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<journal-title><![CDATA[Revista mexicana de ciencias agrícolas]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de tratamientos pre germinativos e inoculación microbiana en cacahuate (Arachis hypogaea L.)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Peanut crop (Arachis hypogaea L.) is widely used by farmers for their profitability and improvement of the physical and chemical soil traits has a prolonged seed dormancy, which runs up to six months. In other plant species, seed dormancy has been treated with inducers of germination, such as gibberellic acid (AG3), indoleacetic acid and Naproxen (NPX). Another technical issue in the peanut crop is the slow growth ofthe early stages ofthe plants. This would increase with the use of bacterial strains to growth promoters. The aim of this study was to evaluate the effect of AG3 and NPX as inducers of germination, and strains of Bacillus spp. as promoting plant growth. Germination and two times two concentrations immersion in AG3 and NPX were used, while three strains of Bacillus spp were used as inoculants to enhance growth (CBTC1, CBCC57 and CBRF12). Germination increased with the treatment of 10 mg mL-1 of AG3; meanwhile, the relative growth rate in height of the plants was significantly increased at 15 days after sowing, when inoculated with the strain of Bacillus spp CBRF12. We also found a significantly larger increase in root dry biomass at 30 days after planting, with the CBTC1 strain. In conclusion, the percentage of germination of A. hypogaeae increased with the addition of AG3. Also, the growth of the plant increased, albeit slightly, and other significantly only in some variables, by inoculating the strains of Bacillus spp. The results of this study show AG3 capacity to break seed dormancy on peanuts; as well as the advantages of using growth promoting bacteria in the increase of height and root biomass of this plant species. This could be helpful in peanut production by reducing latency and accelerate growth.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Efecto de tratamientos pre germinativos e inoculaci&oacute;n microbiana en cacahuate (<i>Arachis hypogaea</i> L.)*</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Effect of pre&#45;germinate treatments and microbial inoculation in peanut (<i>Arachis hypogaea</i> L.)</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Esa&uacute; Ruiz&#45;S&aacute;nchez<sup>1</sup>, Mart&iacute;n Canul&#45;D&iacute;az<sup>1</sup>, Jesse Pacheco&#45;Aguirre<sup>1</sup>, Alfonzo P&eacute;rez&#45;Guti&eacute;rrez<sup>1</sup>, Arturo Reyes&#45;Ram&iacute;rez<sup>1</sup> y Horacio S. Ballina&#45;G&oacute;mez<sup>1&sect;</sup></b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Instituto Tecnol&oacute;gico de Conkal&#45;Departamento de Fitopatolog&iacute;a. Antigua Carretera M&eacute;rida&#45;Motul, km 16.3, Conkal, Yucat&aacute;n, M&eacute;xico. C. P. 97345. Tel: 01 52 999 912 4135.</i> (<a href="mailto:esau_ruiz@hotmail.com">esau_ruiz@hotmail.com</a>; <a href="mailto:mecd388@hotmail.com">mecd388@hotmail.com</a>; <a href="mailto:jessep2010@gmail.com">jessep2010@gmail.com</a>; <a href="mailto:riegoeficiente@hotmail.com">riegoeficiente@hotmail.com</a>; <a href="mailto:arte_rey@hotmail.com">arte_rey@hotmail.com</a>). &sect;Autor para correspondencia: <a href="mailto:horacio.ballina@itconkal.edu.mx">horacio.ballina@itconkal.edu.mx</a>.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">* Recibido: enero de 2015    <br> 	Aceptado: abril de 2015</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El cultivo de cacahuate (<i>Arachis hypogaea</i> L.), ampliamente utilizado porlos agricultores por su rentabilidad y mejoramiento de las propiedades f&iacute;sicas y qu&iacute;micas ed&aacute;ficas, presenta una prolongada latencia de semillas, que va hasta seis meses. En otras especies vegetales la latencia de semillas se ha tratado con inductores de germinaci&oacute;n como el &aacute;cido giber&eacute;lico (AG<sub>3</sub>), el &aacute;cido indolac&eacute;tico y naproxeno (NPX). Otro problema t&eacute;cnico en el cultivo de cacahuate es el crecimiento lento de las primeras etapas de las plantas. Lo anterior podr&iacute;a incrementar con el uso de cepas bacterianas promotoras de crecimiento. El objetivo del presente trabajo fue evaluar el efecto del AG<sub>3</sub> y NPX como inductores de germinaci&oacute;n, y cepas de <i>Bacillus</i> spp. como promotoras de crecimiento vegetal. En la germinaci&oacute;n se usaron dos concentraciones y dos tiempos de inmersi&oacute;n en AG<sub>3</sub> y NPX, mientras que para mejorar crecimiento se usaron tres cepas de <i>Bacillus</i> spp. (CBTC1, CBCC57 y CBRF12) como inoculantes. La germinaci&oacute;n increment&oacute; con el tratamiento de 10 mg mL<sup>&#45;1</sup> de AG<sub>3</sub>; en tanto, la tasa relativa de crecimiento en altura de las plantas aument&oacute; significativamente a los 15 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra, cuando se inocularon con la cepa CBRF12 de <i>Bacillus</i> spp. Asimismo, se encontr&oacute; un mayor crecimiento significativo de la biomasa seca de la ra&iacute;z a los 30 d&iacute;as luego de la siembra, con la cepa CBTC1. En conclusi&oacute;n, el porcentaje de germinaci&oacute;n de <i>A. hypogaeae</i> increment&oacute; con la adici&oacute;n de AG<sub>3</sub>. Por su parte, el crecimiento de la planta aument&oacute;, aunque ligeramente, s&iacute; de forma significativa y s&oacute;lo en algunas variables, por la inoculaci&oacute;n de las cepas de <i>Bacillus</i> spp. Los resultados del presente estudio muestran la capacidad del AG para romper la latencia de semillas de cacahuate; as&iacute; como las ventajas de usar bacterias promotoras de crecimiento, en el incremento de la altura y la biomasa de ra&iacute;ces de esta especie vegetal. Esto podr&iacute;a ser de gran ayuda en la producci&oacute;n de cacahuate, al disminuir el tiempo de latencia y acelerar el crecimiento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Bacillus</i> spp., &aacute;cido giber&eacute;lico, crecimiento vegetal, latencia, naproxeno.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Peanut crop (<i>Arachis hypogaea</i> L.) is widely used by farmers for their profitability and improvement of the physical and chemical soil traits has a prolonged seed dormancy, which runs up to six months. In other plant species, seed dormancy has been treated with inducers of germination, such as gibberellic acid (AG<sub>3</sub>), indoleacetic acid and Naproxen (NPX). Another technical issue in the peanut crop is the slow growth ofthe early stages ofthe plants. This would increase with the use of bacterial strains to growth promoters. The aim of this study was to evaluate the effect of AG<sub>3</sub> and NPX as inducers of germination, and strains of <i>Bacillus</i> spp. as promoting plant growth. Germination and two times two concentrations immersion in AG<sub>3</sub> and NPX were used, while three strains of <i>Bacillus</i> spp were used as inoculants to enhance growth (CBTC1, CBCC57 and CBRF12). Germination increased with the treatment of 10 mg mL<sup>&#45;1</sup> of AG<sub>3</sub>; meanwhile, the relative growth rate in height of the plants was significantly increased at 15 days after sowing, when inoculated with the strain of <i>Bacillus</i> spp CBRF12. We also found a significantly larger increase in root dry biomass at 30 days after planting, with the CBTC1 strain. In conclusion, the percentage of germination of <i>A. hypogaeae</i> increased with the addition of AG<sub>3</sub>. Also, the growth of the plant increased, albeit slightly, and other significantly only in some variables, by inoculating the strains of <i>Bacillus</i> spp. The results of this study show AG<sub>3</sub> capacity to break seed dormancy on peanuts; as well as the advantages of using growth promoting bacteria in the increase of height and root biomass of this plant species. This could be helpful in peanut production by reducing latency and accelerate growth.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> <i>Bacillus</i> spp, gibberellic acid, latency, naproxen, plant growth.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El cultivo de cacahuate (<i>Arachis hypogaea</i> L.) se utiliza ampliamente por los agricultores debido a su rentabilidad, que puede tener una relaci&oacute;n beneficio/costo hasta de 1.7 dependiendo de la productividad de la variedad (Duque, 2013), y potencial para mejorar las propiedades f&iacute;sicas y qu&iacute;micas del suelo (Ossom y Rhykerd, 2008). A nivel internacional el cacahuate es el tercer producto oleaginoso producido, despu&eacute;s de la soya y el algod&oacute;n (Financiera Rural, 2011). Los frutos de cacahuate, junto con soya, algod&oacute;n, canola y girasol, tienen alto contenido de aceite (aproximadamente 50%) y prote&iacute;nas (22&#45;30%), tambi&eacute;n contiene hidratos de carbono, minerales y vitaminas (Ingale y Shrivastava, 2011). Debido a estas caracter&iacute;sticas, los frutos de <i>A. hypogaea</i> integra la dieta diaria en algunas regiones de &Aacute;frica y Asia, donde la situaci&oacute;n alimentaria es precaria (Kambiranda<i> et al.,</i> 2011). En M&eacute;xico, a pesar de las bondades del cultivo, la superficie sembrada disminuy&oacute; en casi 40% en la &uacute;ltima d&eacute;cada, en la actualidad la superficie cultivada con esta oleaginosa es de aproximadamente de 60 000 hect&aacute;reas, con una producci&oacute;n de 2.8 y 1.3 toneladas por hect&aacute;rea, en riego y temporal, respectivamente (Financiera Rural, 2011).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La semilla de <i>A. hypogaea</i> reci&eacute;n cosechada, fisiol&oacute;gicamente madura y viable, no germina cuando se coloca en condiciones &oacute;ptimas de luz, temperatura, ox&iacute;geno y contenido de humedad (Qin<i> et al.,</i> 2012). Este fen&oacute;meno se presenta en muchas especies oleaginosas, en las cuales la intensidad y duraci&oacute;n del reposo depende del cultivar as&iacute; como de las condiciones de cultivo y de almacenamiento. Se ha determinado que las semillas de <i>A. hypogaea</i> no germinan inmediatamente despu&eacute;s de ser cosechadas, sino hasta 4&#45;6 meses posteriores (Navarro <i>et al.,</i> 2012).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el fin de acortar el periodo de reposo de <i>A. hypogaea,</i> se han probado diferentes tratamientos, por ejemplo, G&oacute;mez <i>et al.</i> (2001) encontr&oacute; que el uso de temperaturas altas, cercanas a 40&deg;C estimula significativamente la germinaci&oacute;n. Por otra parte, dentro de los tratamientos qu&iacute;micos, el uso de etileno ha demostrado ser eficiente para promover la germinaci&oacute;n; este compuesto, a concentraciones de 8 g L<sup>&#45;1</sup>, por periodos de 48 horas, produce resultados similares a los obtenidos por tratamientos con calor (Lin <i>et al.,</i> 2009; Nawangsih <i>et al.,</i> 2012).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Otro regulador que podr&iacute;a actuar de manera indirecta sobre la germinaci&oacute;n en semillas es el naproxeno (NPX), ya que es considerado un inhibidor de la bios&iacute;ntesis del &aacute;cido absc&iacute;sico (ABA), la cual es una hormona vegetal, involucrada en diferentes procesos fisiol&oacute;gicos del crecimiento y desarrollo de la planta, como la dormancia en las semillas (Cass&aacute;n <i>et al.,</i> 2008). Se ha reportado que el tratamiento de semillas con NPX disminuye significativamente los niveles de ABA end&oacute;geno y el gen de transcripci&oacute;n AhNCED1 en la germinaci&oacute;n de la semilla, proporcionando un aumento en la actividad de la &#945;&#45;amylasa, cuyo efecto se traduce en incremento de la tasa de germinaci&oacute;n e &iacute;ndice de viabilidad en la germinaci&oacute;n (Hu<i> et al.,</i> 2010).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otra parte, el crecimiento inicial de la planta constituye una fase importante en el desarrollo del cultivo, ya que mediante el r&aacute;pido establecimiento de elevado n&uacute;mero de tallos primarios, generaci&oacute;n y expansi&oacute;n del sistema foliar e incremento en expansi&oacute;n radicular, las plantas incrementan su capacidad competitiva y de absorci&oacute;n de nutrientes del suelo (Mohammadi, 2013). En este sentido, una alternativa para promover el crecimiento inicial es la aplicaci&oacute;n de microorganismos promotores de crecimiento vegetal, los cuales pueden actuar por diferentes v&iacute;as, como fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico, producci&oacute;n de fitohormonas, y solubilizaci&oacute;n de elementos minerales (Guti&eacute;rrez<i> et al.,</i> 2001). Estos microrganismos pueden ser explotados como una estrategia sustentable para incrementar la productividad de <i>A. hypogaea</i> (Mu&ntilde;oz <i>et</i> <i>al.,</i> 2011).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este trabajo fue evaluar el efecto del &aacute;cido giber&eacute;lico y naproxeno como inductores de germinaci&oacute;n, y el efecto posterior de <i>Bacillus</i> spp. como promotor de crecimiento en plantas de <i>Arachis hypogaea</i> L.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Ubicaci&oacute;n del experimento</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El tratamiento de semillas y la preparaci&oacute;n de in&oacute;culos bacterianos se llevaron a cabo en el Laboratorio de Microbiolog&iacute;a del Instituto Tecnol&oacute;gico de Conkal, Yucat&aacute;n, M&eacute;xico. El experimento de evaluaci&oacute;n de inoculantes microbianos y germinaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo en la ciudad de Hunucm&aacute;, Yucat&aacute;n, M&eacute;xico, ubicada a 21&deg; 10' 0" latitud norte y 90&deg; 2' 0" longitud oeste. Hunucma presenta un clima c&aacute;lido semih&uacute;medo con lluvias en verano, una temperatura media anual de 26 &deg;C y una precipitaci&oacute;n media anual que va de 400 a 1 200 mm (INEGI, 2010).</font></p>      <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Obtenci&oacute;n de las semillas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las semillas de <i>A. hypogaea</i> de origen criollo, se obtuvieron en el municipio El Parral, Chiapas, M&eacute;xico. Presenta las siguientes: arbusto que produce dos almendras por vaina y el tiempo de emergencia a cosecha es de 110&#45;120 d&iacute;as. Las semillas usadas en los experimentos pre germinativos no tuvieron m&aacute;s de 30 d&iacute;as despu&eacute;s de la cosecha y las usadas para la evaluaci&oacute;n de inoculantes microbianos no m&aacute;s de 12 meses.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aplicaci&oacute;n de tratamientos pre germinativos en cacahuate</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la evaluaci&oacute;n del efecto del &aacute;cido giber&eacute;lico (AG<sub>3</sub>) y naproxeno (NPX) en la inducci&oacute;n de germinaci&oacute;n de <i>A. hypogaea,</i> se seleccionaron semillas en buen estado y tama&ntilde;o homog&eacute;neo. Estas se separaron en lotes de 10 para cada repetici&oacute;n de los tratamientos. Las semillas se introdujeron en soluciones que conten&iacute;an cada promotor de germinaci&oacute;n a dos concentraciones y el testigo, y dos tiempos de inmersi&oacute;n (<a href="#c1">Cuadro 1</a>). El experimento se estableci&oacute; bajo un dise&ntilde;o completamente al azar. En cada tratamiento se emplearon tres r&eacute;plicas.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remexca/v6n6/a3c1.jpg"></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de la germinaci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las semillas tratadas con AG<sub>3</sub> y NPX se dejaron secar a temperatura ambiente durante siete d&iacute;as. Una vez secas se sembraron con el hipocotilo hacia abajo en sustrato Cosmopeat&reg; empleando charolas de polietileno de 10 x 20 cm. Las charolas se mantuvieron al aire libre a temperatura ambiente y con riego diario, para mantener el sustrato a capacidad de campo. Las variables respuesta para cada tratamiento se calcularon como lo indica Ranal <i>et al.</i> (2009): porcentaje de germinaci&oacute;n, tiempo medio de germinaci&oacute;n, coeficiente de variaci&oacute;n del tiempo de germinaci&oacute;n, velocidad media de germinaci&oacute;n e incertidumbre de germinaci&oacute;n. Los datos para cada variable fueron tomados diariamente a la misma hora durante 15 d&iacute;as. Se consider&oacute; como semilla germinada al momento de la aparici&oacute;n de la rad&iacute;cula.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de <i>Bacillus</i> spp. en pl&aacute;ntulas de <i>A. hypogaea</i></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la evaluaci&oacute;n <i>Bacillus</i> spp. como promotor de crecimiento, se utilizaron tres cepas bacterianas (CBTC1, CBCC57 y CBRF12) del cepario conservado en el laboratorio de Microbiolog&iacute;a del Instituto Tecnol&oacute;gico de Conkal, Yucat&aacute;n, M&eacute;xico. Las cepas fueron aisladas inicialmente de la pen&iacute;nsula de Yucat&aacute;n, de muestras de suelo de la rizosfera de diversos cultivos y malezas (Sosa&#45;Pech<i> et al.,</i> 2012). Estas fueron reproducidas en agar nutritivo a temperatura de incubaci&oacute;n de 30 &deg;C. Las esporas se obtuvieron por raspado de las colonias y suspensi&oacute;n sucesiva en un matraz Erlenmeyer con 100 mL agua est&eacute;ril hasta tener una concentraci&oacute;n de 1x10<sup>8</sup> CFU mL<sup>&#45;1</sup>. La inoculaci&oacute;n de las cepas bacterianas se realiz&oacute; en plantas de <i>A. hypogaea</i> de tres d&iacute;as de emergencia, se aplicaron 3 ml de suspensi&oacute;n bacteriana a las pl&aacute;ntulas establecidas en charolas de polietileno de 10 x 20 cm con sustrato Cosmopeat&reg;. El experimento se estableci&oacute; bajo un dise&ntilde;o completamente al azar. Se utilizaron 10 pl&aacute;ntulas por repetici&oacute;n. Se tuvieron tres repeticiones para cadatratamiento (cepa bacteriana). El testigo consisti&oacute; de plantas sin inocular.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tres d&iacute;as despu&eacute;s de la primera inoculaci&oacute;n, las pl&aacute;ntulas fueron trasplantadas en vasos de poliestireno de 600 mL con una mezcla de suelo, gravilla y Cosmopeat&reg;, en proporci&oacute;n volum&eacute;trica de 50%, 20% y 30%, respectivamente; y a los 15 d&iacute;as posteriores a la primera inoculaci&oacute;n, se llev&oacute; a cabo una segunda inoculaci&oacute;n con 3ml de suspensi&oacute;n bacteriana, la cual fue obtenida como se describi&oacute; anteriormente. Todas las plantas se mantuvieron a riego constante hasta su evaluaci&oacute;n final.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de promoci&oacute;n del crecimiento de <i>A. hypogaea</i></b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">A los 15 y 30 d&iacute;as despu&eacute;s del trasplante, se evalu&oacute; la altura de la planta, di&aacute;metro del tallo, n&uacute;mero de hojas, biomasa fresca y seca (tallo, ra&iacute;z y hojas) y la tasa relativa de crecimiento. En el caso de la biomasa seca, las muestras se secaron a peso constante en una estufa de convecci&oacute;n a 70 &deg;C durante 48 horas. La RGR se calcul&oacute; de acuerdo al m&eacute;todo de Causton y Venus (1981) usando los datos de biomasa seca (RGR<sub>Bio</sub>, g g<sup>&#45;1</sup> d&iacute;a<sup>&#45;1</sup>), altura del tallo (RGR<sub>Alt</sub>, cm cm<sup>&#45;1</sup> d&iacute;a<sup>&#45;1</sup>) y di&aacute;metro del tallo (RGR<sub>Dia</sub>, mm mm<sup>&#45;1</sup> d&iacute;a<sup>&#45;1</sup>) mediante la siguiente ecuaci&oacute;n:</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remexca/v6n6/a3e0.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde= B<sub>1</sub>=biomasa inicial; B<sub>2</sub>= biomasa final; t<sub>1</sub>=tiempo al inicio; t<sub>2</sub>= tiempo en d&iacute;as transcurridos del experimento.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de datos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos fueron analizados mediante an&aacute;lisis de varianza de efectos principales (ANOVA) para cada variable de respuesta, en la germinaci&oacute;n los factores fueron la concentraci&oacute;n de los inductores y el tiempo de respuesta (horas); y en el crecimiento los factores fueron la cepa bacteriana y el tiempo de respuesta (d&iacute;as). Todos los an&aacute;lisis se realizaron en Statistica v.8 (2007). Los datos fueron expresados como medias y desviaciones est&aacute;ndar. Previo a los an&aacute;lisis, &uacute;nicamente los datos de porcentaje se transformaron con el arcoseno de la ra&iacute;z cuadrada para lograr los supuestos de normalidad e igualdad de varianza.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discussion</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de los tratamientos pre germinativos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los tratamientos pre germinativos afectaron de forma significativa (<i>p</i>&lt; 0.05) la germinaci&oacute;n de las semillas de cacahuate. Aunque s&oacute;lo el tratamiento T2 (10 mg 100 mL<sup>&#45;1</sup> de AG<sub>3</sub> por 4h) (<a href="#c1">Cuadro 1</a>) increment&oacute; la germinaci&oacute;n hasta 53%. El resto de los par&aacute;metros del proceso germinativo no presentaron diferencias estad&iacute;sticamente significativas (<a href="/img/revistas/remexca/v6n6/a3c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>; <a href="#f1">Figura 1</a>).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remexca/v6n6/a3f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La respuesta a la germinaci&oacute;n en todos los tratamientos evaluados en el presente estudio se consider&oacute; baja con respecto a lo que han reportado otros autores para el caso de semillas de <i>A. hypogaea,</i> donde han documentado hasta 64% de germinaci&oacute;n (Saravanakumar y Samiyappan, 2007; Shweta <i>et al.,</i> 2008). Es importante tomar en cuenta que existe amplia variaci&oacute;n en la latencia de los diferentes genotipos de esta especie, de tal manera que el efecto de inductores de germinaci&oacute;n puede ser diferencial en los diferentes materiales gen&eacute;ticos o incluso lotes del mismo material (Enr&iacute;quez y Quero, 2001). En el presente trabajo, se obtuvieron efectos significativos (<i>p</i>&lt; 0.05) en la germinaci&oacute;n de <i>A. hypogaea</i> para el tratamiento T2 (10 mg 100 mL<sup>&#45;1</sup> de AG<sub>3</sub> por 4h) con un incremento de 33.33%, respecto al testigo (<a href="#f1">Figura 1</a>). En general, el &aacute;cido giber&eacute;lico ha sido usado con &eacute;xito en la promoci&oacute;n de la germinaci&oacute;n de semillas. En este sentido, Atrip y O'Reilly (2007) observaron un incremento de 15% en la germinaci&oacute;n de la semilla de <i>Betula pubescens</i> sobre el control, usando &aacute;cido giber&eacute;lico (20 mg 100 mL<sup>&#45;1</sup>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por su parte, Thammina <i>et al.</i> (2012) reportaron un incremento de 26% en la germinaci&oacute;n de semillas de <i>Euonymus alatus</i> sobre el control, usando una concentraci&oacute;n baja de &aacute;cido giber&eacute;lico (0.05 mg 100mL<sup>&#45;1</sup>). En nuestro estudio, se confirma que el &aacute;cido giber&eacute;lico ayuda a eliminar la latencia de las semillas de <i>A. hypogaea</i> y proporciona una mayor germinaci&oacute;n de ellas. Aunque en el presente estudio se encontr&oacute; que el mayor porcentaje de germinaci&oacute;n fue a un tiempo de imbibici&oacute;n de 4 horas, Herrera&#45;Corredor <i>et al.</i> (2011) mencionan que semillas de <i>Allium cepa</i> con tiempos de imbibici&oacute;n con la hormona BAP (benziladenina) mayores a 5 min disminuyen sus porcentajes de germinaci&oacute;n. En este sentido, habr&iacute;a la necesidad de mayores estudios con AG<sub>3</sub>, ya que son casi nulos en la actualidad.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otra parte, no se observaron efectos significativos del naproxeno sobre la germinaci&oacute;n de <i>A. hypogaea.</i> En trabajos previos, el naproxeno se ha considerado un inhibidor de la bios&iacute;ntesis del &aacute;cido absc&iacute;sico (ABA), que permite incrementar la germinaci&oacute;n de semillas (Wan y Li, 2006). Inlcusive, Hu <i>et al.</i> (2010) reportan que la aplicaci&oacute;n de naproxeno por 12 h aproximadamente incrementa la germinaci&oacute;n de <i>A. hypogaea</i> hasta 96%, seis d&iacute;as despu&eacute;s de la aplicaci&oacute;n. Aqu&iacute;, la aplicaci&oacute;n de naproxeno fue solamente por 2 &oacute; 4 h, lo cual pudo haber afectado el resultado, pues el tiempo de exposici&oacute;n y la concentraci&oacute;n de naproxeno son factores determinantes en la germinaci&oacute;n de <i>A. hypogaea</i> (Matusova <i>et al.,</i> 2005).</font></p>      <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de <i>Bacillus</i> en el crecimiento de la planta de <i>A. hypogaea</i></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En plantas de <i>A. hypogaea</i> se evalu&oacute; la tasa relativa de crecimiento en altura (RGR<sub>Altura</sub>, cm cm<sup>&#45;1</sup> d&iacute;a<sup>&#45;1</sup>) y la tasa de crecimiento de di&aacute;metro de tallo (RGR<sub>Di&aacute;metro</sub>, mm d&iacute;a<sup>&#45;1</sup>), as&iacute; como el ritmo de emisi&oacute;n foliar durante los 15 y 30 d&iacute;as (<a href="/img/revistas/remexca/v6n6/a3c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). Para las variables RGR<sub>Di&aacute;metro</sub> y n&uacute;mero de hojas, no se observaron diferencias significativas por efecto de los inoculantes. Para la variable RGR<sub>Altura</sub>, s&oacute;lo se observaron diferencias significativas <i>(p&gt;</i> 0.05) a los 15 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra, donde las plantas inoculadas con CBRF12 presentaron mayores valores para esta variable comparado con las plantas del testigo. Nawangsih <i>et al.</i> (2012) reportaron en <i>A. hypogaea</i> un efecto en el incremento de altura por uso de inoculantes bacterianos a partir de la quinta semana (35 d&iacute;as) posterior a la siembra de las semillas. Sin embargo, en este estudio s&oacute;lo se observaron efectos en la segunda semana (15 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra), mientras que en la evaluaci&oacute;n a los 30 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra no se observaron diferencias (<i>p</i>&lt; 0.05) en la variable RGR<sub>Altura</sub>. Este incremento en altura de la plantas pudo deberse a un mejor desarrollo de los pelos radicales o absorbentes, caracter&iacute;stico de las primeras semanas de inoculaci&oacute;n bacteriana, sin embargo, este incremento no provoca cambios iniciales en la biomasa radical, lo que a la larga podr&iacute;a o no dar lugar a un incremento en la biomasa a&eacute;rea (Cuevas <i>et al.,</i> 2000). El efecto de los inoculantes bacterianos a base de <i>Bacillus</i> spp., ha sido atribuido principalmente a la producci&oacute;n de sustancias estimuladoras del crecimiento vegetal, tales como vitaminas, &aacute;cido indolac&eacute;tico y giber&eacute;lico, y citoquininas (Guti&eacute;rrez <i>et al.,</i> 2001; C&aacute;rdenas <i>et al.,</i> 2010).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con respecto a la altura de las plantas en la evaluaci&oacute;n a los 30 d&iacute;as despu&eacute;s de inoculadas con las cepas CBTC1, CBCC57 y CBRF12 (19.30&#45;20.23 cm), se observ&oacute; que en general los valores fueron ligeramente menores a los obtenidos por Dey <i>et al.</i> (2004) en plantas de <i>A. hypogaea</i> (22.9 cm) a los 45 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra y que fueron inoculadas con la rizobacteria (PGPR6, 1998). Anandham <i>et al.</i> (2007) reportaron un crecimiento similar a obtenido en este trabajo en plantas de <i>A. hypogaea</i> a los 40 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra, donde se observ&oacute; 19.54 y 19.84 cm de altura cuando se inocularon con las cepas SWA4 y SWA5 de <i>Thiobacillus</i> sp. Por lo que el crecimiento de las plantas de <i>A. hypogaea</i> inoculadas con <i>Bacillus</i> spp. estuvo en el rango normal de crecimiento que han reportado otros autores en estudios de efecto de inoculantes microbianos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el caso de biomasa seca (<a href="/img/revistas/remexca/v6n6/a3c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>), no se observaron diferencias significativas en biomasa seca a&eacute;rea. En contraste, se observ&oacute; diferencia significativa <i>(p&lt;</i> 0.05) en biomasa seca de ra&iacute;z a los 30 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra, donde la inoculaci&oacute;n con la cepa CBTC1 caus&oacute; mayor ganancia de peso (0.27 g) de ra&iacute;z en las plantas. Este efecto lento en el crecimiento de la ra&iacute;z pudo deberse a que la relaci&oacute;n simbi&oacute;tica entre bacteria y ra&iacute;z no se present&oacute; de manera inmediata, por lo que quiz&aacute; haya que esperar por lo menos 3 o 4 semanas para que pueda observarse un efecto significativo en el crecimiento vegetal (Cuevas <i>et al.,</i> 2000; Dey <i>et al.,</i> 2004).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado, las cepas CBCC57 y CBRF12 tuvieron un efecto intermedio en la ganancia de peso de la ra&iacute;z seca. En general el peso seco de las plantas observadas en el presente estudio, fueron mayores que lo observado por Taurian <i>et al.</i> (2010) a los 35 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra, usando <i>Pseudomonas fluorescens</i> (0.16 g) y <i>Pantoea agglomerans</i> J49 (0.21 g) como agentes promotores de crecimiento. En este sentido, se considera que el uso de bacterias nativas podr&iacute;a ayudar a largo plazo a mejorar la absorci&oacute;n nutricional de la planta y consecuentemente a mejorar su rendimiento (Dey<i> et al.,</i> 2004).</font></p>      <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El estado de latencia de la semillas de <i>A. hypogaea</i> puede ser interrumpida por tratamiento con &aacute;cido giber&eacute;lico. El tratamiento de semillas con &aacute;cido giber&eacute;lico (10 mg en 100 mL<sup>&#45;1</sup>) por 4 h de inmersi&oacute;n, incrementa significativamente el porcentaje de germinaci&oacute;n. El naproxeno no tuvo efecto alguno en la germinaci&oacute;n. La inoculaci&oacute;n de las cepas de <i>Bacillus</i> spp. CBTC1, CBCC57 y CBRF12 mostr&oacute; poco efecto en la promoci&oacute;n de crecimiento e incremento de peso seco a&eacute;reo y de ra&iacute;z del cultivo de <i>A. hypogaea.</i> En este sentido, s&oacute;lo se observaron cambios significativos en la altura a los 15 d&iacute;as en plantas inoculadas con la cepa CBRF12 y en biomasa seca de ra&iacute;z a los 30 d&iacute;as, en plantas inoculadas con la cepa CBTC1.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores agradecen a la Fundaci&oacute;n Produce Chiapas al proyecto N&uacute;m. 2221, por el financiamiento de este trabajo de investigaci&oacute;n.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura citada</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Anandhama, R.; Sridarb, R.; Nalayinic, P.; Poonguzhalia, S.; Madhaiyana, M. and Tongmin, S. A. 2007. Potential for plant growth promotion in groundnut (<i>Arachis hypogaea</i> L.) cv. ALR&#45;2 by co&#45;inoculation of sulfur&#45;oxidizing bacteria and <i>Rhizobium.</i> Microbiological Res. 162:139&#45;153.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841570&pid=S2007-0934201500060000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Atrip, N. and O'Reilly, C. 2007. Germination response of alder and birch seeds to applied gibberellic acid and priming treatment combination with chilling. Ann. Forest Sci. 64:385&#45;394.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841572&pid=S2007-0934201500060000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">C&aacute;rdenas, D. M.; Garrido, M. F.; Bonilla, R. R. y Baldani, V. L. 2010. Aislamiento e identificaci&oacute;n de cepas de <i>Azospirillum sp.</i> en pasto guinea (<i>Panicum maximum</i> Jacq.) del Valle del Cesar. Pastos y Forrajes. 33(3):1&#45;1.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841574&pid=S2007-0934201500060000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cass&aacute;n, F.; Sgroy, V.; Perrig, D.; Masciarelli, O. y Luna, V. 2008. Producci&oacute;n de fitohormonas por <i>Azospirillum</i> sp. aspectos fisiol&oacute;gicos y tecnol&oacute;gicos de la promoci&oacute;n del crecimiento vegetal. <i>In:</i> Cass&aacute;n, F. and Garc&iacute;a de Salamone, I. (Eds.), <i>Azospirillum</i> sp., cell physiology, plant interactions and agronomic research in Argentina. Asociaci&oacute;n Argentina de Microbiolog&iacute;a. 61&#45;78 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841576&pid=S2007-0934201500060000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Causton, D. R. and Venus, J. C. 1981. The biometry of plant growth. Edward Arnold, London, England. 307 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841578&pid=S2007-0934201500060000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuevas, P. C.; Medina, B. N.; D&iacute;az, L. G. S. y Morej&oacute;n, R. R. 2000. Efecto de la biofertilizaci&oacute;n con bacterias rizof&eacute;ricas en el cultivo del tomate. Avances. 2(2):15&#45;21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841580&pid=S2007-0934201500060000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dey, R.; Pal, K. K.; Bhatt, D. M. and Chauhan, S. M. 2004. Growth promotion and yield enhancement ofpeanut (<i>Arachis hypogaea</i> L.) by application of plant growth&#45;promoting rhizobacteria. Microbiological Res. 159:371&#45;394.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841582&pid=S2007-0934201500060000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Duque, M. E. C. 2013. Comparaci&oacute;n agron&oacute;mica de diez cultivares de man&iacute; (<i>Arachis hypogea;</i> Fabacea) en Ipala, Chiquimula. Tesis profesional. Universidad Rafael Land&iacute;var &#45; Facultad de Ciencias Ambientales y Agr&iacute;colas. Guatemala, Guatemala.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841584&pid=S2007-0934201500060000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Enr&iacute;quez, Q. J. F. y Quero, C. A. R. 2001. Producci&oacute;n de semilla de cacahuate forrajero con siete dosis de cal y tres fechas de cosecha. T&eacute;c. Pecu. M&eacute;x. 39 (1):31&#45;38.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841586&pid=S2007-0934201500060000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Financiera Rural (FR). 2011. Monograf&iacute;a del cacahuate. Direcci&oacute;n general adjunta de planeaci&oacute;n estrat&eacute;gica y an&aacute;lisis sectorial. Financiera Rural, M&eacute;xico, D. F.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841588&pid=S2007-0934201500060000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">G&oacute;mez, S. M.; Burow, G.; Burke, J. J.; Belamkar, V.; Puppala, N. and Burow, M. D. 2001. Heat stress screening of peanut (<i>Arachis hypogaea L.</i>) seedlings for acquired thermotolerance. Plant Growth Regul. 65(1):83&#45;91.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841590&pid=S2007-0934201500060000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grosso, N. R.; Nepote, V. and Guzm&aacute;n, C. A. 2000. Article chemical composition of some wild peanut species <i>(Arachis L.</i> ) Seeds. J. Agric. Food Chem. 48 (3):806&#45;809.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841592&pid=S2007-0934201500060000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Guti&eacute;rrez, M. F. J.; Ramos, S. B.; Probanza,A.; Mehouachi, J.; Tadeo, R. F. and Talon, M. 2001. The plant&#45;growth&#45;promoting rhizobacteria <i>Bacillus pumilus</i> and <i>Bacillus licheniformis</i> produce high amounts ofphysiologically active gibberellins. Physiol. Plant. 111(2):206&#45;211.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841594&pid=S2007-0934201500060000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hu, B.; Wan, X.; Liu, X.; Guo, D. and Li, L. 2010. Abscisic acid (ABA)&#45;mediated inhibition of seed germination involves a positive feedback regulation of ABA biosynthesis in <i>Arachis hypogaea</i> L. Afr. J. Biotechnol. 9(11):1578&#45;1586.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841596&pid=S2007-0934201500060000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Herrera&#45;Corredor, C.; Carrillo&#45;Casta&ntilde;eda, G.; Gonz&aacute;lez&#45;Hern&aacute;ndez, V.; Carrillo&#45;Salazar, J.; Pe&ntilde;a&#45;Valdivia, C. y Garc&iacute;a&#45;Nava, J. 2011. Tratamientos qu&iacute;micos para recuperar la germinaci&oacute;n en semillas de cebolla. Rev. Chapingo Ser. Hortic.17 (2):63&#45;72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841598&pid=S2007-0934201500060000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">INEGI (Instituto Nacional de Estad&iacute;stica, Geograf&iacute;a e Inform&aacute;tica). 2010.&nbsp;Instituto Nacional de Estad&iacute;stica y Geograf&iacute;a, M&eacute;xico, D. F.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ingale, S. and Shrivastava S. K. 2011. Nutritional study of new variety of ground nut <i>(Arachis hypogea)</i> JL&#45;24 seeds. AJFS. 5(8): 490&#45;498.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841601&pid=S2007-0934201500060000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kambiranda, D. M.; Vasanthaiah, H. K. N.; Katam, R.; Ananga, A.; Basha, S. M. and Naik, K. 2011. Impact of drought stress on peanut <i>(Arachis hypogea)</i> productivity and food safety. <i>In:</i> plants and environment. Vasanthaiah, H. (Ed.). In Tech. 272 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841603&pid=S2007-0934201500060000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lin, Z.; Zhong, S. and Grierson, D. 2009. Recent advances in ethylene research. J. Exp. Bot. 60 (12):3311&#45;3336.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841605&pid=S2007-0934201500060000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Matusova, R.; Rani, K.; Verstappen, F. W.; Franssen, M. C.; Beale, M. H. and Bouwmeester, H. J. 2005. The strigolactone germination stimulants of the plant&#45;parasitic <i>Striga</i> and <i>Orobanche spp.</i> are derived from the carotenoid pathway. Plant Physiol. 139(2):920&#45;934.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841607&pid=S2007-0934201500060000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mohammadi, G. R. 2013. Alternative weed control methods: a review. <i>In</i>: Soloneski, S. (Ed.), weed and pest control&#45;conventional and new challenges. In Tech, Agric. Biol. Sci. 6. 17&#45;159 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841609&pid=S2007-0934201500060000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mu&ntilde;oz, V.; Ib&aacute;&ntilde;ez, F.; Tonelli, M.; Valetti, L.; Anzuay, M. and Fabra, A. 2011.&nbsp;Syst. Appl. Microbiol. 34(6):446&#45;52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841611&pid=S2007-0934201500060000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Navarro, H.; Navarro, S. and Finkelman, S. 2012. Hermetic and modified atmosphere storage of shelled peanuts to prevent free fatty acid and aflatoxin formation. <i>In:</i> Athanassiou, C.; Kavallieratos, N. and Weintraub, P. (Eds.). Integrated Protection of Stored Products. 81:83&#45;192.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841613&pid=S2007-0934201500060000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nawangsih, A. A.; Aditya, R.; Tjahjono, B.; Negishi, H. and Suyama, K. 2012. Bioefficacy and characterization of plant growth&#45;promoting bacteria to control the bacteria wilt disease of peanut in Indonesia. Journal of ISSAAS. 18(1):185&#45;192.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841615&pid=S2007-0934201500060000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ossom, E. M. and Rhykerd, R. L. 2008. Implication of associating sweet potato <i>(Ipomoea babatas)</i> with different groundnut <i>(Arachis hyogea)</i> population on tuber yield and soil and tuber chemical properties. American&#45;Eurasian J.Agric. Environ. Sci. 3(1): 63&#45;69.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841617&pid=S2007-0934201500060000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Qin, F.; Xu, H.; L&uuml;, D. and Takano, T. 2012. Responses of hypocotyl elongation to light and sowing depth in peanut seedlings. J. Food, Agri. Environ. 10(2):607&#45;612.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841619&pid=S2007-0934201500060000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ranal, M.; Garc&iacute;a, De S. D.; Resende, F. W. and Mendes, R. C. 2009. Calculating germination measurements and organizing spreadsheets. Rev. Bras. Bot. 32(4):849&#45;855.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841621&pid=S2007-0934201500060000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Saravanakumar, D. and Samiyappan, R. 2007. ACC deaminase from Pseudomonas fluorescens mediated saline resistance in groundnut <i>(Arachis hypogea)</i> plants. J. Appl. Microbiol. 102:1283&#45;1292.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841623&pid=S2007-0934201500060000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Shweta, B.; Maheshwari, D. K.; Dubey, R. C.; Arora, D. S.; Bajpai, V. K. and Kang, S. C. 2008. Beneficial effects of fluorescent pseudomonads on seed germination, growth promotion, and suppression of charcoal rot in groundnut <i>(Arachis hypogea</i> L.). J. Microbiol. Biotechnol. 18 (9):1578&#45;1583.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841625&pid=S2007-0934201500060000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sosa&#45;Pech, M.; Ruiz&#45;S&aacute;nchez, E.; Mej&iacute;a&#45;Bautista, M.; Reyes&#45;Ram&iacute;rez, A.; Crist&oacute;bal&#45;Alejo, J.; Valencia&#45;Bot&iacute;n, A. y Guti&eacute;rrez&#45; Alonzo. O. 2012. Actividad antag&oacute;nica <i>in vitro</i> de aislados de la clase <i>Bacilli</i> de la pen&iacute;nsula de Yucat&aacute;n contra cuatro hongos fitopat&oacute;genos. Universidad y Ciencia Tr&oacute;pico H&uacute;medo. 28(3): 279&#45;284.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841627&pid=S2007-0934201500060000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Statistical Analysis System (SAS) Institute. 2007. SAS user's guide. Statistics. Version 8. SAS Inst., Cary, NC. USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841629&pid=S2007-0934201500060000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --> Quality, and elemental removal. J. Environ. Qual. 19:749&#45;756.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841630&pid=S2007-0934201500060000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Taurian, T.; Anzuay, M.; Angelini, J.; Tonelli, M.; Ludue&ntilde;a, L.; Pena, D.; Ib&aacute;&ntilde;ez, F. and Fabra, A. 2010. Phosphate&#45;solubilizing peanut associated bacteria: screening for plant growth&#45;promoting activities. Plant Soil. 329(1&#45;2):421&#45;431.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841632&pid=S2007-0934201500060000300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Thammina, C.; He, M.; Yu, H.; Chen, Y.; Gai, Y.; Cao, K.; Lu, L.; Zhao, D.; Wang, Y.; McAvoy, R.; Ellis, D. and Li., Y. 2012. Continuous biosynthesis of abscisic acid (ABA) may be required for maintaining dormancy of isolated embryos and intact seeds of <i>Euonymus alatus.</i> Plant Cell Tissue Organ Cult. 108:493&#45;500.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841634&pid=S2007-0934201500060000300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wan, X. R. and Li, L. 2006. Regulation of ABA level and water&#45;stress tolerance of Arabidopsis by ectopic expression of a peanut 9&#45;cis&#45;epoxycarotenoid dioxygenase gene. Biochem. Biophys. Res. Commun. 347:1030&#45;1038.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7841636&pid=S2007-0934201500060000300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Germination response of alder and birch seeds to applied gibberellic acid and priming treatment combination with chilling]]></article-title>
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