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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Modelo de evaluación de metabolismo y perfusión en el miocardio de rata mediante 18F-FDG, 1-11C-acetato, 13N-amoniaco y micro-tomografía por emisión de positrones (micro PET)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Cardiac metabolism and perfusion evaluation in a rat model using 18F-FDG,1- 11C-acetate, 13NH3 and micro-positron emission tomography (microPET)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective: To standardize an acquisition protocol for the study of myocardial glucolitic and oxidative metabolism and perfusion in a rat model. Methods: Studies were carried out with the three main radiopharmaceuticals used to assess heart function:[18F]-FDG for glucolitic metabolism; [1-11C]-acetate for oxidative metabolism and [13N]-NH3for myocardial perfusion.[18F]-FDG -Five Wistar adult male rats were studied in three different protocols: non-fasting group, fasting group,8 h before the study with water provided ad libitum, and a fasting group by the same time receiving an oral 50%-glucose solution. Thirty-minute scans were performed with a microPET Focus 120, 30 and 60 min after the administration of 370-555 MBq 18F-FDG. [1-11C]-Acetate -Eight rats were studied. Four static and four dynamic 30 min acquisitions after a 370-555 MBq of [1-11C]-acetate caudal vein administration.[13N]-NH3-Ten static studies were acquired 15 min post-administration of 370555 MBqof13NH3, under 1.5-2% isofluorane anesthesia. Comparative and visual analyses were performed by two experts in the field. A semi-quantitative analysis was performed using 3D reconstructions and ROI selections with AMIDE software. Results: The best images were those obtained from the non-fasting group, especially those taken at 60 min after the [18F]-FDG administration. High quality myocardial, static images were obtained with [1-11C]-acetate, and the dynamic acquisitions allowed the identification of myocardial perfusion. The 13NH3images showed a homogeneous distribution of the radiotracer in different segments of the short, long and horizontal axes in the left ventricle. Conclusions: It is possible to standardize the microPET acquisition protocols for the three main radiopharmaceuticals to evaluate the heart function in a rat model. It is feasible to establish a valid protocol for measuring glucolitic and oxidative myocardial metabolism and perfusion for gene, drug or surgical therapy assessment.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Investigaci&oacute;n b&aacute;sica </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="4">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Modelo de evaluaci&oacute;n de metabolismo y perfusi&oacute;n en el miocardio de rata mediante <sup>18</sup>F&#150;FDG, 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato, <sup>13</sup>N&#150;amoniaco y micro&#150;tomograf&iacute;a por emisi&oacute;n de positrones (micro PET)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Cardiac metabolism and perfusion evaluation in a rat model using <sup>18</sup>F&#150;FDG,1&#150; <sup>11</sup>C&#150;acetate, <sup>13</sup>NH<sub>3</sub> and micro&#150;positron emission tomography (microPET)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Rafael Ojeda&#150;Flores,<sup>1</sup> Nayelli Ortega&#150;L&oacute;pez,<sup>1</sup> Miguel &Aacute;ngel &Aacute;vila&#150;Rodr&iacute;guez,<sup>1</sup> Fernando Trejo&#150;Ballado,<sup>1</sup> Erick Alex&aacute;nderson&#150;Rosas<sup>1,2</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico (UNAM).</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Instituto Nacional de Cardiolog&iacute;a Ignacio Ch&aacute;vez.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Correspondencia: </b>    <br> Rafael Ojeda Flores. Unidad PET/CT&#150;Ciclotr&oacute;n.     <br> Facultad de Medicina, UNAM. Edificio de Investigaci&oacute;n PB.     <br> Ciudad Universitaria, Circuito Interior. CP. 04510, M&eacute;xico, D.F.     <br> Tel&eacute;fono: +52 (55) 5623 2288 Fax: +52 (55) 5623 2115 M&oacute;vil: 55 1320 7039. <i>    <br> Correo electr&oacute;nico: </i><a href="mailto:ojeda_rafael@yahoo.com.mx">ojeda_rafael@yahoo.com.mx</a></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el 2 de diciembre de 2009.    <br> Aceptado el 20 de septiembre de 2010.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><strong>Objetivos</strong>: </i>Estandarizar un protocolo de adquisici&oacute;n para el estudio del metabolismo glucol&iacute;tico, oxidativo y de perfusi&oacute;n mioc&aacute;rdicos en un modelo de rata.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><strong>M&eacute;todos</strong>: </i>Se realizaron estudios con los tres principales radiotrazadores usados para evaluar la funci&oacute;n cardiaca: <sup>18</sup>F&#150;FDG para evaluar el metabolismo glucol&iacute;tico en tres protocolos distintos; 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato para el metabolismo oxidativo y <sup>13</sup>NH<sub>3</sub> para la perfusi&oacute;n cardiaca. (<sup>18</sup>F&#150;FDG)&#150; cinco ratas Wistar macho en tres diferentes protocolos: con acceso a libre demanda de comida y agua; con ayuno de ocho horas y con ayuno de ocho horas m&aacute;s carga oral de glucosa al 50%. Se adquirieron im&aacute;genes del &aacute;rea tor&aacute;cica durante 30 minutos mediante microPET; 30 y 60 minutos post&#150;administraci&oacute;n de 370 &#150; 555 MBq de <sup>18</sup>F&#150;FDG v&iacute;a IP. (1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato)&#150; Se estudiaron ocho ratas. Cuatro estudios est&aacute;ticos de 30 minutos y cuatro adquisiciones din&aacute;micas de 30 minutos tras administraci&oacute;n de 370 &#150; 555 MBq de1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato por vena caudal.(<sup>13</sup>NH<sub>3</sub>)&#150; 10 estudios est&aacute;ticos de 15 minutos despu&eacute;s de una dosis IV de 370 &#150; 555 MBq de <sup>13</sup>NH<sub>3</sub>, bajo anestesia inhalada con isofluorano a 1.5% a 2%. Se realiz&oacute; an&aacute;lisis comparativo y cualitativo de todas las im&aacute;genes obtenidas por dos m&eacute;dicos especialistas en el &aacute;rea y un an&aacute;lisis semi&#150;cuantitativo mediante reconstrucciones 3D y selecci&oacute;n de ROIs con el programa AMIDE en el caso de <sup>18</sup>F&#150;FDG. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><strong>Resultados</strong>: </i>Se determin&oacute; que las mejores im&aacute;genes para fines de evaluaci&oacute;n metab&oacute;lica del miocardio fueron las correspondientes a los 60 minutos post&#150;administraci&oacute;n de la <sup>18</sup>F&#150;FDG del protocolo sin ayuno. Se visualiz&oacute; sin problemas el miocardio de rata de las im&aacute;genes est&aacute;ticas con 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato, y mediante adquisici&oacute;n din&aacute;mica, se pudo apreciar la perfusi&oacute;n mioc&aacute;rdica. Las im&aacute;genes con <sup>13</sup>NH<sub>3</sub> permitieron observar una distribuci&oacute;n homog&eacute;nea del radiotrazador en los diferentes segmentos del ventr&iacute;culo izquierdo en el eje corto, eje largo vertical y eje largo horizontal.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><strong>Conclusiones</strong>: </i>Se logr&oacute; la estandarizaci&oacute;n de protocolos de adquisici&oacute;n de im&aacute;genes de los tres principales radiotrazadores utilizados para el estudio del metabolismo y perfusi&oacute;n cardiacos, en un modelo animal. Es factible establecer un protocolo v&aacute;lido para la valoraci&oacute;n de perfusi&oacute;n, metabolismo glucol&iacute;tico y oxidativo mioc&aacute;rdicos, con el fin de utilizarlo como punto de referencia para la evaluaci&oacute;n de terapias g&eacute;nica, farmacol&oacute;gica o quir&uacute;rgica a nivel experimental.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b><sup>18</sup>F&#150;FDG, 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato, <sup>13</sup>NH<sub>3</sub> MicroPET, Perfusi&oacute;n mioc&aacute;rdica, Metabolismo mioc&aacute;rdico; M&eacute;xico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><strong>Objective</strong>: </i>To standardize an acquisition protocol for the study of myocardial glucolitic and oxidative metabolism and perfusion in a rat model.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><strong>Methods</strong>: </i>Studies were carried out with the three main radiopharmaceuticals used to assess heart function:&#91;<sup>18</sup>F&#93;&#150;FDG for glucolitic metabolism; &#91;1&#150;<sup>11</sup>C&#93;&#150;acetate for oxidative metabolism and &#91;<sup>13</sup>N&#93;&#150;NH<sub>3</sub>for myocardial perfusion.&#91;<sup>18</sup>F&#93;&#150;FDG &#150;Five Wistar adult male rats were studied in three different protocols: non&#150;fasting group, fasting group,8 h before the study with water provided ad libitum, and a fasting group by the same time receiving an oral 50%&#150;glucose solution. Thirty&#150;minute scans were performed with a microPET Focus 120, 30 and 60 min after the administration of 370&#150;555 MBq 18F&#150;FDG. &#91;1&#150;<sup>11</sup>C&#93;&#150;Acetate &#150;Eight rats were studied. Four static and four dynamic 30 min acquisitions after a 370&#150;555 MBq of &#91;1&#150;<sup>11</sup>C&#93;&#150;acetate caudal vein administration.&#91;<sup>13</sup>N&#93;&#150;NH<sub>3</sub>&#150;Ten static studies were acquired 15 min post&#150;administration of 370555 MBqof<sup>13</sup>NH<sub>3</sub>, under 1.5&#150;2% isofluorane anesthesia. Comparative and visual analyses were performed by two experts in the field. A semi&#150;quantitative analysis was performed using 3D reconstructions and ROI selections with AMIDE software.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><strong>Results</strong>: </i>The best images were those obtained from the non&#150;fasting group, especially those taken at 60 min after the &#91;<sup>18</sup>F&#93;&#150;FDG administration. High quality myocardial, static images were obtained with &#91;1&#150;<sup>11</sup>C&#93;&#150;acetate, and the dynamic acquisitions allowed the identification of myocardial perfusion. The <sup>13</sup>NH<sub>3</sub>images showed a homogeneous distribution of the radiotracer in different segments of the short, long and horizontal axes in the left ventricle. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><strong>Conclusions</strong>: </i>It is possible to standardize the microPET acquisition protocols for the three main radiopharmaceuticals to evaluate the heart function in a rat model. It is feasible to establish a valid protocol for measuring glucolitic and oxidative myocardial metabolism and perfusion for gene, drug or surgical therapy assessment.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b><sup>18</sup>F&#150;FDG, 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetate, <sup>13</sup>NH<sub>3,</sub> MicroPET, Myocardial Viability; Mexico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recientemente los descubrimientos cient&iacute;ficos en materia biol&oacute;gica se han encaminado hacia la transici&oacute;n de modelos <i>in vitro </i>a modelos <i>in vivo. </i>Hoy, los esfuerzos se dirigen a desarrollar tecnolog&iacute;as de imagen no invasivas y con alta resoluci&oacute;n espec&iacute;ficas para animales peque&ntilde;os. El objetivo principal de la imagen molecular en roedores es obtener una se&ntilde;al lo m&aacute;s fuerte posible, factible de ser localizada de la manera m&aacute;s exacta mediante el marcaje de blancos espec&iacute;ficos y con la menor cantidad de radiotrazador posible. As&iacute; mismo, desarrollar un dispositivo capaz de producir im&aacute;genes tridimensionales de informaci&oacute;n anat&oacute;mica y funcional fusionada con una alta resoluci&oacute;n temporal.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una ventaja sobre la experimentaci&oacute;n <i>in vitro </i>y en cultivos celulares se puede lograr mediante la realizaci&oacute;n de estudios repetidos en el mismo animal, usando ensayos de im&aacute;genes biol&oacute;gicas en distintos tiempos. Esto revela un cuadro din&aacute;mico y m&aacute;s significativo de los cambios progresivos en par&aacute;metros biol&oacute;gicos bajo estudio, as&iacute; mismo es posible la valoraci&oacute;n temporal de las respuestas terap&eacute;uticas, todo en el mismo animal y sin la necesidad de sacrificarlo. Con lo que se obtienen resultados de mejor calidad usando menos animales de experimentaci&oacute;n. Al utilizar una menor cantidad de sujetos de investigaci&oacute;n mediante t&eacute;cnicas de imagen molecular se atiende a cuestiones &eacute;ticas relacionadas con el uso adecuado de animales de laboratorio.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La tomograf&iacute;a por emisi&oacute;n de positrones (PET) ofrece la capacidad &uacute;nica de medir en forma no invasiva el flujo de substratos mioc&aacute;rdicos regionales y el &iacute;ndice de reacciones bioqu&iacute;micas en mmol por minuto por gramo de miocardio. Mientras que este aspecto es verdaderamente &uacute;nico, la PET ofrece otras capacidades adicionales, como por ejemplo la evaluaci&oacute;n o cuantificaci&oacute;n del flujo sangu&iacute;neo mioc&aacute;rdico regional.<sup>1</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En las &uacute;ltimas d&eacute;cadas la incidencia de enfermedades cardiovasculares ha aumentado de manera dr&aacute;stica, especialmente en los pa&iacute;ses en v&iacute;as de desarrollo, donde el estilo de vida est&aacute; presentando una tendencia de comportamiento similar al de los pa&iacute;ses de primer mundo, tanto en h&aacute;bitos diet&eacute;ticos (mayor prevalencia de obesidad en gente joven) como el sedentarismo. Estad&iacute;sticas del INEGI informaron para fines del 2006 como la principal causa de muerte en M&eacute;xico a la cardiopat&iacute;a isqu&eacute;mica (CI) y en &eacute;ste rubro el infarto al miocardio (IAM), con un promedio de 40 a 60 mil defunciones al a&ntilde;o, especialmente en personas mayores de 65 a&ntilde;os, seguida de padecimientos cr&oacute;nico&#150;degenerativos como la diabetes mellitus y despu&eacute;s los padecimientos oncol&oacute;gicos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En muchas ocasiones la enfermedad se manifiesta de manera inesperada, ya sea por infarto agudo de miocardio o bien por muerte s&uacute;bita sin antecedentes cl&iacute;nicos relevantes, sin embargo, en otros casos, puede pasar inadvertido especialmente en pacientes diab&eacute;ticos. Con base en lo anterior, el diagn&oacute;stico se ha dirigido hacia una detecci&oacute;n precoz con el fin de intervenir la enfermedad en fases tempranas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Actualmente se cuenta con una amplia gama de estudios tanto no invasivos como invasivos para el diagn&oacute;stico de la CI, entre los m&aacute;s importantes se cuenta con la Ecocardiograf&iacute;a, la tomograf&iacute;a vascular contrastada, la resonancia magn&eacute;tica (RM), la tomograf&iacute;a por emisi&oacute;n de fot&oacute;n &uacute;nico (SPECT), la angiograf&iacute;a coronaria y la PET. La utilidad en el diagn&oacute;stico de la isquemia mioc&aacute;rdica por las diferentes t&eacute;cnicas de imagen anteriormente mencionadas, ha sido reportada en m&uacute;ltiples estudios, compitiendo por certeza diagn&oacute;stica en la determinaci&oacute;n del tejido viable tras un evento de infarto mioc&aacute;rdico.<sup>2&#150;6</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La reciente puesta en operaci&oacute;n del sistema de Micro&#150;PET en la unidad PET&#150;CT de la UNAM, primer equipo en su tipo en Am&eacute;rica Latina permite la realizaci&oacute;n de estudios de imagen nuclear en animales de experimentaci&oacute;n, facilitando as&iacute; la profundizaci&oacute;n en el conocimiento cient&iacute;fico a varios niveles.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es fundamental la realizaci&oacute;n de evaluaciones mioc&aacute;rdicas en modelos animales que fijen las bases para el posterior estudio de fisiopatolog&iacute;as espec&iacute;ficas, as&iacute; como sus posibles tratamientos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Metabolismo glucol&iacute;tico cardiaco y su evaluaci&oacute;n con <sup>18</sup>F&#150;FDG</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El mantenimiento homeost&aacute;tico de los niveles de glucosa sangu&iacute;nea es fundamental para la vida de los organismos mam&iacute;feros. La glucosa es el sustrato m&aacute;s confiable para la producci&oacute;n energ&eacute;tica en el coraz&oacute;n debido a que su concentraci&oacute;n plasm&aacute;tica se mantiene dentro de un estrecho rango. La importancia del metabolismo de la glucosa v&iacute;a glicolisis ha sido considerada al evaluar el miocardio isqu&eacute;mico e hipertrofiado,<sup>7&#150;10 </sup>pero el metabolismo aer&oacute;bico de la glucosa para el mantenimiento de la funci&oacute;n contr&aacute;ctil normal ha recibido menos atenci&oacute;n, principalmente debido al hecho bien conocido de que los &aacute;cidos grasos son, en condiciones normales, el principal sustrato para la producci&oacute;n energ&eacute;tica del coraz&oacute;n.<sup>8,11,12</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El coraz&oacute;n es un &oacute;rgano "omn&iacute;voro" que funciona mejor cuando &eacute;ste oxida diferentes sustratos simult&aacute;neamente.<sup>13</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El az&uacute;car simple D&#150;glucosa es la mol&eacute;cula org&aacute;nica m&aacute;s abundante en la naturaleza. La glucosa que es utilizada por el coraz&oacute;n, proviene ya sea de la circulaci&oacute;n sangu&iacute;nea o de los almacenes intracelulares de gluc&oacute;geno. El transporte de la glucosa hacia el interior de la c&eacute;lula mioc&aacute;rdica es regulado por transportadores espec&iacute;ficos. La glucosa intracelular es r&aacute;pidamente fosforilada y se convierte en sustrato adecuado para la gluc&oacute;lisis, la s&iacute;ntesis de gluc&oacute;geno o la s&iacute;ntesis de ribosa. Tras incorporarse a la v&iacute;a glucol&iacute;tica, la glucosa es transformada en &uacute;ltima instancia en piruvato, el cual, es sustrato de v&iacute;as metab&oacute;licas posteriores.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La captaci&oacute;n de glucosa, definida como el transporte y fosforilaci&oacute;n de la misma, es medible mediante el an&aacute;logo <sup>18</sup>F&#150;2&#150;deoxi&#150;2&#150;fluoro&#150;D&#150;glucosa (<sup>18</sup>F&#150;FDG) y PET. La PET con <sup>18</sup>F&#150;FDG se considera el estudio m&aacute;s sensible para el diagn&oacute;stico de viabilidad mioc&aacute;rdica debido a que detecta la actividad metab&oacute;lica de la c&eacute;lula mioc&aacute;rdica. La <sup>18</sup>F&#150;FDG se inyecta por v&iacute;a intravenosa y se incorpora a la c&eacute;lula cardiaca metab&oacute;licamente activa (c&eacute;lulas mioc&aacute;rdicas vivas) que preservan integridad de membrana y persistencia de los procesos bioqu&iacute;micos. Comparado con las t&eacute;cnicas tradicionales de Cardiolog&iacute;a Nuclear es a&uacute;n m&aacute;s sensible, debido a que estas &uacute;ltimas exploran la perfusi&oacute;n de la c&eacute;lula mioc&aacute;rdica y no su actividad metab&oacute;lica. Se ha demostrado que 40% a 50% de los pacientes considerados con necrosis sin tejido viable residual, por los estudios de medicina nuclear, poseen viabilidad cuando se les efect&uacute;a un estudio de PET con <sup>18</sup>F&#150;FDG.<sup>14</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tras su administraci&oacute;n, el transporte de la <sup>18</sup>F&#150;FDG se lleva a cabo por prote&iacute;nas transportadoras de la familia GLUT, un sistema saturable est&eacute;reo&#150;espec&iacute;fico de transportadores.<sup>15&#150;17</sup> La GLUT&#150;4 es la principal isoforma que se expresa en la superficie del miocardio adulto, es dependiente de insulina y se puede encontrar tambi&eacute;n en tejido adiposo.<sup>15</sup> Adem&aacute;s, la c&eacute;lula mioc&aacute;rdica expresa el transportador GLUT&#150;1, que predomina en el miocardio fetal y presumiblemente es independiente de la acci&oacute;n de la insulina.<sup>16</sup> La fosforilaci&oacute;n de la glucosa por parte de la hexocinasa, es el primer paso regulatorio dentro del metabolismo glucol&iacute;tico. El coraz&oacute;n presenta dos isoenzimas: la hexocinasa I que predomina en el coraz&oacute;n fetal y de reci&eacute;n nacido, y la hexocinasa II, regulada por insulina y predominante en el coraz&oacute;n adulto.<sup>18</sup> Adem&aacute;s de ingresar a la v&iacute;a glucol&iacute;tica, una fracci&oacute;n de la glucosa&#150;6&#150;fosfato es sustrato para la s&iacute;ntesis de gluc&oacute;geno. El gluc&oacute;geno ocupa cerca de 2% del volumen celular del miocardio adulto y aproximadamente 30% del miocito cardiaco fetal y del reci&eacute;n nacido.<sup>19</sup> Contrario a lo que ocurre en h&iacute;gado y m&uacute;sculo esquel&eacute;tico, el m&uacute;sculo cardiaco aumenta su contenido de gluc&oacute;geno con el ayuno.<sup>20</sup> Esto concuerda con el principio de que los &aacute;cidos grasos, principal sustrato energ&eacute;tico mioc&aacute;rdico, inhiben la gluc&oacute;lisis en mayor medida que a la captaci&oacute;n de glucosa, redirigiendo as&iacute; a la glucosa hacia la s&iacute;ntesis de gluc&oacute;geno. El almacenamiento de gluc&oacute;geno se incrementa tambi&eacute;n por influencia de la insulina, debido a la estimulaci&oacute;n simult&aacute;nea del transporte de glucosa y la s&iacute;ntesis de gluc&oacute;geno.<sup>21</sup> As&iacute; mismo, la glucogenog&eacute;nesis se incrementa cuando el lactato act&uacute;a como principal sustrato energ&eacute;tico del coraz&oacute;n.<sup>22&#150;23</sup>La inhibici&oacute;n de la oxidaci&oacute;n de glucosa por los &aacute;cidos grasos es un fen&oacute;meno bien conocido del metabolismo de los mam&iacute;feros. Los mecanismos implicados se definieron en estudios con corazones perfundidos, que llevaron a la formulaci&oacute;n del "ciclo glucosa&#150;&aacute;cidos grasos".<sup>11</sup> Por otro lado, la glucosa tambi&eacute;n es capaz de inhibir la oxidaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos. La transferencia de los &aacute;cidos grasos activados hacia el interior de la mitocondria, donde ocurre la &#946;&#150;oxidaci&oacute;n, es catalizada por la carnitinapalmitoil transferasa&#150;1(CPT&#150;1 y CPT&#150;2). La tasa de oxidaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos es controlada por su tasa de transferencia hacia el interior mitocondrial a trav&eacute;s de la CPT&#150;1.<sup>12</sup> Este &uacute;ltimo paso es inhibido por la malonil&#150;CoA,<sup>24</sup> formada a partir de acetil&#150;CoA por la acetil&#150;CoA carboxilasa.<sup>25&#150;26</sup> Condiciones como un aumento en la concentraci&oacute;n de glucosa o lactato, o la adici&oacute;n de insulina, que incrementan la producci&oacute;n de acetil&#150;CoA a partir de piruvato; estimulan la producci&oacute;n de malonil&#150;CoA, inhibiendo as&iacute; la &#946;&#150;oxidaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los productos de la gluc&oacute;lisis ingresan posteriormente al ciclo de Krebs, donde convergen las v&iacute;as metab&oacute;licas encaminadas a la oxidaci&oacute;n de las mol&eacute;culas combustibles para la producci&oacute;n de ATP a partir de acetil&#150;CoA e incluyendo el reciclaje de CO<sub>2</sub> y H<sub>2</sub>O.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Metabolismo oxidativo cardiaco y su evaluaci&oacute;n con 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El coraz&oacute;n depende casi por completo en la oxidaci&oacute;n aer&oacute;bica de sustratos para la generaci&oacute;n del ATP necesario para el mantenimiento de su funci&oacute;n contr&aacute;ctil. En el coraz&oacute;n normal, la demanda de ox&iacute;geno se encuentra en balance con el aporte del mismo, que es determinado por el flujo sangu&iacute;neo mioc&aacute;rdico y la extracci&oacute;n de ox&iacute;geno. Dicha extracci&oacute;n mioc&aacute;rdica de ox&iacute;geno es alta (&#150;70%) en sujetos normales en reposo, presenta una variaci&oacute;n importante durante el ejercicio y bajo diferentes patolog&iacute;as como enfermedad arterial coronaria, entre otras.<sup>27</sup> As&iacute; mismo, el balance entre la demanda y el aporte de ox&iacute;geno se ve alterado en muchas enfermedades. En consecuencia, para un mejor entendimiento de la fisiopatolog&iacute;a y la evaluaci&oacute;n de posibles terapias, es importante medir adem&aacute;s de la perfusi&oacute;n, el consumo mioc&aacute;rdico de ox&iacute;geno (MVO<sub>2</sub>), sobre todo a nivel regional.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con la introducci&oacute;n de la PET, se han desarrollado varios trazadores destinados a la cuantificaci&oacute;n regional de perfusi&oacute;n y metabolismo mioc&aacute;rdicos. En las dos &uacute;ltimas d&eacute;cadas del siglo pasado, varios estudios determinaron que el PET con 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato provee una estimaci&oacute;n acertada del MVO<sub>2</sub> y la perfusi&oacute;n cardiaca.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El MVO<sub>2</sub> se puede dividir en dos componentes: el ox&iacute;geno necesario para la contracci&oacute;n (trabajo) y el necesario para los dem&aacute;s procesos en las c&eacute;lulas cardiacas, como conducci&oacute;n el&eacute;ctrica y metabolismo basal. Se han descrito 9 determinantes del MVO<sub>2</sub>.<sup>28</sup> Entre los m&aacute;s importantes se encuentran el desarrollo de tensi&oacute;n, la contractilidad y la frecuencia cardiaca. Estos determinantes de MVO<sub>2</sub> determinan tambi&eacute;n el requerimiento de ATP, por lo que se podr&iacute;a asumir que el requerimiento de ATP es igual al requerimiento de ox&iacute;geno. El ATP se produce ya sea, a nivel de sustrato o por fosforilaci&oacute;n oxidativa de ADP. La contribuci&oacute;n de fosforilaci&oacute;n a nivel de sustrato a la producci&oacute;n total de ATP es baja. La fosforilaci&oacute;n oxidativa es el proceso de reducci&oacute;n de equivalentes mediante transferencia de electrones al ox&iacute;geno por una cadena de acarreadores, produciendo agua en el &uacute;ltimo paso. Este es el mecanismo principal de uso del ox&iacute;geno dentro de la c&eacute;lula, y el &uacute;nico mecanismo presente en el miocardio. Por lo tanto el MVO<sub>2</sub> es id&eacute;ntico al flujo a trav&eacute;s de la fosforilaci&oacute;n oxidativa.<sup>29</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los equivalentes de reducci&oacute;n que participan en la fosforilaci&oacute;n oxidativa, NADH + H<sup>+</sup> y FADH<sub>2</sub> acarrean electrones de procesos en el ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos, la gluc&oacute;lisis y la &#946;&#150;oxidaci&oacute;n. La relaci&oacute;n entre estos equivalentes de reducci&oacute;n derivados del ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos y los derivados de la gluc&oacute;lisis y la &#946;&#150;oxidaci&oacute;n es relativamente estable. Esta relaci&oacute;n es aproximadamente de 2:1 a favor del ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos. Consecuentemente, cerca de dos terceras partes del ox&iacute;geno utilizado en la c&eacute;lula corresponde al utilizado en la reducci&oacute;n de los equivalentes derivados del ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos. La relaci&oacute;n es dependiente de la longitud de la cadena de &aacute;cidos grasos usados por la c&eacute;lula. Los mam&iacute;feros utilizan principalmente cadenas de entre 16 y 18 C, resultando en un cambio m&aacute;ximo en la relaci&oacute;n de 6%.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El acetato, un &aacute;cido graso libre de dos carbonos, entra directamente al ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos tras su conversi&oacute;n a acetil&#150;CoA. Debido a esto, el acetato marcado puede ser utilizado para medir el flujo del ciclo, as&iacute; como la producci&oacute;n de los equivalentes de reducci&oacute;n, que a su vez se encuentra acoplado firmemente al consumo de ox&iacute;geno, mismo que se puede estimar midiendo el flujo del acetato a trav&eacute;s del ciclo de Krebs.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato es ampliamente usado como radiotra&#150;zador del ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos, y as&iacute;, del metabolismo oxidativo en general a nivel mioc&aacute;rdico.<sup>30</sup> Este uso aprovecha el hecho de que la mayor&iacute;a de los sustratos mioc&aacute;rdicos oxidables, incluyendo &aacute;cidos grasos, glucosa, lactato, piruvato, cuerpos cet&oacute;nicos y algunos amino&aacute;cidos, son oxidados v&iacute;a conversi&oacute;n a acetil&#150;CoA y oxidaci&oacute;n a trav&eacute;s del ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos.<sup>31</sup> La relaci&oacute;n entre el ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos y la tasa de consumo de ox&iacute;geno mioc&aacute;rdico es similar para la mayor&iacute;a de los sustratos.<sup>32</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha descrito que el acetato comparte un transportador monocarboxilato con lactato y piruvato a trav&eacute;s de la membrana sarcol&eacute;mica en corazones perfundidos de conejo<sup>33</sup> y miocitos cardiacos de cobayo.<sup>34</sup> Una vez transportado al interior de la c&eacute;lula, el C&#150;1 acetato es activado f&aacute;cilmente a C&#150;1 acetil&#150;CoA por la acetil&#150;CoAsinteta&#150;za, localizada en la matriz mitocondrial<sup>35</sup> y entonces es oxidado en el ciclo de Krebs. En el miocardio el acetato no es metabolizado por ninguna otra v&iacute;a.<sup>36</sup> A su paso por el ciclo, el carbono marcado se incorpora en distintas posiciones de los intermediarios del ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos.<sup>36&#150;37</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En varios estudios se ha demostrado una estrecha correlaci&oacute;n entre la tasa de aclaramiento mioc&aacute;rdico de C&#150;1 acetato y el MVO<sub>2</sub> en coraz&oacute;n perfundido de rata y miocardio canino bajo diferentes condiciones de flujo y metabolismo.<sup>36,38&#150;41</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El acetato es extra&iacute;do &aacute;vidamente por el tejido mioc&aacute;rdico, con fracciones de extracci&oacute;n <i>in vivo </i>en el rango de 65% a tasas de flujo fisiol&oacute;gicamente normales (&#126;1 ml&#150;g<sup>&#150;1</sup>&middot; min<sup>&#150;1</sup>) a 47% bajo estado de hiperemia inducida con dipiramidol (&#126;1 ml&#150;g&#150;1&middot; min&#150;1<sup></sup>).<sup>42</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Contrario al <sup>18</sup>F&#150;FDG, la tasa de aclaramiento del 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato no tiene variaci&oacute;n al modificar la disponibilidad de sustratos.<sup>43,44</sup> Adem&aacute;s, el aclaramiento de 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato ha resultado homog&eacute;neo en varios estudios cuyo objetivo fue buscar diferencias regionales en miocardio normal.<sup>40,42,45,46</sup> Por lo que no se necesita estandarizaci&oacute;n metab&oacute;lica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El r&aacute;pido aclaramiento del 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato en su primera fase se correlaciona estrechamente con el consumo mioc&aacute;rdico de ox&iacute;geno en animales<sup>38,41,47</sup> y en el hombre.<sup>42,48</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Debido a que se ha demostrado que la captaci&oacute;n temprana de 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato es &uacute;til como &iacute;ndice indirecto de la tasa de perfusi&oacute;n mioc&aacute;rdica regional en pacientes estables con enfermedad arterial coronaria,<sup>49,50</sup> un modelo simplificado para 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato proporcionar&iacute;a informaci&oacute;n cuantitativa acerca del flujo sangu&iacute;neo mioc&aacute;rdico regional y el metabolismo oxidativo en un solo estudio PET con acetato.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Flujo sangu&iacute;neo mioc&aacute;rdico</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los trazadores como el agua marcada con ox&iacute;geno&#150;15 (H<sub>2</sub><sup>15</sup>O) y amoniaco marcado con nitr&oacute;geno&#150;13 (<sup>13</sup>NH<sub>3</sub>) son los radiotrazadores m&aacute;s utilizados por PET para la cuantificaci&oacute;n regional y absoluta del flujo sangu&iacute;neo. Los estudios comparativos realizados en flujo sangu&iacute;neo mioc&aacute;rdico utilizando cualquiera de estos trazadores tanto en reposo como durante vasodilataci&oacute;n coronaria inducida farmacol&oacute;gicamente son similares. El H<sub>2</sub><sup>15</sup>O tiene una extracci&oacute;n mioc&aacute;rdica completa que es independiente de flujo y del estado metab&oacute;lico del miocardio; por otro lado, las im&aacute;genes obtenidas con <sup>13</sup>NH<sub>3</sub> son de mejor calidad.<sup>51</sup> Ambos tienen vidas medias muy cortas, lo cual hace posible la medici&oacute;n repetitiva de diferentes par&aacute;metros durante una misma sesi&oacute;n de PET.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las im&aacute;genes de perfusi&oacute;n mioc&aacute;rdica mediante PET con <sup>13</sup>N&#150;amoniaco han mostrado ser un m&eacute;todo altamente sensible (94% a 98%) y espec&iacute;fico (95% a 100%) para la detecci&oacute;n de enfermedad arterial coronaria, superior a SPECT tanto en precisi&oacute;n diagn&oacute;stica como en calidad de imagen.<sup>52</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adem&aacute;s, la elevada fracci&oacute;n de extracci&oacute;n del <sup>13</sup>N&#150;amoniaco permite identificar isquemia leve de manera m&aacute;s precisa en comparaci&oacute;n con trazadores SPECT como el Tc&#150;99m, cuya fracci&oacute;n de extracci&oacute;n es menor.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La evaluaci&oacute;n de la perfusi&oacute;n mioc&aacute;rdica es de gran relevancia en pacientes con CI, en los cuales es posible determinar no s&oacute;lo el grado de isquemia mioc&aacute;rdica, sino tambi&eacute;n la medici&oacute;n cuantitativa del flujo sangu&iacute;neo regional y de la reserva de flujo coronario, pudiendo establecer el impacto funcional de las lesiones coronarias y del flujo colateral, con lo cual podemos realizar una estratificaci&oacute;n pron&oacute;stica precisa en estos pacientes.<sup>53</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Asimismo, el estudio de perfusi&oacute;n mioc&aacute;rdica mediante PET con <sup>13</sup>N&#150;amoniaco permite la evaluaci&oacute;n de distintas aproximaciones terap&eacute;uticas orientadas a mejorar la perfusi&oacute;n mioc&aacute;rdica que requieren una medici&oacute;n no invasiva y precisa del flujo sangu&iacute;neo mioc&aacute;rdico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>M&eacute;todos </b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Animales</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utilizaron ratas Wistar macho, con un peso de 300 a 350 gramos. Los animales fueron proporcionados por el bioterio central de la Facultad de Medicina, tras la aprobaci&oacute;n de La Comisi&oacute;n de Investigaci&oacute;n del MicroPet y La Comisi&oacute;n de &Eacute;tica, ambas de la Facultad de Medicina de la UNAM. El manejo &oacute;ptimo de los sujetos de experimentaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo con base en la Norma Oficial Mexicana NOM&#150;062&#150;ZOO&#150;1999 "Especificaciones t&eacute;cnicas para la producci&oacute;n, cuidado y uso de animales de laboratorio". Para el protocolo con <sup>18</sup>F&#150;FDG se utilizaron cinco ratas, ocho ratas en el caso de 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato y 10 animales para el protocolo con <sup>13</sup>NH<sub>3</sub>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><sup>18</sup>F&#150;FDG (dise&ntilde;o de grupos)</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el estudio de metabolismo glucol&iacute;tico los animales se estudiaron en tres diferentes protocolos, realizados en distintos tiempos (con al menos un d&iacute;a de diferencia entre cada uno), con el fin de establecerlos como sus propios controles.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dise&ntilde;o de los protocolos fue el siguiente:</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<blockquote>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Sin ayuno (libre acceso de comida y agua inmediatamente antes del estudio).</font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Con ayuno (se restringi&oacute; el acceso de comida ocho horas antes del estudio, solo con acceso de agua a libre demanda).</font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Con ayuno m&aacute;s carga oral de glucosa (ayuno de ocho horas, con administraci&oacute;n de glucosa al 50% v&iacute;a oral, a dosis de 0.4 mg de glucosa por gramo de peso corporal, 30 minutos antes de la administraci&oacute;n de la <sup>18</sup>F&#150;FDG).</font></p> </blockquote>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cada protocolo se adquirieron dos rastreos PET de 30 minutos; el primero a los 30 minutos despu&eacute;s de la administraci&oacute;n de una dosis intraperitoneal de 370 &#150; 555 MBq de <sup>18</sup>F&#150;FDG y el segundo rastreo a los 60 minutos, esto con el fin de determinar cu&aacute;l de las dos adquisiciones presenta una mejor relaci&oacute;n blanco&#150;fondo, para la adecuada definici&oacute;n del miocardio ventricular.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los animales fueron divididos en dos grupos de igual n&uacute;mero de animales. Se adquirieron cuatro estudios est&aacute;ticos y cuatro estudios din&aacute;micos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el primer caso se administr&oacute; una dosis de 370 &#150; 555 MBq de 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato a trav&eacute;s de la vena caudal, tras dos minutos se inici&oacute; una adquisici&oacute;n de 30 minutos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el caso de la adquisici&oacute;n din&aacute;mica, se administr&oacute; igual cantidad de radiotrazador v&iacute;a intravenosa, se adquiri&oacute; el estudio durante los 30 minutos inmediatos a la administraci&oacute;n, con la siguiente secuencia: 24 im&aacute;genes X 5 s; 15 im&aacute;genes X 20 s; siete im&aacute;genes X 40 s; cinco im&aacute;genes X 96 s; cuatro im&aacute;genes X 150s.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><sup>13</sup>NH<sub>3</sub></b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se adquirieron 10 rastreos est&aacute;ticos de 15 minutos tras la administraci&oacute;n intravenosa de 370 &#150; 555 MBq de <sup>13</sup>NH<sub>3</sub></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El estudio de metabolismo glucol&iacute;tico con <sup>18</sup>F&#150;FDG se llev&oacute; a cabo con los animales bajo condiciones de anestesia a dosis de 50 mg/Kg de pentobarbital v&iacute;a intraperitoneal. En el resto de los estudios se utiliz&oacute; isofluorano como anest&eacute;sico a dosis de inducci&oacute;n de 4% y 1.5% a 2% de mantenimiento durante la realizaci&oacute;n de los estudios.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los animales se colocaron en posici&oacute;n supina con fijaci&oacute;n externa de las cuatro extremidades. La cama fue centrada a la altura del coraz&oacute;n para obtener im&aacute;genes de t&oacute;rax utilizando un apuntador l&aacute;ser. Se registr&oacute; constantemente la frecuencia respiratoria y se monitore&oacute; el estado anest&eacute;sico durante el periodo de adquisici&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; un equipo microPET Focus 120 de tipo Concorde Microsystems LLC (SIEMENES Inc, Knoxville, TN) para la adquisici&oacute;n de las im&aacute;genes. El microPET cuenta con un anillo detector de 17.2 cm de di&aacute;metro, con un campo de visi&oacute;n (FOV, por sus siglas en ingl&eacute;s) transaxial de 112 mm y 18 mm en el eje axial. El equipo se encuentra conformado por un total de 13 384 cristales detectores de LSO (Ortosilicato de Lutecio) de 1.5 mm por 1.5 mm por 1.0 mm cada uno. La resoluci&oacute;n intr&iacute;nseca de los cristales en promedio es de 1.68 mm, con una resoluci&oacute;n energ&eacute;tica entre el 15% y 25% y un tiempo de resoluci&oacute;n de 2.4 ns (nanosegundos) para fotones de 511 keV. Este equipo opera en modo 3D. La resoluci&oacute;n espacial del equipo es de 0.5 a 1.3 mm al centro de la cama para im&aacute;genes reconstruidas y su resoluci&oacute;n volum&eacute;trica es de 8 mm<sup>3</sup>, el pico absoluto de sensibilidad es de 7.1%. La tasa de conteo est&aacute; en el orden de las 800 kcps (kilocuentas por segundo) a una dosis de 88 MBq de radiotrazador.<sup>54,55</sup> La reconstrucci&oacute;n de las im&aacute;genes se realiz&oacute; con el algoritmo FBP utilizando un filtro de Rampa. Se obtuvieron im&aacute;genes en cortes axial, coronal y sagital en todos los estudios.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el caso de los estudios con <sup>18</sup>F&#150;FDG, se realizaron dos tipos an&aacute;lisis: cualitativo y semi&#150;cuantitativo. El an&aacute;lisis cualitativo se realiz&oacute; por dos m&eacute;dicos con el fin de evaluar la calidad de las im&aacute;genes, comparando los dos tiempos de adquisici&oacute;n (30 o 60 minutos) y determinar as&iacute; el m&aacute;s conveniente para el an&aacute;lisis de metabolismo mioc&aacute;rdico de la <sup>18</sup>F&#150;FDG.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el an&aacute;lisis semi&#150;cuantitativo se realiz&oacute; el renderizado volum&eacute;trico de todos los estudios (reconstrucci&oacute;n tridimensional de las im&aacute;genes) utilizando el programa AMIDE.<sup>56</sup> Se determinaron tres ROIs (regiones de inter&eacute;s, por sus siglas en ingl&eacute;s) igualmente volum&eacute;tricos (esferas 3D de 1900 voxeles en promedio, lo que se traduce en 904 mm<sup>3</sup> en promedio por cada ROI)</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las regiones de inter&eacute;s seleccionadas fueron: coraz&oacute;n, pulm&oacute;n y m&uacute;sculo esquel&eacute;tico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se determin&oacute; al tejido pulmonar como regi&oacute;n de inter&eacute;s importante para la valoraci&oacute;n visual. Ya que es el &oacute;rgano contiguo al coraz&oacute;n, el contraste entre estos dos tipos de tejido debe ser elevado para permitir una correcta definici&oacute;n de la silueta cardiaca.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se determin&oacute; al m&uacute;sculo esquel&eacute;tico (b&iacute;ceps derecho) como regi&oacute;n de inter&eacute;s para evaluar la competencia por el sustrato energ&eacute;tico, en este caso <sup>18</sup>F&#150;FDG mediante la variaci&oacute;n del aporte alimenticio de cada grupo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se obtuvieron los valores estandarizados de captaci&oacute;n (SUVs por sus siglas en ingl&eacute;s, <i>standardized uptake value</i>) de los tres ROIs de cada estudio (90 en total), de los cuales se extrajeron los siguientes valores: mediana, media, varianza, desviaci&oacute;n est&aacute;ndar, rango, tama&ntilde;o en voxeles y en mm. Con los valores medios de radiactividad se realiz&oacute; el c&aacute;lculo de distribuci&oacute;n con base en los distintos grupos. Derivados de dichos SUVs se calcularon porcentajes de captaci&oacute;n de los diferentes ROIs de cada sujeto experimental, as&iacute; mismo se calcularon contrastes: Contraste visual, definido como la relaci&oacute;n entre el valor promedio de la regi&oacute;n correspondiente al tejido mioc&aacute;rdico y al tejido pulmonar; y contraste metab&oacute;lico&#150;visual correspondiente a la relaci&oacute;n entre el valor estandarizado de captaci&oacute;n del m&uacute;sculo cardiaco y el m&uacute;sculo esquel&eacute;tico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realiz&oacute; an&aacute;lisis estad&iacute;stico con los valores medios de radiactividad en SUVs utilizando el programa SPSS.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los estudios con 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato y <sup>13</sup>NH<sub>3</sub> se analizaron cualitativamente por dos m&eacute;dicos para determinar la calidad de las im&aacute;genes.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><sup>18</sup>F&#150;FDG</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis cualitativo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Comparaci&oacute;n por tiempos de distribuci&oacute;n del radiotrazador</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se obtuvo una mejor definici&oacute;n del &aacute;rea mioc&aacute;rdica en la imagen de 60 minutos en la mayor&iacute;a de los casos. Especialmente para las im&aacute;genes de los protocolos uno y tres; ya que en la imagen de 30 minutos a&uacute;n se encuentra parte del radiotrazador por circulaci&oacute;n sist&eacute;mica, dando como resultado cierta distribuci&oacute;n de la <sup>18</sup>F&#150;FDG en tejidos blandos como son grasa parda, m&uacute;sculos tor&aacute;cicos (paravertebrales e intercostales), mediastino y &aacute;rea pulmonar; en la imagen de 60 minutos dicha captaci&oacute;n disminuye lo que permite mayor definici&oacute;n de las paredes ventriculares para su adecuada valoraci&oacute;n.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Comparaci&oacute;n de las im&aacute;genes por tipo de protocolo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el protocolo uno se obtuvieron las im&aacute;genes de mayor captaci&oacute;n y definici&oacute;n de las paredes ventriculares izquierdas, especialmente con la imagen de 60 minutos. Se puede definir perfectamente el ventr&iacute;culo izquierdo, parte del ventr&iacute;culo derecho, con escasa captaci&oacute;n del radiotrazador por tejidos blandos del t&oacute;rax <b>(<a href="/img/revistas/acm/v80n4/a5f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). </b>La calidad de imagen observada en el protocolo sin ayuno se obtuvo s&oacute;lo en 60% de las im&aacute;genes del protocolo tres (ayuno con carga de glucosa oral) pues en el resto, el grado de captaci&oacute;n mioc&aacute;rdica fue menor, con distribuci&oacute;n de la <sup>18</sup>F&#150;FDG de manera importante a nivel muscular y grasa parda <b>(<a href="/img/revistas/acm/v80n4/a5f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). </b>En el caso de las im&aacute;genes del protocolo con ayuno, la captaci&oacute;n del radiotrazador tanto por miocardio como en tejidos blandos del t&oacute;rax es casi nula, lo que impide definir completamente la silueta cardiaca en muchos casos <b>(<a href="/img/revistas/acm/v80n4/a5f3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>).</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis semi&#150;cuantitativo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se obtuvieron 90 ROIs correspondientes a tejidos mioc&aacute;rdico, pulmonar y m&uacute;sculo esquel&eacute;tico; de los cinco animales, en cada uno de los tres protocolos y los dos tiempos de adquisici&oacute;n <b>(<a href="/img/revistas/acm/v80n4/a5t1.jpg" target="_blank">Tablas 1</a>, <a href="/img/revistas/acm/v80n4/a5t2.jpg" target="_blank">2</a> </b>y <b><a href="/img/revistas/acm/v80n4/a5t3.jpg" target="_blank">3</a>).</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el caso del contraste visual, es decir la relaci&oacute;n entre la captaci&oacute;n de <sup>18</sup>F&#150;FDG en tejido mioc&aacute;rdico vs tejido pulmonar del protocolo de ayuno se encontr&oacute; entre 2 y 2.5:1. Para el protocolo de ayuno + glucosa, el contraste result&oacute; cercano a 3 y 3.5:1 a los 30 y 60 minutos respectivamente. El mayor contraste visual se encontr&oacute; en el protocolo sin ayuno, 6.8:1 en el periodo de 30 minutos de biodistribuci&oacute;n y 9:1 a los 60 minutos post administraci&oacute;n. Estas cifras concuerdan con la calidad de im&aacute;genes obtenidas para la evaluaci&oacute;n cualitativa, misma que se realiz&oacute; sin problemas al definir la silueta cardiaca en todos los casos del protocolo uno.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A la relaci&oacute;n entre la captaci&oacute;n del radiotrazador por m&uacute;sculo cardiaco y la captaci&oacute;n en m&uacute;sculo esquel&eacute;tico se le denomin&oacute; contraste metab&oacute;lico&#150;visual. Dicho contraste es el resultado de la distribuci&oacute;n de glucosa radiomarcada. Es dependiente de los requerimientos energ&eacute;ticos de los tejidos a evaluar, en este caso m&uacute;sculo cardiaco y esquel&eacute;tico. Tanto en el protocolo de ayuno como en el de ayuno + glucosa, esta proporci&oacute;n de captaci&oacute;n se encontr&oacute; muy cercana a una relaci&oacute;n 1:1 bajo los dos periodos de biodistribuci&oacute;n evaluados, es decir; la <sup>18</sup>F&#150;FDG se concentr&oacute; casi en la misma cantidad en el m&uacute;sculo cardiaco que en el m&uacute;sculo esquel&eacute;tico, lo que dificult&oacute; su evaluaci&oacute;n debido al bajo contraste. En cambio, en el protocolo uno la relaci&oacute;n de actividad registrada en el miocardio fue en promedio 4.25 veces mayor que en el m&uacute;sculo esquel&eacute;tico, lo que se traduce en un alto contraste metab&oacute;lico&#150;visual que permiti&oacute; una adecuada valoraci&oacute;n del tejido mioc&aacute;rdico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El protocolo sin ayuno present&oacute; en ambos tipos de contraste valores muy superiores a los obtenidos con los otros dos protocolos. Despu&eacute;s de 30 minutos de biodistribuci&oacute;n se alcanz&oacute; el mayor contraste metab&oacute;lico&#150;visual (4.81:1) y 1 hora post&#150;inyecci&oacute;n se present&oacute; el mayor contraste visual (9.01:1). Por lo que el protocolo sin ayuno result&oacute; el m&aacute;s adecuado para la definici&oacute;n de las paredes ventriculares mediante la evaluaci&oacute;n del metabolismo glucol&iacute;tico cardiaco.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tras el an&aacute;lisis de varianza no se encontraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas entre tejido pulmonar y muscular; se encontraron diferencias (<i>p </i>&lt; 0.05) entre coraz&oacute;n y los tejidos de comparaci&oacute;n mediante an&aacute;lisis de Tukey.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mediante an&aacute;lisis de varianza no se encontraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas entre los protocolos de ayuno y ayuno + glucosa; se encontraron diferencias (p &lt; 0.05) entre el protocolo sin ayuno y los otros dos al realizar an&aacute;lisis de Tukey.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En las im&aacute;genes de los estudios est&aacute;ticos fue posible definir sin dificultad la silueta cardiaca, lo que permite evaluar visualmente el metabolismo oxidativo del tejido mioc&aacute;rdico de la rata <b>(<a href="/img/revistas/acm/v80n4/a5f4.jpg" target="_blank">Figura 4</a>).</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mediante la adquisici&oacute;n din&aacute;mica, se puede apreciar la perfusi&oacute;n mioc&aacute;rdica, se distingue con claridad el trayecto del radiotrazador, es posible definir la vena cava, el paso inicial a trav&eacute;s de coraz&oacute;n derecho y evaluar con detalle el &aacute;rea ventricular izquierda <b>(<a href="/img/revistas/acm/v80n4/a5f5.jpg" target="_blank">Figura 5</a>).</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><sup>13</sup>NH<sub>3</sub></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las im&aacute;genes permitieron observar una distribuci&oacute;n homog&eacute;nea del radiotrazador en los diferentes segmentos del ventr&iacute;culo izquierdo en el eje corto, eje largo vertical y eje largo horizontal <b>(<a href="/img/revistas/acm/v80n4/a5f6.jpg" target="_blank">Figura 6</a>).</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo principal de la imagen molecular mediante PET desarrollada en animales de experimentaci&oacute;n como modelos de enfermedad es obtener informaci&oacute;n anat&oacute;mica, fisiol&oacute;gica o bioqu&iacute;mica la cual comparte mucha similitud a la obtenida en los humanos; facilitando con esto, la correlaci&oacute;n de los hallazgos obtenidos entre el &aacute;rea b&aacute;sica y la cl&iacute;nica. Adem&aacute;s, la capacidad no invasiva de esta t&eacute;cnica de imagen permite m&uacute;ltiples adquisiciones de un proceso en particular, facilitando as&iacute; el estudio a trav&eacute;s del tiempo de la progresi&oacute;n de la enfermedad o bien, de la respuesta terap&eacute;utica en el mismo animal. As&iacute; pues, la fisiopatolog&iacute;a de la cardiopat&iacute;a isqu&eacute;mica se ha trasladado al &aacute;rea de la investigaci&oacute;n b&aacute;sica no s&oacute;lo <i>in vitro, </i>sino tambi&eacute;n <i>in vivo, </i>donde resulta m&aacute;s factible la realizaci&oacute;n de investigaciones para la intervenci&oacute;n temprana del evento isqu&eacute;mico con resultados favorables.<sup>57&#150;59</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como es sabido en condiciones normales, el flujo coronario aporta la suficiente cantidad de sustratos y ox&iacute;geno para los requerimientos de energ&iacute;a necesarios, cumpliendo as&iacute; el adecuado funcionamiento y excreci&oacute;n celular. Cuando aumenta la demanda mioc&aacute;rdica, el flujo coronario puede llegar a aumentar entre cuatro a seis veces, gracias a la vasodilataci&oacute;n secundaria a m&uacute;ltiples respuestas en el organismo: en condiciones no patol&oacute;gicas se puede mencionar el ejercicio f&iacute;sico, como ejemplo. El aumento se presenta de manera uniforme en los diferentes vasos coronarios y dicha capacidad de respuesta se denomina reserva funcional o reserva de flujo coronario.<sup>60,61</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En condiciones fisiol&oacute;gicas, los metabolitos llegan por la microcirculaci&oacute;n y son extra&iacute;dos por los miocitos mediante diversos mecanismos, incluyendo procesos pasivos o por medio de transporte activo. El miocardio normal utiliza un 80% aproximadamente de &aacute;cidos grasos de cadena larga como fuente de energ&iacute;a, la glucosa es un sustrato adicional en estas circunstancias.<sup>62</sup> En algunas ocasiones, el lactato puede llegar a ser fuente de energ&iacute;a. Estos metabolitos son metabolizados en el Ciclo de Krebs, obteniendo as&iacute; ATP, H<sub>2</sub>O y CO<sub>2</sub>.<sup>63</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cantidad y la calidad del aporte de substratos cardiacos est&aacute;n determinadas por el estado diet&eacute;tico y la actividad f&iacute;sica del organismo en conjunto. Los &aacute;cidos grasos de cadena larga son el principal substrato para el coraz&oacute;n. Durante el ayuno, los &aacute;cidos grasos y los triglic&eacute;ridos son liberados del tejido adiposo incorpor&aacute;ndose a la circulaci&oacute;n. Los &aacute;cidos grasos son incorporados al miocito cardiaco para ser degradados a acetil&#150;CoA. La oxidaci&oacute;n de acetil&#150;CoA comienza con la formaci&oacute;n de citrato, el primer intermediario del ciclo de &aacute;cido c&iacute;trico. Mediante un mecanismo de retroalimentaci&oacute;n alost&eacute;rica, el ci&#150;trato inhibe la gluc&oacute;lisis a nivel de la fosfofructinasa.<sup>64 </sup>La inhibici&oacute;n del metabolismo glucol&iacute;tico por parte de la oxidaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos se caracteriz&oacute; inicialmente en corazones perfundidos<sup>11</sup> y posteriormente <i>in vivo.<sup>65</sup> </i>Los &aacute;cidos grasos inhiben la oxidaci&oacute;n de glucosa m&aacute;s que a la gluc&oacute;lisis y a la gluc&oacute;lisis m&aacute;s que a la captaci&oacute;n de glucosa.<sup>66,67</sup> La glucosa es el principal sustrato metab&oacute;lico en el coraz&oacute;n cuando el nivel de &aacute;cidos grasos es bajo y las concentraciones de glucosa e insulina altas, tal como ocurre en el posprandio.<sup>13</sup> La glucosa disminuye la tasa de oxidaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos de cadena larga a nivel de la CPT&#150;1.<sup>31</sup> La utilizaci&oacute;n de otros sustratos como lactato y cuerpos cet&oacute;nicos a nivel mioc&aacute;rdico, est&aacute; en funci&oacute;n de su concentraci&oacute;n sangu&iacute;nea.<sup>13</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El adecuado acoplamiento entre trabajo cardiaco, flujo coronario, y oxidaci&oacute;n de substratos constituye una caracter&iacute;stica central de la fisiolog&iacute;a cardiaca.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Entendiendo este fen&oacute;meno fisiol&oacute;gico, se pueden explicar las caracter&iacute;sticas de las im&aacute;genes obtenidas en el protocolo uno y dos, respectivamente; pues con la administraci&oacute;n a libre demanda de alimento, se present&oacute; una mayor captaci&oacute;n del radiotrazador por el miocardio desde las im&aacute;genes tempranas, permitiendo una mejor definici&oacute;n de las paredes ventriculares en las im&aacute;genes tard&iacute;as, asociado con menor captaci&oacute;n de la <sup>18</sup>F&#150;FDG por tejidos blandos. En el caso de las im&aacute;genes de ayuno, se puede explicar la dificultad para visualizar la silueta cardiaca, pues bajo esas condiciones, el mayor aporte metab&oacute;lico a nivel mioc&aacute;rdico est&aacute; dado por los &aacute;cidos grasos, por lo que la <sup>18</sup>F&#150;FDG administrada se distribuye preferentemente a &oacute;rganos vitales como es el cerebro, que en condiciones de ayuno, requiere glucosa como principal sustrato energ&eacute;tico.<sup>68</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&Uacute;nicamente en la mitad de las im&aacute;genes obtenidas en el protocolo tres se pudo valorar adecuadamente el coraz&oacute;n, dado que la absorci&oacute;n de la glucosa por v&iacute;a oral puede variar de un animal a otro, adem&aacute;s se deben tener en cuenta otros factores tales como la velocidad de absorci&oacute;n por la mucosa g&aacute;strica y duodenal, la velocidad de vaciamiento g&aacute;strico y el tr&aacute;nsito intestinal; lo que hace de esta t&eacute;cnica un m&eacute;todo inespec&iacute;fico con el cual se pueda lograr un estado metab&oacute;lico ideal para la adecuada captaci&oacute;n de la <sup>18</sup>F&#150;FDG por el miocardio.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La habilidad de combinar estudios de flujo&#150;metabolismo usando un solo radiotrazador repercute de manera importante en la investigaci&oacute;n de la isquemia mioc&aacute;rdica y la enfermedad arterial coronaria. El 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato tiene el potencial para caracterizar in vivo los mecanismos responsables de varias enfermedades cardiacas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Despu&eacute;s de la validaci&oacute;n de los estudios iniciales con 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato para determinar el MVO<sub>2</sub>en forma no invasiva, se han realizado varios estudios cl&iacute;nicos y experimentales orientados hacia la detecci&oacute;n de estados de isquemia, aturdimiento e hibernaci&oacute;n.<sup>29</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato es capaz de sustituir al <sup>13</sup>N&#150;amoniaco en la cuantificaci&oacute;n de perfusi&oacute;n mioc&aacute;rdica mediante PET en toda la gama de variaciones fisiol&oacute;gicas de flujo. La posibilidad de cuantificar perfusi&oacute;n y consumo de ox&iacute;geno simult&aacute;neamente en un solo estudio con PET permite remplazar los protocolos actuales que utilizan dos radiotrazadores para la detecci&oacute;n de miocardio viable.<sup>69</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se han realizado estudios con 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato para la evaluaci&oacute;n de diferentes patolog&iacute;as cardiacas. Hicks y colaboradores evaluaron el aclaramiento del acetato en pacientes con estenosis a&oacute;rtica, encontr&aacute;ndolo significativamente superior en comparaci&oacute;n a voluntarios sanos.<sup>70 </sup>Tadamura y colaboradores demostraron reducci&oacute;n en el aclaramiento del acetato en pacientes con cardiomiopat&iacute;a hipertr&oacute;fica no obstructiva al compararlo con sujetos sanos.<sup>71</sup> Bengel y colaboradores determinaron una disminuci&oacute;n en la eficiencia mioc&aacute;rdica en pacientes con cardio&#150;miopat&iacute;a dilatada utilizando acetato.<sup>72</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La primera etapa en la utilizaci&oacute;n de microPET para estudiar modelos de enfermedades cardiacas en roedores, consiste en la validaci&oacute;n de las t&eacute;cnicas y m&eacute;todos de an&aacute;lisis utilizados.<sup>73</sup> Una medici&oacute;n adecuada de la perfusi&oacute;n mioc&aacute;rdica es esencial para estudiar la fisiolog&iacute;a y el metabolismo cardiacos. La determinaci&oacute;n del metabolismo cardiaco requiere de mediciones precisas del flujo sangu&iacute;neo mioc&aacute;rdico. El microPET ha sido utilizado para obtener evaluaciones secuenciales de tasas metab&oacute;licas cardiacas en un mismo animal.<sup>59,74,75</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La medici&oacute;n no invasiva de la perfusi&oacute;n mioc&aacute;rdica es primordial en la caracterizaci&oacute;n de los cambios de dicha perfusi&oacute;n, asociados a las distintas enfermedades cardiacas, al igual que la evaluaci&oacute;n de las terapias dise&ntilde;adas para mejorarla. El PET es utilizado ampliamente en investigaci&oacute;n b&aacute;sica y cl&iacute;nica para cuantificar de forma no invasiva el flujo sangu&iacute;neo mioc&aacute;rdico usando varios trazadores, entre ellos: <sup>13</sup>N&#150;amoniaco, 1&#150;<sup>11</sup>C&#150;acetato, <sup>82</sup>Rb y <sup>15</sup>O&#150;agua en conjunto con modelos cin&eacute;ticos validados.<sup>30,53,73,76 </sup>Existe un amplio inter&eacute;s en trasladar estas metodolog&iacute;as a modelos animales de enfermedades cardiacas, para entender mejor c&oacute;mo los mecanismos asociados a alteraciones metab&oacute;licas en patolog&iacute;as &#151;tales como obesidad, diabetes, y miocardiopat&iacute;as&#151; contribuyen a las disfunciones card&iacute;acas. Para lograr esta transici&oacute;n, es necesario validar con roedores y microPET, dichas metodolog&iacute;as utilizadas rutinariamente con PET en humanos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este estudio permiti&oacute; la estandarizaci&oacute;n de protocolos de adquisici&oacute;n de im&aacute;genes de los tres radiotrazadores principales utilizados en la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica para el estudio del metabolismo y perfusi&oacute;n cardiacos, en un modelo animal, utilizando un equipo PET especializado para tal efecto. Actualmente los resultados obtenidos en roedores permiten evaluar alteraciones tanto perfusorias como metab&oacute;&#150;licas a nivel mioc&aacute;rdico, jugando un importante papel en el estudio de m&uacute;ltiples estados patol&oacute;gicos y no patol&oacute;gicos, como son la edad, obesidad, hipertensi&oacute;n arterial, hipertrofia ventricular, diabetes, e infarto al miocardio, entre otros.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dise&ntilde;o de un protocolo adecuado en investigaci&oacute;n b&aacute;sica para el estudio de estos y otros estados patol&oacute;gicos es de suma importancia dado la trascendencia que puede tener en el entendimiento y por consiguiente la intervenci&oacute;n terap&eacute;utica precoz en el &aacute;rea cl&iacute;nica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El uso del microPET puede ser muy &uacute;til para el an&aacute;lisis molecular del metabolismo del coraz&oacute;n y permite generar un modelo auxiliar para el estudio de la cardiopat&iacute;a isqu&eacute;mica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contar con un modelo animal, y m&eacute;todos de obtenci&oacute;n de im&aacute;genes moleculares que reflejen fielmente la fisiolog&iacute;a normal del coraz&oacute;n, as&iacute; como sus alteraciones, constituye un gran paso dentro de la investigaci&oacute;n b&aacute;sica en el campo de la cardiolog&iacute;a de nuestro pa&iacute;s, coloc&aacute;ndolo a la vanguardia de los pa&iacute;ses de Latinoam&eacute;rica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Alexanderson E, Kerik E, Unzek S, et al. Principios y aplicaciones de la tomograf&iacute;a por emisi&oacute;n de positrones (PET) en la cardiolog&iacute;a. PET en M&eacute;xico: una realidad. Arch Cardiol Mex 2002;72(2):157&#150;164.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094223&pid=S1405-9940201000040000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Chartrand C, Cadrin A, Bordeleau, et al. Coronary computed tomography angiography: overview of technical aspects, current concepts, and perspectives. Can Assoc Radiol J 2007;58(2):92&#150;108.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094225&pid=S1405-9940201000040000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Lombardo A, Rizzello V, Galiuto L, et al. Assessment of resting perfusion defects in patients with acute myocardial infarction: comparison of myocardial contrast echocardiography, combined first&#150;pass/delayed contrast&#150;enhanced magnetic resonance imaging and 99mTC&#150;sestamibi SPECT. Int J Cardiovascular Imaging 2006;22:417&#150;428.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094227&pid=S1405-9940201000040000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Klein L, van Campen L, Sieswerda G, et al. Glucose&#150;insulin&#150;potassium echocardiography detects improved segmental myocardial function and viable tissue shortly after acute myocardial infarction. J Am Soc Echocardiography 2006;19:763&#150;771.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094229&pid=S1405-9940201000040000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Ropers D. Multislice Computer Tomography for Detection of Coronary Artery Disease. J Interv Cardiol 2006;19:574&#150;582.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094231&pid=S1405-9940201000040000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Nikolaou K, Flohr T, Knez A, et al. Advances in cardiac CT imaging: 64&#150;slice scanner. Int J Cardiovasc Imag 2004;20:535&#150;540.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094233&pid=S1405-9940201000040000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Opie L. Metabolism of the heart in health and disease. Am Heart J 1968;76:685&#150;693.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094235&pid=S1405-9940201000040000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Lopaschuk G, Saddik M. The relative contribution of glucose and fatty acids to ATP production in hearts reperfused following ischemia. Cell Biochem 1992; 116:111&#150;116.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094237&pid=S1405-9940201000040000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Depre C, Vanoverschelde J, Melin J, et al. Structural and metabolic correlates of the reversivility of chronic left ventricular ischemic dysfunction in humans. Am J Physiol 1995;268:1265&#150;1275.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094239&pid=S1405-9940201000040000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Taegtmeyer H, Overturf M. Effects of moderate hypertension on cardiac function and metabolism in the rabbit. Hipertension 1988;11:416&#150;426.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094241&pid=S1405-9940201000040000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Randle P, Garland P, Hales C, et al. The glucose fatty&#150;acid cycle: its role in insulin sensitivity and the metabolic disturbances of diabetes mellitus. Lancet 1963:785&#150;789.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094243&pid=S1405-9940201000040000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Lopaschuk G, Belke D, Gamble J, et al. Regulation of fatty acid oxidation in the mammalian heart in health and disease. Biochim Biophys Acta 1994:263&#150;276.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094245&pid=S1405-9940201000040000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Taegtmeyer H. Energy metabolism of the heart: from basic concepts to clinical applications. Curr Prob Cardiol 1994;19:57&#150;116.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094247&pid=S1405-9940201000040000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Akinboboye O, Idris O, Cannon P, et al. Usefulness of Positron Emission Tomography in Defining Myocardial Viability in Patients Referred for Cardiac Transplantation. Am J Cardiol 1999;83(8):1271&#150;1274.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094249&pid=S1405-9940201000040000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Pessin J, Bell G. Mammalian Facilitative Glucose Transporter Family: Structure and Molecular Regulation. Annu Rev Physiol 1992;54:911&#150;930.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094251&pid=S1405-9940201000040000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Gould G, Holman G. The glucose transporter family: structure, function and tissue&#150;specific expression. Biochem J 1993;295(2):329&#150;341.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094253&pid=S1405-9940201000040000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Mueckler M. Facilitative glucose transporters. Eur J Biochem 1994;219(3):713&#150;725.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094255&pid=S1405-9940201000040000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Printz R, Koch S, Potter L, et al. Hexokinase II mRNA and gene structure, regulation by insulin, and evolution. J Biol Chem 1993;268(7):5209&#150;5219.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094257&pid=S1405-9940201000040000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Shelley H. Cardiac glycogen in different species before and after birth. Br Med Bull 1961;17:137&#150;156.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094259&pid=S1405-9940201000040000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Schneider C, Nguyen V, Taegtmeyer H. Feeding and fasting determine postischemic glucose utilization in isoleted working rat hearts. Am J Physiol 1991;260:542&#150;548.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094261&pid=S1405-9940201000040000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Moule S, Denton R. Multiple signaling pathways involved in the metabolic effects of insulin. Am J Cardiol 1997;80(3A):41 &#150;49.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094263&pid=S1405-9940201000040000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Depre C, Rider M, Veitch K, et al. Role of fructose 2,6&#150;bis&#150;phosphate in the control of heart glycolysis. J Biol Chem 1993;268(18):13274&#150;1329.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094265&pid=S1405-9940201000040000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Laughlin M, Taylor J, Chesnick S, et al. Nonglucose substrates increase glycogen synthesis in vivo in dog heart. Am J Physiol &#150;Endocrinol Metabol 1994;267:H217&#150;H23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094267&pid=S1405-9940201000040000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. McGarry J, Mills S, Long C, et al. Observations on the affinity for carnitine, and malonyl&#150;CoA sensitivity, of carnitine palmitoyltransferase I in animal and human tissues. Biochem J 1983;214:21&#150;28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094269&pid=S1405-9940201000040000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Awan M, Saggerson E. Malonyl&#150;CoA metabolism in cardiac myocytes and its relevance to the control of fatty acid oxidation. Biochem J 1993;295:61&#150;67.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094271&pid=S1405-9940201000040000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. Saddik M, Gamble J, Witters L, et al. Acetyl&#150;CoA carboxylase regulation of fatty acid oxidation in the heart. J Biol Chem 1993;268:25836&#150;25845.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094273&pid=S1405-9940201000040000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27. Camici P, Marraccini P, Marzilli M, et al. Coronary hemodynamics and myocardial metabolism during and after pacing stress in normal humans. Am J Physiol 1989;257:309&#150;317.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094275&pid=S1405-9940201000040000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28. Braunwald E. Control of myocardial oxygen consumption: physiologic an clinical considerarions. Am J Physiol 1971;27:416&#150;432.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094277&pid=S1405-9940201000040000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29. Klein L, Visser F, Knaapen P, et al. Carbon&#150;11 acetate as a tracer of myocardial oxygen consumption. Eur J Nuclear Med 2001;28:651&#150;568.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094279&pid=S1405-9940201000040000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30. Ukkonen H, Knuuti J, Katoh C, et al. Use of &#91;11C&#93;acetate and &#91;15O&#93;O2 PET for the assessment of myocardial oxygen utilization in patients with chronic myocardial infarction. Eur J Nucl Med 2001;28(3):334&#150;339.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094281&pid=S1405-9940201000040000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">31. Taegtmeyer H, Hems R, Krebs H. Utilization of energy providing substrates in the isolated working rat heart. Biochem J 1980;186:701&#150;711.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094283&pid=S1405-9940201000040000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">32. Randle P, England P, Denton R. Control of the tricarboxylate cycle and its interaction with glycolysis during acetate utilization in rat heart. Biochem J 1970;117(4):677&#150;695.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094285&pid=S1405-9940201000040000500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">33. Mason G, Rothman D, Behar K, et al. NMR determination of the TCA cycle rate and alpha&#150;ketoglutarate/glutamate exchange rate in rat brain. J Cereb Blood Flow Metab 1992;12(3):434&#150;447.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094287&pid=S1405-9940201000040000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">34. Poole R, Cranmer S, Halestrap A, et al. Substrate and inhibitor specificity of monocarboxylate transport into heart cells and erythrocytes. Further evidence for the existence of two distinct carriers. Biochem J 1990;269(3):827&#150;829.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094289&pid=S1405-9940201000040000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">35. Beinert H, Green D, Hele P, et al. The acetate activating enzyme system of heart muscle. J Biol Chem 1953;203(1 ):35&#150;45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094291&pid=S1405-9940201000040000500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">36. Buxton D, Schwaiger M, Phelps M, et al. Radiolabeled acetate as a tracer of myocardial tricarboxylic acid cycle flux. Circ Res 1988;63:628&#150;634.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094293&pid=S1405-9940201000040000500036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">37. Chin K, Huang S, Schelbert H, et al. Validation of a model for &#91;1 &#150;11C&#93;acetate as a tracer of cardiac oxidative metabolism. Am J Physiol 1994;266:1304&#150;1315.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094295&pid=S1405-9940201000040000500037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">38. Armbrecht J, Buxton D, Schelbert H. Validation of &#91;1&#150;11C&#93; Acetate as a Tracer for Noninvasive Assessment of Oxidative Metabolism With Positron Emission Tomography in Normal, Ischemic, Postischemic, and Hyperemic Canine Myocardium. Circulation 1990;81:1594&#150;1605.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094297&pid=S1405-9940201000040000500038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">39. Brown M, Marshall D, Sobel B, et al. Delineation of myocardial oxygen utilization with carbon&#150;11&#150;labeled acetate. Circulation 1987;76(3):687&#150;696.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094299&pid=S1405-9940201000040000500039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">40. Brown M, Myears D, Bergmann S. Noninvasive assessment of canine myocardial oxidative metabolism with carbon&#150;11 acetate and positron emission tomography. J Am Coll Cardiol 1988;12(4):1054&#150;1063.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094301&pid=S1405-9940201000040000500040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">41. Buxton D, Nienaber C, Luxen A, et al. Noninvasive Quantitation of Regional Myocardial Oxygen Consumption In Vivo With &#91;1&#150;11C&#93; Acetate and Dynamic Positron Emission Tomography. Circulation 1989;79:134&#150;142.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094303&pid=S1405-9940201000040000500041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">42. Armbrecht J, Buxton D, Brunken R, et al. Regional Myocardial Oxygen Consumption Determined Noninvasively in Humans With &#91;1&#150;11C&#93;Acetate and Dynamic Positron Tomography. Circulation 1989;80:863&#150;872.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094305&pid=S1405-9940201000040000500042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">43. Alexanderson E, Ortega N, Ojeda R, et al. Modelo de estudio mediante microPET para la evaluaci&oacute;n del metabolismo glucol&iacute;tico en el miocardio de rata con 18F&#150;FDG. Experiencia inicial en M&eacute;xico. Arch Cardiol M&eacute;x 2008;78:11 &#150;18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094307&pid=S1405-9940201000040000500043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">44. Hicks R, Herman W, Kalff V, et al. Quantitative evaluation of regional substrate metabolism in the human heart by positron emission tomography. J Am Coll Cardiol 1991;18:101&#150;111.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094309&pid=S1405-9940201000040000500044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">45. Tamaki N, Magata Y, Takahashi N, et al. Oxidative metabolism in the myocardium in normal subjects during dobutamine infusion. Eur J Nucl Med 1993;20:231&#150;237.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094311&pid=S1405-9940201000040000500045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">46. Tamaki N, Magata Y, Takahashi N, et al. Myocardial oxidative metabolism in normal subjects in fasting, glucose loading and dobutamine infusion states. Ann Nucl Med 1992;6:221 &#150;228.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094313&pid=S1405-9940201000040000500046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">47. Brown M, Myears D, Bergmann S. Validity of Estimates of Myocardial Oxidative Metabolism with Carbon&#150;11 Acetate and Positron Emission Tomography Despite Altered Patterns of Substrate Utilization. J Nucl Med 1989;30:187&#150;193.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094315&pid=S1405-9940201000040000500047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">48. Henes C, Bergmann S, Walsh M, et al. Assessment of Myocardial Oxidative Metabolic Reserve with Positron Emission Tomography and Carbon&#150; 11 Acetate. J Nucl Med 1989;30:1489&#150;1499.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094317&pid=S1405-9940201000040000500048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">49. Chan S, Brunken R, Phelps M, et al. Use of the Metabolic Tracer Carbon&#150;11Acetate for Evaluation of Regional Myocardial Perfusion. J Nucl Med 1991;32:665&#150;672.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094319&pid=S1405-9940201000040000500049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">50. Gropler R, Siegel B, Geltman E. Myocardial Uptake of Carbon&#150;11&#150;Acetate as an Indirect Estimate of Regional Myocardial Blood Flow. J Nucl Med 1991;32:245&#150;251.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094321&pid=S1405-9940201000040000500050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">51. De Silva R, Camici P. The role of positron emission tomography in the investigation of coronary circulatory function in man. Cardiovasc Res 1994;28:1595&#150;1612.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094323&pid=S1405-9940201000040000500051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">52. Tamaki N. Principles and Practice of Positron Emission tomography. Philadelphia: Lippincott Williams &amp; Wilkins 2002:320&#150;333.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094325&pid=S1405-9940201000040000500052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">53. Alexanderson E, Graff A, Altamirano J, et al. Evaluaci&oacute;n de la perfusi&oacute;n mioc&aacute;rdica mediante tomograf&iacute;a por emisi&oacute;n de positrones (PET) con 13N&#150;amonia: Experiencia inicial en M&eacute;xico. Arch Cardiol Mex 2003;73(4):301 &#150;304.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094327&pid=S1405-9940201000040000500053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">54. Tai Y, Ruangma A, Rowland D, et al. Performance Evaluation of the microPET Focus: A Third&#150;Generation microPET Scanner Dedicated to Animal Imaging. 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Noninvasive Measurement of Myocardial Activity Concentrations and Perfusion Defect Sizes in Rats With a New Small&#150;Animal Positron Emission Tomograph. Circulation 2002;106:118&#150;123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094339&pid=S1405-9940201000040000500059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">60. Sidossis L. The Role of Glucose in the Regulation of Substrate Interaction During Exercise. 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Can J Appl Physiol 1998;23(6):528&#150;533.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094343&pid=S1405-9940201000040000500061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">62. Alexanderson E, G&oacute;mez D, Benito I, et al. Tomograf&iacute;a por emisi&oacute;n de positrones (PET): Una herramienta &uacute;til para el estudio del metabolismo card&iacute;aco. 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Citrate as an intermediary in the inhibition of phosphofructokinase in rat heart muscle by fatty acids, ketone bodies, pyruvate, diabetes and starvation. Nature 1963;200:169&#150;170.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094349&pid=S1405-9940201000040000500064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">65. Nuutila P, Koivisto V, Knuuti J, et al. Glucose&#150;free fatty acid cycle operates in human heart and skeletal muscle in vivo. 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Garland P, Randle P. Regulation of glucose uptake by muscle: Effects of fatty acids, ketone bodies and pyruvate, and of alloxan&#150;diabetes, starvation on the uptake and metabolic fate of glucose in rat heart and diaphragm muscles. Biochem J 1964;93(3):652&#150;365.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094355&pid=S1405-9940201000040000500067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">68. Bax J, Veening M, Visser F, et al. Optimal metabolic conditions during fluorine&#150;18 fluorodeoxyglucose imaging; a comparative study using different protocols. Eur J Nucl Med 1997;24:35&#150;41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094357&pid=S1405-9940201000040000500068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">69. van den Hoff J, Burchert W, Borner A, et al. &#91;1&#150;11C&#93; Acetate as a Quantitative Perfusion Tracer in Myocardial PET. J Nucl Med 2001;42:1174&#150;1182.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094359&pid=S1405-9940201000040000500069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">70. Hicks R, Savas V, Currie P, et al. Assessment of myocardial oxidative metabolism in aortic valve disease using positron emission tomography with C&#150;11 acetate. Am Heart J 1992;123:653&#150;664.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094361&pid=S1405-9940201000040000500070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">71. Tadamura E, Tamaki N, Matsumori A, et al. Myocardial metabolic changes in hypertrophic cardiomyopathy. J Nucl Med 1991;37:572&#150;577.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094363&pid=S1405-9940201000040000500071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">72. Bengel F, Permanetter B, Ungerer M, et al. Non&#150;invasive estimation of myocardial efficiency using positron emission tomography and carbon&#150;11 acetate &#150; comparison between the normal and failing human heart. Eur J Nucl Med 2000;27:319&#150;326.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094365&pid=S1405-9940201000040000500072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">73. Herrero P, Kim J, Sharp T, et al. Assessment of Myocardial Blood Flow Using 15O&#150;Water and 1&#150;11C&#150;Acetate in Rats with Small&#150; Animal PET. J Nucl Med 2006;47:477&#150;485.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094367&pid=S1405-9940201000040000500073&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">74. Bentourkia M, Croteau E, Langlois R, et al. Cardiac Studies in Rats With 11C&#150;Acetate and PET: A Comparison With 13N&#150;Ammonia. IEEE Transactions on nuclear. Science 2002;49(5):2322&#150;2327.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094369&pid=S1405-9940201000040000500074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">75. Lecomte R, Croteau E, Gauthier M, et al. Cardiac PET imaging of blood flow, metabolism and function in normal and infarcted rats. IEEE 2003:1853&#150;1857.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094371&pid=S1405-9940201000040000500075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">76. Chen E, Maclntyre W, Fouad F, et al. Measurement of cardiac output with first&#150;pass determination during rubidium&#150;82 PET myocardial perfusion imaging. Eur J Nucl Med 1996;23: 993&#150;996.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1094373&pid=S1405-9940201000040000500076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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