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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Proliferación de embriones somáticos de Nothofagus alpina: efecto de la fuente de nitrógeno orgánico exógena]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The effect of some sources of organic nitrogen such as hydrolyzed casein and the aminoacids L-glutamine and L-Serine were tested in the process of direct secondary somatic embryogenesis, in which somatic embryos of Nothofagus alpina -induced from isolated cotyledons of mature seeds- were used as explants. The highest percentages of direct secondary embryogenesis were obtained in BTM base medium plus MS vitamins, without plant growth regulators, and in this medium plus NAA, BAP and hydrolyzed casein. However, the fresh weight of the proliferated mass was greatest in the presence of an additional source of organic nitrogen. The highest average number of embryos per explant was also produced in the treatment with growth regulators and hydrolyzed casein, although the number was not significantly higher than in the L-Glutamine treatment, in which significantly less callus growth occurred. Alternate use of base medium and NAA, BAP and hydrolyzed casein medium during subculture enabled direct proliferation of the embryogenic culture, which remained stable for over two years and with a low incidence of callus.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Embriogénesis somática]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos de investigaci&oacute;n</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Proliferaci&oacute;n de embriones som&aacute;ticos de <i>Nothofagus alpina:</i> efecto de la fuente de nitr&oacute;geno org&aacute;nico ex&oacute;gena</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Proliferation of somatic embryos of <i>Nothofagus alpina:</i> effect of an exogen source of organic nitrogen</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Hermes Castellanos<sup>1</sup>, Darcy R&iacute;os<sup>2</sup>, Manuel S&aacute;nchez&#45;Olate<sup>2</sup>, Christian Wehenkel<sup>1</sup> y Javier Corral<sup>3</sup></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i>&nbsp;Instituto de Silvicultura e Industria de la Madera. Universidad Ju&aacute;rez del Estado de Durango. Km. 5.5 carretera a Mazatl&aacute;n. Durango, Dgo. M&eacute;xico. CP 34120.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup>&nbsp;Laboratorio Cultivo de Tejidos Vegetales. Centro de Biotecnolog&iacute;a. Universidad de Concepci&oacute;n, Chile.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup>&nbsp;Facultad de Ciencias Forestales, Universidad Ju&aacute;rez del Estado de Durango, R&iacute;o Papaloapan y Blvd. Durango s/n, Col. Valle del Sur, CP 34120, Durango, M&eacute;xico</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el: 21 de enero de 2009    <br> 	Aceptado el: 30 de julio de 2010</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se prob&oacute; el efecto de algunas fuentes de nitr&oacute;geno org&aacute;nico como case&iacute;na hidrolizada y los amino&aacute;cidos L&#45;Glutamina y L&#45;Serina en el proceso de embriog&eacute;nesis som&aacute;tica secundaria directa, empleando como explantes embriones som&aacute;ticos de <i>Nothofagus alpina</i> inducidos desde cotiledones aislados de semillas maduras. Los mayores porcentajes de embriog&eacute;nesis secundaria directa fueron obtenidos en medio base BTM y vitaminas MS, sin reguladores del crecimiento vegetal y en este medio m&aacute;s ANA, BAP y case&iacute;na hidrolizada. Sin embargo, el peso fresco de las masas de proliferaci&oacute;n fue superior en presencia de una fuente adicional de nitr&oacute;geno org&aacute;nico. Bajo el tratamiento con reguladores del crecimiento y case&iacute;na hidrolizada tambi&eacute;n se produjo la mayor cantidad promedio de embriones producidos por explanto, aunque no hubo diferencias significativas con el tratamiento que contuvo L&#45;Glutamina, donde el crecimiento de callo fue significativamente menor. Mediante subcultivos alternados entre medio base y medio con ANA, BAP y case&iacute;na hidrolizada, se logr&oacute; la proliferaci&oacute;n del cultivo embriog&eacute;nico de manera directa, estable durante m&aacute;s de dos a&ntilde;os y con baja incidencia de callo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave</b>: Embriog&eacute;nesis som&aacute;tica, estado de desarrollo, micropropagaci&oacute;n, reguladores del crecimiento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The effect of some sources of organic nitrogen such as hydrolyzed casein and the aminoacids L&#45;glutamine and L&#45;Serine were tested in the process of direct secondary somatic embryogenesis, in which somatic embryos of <i>Nothofagus alpina</i> &#45;induced from isolated cotyledons of mature seeds&#45; were used as explants. The highest percentages of direct secondary embryogenesis were obtained in BTM base medium plus MS vitamins, without plant growth regulators, and in this medium plus NAA, BAP and hydrolyzed casein. However, the fresh weight of the proliferated mass was greatest in the presence of an additional source of organic nitrogen. The highest average number of embryos per explant was also produced in the treatment with growth regulators and hydrolyzed casein, although the number was not significantly higher than in the L&#45;Glutamine treatment, in which significantly less callus growth occurred. Alternate use of base medium and NAA, BAP and hydrolyzed casein medium during subculture enabled direct proliferation of the embryogenic culture, which remained stable for over two years and with a low incidence of callus.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords</b>: Somatic embryogenesis, developmental stage, micropropagation, growth regulators.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Nothofagus alpina</i> (Poepp. <i>et</i> Endl.) Oerst.) (raul&iacute;), es considerada la especie nativa del bosque chileno con mayor potencial productivo, la que se produce mayormente mediante semillas para repoblaci&oacute;n artificial (Donoso <i>et al.,</i> 1998). Salvo contadas excepciones, como aquellas para promover el mejoramiento gen&eacute;tico y la silvicultura clonal del raul&iacute; y otros <i>Nothofagus</i> (Guti&eacute;rrez, 2005), la regeneraci&oacute;n de esta especie con fines productivos se ha llevado a cabo mediante el manejo de renovales o bosques de segundo crecimiento (Donoso, 1978), lo cual, si bien tiene un efecto positivo en la calidad de los renuevos, no explota a cabalidad el acervo gen&eacute;tico de la especie para fines productivos y de conservaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la propagaci&oacute;n de la especie, junto con la v&iacute;a generativa para obtener semilla mejorada gen&eacute;ticamente a trav&eacute;s de polinizaci&oacute;n controlada (Ipinza y Guti&eacute;rrez, 2000), se ha explorado la propagaci&oacute;n vegetativa, tanto mediante macro como micropropagaci&oacute;n organog&eacute;nica. Estas investigaciones han logrado resultados prometedores (Jordan <i>et al.,</i> 1996; Mart&iacute;nez&#45;Pastur y Arena, 1996; S&aacute;nchez&#45;Olate <i>et al.,</i> 2004), pero han demostrando las limitaciones t&eacute;cnicas como bajas tasas de enraizamiento y escasa aplicabilidad a nivel operacional que surgen al pretender aplicar este tipo de alternativas para propagaci&oacute;n en programas operativos de reforestaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gran parte de estas limitaciones puede ser superada mediante el establecimiento de micropropagaci&oacute;n basado en la embriog&eacute;nesis som&aacute;tica, que es la regeneraci&oacute;n de un embri&oacute;n a partir de c&eacute;lulas o tejidos som&aacute;ticos diferenciados, constituyendo la expresi&oacute;n m&aacute;xima de la totipotencia de la c&eacute;lula vegetal, como resultado del aislamiento, tanto espacial como fisiol&oacute;gico, de una c&eacute;lula o grupo celular (Toribio, 2003; Feh&eacute;r, 2006). Actualmente, se ha conseguido inducir con &eacute;xito la embriog&eacute;nesis som&aacute;tica en un n&uacute;mero cada vez mayor de especies y explantos de inicio, principalmente en con&iacute;feras como <i>Pinus taeda, Abies alba</i> y <i>Larix decidua,</i> lo que ha propiciado su aplicaci&oacute;n a escala operacional para la propagaci&oacute;n masiva de genotipos selectos (Zoglauer <i>et al.,</i> 2003). En el caso de <i>N. alpina</i> se ha conseguido inducir exitosamente masas proembriog&eacute;nicas y regeneraci&oacute;n de embriones som&aacute;ticos viables desde explantos cotiledonares extra&iacute;dos desde semillas maduras provenientes del huerto semillero clonal Huillilemu, ubicado en la provincia de Valdivia, d&eacute;cima regi&oacute;n de Chile (Castellanos <i>et al.,</i> 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Algunas fuentes de nitr&oacute;geno org&aacute;nico como amino&aacute;cidos y case&iacute;na hidrolizada, han sido probadas en le&ntilde;osas y herb&aacute;ceas logrando una proliferaci&oacute;n sostenida de estructuras embriog&eacute;nicas <i>in vitro</i> y m&aacute;s a&uacute;n su posterior conversi&oacute;n a planta (Kim y Moon, 2007; Sarker <i>et al.,</i> 2007; Corredoira <i>et al.,</i> 2003), no as&iacute; en sistemas embriog&eacute;nicos de <i>Nothofagus alpina.</i> Dichos aditivos en el medio de cultivo, en presencia o ausencia de sales de nitr&oacute;geno inorg&aacute;nica incrementan la eficiencia del cultivo en la embriog&eacute;nesis som&aacute;tica, lo cual se manifiesta en mayores tasas de multiplicaci&oacute;n de embriones y retenci&oacute;n del potencial embriog&eacute;nico de los tejidos (Sotiropoulos <i>et al.,</i> 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Objetivos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La disparidad de resultados entre g&eacute;neros y especies frente a un mismo est&iacute;mulo de cultivo <i>in vitro,</i> hacen necesario la b&uacute;squeda para cada caso en particular de la mejor secuencia de cultivo que asegure la obtenci&oacute;n de un protocolo de regeneraci&oacute;n confiable. As&iacute;, el objetivo de este trabajo fue indagar la dosis de amino&aacute;cidos, adicionales a los contemplados en el medio de cultivo base, as&iacute; como la incorporaci&oacute;n de case&iacute;na hidrolizada, a fin de incrementar los niveles de proliferaci&oacute;n de nuevas estructuras embriog&eacute;nicas en la l&iacute;nea clonal RaC&#45;01 de <i>Nothofagus alpina,</i> una de las tres l&iacute;neas clonales inducidas con &eacute;xito desde cotiledones de semillas maduras y que se ha mantenido con niveles de proliferaci&oacute;n estables hasta la fecha.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Metodolog&iacute;a</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Material vegetal.</i> El material empleado en este estudio se obtuvo del cultivo de la l&iacute;nea embriog&eacute;nica RaC&#45;01 (raul&iacute;, explanto cotiledonar, l&iacute;nea clonal 01), inducida desde cotiledones aislados de semillas maduras de <i>N. alpina,</i> las cuales se generaron en un huerto semillero clonal del Instituto Forestal de Chile (Infor), mediante polinizaci&oacute;n controlada. Luego de la inducci&oacute;n de masas pre&#45;embriog&eacute;nicas (MPEs) y manifestaci&oacute;n de embriones som&aacute;ticos, el cultivo se mantuvo en medio de manutenci&oacute;n, consistente en la soluci&oacute;n mineral Broadleaved Tree Medium o BTM (Chalupa, 1983) y vitaminas MS (Murashige y Skoog, 1962), m&aacute;s los reguladores del crecimiento 6&#45;benciladenina (BA) y &aacute;cido anaftalenac&eacute;tico (ANA) a concentraciones de 0,1 mgL<sup>&#45;1</sup> cada uno, as&iacute; como 30 gL<sup>&#45;1</sup> de sacarosa y 6gL<sup>&#45;1</sup> de agar. Cada 28 d&iacute;as se realiz&oacute; un subcultivo a medio</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">fresco, altern&aacute;ndose dos subcultivos con los reguladores del crecimiento (RC) y concentraciones mencionados anteriormente con un subcultivo en medio base BTM, sin RC.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Explantos de inicio.</i> Con ayuda de material quir&uacute;rgico previamente esterilizado y bajo lupa estereosc&oacute;pica, se aislaron desde las MPEs los explantos que sirvieron de material de inicio para cada uno de los tratamientos. Dichos explantos correspondieron a embriones som&aacute;ticos primarios en estado cotiledonar (ESP), seleccionando aquellos de morfolog&iacute;a normal y con una longitud de eje embrionario de entre 3 mm y 4 mm (<a href="#f1">Figura 1a</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/mb/v17n2/a4f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Tratamientos de proliferaci&oacute;n.</i> Se aplicaron seis tratamientos de proliferaci&oacute;n (incluyendo un testigo en media base sin RC). El medio base aplicado a todos los tratamientos correspondi&oacute; a la soluci&oacute;n mineral BTM con vitaminas MS. En los tratamientos que incluyeron reguladores del crecimiento (T3, T4, T5 y T6), se aplic&oacute; BAP y ANA en relaci&oacute;n 1:1. A su vez, se agreg&oacute; al medio de cultivo case&iacute;na hidrolizada y los amino&aacute;cidos L&#45;Glutamina y L&#45;Serina, en las concentraciones y combinaciones que se detallan en la <a href="#t1">tabla 1</a> y que constituyen los tratamientos ensayados.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/mb/v17n2/a4t1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Condiciones de cultivo.</i> El pH en todos los tratamientos fue ajustado a 5,8 por medio de la aplicaci&oacute;n de HCI o NaOH, antes de su esterilizaci&oacute;n en autoclave a 121 &deg;C y 1 atm&oacute;sfera de presi&oacute;n, durante 20 minutos. Todos los tratamientos estuvieron con 30 gL<sup>&#45;1</sup> de sacarosa y 6,0 gL<sup>&#45;1</sup> de agar. A lo largo de las seis semanas del experimento, el cultivo se mantuvo en oscuridad continua a una temperatura de (25 &plusmn; 1) &deg;C de d&iacute;a (16 horas, fotoperiodo en la c&aacute;mara de cultivo) y (22 &plusmn; 1) &deg;C de noche.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Dise&ntilde;o experimental y an&aacute;lisis estadistico.</i> Se estableci&oacute; un dise&ntilde;o experimental completamente al azar. La unidad experimental correspondi&oacute; a una placa petri de 9 cm de di&aacute;metro, conteniendo nueve ESP, con cinco repeticiones. La unidad muestral correspondi&oacute; a cada ESP. Al cabo de seis semanas se evalu&oacute; el porcentaje de explantos (ESP) con embriog&eacute;nesis secundaria directa (ESSD), porcentaje de explantos con callog&eacute;nesis, n&uacute;mero de embriones som&aacute;ticos secundarios (ESS) en estado cotiledonar y torpedo por ESP y peso fresco (mg) del macizo de proliferaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Debido a la naturaleza del experimento, con un limitado n&uacute;mero de repeticiones y al incumplimiento del supuesto de normalidad de las observaciones, se llev&oacute; a cabo un an&aacute;lisis no param&eacute;trico basado en permutaciones (Manly, 1997) con el fin de verificar si las diferencias observadas entre los valores promedio de los tratamientos se deben a un efecto dirigido de estos, o bien a eventos al azar (Wehenkel <i>et al.,</i> 2008). Mediante un elevado n&uacute;mero de permutaciones es posible evaluar las diferencias promedio entre los tratamientos, las cuales sean mayores o iguales que las respectivas diferencias observadas, lo que se llev&oacute; a cabo para las cinco variables antes mencionadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Embriog&eacute;nesis som&aacute;tica secundaria directa (</i><i>ESSD</i><i>).</i> Los efectos de la aplicaci&oacute;n de tratamientos de proliferaci&oacute;n comienzan a evidenciarse a los cinco d&iacute;as de iniciado el ensayo, manifest&aacute;ndose de dos formas diferentes. En primer lugar, algunos explantos de inicio (ESP, <a href="#f1">Figura 1a</a>) comienzan a experimentar un aumento de tama&ntilde;o tanto en sentido radial como longitudinal, seguido de la ruptura del tejido epid&eacute;rmico en ambos polos de crecimiento longitudinal para luego dar paso a una continua proliferaci&oacute;n celular, la cual, a las dos semanas cubre toda la superficie del explanto (<a href="#f1">Figura 1b</a>). El segundo tipo de respuesta es la ocurrencia de germinaci&oacute;n del ESP y elongaci&oacute;n del eje hipoc&oacute;tilo&#45;ra&iacute;z. Conjuntamente se aprecia la aparici&oacute;n de agregados celulares blancos y cristalinos en la regi&oacute;n hipoc&oacute;tilo, as&iacute; como de peque&ntilde;as estructuras sobre el tejido epid&eacute;rmico solo observables bajo lupa, correspondientes a embriones som&aacute;ticos secundarios en estado globular generados de manera directa, los cuales a las cuatro semanas ser&aacute;n perfectamente identificables a simple vista (<a href="#f1">Figura 1c</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Respecto al porcentaje de explantes presentando (ESSD), se determinaron efectos significativos de los tratamientos aplicados sobre esta variable, alcanz&aacute;ndose un m&aacute;ximo de 53,3% de explantos iniciales, lo cual ocurri&oacute; en el tratamiento T5, el cual contiene 2,0 mgL<sup>&#45;1</sup> de L&#45;Glutamina adem&aacute;s de los reguladores del crecimiento ANA y BAP (<a href="#t2">Tabla 2</a>). Sin embargo, este tratamiento no difiere significativamente con el tratamiento testigo en medio BTM ni con el tratamiento T4 que contiene RC m&aacute;s case&iacute;na hidrolizada.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t2"></a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/mb/v17n2/a4t2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El tratamiento en que menos explantos manifestaron embriog&eacute;nesis som&aacute;tica directa fue en el que se adicion&oacute; 2,0 mgL<sup>&#45;1</sup> del amino&aacute;cido L&#45;Serina en combinaci&oacute;n con ANA y BAP, con un 4,4% en tal condici&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Callog&eacute;nesis.</i> Los tratamientos aplicados influenciaron significativamente la respuesta en formaci&oacute;n de callo desde los explantos de inicio. El mayor porcentaje de formaci&oacute;n de callo se obtuvo en el tratamiento T3 (80%) con los reguladores del crecimiento ANA y BAP a una concentraci&oacute;n de 0,05 mgL<sup>&#45;1</sup> cada uno, sin otro suplemento adicional. Esta respuesta no difiere significativamente agregando 500 mgL<sup>&#45;1</sup> de case&iacute;na hidrolizada a estas condiciones (T4), donde 73.4% de los explantes presentaron callo (<a href="#t3">Tabla 3</a>). Los niveles de callog&eacute;nesis se presentaron significativamente inferiores a los tratamientos antes mencionados, principalmente bajo dos condiciones (<a href="#t3">Tabla 3</a>): sin reguladores del crecimiento (con o sin case&iacute;na hidrolizada, T1 y T2) y con RC m&aacute;s amino&aacute;cidos (T5 y T6).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/mb/v17n2/a4t3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con lo observado en el sistema embriog&eacute;nico en <i>N. alpina,</i> el mayor porcentaje de ESS morfol&oacute;gicamente normales se presenta por la v&iacute;a directa, por lo que se considera favorable que la incidencia de callo se mantenga en niveles bajos en los tratamientos en donde se observaron los mayores &iacute;ndices de ESSD (T1 y T5, <a href="#t2">Tabla 2</a>), esto debido a que en ausencia de callo los embriones se presentan morfol&oacute;gicamente normales, con ambos cotiledones y pueden ser aislados con mayor facilidad para las siguientes etapas de maduraci&oacute;n y germinaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>N&uacute;mero de embriones som&aacute;ticos secundarios (ESS).</i> En esta variable en que se considera ESS tanto en estado torpedo como cotiledonar (<a href="#f1">Figura 1d</a>), los tratamientos influenciaron significativamente los resultados, luego de seis semanas de iniciado el ensayo. La mayores cantidades de ESS por explante se generaron en tratamientos con reguladores del crecimiento, con excepci&oacute;n del T6 donde el amino&aacute;cido L&#45;Serina est&aacute; presente. El mayor nivel se present&oacute; en el tratamiento T4 con un promedio de 2.6 ESS por explanto, sin diferir significativamente con el n&uacute;mero de ESS promedio alcanzado en los tratamientos T3 y T5, con 2.2 embriones som&aacute;ticos secundarios en ambos casos (<a href="#t4">Tabla 4</a>). Los resultados en los tratamientos antes mencionados tuvieron diferencias significativas con el resto.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t4"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/mb/v17n2/a4t4.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Considerando solo ESS en estado cotiledonar, la mayor cantidad por explante se present&oacute; nuevamente en el T4 con un promedio de 1,6 sin presentar diferencias significativas, solo con T3 en donde este promedio alcanz&oacute; los 1,5 ESS por ESP (p= 0,498). Los ESS en estado cotiledonar se presentan en su mayor&iacute;a con caracteres morfol&oacute;gicos normales, principalmente en lo referido al par cotiledonar. Los ESS con anormalidades morfol&oacute;gicas tales como presencia de cotiledones fusionados, no supera 20% del total, en el T4.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Peso fresco.</i> El peso fresco de los agregados embriog&eacute;nicos tambi&eacute;n se vio influenciado significativamente por los tratamientos. Esta variable se present&oacute; en mayor magnitud en los tratamientos T3 y T4 (33,2 y 27,9 mg, respectivamente), sin diferencias significativas entre ambos tratamientos (p=0,163), pero s&iacute; con el resto de los tratamientos probados (<a href="#t5">Tabla 5</a>). En los tratamientos T3 y T4 no existi&oacute; una dosis adicional de amino&aacute;cidos, salvo la adici&oacute;n de ANA y BAP y case&iacute;na hidrolizada. Esta respuesta est&aacute; influenciada tanto por la mayor presencia de callo en estos tratamientos, as&iacute; como por la mayor cantidad de ESS en estado cotiledonar (<a href="#f1">Figura 1e</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t5"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/mb/v17n2/a4t5.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores menores de esta variable se presentaron en tratamientos sin reguladores del crecimiento (T1 y T2), as&iacute; como en el tratamiento T6 que contiene L&#45;Serina, sin superar los 10 mg por macizo embriog&eacute;nico en promedio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otra parte, la supervivencia de los explantos se mantuvo alta en todos los tratamientos a lo largo del estudio, presentando valores m&aacute;ximos (100%) en los tratamientos T4 y T5, lo cual difiere significativamente con el tratamiento que contiene L&#45;Serina (T6), que tuvo en promedio 86,7% de supervivencia.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n y conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Si bien es cierto que las plantas, a diferencia de los humanos y la mayor&iacute;a de los animales, son capaces de sintetizar todos los amino&aacute;cidos derivados de las prote&iacute;nas a partir de mol&eacute;culas como el piruvato y el ciclo del &aacute;cido c&iacute;trico (Taiz y Zeiger, 2006), tales componentes org&aacute;nicos se agregan a los medios de cultivo para satisfacer requerimientos de nitr&oacute;geno en su forma reducida. Estos se emplean de manera rutinaria cuando su efecto es positivo en sistemas de micropropagaci&oacute;n masiva, como la embriog&eacute;nesis som&aacute;tica, a pesar de su alto costo (George y de Klerk, 2008).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha comprobado el efecto positivo de la adici&oacute;n de case&iacute;na hidrolizada y otras fuentes org&aacute;nicas de nitr&oacute;geno como los amino&aacute;cidos L&#45;Glutamina y L&#45;Serina a los medios de cultivo en diferentes fases de la embriog&eacute;nesis som&aacute;tica, incluyendo inducci&oacute;n y proliferaci&oacute;n de MPE, atribuy&eacute;ndoles entre otros efectos, incrementar el n&uacute;mero de nuevas estructuras embriog&eacute;nicas y promover su desarrollo (Varisai <i>et al.,</i> 2004).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por su parte, la case&iacute;na y otras prote&iacute;nas hidrolizadas son menos costosas, aunque debido a su origen y procesos de obtenci&oacute;n, son de naturaleza menos definida que los amino&aacute;cidos, lo cual implica que se deba probar su eficiencia en cada sistema embriog&eacute;nico en particular. La case&iacute;na hidrolizada constituye una fuente de calcio, fosfato, diversos microelementos, vitaminas y una mezcla de al menos 18 amino&aacute;cidos, entre ellos la glutamina. Se ha probado su efecto estimulador del desarrollo en procesos morfog&eacute;nicos <i>in vitro,</i> tanto en procesos como el cultivo de suspensiones celulares, como en organog&eacute;nesis (George y de Klerk, 2008).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El amino&aacute;cido L&#45;Glutamina ha sido empleado con &eacute;xito en otros sistemas embriog&eacute;nicos de especies le&ntilde;osas, observ&aacute;ndose un incremento en los niveles de proliferaci&oacute;n de MPE. Tal es el caso de un estudio llevado a cabo en <i>Abies nordmanniana</i> (Stev.) Stach., en el cual adem&aacute;s se adicion&oacute; case&iacute;na hidrolizada al medio de cultivo (Norgaard y Krogstrup, 1991). Las fuentes de nitr&oacute;geno org&aacute;nico suplementarias al medio de cultivo se aplican rutinariamente en estudios de embriog&eacute;nesis som&aacute;tica en fag&aacute;ceas, principalmente en las fases de inducci&oacute;n y proliferaci&oacute;n de agregados embriog&eacute;nicos (Cuenca <i>et al.,</i> 1999; Xing <i>et al.,</i> 1999). En <i>Quercus acutissima</i> Carruth., se adicion&oacute; 1 gL<sup>&#45;1</sup> de L&#45;Glutamina al medio de inducci&oacute;n, en el cual se cultivaron como explantos embriones cig&oacute;ticos inmaduros, obteni&eacute;ndose posteriormente la germinaci&oacute;n y conversi&oacute;n a planta de ES de diferentes genotipos (Kim <i>et al.,</i> 1997).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este mismo amino&aacute;cido fue aplicado con &eacute;xito como aditivo al medio MS modificado, en la manutenci&oacute;n de la competencia embriog&eacute;nica de cultivos de <i>Castanea sativa</i> Mill., en donde se emplearon ES como explante para generar embriog&eacute;nesis som&aacute;tica recurrente, con el fin de realizar estudios posteriores del efecto de la fuente de carbono en la maduraci&oacute;n y germinaci&oacute;n de embriones som&aacute;ticos (Corredoira <i>et al.,</i> 2003). En este estudio en <i>N. alpina,</i> la adici&oacute;n de amino&aacute;cidos al medio de cultivo base no tuvo un efecto significativo en relaci&oacute;n al tratamiento testigo en cuanto a la incidencia de ES secundaria y mantenimiento de la l&iacute;neas embriog&eacute;nicas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por su parte, Robichaud <i>et al.</i> (2004) emplearon case&iacute;na hidrolizada (1 gL<sup>&#45;1</sup>) como componente adicional en medio base WPM en un estudio sobre el efecto de la adici&oacute;n de los amino&aacute;cidos L&#45;Glutamina y L&#45;Asparagina, adem&aacute;s de agentes modificadores del potencial osm&oacute;tico del medio, sobre la maduraci&oacute;n de es de <i>Castanea dentata</i> (Marsh.) Borkh., encontr&aacute;ndose, a diferencia de este estudio, que hubo un efecto positivo en el tama&ntilde;o de los es respecto al testigo, aunque tambi&eacute;n se evidenciaron anormalidades morfol&oacute;gicas y germinaci&oacute;n precoz.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con Inoue y Maeda (1982, citados por George y De Klerk, 2008), en diversos cultivos la case&iacute;na hidrolizada es m&aacute;s efectiva en promover el desarrollo que la adici&oacute;n individual de amino&aacute;cidos en el medio de cultivo, supuestamente debido a la presencia de alg&uacute;n factor del crecimiento desconocido, a&uacute;n presente en esa sustancia.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Si bien se considera que el mayor efecto de estas fuentes de nitr&oacute;geno inorg&aacute;nico se manifiesta en soluciones minerales con baja dotaci&oacute;n de iones NH<sub>4</sub>+, George y De Klerk (2008) sugieren que estas sustancias son tambi&eacute;n efectivas en medios ricos en iones amonio, debido a la conservaci&oacute;n de la mol&eacute;cula de ATP (compensando la deficiencia de fosfato), su capacidad para actuar como agentes quelantes, favorecer la capacidad de asimilaci&oacute;n de nitr&oacute;geno, sustituci&oacute;n de posibles iones NH<sub>4</sub>+ t&oacute;xicos y el ajuste del pH intracelular.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este estudio, el porcentaje de explantes presentando embriog&eacute;nesis secundaria directa no fue afectado significativamente al agregar reguladores del crecimiento al medio de cultivo (T1 <i>vs</i> T4 y T5). Sin embargo, en presencia de BAP y ANA y una fuente de nitr&oacute;geno org&aacute;nico como case&iacute;na hidrolizada, el peso fresco de los macizos de proliferaci&oacute;n y el n&uacute;mero de es por explante en estado cotiledonar y torpedo fueron significativamente superiores respecto al testigo. La aplicaci&oacute;n de L&#45;serina tuvo una incidencia negativa en esta respuesta frente al tratamiento testigo, as&iacute; como frente al tratamiento que contempl&oacute; adici&oacute;n de L&#45;Glutamina. Por su parte, el porcentaje de incidencia de callog&eacute;nesis (proliferaci&oacute;n de MPE), as&iacute; como el peso fresco de los agregados, fueron influenciados positivamente mediante la adici&oacute;n de BAP y ANA, con o sin case&iacute;na hidrolizada (T3 y T4).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Del mismo modo, la generaci&oacute;n por v&iacute;a directa de embriones som&aacute;ticos en estado cotiledonar y torpedo fue significativamente mayor en medio con BAP y ANA sin otros componentes adicionales, excepto al adicionar case&iacute;na hidrolizada. Se recomienda la proliferaci&oacute;n directa de embriones som&aacute;ticos secundarios en <i>Nothofagus alpina,</i> en medio base sin RC, sin un incremento significativo en la proliferaci&oacute;n callog&eacute;nica. Sin embargo, es necesario estudiar los efectos de una fuente de nitr&oacute;geno org&aacute;nico como case&iacute;na hidrolizada y el amino&aacute;cido L&#45;Glutamina en etapas posteriores como la maduraci&oacute;n y germinaci&oacute;n de embriones som&aacute;ticos de raul&iacute;.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Reconocimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores agradecen a CONICYT&#45;Chile y al proyecto MESESUP AUS 0103 por el financiamiento otorgado para la realizaci&oacute;n de esta investigaci&oacute;n.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Castellanos, H., M. S&aacute;nchez&#45;Olate y D. R&iacute;os. 2005. La embriog&eacute;nesis som&aacute;tica como alternativa para la regeneraci&oacute;n <i>in vitro</i> de raul&iacute; y roble. In: B. Guti&eacute;rrez, O. Ortiz y M.P. Molina. Clonaci&oacute;n de raul&iacute;: estado actual y perspectivas. CEFOR&#45;INFOR&#45;UACH. Concepci&oacute;n, Chile. 174 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167119&pid=S1405-0471201100020000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuenca, B., M. San&#45;Jos&eacute;, M. Mart&iacute;nez, A. Ballester y A. Vieitez. 1999. Somatic embryogenesis from stem and leaf explants of <i>Quercus robur</i> L. Plant Cell Reports 18:538&#45;543.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167121&pid=S1405-0471201100020000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chalupa, V. 1983. Micropropagation of conifer and broadleaved forest trees. Communicationes Instituti Forestalis Cechosloveniae 13:7&#45;39.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167123&pid=S1405-0471201100020000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Corredoira, E., A. Ballester y A.M. Vieitez. 2003. Proliferation, maturation and germination of <i>Castanea sativa</i> Mill. Somatic embryos originated from leaf explants. Annals of Botany 92(1): 129&#45;136.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167125&pid=S1405-0471201100020000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donoso, P., M. Gonz&aacute;lez, B. Escobar, I. Basso y L. Otero. 1998. Viverizaci&oacute;n y plantaci&oacute;n de Raul&iacute;, Roble y Coig&uuml;e en Chile. In: C. Donoso y A. Lara. Silvicultura de los bosques nativos de Chile. Editorial Universitaria. Santiago. Chile. 421 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167127&pid=S1405-0471201100020000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Feh&eacute;r, A. 2006. Why somatic plant cells start to form embryos? In: A. Mujib y J. Samaj. Plant Cell Monographs. Somatic Embryogenesis. Springer. Alemania. 357 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167129&pid=S1405-0471201100020000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">George, E.F. y G.J. De Klerk. 2008. The components of plant tissue cultura media I: Macro and Micronutrients. In: E.F. George, M. Hall y G.&#45;J. De Klerk (Eds.). Plant propagation by tissue culture. Springer. Pa&iacute;ses Bajos. 501 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167131&pid=S1405-0471201100020000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hartmann, H. y J. Kester. 1997. Plant Propagation. Principles and Practices. Prentice Hall. EUA. 770 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167133&pid=S1405-0471201100020000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Guti&eacute;rrez, B. 2005. Propagaci&oacute;n vegetativa y silvicultura clonal: antecedentes generales. In: B. Guti&eacute;rrez, O. Ortiz y M.P. Molina (Eds.). Clonaci&oacute;n de raul&iacute;: estado actual y perspectivas. CEFOR&#45;INFOR&#45;UACH. Concepci&oacute;n, Chile. 174 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167135&pid=S1405-0471201100020000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ipinza, R. y B. Guti&eacute;rrez. 2000. Estrategia de mejora gen&eacute;tica para <i>N. alpina</i> y <i>N. obliqua</i> en Chile. In: R. Ipinza, B. Guti&eacute;rrez y V. Emhart (Eds.). Domesticaci&oacute;n y mejora gen&eacute;tica de raul&iacute; y roble. Universidad Austral de Chile, Instituto Forestal. Valdivia, Chile. 468 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167137&pid=S1405-0471201100020000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jordan, M., J. Velozo y A.M. Sabja. 1996. Organogenesis <i>in vitro</i> of <i>Nothofagus alpina</i> (P. <i>et</i> E.) Oerst., Fagaceae. Plant Cell Reports 15(10):795&#45;798.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167139&pid=S1405-0471201100020000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kim, Y.W. y H.K. Moon. 2007. Enhancement of somatic embryogenesis and plant regeneration in Japanese larch <i>(Larix leptolepis).</i> Plant Cell Tissue and Organ Culture 88:241&#45;245.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167141&pid=S1405-0471201100020000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Manly, B.F.J. 1997. Randomization, bootstrap and Monte Carlo methods in biology. Segunda edici&oacute;n. Chapman &amp; Hall. 399 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167143&pid=S1405-0471201100020000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mart&iacute;nez, O. 1993. Nuevo l&iacute;mite sur del &aacute;rea de distribuci&oacute;n de <i>Nothofagus alpina</i> (Mull.) Dim., Fagaceae. Bosque 14(1):73&#45;74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167145&pid=S1405-0471201100020000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mart&iacute;nez&#45;Pastur, G. y M. Arena. 1996. In vitro propagation of <i>Nothofagus nervosa</i> (Phil.) Dim. <i>et</i> Mil. Phyton 58(1/2):1&#45;7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167147&pid=S1405-0471201100020000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Murashige, T. y F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiologia Plantarum 15:473&#45;479.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167149&pid=S1405-0471201100020000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Norgaard, J. y P. Krogstrup. 1991. Cytokinin induced somatic embryogenesis from immature embryos of <i>Abies nordmanniana</i> Lk. Plant Cell Reports 9(9): 509&#45;513.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167151&pid=S1405-0471201100020000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Robichaud, R.L., C.L. Veronica y S.A. Merkle. 2004. Treatments affecting maturation and germination of American chestnut somatic embryos. Journal of Plant Physiology. 161:957969. Donoso, C. 1978. La silvicultura de <i>Nothofagus</i> en Chile. Departamento de Silvicultura y Conservaci&oacute;n. Universidad de California. Berkeley. California. 102 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167153&pid=S1405-0471201100020000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">S&aacute;nchez&#45;Olate, M., D. R&iacute;os, M. Pedraza, G. Pereira, H. Castellanos y R. Escobar. 2004. Propagaci&oacute;n <i>in vitro</i> de <i>Nothofagus procera</i> ((Poepp. <i>et</i> Endl.) Oerst.) a partir de embriones aislados. Bosque 25(1):123&#45;128.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167155&pid=S1405-0471201100020000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sarker, K.K., A.H. Kabir, S.A. Sharmin, Z. Nasrin and M.F. Alam. 2007. Improved somatic embryogenesis using L&#45;asparagine in wheat <i>(Triticum aestivum</i> L.). Sjemenarstvo 24:187&#45;196.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167157&pid=S1405-0471201100020000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sotiropoulos, T.E., K.N. Dimassi y I.N. Therios. 2005. Effects of L&#45;rginine and L&#45;cysteine on growth, and chlorophyll and mineral contents of shoots of the apple rootstock em 26 cultures <i>in vitro.</i> Biologia Plantarum 49(3):443&#45;445.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167159&pid=S1405-0471201100020000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Taiz, L. y E. Zeiger. 2006. Plant Physiology. Sinauer Associates, Inc. Massachusetts. 764 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167161&pid=S1405-0471201100020000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Toribio, M. 2003. Embriog&eacute;nesis som&aacute;tica en especies forestales. In: V Reuni&oacute;n de la Sociedad Espa&ntilde;ola de Cultivo <i>in vitro</i> de Tejidos Vegetales. Pamplona. Espa&ntilde;a. 131 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167163&pid=S1405-0471201100020000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Varisai, S., C. Wfong, M. Thiruvengadam y N. Jayabalan. 2004. <i>In vitro</i> plant regeneration via somatic embryogenesis through cell suspension cultures of horsegram <i>(Macrotyloma uniflorum</i> (Lam.) Verdc). In Vitro Cellular and Developmental Biology&#45;Plant 40:284&#45;289.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167165&pid=S1405-0471201100020000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wehenkel, A., M. Bellinzoni, M. Gra&ntilde;a, R. Duran, A. Villarino, P. Fernandez, G. Andre&#45;Leroux, P. England, H. Takiff, C. Cerve&ntilde;ansky, S.T. Cole y P.M. Alzari. 2008. Mycobacterial Ser/Thr protein kinases and phosphatases: Physiological roles and therapeutic potential. Biochimica et Biophysica Acta 1784(2008):193&#45;202.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167167&pid=S1405-0471201100020000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Xing, Z., W. Powell y Ch. Maynard. 1999. Development and germination of American chesnut somatic embryos. Plant Cell Tissue and Organ culture 57:47&#45;55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167169&pid=S1405-0471201100020000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zoglauer, K., U. Behrendt, A. Rahmat, H. Ross and Taryono. 2003. Somatic embryogenesis&#45;the gate to biotechnology in conifers. In: M. Laimer, M. and W. Rucker (Eds.). Plant tissue culture. 100 years since Gottlieb Haberlandt. Springer. Austria. 260 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5167171&pid=S1405-0471201100020000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>      	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Nota</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este documento se debe citar como: Castellanos, H., D. R&iacute;os, M. S&aacute;nchez&#45;Olate, Ch. Wehenkel y J. Corral. Proliferaci&oacute;n de embriones som&aacute;ticos de <i>Nothofagus alpina:</i> efecto de la fuente de nitr&oacute;geno org&aacute;nico ex&oacute;gena. <i>Madera y Bosques</i> 17(2):35&#45;46.</font></p>      ]]></body><back>
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