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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Yellow sigatoka, caused by the fungus Mycosphaerella musicola, is a major disease of banana (Musa spp.) and is widely spread in Brazil. This study was conducted to apply spatial dispersion criteria of yellow sigatoka in a sampling system to estimate the disease severity in the Valley of Siriji in northeastern Brazil. The disease spatial pattern was characterized in three fields of cv Pacovan bananas, where 30 contiguous rows, 30 plants per row were considered, giving a total of 900 plants. Severity was analyzed by autocorrelation, Lloyd index and geostatistical interpolative maps. In spite of the narrow range of severity among plantations (44.2-34.5 %), they exhibited a moderately to strongly aggregate pattern with continuous spatial dependencies of 2, 14, and 27 order, implicating contagious distances of 81, 42, and 6 m. The aggregates had an elongated predominance in direction of the rows with lateral contagious distances of 39 to 3 m in two of the fields. Interpolations evidenced spatial generalization of aggregates, concurring with the low values of the Lloyd index (1.01-1.04). Systematic sampling was designed with intervals of selection of rows (k1) and plants (k2) of 6 units for a total n = 50, with which the entire production unit was explored, but giving priority to intra-row selection by the aggregative property. This sampling method was applied in an additional 30 i-fields to estimate the sample size using <img border=0 src="../../../../../img/revistas/agro/v44n3/a9fo1.jpg">, where k is an estimator of aggregation of the negative binomial distribution and CV the acceptable error. With a 5 % error, n i had a range of 111-6 plants and was inversely proportional to the level of severity. In an epidemiological survey, systematic sampling (k1 =6, k2 = 6) is proposed with a 5 % error and n = 34 plants ha-1 , corresponding to 3.8 % of the population.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Protecci&oacute;n vegetal</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Caracterizaci&oacute;n espacial de la sigatoka amarilla del banano e implicaciones en el muestreo</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Spatial characterization of banana yellow sigatoka and its implications for sampling</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Otac&iacute;lio M. da Rocha J&uacute;nior<sup>1</sup> , Marcos P. Saraiva C&acirc;mara<sup>2</sup> , Sami J. Michereff<sup>2</sup> , Michelle J. de&#150;Oliveira<sup>3</sup>, Gustavo Mora&#150;Aguilera<sup>4</sup>*   , Noe Ruiz&#150;Garc&iacute;a<sup>5</sup></b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Empresa Pernambucana de Pesquisa Agropecuaria (IPA). 55890&#150;000. Alianca, PE, Brasil. </i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <sup><i>2</i></sup><i> Departamento de Agronom&iacute;a. Universidade Federal Rural de Pernambuco (UFRPE). 52171&#150;900. Recife, PE, Brasil, Email:</i> (<a href="mailto:sami@depa.ufrpe.br">sami@depa.ufrpe.br</a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> Ministerio da Agricultura, Pecuaria e Abastecimento (MAPA). 50630&#150;060. Recife, PE, Brasil.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <sup><i>4</i></sup><i> Fitopatolog&iacute;a. Campus Montecillo. Colegio de Postgraduados. 56230. M&eacute;xico.</i> *Autor responsable: (<a href="mailto:morag@colpos.mx">morag@colpos.mx</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>5</sup> Instituto de Ecolog&iacute;a, Campus Puerto Escondido, Universidad del Mar. Oaxaca, M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: Noviembre, 2008.    <br> Aprobado: Noviembre, 2009.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La sigatoka amarilla, causada por el hongo <i>Mycosphaerella musicola, </i>es una enfermedad importante del banano <i>(Musa </i>spp.) diseminada ampliamente en Brasil. Este trabajo tuvo como objetivo aplicar criterios de dispersi&oacute;n espacial de la sigatoka amarilla en un sistema de muestreo para estimar la severidad de la enfermedad en el Valle del Siriji, al nordeste de Brasil. El patr&oacute;n espacial de la enfermedad se caracteriz&oacute; en tres plantaciones de banano cv. Pacovan, considerando 30 surcos contiguos y 30 plantas por surco, con un total de 900 plantas. La severidad se analiz&oacute; mediante autocorrelaci&oacute;n, &iacute;ndice de Lloyd y mapas interpolativos geoestad&iacute;sticos. A pesar del reducido rango de severidad entre plantaciones (44.2&#150;34.5 %), &eacute;stas presentaron un patr&oacute;n de moderado a fuertemente agregado con dependencias espaciales continuas del orden 2, 14 y 27 implicando distancias de contagio de 81, 42 y 6 m. Los agregados tuvieron una predominancia alargada en direcci&oacute;n de los surcos con distancias de contagio lateral, en dos de las plantaciones, de 39 a 3 m. Las interpolaciones evidenciaron una generalizaci&oacute;n espacial de agregados, lo cual concord&oacute; con valores bajos del &iacute;ndice de Lloyd (1.01&#150;1.04). Se dise&ntilde;&oacute; un muestreo sistem&aacute;tico con intervalos de selecci&oacute;n de surcos <i>(k<sub>1</sub>) </i>y plantas <i>(k<sub>2</sub>) </i>de 6 unidades para un total <i>n </i>= 50, con lo cual se explor&oacute; toda la unidad productiva pero se prioriz&oacute; la selecci&oacute;n intrasurco, por la propiedad agregativa. Este muestreo se aplic&oacute; en 30 <i>i</i>&#150;plantaciones para estimar el tama&ntilde;o de muestra mediante <img src="/img/revistas/agro/v44n3/a9fo1.jpg">, donde <i>k </i>es un estimador de agregaci&oacute;n de la distribuci&oacute;n binomial negativa y <i>CV </i>el error aceptable. Con un 5 <i>% </i>de error, <i>n<sub>i</sub> </i>tuvo un rango de 111&#150;6 plantas y fue inversamente proporcional al nivel de severidad. En un diagn&oacute;stico epidemiol&oacute;gico se propone un muestreo sistem&aacute;tico ( <i>k<sub>1</sub></i>=6, <i>k<sub>2</sub></i> =<i> 6) </i>con un 5 <i>% </i>de error y <i>n</i>=34 plantas ha<sup>&#150;1</sup> lo que representa 3.8 % poblacional.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b><i>Musa </i>spp., <i>Mycosphaerella musicola, </i>epidemiolog&iacute;a, f&iacute;topatometr&iacute;a, muestreo.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yellow sigatoka, caused by the fungus <i>Mycosphaerella musicola, </i>is a major disease of banana <i>(Musa </i>spp.) and is widely spread in Brazil. This study was conducted to apply spatial dispersion criteria of yellow sigatoka in a sampling system to estimate the disease severity in the Valley of Siriji in northeastern Brazil. The disease spatial pattern was characterized in three fields of cv Pacovan bananas, where 30 contiguous rows, 30 plants per row were considered, giving a total of 900 plants. Severity was analyzed by autocorrelation, Lloyd index and geostatistical interpolative maps. In spite of the narrow range of severity among plantations (44.2&#150;34.5 %), they exhibited a moderately to strongly aggregate pattern with continuous spatial dependencies of 2, 14, and 27 order, implicating contagious distances of 81, 42, and 6 m. The aggregates had an elongated predominance in direction of the rows with lateral contagious distances of 39 to 3 m in two of the fields. Interpolations evidenced spatial generalization of aggregates, concurring with the low values of the Lloyd index (1.01&#150;1.04). Systematic sampling was designed with intervals of selection of rows <i>(k<sub>1</sub></i>) and plants <i>(k<sub>2</sub>) </i>of 6 units for a total <i>n </i>= 50, with which the entire production unit was explored, but giving priority to intra&#150;row selection by the aggregative property. This sampling method was applied in an additional 30  i&#150;fields to estimate the sample size using <i><img src="/img/revistas/agro/v44n3/a9fo1.jpg">, </i>where <i>k </i>is an estimator of aggregation of the negative binomial distribution and <i>CV </i>the acceptable error. With a 5 % error, <i>n<sub>i</sub> </i>had a range of 111&#150;6 plants and was inversely proportional to the level of severity. In an epidemiological survey, systematic sampling <i>(k<sub>1</sub> </i>=6, <i>k<sub>2</sub> = 6) </i>is proposed with a 5 % error and  n = 34 plants ha<sup>&#150;1</sup>    , corresponding to 3.8 % of the population.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b><i>Musa </i>spp., <i>Mycosphaerella musicola, </i>epidemiology, phytopathometry, sampling.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brasil es el segundo mayor productor mundial de banano <i>(Musa </i>spp.), con una &aacute;rea cultivada de 499 230 ha y una producci&oacute;n de 7.1 millones t, siendo superado por la India (11.7 millones t, FAO, 2008). La producci&oacute;n promedio en Brasil 13.6 t ha<sup>&#150;1</sup>, es menor con respecto a Costa Rica (53&#150;9 t ha<sup>&#150;1</sup>) y Ecuador (27.6 t ha<sup>&#150;1</sup>) que son l&iacute;deres en el mercado global.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La incidencia de enfermedades es la causa principal de la baja productividad del banano en Brasil. Entre &eacute;stas, la sigatoka amarilla, causada por el hongo <i>Mycosphaerella musicola </i>Leach (anamorfo <i>Pseudocercospora musae </i>(Zimm.) Deighton), se encuentra en todo el territorio nacional y con gran importancia en las regiones donde las lluvias exceden 1000 mm anuales y la temperatura media es 25 &deg;C (Cordeiro <i>et al., </i>2005). La infecci&oacute;n de este hongo ocurre en las hojas j&oacute;venes, incluyendo la hoja cero (hoja no desplegada), uno, dos, tres y excepcionalmente la cuatro (Stover, 1971). El s&iacute;ntoma inicial de la Sigatoka amarilla consiste en una decoloraci&oacute;n leve en forma de punto entre las nervaduras foliares, la cual cambia a una lesi&oacute;n elongada necr&oacute;tica con un amarillamiento marginal. En ataques severos puede ocurrir la coalescencia de lesiones y se afecta poco m&aacute;s de 50 % del &aacute;rea foliar, lo que causa la muerte prematura de las hojas. En Brasil, las p&eacute;rdidas debido a la sigatoka amarilla son aproximadamente 50 % de la producci&oacute;n (Cordeiro <i>et al., </i>2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A pesar de la importancia mundial de la enfermedad no hay propuestas de sistemas de muestreo con fundamento epidemiol&oacute;gico para su aplicaci&oacute;n en programas de manejo sanitario, lo que dificulta la eficacia de m&eacute;todos de control (Mart&iacute;nez y Toledo, 1977). La propuesta cl&aacute;sica de evaluar intensidad de enfermedad en 10 plantas/&aacute;rea (Stover, 1971; Mart&iacute;nez y Toledo, 1977; Pereira <i>et al, </i>1981), tiene una base emp&iacute;rica que excluye atributos espaciales indispensables por el car&aacute;cter din&aacute;mico de la enfermedad. Muestreos con un enfoque epidemiol&oacute;gico incluyen, en una primera etapa, la caracterizaci&oacute;n de atributos espaciales de la poblaci&oacute;n para fundamentar patrones de muestreo, as&iacute; como la selecci&oacute;n de unidades de muestreo simples o compuestas de forma espec&iacute;fica (Ruiz&#150;Garc&iacute;a <i>et al., </i>2005; Ruiz&#150;Garc&iacute;a, 2008). Congruente con la importancia de considerar atributos biol&oacute;gicos, en un sistema de muestreo con fines fitosanitarios, el objetivo del presente estudio fue determinar el patr&oacute;n espacial de la sigatoka amarilla en condiciones de campo y su implicaci&oacute;n en la determinaci&oacute;n del tama&ntilde;o de muestra en condiciones contrastantes de intensidad de la enfermedad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIAL Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis del patr&oacute;n espacial de la sigatoka amarilla</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El experimento se realiz&oacute; en el 2006 en el Valle del Siriji, estado de Pernambuco, Brasil, en tres plantaciones de banano cultivar Pacovan (E&#150;1, E&#150;2 y E&#150;3) distanciadas entre s&iacute; con un m&iacute;nimo de 5 km. Las plantaciones carecieron de irrigaci&oacute;n y fueron manejadas en un sistema de tres generaciones por sitio de plantaci&oacute;n (planta madre, hijuelo&#150;1 y hijuelo&#150;2) y con una densidad de plantaci&oacute;n de 3 X 3 m. El manejo cultural se efectu&oacute; con pr&aacute;cticas regionales, excepto el uso de funguicidas para permitir la m&aacute;xima expresi&oacute;n de la enfermedad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cada plantaci&oacute;n se delimit&oacute; una subparcela de 30 l&iacute;neas contiguas y 30 plantas madre por l&iacute;nea; esto es 900 plantas madre con sus respectivos v&aacute;stagos. La severidad de la sigatoka amarilla fue evaluada en la fase fenol&oacute;gica de fructificaci&oacute;n, en las nueve hojas m&aacute;s j&oacute;venes de cada planta madre, usando una escala diagram&aacute;tica de 0 a 6 clases (Orjeda, 1998). La severidad total por planta (STP) se calcul&oacute; con la ecuaci&oacute;n: <i>STP = </i>&#91; &#931; (<i>nb</i>) / (<i>NT</i>)&#93;<i> , </i>donde <i>n = </i>n&uacute;mero de hojas por cada clase de la escala de severidad; <i>b</i>=clase de severidad conforme la escala; <i>N</i>=clase m&aacute;xima de severidad de la escala; <i>T= </i>n&uacute;mero total de hojas evaluadas (Orjeda, 1998).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para examinar la intensidad y la forma de los agregados de plantas enfermas, se hizo un an&aacute;lisis autocorrelativo de los datos de STP con el programa LCOR2 (Gottwald <i>et al, </i>1992). Para este fin, en cada parcela se generaron mapas bidimensionales de localizaci&oacute;n <i>&#91;x<sub>i</sub>, y<sub>j</sub>&#93; </i>de cada planta madre. La intensidad y forma promedio de los agregados estuvo definida por el n&uacute;mero de dependencias espaciales continuas significativas (&#945; = 0.05) dentro y entre surcos a partir de posici&oacute;n &#91;0,0&#93; de la matriz de autocorrelaci&oacute;n. La capacidad de contagio de un foco (<i>i.e. </i>plantas enfermas conformando un agregado) en forma discreta se evalu&oacute; con las dependencias discontinuas significativas dentro y entre surcos. Adem&aacute;s se calcul&oacute; el &iacute;ndice de agregaci&oacute;n de Lloyd (Campbell y Madden, 1990) con el programa MorLloyd ver 1.0 en Microsoft<sup><sup>&reg;</sup></sup> Excel<sup>&reg;</sup> (Rivas y Mora&#150;Aguilera, 2008<sup>&#91;6&#93;</sup>) y se realizaron mapas de interpolaci&oacute;n geoestad&iacute;stica mediante Surfer<sup>&reg;</sup> ver. 6.04 con fines de exploraci&oacute;n bi&#150; y tridimensional.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>C&aacute;lculo del tama&ntilde;o de la muestra</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De abril de 2006 a febrero de 2007 se realizaron muestreos piloto evaluando la severidad de la sigatoka amarilla en 30 plantaciones de banano (S&#150;01 a S&#150;30) cultivar Pacovan, en el Valle del Siriji. La distancia m&iacute;nima entre plantaciones fue 3.5 km; y el manejo y densidad fue an&aacute;logo a las plantaciones E1&#150;E3. En cada parcela se delimit&oacute; una sub&#150;parcela de aproximadamente 2 ha (100X200 m), conformada por  N<sub>1</sub>=64 surcos y <i>N</i><sub>2</sub> = 32 plantas madre cada una. En esta poblaci&oacute;n se seleccion&oacute; una muestra sistem&aacute;tica simple de 50 plantas madre, con  n<sub>1</sub> = 10 surcos y <i>n</i><sub>2</sub>= 5 plantas madre por surco. Con un intervalo de muestreo de <i>k</i><sub>1</sub> = 64/10&#8776;6 surcos y  k<sub>2</sub> = 32/5&#8776;6 plantas, se seleccion&oacute; aleatoriamente el surco  r<sub>1</sub> = 5 y la planta madre <i>r</i><sub>2</sub> = 3 como primer punto de muestreo; los dem&aacute;s surcos se seleccionaron seg&uacute;n <i>r</i><sub>1</sub><i> + </i>(<i>i&#151; </i>1) <i>k</i><sub>1</sub> <i>i</i>=1,...,<i>n</i><sub>1</sub>, y dentro de cada surco seleccionado a la planta madre ubicada en la posici&oacute;n <i>r</i><sub>2</sub><i> + </i>(<i>i&#151; </i>1) <i>k</i><sub>2</sub> <i>i</i>=1,...,<i>n</i><sub>2</sub>. El punto de inicio estuvo ubicado en la esquina superior izquierda, desde la cual se evalu&oacute; la severidad de las plantas ubicadas en las coordenadas proporcionadas por el esquema de muestreo sistem&aacute;tico. La severidad por hoja y la total por planta (STP) se calcul&oacute; con el procedimiento ya descrito.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos de severidad de la sigatoka amarilla obtenidos en los muestreos sistem&aacute;ticos se usaron para estimar el tama&ntilde;o de muestra (<i>n</i>) por parcela, considerando que el patr&oacute;n espacial de plantas enfermas se defini&oacute; como tipo agregado mediante el an&aacute;lisis autocorrelativo. Para este fin, la estimaci&oacute;n de <i>n </i>se obtuvo mediante la ecuaci&oacute;n: <img src="/img/revistas/agro/v44n3/a9f2.jpg">, donde <i>k </i>es el par&aacute;metro asociado a la distribuci&oacute;n binomial negativa, descriptiva de la disposici&oacute;n agregada de plantas enfermas, y puede ser estimado como: <img src="/img/revistas/agro/v44n3/a9f3.jpg"><i>, </i>siendo <i><img src="/img/revistas/agro/v44n3/a9f4.jpg"> </i>la severidad media de la enfermedad en 50 plantas y S<sup>2</sup> la varianza de la muestra, mientras que <img src="/img/revistas/agro/v44n3/a9f5.jpg">es valor de confiabilidad (error aceptable) preestablecido a 3, 5 y 10 % (CV=0.03, 0.05, 0.10) (Karandinos, 1978; Campbell y Madden, 1990).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El desempe&ntilde;o del esquema de muestreo sistem&aacute;tico anterior y el tama&ntilde;o de muestra resultante se evalu&oacute; en los tres huertos censados (E1&#150;E3) mediante simulaci&oacute;n Montecarlo, en las cuales se conoce la severidad promedio (<img src="/img/revistas/agro/v44n3/a9f4.jpg">) y varianza y  <img src="/img/revistas/agro/v44n3/a9f6.jpg">verdaderas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los criterios de desempe&ntilde;o usados fueron: exactitud: <img src="/img/revistas/agro/v44n3/a9f7.jpg">eficiencia: <img src="/img/revistas/agro/v44n3/a9f8.jpg"> precisi&oacute;n: porcentaje de simulaciones comprendidos en un intervalo de 95 % para media verdadera, donde <img src="/img/revistas/agro/v44n3/a9f9.jpg">son el promedio de la severidad y su varianza obtenida de 200 simulaciones, programado en PROC IML (SAS, 2001). Para analizar el posible efecto en la estimaci&oacute;n de <i>n </i>debido a la edad de la plantaci&oacute;n y a la intensidad de severidad de la enfermedad por plantaci&oacute;n, se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de correlaci&oacute;n de Pearson.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Patr&oacute;n espacial de la sigatoka amarilla</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La severidad promedio de la sigatoka amarilla vari&oacute; entre 34.5 % y 44.2 % en las plantaciones de banano establecidas para la caracterizaci&oacute;n espacial (<a href="/img/revistas/agro/v44n3/a9c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Las tres &aacute;reas presentaron un patr&oacute;n uniformemente agregado de plantas enfermas (<a href="#f1">Figura 1</a>). Mediante autocorrelaci&oacute;n, la mayor intensidad de agregaci&oacute;n se encontr&oacute; en E&#150;1 seguido de E&#150;2 y E&#150;3 (<a href="/img/revistas/agro/v44n3/a9c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v44n3/a9f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La forma de los agregados tuvo una clara predominancia alargada en sentido de los surcos (<a href="#f1">Figura 1</a>). Las dependencias espaciales continuas en direcci&oacute;n a lo largo de los surcos fueron 27, 14 y 2 plantas, lo cual implica una capacidad de contagio del hongo, desde el centro de foco de la enfermedad, de 81, 42 y 6 m. La capacidad de expansi&oacute;n lateral de los focos desde el eje principal del agregado s&oacute;lo se observ&oacute; en E&#150;1 y E&#150;2. En estos casos, las dependencias continuas fueron 13 y 1, lo cual correspondi&oacute; a 39 y 3 m (<a href="/img/revistas/agro/v44n3/a9c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Las interpolaciones geoestad&iacute;sticas evidenciaron una generalizaci&oacute;n espacial de agregados lo cual concord&oacute; con valores bajos del &iacute;ndice de Lloyd (1.01&#150;1.04; <a href="/img/revistas/agro/v44n3/a9c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>; <a href="#f1">Figura 1</a>). El patr&oacute;n de dispersi&oacute;n, en agregados con un amplio rango de dispersi&oacute;n del inoculo, es congruente con la biolog&iacute;a de pat&oacute;genos y sus mecanismos de diseminaci&oacute;n a&eacute;rea. En el presente caso existen dos tipos de esporas, la sexual <i>(M. musicola) </i>y asexual <i>(P. musae), </i>con similar importancia en el proceso de dispersi&oacute;n (Cordeiro <i>et al., </i>2005). Sin embargo, el patr&oacute;n predominante en direcci&oacute;n a los surcos sugiere la implicaci&oacute;n de pr&aacute;cticas de manejo en el incremento de la diseminaci&oacute;n del inoculo. Adem&aacute;s, en este patosistema hay un proceso de autoinfecci&oacute;n desde las hojas m&aacute;s viejas a las j&oacute;venes, tanto dentro del dosel como entre la planta madre y los hijuelos a trav&eacute;s del escurrimiento de agua de lluvia (Cordeiro <i>et al., </i>2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El manejo intensivo y continuado del cultivo en el Valle del Siriji sugiere la presencia de una alta presi&oacute;n de inoculo primario en el cultivar Pacovan, considerado altamente susceptible, y la subsiguiente inducci&oacute;n de un mayor n&uacute;mero de ciclos secundarios durante el desarrollo del cultivo. Este proceso explica la alta severidad promedio observada (39.2 %) en las hojas fotosint&eacute;ticamente m&aacute;s activas al inicio de la fructificaci&oacute;n, lo que adem&aacute;s explica p&eacute;rdidas de hasta 50 % (Cordeiro <i>et al., </i>2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La contribuci&oacute;n de inoculo externo en un proceso de aloinfecci&oacute;n en la sigatoka amarilla no se detect&oacute; con las evaluaciones realizadas en la etapa de fructificaci&oacute;n. La importancia e intensidad de este proceso no se excluye y requerir&iacute;a estudios durante fases fenol&oacute;gicas previas como la de desarrollo foliar.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Tama&ntilde;o de la muestra para la cuantificaci&oacute;n de la sigatoka amarilla</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El tama&ntilde;o de muestra <i>n </i>necesario para determinar la severidad promedio de la sigatoka amarilla, con 3, 5 y 10 % de error, estuvo en intervalos de 308&#150;16, 111&#150;6 y 28&#150;2 plantas ha<sup>&#150;1</sup> (<a href="/img/revistas/agro/v44n3/a9c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>), valores que representaron 34.2&#150;1.7 %, 12.3&#150;0.6 % y 3.1&#150;0.2 % de la poblaci&oacute;n total. Las consideraciones fundamentales en estos resultados son: 1) el tama&ntilde;o de muestra <i>n </i>se calcul&oacute; considerando la condici&oacute;n agregada de las plantaciones E1&#150;E3 y en este caso se incorpor&oacute; a los c&aacute;lculos del par&aacute;metro <i>k </i>de la funci&oacute;n de distribuci&oacute;n binomial negativa propuesto por Karandinos (1978), enfoque usado en varios patosistemas probando su viabilidad principalmente con condiciones de moderada a alta intensidad de enfermedad (Michereff <i>et al., </i>1998; Tavares <i>et al, </i>2000); 2) la selecci&oacute;n de plantas para constituir una muestra piloto se realiz&oacute; mediante un esquema sistem&aacute;tico de  n&#150;surcos y <i>n</i>&#150;plantas; por tanto, la aplicaci&oacute;n pr&aacute;ctica de un tama&ntilde;o de muestra <i>n</i> debe realizarse con el mismo criterio sistem&aacute;tico para reducir problemas de exactitud y precisi&oacute;n debido a la heterogeneidad espacial del atributo medible. A un mismo tama&ntilde;o de muestra <i>n</i>, la selecci&oacute;n de unidades de muestreo mediante diferentes esquemas sistem&aacute;ticos o con un criterio aleatorio genera diferentes niveles de precisi&oacute;n (Hau <i>et al, </i>1982; Ruiz&#150;Garc&iacute;a, 2008). Sin embargo, debido a que <i>n</i> de la muestra piloto es generalmente distinto a <i>n</i> del tama&ntilde;o calculado, para fines operativos es necesario modificar los intervalos de muestreo <i>k</i><sub>1</sub> y <i>k</i><sub>2</sub> para surco y planta. Una alternativa para evitar variaciones en el esquema de muestreo sistem&aacute;tico, incluyendo los intervalos de muestreo <i>k</i><sub>1</sub><i>, </i>es el uso de m&eacute;todos simulativos con porcentajes de <i>N</i> prefijados. Este enfoque se ha probado para condiciones de baja prevalencia de enfermedad (Ruiz&#150;Garc&iacute;a, 2008).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La variabilidad del tama&ntilde;o de muestra <i>n</i> obtenida de las 30 plantaciones indica que depende de los atributos poblacionales espec&iacute;ficos de un &aacute;rea, los cuales tienen una variaci&oacute;n espacio&#150;temporal. As&iacute;, la severidad de la sigatoka amarilla estuvo en un intervalo de 5.3 a 46.7 % (<a href="/img/revistas/agro/v44n3/a9c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>), siendo m&aacute;s dependiente del estado fenol&oacute;gico, una condici&oacute;n temporal, que de la edad de la plantaci&oacute;n (p = 0.05). La severidad promedio asociada con los estados fenol&oacute;gicos de floraci&oacute;n y fructificaci&oacute;n fue 27 % contrastando con el 14.2 % observado para el estado de desarrollo foliar. Esta tendencia de incremento de la severidad con el desarrollo del cultivo explica la correlaci&oacute;n negativa entre esta variable y el tama&ntilde;o de muestra (r = &#151;0.60), debido a la reducci&oacute;n de la intensidad de agregaci&oacute;n y en consecuencia de la varianza. Por tanto, a mayor severidad de sigatoka amarilla se requiere menor n&uacute;mero de plantas para conformar una muestra con un valor an&aacute;logo de precisi&oacute;n. Esto se ha mostrado para otros patosistemas (Jong, 1995; Michereff <i>et al., </i>1998; Tavares <i>et al., </i>2000).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Considerado lo anterior, para seleccionar un tama&ntilde;o de muestra <i>n</i>&#150;general con un nivel de error de 5 % para cuantificar la severidad de la sigatoka amarilla, primero se consideraron promedios de <i>n</i> por categor&iacute;a fenol&oacute;gica de desarrollo foliar, floraci&oacute;n y fructificaci&oacute;n y los valores fueron 33, 34 y 33 plantas ha<sup>&#150;1</sup> . Estos valores promedio subestimaron ( <i>n</i>&#150;promedio &lt; <i>n</i> <sub>i</sub>, donde <i>i</i>=1 a 30 plantaciones) en 3/4, 2/6 y 7/20 casos. Mientras que subestimar <i>n<sub>i</sub> </i>puede incrementar el error, sobrestimar afecta el costo y eficiencia de muestreo; as&iacute;, ambas condiciones no son deseables. La evaluaci&oacute;n del esquema de muestreo sistem&aacute;tico y del tama&ntilde;o de muestra promediado por evento fenol&oacute;gico (<i>n</i> = 33), mediante simulaci&oacute;n Montecarlo con datos de las huertas E1&#150;E3, mostraron un sesgo de &#151;0.02 a 0.07 %, eficiencia de 0.95 a 1.04, y precisi&oacute;n de 42 a 63&#150;5 %. Estos resultados indican que se podr&iacute;a calcular la severidad en campo con error de 5 % en 42 a 63&#150;5 % de las veces debido a la gran variabilidad de la severidad de la enfermedad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Un segundo criterio para generar una <i>n</i>&#150;general fue usar la media de las <i>n<sub>i</sub> </i>y se tuvieron 92, 33 y 8 plantas ha<sup>&#150;1</sup> para 3, 5 y 10 % de error (<a href="/img/revistas/agro/v44n3/a9c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). Con este criterio se subestim&oacute; en 13/30, 13/30 y 11/30 casos, lo que implica un intervalo 43.3&#150;36.6 % de riesgo de usar un  n inferior al requerido para determinar adecuadamente la severidad de la enfermedad. Un tercer criterio (datos no mostrados) fue calcular un <i>n</i> general que considera categor&iacute;as de severidad relativa; por ejemplo, &lt;12 %, 12&#150;25 % y &gt;25 %, lo cual implica una inspecci&oacute;n piloto en campo y requerir&iacute;a experiencia en la evaluaci&oacute;n de la enfermedad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La definici&oacute;n del nivel de error y un tama&ntilde;o de muestra general depende del prop&oacute;sito del muestreo. En estudios regionales epidemiol&oacute;gicos, niveles de 5 y 10 % son convencionales y un tama&ntilde;o de muestra promedio de 33 u 8 plantas ha<sup>&#150;1</sup> ser&iacute;a aceptable. Para establecer programas de control qu&iacute;mico se recomienda una precisi&oacute;n de 5 %. Este caso implicar&iacute;a adem&aacute;s considerar plantaciones con severidad reducida para operar efectivamente sobre la infecci&oacute;n (p.e. 12 % o menor). As&iacute;, un tama&ntilde;o de muestra promedio de 66 plantas ha<sup>&#150;1</sup> ser&iacute;a aceptable (<a href="/img/revistas/agro/v44n3/a9c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). Otras consideraciones pueden incluir manejo, variedad y condiciones clim&aacute;ticas, as&iacute; como el prop&oacute;sito (Mart&iacute;nez y Toledo, 1977; Southwood, 1978; Perry 1994), para generar un sistema de muestreo con validez biol&oacute;gica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La sigatoka amarilla <i>(M. musicola) </i>se present&oacute; en banano cultivar Pacovan con una severidad promedio de 5.3 a 46.6 %, en el Valle del Siriji, Brasil. La enfermedad present&oacute; un patr&oacute;n agregado de plantas enfermas. La forma de los agregados fue alargada con direcci&oacute;n a los surcos; en esta direcci&oacute;n, la dependencia espacial continua fue hasta 81 m mientras que lateralmente fue hasta 39 m. La determinaci&oacute;n del tama&ntilde;o de muestra <i>n </i>incorpor&oacute; el par&aacute;metro <i>k </i>de la funci&oacute;n de distribuci&oacute;n de la binomial negativa, con el fin de considerar la condici&oacute;n agregada y un muestreo sistem&aacute;tico en bandas para incorporar el efecto de direccionalidad del surco. El an&aacute;lisis de los resultados muestra que en condiciones de alta heterogeneidad espacial existe riesgo de subestimar la precisi&oacute;n con un tama&ntilde;o de muestra <i>n </i>general. En un diagn&oacute;stico epidemiol&oacute;gico con 95 % de precisi&oacute;n se propone una muestra sistem&aacute;tica de <i>n</i> = 33 plantas ha<sup>&#150;1</sup> , lo que equivale aproximadamente a un intervalo de muestreo de 6x6 (<i>k</i><sub>1</sub>, surcos X<i> k</i><sub>2</sub> plantas), que representa 3.8 % de la poblaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Campbell, C. L., and L. V. Madden. 1990. Introduction to Plant Disease Epidemiology. John Willey &amp; Sons. New York. 532 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=542756&pid=S1405-3195201000030000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cordeiro, Z. J. M., A. P. Matos, e H. Kimati. 2005. Doencas da bananeira <i>(Musa </i>spp.). <i>In: </i>Kimati, H., L. Amorim, A. Bergamin Filho, L. E. A. Camargo, e J. A. M. Rezende (eds).   Manual   de   Fitopatolog&iacute;a.   Doencas   das   Plantas Cultivadas. Agron&oacute;mica Ceres. 4 ed. Sao Paulo, Brasil, v. 2. pp: 99&#150;117.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=542757&pid=S1405-3195201000030000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">FAO. 2008. Crops &amp; Livestock Primary &amp; Processed. &lt;<a href="http://www.fao.org.br" target="_blank">http://www.fao.org.br</a>&gt;. May, 2008.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=542758&pid=S1405-3195201000030000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gottwald, T.  R.,  S. M.  Richie,  and C.L.  Campbell.  1992. LCOR2   &#150;   Spatial   correlation   analysis   software   for   the personal computer. Plant Dis. 76: 213&#150;215.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=542759&pid=S1405-3195201000030000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hau, F. C, C.L.Campbell, and M.K.Beute. 1982. Inoculum distribution  and  sampling  methods   for   <i>Cylindrodadium crotahtria </i>in peanut field. Plant Dis. 66: 568&#150;571.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=542760&pid=S1405-3195201000030000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jong, P. D. 1995. Sampling for detection: leek rust as an example. International J. Pest Manage. 41: 31&#150;35.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=542761&pid=S1405-3195201000030000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Karandinos, M. G. 1978. Optimum sample size and comments on some published formulae. Bull. Entomol. Soc. Am. 22: 417&#150;421.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=542762&pid=S1405-3195201000030000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mart&iacute;nez,   J.   A.,   e   A.   C.   D.   Toledo.   1977.   Estudo   do comportamento de produtos qu&iacute;micos no combate ao "Mal de sigatoka", com especial destaque &agrave; efici&ecirc;ncia e fitotoxidez. <i>In: </i>Anais do Congresso Brasileiro de Fruticultura. Salvador, BA, Brasil, pp: 65&#150;74.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=542763&pid=S1405-3195201000030000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Michereff, S. J., R. A. Pedrosa, M. A. Noronha, R. B. Martins, e  F. V.  Silva.   1998.  Escala diagram&aacute;tica e tamanho de amostras para avalia&ccedil;&atilde;o da severidade da mancha parda da mandioca <i>(Cercosporidium henningsi&iacute;). </i>Agrotr&oacute;pica 10: 143&#150;148.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=542764&pid=S1405-3195201000030000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Orjeda, G. 1998. Evaluaci&oacute;n de la Resistencia de los Bananos a  las  Enfermedades  de  Sigatoka  y  Marchitamiento   por <i>Fusarium. </i>INIBAP, Montpellier, Francia. 63 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=542765&pid=S1405-3195201000030000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pereira, L. V., E. J. Alves, and R. C. Caldas. 1981. M&eacute;todo de amostragem e avalia&ccedil;&atilde;o de &aacute;rea foliar da bananeira afetada por <i>Cercospora musae. </i>Pesquisa Agropec. 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Montecillo, M&eacute;xico. 104 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=542770&pid=S1405-3195201000030000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SAS Institute Inc. 2001. SAS/IML User's Guide. Version 8. SAS Institute Inc. Cary NC. 856 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=542771&pid=S1405-3195201000030000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Southwood, T. R. E. 1978. Ecological Methods. 2 ed. Chapman &amp; Hall, London. 524 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=542772&pid=S1405-3195201000030000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stover, R. H. 1971. A proposed international scale for estimating intensity of banana leaf spot <i>(Mycosphaerella musicola </i>Leach). Trap. Agrie. 48: 185&#150;195.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=542773&pid=S1405-3195201000030000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tavares, L. A., S. J. Michereff, R. M.Souza, e R. L. R. Mariano. 2000. Plano de amostragem para quantifica&ccedil;&atilde;o da murcha bacteriana do tomateiro no campo. Summa Phytopathol. 26: 306&#150;310.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=542774&pid=S1405-3195201000030000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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