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<journal-title><![CDATA[Revista mexicana de ciencias agrícolas]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Aislamiento, caracterización molecular y evaluación de cepas fijadoras de nitrógeno en la promoción del crecimiento de frijol]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Isolation, molecular characterization and evaluation of nitrogen-fixing strains in promoting the growth of beans]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias Campo Experimental Bajío Laboratorio de Biotecnología y Fisiología Molecular de Plantas y Microorganismos]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Legumes like beans and soybeans play an important role in crop rotation, thanks to the process of biological nitrogen fixation which is carried out through the symbiotic plant-microorganism interactions. Finding and obtaining strains of microorganisms capable of fixing nitrogen efficiently from the soil and promote the growth of legumes of agronomic interest is essential to meet the challenges of modern agriculture that involves increasing agricultural products, reducing the consumption of fossil energy and the emission of greenhouse gases generated by the excessive use of nitrogen fertilizers. The objective of this study was to isolate nitrogen fixing strains and growth promoters, from nodules of Glycine max L. (soybean) and Pachyrhizus erosus (jicama) and evaluate their promoting effect Phaseolus vulgaris (bean). In this work, molecular biology, physiology and biochemistry techniques were used to characterize strains isolated from soy andjicama for growth promotion. The molecular identification indicates that strain isolates from soy corresponded to Ramlibacter sp., (INI26-13), Sinorhizobium sp., (INI43-13), Sinorhizobium fredii (INI51-13), while the strain isolates from jicama corresponded to Bradyrhizobium japonicum (INI13-13). The promoter capability of these isolates were studied under greenhouse conditions in seedlings of Phaseolus vulgaris (bean), inoculated with a bacterial suspension with 10(8) CFU / ml. The seedlings were harvested 18 days after inoculation and separated into stems and roots for study. Stems did not present changes in dry weight, however in root increased in the treatment with Ramlibacter sp., (INI26-13). It was observed the presence of nodules in the roots of all treatments; however, was the treatment with Ramlibacter sp. (INI26-13) presented the highest number of nodes. The carbohydrate profile content in roots was modified by differentially in all treatments and only stems from treatment with strain Ramlibacter sp. (INI26-13) showed increases in the content of glucose, fructose and starch. The results obtained in this work are discussed in terms of the role that organisms of growth promoters in modern agriculture.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Aislamiento, caracterizaci&oacute;n molecular y evaluaci&oacute;n de cepas fijadoras de nitr&oacute;geno en la promoci&oacute;n del crecimiento de frijol*</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Isolation, molecular characterization and evaluation of nitrogen&#45;fixing strains in promoting the growth of beans</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Juan Gabriel Angeles&#45;N&uacute;&ntilde;ez<sup>1&sect;</sup> y Teresa Cruz&#45;Acosta<sup>1</sup></b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Laboratorio de Biotecnolog&iacute;a y Fisiolog&iacute;a Molecular de Plantas y Microorganismos&#45;Campo Experimental Baj&iacute;o, INIFAP. Carretera Celaya&#45;San Miguel de Allende, km 6.5. 38010 Celaya, Guanajuato. M&eacute;xico. Tel: 01 46161&#45;15&#45;323 Ext. 141.</i> (<a href="mailto:terecruz_89@hotmail.com">terecruz_89@hotmail.com</a>). <sup>&sect;</sup><i>Autor para correspondencia:</i> <a href="mailto:angeles.gabriel@inifap.gob.mx">angeles.gabriel@inifap.gob.mx</a>.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">* Recibido: agosto de 2014    <br> 	Aceptado: enero de 2015</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las leguminosas como el frijol y soya, juegan un papel fundamental en la rotaci&oacute;n de los cultivos, gracias al proceso de fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico que se lleva a cabo a trav&eacute;s de la interacci&oacute;n simbi&oacute;tica planta&#45;microorganismo. La b&uacute;squeda y obtenci&oacute;n de cepas de microorganismos capaces de fijar eficientemente el nitr&oacute;geno del suelo y promover el crecimiento de leguminosas de inter&eacute;s agron&oacute;mico resulta indispensable para afrontar los retos de la agricultura moderna que implica el incremento de productos agr&iacute;colas, reduciendo el consumo de energ&iacute;a f&oacute;sil y la emisi&oacute;n de gases de efecto invernadero generados por la utilizaci&oacute;n desmedida de fertilizantes nitrogenados. El objetivo de este estudio, fue aislar cepas fijadoras de nitr&oacute;geno y promotoras del crecimiento, provenientes de n&oacute;dulos de <i>Glycine max</i> L. (soya) y <i>Pachyrhizus erosus</i> (j&iacute;cama) y evaluar sus efectos promotores en el cultivo de <i>Phaseolus vulgaris</i> (frijol). En este trabajo se utilizaron t&eacute;cnicas de biolog&iacute;a molecular, fisiolog&iacute;a y bioqu&iacute;mica para caracterizar cepas promotoras de crecimiento aisladas de soya y j&iacute;cama. La identificaci&oacute;n molecular indica que las cepas aisladas de soya correspondieron a <i>Ramlibacter</i> sp., (INI26&#45;13), <i>Sinorhizobium</i> sp., (INI43&#45;13), <i>Sinorhizobium fredii</i> (INI51&#45;13), mientras que la cepa aislada de j&iacute;cama correspondi&oacute; a <i>Bradyrhizobium japonicum</i> (INI13&#45;13). La capacidad promotora de estos aislados se estudi&oacute; bajo condiciones de invernadero en pl&aacute;ntulas inoculadas de <i>Phaseolus vulgaris</i> (frijol) con una suspensi&oacute;n bacteriana con 10<sup>8</sup> UFC/ml. Las pl&aacute;ntulas fueron cosechadas 18 d&iacute;as despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n y separadas en v&aacute;stagos y ra&iacute;ces para su estudio. Los v&aacute;stagos no presentaron cambios en el peso seco, sin embargo en la ra&iacute;z se increment&oacute; en el tratamiento con la cepa de <i>Ramlibacter</i> sp. (INI26&#45;13). La presencia de n&oacute;dulos fue observada en las ra&iacute;ces de todos los tratamientos; sin embargo, fue el tratamiento con la cepa de <i>Ramlibacter</i> sp. (INI26&#45;13) que present&oacute; mayor n&uacute;mero de n&oacute;dulos. El perfil del contenido de carbohidratos en ra&iacute;ces fue modificado diferencialmente en todos los tratamientos y s&oacute;lo los v&aacute;stagos del tratamiento con la cepa de <i>Ramlibacter</i> sp. (INI26&#45;13) presentaron incrementos en el contenido de glucosa, fructosa y almid&oacute;n. Los resultados obtenidos en este trabajo son discutidos en funci&oacute;n del papel que tienen los organismos promotores de crecimiento en la agricultura moderna.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Phaseolus vulgaris, Ramlibacter</i> sp., bacterias promotoras de crecimiento, carbohidratos.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Legumes like beans and soybeans play an important role in crop rotation, thanks to the process of biological nitrogen fixation which is carried out through the symbiotic plant&#45;microorganism interactions. Finding and obtaining strains of microorganisms capable of fixing nitrogen efficiently from the soil and promote the growth of legumes of agronomic interest is essential to meet the challenges of modern agriculture that involves increasing agricultural products, reducing the consumption of fossil energy and the emission of greenhouse gases generated by the excessive use of nitrogen fertilizers. The objective of this study was to isolate nitrogen fixing strains and growth promoters, from nodules of <i>Glycine max</i> L. (soybean) and <i>Pachyrhizus erosus</i> (jicama) and evaluate their promoting effect <i>Phaseolus vulgaris</i> (bean). In this work, molecular biology, physiology and biochemistry techniques were used to characterize strains isolated from soy andjicama for growth promotion. The molecular identification indicates that strain isolates from soy corresponded to <i>Ramlibacter</i> sp., (INI26&#45;13), <i>Sinorhizobium</i> sp., (INI43&#45;13), <i>Sinorhizobium fredii</i> (INI51&#45;13), while the strain isolates from jicama corresponded to <i>Bradyrhizobium japonicum</i> (INI13&#45;13). The promoter capability of these isolates were studied under greenhouse conditions in seedlings of <i>Phaseolus vulgaris</i> (bean), inoculated with a bacterial suspension with 10<sup>8</sup> CFU / ml. The seedlings were harvested 18 days after inoculation and separated into stems and roots for study. Stems did not present changes in dry weight, however in root increased in the treatment with <i>Ramlibacter</i> sp., (INI26&#45;13). It was observed the presence of nodules in the roots of all treatments; however, was the treatment with <i>Ramlibacter</i> sp. (INI26&#45;13) presented the highest number of nodes. The carbohydrate profile content in roots was modified by differentially in all treatments and only stems from treatment with strain <i>Ramlibacter</i> sp. (INI26&#45;13) showed increases in the content of glucose, fructose and starch. The results obtained in this work are discussed in terms of the role that organisms of growth promoters in modern agriculture.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> <i>Phaseolus vulgaris, Ramlibacter</i> sp., carbohydrates, growth promoting bacteria.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las leguminosas como el frijol, soya, alfalfa, lenteja, garbanzo y j&iacute;cama juegan un papel fundamental en la rotaci&oacute;n de los cultivos gracias al proceso de fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico. Estos cultivos poseen un papel fundamental en la agricultura moderna, ya que pueden contribuir de manera significativa a la disminuci&oacute;n del consumo de energ&iacute;a f&oacute;sil y la emisi&oacute;n de gases de efecto invernadero ocasionados por el uso de fertilizantes nitrogenados que originan gran parte de las emisiones de CO<sub>2</sub> y N<sub>2</sub>O (Rispaila <i>et al,</i> 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la agricultura existe un beneficio de los cultivos de frijol y soya en el mejoramiento de fertilidad de suelo, lo que convierte a estos cultivos en componentes esenciales de la agricultura sostenible (Lightfoot, 2008). La interacci&oacute;n de estas leguminosas con bacterias capaces de aprovechar una gran proporci&oacute;n del nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico (familia rhizobiaceae) resulta de gran importancia para el desarrollo de los cultivos (FAO, 1984).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La riz&oacute;sfera de las plantas es una zona de intensa actividad microbiana y algunas bacterias habitantes de esta zona, (denominas rizobacterias), exhiben diferentes funciones (Walker <i>et al,</i> 2003). Las rizobacterias que ejercen efectos ben&eacute;ficos sobre el desarrollo de la planta se conoce por sus siglas en ingl&eacute;s como Plant Growth&#45;Promoting Rhizobacteria (PGPR), y pueden afectar el crecimiento de la planta de manera directa (incrementando el suministro de nutrientes a la planta), o indirecta (mediante la disminuci&oacute;n o prevenci&oacute;n de los efectos delet&eacute;reos de uno o m&aacute;s organismos patog&eacute;nicos) (Dardanelli <i>et al,</i> 2011; Atieno <i>et al,</i> 2012). Las bacterias ben&eacute;ficas que son capaces de estableceruna relaci&oacute;n simbi&oacute;tica mediante la fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno con plantas leguminosas (llamadas en conjunto rizobios) tambi&eacute;n son capaces de promover el crecimiento en cultivos que no pertenecen a la familia <i>leguminosae</i> (Dardanelli <i>et al,</i> 2011). La asociaci&oacute;n leguminosa&#45;rizobio contribuye de manera significativa a la econom&iacute;a del nitr&oacute;geno en el suelo. Se estima que mediante la simbiosis, la fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno por hect&aacute;rea var&iacute;a de 24 hasta m&aacute;s de 584 kg, siendo capaz de abastecer en algunos casos hasta 90% de las necesidades de las plantas (Meza, 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las bacterias com&uacute;nmente conocidas como rizobios habitan en los n&oacute;dulos fijadores de nitr&oacute;geno de las ra&iacute;ces de las leguminosas. El carb&oacute;n fijado fotosint&eacute;ticamente en el cloroplasto de la hoja es transportado a las ra&iacute;ces y es en este tejido donde la bacteria lo usa como una fuente de energ&iacute;a y de electrones para la reducci&oacute;n de di&#45;nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico a amonio, que sirve como fuente de nitr&oacute;geno para las plantas. La interacci&oacute;n que se lleva a cabo entre los microorganismos fijadores de nitr&oacute;geno y sus hospederos puede resultar muy espec&iacute;fica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La especificidad del hospedero y la interacci&oacute;n planta&#45;bacteria que origina el desarrollo de n&oacute;dulos, es mediado por la se&ntilde;alizaci&oacute;n especifica de mol&eacute;culas secretadas por la planta (flavonoides) y la bacteria (factores nod) (Freixas etal., 2010). Una vez que este fen&oacute;meno ocurre, la bacteria invade la ra&iacute;z y eventualmente, forma c&eacute;lulas diferenciadas conocidas como bacteroides, sub&#45;rodeadas por membranas peribacteroides.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los g&eacute;neros <i>Sinorhizobium, Rizobium, Bradyrhizobium, Mesorhizobium, Sinorhizobium</i> y <i>Azorhizobium</i> de la familia rhizobiaceason simbi&oacute;ticos fij adores de nitr&oacute;geno que pueden encontrarse en las ra&iacute;ces de las plantas, principalmente las leguminosas. Estos microrganismos son los responsables de la porci&oacute;n m&aacute;s grande del nitr&oacute;geno fijado en el mundo (los microorganismos aporta 65% del nitr&oacute;geno disponible en la bi&oacute;sfera) (Ludwing <i>et al,</i> 2004). El estudio de los miembros de la familia rhizobiacea, as&iacute; como el de otras familias que contribuyen de manera significativa a la productividad de los cultivos agr&iacute;colas ha resultado ser un factor clave para la obtenci&oacute;n de herramientas biotecnol&oacute;gicas que ayuden a enfrentar los retos de la agricultura moderna.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los beneficios que aportan los microorganismos promotores de crecimiento de la familia rhizobiaceae los convierten en un excelente modelo de estudio, por lo cual en los &uacute;ltimos a&ntilde;os se han ampliado las investigaciones respecto a la interacci&oacute;n planta&#45;microorganismo con la finalidad de entender a detalle los procesos que se llevan a cabo durante y despu&eacute;s de la simbiosis. De igual manera, el aislamiento de nuevos microorganismos promotores del crecimiento ha llamado la atenci&oacute;n ya que se ha observado que algunos aislados que no pertenecen a la familia rhizobiaceae inducen la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos y favorecen el desarrollo de las ra&iacute;ces, permitiendo con ello el fortalecimiento de la planta y en consecuencia un aumento en los rendimientos de los cultivos. El objetivo de este trabajo fue aislar nuevas cepas promotoras del crecimiento, provenientes de n&oacute;dulos de soya y j&iacute;cama, y evaluar sus efectos de promoci&oacute;n de crecimiento en frijol.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como material biol&oacute;gico se utilizaron n&oacute;dulos de ra&iacute;ces de <i>Glycine max</i> L. (soya) y <i>Pachyrhizus erosus</i> (j&iacute;cama) para el aislamiento de cepas promotoras del crecimiento y semillas de <i>Phaseolus vulgaris</i> (frijol), variedad Flor de Mayo, para el an&aacute;lisis de promoci&oacute;n de crecimiento.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n de n&oacute;dulos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se aislaron n&oacute;dulos de ra&iacute;ces de soya y j&iacute;cama para esterilizarlos por inmersi&oacute;n en una soluci&oacute;n de cloro al 10% (v/v) durante 5 min y en una soluci&oacute;n de etanol al 70% (v/v) por un periodo de 10 min. Posteriormente se realizaron tres lavados con agua est&eacute;ril, con una duraci&oacute;n de 1 min cada uno. Posteriormente los n&oacute;dulos fueron utilizados para el aislamiento de microorganismos promotores de crecimiento.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aislamiento de cepas promotoras de crecimiento</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los microorganismos promotores del crecimiento empleados en este estudio fueron aislados de n&oacute;dulos de ra&iacute;ces de soya y j&iacute;cama provenientes de la regi&oacute;n norte y centro de M&eacute;xico, respectivamente. Los n&oacute;dulos previamente esterilizados fueron macerados con 5 ml de agua destilada est&eacute;ril en un mortero previamente esterilizado. Posteriormente, se tom&oacute; 1 ml del macerado y se diluy&oacute; con agua destilada est&eacute;ril hasta obtener diluciones de 10<sup>1</sup> a 10<sup>7</sup>. De cada diluci&oacute;n se estriaron 500 &#956;l sobre cajas Petri conteniendo medio de cultivo ELMARC (K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub>, MgSO<sub>4</sub>, NaCl, manitol, extracto de levadura). A continuaci&oacute;n, las colonias que lograron crecer en el medio ELMARC fueron estriadas en medios de selecci&oacute;n (ELMARC y yema) para la selecci&oacute;n de colonias candidatas.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Caracterizaci&oacute;n de los microorganismos candidatos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas candidatas fueron crecidas en medio LB durante toda la noche para extraer el ADN gen&oacute;mico utilizando el kit Wizard<sup>&reg;</sup> Genomic DNA Purification Kit. Posteriormente, la regi&oacute;n 16S de las distintas bacterias se amplific&oacute; por medio de la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) utilizando el ADN extra&iacute;do. La regi&oacute;n 16S fue clonada y transformada utilizando el kit de Invitogen TOPO TAcloning 2.1. A las colonias transformantes se les extrajo el ADN plasmidico utilizando el kit QIA prep<sup>&reg;</sup> Spin Miniprep kit (250) de QUIAGEN, el cual fue utilizado para un an&aacute;lisis de restricci&oacute;n confirmatorio. Las cepas con inserto se enviaron a secuenciar y su secuencia fue analizada en la base de datos <a href="http://blast.ncbi.nlm.nih.gov" target="_blank">http://blast.ncbi.nlm.nih.gov</a>.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n de la semilla</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se esterilizaron semillas de <i>Phaseolus vulgaris</i> (frijol) variedad Flor de Mayo por inmersi&oacute;n en una mezcla de cloro al 10% (v/v) durante 14 min. Despu&eacute;s las semillas fueron sumergidas en etanol al 70% (v/v) por un periodo de 5 min y finalmente se realizaron 5 lavados con agua est&eacute;ril (1 min cada uno). Una vez esterilizadas, las semillas se germinaron bajo condiciones as&eacute;pticas sobre una capa h&uacute;meda de algod&oacute;n contenida en el interior de una charola de aluminio est&eacute;ril. Se le dio el seguimiento al crecimiento radicular de las semillas durante 60 h hasta que la rad&iacute;cula alcanz&oacute; una longitud de 1&#45;1.5 cm, tiempo en el que fueron transferidas a macetas para la evaluaci&oacute;n de la capacidad promotora de crecimiento de los aislados bacterianos.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n de suelo y macetas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El suelo se prepar&oacute; a partir de una mezcla de suelo arcilloso y arena (1:2), el cual fue esterilizado en autoclave por 30 min. Posteriormente fue utilizado para llenar macetas con una capacidad de 1.2 kg las cuales se mantuvieron en riego a capacidad de campo, determinada especialmente para la mezcla de suelo&#45;arena utilizada en este estudio conforme al m&eacute;todo descrito en Daubenmire (1974).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n del in&oacute;culo bacteriano</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el crecimiento de las bacterias diazotr&oacute;ficas se utiliz&oacute; el medio de cultivo ELMARC, el cual se esteriliz&oacute; en autoclave durante 15 min a 121 &deg;C (15psi). Una colonia obtenida de un cultivo ax&eacute;nico de las cepas aisladas en este trabajo se inocul&oacute; en 15 ml de medio ELMARC. Posteriormente se incub&oacute; a 28 &deg;C y 200 rpm hasta alcanzar una densidad &oacute;ptica (DO) entre 0.500&#45;0.600 a una longitud de onda de 600 nm.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Tratamientos para la evaluaci&oacute;n de la promoci&oacute;n de crecimiento</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para este an&aacute;lisis se utilizaron dos controles y cuatro tratamientos. El control negativo (C&#45;), consisti&oacute; en sembrar semillas germinadas sobre suelo est&eacute;ril sin llevar a cabo ning&uacute;n tipo de inoculaci&oacute;n mientras que el control con medio (C/M) consisti&oacute; en adicionar 1 ml de medio de cultivo ELMARC a la rad&iacute;cula de semillas pre&#45;germinadas. Los tratamientos de inoculaci&oacute;n consistieron en adicionar 1 ml de una suspensi&oacute;n bacteriana (10<sup>8</sup> UFC/ml) de <i>Ramlibacter</i> sp., (tratamiento 1) <i>Sinorhizobium</i> sp. (tratamiento 2) <i>Sinorhizobium fredii</i> (tratamiento 3) y <i>Bradyrhizobium japonicum</i> (tratamiento 4) a la rad&iacute;cula de semillas pre&#45;germinadas de frijol. En todos los tratamientos se empleo riego a capacidad de campo con H<sub>2</sub>O est&eacute;ril.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de la promoci&oacute;n de crecimiento en frijol</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas candidatas fueron crecidas en medio ELMARC hasta alcanzar una DO de 0.500&#45;0.600 a una longitud de onda de 600 nm; posteriormente 1 ml de esa suspensi&oacute;n bacteriana fue utilizada para inocular las ra&iacute;ces de semillas de frijol que fueron previamente germinadas sobre una capa de algod&oacute;n bajo condiciones as&eacute;pticas. Una vez inoculadas las pl&aacute;ntulas se dejaron crecer por un periodo de dieciocho d&iacute;as en invernadero. Transcurrido este tiempo las pl&aacute;ntulas fueron cosechadas para la determinaci&oacute;n del n&uacute;mero de n&oacute;dulos, peso seco y an&aacute;lisis de carbohidratos.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>N&uacute;mero de n&oacute;dulos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las pl&aacute;ntulas de frijol fueron extra&iacute;das de la maceta 18 d&iacute;as despu&eacute;s de la germinaci&oacute;n y sus ra&iacute;ces lavadas para realizar un conteo de la cantidad de n&oacute;dulos por planta.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n del peso seco</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las pl&aacute;ntulas de frijol cosechadas despu&eacute;s de su establecimiento en macetas (18 d&iacute;as), fueron separadas en v&aacute;stagos y ra&iacute;ces y colocadas en bolsas de papel estraza, previamente rotuladas, para ser secadas de acuerdo al protocolo propuesto por Stephan&#45;Sarkissian (1990), el cual consiste en secar en horno a 60 &deg;C por un periodo de 48 h. En este trabajo, el secado se realiz&oacute; en un horno 1 321F SHEL LAB Forced Air Ovens, 1.7 Cu/Ft/120V. Al t&eacute;rmino de este tiempo, los v&aacute;stagos y ra&iacute;ces fueron retirados del horno y pesados en una balanza anal&iacute;tica modelo PW 124 ae Adam equipment.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n de carbohidratos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la determinaci&oacute;n de carbohidratos (glucosa, fructosa, sacarosa, alim&oacute;n) se utilizaron 5&#45;10 mg de peso seco de muestra utilizando un ensayo enzim&aacute;tico acoplado reportado por Angeles&#45;N&uacute;nez y Tiessen (2010).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis de los resultados se realiz&oacute; con base en un dise&ntilde;o experimental completamente al azar. El an&aacute;lisis estad&iacute;stico se realiz&oacute; a partir de una comparaci&oacute;n de medias utilizando el paquete de dise&ntilde;os experimentales FAUANL versi&oacute;n 2.5, Facultad de Agronom&iacute;a UANL, Mart&iacute;n N. L. (Olivares, 1994).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El estudio de la interacci&oacute;n planta&#45;microorganismo, ha permitido identificar algunos procesos biol&oacute;gicos que resultan importantes en la generaci&oacute;n de soluciones a las m&uacute;ltiples necesidades de la agricultura moderna. Esta misma, demanda un alto rendimiento vegetal a un costo relativamente bajo, sin deteriorar la fertilidad del suelo y haciendo frente al gran problema del consumo de agua, fertilizantes y pesticidas. En este trabajo nos hemos focalizado en buscar nuevas cepas fijadoras de nitr&oacute;geno y promotoras de crecimiento que ayuden a mejorar los rendimientos del cultivo de frijol disminuyendo el uso de productos qu&iacute;micos que generan problemas muy serios de fertilidad del suelo.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Microorganismos promotores del crecimiento aislados de ra&iacute;ces de soya y j&iacute;cama</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este trabajo se lograron aislar tres cepas diazotr&oacute;ficas putativas de n&oacute;dulos de soya (INI26&#45;13, INI43&#45;13, INI51&#45;13) y una cepa de n&oacute;dulos de j&iacute;cama (INI13&#45;13). El an&aacute;lisis molecular, permiti&oacute; identificar cepas como <i>Ramlibacter</i> sp. (INI26&#45;13), <i>Sinorhizobium</i> sp. (INI43&#45;13), <i>Sinorhizobium fredii</i> (INI51&#45;13) y <i>Bradyrhizobium japonicum</i> (INI13&#45;13) (datos no mostrados). En la actualidad, es ampliamente conocido que las bacterias del suelo pertenecientes a la familia rhizobiaceae tales como <i>Sinorhizobium</i> sp., <i>Sinorhizobium fredii, Bradyrhizobium japonicum</i> entre otras, interact&uacute;an con las ra&iacute;ces de las leguminosas para formar n&oacute;dulos en los que el nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico puede ser fijado (Fraysse <i>et al,</i> 2002; Pueppke y Broughton, 1999). Sin embargo, poco o nada es conocido sobre la simbiosis que se establece entre la bacteria <i>Ramlibacter</i> sp., y las leguminosas. Los pocos reportes que existen sobre esta bacteria indican que se encuentra dentro del grupo de la P&#45;protobacterias (desempe&ntilde;an un papel en la fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno en diversos tipos de plantas) (Heulin <i>et al.,</i> 2003). Nuestro trabajo es el primero que analiza en frijol y reporta la capacidad promotora de crecimiento de la bacteria <i>Ramlibacter</i> sp.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de cepas diazotr&oacute;ficas sobre la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos en plantas de frijol</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados obtenidos mostraron que las cepas <i>(Ramlibacter</i> sp., <i>Sinorhizobium</i> sp., <i>Sihorhizobium fredii)</i> provenientes de n&oacute;dulos de soya <i>(Glycine max</i> L.) fueron capaces de nodular las ra&iacute;ces del frijol <i>(Phaseolus vulgaris),</i> mientras que la cepa proveniente de n&oacute;dulos de j&iacute;cama <i>(Bradyrhizobium japonicum)</i> no fue capaz de inducir la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos en el cultivo de frijol 18 d&iacute;as despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n (<a href="#f1">Figura 1A</a>). Este resultado es coherente con otros reportes de nodulaci&oacute;n que indican que <i>Phaseolus vulgaris</i> es nodulado por aislados de crecimiento r&aacute;pido, tal es el caso de las cepas <i>Ramlibacter</i> sp., <i>Sinorhizobium</i> sp., y <i>Sinorhizobium fredii.</i></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remexca/v6n5/a2f1.jpg"></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Contrariamente a estas bacterias <i>Bradyrhizobium japonicum</i> es considerada una bacteria de crecimiento lento, y su capacidad de formar n&oacute;dulos en ra&iacute;ces de <i>Phaseolus vulgaris</i> es muy contradictoria. Mientras que los resultados de los estudios de Ishizawa, (1954) y Graham y Parker (1964) han indicado que varios aislados de <i>B. Japonicum</i> nodulan las ra&iacute;ces de <i>P. vulgaris,</i> Taha <i>et al.</i> (1970) han reportado que las cepas de <i>B. japonicum</i> que ellos examinaron no nodularon los diferentes genotipos de <i>P. vulgaris</i> analizados. De igual manera el equipo de Sadowsky <i>el al.</i> (1988) concluy&oacute; que los resultados que ellos obtuvieron utilizando una amplia variedad geogr&aacute;fica y de germoplasma (754genotipos) fue que las cepas de <i>Bradyrhizobium</i> no mostraron una relaci&oacute;n simbi&oacute;tica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una posible explicaci&oacute;n para todos estos resultados contradictorios es que muchos de los genotipos utilizados en los estudios anteriores han sido reclasificados como pertenecientes a los g&eacute;neros <i>Vigna</i> y <i>Macroptilium</i> (Allen y Allen, 1981) y se han demostrados que ambos hu&eacute;spedes forman simbiosis con un gran n&uacute;mero de especies y de cepas de rhizobia (Graham y Parker, 1964). Nuestro resultado de inducci&oacute;n de n&oacute;dulos en plantas de <i>Phaseolus vulgaris</i> con la cepa INI13&#45;13 de <i>Bradyrhizobium jamponicum</i> es coherente con el trabajo de Sadowsky <i>et al.</i> (1988), ya que al igual que ellos nuestra cepa de <i>Bradyrhizobium japonicum</i> no estableci&oacute; una relaci&oacute;n simbi&oacute;tica (formaci&oacute;n de n&oacute;dulos) con las plantas de frijol inoculadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sin embargo, las cepas de crecimiento r&aacute;pido <i>(Ramlibacter</i> sp., <i>Sinorhizobium</i> sp., <i>Sinorhizobium fredii)</i> si establecieron esa simbiosis lo cual dio lugar a la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos en las ra&iacute;ces de frijol inoculadas. Los resultados obtenidos indican que nuevamente fue la cepa de <i>Ramlibacter</i> sp., la mejor efectora ya que la inoculaci&oacute;n de las ra&iacute;ces con este aislado favoreci&oacute; la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos en el &aacute;rea radicular de las pl&aacute;ntulas de frijol analizadas. Este resultado, es una clara evidencia que la bacteria <i>Ramlibacter</i> sp., perteneciente a la clase de las &#946;&#45;proteobacterias establece una simbiosis con ra&iacute;ces de <i>Phaseolus vulgaris</i> para inducir la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de aislados bacterianos sobre la promoci&oacute;n de crecimiento en pl&aacute;ntulas de frijol</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados del peso seco, indicaron que el tratamiento con el aislado de <i>Ramlibacter</i> sp., es capaz de promover el crecimiento de la ra&iacute;z de pl&aacute;ntulas de frijol pero no el de la parte a&eacute;rea (v&aacute;stago) (<a href="#f1">Figura 1B</a>). Por otro lado, el perfil de az&uacute;cares solubles (glucosa y fructosa) si cambi&oacute; tanto en la ra&iacute;z como en el v&aacute;stago (<a href="#f2">Figura 2</a>). Este resultado, indica que la promoci&oacute;n de crecimiento ejercida por <i>Ramlibacter</i> sp., sobre la ra&iacute;z de frijol, est&aacute; correlacionada con la acumulaci&oacute;n de az&uacute;cares solubles, lo cual es coherente con el incremento de carbohidratos observado en &oacute;rganos y tejidos en crecimiento (Fait <i>et al.,</i> 2006; Angeles&#45;N&uacute;nez y Tiessen, 2010).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remexca/v6n5/a2f2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los cambios observados en el peso seco de la ra&iacute;z y del contenido de az&uacute;cares solubles en v&aacute;stagos del tratamiento con <i>Ramlibacter</i> sp., no fueron observados en pl&aacute;ntulas tratadas con los otros aislados. Este resultado indica que el efecto de promoci&oacute;n de crecimiento ejercido por <i>Sinorhizobium</i> sp. (INI43&#45;13), <i>Sinorhizobium fredii</i> (INI51&#45;13) y <i>Bradyrhizobium japonicum</i> (INI13&#45;13) en pl&aacute;ntulas de frijol, es m&aacute;s lento comparado con el efecto que ejerce la cepa de <i>Ramlibacter</i> sp. Los cambios observados en el perfil de az&uacute;cares solubles en las ra&iacute;ces de estos aislados, indican que la relaci&oacute;n simbi&oacute;tica de <i>Ramlibacter</i> sp., genera modificaciones metab&oacute;licas que producen cambios en la biomasa de las plantas de frijol (Figuras <a href="#f1">1</a>&#45;<a href="#f3">3</a>)(<a href="#f2">figura 2</a>). Esta idea es coherente con Flores <i>et al.</i> (1999) que indican que la ra&iacute;z es un &oacute;rgano que sintetiza, acumula y secreta una gran variedad de compuestos que favorecen el incremento de biomasa y la interacci&oacute;n planta&#45;microorganismo.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remexca/v6n5/a2f3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los cambios fisiol&oacute;gicos y bioqu&iacute;micos observados en plantas de frijol inoculadas con el aislado de <i>Ramlibacter</i> sp., podr&iacute;a explicarse tambi&eacute;n a trav&eacute;s del n&uacute;mero de n&oacute;dulos formados en las plantas inoculadas con esta bacteria, ya que estas plantas presentaron 2 y 4 veces mas formaci&oacute;n de n&oacute;dulos con respecto a <i>Sinorhizobium</i> sp., y <i>sinorhizobium fredii</i> respectivamente, lo cual favorece la fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico y por ende el incremento en el &aacute;rea radicular y vegetativa (Yadegari <i>et al,</i> 2008; Fiasconaro <i>et al,</i> 2012).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Ramlibacter</i> sp., y <i>Bradyrhizobium japonicum</i> modifican el perfil del contenido de almid&oacute;n en plantas de frijol</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas aisladas de <i>Ramlibacter</i> sp., y <i>Bradyrhizobium japonicum,</i> fueron capaces de inducir la acumulaci&oacute;n de almid&oacute;n en v&aacute;stagos de frijol (<a href="#f3">Figura 3</a>). El incremento en el contenido de almid&oacute;n en plantas de frijol inoculadas con <i>Ramlibacter</i> sp., es una respuesta a lapromoci&oacute;n de crecimiento, la cual se ve reflejada en el incremento del peso seco de las plantas de frijol (Figuras <a href="#f1">1B</a>, <a href="#f3">3</a>). Esto idea se explica a trav&eacute;s de la s&iacute;ntesis de giberelinas que se producen durante el proceso de interacci&oacute;n planta&#45;microorganismo. Estas giberelinas activan genes que sintetizan ARNm, el cual favorece la s&iacute;ntesis de enzimas hidroliticas, como &#945;&#45;amilasa, que desdobla el almid&oacute;n en az&uacute;cares, aportando una fuente importante de &aacute;tomos de carbono a los &oacute;rganos y tejidos vegetales favoreciendo su crecimiento, desarrollo y llenado de grano.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esto es coherente con el incremento del contenido de carbohidratos que se observan en &oacute;rganos y tejidos en desarrollo (Angeles&#45;N&uacute;nez y Fait <i>et al,</i> 2006; Tiessen, 2010). En otros cultivos como cebada y ma&iacute;z, el almid&oacute;n que se acumula en el tallo durante el desarrollo de la planta es utilizado como fuente de carbono para el llenado del grano (Blum, 1998; Mi <i>et al,</i> 2009; Madani <i>et al,</i> 2010). Todos estos cambios que se generan por la removilizaci&oacute;n de compuestos almacenados en los diferentes &oacute;rganos y tejidos de la planta a lo largo de su desarrollo se traducen en cambios importantes de biomasa y de rendimiento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el caso de la acumulaci&oacute;n de almid&oacute;n en plantas tratadas con la cepa <i>Ramlibacter</i> sp., es claro que es una respuesta a los est&iacute;mulos ejercidos por el establecimiento de la simbiosis. Sin embargo, no es el caso para la acumulaci&oacute;n de almid&oacute;n observada en plantas tratadas con la cepa de <i>Bradyrhizobium japonicum,</i> ya que a pesar de ser una bacteria simbi&oacute;tica asociada a la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos y fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno en leguminosas en muchos trabajos e incluso en este, se ha determinado no ser capaz de formar n&oacute;dulos en las ra&iacute;ces de <i>Phaseolus vulgaris;</i> sin embargo, si es capaz de modificar el perfil de carbohidratos en plantas de frijol.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este evento puede ser explicado como un efecto indirecto ejercido por bacteria al haber sido inoculada en la ra&iacute;z. Ya que existen reportes que la colonizaci&oacute;n de la ra&iacute;z es el primer paso importante en la interacci&oacute;n de bacterias ben&eacute;ficas con plantas (Kloepper y Beauchamp, 1992). Para actuar como bacterias promotoras de crecimiento (PGPR), los microorganismos deben ser capaces de colonizar y sobrevivir en la rhizosfera de las plantas. Una vez establecidas en las ra&iacute;ces de las plantas producen compuestos (fitohormonas y sideroforos) que generan efectos antagonistas contra muchos pat&oacute;genos de plantas favoreciendo el crecimiento. Hay estudios en los que se ha determinado que las PGPR inducen la promoci&oacute;n de crecimiento de un amplio rango de hospederos (cereales, leguminosas y &aacute;rboles) por modos de acci&oacute;n directos o indirectos (Beauchamp, 1993; Kapulnik, 1996; Lazarovits y Nowak, 1997).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En un estudio donde se determin&oacute; el potencial de promoci&oacute;n de crecimiento de la cepa Soy 213 de <i>Bradyrhizobium japonicum</i> usando r&aacute;bano como planta modelo, se observ&oacute; que la cepa fue capaz de tener un alto efecto de estimulaci&oacute;n sobre el peso seco (60%) a trav&eacute;s de un modo de acci&oacute;n indirecto (Antoun <i>et al,</i> 1998). Adem&aacute;s se ha reportado que la interacci&oacute;n planta&#45;microorganismo genera cambios metab&oacute;licos importantes por la transici&oacute;n del estado fuente&#45;demanda (sink&#45;source) de los tejidos fotosint&eacute;ticos (Berger <i>et al,</i> 2007) y evidencias mas recientes publicadas por Ezquer <i>et al.</i> (2010) indican que los microorganismos son capaces de emitir compuestos vol&aacute;tiles que cambian el perfil metab&oacute;lico de las plantas generando modificaciones en su crecimiento y desarrollo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se espera que las cepas aisladas y caracterizadas en este trabajo contribuya de manera importante al estudio de las rutas que regulan la interacci&oacute;n planta&#45;microorganismo, as&iacute; como al desarrollo de los biofertilizantes que demanda la agricultura moderna.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se aislaron y caracterizaron molecular y bioqu&iacute;micamente tres cepas de n&oacute;dulos de ra&iacute;ces de soya (INI26&#45;13, INI43&#45;13, INI51&#45;13) y una de n&oacute;dulos de ra&iacute;ces de j&iacute;cama (INI13&#45;13).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cepa de <i>Ramlibacter</i> sp., (INI26&#45;13), fue la mejor efectora de la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos en ra&iacute;ces de frijol, lo cual se vio reflejado en un incremento del peso seco y en cambios en el perfil de carbohidratos tanto en ra&iacute;z como en v&aacute;stago.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas de <i>Ramlibacter</i> sp., (INI26&#45;13) y <i>Bradyrhizobium japonicum</i> (INI13&#45;13) fueron capaces de inducir la acumulaci&oacute;n de almid&oacute;n en v&aacute;stagos de frijol.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados obtenidos con el tratamiento de la cepa <i>Ramlibacter</i> sp., resultan 100% novedosos ya que actualmente no se han reportado efectos de promoci&oacute;n de crecimiento con esta bacteria.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El presente trabajo fue desarrollado con recursos otorgados a trav&eacute;s de proyectos 2013 del INIFAP mediante el convenio N&uacute;m. 15534132023.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura citada</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Allen, O. N. and Allen, E. K. 1981. The <i>Leguminosae;</i> a source book of characteristics, uses, and nodulation. University of Wisconsin Press, Madison. 511&#45;515 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837876&pid=S2007-0934201500050000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Angeles&#45;N&uacute;&ntilde;ez, J. G. and Tiessen A. 2010. Arabidopsis sucrose synthase 2 and 3 module metabolic homeostasis and direct carbon towards starch synthesis in developing seeds. Planta. 232:701&#45;718.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837878&pid=S2007-0934201500050000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Antoun, H. ; Beauchamp, C. J.; Goussard, N.; Chabot, R. and Lalande, R. 1998. Potential of <i>Rhizobium</i> and <i>Bradyrhizobium</i> species as plant growth promoting rhizobacteria on non&#45;legumes: effect on radishes <i>(Raphanus sativa</i> L.). Plant Soil. 204:57&#45;67.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837880&pid=S2007-0934201500050000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Atieno, M.; Herrmann, L.; Okalebo, R. and Lesueur, D. 2012. Efficiency of different formulations of Bradyrhizobium japonicum and effect of co&#45;inoculation of<i>Bacillus subtilis</i> with two different strrains of Bradyrhizobium japonicum. W. J. Microbiol. Biotech. 7:2541&#45;2550.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837882&pid=S2007-0934201500050000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Beauchamp, C. J. 1993. Mode d'action des rhizobact&eacute;ries favorisant la croissance des plantes et potential de leur utilization comme agent de lutte biologique. Phytoprotection. 74:19&#45;27.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837884&pid=S2007-0934201500050000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Berger, S.; Sinha, A. and Roitsch, G. 2007. Plant physiology meets phytopathology: plant primary metabolism and plant&#45;pathogen interactions. J. Exp. Bot. 58:4019&#45;4026.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837886&pid=S2007-0934201500050000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Blum,A. 1998. Improving wheat grain filling under stress by stem reserve mobilization. Euphytica.100:77&#45;83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837888&pid=S2007-0934201500050000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dardanelli, M. S.; Carletti, S. M.; Paulucci, N. S.; Medeot, D. B.; Rodr&iacute;guez, E. A.; Vita, F. A.; Bueno, M.; Fumero, M. V. and Garc&iacute;a, M. B. 2011. Benefits of plant growth&#45;promoting rhizobacteria and rhizobia in agriculture. Microbiol Monographs. 18:1&#45;20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837890&pid=S2007-0934201500050000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Daubenmire, R. F. 1974. Plants and environment. A textbook of autoecology. Wiley, J. and Sons. L. Inc, New York. 422.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837892&pid=S2007-0934201500050000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ezquer, I. Li. J.; Ovecka, M.; Baroja&#45; Fern&aacute;ndez, E&#45;; Mu&ntilde;oz, F. J.; Montero, M.; D&iacute;az de Cerio, J.; Hidalgo, M.; Sesma, M. T.; Bahaji, A.; Etxeberria, E. and Pozueta&#45; Romero, J. 2010. Microbial volatile emissions promote accumulation of exceptionally high levels of starch in leaves in mono and dicotyledonous plants. Plan Cell Physiol. 51:1674&#45;1693.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837894&pid=S2007-0934201500050000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fait, A.; Angelovici, R.; Less, H.; Ohad, I.; Urbancyk&#45;Wochniak, E. and Fernie, A. R. 2006. Arabidopsis seed development and germination is associated with temporally distinct metabolic switches. Plant Physiol. 142:839&#45;854.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837896&pid=S2007-0934201500050000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fiasconaro, M. L.; Gogorcena, Y.; Mu&ntilde;oz, F.; Andueza, D.; S&aacute;nchez&#45;D&iacute;az, M. and Antol&iacute;n, M. C. 2012. Effects of nitrogen source and water availability on stem carbohydrates and cellulosic bioethanol traits of alfalfa plants. Plant Sci. 191&#45;192:16&#45;23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837898&pid=S2007-0934201500050000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Flores, H. E.; Vivanco, J. M. and Loyola&#45; Vargas, V. M. 1999. Radicle biochemistry: the biology of root&#45;specific metabolism. Trends Plant Sci. 4:220&#45;226.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837900&pid=S2007-0934201500050000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">FAO (Food and Agriculture Organization of the United Nations). 1984. Legume inoculants and their use. Rome, Italy: FAO. 1&#45;32 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837902&pid=S2007-0934201500050000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fraysse, N.; Jabbouri, S.; Treilhou, M.; Couderc, F. and Poinsot, V. 2002. Symbiotic conditions induce structural modifications of Sinorhizobium sp. NGR234 surface polysaccharides. Glycobiology. 12:741&#45;748.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837904&pid=S2007-0934201500050000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Freixas, J. A.; Reynaldo, I. M. and Napoles, M. C. 2010. Influencia de la sequ&iacute;a sobre el metabolismo del nitr&oacute;geno fijado durante la simbiosis Bradyrhizobium&#45;soya. Cultivos Tropicales. 31:66&#45;73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837906&pid=S2007-0934201500050000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Graham, P. H. and Parker, C. A. 1964. Diagnostic features in the characterization of the root&#45;nodule bacteria of legumes. Plant Soil. 20:383&#45;396.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837908&pid=S2007-0934201500050000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Heulin, T. ; Barakat, M.; Chisten, R.; Lesourd. M.; Sutra, L.; De Luca, G. and Achouak, W. 2003. Ramlibacter tataouinensis gen. nov., sp. nov., and ramlibacter henchirensis sp. nov., cyst&#45;producing bacteria isolated from subdesert soil in Tunisia. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 53:589&#45;594.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837910&pid=S2007-0934201500050000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ishizawa, S. 1954. Studies on the root&#45;nodule bacteria of leguminous plants. II. The relationship between nodule bacteria and leguminous plants, part 1. From the view of nodule roduction.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837912&pid=S2007-0934201500050000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kapulnik Y. 1996. Plant growth promoting rhizosphere bacteria. <i>In:</i> plant roots the hidden half, Waisel, Y.; Eshel, A. and Kafkafi, U. (Eds.). Marcel, D., N.Y. 769&#45;781.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837914&pid=S2007-0934201500050000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kloepper, J. W. and Beauchamp, C. J. 1992. A review of issues related to measuring colonization of plant roots by bacteria. Can. J. Microbiol. 38:1219&#45;1232.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837916&pid=S2007-0934201500050000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lazarovits, G. and Nowak, J. 1997. Rhizobacteria for improvement of plant growth and establishment, HortScience. 32:188&#45;192.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837918&pid=S2007-0934201500050000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lightfoot, D. A. 2008. Soybean genomics: developments through the use of cultivar "Forrest". Intern. J. Plant Gen. 793158:1&#45;22.</font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ludwing, F.; Dawson, T. E.; Prins, H. H. T.; Berendse, F. and de Kroon, H. 2004. Below&#45;ground competition between trees and grasses may overwhelm the facilitative effects of hydraulic lift. Ecol Lett. 7:623&#45;631.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837921&pid=S2007-0934201500050000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Madani, A.; Shirani&#45; Rad, A.; Pazoki, A.; Nourmohammadi, G. and Zarghami, R. 2010. Wheat <i>(Triticum aestivum</i> L.) grain filling and dry matter partitioning responses to source: sink modifications under postanthesis water and nitrogen deficiency. Acta Sci. Agron. 32:145&#45;151.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837923&pid=S2007-0934201500050000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Meza, G. J. C. 2010. Acumulaci&oacute;n de nitr&oacute;geno en suelos y residuos vegetales de un cultivo con dos variedades de j&iacute;cama <i>(Pachyrhizuserosus).</i> Tesis de ingenier&iacute;a. Facultad de agrobiolog&iacute;a. 25&#45;32 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837925&pid=S2007-0934201500050000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mi, G.; Chen, F. and Zhang, F. 2009. Grain filling rate is limited by insufficient sugar supply in the large&#45;grain wheat cultivar. J. Plant Breed. Crop Sci. 1:60&#45;64.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837927&pid=S2007-0934201500050000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Olivares&#45; S&aacute;enz, E. 1994. Paquete de dise&ntilde;os experimentales FAUANL versi&oacute;n 2.5, Facultad de Agronom&iacute;a UANL, Mart&iacute;n N. L.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837929&pid=S2007-0934201500050000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pueppke, S. G. and Broughton, W. J. 1999. <i>Rhizobium sp.</i> strain NGR234 and <i>R. fredii</i> USDA257 share exceptionally broad, nested host ranges. Mol. Plant&#45; Microbe Interact. 12:293&#45;318.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837931&pid=S2007-0934201500050000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rispaila, N.; Kalo, P.; Kissb, G. B.; Ellisc, N. T. H.; Gallardod, K.; Richard, D.; Thompsond, Pratsa, E.; Larrainzare, E.; Ladrerae, R.; Gonz&aacute;lez, E. M.; Arrese&#45; Igore, C.; Fergusong, B.; J.; Gresshoffg, P. M. and Rubiales, D. 2010. Model legumes contribute to faba bean breeding. Field Crop Res. 253&#45;262.</font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sadowsky, M. J.; Cregan, P. B. and Keyser, H. H. 1988. Nodulation and nitrogen fixation of <i>Rhizobium fredii</i> with <i>Phaseolus vulgaris</i> genotypes. Appl. Environ. Microbiol. 54:1907&#45;1910.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837934&pid=S2007-0934201500050000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stephan&#45; Sarkissian, G. and Grey, D. 1990. Growth determination and medium analysis. Plant Cell and Tissue Culture. Methods in Molecular Biology. 6:13&#45;27.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837936&pid=S2007-0934201500050000200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Taha, S. M.; Mahmoud, S. A. and Salem, S. H. 1970. Differentiation of root&#45;nodule bacteria. <i>In:</i> lizuka, L. and Hasegawa, T. (Eds.). Culture collections of microorganisms. University Park Press, Baltimore. 523&#45;539 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837938&pid=S2007-0934201500050000200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Walker, T. S.; Pal&#45; Bais, H.; Grotewold, E. and Vivanco, J. 2003. Root exudation and rhizosphere biology. Plant Physiol. 132:44&#45;51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7837940&pid=S2007-0934201500050000200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yadegari, M.; Rahmani, H.; Noormohammadi, A. and Ayneband, G. 2008. Evaluation of bean <i>(Phaseolus vulgaris)</i> seeds inoculation with Rhizobium phaseoli and plant growth promoting rhizobacteria on yield and yield components. Pak. J. Biol. 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