var&iacute;a con la polaridad de los disolventes. Por ejemplo, metanol absoluto es regularmente utilizado para la extracci&oacute;n de polifenoles del t&eacute; (Yao <i>et al.,</i> 2006), mientras que la fracci&oacute;n con acetona al 50% result&oacute; ser m&aacute;s eficiente que el agua para la extracci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos del trigo (Zhou y Yu, 2004). En este contexto es importante optimizar el proceso de extracci&oacute;n que permita obtener el mayor potencial antibacteriano y antioxidante de extractos de hongos. Debido a &eacute;sto, se propone evaluar el efecto de diferentes fracciones polares y no polares de extractos metan&oacute;licos del hongo <i>P. merrillii</i> sobre sus propiedades antibacterianas y antioxidantes.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n de extractos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Espec&iacute;menes de hongos <i>Phellinus</i> fueron colectados en el municipio de &Aacute;lamos, Sonora y secados a 60 &deg;C por 3 d&iacute;as, la identificaci&oacute;n taxon&oacute;mica de <i>P. merrillii</i> se realiz&oacute; de acuerdo a los m&eacute;todos de Gilbertson y Ryvarden (1986). Se realizaron cortes en los tejidos del himenio del cuerpo fruct&iacute;fero de los hongos, los cuales fueron identificados en base a sus caracter&iacute;sticas macro y microsc&oacute;picas. El ejemplar de <i>Phellinus merrillii</i> se conserva en la colecci&oacute;n de macromicetos del Centro de Estudios Superiores del Estado de Sonora (CESUES 10330). Muestras de <i>P. merrillii</i> (10 g) se colocaron en recipientes conteniendo 100 mL de metanol:agua (7:3), macer&aacute;ndose en oscuridad por 10 d&iacute;as. Despu&eacute;s de este tiempo, el extracto se filtr&oacute; y el metanol del filtrado fue retirado usando un evaporador rotatorio a presi&oacute;n reducida y temperatura de 45 &deg;C. La fracci&oacute;n acuosa se liofiliz&oacute;, obteniendo el extracto seco con un rendimiento del 15 %, el cual se someti&oacute; a una hidr&oacute;lisis alcalina con NaOH 4 M por 4 h en ausencia de luz. Despu&eacute;s se realiz&oacute; una hidr&oacute;lisis &aacute;cida con HCl 4 M hasta alcanzar un pH de 2, en este punto se obtiene el extracto denominado metan&oacute;lico. En la siguiente etapa el extracto hidrolizado se someti&oacute; a separaci&oacute;n de fases mediante lavados con acetato de etilo, obteniendo dos fracciones: una fracci&oacute;n polar y una fracci&oacute;n no&#45;polar (Oboh y Rocha, 2007). En total se obtuvieron 3 extractos: extracto metan&oacute;lico, fracci&oacute;n polar y fracci&oacute;n no polar, a los cuales, se les evalu&oacute; la capacidad antioxidante y antibacteriana.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Contenido de fenoles totales</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los fenoles totales se determinaron de acuerdo al m&eacute;todo de Folin&#45;Ciocalteau propuesto por Singleton y Rossi (1965). La absorbancia fue determinada en un espectrofot&oacute;metro UV&#45;Visible (Varian Cary 50 Bio) a una longitud de onda de 765 nm. Esta t&eacute;cnica se aplic&oacute; a cada una de las muestras por triplicado, la concentraci&oacute;n de fenoles se calcula con base a la curva de calibraci&oacute;n y se expres&oacute; como mg equivalentes de &aacute;cido g&aacute;lico por gramo de extracto (mgEAG/g).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Contenido de flavonoides totales</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La determinaci&oacute;n de flavonoides totales se realiz&oacute; por el m&eacute;todo descrito por Zhishen <i>et al.</i> (1999). La absorbancia de las muestras fue evaluada a una longuitud de onda de 415 nm utilizando un espectrofot&oacute;metro UV&#45;Visible (Varian Cary 50 Bio), &eacute;sto se realiz&oacute; para cada uno de los extractos preparados anteriormente y por triplicado. La absorbancia de cada muestra se compar&oacute; con una curva est&aacute;ndar de quercetina. Los resultados se expresaron como mg equivalentes de quercetina por gramo de extracto (mgEQ/g).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Capacidad antioxidante DPPH</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La capacidad de los extractos de <i>P. merrillii</i> para inhibirr al radical DPPH (2,2&#45;difenil&#45;1&#45;picrilhidrazil) fue calculada de acuerdo al m&eacute;todo propuesto por Gonz&aacute;lez&#45;Aguilar <i>et al.</i> (2007). La inhibici&oacute;n del radical se observ&oacute; mediante la disminuci&oacute;n de la absorbancia a 515 nm en un espectrofot&oacute;metro UV&#45;Visible (Varian Cary 50 Bio). Los resultados se expresaron como EC<sub>50</sub> que es la concentraci&oacute;n eficiente de los extractos para inhibir al 50% la actividad del radical DPPH.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Capacidad antibacteriana</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evalu&oacute; la capacidad antibacteriana de los diferentes extractos contra las cepas pat&oacute;genas de <i>Salmonella enterica</i> subsp. <i>enterica</i> serotipo Choleraesuis (ATCC 7001), <i>Listeria monocytogenes</i> (ATCC 7644), <i>Escherichia coli</i> O157:H7 (ATCC 43890) y <i>Staphylococcus aureus</i> (ATCC 6538). Como in&oacute;culo se utilizaron tubos con caldo soya tripticasa con un crecimiento de 1x10<sup>5</sup> UFC/mL para cada bacteria. Se agreg&oacute; 1 mL de cada in&oacute;culo en tubos con caldo Muller Hinton (1 mL) y 2 concentraciones de cada extracto (4.2 mg/mL y 2.1 mg/mL) y se incub&oacute; por 24 h. Posteriormente se procedi&oacute; a realizar un conteo en placa por estriado en agar M&uuml;ller Hinton tomando una al&iacute;cuota (1 &#956;L), y se incub&oacute; por 24 h a 37 &deg;C. La inhibici&oacute;n bacteriana se calcul&oacute; comparando las UFC de un control contra cada tratamiento y se expres&oacute; como porcentaje de inhibici&oacute;n.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza (P = 0.05) con un dise&ntilde;o completamente al azar, donde se evalu&oacute; el efecto de los factores: extracto metan&oacute;lico, fracci&oacute;n polar y fracci&oacute;n no polar, sobre las variables de respuesta: fenoles totales, flavonoides totales, EC<sub>50</sub> (DPPH), y % de inhibici&oacute;n de las bacterias, el an&aacute;lisis de medias se realiz&oacute; por la prueba de Tukey&#45;Kramer. Se realizaron correlaciones de Pearson (P= 0.05) del contenido de fenoles, flavonoides totales y capacidad antioxidante de cada cepa evaluada, esto se llev&oacute; a cabo en el paquete estad&iacute;stico NCSS versi&oacute;n 2007.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de fenoles totales obtenido de los distintos extractos de <i>P. merrillii</i> se muestra en la <a href="/img/revistas/rmm/v37/a3f1.jpg" target="_blank">Figura 1a</a>, en la cual podemos observar la diferencia significativa (P = 0.05) del contenido de fenoles encontrada entre el extracto metan&oacute;lico y las fracciones polar y no polar (913.91, 257.89 y 254.50 mgEAG/g, respectivamente), siendo el extracto metan&oacute;lico tres veces mayor que las fracciones polar y no polar, entre las cuales no se encontraron diferencias significativas (P&gt;0.05).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados obtenidos en flavonoides (<a href="/img/revistas/rmm/v37/a3f1.jpg" target="_blank">Figura 1b</a>) muestran la misma tendencia observada para el caso de los fenoles. Encontrando diferencia significativa entre extractos (P= 0.05), siendo el extracto metan&oacute;lico el de mayor contenido con 563.84 mgEQ/g, mientras que la fracci&oacute;n polar y no polar presentaron valores de 163.99 y 179 mgEQ/g, respectivamente, siendo estas &uacute;ltimas estad&iacute;sticamente iguales. El contenido de estos compuestos podr&iacute;a otorgar a los extractos evaluados un alto potencial antioxidante, el cual se cree pudiera estar relacionado a su vez con la actividad antibacteriana.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El extracto metan&oacute;lico present&oacute; el valor menor para inhibir el 50% del radical estable DPPH de EC<sub>50</sub> (0.1767 g/L), seguido de la fracci&oacute;n no polar (0.7238 g/L) y por &uacute;ltimo, la fracci&oacute;n polar (1.1776 g/L) (<a href="/img/revistas/rmm/v37/a3f1.jpg" target="_blank">Figura 1c</a>), encontrando diferencia significativa entre los extractos (P = 0.05). Lo que confirma la tendencia manifestada en la evaluaci&oacute;n de los compuestos bioactivos (fenoles y flavonoides totales).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Trabajos previos indican que los procedimientos y los disolventes de extracci&oacute;n afectan el contenido de fenoles y flavonoides en extractos de <i>Phellinus</i> spp. Los extractos metan&oacute;licos obtenidos de <i>P. gilvus, P. rimosus</i> y <i>P. badius</i> presentaron un contenido de fenoles totales de 49.30, 46.50 y 44.76 mgEAG/g, respectivamente, y flavonoides totales 30.58, 28.04 y 26.48 mgEQ/g, respectivamente; sin embargo, estos no fueron sometidos a hidr&oacute;lisis ni separaci&oacute;n de fases como en el presente estudio (Ayala&#45;Zavala <i>et al.,</i> 2012b). Comparando con un estudio similar donde se realizaron extractos metan&oacute;licos de <i>P. merrillii, P. fastuosus, P. grenadensis</i> y <i>P. badius</i> (Ayala&#45;Zavala <i>et al.,</i> 2012a), los cuales fueron hidrolizados y separados por polaridad en fracciones, se encontr&oacute; que el organismo con mayor contenido de fenoles y flavonoides fue <i>P. merrillii</i> (873.66 mgEAG/g y 291.71 mgEQ/g, respectivamente). Se observ&oacute; que las fracciones no polares presentaron el mayor contenido de dichos compuestos, incluso mayores a los resultados obtenidos en el presente estudio de la fracci&oacute;n no polar. Esta variaci&oacute;n se puede atribuir a los diferentes factores bi&oacute;ticos y abi&oacute;ticos que se involucran en el h&aacute;bitat de los hongos (Zhu <i>et al.,</i> 2011). Haciendo una comparaci&oacute;n entre el contenido de fenoles y flavonoides de las fracciones polar y no polar del trabajo previo con <i>P. merrillii</i> y el presente estudio, se observa que la separaci&oacute;n de fases puede causar una disminuci&oacute;n del contenido fen&oacute;lico en el extracto metan&oacute;lico. El proceso de extracci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos a partir de <i>Xerula</i> <i>furfuracea, Schizophyllum commune, Polyporus tenuiculus, Hygrocybe conica</i> y <i>Pleurotus florida,</i> present&oacute; un mayor rendimiento al utilizar metanol como disolvente que &eacute;ter de petr&oacute;leo (Wong y Chye, 2009). En ese mismo estudio los extractos de <i>H. conica</i> presentaron contenidos de fenoles totales de 42.21 y 28.23 mgEAG/g, usando metanol y &eacute;ter de petr&oacute;leo, respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estudios previos muestran una relaci&oacute;n directa entre el contenido de compuestos fen&oacute;licos y la capacidad antioxidante de extractos de <i>Phellinus</i> spp. Extractos metan&oacute;licos de <i>P. gilvus</i> presentaron un EC<sub>50</sub> de 9 g/L, seguido por los extractos de <i>P. rimosus</i> y <i>P. badius</i> con 10 y 13 g/L, respectivamente; siendo alto el EC<sub>50</sub> de <i>P. gilvus</i> comparado con los obtenidos en el presente estudio (Ayala&#45;Zavala <i>et al.,</i> 2012b). El extracto no polar de <i>P. badius</i> mostr&oacute; la concentraci&oacute;n m&aacute;s alta, seguido por su fracci&oacute;n polar, la fracci&oacute;n polar de <i>P. grenadensis,</i> polar de <i>P. merrilli,</i> polar de <i>P. fastuosus,</i> no polar de <i>P. grenadensis,</i> no polar de <i>P. fastuosus</i> y no polar de <i>P. merrillii</i> (6.00, 3.42, 2.22, 2.14, 1.89, 1.31, 0.88, 0.45 g/L, respectivamente) (Ayala&#45;Zavala <i>et</i> <i>al.,</i> 2012a). El extracto de &eacute;ter de petr&oacute;leo de la especie <i>P. florida</i> present&oacute; una EC<sub>50</sub> de 1.87 g/L (Wong y Chye, 2009), la cual es mayor al valor obtenido en este estudio para el extracto metan&oacute;lico de <i>P. merrillii.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El potencial antibacteriano de los extractos de <i>P. merrillii</i> se evalu&oacute; contra cepas Gram (+) <i>(L. monocytogenes</i> y <i>S. aureus)</i> y Gram (&#45;) <i>(S.</i> Choleraesuis y <i>E. coli</i> O157:H7). Se observaron diferencias (P = 0.05) entre extractos y concentraciones, la concentraci&oacute;n de 4.2 mg/mL de cada uno de los distintos extractos present&oacute; un 100% de inhibici&oacute;n contra todas las bacterias expuestas. No obstante, para la concentraci&oacute;n de 2.1 mg/mL se observaron diferentes porcentajes de inhibici&oacute;n seg&uacute;n la cepa evaluada; el extracto metan&oacute;lico fue el m&aacute;s efectivo contra <i>S. aureus, E. coli, L. monocytogenes</i> y <i>S.</i> Choleraesuis, con valores de 63.14, 61, 38 y 35 %, respectivamente. Los extractos polar y no polar presentaron la misma tendencia, contra <i>S. aureus</i> (53.86 y 42 %), seguido de <i>E. coli</i> (36 y 48 %) y <i>S.</i> Choleraesuis (35 y 38 %) y <i>L. monocytogenes</i> (22 y 25 %o), respectivamente. En este contexto se observa que el extracto metan&oacute;lico fue el m&aacute;s efectivo contra <i>S. aureus.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Extractos acuosos de <i>P. gilvus</i> fueron evaluados como antimicrobianos contra distintas cepas Gram positivas como <i>S. aureus, Staphylococcus epidermis, Bacillus subtillis, Lactobacillus plantarum,</i> y como Gran negativas <i>E. coli, Salmonella typhimurium y Klepsiella pneumonia,</i> presentando &uacute;nicamente inhibici&oacute;n contra las cepas de <i>L. plantarum, E. coli</i> y <i>K. pneumonia</i> con concentraciones m&iacute;nimas inhibitorias de 45, 360 y 90 mg/L, respectivamente (Sittiwet y Puangpronpitag, 2008), a diferencia de lo encontrado en nuestro estudio donde los extractos de <i>P. merrillii</i> presentaron actividad antibacteriana contra cepas gran positivas y gram negativas. En otro estudio se evaluaron extractos metan&oacute;licos de 22 plantas medicinales a las cuales se les determino la concetraci&oacute;n minima de inhibici&oacute;n (CMI) contra <i>E. coli, S. typhimurium, Salmonella typhi, Shigella</i> <i>sonnei</i> y <i>Helicobacter pylori</i> obteniendo CMIs hasta de 20 mg/mL (Sakunpak y Panichayupakaranant, 2012), mientras que en nuestro estudio se pudo observar que con una concentraci&oacute;n de 4.2 mg/mL no hubo crecimiento bacteriana. Con ello observamos el potencial de los extractos obtenidos en este trabajo comparado con la literatura en el cual se observa un alto contenido de compuestos fen&oacute;licos con actividad antibacteriana.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se correlacion&oacute; el contenido de fenoles, flavonoides y EC<sub>50</sub> contra la actividad antibacteriana de los extractos, resultando coeficentes de correlaci&oacute;n de person (r) de 0.89 (P=0.0013), 0.7457 (P=0.0211), 0.7087 (P=0.0015) y 0.8853 (P=0.0326), para la inhibici&oacute;n de <i>L. monocytogenes, S. aureus, S.</i> Choleraesuis y <i>E. coli</i> O157:H7, respectivamente. El contenido de flavonoides totales correlacion&oacute; con valores de R=0.8816 (P=0.0017), 0.7598 (P=0.0175), 0.6926 (P=0.0031) y 0.8584 (P=0.0387), para la inhibici&oacute;n de <i>L.</i> <i>monocytogenes, S. aureus, S.</i> Choleraesuis y <i>E. coli</i> O157:H7, respectivamente. De la misma manera la actividad antioxidante (EC<sub>50</sub>) se correlacion&oacute; con valores de R=0.8562 (P=0.0032), 0.4554 (P=0.2180), 0.989 (P=0.0001) y 0.8039 (P=0.0090), para la inhibici&oacute;n de <i>L. monocytogenes, S. aureus, S.</i> Choleraesuis y <i>E. coli</i> O157:H7, respectivamente. Las correlaciones obtenidas en este estudio representan favorablemente la relaci&oacute;n entre el contenido y la actividad antioxidante de los extractos de <i>P. merrillii</i> contra su actividad antibacteriana.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los extractos obtenidos del hongo basidiomiceto <i>P. merrillii</i> (extracto metan&oacute;lico, fracci&oacute;n polar y fracci&oacute;n no polar) presentaron un alto contenido de compuestos bioactivos como fenoles y flavonoides, siendo mayoritario para el extracto metan&oacute;lico, seguido por las fracciones. Esta tendencia se manifest&oacute; sobre la capacidad antioxidante y la capacidad antibacteriana contra cepas enteropat&oacute;genas. Por lo tanto, se propone el m&eacute;todo de extracci&oacute;n metan&oacute;lica como un m&eacute;todo eficaz en la generaci&oacute;n de extractos antioxidantes y antibacterianos a partir de <i>P. merrillii.</i></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura citada</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ayala&#45;Zavala, J.F., J.J. P&eacute;rez&#45;Carl&oacute;n, M. Esqueda, G.A. Gonzalez&#45;Aguilar, J.M. Leyva, M.R. Cruz&#45;Valenzuela, E. Moctezuma, 2012a. Polar fractionation affects the antioxidant properties of methanolic extracts from <i>Phellinus</i> spp. International Journal of Medicinal Mushrooms 14: 563&#45;573.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734031&pid=S0187-3180201300010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ayala&#45;Zavala, J.F., B.A. Silva&#45;Espinoza, M.R. Cruz&#45;Valenzuela, M.A. Villegas&#45;Ochoa, M. Esqueda, G.A. Gonzalez&#45;Aguilar, Y. Calderon&#45;Lopez, 2012b. Antioxidant and antifungal potential of methanol extracts of <i>Phellinus</i> spp. from Sonora, Mexico. Revista Iberoamericana de Micologia 29: 132&#45;138.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734033&pid=S0187-3180201300010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Balakumar, R., E. Sivaprakasam, D. Kavitha, S. Sridhar, J.S. Kumar, 2011. Antibacterial and antifungal activity of fruit bodies of <i>Phellinus</i> mushroom extract. International Journal of Biosciences 1: 72&#45;77.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734035&pid=S0187-3180201300010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gilbertson, R., L. Ryvarden, 1986. 1987: North American polypores 1&#45;2. Fungiflora, Oslo.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734037&pid=S0187-3180201300010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez&#45;Aguilar, G.A., M.A. Villegas&#45;Ochoa, M. Mart&iacute;nez&#45;T&eacute;llez, A. Gardea, J.F. Ayala&#45;Zavala, 2007. Improving antioxidant capacity of fresh cut mangoes treated with UV C. Journal of Food Science 72: 197&#45;202.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734039&pid=S0187-3180201300010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hammond, G., P. Bates, A. Vaiserg, L. Liu, B. Xu, 2010. Synthesis of stable Organogold compounds and methods of use therereof, WO Patent 2,010,062,846.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734041&pid=S0187-3180201300010000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jung, J.Y., I.K. Lee, S.J. Seok, H.J. Lee, Y.H. Kim, B.S. Yun, 2008. Antioxidant polyphenols from the mycelial culture of the medicinal fungi <i>Inonotus xeranticus</i> and <i>Phellinus linteus.</i> Journal of Applied Microbiology 104: 1824&#45;1832.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734043&pid=S0187-3180201300010000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kim, S.U., E.I. Hwang, J.R. Kim, T.S. Jeong, S.H. Lee, J.S. Moon, M.C. Rho, 2010. Pharmaceutical composition and health food comprising extract of<i> Phellinus</i> sp. PL3 or phellinsin A isolated from the same as an effective component for prevention and treatment of cardiovascular disease, Google Patents.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734045&pid=S0187-3180201300010000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kristiansen, B., 2006. Immune modulation conpounds from fungi. WO Patent 2,006,007,848.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734047&pid=S0187-3180201300010000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mau, J.L., H.C. Lin, C.C. Chen, 2002. Antioxidant properties of several medicinal mushrooms. Journal of Agricultural and Food Chemistry 50: 6072&#45;6077.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734049&pid=S0187-3180201300010000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Maloney, J., K. Barger, 2010. Acne treatment powder foundation. WO Patent 2,010,077,971.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734051&pid=S0187-3180201300010000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Muszy&ntilde;ska B, K. Sulkowska&#45;Ziaja, H. Ekiert, 2011 Indole compounds in fruiting bodies of some edible Basidiomycota species. Food Chemistry 125:1306&#45;8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734053&pid=S0187-3180201300010000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Oboh, G.J., B.T. Rocha, 2007. Distribution and antioxidant activity of polyphenols in ripe and Unripe tree pepper <i>(Capsicum pubescens).</i> Journal of Food Biochemistry 31: 456&#45;473.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734055&pid=S0187-3180201300010000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pokorny, J., J. Korczak, 2001. Preparation of natural antioxidants, Woodhead Publishing Ltd.: Cambridge, England: 311&#45;327.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734057&pid=S0187-3180201300010000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodriguez&#45;Vaquero, M.J., L.R. Tomassini&#45;Serravalle, M.C. Manca de Nadra, A.M. Strasser de Saad, 2010. Antioxidant capacity and antibacterial activity of phenolic compounds from argentinean herbs infusions. Food Control 21: 779&#45; 785.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734059&pid=S0187-3180201300010000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sakunpak A., P. Panichayupakaranant, 2012. Antibacterial activity of Thai edible plants against gastrointestinal pathogenic bacteria and isolation of a new broad spectrum antibacterial polysoprenylated benzophenone, chamuangone. Food Chemistry 130: 826&#45;831.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734061&pid=S0187-3180201300010000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sittiwet, C., D. Puangpronpitag, 2008. Antibacterial activity of <i>Phellinus gilvus</i> aqueosus extract. International Journal of Pharmacology 4: 500&#45;502.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734063&pid=S0187-3180201300010000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Singleton, V.J., J.A. Rossi, 1965. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic&#45;phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture 16: 144&#45;158.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734065&pid=S0187-3180201300010000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wong, J.Y., F.Y. Chye, 2009. Antioxidant properties of selected tropical wild edible mushrooms. Journal of Food Composition and Analysis 22: 269&#45;277.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734067&pid=S0187-3180201300010000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yang, L., J.G. Jiang, W.F. Li, J. Chen, D.Y. Wang, L. Zhu, 2009. Optimum extraction process of polyphenols from the bark of <i>Phyllanthus</i> <i>emblica</i> L. based on the response surface methodology. Journal of Separation Science 32: 1437&#45;1444.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734069&pid=S0187-3180201300010000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yao, L.H., Y.M. Jiang, N. Caffin, B. D'Arcy, N. Datta, X. Liu, R. Singanusong, Y. Xu, 2006. Phenolic compounds in tea from Australian supermarkets. Food Chemistry 96: 614&#45;620.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734071&pid=S0187-3180201300010000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yilmaz, Y., R.T. Toledo, 2006. Oxygen radical absorbance capacities of grape/wine industry byproducts and effect of solvent type on extraction of grape seed polyphenols. Journal of Food Composition and Analysis 19: 41&#45;48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734073&pid=S0187-3180201300010000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zambuchini, B., D. Fiorini, M.C. Verdenelli, C. Orpianesi, R. Ballini, 2008. Inhibition of microbiological activity during sole <i>(Solea solea</i> L.) chilled storage by applying ellagic and ascorbic acids. LWT &#45;Food Science and Technology 41: 1733&#45;1738.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734075&pid=S0187-3180201300010000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zhishen, J., T. Mengcheng, W. Jianming, 1999. The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals. Food Chemistry 64: 555&#45;559.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734077&pid=S0187-3180201300010000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zhou, K.Q., L.L. Yu, 2004. Effects of extraction solvent on wheat bran antioxidant activity estimation. LWT&#45;Food Science and Technology 37: 717&#45;721.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734079&pid=S0187-3180201300010000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zhu, H., S. Sun, S. Zhang, 2011. Enhanced production of total flavones and exopolysaccharides via Vitreoscilla hemoglobin biosynthesis in <i>Phellinus igniarius.</i> Bioresource Technology 102: 1747&#45;1751.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8734081&pid=S0187-3180201300010000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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