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<institution><![CDATA[,Unidad Sureste del Centro de Investigación y Asistencia en Tecnología y Diseño del Estado de Jalisco  ]]></institution>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ENFERMEDADES    EMERGENTES</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="4"><b>Enfermedades    transmitidas por alimentos y PCR: prevenci&oacute;n y diagn&oacute;stico</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Mtra. Tania    Gonz&aacute;lez Flores; Dr.Rafael Antonio Rojas Herrera</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Unidad Sureste    del Centro de Investigaci&oacute;n y Asistencia en Tecnolog&iacute;a y Dise&ntilde;o    del Estado de Jalisco, A. C. Guadalajara, Jalisco, M&eacute;xico</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las enfermedades    transmitidas por los alimentos (ETA) se producen por la ingesti&oacute;n de    alimentos y/o bebidas contaminados con microorganismos pat&oacute;genos que    afectan la salud del consumidor en forma individual o colectiva. Sus s&iacute;ntomas    m&aacute;s comunes son diarreas y v&oacute;mitos, pero tambi&eacute;n se pueden    presentar otros como choque s&eacute;ptico, hepatitis, cefaleas, fiebre, visi&oacute;n    doble, etc&eacute;tera.<sup>1</sup></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Hasta la fecha se han descrito m&aacute;s de 250 ETA. La mayor&iacute;a son infecciones ocasionadas por distintas bacterias, virus y par&aacute;sitos. Entre las bacterias com&uacute;nmente reconocidas como causantes de ETA se encuentran especies de los g&eacute;neros <i>Campylobacter</i> y <i>Salmonella</i>, as&iacute; como la cepa O157:H7 de la enterobacteria <i>Escherichia coli</i>. A largo plazo, algunas de estas enfermedades pueden conducir a otros padecimientos; por ejemplo, es posible que una infecci&oacute;n con la cepa O157:H7 de <i>E. coli</i> provoque el s&iacute;ndrome hemol&iacute;tico ur&eacute;mico (SHU) con secuelas de insuficiencia renal cr&oacute;nica.<sup>1</sup></font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las ETA constituyen un importante problema de salud p&uacute;blica debido al incremento en su ocurrencia, el surgimiento de nuevas formas de transmisi&oacute;n, la aparici&oacute;n de grupos poblacionales vulnerables, el aumento de la resistencia de los pat&oacute;genos a los compuestos antimicrobianos y el impacto socioecon&oacute;mico que ocasionan. La incidencia de estas enfermedades es un indicador directo de la calidad higi&eacute;nico-sanitaria de los alimentos, y se ha demostrado que la contaminaci&oacute;n de &eacute;stos puede ocurrir durante su procesamiento<sup>2-4</sup> o por el empleo de materia prima contaminada,<sup>5,6</sup> pues algunas bacterias pat&oacute;genas para el hombre forman parte de la flora normal de aves, cerdos y ganado.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El control de los microorganismos causantes de ETA, por parte tanto de las autoridades sanitarias como de las plantas procesadoras de alimentos, depende en cierta medida del m&eacute;todo anal&iacute;tico que se utiliza para su detecci&oacute;n.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La detecci&oacute;n y la investigaci&oacute;n de los brotes de ETA constituye uno de los principales retos para el Sistema de Salud P&uacute;blica, pues requiere obtener, de manera oportuna y eficaz, informaci&oacute;n m&eacute;dica (datos personales, s&iacute;ntomas, etc.) y an&aacute;lisis de laboratorio de los restos de alimentos o de las materias primas empleadas en su elaboraci&oacute;n e, incluso, de las manos de las personas involucradas en la manipulaci&oacute;n del alimento.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Tradicionalmente, las infecciones se diagnostican mediante el cultivo de muestras de alimentos que se suponen contaminados y la identificaci&oacute;n de las bacterias que crecen en los medios de cultivo, con base en criterios morfol&oacute;gicos y fisiol&oacute;gicos que quiz&aacute; dependan de factores ambientales o gen&eacute;ticos.<sup>7</sup> Por otro lado, se ha demostrado que algunas c&eacute;lulas bacterianas pueden entrar en un estado viable pero no cultivable (VPNC), debido al procesamiento al que se sujeta el alimento, lo que imposibilita el uso de los m&eacute;todos de cultivo como herramienta de diagn&oacute;stico. Adem&aacute;s, la obtenci&oacute;n de resultados puede tomar d&iacute;as<sup>8,9</sup> o semanas;<sup>10,11</sup> por ejemplo, los m&eacute;todos convencionales para la detecci&oacute;n de Salmonella requieren de 3 a 4 d&iacute;as para indicar resultados negativos y m&aacute;s de siete para confirmar un resultado positivo.<sup>12</sup></font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Un alto porcentaje de los casos de ETA no puede asociarse con alg&uacute;n alimento en particular o no es factible identificar al pat&oacute;geno responsable, debido, fundamentalmente, a que los resultados de los an&aacute;lisis bacteriol&oacute;gicos demoran; asimismo, el veh&iacute;culo alimentario implicado ya no se encuentra disponible para su an&aacute;lisis, lo que sugiere la necesidad de establecer m&eacute;todos r&aacute;pidos y eficientes de detecci&oacute;n del agente causal.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Recientemente, se han desarrollado varios procedimientos alternativos para la tipificaci&oacute;n y la identificaci&oacute;n de bacterias. Uno de ellos es la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR), que consiste en la amplificaci&oacute;n selectiva de una secuencia blanco flanqueada por secuencias cortas de polinucle&oacute;tidos (usualmente de entre 10 y 30 nucle&oacute;tidos) llamadas iniciadores o cebadores.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El &eacute;xito en la implementaci&oacute;n de la PCR para la identificaci&oacute;n de microorganismos causantes de ETA depende, entre otros factores, de la elecci&oacute;n correcta de la secuencia blanco, la cual debe permitir la identificaci&oacute;n del microorganismo de inter&eacute;s, independientemente de la presencia de otras fuentes de ADN procedente de microorganismos concomitantes o de la muestra misma.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las regiones gen&oacute;micas m&aacute;s com&uacute;nmente empleadas en el dise&ntilde;o de cebadores para la identificaci&oacute;n de microorganismos pat&oacute;genos son las relacionadas con los genes que codifican para toxinas y prote&iacute;nas antig&eacute;nicas espec&iacute;ficas. En la detecci&oacute;n y el diagn&oacute;stico de <i>E. coli</i>, por ejemplo, las secuencias blanco por excelencia han sido los genes que codifican para las dos variantes de la toxina Shiga, STX1 y STX2,<sup>13,14</sup> aunque tambi&eacute;n se han utilizado genes que codifican para prote&iacute;nas de virulencia accesorias como el eaeA (intimina) y el hlyA (hemolisina).<sup>13-18</sup></font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En la pr&aacute;ctica, cuando se aplican las t&eacute;cnicas de PCR al an&aacute;lisis de &aacute;cidos nucleicos en matrices complejas como los alimentos, la eficiencia de la amplificaci&oacute;n puede reducirse significativamente por la presencia de sustancias inhibidoras como la hemoglobina, la lactoferrina, los polisac&aacute;ridos, las grasas o las prote&iacute;nas.<sup>9,19</sup> La repercusi&oacute;n de estos compuestos en la obtenci&oacute;n de resultados falso-negativos puede eliminarse empleando pasos de preenriquecimiento o polimerasas apropiadas, as&iacute; como membranas selectivas.<sup>20,21</sup></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La detecci&oacute;n y la identificaci&oacute;n de los pat&oacute;genos implicados en las ETA es una parte fundamental de la vigilancia epidemiol&oacute;gica, por lo que es necesario estandarizar las t&eacute;cnicas a fin de implementar la vigilancia y el control de dichos microorganismos y prevenir las enfermedades que producen.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Durante la &uacute;ltima d&eacute;cada se han reportado numerosos ensayos de PCR para la detecci&oacute;n de microorganismos pat&oacute;genos en matrices alimenticias, pero ninguno ha sido validado por laboratorios diferentes para su uso cotidiano, lo que dificulta la reproducibilidad de los resultados entre distintos grupos de trabajo.<sup>22-24</sup></font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Recientemente, se desarroll&oacute; en varios laboratorios europeos el proyecto denominado Food-PCR, cuyo objetivo es la validaci&oacute;n y estandarizaci&oacute;n de las metodolog&iacute;as de PCR para la detecci&oacute;n y el control de los pat&oacute;genos <i>Campylobacter spp.</i> termof&iacute;lico, <i>E. coli</i> O157, <i>Yersinia enterocol&iacute;tica</i>, <i>Listeria monocytogenes</i> y <i>Salmonella spp</i>. en alimentos.<sup>22</sup> Estos estudios proponen pruebas simples y espec&iacute;ficas para la detecci&oacute;n de pat&oacute;genos, y los resultados obtenidos pueden facilitar la comparaci&oacute;n y el intercambio internacional de datos epidemiol&oacute;gicos, as&iacute; como favorecer la implementaci&oacute;n de estas metodolog&iacute;as en otros laboratorios.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La detecci&oacute;n    y la prevenci&oacute;n de ETA depende del esfuerzo conjunto de las autoridades    normativas, sanitarias, industriales y educativas, cuyas investigaciones objetivas    y detalladas conlleven a una disminuci&oacute;n en los riesgos de contaminaci&oacute;n    de los alimentos. Para garantizar a los consumidores un alimento seguro e higi&eacute;nico,    es necesario el control de los microorganismos pat&oacute;genos en todas las    etapas de la producci&oacute;n, lo que implica disponer de m&eacute;todos de    diagn&oacute;stico que no s&oacute;lo sean r&aacute;pidos y sensibles, sino,    sobre todo, altamente espec&iacute;ficos. Los m&eacute;todos cl&aacute;sicos    de diagn&oacute;stico bacteriol&oacute;gico son laboriosos, requieren tiempo    y no es posible identificar todas las cepas aisladas, por lo cual la informaci&oacute;n    que brindan es limitada y dificulta la toma de decisiones. El desarrollo y la    automatizaci&oacute;n de los m&eacute;todos de PCR abren una gran oportunidad    para su aplicaci&oacute;n como herramientas anal&iacute;ticas en microbiolog&iacute;a    y control de calidad de los alimentos, debido a su rapidez, alta sensibilidad    y eficiencia para la detecci&oacute;n temprana de los pat&oacute;genos. De ese    modo, contribuir&aacute;n notablemente a la prevenci&oacute;n tanto de ETA como    de sus consecuencias.</font></p>     <p>&nbsp;</p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>Referencias</b></font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1. Rosas GA, Acosta VM. Manual de manejo higi&eacute;nico de los alimentos. Mexico, D.F.: Secretar&iacute;a de Salud, 2001.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2. Autio T, Hielm S, Miettinen M, J&ouml;berg A-M, Aarnisalo K, Bj&ouml;rkroth J <i>et al</i>. Sources of Listeria monocytogenes contamination in a cold-smoked rainbow trout processing plant detected by pulsed-field gel electrophoresis typing. Appl Environ Microbiol 1999;65:150-155.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">3. Hyyti&auml; E, Hielm S, Bj&ouml;rkroth J, Korkeala H. Biodiversity of <i>Clostridium botulinum</i> type E strains isolated from fish and fishery products. Appl Environ Microbiol 1999;65:2057-2064.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">4. Millemann Y, Gaubert S, Remy D, Colmin C. Evaluation of IS200-PCR and comparison with other molecular markers to trace Salmonella enterica subsp. enterica serotype yphimurium bovine isolates from farm meat. J Clin Microbiol 2000;38:2204-2209.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">5. Hielm S, Bj&ouml;rkroth J, Hyyti&auml; E, Korkeala H. Prevalence of <i>Clostridium botulinum</i> in finnish trout farms: Pulsed-field gel electrophoresis typing reveals extensive genetic diversity among type E isolates. Appl Environ Microbiol 1998;64:4161-4167.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">6. Fach P, Perelle S, Dilasser F, Grout J, Dargaignaratz C, Botella L <i>et al</i>. Detection by PCR-enzyme-linked immunosorbent assay of <i>Clostridium botulinum</i> in fish and environmental samples from a coastal area in northern France. Appl Environ Microbiol 2002;68:5870-5876.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">7. Scheu P, Berghof K, Stahl U. Detection of pathogenic and spoilage micro-organisms in food with the polymerase chain reaction. Food Microbiol 1998;15:13-31.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">8. Herman L, De Block J, Waes G. A direct PCR detection method for <i>Clostridium tyrobutyricum</i> spores in up to 100 mililiters of raw milk. Appl Environ Microbiol 1995;61:4141-4146.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">9. Gentry-Weeks C, Hutcheson H, Kim L, Bolte D, Traub-Dargatz J, Morley P <i>et al</i>. Identification of two phylogenetically related organisms from feces by PCR for detection of Salmonella spp. J Clin Microbiol 2002;40:1487-1492.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">10. Coetsier C, Vannuffel P, Blondeel N, Denef J, Cocito C, Gala J. Duplex PCR for differential identification of <i>Mycobacterium bovis</i>, <i>M. avium</i>, and <i>M. avium</i> subsp. paratuberculosis in formalin-fixed paraffin-embedded tissues from cattle. J Clin Microbiol 2000;38:3048-3054.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">11. Bannantine J, Baechler E, Zhang Q, Li L, Kapur V. Genome scale comparison of <i>Mycobacterium avium</i> subsp. paratuberculosis with <i>Mycobacterium avium</i> subsp. avium reveals potential diagnostic sequences. J Clin Microbiol 2002;40:1303-1310.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">12. Bhagwat A. Rapid detection of Salmonella from vegetable rinse-water using real-time PCR. Food Microbiol 2004;21:73-78.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">13. Reischl U, Youssef M, Kilwinski J, Lehn N, Zhang W, Karch H <i>et al</i>. Real-time fluorescence PCR assays for detection and characterization of shiga toxin, intimin, and enterohemolysin genes from shiga toxin-producing <i>Escherichia coli</i>. J Clin Microbiol 2002;40:2555-2565.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">14. Wang G, Clark C, Rodgers F. Detection in <i>Escherichia coli</i> of the genes encoding the major virulence factors, the genes defining the O157:H7 serotype, and components of the type 2 Shiga toxin family by multiplex PCR. J Clin Microbiol 2002;40:3613-3619.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">15. Fagan P, Hornitzky M, Bettelheim K, Djordjevic S. Detection of Shiga-like toxin (stx1 and stx2), intimin (eaeA), and enterohemorrhagic <i>Escherichia coli</i> (EHEC) hemolysin (EHEC hlyA) genes in animal feces by multiplex PCR. Appl Environ Microbiol 1999;65:868-872.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">16. Paton A, Paton J. Detection and characterization of Shiga toxigenic <i>Escherichia coli</i> by using multiplex PCR assays for stx1, stx2, eaeA, enterohemorragic <i>E. coli</i> hlyA, rfbO111 and rfbO157. J Clin Microbiol 1998;36:598-602.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">17. Franck S, Bosworth B, Moon H. Multiplex PCR for enterotoxigenic, attaching and effacing, and Shiga toxin-producing Escherichia coli strains from calves. J Clin Microbiol 1998;36:1795-1797.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">18. Normanno G, Dambrosio P, Quaglia N, Montagna D, Chiocco D, Celano G. Typing of <i>Escherichia coli</i> O157 strains isolated from fresh sausage. Food Microbiol 2004;21:79-82.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">19. Fach P, Popoff M. Detection of enterotoxigenic <i>Clostridium perfrigens</i> in food and fecal samples with a duplex PCR and the slide latex agglutination test. Appl Environ Microbiol 1997;63:4232-4236.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">20. Lampel K, Orlandi P, Kornegay L. Improved template preparation for PCR-based assays for detection of food-borne bacterial pathogens. Appl Environ Microbiol 2000;66:4539-4542.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">21. Wilson I. Inhibition and facilitation of nucleic acid amplification. Appl Environ Microbiol 1997;63:3741-3751.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">22. Malorny B, Hoorfar J, Bunge C, Helmuth R. Multicenter validation of the analytical accuracy of Salmonella PCR: Towards an international standard. Appl Environ Microbiol 2003;69:290-296.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">23. Lubeck P, Wolffs P, On S, Ahrens P, Radstrom P, Hoorfar J. Toward an international standard for PCR-based detection of food-borne thermotolerant campylobacters: Assay development and analytical validation. Appl Environ Microbiol 2003;69:5664-5669.</font></p>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">24. Lubeck PS, Cook N, Wagner M, Fach P, Hoorfar J. Toward an international standard for PCR-based detection of food-borne thermotolerant campylobacters: Validation in a multicenter collaborative trial. Appl Environ Microbiol 2003;69:5670-5672.</font></p>     ]]></body>
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