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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Capacidad antioxidante y antibacteriana de extractos de residuos de candelilla]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Autónoma de Coahuila Facultad de Ciencias Químicas Departamento de Investigación en Alimentos]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In this work, extracts of candelilla stalks without wax were obtained. The extracts were obtained in reflux conditions with 50 % ethanol at room temperature, the extracts were treated with autoclave for hydrolyzing the obtained compounds and used in subsequent tests, the determination of antioxidant capacity, hemolytic capacity and antimicrobial capacity. In the antioxidant capacity, the extract hydrolyzed at 100 °C for 15 minutes (E15) showed the highest antioxidant capacity. The maximum value for the hemolysis test was obtained with the extract hydrolyzed at 100 °C for 5 minutes (E5), it was more toxic to the blood cells. The antimicrobial capacity was evaluated against Erwinia amylovora, Clavibacter michiganensis and Xanthomonas axonopodis. All extracts showed antimicrobial capacity, the highest against Clavibacter michiganensis.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Trabajo cient&iacute;fico</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Capacidad antioxidante y antibacteriana de extractos de residuos de candelilla</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Antioxidant and antibacterial capacity of candelilla extracts residues</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Edgardo A. Burboa,<sup>1</sup> Juan A. Ascacio&#45;Vald&eacute;s,<sup>2</sup> Alejandro Zugasti&#45;Cruz,<sup>2</sup> Ra&uacute;l Rodr&iacute;guez&#45;Herrera,<sup>2</sup> Crist&oacute;bal N. Aguilar<sup>2</sup></b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Programa de Ingenier&iacute;a Forestal con &eacute;nfasis en Biotecnolog&iacute;a. Universidad Aut&oacute;noma Ind&iacute;gena de M&eacute;xico, Mochicahui, El fuerte, Sinaloa, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Departamento de Investigaci&oacute;n en Alimentos, Facultad de Ciencias Qu&iacute;micas, Universidad Aut&oacute;noma de Coahuila, Saltillo, Coahuila, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Correspondencia:&nbsp;</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Dr. Juan A. Ascacio&#45;Vald&eacute;s&nbsp;    <br> 	Departamento de Investigaci&oacute;n en Alimentos&nbsp;    <br> 	Facultad de Ciencias Qu&iacute;micas    <br> 	Universidad Aut&oacute;noma de Coahuila    <br> 	Blvd. V. Carranza s/n Col. Rep&uacute;blica Oriente C.P. 25280,    <br> 	Saltillo, Coahuila    <br> 	Tel. 844 416 12 38, Fax: 844 415 95 34    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> 	e&#45;mail:</i> <a href="mailto:alberto_ascaciovaldes@uadec.edu.mx">alberto_ascaciovaldes@uadec.edu.mx</a></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fecha de recepci&oacute;n: 16 de diciembre de 2013    <br> 	Fecha de recepci&oacute;n de modificaciones: 24 de abril de 2014    <br> 	Fecha de aceptaci&oacute;n: 9 de mayo de 2014</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este trabajo se obtuvieron extractos de tallos de candelilla sin cera. &Eacute;stos fueron obtenidos a reflujo con etanol 50 % a temperatura ambiente, los extractos fueron tratados con autoclave para hidrolizar los compuestos obtenidos y usarlos en pruebas posteriores, la determinaci&oacute;n de capacidad antioxidante, capacidad hemol&iacute;tica y capacidad antimicrobiana. En cuanto a la capacidad antioxidante, el extracto hidrolizado a 100 &deg;C por 15 minutos (E15) fue el que mostr&oacute; la mayor capacidad antioxidante. El m&aacute;ximo valor para la prueba de hemolisis se obtuvo con el extracto hidrolizado a 100 &deg;C por 5 minutos (E5), &eacute;ste fue el m&aacute;s toxico para las c&eacute;lulas sangu&iacute;neas. La actividad antimicrobiana fue evaluada contra <i>Erwinia amylovora, Clavibacter michiganensis</i> y <i>Xanthomonas axonopodis.</i> Todos los extractos presentaron actividad antimicrobiana, la m&aacute;s clara contra <i>Clavibacter michiganensis.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> tallos de candelilla sin cera, capacidad antioxidante, capacidad hemol&iacute;tica, capacidad antimicrobiana.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">In this work, extracts of candelilla stalks without wax were obtained. The extracts were obtained in reflux conditions with 50 % ethanol at room temperature, the extracts were treated with autoclave for hydrolyzing the obtained compounds and used in subsequent tests, the determination of antioxidant capacity, hemolytic capacity and antimicrobial capacity. In the antioxidant capacity, the extract hydrolyzed at 100 &deg;C for 15 minutes (E15) showed the highest antioxidant capacity. The maximum value for the hemolysis test was obtained with the extract hydrolyzed at 100 &deg;C for 5 minutes (E5), it was more toxic to the blood cells. The antimicrobial capacity was evaluated against <i>Erwinia amylovora, Clavibacter michiganensis</i> and <i>Xanthomonas axonopodis.</i> All extracts showed antimicrobial capacity, the highest against <i>Clavibacter michiganensis.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> candelilla stalks without wax, antioxidant capacity, hemolytic capacity, antumicrobial capacity.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introduction</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La candelilla <i>(Euphorbia antisyphilitica</i> Zucc.) es una especie vegetal de gran importancia econ&oacute;mica en el norte de M&eacute;xico. Se utiliza para la extracci&oacute;n de cera de de candelilla la cual se emplea para diversos fines en la industria alimentaria, farmac&eacute;utica y cosm&eacute;tica, as&iacute; como tambi&eacute;n para aplicaciones tradicionales terap&eacute;uticas. La extracci&oacute;n de cera de candelilla genera 140 toneladas de residuos (tallos sin cera) que generalmente se destinan al desecho, sin embargo, se ha demostrado que los tallos de candelilla sin cera tienen un alto contenido de fitoqu&iacute;micos, principalmente compuestos polifen&oacute;licos como los elagitaninos y el &aacute;cido el&aacute;gico<sup>1</sup> (<a href="#f1">figura 1</a>) que le dan un valor agregado a dicho residuo. En los &uacute;ltimos a&ntilde;os los elagitaninos y el &aacute;cido el&aacute;gico han tenido gran aplicaci&oacute;n en diferentes ramas de la industria, como la alimentaria, farmac&eacute;utica y cosm&eacute;tica principalmente, debido a que poseen un alto potencial antioxidante el cual desempe&ntilde;a un papel muy importante contra el estr&eacute;s oxidativo, el cual tiene incidencia directa en el desarrollo de diferentes l&iacute;neas de c&aacute;ncer.<sup>2</sup> Tambi&eacute;n se ha reportado que estos compuestos tienen un efecto positivo en contra de afecciones inflamatorias, cardiovasculares y neurodegenerativas,<sup>3</sup> as&iacute; como tambi&eacute;n es conocida la generaci&oacute;n de especies reactivas de oxigeno y nitr&oacute;geno causada por la exposici&oacute;n a diferentes agentes end&oacute;genos (ejercicio excesivo e isquemia, inclusive la digesti&oacute;n de algunos alimentos y la misma respiraci&oacute;n)<sup>4</sup> y ex&oacute;genos (como el tabaquismo, consumo de algunas drogas, exposici&oacute;n a radiaci&oacute;n ionizante y rayos ultravioleta), causando da&ntilde;os a mol&eacute;culas importantes como el DNA, causando des&oacute;rdenes mutag&eacute;nicos y el papel que desempe&ntilde;an los elagitaninos y el &aacute;cido el&aacute;gico en la prevenci&oacute;n de este tipo de problemas es determinante.<sup>5</sup> Otro aspecto importante de los elagitaninos y el &aacute;cido el&aacute;gico es el potencial biol&oacute;gico que poseen en contra de microorganismos, se he reportado que extractos de plantas como <i>Pteleopsis hylodendron</i> contienen principalmente derivados de &aacute;cido el&aacute;gico activos contra ciertas bacterias pat&oacute;genas como <i>Klebsiella pneumoniae, Bacillus cereus, Escherichia coli, Salmonella typhi</i> y <i>Salmonella pyogenes.<sup>6</sup></i></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n1/a7f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por lo anterior, el objetivo del presente estudio fue evaluar la capacidad antioxidante, la capacidad hemol&iacute;tica (para evaluar la toxicidad de los extractos de tallos de candelilla sin cera para su posible aplicaci&oacute;n contra el estr&eacute;s oxidativo) y la capacidad antimicrobiana, con el fin de establecer a los tallos de candelilla sin cera como fuente de obtenci&oacute;n de compuestos de alto valor agregado con propiedades biol&oacute;gicas importantes con potencial aplicaci&oacute;n en distintas ramas de la industria.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Recolecci&oacute;n del material vegetal</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los tallos de candelilla fueron recolectados en el km 66 de la carretera Saltillo&#45;Monclova, Coahuila, en el ejido el Forl&oacute;n, la planta se cort&oacute; desde la base de los tallos para evitar da&ntilde;ar las ra&iacute;ces (as&iacute; lo recomienda la Norma Oficial Mexicana NOM&#45;018&#45;RECNAT&#45;1999), las muestras se colocaron en bolsas negras para su almacenamiento en el laboratorio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Extracci&oacute;n de la cera</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La extracci&oacute;n fue realizada por el m&eacute;todo tradicional con &aacute;cido sulf&uacute;rico. Los tallos fueron colocados en un contenedor de acero inoxidable y se sumergieron en una soluci&oacute;n de &aacute;cido sulf&uacute;rico al 20 % en agua y se colocaron en una estufa de calentamiento hasta alcanzar el punto de ebullici&oacute;n. Se comenz&oacute; a observar una espuma gris&aacute;cea en la superficie de la soluci&oacute;n y &eacute;sta fue recolectada en vasos de precipitados, se solidific&oacute; y se obtuvo as&iacute; la cera de candelilla.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n del material vegetal</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los tallos residuales provenientes de la extracci&oacute;n de cera fueron lavados con agua destilada para la eliminaci&oacute;n del excedente de &aacute;cido sulf&uacute;rico. Posteriormente los tallos se colocaron en una estufa de calentamiento a una temperatura de 60 &deg;C por un periodo de 48 h para su deshidrataci&oacute;n. Una vez deshidratados los tallos fueron molidos en un molino de cuchillas hasta obtener un polvo, &eacute;ste fue almacenado en bolsas negras hasta su procesamiento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Obtenci&oacute;n de los extractos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En un matraz erlenmeyer de 250 mL se colocaron 80 mL de etanol al 50 %, se coloc&oacute; en una parrilla de calentamiento hasta que alcanz&oacute; los 100 &deg;C, enseguida se agreg&oacute; a la soluci&oacute;n 20 g de candelilla en polvo sin cera, se dej&oacute; 45 minutos en ebullici&oacute;n, se repuso la perdida de etanol 50 % por evaporaci&oacute;n cuando fue necesario; el extracto obtenido se pas&oacute; por papel filtro y en recipientes de vidrio se coloc&oacute; en una estufa a 60 &deg;C para la evaporaci&oacute;n del etanol (aproximadamente 24 horas); se le agregaron 10 mL de agua destilada al liquido obtenido para disminuir su viscosidad.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El extracto obtenido anteriormente se distribuy&oacute; en cuatro tubos con tap&oacute;n de rosca y a cada tubo se le dio un tratamiento de hidr&oacute;lisis en autoclave como se muestra en la <a href="#t1">tabla 1</a>.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n1/a7t1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los extractos se guardaron en refrigeraci&oacute;n (4 &deg;C) y en ausencia de luz hasta su posterior uso.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Prueba de la actividad antioxidante</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad antioxidante de los extractos fue determinada por el m&eacute;todo DPPH<sup>7</sup> (1,1&#45;difenil&#45;1,2&#45;picrilhidrazil), este compuesto es un radical estable que presenta una intensa coloraci&oacute;n violeta y que absorbe radiaci&oacute;n a 517 nm, de forma que su concentraci&oacute;n se puede determinar mediante m&eacute;todos espectrofotom&eacute;tricos. En el ensayo se determina la concentraci&oacute;n inicial de DPPH y la concentraci&oacute;n resultante una vez que se ha a&ntilde;adido el extracto de candelilla sin cera, de forma que una disminuci&oacute;n de la absorci&oacute;n de radiaci&oacute;n se traduce en una disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de DPPH debida a la cesi&oacute;n de electrones de las especies antioxidantes presentes en el extracto.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para establecer la concentraci&oacute;n inicial del DPPH se agreg&oacute; en tubos de ensayo protegidos de la luz una soluci&oacute;n de 100 <i>&micro;</i>L de metanol al 100 % y 2.9 mL de DPPH 60 <i>&micro;</i>M<i>,</i> la absorbancia fue monitoreada a 517 nm con la finalidad de observar el efecto de los extractos en el radical empleado. A su vez, se realiz&oacute; una diluci&oacute;n 1:100 de cada extracto con agua destilada y se mantuvieron en oscuridad durante 30 minutos, posteriormente se procedi&oacute; a leer la absorbancia a 517 nm.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utilizo la siguiente f&oacute;rmula para calcular el porcentaje de inhibici&oacute;n del radical DPPH causado por los extractos evaluados.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n1/a7e1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde:</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>%inhibici&Oacute;n</i> = Porcentaje de inhibici&oacute;n del radical DPPH provocado por la muestra evaluada.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Abs.Inicial</i> =Absorbancia a 517 nm de la concentraci&oacute;n inicial del DPPH.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Abs.Final=</i> Absorbancia a 517 nm de la concentraci&oacute;n final del DPPH.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Ensayo de hemolisis y actividad antioxidante utilizando sulfato f&eacute;rrico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se extrajeron 5 mL de sangre humana en tubos con anticoagulante EDTA de adultos saludables. Posteriormente la sangre fue centrifugada a 3000 g durante 5 min a 4 &deg;C. El plasma contenido en el sobrenadante fue desechado y el paquete de eritrocitos se lav&oacute; con 1 mL de soluci&oacute;n Alsever (glucosa al 2.5 %, citrato de sodio al 0.8 %, disuelto en agua destilada est&eacute;ril). Una vez lavados los eritrocitos fueron almacenados en soluci&oacute;n Alsever por periodos no mayores de 7 d&iacute;as a 4 &deg;C.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los eritrocitos mantenidos en la soluci&oacute;n de Alsever fueron centrifugados a 3000 g durante 5 min a 4 &deg;C. El plasma del sobrenadante fue desechado y el paquete de eritrocitos se lav&oacute; con 1 mL de soluci&oacute;n Alsever; el procedimiento fue repetido dos veces m&aacute;s.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se tomaron 100 <i>&micro;</i>L del pellet de eritrocitos y se diluyeron en 10 mL de soluci&oacute;n Alsever, 150 <i>&micro;</i>L de esta suspensi&oacute;n se diluyeron con diferentes concentraciones de soluci&oacute;n Alsever y extractos de candelilla para evaluar la actividad hemol&iacute;tica. Para la evaluaci&oacute;n de la actividad antioxidante se utilizaron 100 <i>&micro;</i>L de sulfato f&eacute;rrico (como agente inductor de la oxidaci&oacute;n para la evaluaci&oacute;n de la capacidad antioxidante de los extractos de candelilla) a una concentraci&oacute;n de 20,000 ppm, &eacute;ste se diluy&oacute; con 150 <i>&micro;</i>L de la soluci&oacute;n anterior de eritrocitos y se mezclaron con las diferentes concentraciones de soluci&oacute;n Alsever y extractos evaluados. Las muestras totales se llevaron hasta vol&uacute;menes de 2 mL.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las concentraciones evaluadas para cada extracto fueron de 5 <i>&micro;</i>g<i>,</i> 50 <i>&micro;</i>g, 500 <i>&micro;</i>g y 5000 <i>&micro;</i>g<i>.</i> Se tom&oacute; un volumen de cada extracto equivalente a las concentraciones evaluadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; la soluci&oacute;n Alsever y eritrocitos como control negativo en ambas pruebas. En el ensayo de actividad hemol&iacute;tica se us&oacute; como control positivo agua destilada y eritrocitos; mientras que para la actividad antioxidante se le agreg&oacute; 100 <i>&micro;</i>L de sulfato f&eacute;rrico 20,000 ppm a la soluci&oacute;n Alsever y eritrocitos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Todas las muestras fueron incubadas en ba&ntilde;o de agua regulado con agitaci&oacute;n constante a 37&plusmn;0.5 &deg;C durante 30 minutos y centrifugadas a 3000 g durante 5 min a 4 &deg;C. La concentraci&oacute;n de hemoglobina en el sobrenadante fue cuantificada por la lectura de la absorbancia a 415 nm.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos obtenidos en los ensayos se procesaron con la siguiente f&oacute;rmula:</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n1/a7e2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde:</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>%H</i> = Porcentaje de hemolisis o actividad antioxidante.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Abs.Muestra</i> = Absorbancia de la muestra a 415 nm.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Abs.C</i>+ = Absorbancia del control positivo a 415 nm.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Abs.C</i>&#45; = Absorbancia del control negativo a 415 nm.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados se analizaron con el programa estad&iacute;stico SAS bajo un dise&ntilde;o de experimentos completamente al azar con tres repeticiones, se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza y una prueba de comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias con el m&eacute;todo de Tukey, se analizo cada extracto por separado, y con un nivel de significancia del 95 %.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad antimicrobiana</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los microorganismos utilizados en este trabajo fueron <i>Erwinia amylovora, Clavibacter michiganensis</i> y <i>Xanthomonas axonopodis;</i> estas son consideradas especies fitopat&oacute;genas de inter&eacute;s agr&iacute;cola y forestal. Las bacterias fueron facilitadas por el Departamento de Investigaci&oacute;n en Alimentos de la Universidad Aut&oacute;noma de Coahuila, &eacute;stas estaban previamente identificadas y purificadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para obtener el inoculo se prepar&oacute; caldo de infusi&oacute;n cerebro&#45;coraz&oacute;n en tubos con tap&oacute;n de rosca, despu&eacute;s se esteriliz&oacute; en autoclave a 121 &deg;C por 15 minutos. Los tubos fueron inoculados con los microorganismos seleccionados y se incubaron por 24 horas. La suspensi&oacute;n de los in&oacute;culos fue conservada en refrigeraci&oacute;n (4 &deg;C) hasta su posterior uso.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad antibacteriana de los extractos de candelilla sin cera fue evaluada por el m&eacute;todo de difusi&oacute;n por disco. El medio de cultivo fue preparado con agar infusi&oacute;n cerebro&#45;coraz&oacute;n adicionado con 1.5 % de agar bacteriol&oacute;gico, se esteriliz&oacute; en autoclave a 121 &deg;C por 15 minutos; y se colocaron 20 mL del medio est&eacute;ril en placas Pertri, bajo condiciones de asepsia</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se agitaron los tubos que conten&iacute;an la suspensi&oacute;n del microorganismo y se inocularon las placas Petri con ayuda de un hisopo est&eacute;ril para conseguir un crecimiento bacteriano de modo masivo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se cortaron discos de papel filtro con un di&aacute;metro de 0.5 cm, fueron esterilizados y se sumergieron en los extractos E0, E5, E10 y E15; se utilizaron discos impregnados con un penicilina a 200 ppm como control positivo. Se colocaron los discos impregnados en las placas Petri usando pinzas est&eacute;riles.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una vez inoculadas las cajas y colocados los discos, &eacute;stas se incubaron a 37 &deg;C por un periodo de 24 h, despu&eacute;s se midi&oacute; el di&aacute;metro del halo de inhibici&oacute;n de los discos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se calcularon los porcentajes de inhibici&oacute;n en relaci&oacute;n con el control positivo de penicilina 200 ppm. Los experimentos se analizaron bajo un dise&ntilde;o completamente al azar con dos repeticiones, se realiz&oacute; un ANOVA y una prueba de comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias con el m&eacute;todo de Tukey mediante el uso del programa estad&iacute;stico (SAS).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad antioxidante</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Despu&eacute;s de procesar los datos con la formula antes mencionada, se obtuvieron los siguientes resultados (<a href="#f2">figura 2</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n1/a7f2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">No se encontraron diferencias significativas entre el extracto sin hidr&oacute;lisis y el extracto con 5 minutos de hidr&oacute;lisis (91.45 %). A los 10 minutos de hidr&oacute;lisis se observa la actividad antioxidante m&aacute;s baja (88.82 %), mientras que a los 15 minutos se observ&oacute; la m&aacute;xima actividad, &eacute;sta es de 92.33 %. La actividad antioxidante manifestada en los extractos es atribuida al contenido de polifenoles presentes en el material vegetal evaluado, es bien sabido el potencial antioxidante de los polifenoles presentes en el reino vegetal.<sup>8,9</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad hemol&iacute;tica</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de la actividad hemol&iacute;tica de los extractos se presentan en la siguiente figura (<a href="#f3">figura 3</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n1/a7f3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es posible observar que a medida que se incrementa la dosis de los extractos el da&ntilde;o a las c&eacute;lulas de eritrocitos tambi&eacute;n incrementa. Sin embargo, tambi&eacute;n es evidente que algunas concentraciones de extractos no son significativamente diferentes al control negativo (E0, E10 y E15), esto significa que el extracto no est&aacute; produciendo hem&oacute;lisis a &eacute;stas concentraciones o el da&ntilde;o es muy bajo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad antioxidante utilizando sulfato f&eacute;rrico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos obtenidos en &eacute;sta prueba fueron procesados, y se realiz&oacute; an&aacute;lisis de varianza con un nivel de confiabilidad del 95 % utilizando el programa SAS, se determin&oacute; que todas las concentraciones de los extractos de candelilla sin cera son significativamente diferentes y que existen tratamientos diferentes a los dem&aacute;s.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realiz&oacute; una prueba de comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias con el m&eacute;todo de Tukey con una confiabilidad del 95 %.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La prueba de Tukey mostr&oacute; que en la muestra E0 que las concentraciones 5 <i>&micro;</i>g<i>,</i> 50 <i>&micro;</i>g y 500 <i>&micro;</i>g son inferiores al da&ntilde;o producido en los eritrocitos por el hierro, esto puede deberse a alg&uacute;n mecanismo de protecci&oacute;n contra efectos del hierro provocado por el extracto a esas concentraciones.<sup>10,11</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los dem&aacute;s extractos utilizados (E5, E10 y E15) todas las concentraciones evaluadas no tuvieron diferencia significativa al control negativo o sus porcentajes de hemolisis fueron superiores, por lo que se obtuvo una hemolisis superior o igual a la producida por el hierro por s&iacute; solo, los resultados se muestran en la <a href="#f4">figura 4</a>.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n1/a7f4.jpg"></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad antimicrobiana</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el caso de la actividad antibacterial se observ&oacute; que los tratamientos de hidr&oacute;lisis en los extractos no influyen de manera significativa en la actividad antibacterial, E0, E5, E 10 y E15 tienen potencial antibacterial similar, en el caso <i>Erwinia amylovora</i> y <i>Clavibacter michiganensis.</i> Para <i>Xanthomonas axonopodis</i> si se encontraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas y para esta bacteria los extractos evaluados tuvieron un comportamiento diferente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para encontrar los extractos significativamente diferentes se realiz&oacute; una prueba de comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias con el m&eacute;todo de Tukey, para la bacteria <i>Xanthomonas axonopodis,</i> los resultados mostraron que E0, E5 y E10 tienen medias similares y superiores a E15. Con este an&aacute;lisis realizado se demuestra que el contenido de compuestos presentes en los extractos de tallos de candelilla sin cera (principalmente compuestos fen&oacute;licos) fue capaz de inhibir el crecimiento microbiano, demostrando as&iacute; el potencial antimicrobiano que tienen este tipo de compuestos contra bacterias de importancia biol&oacute;gica.<sup>12,</sup><sup>13</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="#f5">figura 5</a> se muestran de manera gr&aacute;fica los resultados de los porcentajes de inhibici&oacute;n de los extractos de candelilla sin cera en los microorganismos evaluados.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v45n1/a7f5.jpg"></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En general todos los extractos muestran una actividad antioxidante aceptable. Todos los extractos evaluados presentaron hemolisis a la concentraci&oacute;n de 5000 <i>&micro;</i>g. El extracto de candelilla sin hidrolisis no fue hemol&iacute;tico en las concentraciones 500 <i>&micro;</i>g<i>,</i> 50 <i>&micro;</i>g y 5 <i>&micro;</i>g<i>.</i> Los resultados de la actividad antimicrobiana mostraron que los extractos de tallos de candelilla sin cera fueron efectivos contra <i>Erwinia amylovora, Xanthomonas axonopodis</i> y <i>Clavibacter michiganensis,</i> siendo &eacute;sta &uacute;ltima la bacteria m&aacute;s susceptible a dichos extractos.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores agradecen al CONACyT y al proyecto CONAFOR&#45;CONACYT &#45;2008 &#45; 91633 "Dise&ntilde;o de un proceso de alto rendimiento en la extracci&oacute;n de cera de candelilla de alta calidad y formulaci&oacute;n de productos de uso final a partir de cera de preparada" por el apoyo para el desarrollo de &eacute;sta investigaci&oacute;n.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1.&nbsp;Ascacio&#45;Vald&eacute;s J, Burboa E, Aguilera&#45;Carb&oacute; AF, Aparicio M, P&eacute;rez&#45;Schmidt R, Rodr&iacute;guez R, Aguilar CN. Antifulgal ellagitannin isolated from Euphorbia antisyphilitica Zucc. Asian Pac J Trop Biomed. 2013; 3(1): 41&#45;46.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7923531&pid=S1870-0195201400010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2.&nbsp;Huetz P, Mavaddat N, Mavri J. Reaction between ellagic acid and an ult&iacute;mate carcinogen. J Chem Inf Model. 2005; (45): 1564&#45;1570.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7923533&pid=S1870-0195201400010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3.&nbsp;Faria A, Monteiro R, Mateus N, Azevedo I, Calhau C. Effect of pomegranate (Punica granatum) juice intake on hepatic oxidative stress. Eur J Nutr. 2007; (46): 271&#45;278.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7923535&pid=S1870-0195201400010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4.&nbsp;Priyadarsini KI, Khopde SM, Kumar SS, Mohan H. Free radical studies of ellagic acid, a natural phenolic antioxidant. J Agric Food Chem. 2002; (50): 2200&#45;2260.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7923537&pid=S1870-0195201400010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5.&nbsp;Cuzzocrea S. Role of nitric oxide and reactive oxygen species in arthritis. Curr Pharm Des. 2006; (12): 3351&#45;3370.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7923539&pid=S1870-0195201400010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6.&nbsp;Atta&#45;Ur&#45;Rahman, Ngounou FN, Choudhary MI, Malik S, Makmoor T, Nur&#45;E&#45;Alam, Zareen S, Lontsi D, Ayafor JF, Sondengam BL. New antioxidant and antimicrobial ellagic acid derivates from Pteleopsis hylodendron. Plant Med. 2001; (67): 335&#45;339.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7923541&pid=S1870-0195201400010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7.&nbsp;Molyneux P. The use of the stable free radical diphenylpicryl&#45;hydrazyl (DPPH) for estimating antioxidant activity. Songklanakarin J Sci Technol. 2004; 26(2): 211&#45;219.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7923543&pid=S1870-0195201400010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8.&nbsp;Amakura Y, Okada M, Tsuji S, Tonoga Y. Determination of fenolic acids in fruit juices by isocratic column liquid chromatography. J Chromatogr A. 2000; (891): 183&#45;188.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7923545&pid=S1870-0195201400010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9.&nbsp;Hakkinen SH, Ellagic acid content in berries: influence of domestic processing and storage. Eur Food Res Technol. 2000; (212): 75&#45;80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7923547&pid=S1870-0195201400010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10.&nbsp;Klein G, Kim J, Himmeldirk K, Cao Y, Chen X. Antidiabetes and anti&#45;obesity activity of Lagerstroemia speciosa. Evid Based complement Alternat Med. 2007; (4): 401&#45;407.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7923549&pid=S1870-0195201400010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11.&nbsp;Clifford MN, Scalbert A. Ellagitannins&#45;nature, occurrence and dietary burden. 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