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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Las plantas medicinales de México como fuente de compuestos activos contra la leishmaniasis]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Nacional Autónoma de México Facultad de Medicina Unidad de Medicina Experimental]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Leishmaniasis is considered as an uncontrolled emerging disease and is endemic in 98 countries. Anually, is registered about 2 million cases of cutaneous, 500,000 cases of visceral-type and 60,000 persons die. In Mexico it is known as Chiclero's ulcer and is reported in 22 states. For its treatment, pentavalent antimonial drugs are administered, these drugs cause severe side effects are high cost and drug resistance cases have been reported. One alternative to currently available drugs is the search for active molecules in medicinal plants, dihydrocorynantheine, corynantheine and corynantheidine were active against Leishmania major; harmane, pleiocarpine, buchtienine, luteolin and quercetin are active against L. donovani. In Mexico has been evaluated about 25 medicinal plants being the most active and most investigated Tridax procumbens, Lonchocarpus xuul and Pentalinon andrieuxii. From these plants have been isolated the active compounds with IC50 <30 µg/mL.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	     <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Revisi&oacute;n Bibliogr&aacute;fica</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Las plantas medicinales de M&eacute;xico como fuente de compuestos activos contra la leishmaniasis</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Mexican medicinal plants as source of active compounds against leishmaniasis</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Mar&iacute;a Adelina Jim&eacute;nez&#45;Arellanes,<sup>1</sup> Lorena Alamilla&#45;Fonseca,<sup>2</sup> Gabriel Alfonso Guti&eacute;rrez&#45;Rebolledo<sup>1</sup></b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Unidad de Investigaci&oacute;n M&eacute;dica en Farmacolog&iacute;a, Hospital de Especialidades, CMN Siglo XXI, IMSS.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><i><font face="verdana" size="2"><sup>2</sup> Laboratorio de Inmunoparasitolog&iacute;a, Unidad de Medicina Experimental, Facultad de Medicina, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico.</font></i></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Correspondencia:&nbsp;</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Dra. Adelina Jim&eacute;nez Arellanes&nbsp;    <br> U.I.M. en Farmacolog&iacute;a, Hospital de Especialidades, CMN    <br> Siglo XXI, IMSS.    <br> Av. Cuauht&eacute;moc 330, Col. Doctores 06720, Delg.    <br> Cuauht&eacute;moc, M&eacute;xico, D.F.    <br> Tel. 56 27 69 00 ext 21367    <br> Emal:</i> <a href="mailto:adelinajim08@prodigy.net.mx">adelinajim08@prodigy.net.mx</a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fecha de recepci&oacute;n: 05 de febrero de 2014    <br> 	Fecha de recepci&oacute;n de modificaciones: 30 de junio de 2014    <br> 	Fecha de aceptaci&oacute;n: 07 de julio de 2014</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La leishmaniasis es una enfermedad emergente no controlada y end&eacute;mica de 98 pa&iacute;ses. Anualmente se registran 2 millones de tipo cut&aacute;nea, 500,000 de tipo visceral y 60,000 mueren por esta causa. En M&eacute;xico se conoce como <i>&uacute;lcera del chiclero</i> y se presenta en 22 estados. El tratamiento es con f&aacute;rmacos antimoniales pentavalentes de alto costo y muy t&oacute;xicos. Una alternativa es la b&uacute;squeda de mol&eacute;culas activas en las plantas medicinales, donde se reporta que dihidrocorinanteina, corinanteina y corinanteidina resultaron activos contra <i>L. major;</i> harmano, pleiocarpina, buchtienina, luteolina y quercetina fueron activos contra <i>L. donovani.</i> En M&eacute;xico se han evaluado aproximadamente 25 plantas medicinales siendo las m&aacute;s activas y las m&aacute;s investigadas <i>Tridax procumbens, Lonchocarpus xuul</i> y <i>Pentalinon andrieuxii,</i> de las cuales han aislado los compuestos activos cuyo CI<sub>50</sub> &lt; 30 &micro;g/mL contra <i>L. mexicana.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> plantas medicinales, leishmaniasis, compuestos naturales activos.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Leishmaniasis is considered as an uncontrolled emerging disease and is endemic in 98 countries. Anually, is registered about 2 million cases of cutaneous, 500,000 cases of visceral&#45;type and 60,000 persons die. In Mexico it is known as Chiclero's ulcer and is reported in 22 states. For its treatment, pentavalent antimonial drugs are administered, these drugs cause severe side effects are high cost and drug resistance cases have been reported. One alternative to currently available drugs is the search for active molecules in medicinal plants, dihydrocorynantheine, corynantheine and corynantheidine were active against <i>Leishmania major;</i> harmane, pleiocarpine, buchtienine, luteolin and quercetin are active against <i>L. donovani.</i> In Mexico has been evaluated about 25 medicinal plants being the most active and most investigated <i>Tridax procumbens, Lonchocarpus xuul</i> and <i>Pentalinon andrieuxii.</i> From these plants have been isolated the active compounds with IC<sub>50</sub> &lt;30 &micro;g/mL.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> Medicinal plants, leishmaniasis, active natural compounds.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La leishmaniasis es causada por diferentes especies de <i>Leishmania</i> y est&aacute; clasificada por la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud (OMS) dentro de las enfermedades emergentes con categor&iacute;a uno y no controladas, tambi&eacute;n es considerada por este organismo como una de las seis enfermedades tropicales m&aacute;s importantes. Es end&eacute;mica en 98 pa&iacute;ses (tropicales y subtropicales) y es m&aacute;s frecuente en hombres. Hoy en d&iacute;a se estima que en el mundo existen 20 millones de personas infectadas, 350 millones est&aacute;n en riesgo y se reporta una incidencia de dos a tres millones de nuevos casos por a&ntilde;o.<sup>1,2</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al a&ntilde;o se presenta de 1.5 a 2 millones de casos de leishmaniasis cut&aacute;nea (la forma m&aacute;s frecuente y afecta tanto a ni&ntilde;os como adultos), 500,000 casos de tipo visceral y 60,000 personas mueren por esta &uacute;ltima causa. En M&eacute;xico, el principal agente causal es <i>L. mexicana,</i> su presencia se ha reportado en 22 estados y es considerada end&eacute;mica en Coahuila, Nuevo Le&oacute;n, Tamaulipas, Veracruz, Tabasco, Campeche, Yucat&aacute;n, Quintana Roo, Chiapas, Oaxaca, Guerrero, Michoac&aacute;n, Jalisco, Nayarit, San Luis Potos&iacute;, Morelos, Puebla e Hidalgo, en donde com&uacute;nmente se le conoce como "&uacute;lcera de los chicleros.<sup>3&#45;6</sup> Recientemente se han reportado casos de coinfecci&oacute;n leshmaniasis con VIH/SIDA, los cuales son de pobre pron&oacute;stico. La infecci&oacute;n por este par&aacute;sito depende en gran media del estado del sistema inmunol&oacute;gico.<sup>6</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la actualidad, para tratar la leishmaniasis se emplean f&aacute;rmacos de primera elecci&oacute;n como estibogluconato s&oacute;dico conocido comercialmente como Pentostam y el antimoniato de meglumine (nombre comercial Glucantime). Una siguiente opci&oacute;n es el isotianato de pentamidina (nombre comercial pentamidina), la anfotericina B (Fungizona o Ambisome), miltefosina y sulfato de paramomicina (Aminosidina); aunque esta &uacute;ltima opci&oacute;n no es muy empleada en M&eacute;xico y no es muy efectivo cuando se administra oralmente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los f&aacute;rmacos antimoniales fueron desarrollados hace m&aacute;s de 70 a&ntilde;os y ya no son muy efectivos debido a la f&aacute;rmaco resistencia que ha desarrollado el par&aacute;sito,<sup>2,6&#45;8</sup> aunado al escaso desarrollo en este tipo de medicamentos. Estos f&aacute;rmacos provocan severos efectos secundarios como insuficiencia renal, pancreatitis, mialgia, neuropat&iacute;a perif&eacute;rica, hepatotoxicidad y cardiotoxicidad, aunado a que el tratamiento es prolongado (por m&aacute;s de 30 d&iacute;as, dependiendo de la evoluci&oacute;n del paciente), la administraci&oacute;n es por v&iacute;a parenteral, son caros, no siempre efectivos por la resistencia del par&aacute;sito a los medicamentos disponibles, en ocasiones el paciente no tiene acceso a los sistemas de salud y no pueden utilizarse en personas que padecen insuficiencia renal, hep&aacute;tica o cardiaca; ni en aquellas con tuberculosis.<sup>6</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad leishmanicida de plantas medicinales y de compuestos puros</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El desarrollo de medicamentos para tratar enfermedades parasitarias como la leishmaniasis ha sido escaso, debido a que estas enfermedades se presentan con mayor frecuencia en pa&iacute;ses en v&iacute;as de desarrollo y a las industrias farmac&eacute;uticas no les redit&uacute;a mayores ganancias debido a que tienen que desarrollar medicamentos de bajo costo para que sean accesible a la poblaci&oacute;n de condici&oacute;n socioecon&oacute;mica baja.<sup>6,9</sup> Una alternativa a los f&aacute;rmacos sint&eacute;ticos es la b&uacute;squeda de mol&eacute;culas activas en fuentes naturales como las plantas medicinales utilizadas en el tratamiento de la leishmaniasis, por su uso ancestral, por su contenido de compuestos y diversidad estructural.<sup>6</sup> Adem&aacute;s, la OMS ha enfatizado la urgente necesidad por desarrollar nuevos f&aacute;rmacos para el tratamiento de la leishmaniasis.<sup>2</sup></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este sentido, podemos mencionar que las plantas medicinales biosintetizan numerosos metabolitos secundarios, por lo que pueden constituir una fuente importante de agentes leishmanicidas.<sup>9</sup> Los productos naturales han jugado y juegan un papel importante en la terap&eacute;utica actual; entre 1981 al 2006 se obtuvieron 1184 nuevos f&aacute;rmacos de origen natural y el 28% de estos provinieron de plantas. Por otro lado, el 24 % de los nuevos f&aacute;rmacos sint&eacute;ticos presentan como mol&eacute;cula base o bien son derivados de mol&eacute;culas activas obtenidas de plantas medicinales.<sup>6,10</sup> Otro reporte indica que entre el 2000 y 2005, se introdujeron al mercado 23 nuevos f&aacute;rmacos de origen natural, los cuales presenta diversidad estructural y biol&oacute;gica. Por lo que, los productos naturales constituyen una riqueza inconmensurable de estructuras qu&iacute;micas que han sido y seguir&aacute;n siendo una fuente importante de nuevos f&aacute;rmacos o bien pueden constituir mol&eacute;culas prototipo para el desarrollos de nuevas sustancias activas.<sup>11,12</sup> Algunos ejemplos de principios activos obtenidos de plantas medicinales y que se utilizan en la terap&eacute;utica actual son paclitaxel (aislado de <i>Taxus brevifolia),</i> camptotecina (aislado de <i>Camptohteca acuminata),</i> vinblastina y vincristina (aislados de <i>Catharanthus roseus),</i> estos compuestos son utilizados hoy en d&iacute;a en la terapia de diversos tipos de c&aacute;ncer.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La morfina (aislados de <i>Papaver somniferum)</i> es empleado como analg&eacute;sico; el clorhidrato de apomorfina (derivado de la morfina) y el bromuro de galantamina (alcaloide aislado de <i>Galanthus nivalis)</i> son utilizados en el tratamiento de la enfermedad del Parkinson. La code&iacute;na (aislado de <i>P. somniferum)</i> es empleada como antitus&iacute;geno. Otros ejemplos importantes lo constituyen el bromuro de tiotropio (es un derivado de la atropina aislada de <i>Atropa belladona)</i> y se utiliza para el tratamiento de broncoespasmos asociados al EPOC (enfermedad pulmonar obstructiva cr&oacute;nica), la nitisona aislado de <i>Callistemon citrinus,</i> esta sustancia es empleada en la tirosinemia tipo 1 hereditaria.<sup>12</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sobre el desarrollo de compuestos activos contra <i>Leishmania,</i> a la fecha solo cuatro mol&eacute;culas son candidatos potenciales para el desarrollo de f&aacute;rmacos antileishmania (estas sustancias est&aacute;n en fase I/II de investigaci&oacute;n) como la miltefosine (alquilfosfol&iacute;pido) que se usa en la India desde 2002 y en Colombia fue autorizado en el 2005 y est&aacute; en fase cl&iacute;nica de investigaci&oacute;n para determinar su posible uso a nivel mundial,<sup>2</sup> paranomicina (aminoglic&oacute;sido), la 8&#45;aminoquinolina sitamaquina y la berberina (este &uacute;ltimo es un alcaloide de origen vegetal, aislado de <i>Beberis vulgaris),</i> este compuesto es empleado para este padecimiento desde hace m&aacute;s de 50 a&ntilde;os y se ha demostrado su actividad <i>in vitro</i> e <i>in vivo</i>.<sup>6,13,14</sup> Recientemente, algunos metabolitos secundarios como naftoquinonas, lignanos, neolignanos, alcaloides, chalconas y triterpenos han sido reportados con actividad leishmanicida.<sup>15&#45;17</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dentro de estos metabolitos secundarios destacan algunos alcaloides aislados de especies vegetales que han demostrado significativa actividad leishmanicida <i>in vitro.</i> Algunos ejemplos son la isoguattouregidina (<b><a href="#f1">1</a></b>), alcaloide ind&oacute;lico aislado de <i>Guatteria foliosa</i> que mostr&oacute; una concentraci&oacute;n inhibitoria media (CI<sub>50</sub>) = 100 <i>&micro;</i>g/mL contra <i>L. donovani</i> y <i>L. amazonensis;</i> la coronaridina (<b><a href="#f2">2</a></b>, aislado de <i>Peschirea australis)</i> mostr&oacute; una CI<sub>50</sub> = 12 <i>&micro;</i>g/mL contra <i>L. amazonensis.</i> Los alcaloides ind&oacute;licos aislados de <i>Corynanthe pachyceras,</i> identificados como dihidrocorinanteina (<b><a href="#f3">3</a></b>), corinanteina (<b><a href="#f4">4</a></b>) y corinanteidina (<b><a href="#f5">5</a></b>) resultaron activos contra <i>L. major</i> con CI<sub>50</sub>~30 <i>&micro;</i>M<b>.</b> Los alcaloides ind&oacute;licos: harmano (<b><a href="#f6">6</a></b>), pleiocarpina (<b><a href="#f7">7</a></b>) y buchtienina (<b><a href="#f8">8</a></b><a href="#f8"></a>) aislados de la corteza y hojas de <i>Kopsia griffithii</i> fueron activos contra promastigotes de <i>L. donovani</i> mostrando una CI<sub>50</sub> = 6.25, 25 y 1.56 <i>&micro;</i>g/mL, respectivamente;<sup>16&#45;18</sup> la desventaja es que estos alcaloides han sido evaluados en diferentes cepas de <i>Leishmania</i> y en diferentes estadios y ninguno de estos compuestos est&aacute; en investigaci&oacute;n cl&iacute;nica. Otros alcaloides activos fueron la ramiflorina A y B, (<b><a href="#f9">9</a></b> y <b><a href="#f10">10</a></b>, aislados de <i>Aspidosperma ramiflorum),</i> estos compuestos mostraron una dosis letal media (DL<sub>50</sub>) = 16.3 y 4.9 <i>&micro;</i>g/mL contra promastigotes de <i>L. amazonensis.</i><sup>16</sup> El alcaloide 4&#45;hidroxi&#45;1&#45;tetralona (<b><a href="#f11">11</a></b>) aislado de la corteza de <i>Ampelocera edentula,</i> result&oacute; activo contra promastigotes de <i>L. brazilensis, L. amazonensis</i> y <i>L. donovani,</i> mostrando CI<sub>50</sub> = 10 <i>&micro;</i>g/mL.<sup>19</sup></font></p> 	    <p align="center"><a name="f1"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f1.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f2"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f2.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f3"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f3.jpg"></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f4"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f4.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f5"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f5.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f6"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f6.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f7"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f7.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f8"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f8.jpg"></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f9"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f9.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f10"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f10.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f11"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f11.jpg"></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado, existen otros trabajos que describen la actividad <i>in vitro</i> de extractos de plantas medicinales como <i>Ambrosia miratima</i> y <i>Acacua nilotica</i> con valores de IC<sub>50</sub> &lt; 8 <i>&micro;</i>g/mL;<sup>20</sup> pero de estas especies vegetales no han aislado los compuestos responsables de la actividad. El extracto etan&oacute;lico de las hojas y las fracciones de diclorometano y cloroformo de <i>Azadirachta indica</i> mostraron una CI<sub>50</sub> = 38, 3.9 y 1.2 <i>&micro;</i>g/mL contra promastigotes de <i>L. amazonensis,</i> respectivamente y contra amastigotes, la CI<sub>50</sub> fue de 9.8, 1.1 y 0.6 <i>&micro;</i>g/mL.<sup>9</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La fracci&oacute;n rica en &aacute;cido torm&eacute;ntico (<b><a href="#f12">12</a></b>), &aacute;cido 2&#945;,3 &#946;&#45;dihidroxiursan&#45;12&#45;en&#45;28&#45;oico (<b><a href="#f13">13</a></b>), &aacute;cido 2&#945;,3 &#946;&#45;dihidroxiolean&#45;12&#45;en&#45;oico (<b><a href="#f14">14</a></b>), &aacute;cido urs&oacute;lico (<b><a href="#f15">15</a></b>) y &aacute;cido olean&oacute;lico (<b><a href="#f16">16</a></b>) de <i>Pourouma guianensis</i> result&oacute; muy activa contra promastigotes de <i>L. amazonensis</i> mostrando una CI<sub>50</sub> = 100 <i>&micro;</i>g/mL; adem&aacute;s, el &aacute;cido urs&oacute;lico (<b><a href="#f15">15</a></b>) y &aacute;cido olean&oacute;lico (<b><a href="#f16">16</a></b>), fueron tambi&eacute;n muy activos contra los amastigotes intracelulares (CI<sub>50</sub> = 27 y 11 <i>&micro;</i>g/mL, respectivamente). Estos compuestos resultaron m&aacute;s activos que el glucantime (CI<sub>50</sub>= 83 <i>&micro;</i>g/mL).<sup>15</sup> Una revisi&oacute;n adicional describe que las flavonas luteolina (<b><a href="#f17">17</a></b>) y quercetina (<b><a href="#f18">18</a></b>) (aisladas de <i>Vitex negundo</i> y <i>Fagopyrum esculentum)</i> fueron activas contra amastigotes de <i>L. donovani,</i> mostrando una CI<sub>50</sub> = 12.5 y 45.5 <i>&micro;</i>M; la chalcona identificada como licochalcona A (<b><a href="#f19">19</a></b>, aislada de <i>Glycyrrhiza</i> sp) mostr&oacute; una CI<sub>50</sub> = 0.9 <i>&micro;</i>g/mL (2.7 <i>&micro;</i>M) contra amastigotes de <i>L. donovani</i> y contra promastigotes de <i>L. major</i> mostr&oacute; un CI<sub>50</sub> = 7.2 <i>&micro;</i>g/mL (21 <i>&micro;</i>M).</font></p> 	    <p align="center"><a name="f12"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f12.jpg"></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f13"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f13.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f14"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f14.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f15"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f15.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f16"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f16.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f17"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f17.jpg"></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f18"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f18.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f19"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f19.jpg"></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La 2',6'&#45;dihidroxi&#45;4'&#45;metoxichalcona (<b><a href="#f20">20</a></b>, aislada de <i>Piper aduncum)</i> inhibe el crecimiento de promastigotes y amastigotes intracelulares de <i>L. amazonensis,</i> las dosis efectiva media (DE<sub>50</sub>) fueron de 0.5 <i>&micro;</i>g/mL (1.9 <i>&micro;</i>M) y de 24 <i>&micro;</i>g/mL (89 <i>&micro;</i>M), respectivamente. La formulaci&oacute;n de este compuesto (440 <i>&micro;</i>g) con nanopart&iacute;culas polim&eacute;ricas y administrada por 42 d&iacute;as a ratones BALB/c infectados con <i>L. amazonensis</i> reduj&oacute; en un 53% las &uacute;lceras cut&aacute;neas y el compuesto puro reduj&oacute; s&oacute;lo el 23%.<sup>17,21</sup> Un glucosecoiridoide, amarogentina (<b><a href="#f21">21</a></b>) aislado de <i>Swertia chirata</i> fue evaluado <i>in vivo</i> junto con dos formulaciones (liposomal y niosomal) en ratones infectados con <i>L. donovani;</i> la formulaci&oacute;n niosomal&#45;amarogentina reduj&oacute; en un 90% la carga de par&aacute;sito en el bazo de los animales tratados.<sup>17,22</sup></font></p> 	    <p align="center"><a name="f20"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f20.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f21"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f21.jpg"></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La plumbagina (<b><a href="#f22">22</a></b>), naftoquinona aislada de la corteza de <i>Pera benensis</i> result&oacute; muy activo contra promastigotes y amastigotes intracelulares de <i>L. donovani</i> (CI<sub>50</sub> = 0.21 <i>&micro;</i>M); estudios <i>in vivo</i> demostraron que la plumbagina retard&oacute; el desarrollo de <i>L. amazonensis</i> y <i>L. venezuelensis.</i> El tratamiento local de una simple lesi&oacute;n con 8,8'&#45;biplumbagina (<b><a href="#f23">23</a></b>) result&oacute; mejor que el tratado con glucantime (f&aacute;rmaco de referencia). Adem&aacute;s, la plumbagina (<b><a href="#f22">22</a></b>) y 8,8'&#45;biplumbagina (<b><a href="#f23">23</a></b>) fueron muy activas <i>in vitro</i> contra amastigotes de <i>L. amazonensis</i> y contra promastigotes de <i>L. brazilensis, L. amazonensis</i> y <i>L. donovani</i> mostrando valores de CI<sub>90</sub> = 5 <i>&micro;</i>g/mL.<sup>17,23&#45;25</sup></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f22"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f22.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f23"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f23.jpg"></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las saponinas mesabalides III (<b><a href="#f24">24</a></b>) y VI (<b><a href="#f25">25</a></b>), obtenidas de <i>Maesa balansae</i> resultaron muy activas contra amastigotes intracelulares de <i>L. infantum</i> (CI<sub>50</sub> = 7 y 14 ng/mL, respectivamente); a pesar de mostrar importante actividad leishmanicida, estos compuestos resultaron altamente citot&oacute;xicos, por lo que no constituyen candidatos a seguir investigando. La saponina esteroidal racem&oacute;sido A (<b><a href="#f26">26</a></b>, aislada de <i>Asparagus racemosus)</i> induce apoptosis en promastigotes y amastigotes de <i>L. donovani</i> y mostr&oacute; valores de CI<sub>50</sub> = 1.31 y 0.61 <i>&micro;</i>g/mL, respectivamente.<sup>17</sup> La &#945;&#45; y &#946;&#45;hederina (<b><a href="#f27">27</a></b>,<b> <a href="#f28">28</a></b>) y hederacholchisido A (<b><a href="#f29">29</a></b>) obtenidos de <i>Hedera h&eacute;lix</i> mostraron actividad leishmanicida, siendo el compuesto <b><a href="#f29">29</a></b> el m&aacute;s activo, cuya CI<sub>50</sub> fue de 1.2 y 0.053 <i>&micro;</i>M contra promastigotes y amastigotes intracelulares de <i>L. infantum,</i> respectivamente.<sup>17</sup> La diospirina (<b><a href="#f30">30</a></b>) fue aislada de <i>Euclea natalensis</i> y result&oacute; activa contra promastigotes de <i>L. donovani.</i><sup>26,27</sup></font></p> 	    <p align="center"><a name="f24"></a></p>         <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f24.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f25"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f25.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f26"></a></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f26.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f27"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f27.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f28"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f28.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f29"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f29.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f30"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f30.jpg"></p>      	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como se puede observar, en la literatura se describen diversos tipos de metabolitos secundarios aislados de plantas medicinales que tiene importante actividad leishmanicida; sin embargo, algunos compuestos activos resultaron t&oacute;xicos, por lo que no constituyen candidatos para seguir investigando.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el caso de M&eacute;xico, para tratar la leishmaniasis se emplea diversas especies vegetales y algunos tratamientos no convencionales. Por ejemplo, utilizan termoterapia que consiste en aplicar aceite de autom&oacute;vil caliente vertido directamente en la lesi&oacute;n, aplican monedas o utensilios de metal al rojo vivo, huesos de animales calientes o el foco caliente colocadas sobre la &uacute;lcera y tambi&eacute;n emplean la crioterapia que consiste en colocar hielo sobre la lesi&oacute;n. En algunas ocasiones llegan a emplear polvo de penicilina sobre la herida o usan pomadas antif&uacute;ngicas (como el miconazol, ketoconazol o itraconazol). Tambi&eacute;n suelen utilizar &aacute;cido ac&eacute;tico, &aacute;cido b&oacute;rico, &aacute;cido sulf&uacute;rico (&aacute;cido de bater&iacute;a de carro), alcohol, formalina, per&oacute;xido de hidr&oacute;geno, alumbre, sulfato de cobre entre otros<sup>14,28</sup> S&iacute; bien estos tratamientos solo deforman y agudizan la inflamaci&oacute;n, los pacientes siguen estos m&eacute;todos al no saber que se trata de una parasitosis y que requiere de atenci&oacute;n m&eacute;dica profesional. Algunas especies vegetales que son empleadas com&uacute;nmente en M&eacute;xico para tratar la lieshmaniasis se describen en la <a href="#t1">Tabla 1</a>.<sup>14,29</sup></font></p>  	    <p align="center"><a name="t1"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3t1.jpg"></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A pesar que en M&eacute;xico se emplean diversas plantas medicinales para tratar principalmente las infecciones cut&aacute;neas provocadas por <i>Leishmania;</i> a la fecha, existen escasos trabajos que exploran la actividad <i>in vitro</i> y/o <i>in vivo</i> de estas. Peraza&#45;S&aacute;nchez y col. describen la evaluaci&oacute;n <i>in vitro</i> de los extractos metan&oacute;licos de 18 plantas medicinales del estado de Yucat&aacute;n contra promastigotes de <i>L. mexicana</i> y encontraron que los extractos de <i>Aphelandra scabra</i> (hojas), <i>Byrsonima bucidaefolia</i> (corteza), <i>B. crassifolia</i> (corteza), <i>Clusia flava</i> (hojas), <i>Cupania dentata</i> (corteza), <i>Diphysa carthagenensis</i> (hojas), <i>Dorstenia contrajerva</i> (planta completa), <i>Milleria quinqueflora</i> (ra&iacute;z), <i>Tridax procumbens</i> (planta completa) y <i>Vitex gaumeri</i> (corteza) fueron los m&aacute;s activos, mostrando una CI<sub>50</sub> &lt; 50 <i>&micro;</i>g/mL.<sup>30</sup> Este mismo grupo evalu&oacute; 15 extractos, fracciones y algunos compuestos puros obtenidos de <i>Urechites andrieuxii</i> (Sin. <i>Pentalinon andrieuxii), Colubrina greggii, Dorstenia contrajerva</i> y <i>Tridax procumbens.</i> Un compuesto identificado como NCG&#45;5C y la fracci&oacute;n DCG&#45;3A (de baja polaridad) aislados de <i>C. greggii</i> y la fracci&oacute;n de baja polaridad TPZ&#45;24 aislada de <i>T. procumbes</i> fueron los m&aacute;s activos contra <i>L. aethiopica;</i> los cuales mostraron una DL<sub>50</sub> de 62.4, 7.2 y 18.5 <i>&micro;</i>g/mL contra promastigotes, respectivamente y la DL<sub>50</sub> contra amastigotes fue de 94.2, 27.1, 95.2 <i>&micro;</i>g/mL; en este trabajo tambi&eacute;n evaluaron los mismos extractos y compuestos puros contra <i>L. major</i> y <i>L. tropica</i> pero resultaron poco activos.<sup>2</sup> El extracto metan&oacute;lico de <i>T. procumbens</i> y el compuesto 3(S)&#45;16,17&#45;didehidrofalcarinol u oxilipina (<b><a href="#f31">31</a></b>) inhibieron el crecimiento de promastigotes de <i>L. mexicana</i> mostrando un CI<sub>50</sub> = 3 y 0.478 <i>&micro;</i>g/mL, respectivamente. Adem&aacute;s la oxilipina pura (<b><a href="#f31">31</a></b>) result&oacute; activa contra amastigotes (estadio intracelular) de <i>L. mexicana.</i><sup>31,32</sup> Recientemente, Gamboa&#45;Le&oacute;n y col. han descrito que el extracto MeOH de la planta total de <i>T. procumbens</i> mezclado con el extracto acuoso liofilizado de <i>Allium sativa</i> (bulbos) reduce significativamente las lesiones cut&aacute;neas provocada con promastigotes de <i>L. mexicana</i> (Hd18&#45;MHET/MX/97/Hd18) en ratones hembras CD&#45;1, al ser tratados por dos semanas con la mezcla de extractos. Los extractos por separados tambi&eacute;n redujeron la formaci&oacute;n de lesiones en menor porcentaje que la mezcla. <sup>33</sup></font></p>  	    <p align="center"><a name="f31"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f31.jpg"></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado, este grupo describe que el extracto MeOH de las hojas y ra&iacute;ces de <i>Urechites andrieuxii</i> (sin. <i>Pentalinon andrieuxii)</i> colectado en Champoton, M&eacute;xico (colecta I) fue el m&aacute;s activo contra promastigotes de <i>L. braziliensis, L. amazonensis</i> y <i>L. donovanii,</i><sup>30</sup> tambi&eacute;n resultaron activos contra promastigotes de <i>L. mexicana.</i><sup>34,35</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La fracci&oacute;n hex&aacute;nica obtenida del extracto MeOH de las ra&iacute;ces de <i>P. andrieuxxii</i> fue evaluada en el modelo <i>in vivo</i> de leishmaniasis cut&aacute;nea, en ratones machos C57BL/6 infectados con promastigotes de <i>L. mexicana.</i> La aplicaci&oacute;n t&oacute;pica de 10 <i>&micro;</i>g de la fracci&oacute;n hex&aacute;nica por 6 semanas redujo significativamente el tama&ntilde;o de las lesiones respecto al veh&iacute;culo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tambi&eacute;n esta fracci&oacute;n inhibi&oacute; el crecimiento de promastigotes <i>L. mexicana in vitro,</i> mostrando una CI<sub>50</sub>= 43.04 <i>&micro;</i>g/mL, en macr&oacute;fagos infectados con amastigotes, la CI<sub>50</sub>= 4.1 <i>&micro;</i>g/mL y en c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas infectadas con amastigotes de <i>L. mexicana</i> la CI<sub>50</sub> fue de 11.06 <i>&micro;</i>g/mL.<sup>36</sup> De la fracci&oacute;n hex&aacute;nica activa, obtenida por proceso de partici&oacute;n a partir del extracto MeOH (activo) de las ra&iacute;ces de <i>U. andrieuxii</i> (sin. <i>P. andrieuxxii)</i> aislaron colestra&#45;4,20,24&#45;trien&#45;3&#45;ona o pentalinosterol (<b><a href="#f32">32</a></b>), 24&#45; metilcolesta&#45;4&#45;24(28)&#45;dien&#45;3&#45;ona (<b><a href="#f33">33</a></b>), colest&#45;4&#45;en&#45;3&#45;ona (<b><a href="#f34">34</a></b>), 6,7&#45;dihidroneridienona (<b><a href="#f35">35</a></b>) y neridienona (<b><a href="#f36">36</a></b>), los cuales inhibieron el crecimiento de promastigotes de <i>L. mexicana,</i> mostrando una CI<sub>50</sub> &lt;30 <i>&micro;</i>g/mL; estos compuestos (<b><a href="#f32">32</a>&#45;<a href="#f36">36</a></b>) junto con colest&#45;5,20,24&#45;trien&#45;3&#946;&#45;ol (<b><a href="#f37">37</a></b>) resultaron m&aacute;s activos contra amastigotes de <i>L. mexicana</i> (CI<sub>50</sub> &lt; 14.5 <i>&micro;</i>g/mL), estas evaluaciones fueron realizadas <i>in vitro.</i><sup>37</sup> Del extracto EtOH de las hojas de <i>P. andrieuxxii</i> aislaron el &aacute;cido betul&iacute;nico, el cual resulto inactivo contra <i>L. amazonensis, L. braziliensis,</i> mostrando un CI<sub>50</sub> &gt;200 <i>&micro;</i>M.<sup>38</sup></font></p>  	    <p align="center"><a name="f32"></a></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f32.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f33"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f33.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f34"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f34.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f35"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f35.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f36"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f36.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f37"></a></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f37.jpg"></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El extracto hex&aacute;nico a 10 <i>&micro;</i>g/mL de las ra&iacute;ces de <i>P. andrieuxii</i> fue el m&aacute;s activo contra promastigotes de <i>L. mexicana,</i> el efecto observado fue similar al glucantime (control positivo); los par&aacute;sitos fueron completamente destruidos a las 100 h de tratamiento. Los extracto de Hex:AcOEt, AcOEt y EtOH tambi&eacute;n resultaron activos, ya que provocaron el 75% de mortalidad a 10 <i>&micro;</i>g/mL.<sup>39</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La flavona 6 (<b><a href="#f38">38</a></b>) y la isocordoina (<b><a href="#f39">39</a></b>, chalcona) aisladas de <i>Lonchocarpus</i> sp. fueron activos contra <i>L. braziliensis, L. donovani</i> y <i>L. amazonensis,</i> presentado valores de CI<sub>50</sub> &lt;40 <i>&micro;</i>g/mL.<sup>40</sup> De las ra&iacute;ces de <i>L. xuul</i> aislaron dos chalconas, la isocordoina (<b><a href="#f39">39</a></b>) y 2',4'&#45;dihidroxy&#45;3'&#45;(&#947;,&#947;&#45;dimetilalil)&#45;dihidrochalcona (<b><a href="#f40">40</a></b>) y fueron probadas contra promatigotes de <i>L. mexicana.</i> Estos compuestos presentaron una CI<sub>50</sub> = 7.7 y 66.5 <i>&micro;</i>M, respectivamente, en este trabajo tambi&eacute;n evaluaron la actividad de algunos derivados semisint&eacute;ticos, los cuales resultaron m&aacute;s activos que los compuestos naturales, por ejemplo el derivado acetilado, 2',4'&#45;diacetoxi&#45;3'&#45;(3&#45;metilbut&#45;2&#45;enil)&#45;chalcona (<b><a href="#f41">41</a></b>) present&oacute; una CI<sub>50</sub> = 3.10 <i>&micro;</i>M.<sup>41</sup></font></p>  	    <p align="center"><a name="f38"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f38.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f39"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f39.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f40"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f40.jpg"></p> 	    <p align="center"><a name="f41"></a></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n2/a3f41.jpg"></p>      	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A la fecha son escasas las especies medicinales de M&eacute;xico que han sido evaluadas para determinar su potencial leishmanicida; de las investigaciones realizadas s&oacute;lo tres especies medicinales <i>(Tridax procumbens, Lonchocarpus xuul</i> y <i>Pentalinon andrieuxii)</i> han mostrado una significativa actividad <i>in vivo</i> contra <i>L. mexicana</i> y se consideran candidatos potenciales. De estas especies activas se han aislado ocho compuestos activos &#91;oxilipina, isocordoina, 2',4'&#45;dihidroxy&#45;3'&#45;(&#947;,&#947;&#45;dimetilalil)&#45;dihidrochalcona, colestra&#45;4,20, 24&#45;trien&#45;3&#45;ona o pentalinosterol, 24&#45;metilcolesta&#45;4&#45;24(28)&#45;dien&#45;3&#45;ona, colest&#45;4&#45;en&#45;3&#45;ona, 6,7&#45;dihidroneridienona, neridienona y colest&#45;5,20,24&#45;trien&#45;3 &#946;&#45;ol&#93;, los cuales mostraron una CI<sub>50</sub> &gt;30 <i>&micro;</i>g/mL contra <i>L. mexicana;</i> sin embargo, se desconoce el potencial real de los mismos ya que s&oacute;lo se tiene la evaluaci&oacute;n <i>in vitro</i> contra promastigotes y/o amastigotes de <i>L. mexicana.</i> Adem&aacute;s se ha descrito que algunos extractos org&aacute;nicos han resultado activos contra otras especies de <i>Leishmania (L. braziliensis, L. donovani</i> y <i>L. amazonensis),</i> pero no se reportan los compuestos responsables de la actividad. Dado el problema que representa las infecciones provocadas por especies de <i>Leishmania,</i> aunado al problema de la f&aacute;rmaco resistencia y a los efectos secundarios que provocan los f&aacute;rmacos actuales, es necesario redoblar esfuerzos para continuar investigando otras especies medicinales y poder encontrar compuesto activos que coadyuven al tratamiento de la enfermedad o bien encontrar mol&eacute;culas prototipo para el desarrollo de f&aacute;rmacos con mecanismo de acci&oacute;n diferentes a los existentes.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1.&nbsp;Dom&iacute;nguez&#45;Carmona DB, Escalante&#45;Erosa F, Garc&iacute;a&#45;Sosa K, Ruiz&#45;Pinell G, Gutierrez&#45;Yapu D, Chan&#45;Bacab MJ, Gim&eacute;nez&#45;Turba A, Pe&ntilde;a&#45;Rodr&iacute;guez LM. Antiprotozoal activity of betulinic acid derivatives. Phytomedicine. 2010; 17(5):379&#45;382. doi: 10.1016/j.phymed.2009.08.002.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924644&pid=S1870-0195201400020000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2.&nbsp;Getti G, Durgadoss O, Dom&iacute;nguez&#45;Carmona D, Martin&#45;Quintal Z, Peraza&#45;Sanchez S, Pe&ntilde;a&#45;Rodriguez LM, Humber D. Leishmanicidal activity of Yucatecan medicinal plants on Leishmania species responsible for cutaneous leishmaniasis. J Parasitol. 2009; 95(2):456&#150;460. doi:10.1645/GE&#45;1675.1.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924646&pid=S1870-0195201400020000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3.&nbsp;Arjona&#45;Jim&eacute;nez G, Villegas N, L&oacute;pez&#45;C&eacute;spedes A, Mar&iacute;n C, Longoni SS, Bolio&#45;Gonz&aacute;lez ME, Rodr&iacute;guez&#45;Vivas RI, Sauri&#45;Arceo CH, S&aacute;nchez&#45;Moreno Hyg. Prevalence of antibodies against three species of <i>Leishmanial (L. mexicana, L. braziliensis, L. infantum)</i> and possible associated factors in dogs from M&eacute;rida,Yucat&aacute;n, Mexico. Trans R Soc Trop Med. 2012; 106(4):252&#45;258.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924648&pid=S1870-0195201400020000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4.&nbsp;Bero J, Hannaert V, Chataign&eacute; G, H&eacute;rent MF, Quetin&#45;Leclercq J. In vitro antitrypanosomal and antileishmanial activity of plants used in Benin in traditional medicine and bio&#45;guided fractionation of the most active extract. J Ethnopharmacol. 2011; 137(2):998&#45;1002.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924650&pid=S1870-0195201400020000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5.&nbsp;Varela&#45;M RE, Villa&#45;Pulgarin JA, Yepes E, M&uuml;ller I, Modolell M, Mu&ntilde;oz DL, Robledo SM, Muskus CE, L&oacute;pez&#45;Ab&aacute;n J, Muro A, V&eacute;lez ID, Mollinedo F. <i>In vitro</i> and <i>in vivo</i> efficacy of ether lipid edelfosine against <i>Leishmania</i> spp. and SbV&#45;resistant parasites. PLoS Negl Trop Dis. 2012; 6(4):e1612.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924652&pid=S1870-0195201400020000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6.&nbsp;Wink M. Medicinal plants: a source of antiparasitic secondary metabolites.&nbsp;Molecules. 2012; 17(11):12771&#45;12791. doi:10.3390/molecules171112771.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924654&pid=S1870-0195201400020000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7.&nbsp;Basselin M, Denise H, Coombs GH, Barrett MP. Resistance to pentamidine in <i>Leishmania mexicana</i> involves exclusion of the drug from the mitochondrion. Antimicrob Agents Chemother. 2002; 46(12):3731&#45;3738.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924656&pid=S1870-0195201400020000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8.&nbsp;Chow LM, Volkman SK. <i>Plasmodium</i> and <i>Leishmania:</i> the role of MDR genes in mediating drug resistance. Exp Parasitol. 1998; 90(1):135&#45;141.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924658&pid=S1870-0195201400020000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9.&nbsp;Carneiro SM, Carvalho FA, Santana LC, Sousa AP, Neto JM, Chaves MH. The cytotoxic and antileishmanial activity of extracts and fractions of leaves and fruits of Azadirachta indica (A Juss). Biol Res. 2012; 45(2):111&#45;116. doi: 10.1590/S0716&#45;97602012000200002.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924660&pid=S1870-0195201400020000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10.&nbsp;Newman DJ, Cragg GM. Natural products as sources of new drugs over the last 25 years. J Nat Prod. 2007; 70(3):461&#45;177.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924662&pid=S1870-0195201400020000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11.&nbsp;Balunas MJ, Kinghorn AD. Drug discovery from medicinal plants. Life Sci. 2005; 78(5):431&#45;441.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924664&pid=S1870-0195201400020000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12.&nbsp;Chin YW, Balunas MJ, Chai HB, Kinghorn AD. Drug discovery from natural sources. AAPSJ. 2006; 8(2):E239&#45;253.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924666&pid=S1870-0195201400020000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13.&nbsp;Galdo A. A prop&oacute;sito de un caso de Bot&oacute;n de Oriente en primera infancia. Med Rev Mex. 1934; 14(225):388&#45;396.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924668&pid=S1870-0195201400020000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14.&nbsp;Chan&#45;Bacab MJ, Pe&ntilde;a&#45;Rodriguez LM. Plant natural products with leishmanicidal activity. Nat Prod Rep. 2001; 18(6):674&#45;688.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924670&pid=S1870-0195201400020000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15.&nbsp;Torres&#45;Santos EC, Lopes D, Oliveira RR, Carauta JP, Falcao CA, Kaplan MA, Rossi&#45;Bergmann B. Antileishmanial activiy of isolater triterpenoids form Pourouma guianensis. Phytomedicine. 2004; 11(2&#45;3):114&#45;120.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924672&pid=S1870-0195201400020000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16.&nbsp;Mishra BB, Kale RR, Singh RK, Tiwari VK. Alkaloids: Future prospective to combat leishmanisis. Fitoterapia. 2009; 80(2):81&#45;90. doi: 10.1016/j.fitote.2008.10.009.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924674&pid=S1870-0195201400020000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17.&nbsp;Polonio T, Efferth T. Leishmaniasis drug resistance and natural products (review). Int J Mol Med. 2008; 22(3):277&#45;286. doi:10.3092/ijmm_00000020.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924676&pid=S1870-0195201400020000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18.&nbsp;Bhuwan BM, Rakesh KS, Srivastava A, Tripathi VJ, Vinod K. Fighting against Leishmaniasis:Search of Alkaloids as future true potential anti&#45;leishmanial agentes. Mini&#45;Rev Med Chem. 2009; 9(1):107&#45;123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924678&pid=S1870-0195201400020000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19.&nbsp;Fournet A, Barrios AA, Mu&ntilde;oz V, Hocquemiller R, Roblot F, Cav&eacute; A. Antileishmanial activity of a tetralone isolated from Ampelocera edentula, a Bolivian plants used as a treatment for cutaneous leishmaniasis. Planta Med. 1993; 60(1):8&#45;12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924680&pid=S1870-0195201400020000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20.&nbsp;Eltayeb A, Ibrahim K. Potential antileishmnial effect of three medicinal plants. Indian J Pharm Sci. 2012; 74(2):171&#45;174. doi:10.4103/0250&#45;474X.103856.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924682&pid=S1870-0195201400020000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21.&nbsp;Torres&#45;Santos EC, Rodrigues JMJr, Moreira DL, Kaplan MA, Rossi&#45;Bergmann B. Improvement of <i>in vitro</i> and <i>in vivo</i> antileishmanial activities of 29,69&#45;dihidroxy&#45;49&#45;methoxychalcone by entrapment in poly(D,L&#45;lactide) nonoparticles. Antimicrob Agents Chemother. 1999; 43(7):1776&#45;1778.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924684&pid=S1870-0195201400020000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22.&nbsp;Medda S, Mukhopadhyay S, Basu MK. Evaluation of the in vivo activity and toxicity of amarogentin, an antileishmanial agent, in both liposomal and niosomal forms. J Antimicrob Chemother. 1999; 44(6):791&#45;794.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924686&pid=S1870-0195201400020000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23.&nbsp;Fournet A, Barrios AA, Mu&ntilde;oz V, Hocquemiller R, Cav&eacute; A. Effect of natural naphtoquinones in BALB/c mice infected with <i>Leishmania amazonensis</i> and <i>L. venezuelensis.</i> Trop Med Parasitol. 1992a; 43(4):219&#45;222.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924688&pid=S1870-0195201400020000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24.&nbsp;Fournet A, Angelo A, Mu&ntilde;oz V, Roblot F, Hocquemiller R, Cav&eacute; A. Biological and chemical studies of Pera benensis, a Bolivian plant used in folk medicine as a treatment of cutaneous leishmaniasis. J Ethnopharmacol. 1992b; 37(2):159&#45;164.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924690&pid=S1870-0195201400020000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25.&nbsp;Hazra B, Saha AK, Ray R, Roy DK, Sur P, Banerjee A. Antiprotozoal activity of diospyrin towards <i>Leishmania donovani</i> promastigotes <i>in vitro.</i> Trans R Soc Trop Med Hyg. 1987; 81(5):738&#45;741.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924692&pid=S1870-0195201400020000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26.&nbsp;Ray S, Hazra B, Mittra B, Das A, Majumder HK. Diospyrin, a bisnaphtoquinone a novel inhibitor of type I DNA topoisomerase of <i>Leishmania donovani.</i> Mol Pharmacol. 1998; 54(6):994&#45;999.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924694&pid=S1870-0195201400020000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27.&nbsp;Lall N, Meyer JJ. Inhibition of drug&#45;sensitive and drug&#45;resistant strains of <i>Mycobacterium tuberculosis</i> by diospyrin, isolated from <i>Euclea natalensis.</i> J Ethnopharmacol. 2001; 78(2&#45;3):213&#45;216.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924696&pid=S1870-0195201400020000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28.&nbsp;Uribarren BT. Leishmaniasis. 2013. <a href="http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/leishmaniosis.html" target="_blank">http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/leishmaniosis.html</a> Acceso 3 Sep 201.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924698&pid=S1870-0195201400020000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29.&nbsp;Chan&#45;Bacab MJ, Balanza E, Deharo E, Mu&ntilde;oz V, Garc&iacute;a RD, Pe&ntilde;a&#45;Rodr&iacute;guez LM. Variation of leishmanial activity in four population of <i>Urechites andrieuxii.</i> J Ethnopharmacol. 2003; 86(2&#45;3):243&#45;247.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924700&pid=S1870-0195201400020000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30.&nbsp;Peraza&#45;S&aacute;nchez SR, Cen&#45;Pacheco F, Noh&#45;Chimal A, May&#45;Pat F, Sim&aacute;&#45;Polanco P, Dumonteil E, Garc&iacute;a&#45;Miss MR, Mut&#45;Mart&iacute;n M. Leishmanicidal evaluation of extracts from native plants of the Yucatan peninsula. Fitoterapia. 2007; 78(4):315&#45;318.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924702&pid=S1870-0195201400020000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">31.&nbsp;Mart&iacute;n&#45;Quintal Z, Moo&#45;Puc R, Gonz&aacute;lez&#45;Salazar F, Chan&#45;Bacab MJ, Torres&#45;Tapia LW, Peraza&#45;Sanch&eacute;z SR. <i>In vitro</i> activity of <i>Tridax</i> procumbens against promastigotes of <i>Leishmania mexicana.</i> J Ethnopharmacol. 2009; 122(3):463&#45;467. doi: 10.1016/j.jep.2009.01.037.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924704&pid=S1870-0195201400020000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">32.&nbsp;Mart&iacute;n&#45;Quintal Z, Garc&iacute;a Miss dR, Mut&#45;Martin M, Matus&#45;Moo A, Torres&#45;Tapia LW, Peraza&#45;S&aacute;nchez SR. The lieshmanicidal effect of (3S)&#45;16,17&#45;didehidrofalcarinol, an oxylipin isolated from <i>Tridax procumbes,</i> is independent of NO production. Phytohter Res. 2010; 24(7):1004&#45;1008. doi: 10.1002/ptr.3052.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924706&pid=S1870-0195201400020000300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">33.&nbsp;Gamboa&#45;Leon R, Vera&#45;Ku M, Peraza&#45;Sanchez SR, Ku&#45;Chulim C, Horta&#45;Baas A, Rosado&#45;Vallado M. Antileishmanial activity of a mixture of <i>Tridax procumbens</i> and <i>Allium sativum</i> in mice. Parasite. 2014; 21:15. doi: 10.1051/parasite/2014016.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924708&pid=S1870-0195201400020000300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">34.&nbsp;Viscencio GS, Tamay PM, Issac AP, Lezama, CM. Toxicidad <i>in vitro</i> de extractos de <i>Urechites andrieuxii</i> Muell&#45;Arg, en contra de <i>L. mexicana.</i> Memorias de la III Reuni&oacute;n de Investigaci&oacute;n Qu&iacute;mica en el Sureste de M&eacute;xico, M&eacute;rida, Yucat&aacute;n. 1995; 93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924710&pid=S1870-0195201400020000300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">35.&nbsp;Adebayo OL, Suleman D, Samson AA. Natural products in Antileishmanial drug discovery: a review. JASR. 2013; 3(2):157&#45;173.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924712&pid=S1870-0195201400020000300035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">36.&nbsp;Lezama&#45;D&aacute;vila CM, Pan L, Isaac&#45;M&aacute;rquez AP, Terrazas C, Oghumu S, Isaac&#45;M&aacute;rquez R, Pech&#45;Dzib M, Barbi J, Calomeni E, Parinandi N, Kinghorn AD, Satoskar AR. <i>Pentalinon andrieuxii</i> Root Extract is Effective in the Topical Treatment of Cutaneous Leishmaniasis Caused by <i>Leishmania mexicana.</i> Phytother Res. 2014; 28(6):909&#45;16. doi: 10.1002/ptr.5079.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924714&pid=S1870-0195201400020000300036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">37.&nbsp;Pan L, Lezama&#45;Davila CM, Isaac&#45;Marquez AP, Calomeni EP, Fuchs JR, Satoskar AR, Kinghorn AD. Sterols with antileishmanial activity isolated from the roots of <i>Pentalinon andrieuxii.</i> Phytochemistry. 2012; 82:128&#45;35. doi: 10.1016/j.phytochem.2012.06.012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924716&pid=S1870-0195201400020000300037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">38.&nbsp;Dom&iacute;nguez&#45;Carmona DB, Escalante&#45;Erosa F, Garc&iacute;a&#45;Sosa K, Ruiz&#45;Pinell G, Gutierrez&#45;Yapu D, Chan&#45;Bacab MJ, Gim&eacute;nez&#45;Turba A, Pe&ntilde;a&#45;Rodr&iacute;guez LM. Antiprotozoal activity of betulinic acid derivatives. Phytomedicine. 2010; 17(5):379&#45;382. doi: 10.1016/j.phymed.2009.08.002.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924718&pid=S1870-0195201400020000300038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">39.&nbsp;Lezama&#45;D&aacute;vila CM, Isaac&#45;M&aacute;rquez AP, Zamora&#45;Crescencio P, Uc&#45;Encalada Mdel R, Justiniano&#45;Apolinar SY, del Angel&#45;Robles L, Satoskar A, Hern&aacute;ndez&#45;Rivero L. Leishmanicidal activity of <i>Pentalinon andrieuxii.</i> Fitoterapia 2007; 78(3):255&#45;257.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924720&pid=S1870-0195201400020000300039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">40.&nbsp;Borges&#45;Arg&aacute;ez R, Balnbury L, Flowers A, Gim&eacute;nez&#45;Turba A, Ruiz G, Waterman PG, Pe&ntilde;a&#45;Rodr&iacute;guez LM. Cytotoxic and antiprotozoal activity of flavonoids from Lonchocarpus spp. Phytomedicine. 2007; 14(7&#45;8):530&#45;533.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924722&pid=S1870-0195201400020000300040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">41.&nbsp;Borges&#45;Arg&aacute;ez R, Vela&#45;Catz&iacute;n T, Yam&#45;Puc A, Chan&#45;Bacab MJ, Moo&#45;Puc RE, C&aacute;ceres&#45;Farf&aacute;n M. Antiprotozoal and cytotoxic studies on some isocordoin derivatives. Planta Med. 2009; 75(12):1336&#45;1338. doi: 10.1055/s&#45;0029&#45;1185670.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7924724&pid=S1870-0195201400020000300041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
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