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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Contenido fenólico y acción antioxidante de extractos de acículas de Pinus cooperi, P. durangensis, P. engelmanii y P. teocote]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Phenolic content and antioxidant action in needle extracts from Pinus cooperi, P. durangensis, P. engelmanii and P. teocote]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Coniferous trees are a vast resource in Durango, Mexico forests and a potential nontimber source of these chemicals, thus, our study for analyzing phenolic content and biological activity in needle extracts from Pinus cooperi (COO), P. durangensis (DUR), P. engelmanii (ENG) and P. teocote (TEO). Pine needles were dewaxed with hexane and extracted with aqueous acetone and methanol. DUR and ENG extracts showed the higher yields, while acetone TEO and methanol ENG extracts showed the highest catechin equivalent (CE) contents. A partial chromatographic purification on acetone TEO extracts produced five fractions, the third one (F3-TEO) had the highest phenolic content (489,6 CE). In condensed tannins contents, acetone and methanol TEO extracts, as well fraction F3-TEO were the best (24,3, 15.7 and 44,4 mg/g extract, respectively). In DPPH activity, the more effective CE50 were obtained from TEO acetone extract (223,5 ppm) and fractions F3-TEO (145,0 ppm) and F4-TEO (150,8 ppm). In ABTS assay, TEO acetone (27,7%) and methanolic (18,2%) extracts, and fractions F3-TEO (60,1%) and F4-TEO (55,8%) were the best. In LDL assay the highest inhibitory activity was shown by acetone extracts, particularly ENG (99,4%) at 90 ppm. Therefore acetone extracts from TEO and ENG may have utilization as a potential source of bioactive phenolics.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos de investigaci&oacute;n </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Contenido fen&oacute;lico y acci&oacute;n antioxidante de extractos de ac&iacute;culas de <i>Pinus cooperi, P. durangensis, P. engelmanii </i>y <i>P. teocote</i></b> </font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Phenolic content and antioxidant action in needle extracts from <i>Pinus cooperi, P. durangensis, P. engelmanii </i>and <i>P. teocote</i></b> </font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Mar&iacute;a de los &Aacute;ngeles S&aacute;enz&#150;Esqueda<sup>1</sup>, Martha Rosales&#150;Castro<sup>2</sup>, Nuria Elizabeth Rocha&#150;Guzm&aacute;n<sup>1</sup>, Jos&eacute; Alberto Gallegos&#150;Infante<sup>1 </sup>y Rub&eacute;n Francisco Gonz&aacute;lez&#150;Laredo<sup>1</sup></b> </font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Instituto Tecnol&oacute;gico de Durango. Departamento de Ingenier&iacute;a Qu&iacute;mica y Bioqu&iacute;mica. Felipe Pescador 1830 Ote. 34080 Durango, Dgo. M&eacute;xico. </i><a href="mailto:gonzalezlaredo@gmail.com">gonzalezlaredo@gmail.com</a>. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>2</i></sup><i> CIIDIR Unidad Durango. Instituto Polit&eacute;cnico Nacional. Becaria de COFAA&#150;IPN.</i> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Manuscrito recibido el 20 de febrero de 2009    <br>   Aceptado el 9 de marzo de 2010 </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durango es uno de los estados con mayor riqueza forestal, siendo el pino el g&eacute;nero dominante en sus bosques, de ah&iacute; el inter&eacute;s por evaluar qu&iacute;mica y biol&oacute;gicamente extractos de ac&iacute;culas de <i>Pinus cooperi </i>(COO), <i>P durangensis </i>(DUR), <i>P engelmanii </i>(ENG) y <i>P teocote </i>(TEO). Se practicaron extracciones sucesivas con acetona y metanol acuosos de ac&iacute;culas de pino desengrasadas previamente con hexano, en las cuales DUR y ENG mostraron respectivamente los mejores rendimientos. Los valores m&aacute;s altos del contenido de fenoles totales fueron los extra&iacute;bles acet&oacute;nicos de TEO y los metan&oacute;licos de ENG. Se realiz&oacute; una purificaci&oacute;n cromatogr&aacute;fica a los extra&iacute;bles acet&oacute;nicos de TEO, generando cinco fracciones; F3&#150;TEO con 489,6 EC present&oacute; el mayor contenido fen&oacute;lico. Los extractos acet&oacute;nicos y metan&oacute;licos de TEO y la fracci&oacute;n purificada F3&#150;TEO presentaron la mayor concentraci&oacute;n de taninos condensados. En el ensayo de DPPH, los extractos m&aacute;s relevantes seg&uacute;n su concentraci&oacute;n efectiva media (CE<sub>50</sub>) fueron los acet&oacute;nicos de TEO (223,5 ppm) y las fracciones F3&#150;TEO (145,0 ppm) y F4&#150;TEO (150,8 ppm). De manera similar, en el ensayo de ABTS, los extractos de TEO en acetona (27,7%) y en metanol (18,2%), as&iacute; como las fracciones F3&#150;TEO (60,1%) y F4&#150;TEO (55,8%) mostraron la supresi&oacute;n m&aacute;s elevada de la oxidaci&oacute;n. En el ensayo de la oxidaci&oacute;n de LDL, la mayor actividad inhibitoria fue mostrada por extractos acet&oacute;nicos, particularmente por ENG (99,4%) a una concentraci&oacute;n de 90 ppm. Los extractos acet&oacute;nicos de TEO y de ENG presentan potencial como fuente de polifenoles bioactivos. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b>ABTS, ac&iacute;culas, antioxidante, DPPH, LDL, polifenoles. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Coniferous trees are a vast resource in Durango, Mexico forests and a potential nontimber source of these chemicals, thus, our study for analyzing phenolic content and biological activity in needle extracts from <i>Pinus cooperi </i>(COO), <i>P. durangensis </i>(DUR), <i>P. engelmanii </i>(ENG) and <i>P. teocote </i>(TEO). Pine needles were dewaxed with hexane and extracted with aqueous acetone and methanol. DUR and ENG extracts showed the higher yields, while acetone TEO and methanol ENG extracts showed the highest catechin equivalent (CE) contents. A partial chromatographic purification on acetone TEO extracts produced five fractions, the third one (F3&#150;TEO) had the highest phenolic content (489,6 CE). In condensed tannins contents, acetone and methanol TEO extracts, as well fraction F3&#150;TEO were the best (24,3, 15.7 and 44,4 mg/g extract, respectively). In DPPH activity, the more effective CE<sub>50 </sub>were obtained from TEO acetone extract (223,5 ppm) and fractions F3&#150;TEO (145,0 ppm) and F4&#150;TEO (150,8 ppm). In ABTS assay, TEO acetone (27,7%) and methanolic (18,2%) extracts, and fractions F3&#150;TEO (60,1%) and F4&#150;TEO (55,8%) were the best. In LDL assay the highest inhibitory activity was shown by acetone extracts, particularly ENG (99,4%) at 90 ppm. Therefore acetone extracts from TEO and ENG may have utilization as a potential source of bioactive phenolics. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords: </b>ABTS,    Antioxidants,     DPPH,     LDL, needles, polyphenols. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El particular h&aacute;bitat de la sierra mexicana ha favorecido la mayor variedad de especies de <i>Pinus </i>en el mundo. El bosque de pino se caracteriza por ser una comunidad siempre verde asociada con encinares y otras especies, y es el de mayor importancia econ&oacute;mica para la industria forestal de M&eacute;xico, sustentando actividades forestales como aserr&iacute;o, resinaci&oacute;n, producci&oacute;n de pulpa celul&oacute;sica, poster&iacute;a y recolecci&oacute;n de semilla. Sin embargo, el follaje con&iacute;fero est&aacute; por recibir a&uacute;n un adecuado aprovechamiento como recurso natural no maderable. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La vegetaci&oacute;n forestal est&aacute; dominada por pinos con alturas promedio de 15 m a 30 m. Estos pinares tienen un estrato inferior relativamente pobre en arbustos, pero con abundantes gram&iacute;neas, esta condici&oacute;n los expone a frecuentes incendios y a tala inmoderada. Las especies m&aacute;s comunes en M&eacute;xico son pino (P. <i>hartwegii), </i>ocote blanco <i>(P. montezumae),  </i>pino  lacio  <i>(P  pseudostrobus), </i>pino (P <i>rudis), </i>pino escobet&oacute;n (P <i>michoacana), </i>pino chino (P. <i>teocote), </i>ocote trompillo (P. <i>oocarpa), </i>pino ayacahuite (P. <i>ayacahuite), </i>pino (P. <i>pringlei), P. duranguensis, P. chihuahuana, P. engelmanii, P. lawsonii, P. oaxacana, </i>entre otros (Conafor, 2000&#150;2006). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durango, M&eacute;xico es uno de los principales productores de madera de pino, contando con aproximadamente veinte especies, de las cuales diez son las m&aacute;s aprovechadas por su abundancia y calidad de madera, algunas de ellas son <i>Pinus durangensis, P. arizonica, P. engelmannii y P. cooperi </i>(Garc&iacute;a y Gonz&aacute;lez, 2003). Otras especies representativas son P. <i>leiophylla, P. ayacahuite </i>y P <i>chihuahuana. </i>Del aprovechamiento de la madera se generan altos vol&uacute;menes de corteza que representan de 10% a 15% del peso total del &aacute;rbol (Kofujita <i>et al., </i>1999). Adicional&#150;mente se generan vol&uacute;menes no cuantificados de follaje de alta riqueza fitoqu&iacute;mica. Los extra&iacute;bles o metabolitos secundarios presentes en la madera, corteza y follaje de las pin&aacute;ceas, son m&uacute;ltiples compuestos org&aacute;nicos de naturaleza diversa que incluyen grasas, ceras, &aacute;cidos res&iacute;nicos, terpenoides, esteroides y polifenoles (flavonoides y taninos). Todos ellos son producidos por el &aacute;rbol como protecci&oacute;n o defensa ante ataques microbianos o de insectos (Perry, 1991). A los metabolitos secundarios se les consideraba sustancias de desecho o errores de las rutas metab&oacute;licas primarias de las plantas. Sin embargo, su gran abundancia, su variedad estructural y el descubrimiento de rutas biosint&eacute;ticas y de enzimas espec&iacute;ficas para su s&iacute;ntesis han cambiado este enfoque. Un caso particular son los polifenoles o taninos vegetales que poseen al menos un anillo arom&aacute;tico con grupos hidroxilo en su estructura qu&iacute;mica. Los polifenoles son micronutrientes abundantes en nuestra dieta y existen evidencias de su rol en la prevenci&oacute;n de enfermedades degenerativas como el c&aacute;ncer y enfermedades cardiovasculares y neurodegenerativas (Markham, 1989). Los polifenoles tienen diversa funci&oacute;n, tama&ntilde;o y arreglo estructural y se pueden clasificar en &aacute;cidos fen&oacute;licos, flavonoides, estilbenos y lignanos. Los flavonoides comparten una estructura com&uacute;n de dos anillos arom&aacute;ticos unidos por una cadena prop&aacute;nica (Bors et <i>al., </i>1990). En funci&oacute;n de sus caracter&iacute;sticas estructurales se pueden clasificar en chalconas, flavanos, flavanoles, flavonas, antocianidinas e isoflavonoides. Entre otras, se les atribuyen actividades antif&uacute;ngica y bactericida, e importante capacidad para fijar metales como hierro y cobre, adem&aacute;s de conferir color que promueve fen&oacute;menos de polinizaci&oacute;n (Formica y Regelson, 1995). Algunas patentes norteamericanas registran el uso de extractos de hojas de pino como ingredientes para combatir la alopec&iacute;a (Uchida et <i>al., </i>1996), como ingrediente para preparar tofu (Im, 2000), bebidas tonificantes (Kang, 1987) y nutrac&eacute;utico cardiprotector (Ji, 2001). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>OBJETIVO</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A trav&eacute;s de la evaluaci&oacute;n del contenido fen&oacute;lico y de la acci&oacute;n bioqu&iacute;mica de los extractos de ac&iacute;culas de <i>Pinus cooperi </i>(COO), <i>P. durangensis </i>(DUR), <i>P. engelmanii </i>(ENG) y <i>P. teocote </i>(TEO), determinar el potencial antioxidante del follaje de estas especies, que fundamente su eventual aprovechamiento. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>METODOLOG&Iacute;A</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material de estudio. </b>Las ac&iacute;culas se colectaron en el ejido Chavarr&iacute;a Viejo, del municipio de Pueblo Nuevo, Durango. Las muestras fueron identificadas y depositadas en el Herbario del CIIDIR&#150;IPN Unidad Durango. Las ac&iacute;culas se secaron a la sombra, se cortaron en segmentos peque&ntilde;os y se molieron. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Extracciones sucesivas. </b>El material previamente desengrasado con hexano se extrajo con acetona acuosa (70%) y se separ&oacute; por filtraci&oacute;n; el extracto se concentr&oacute; en rotaevaporador y se liofiliz&oacute;. El material remanente fue extra&iacute;do con metanol acuoso (50%), filtrado y el extracto, rotaevaporado y liofilizado. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n   de   fenoles   totales.   </b>Se prepararon muestras de extractos crudos y fracciones purificadas a 100 ppm en agua libre de CO<sub>2</sub>. A una muestra (125 &micro;L) se le adicion&oacute; agua (500 &micro;L) y reactivo Folin Ciocalteu 2N (125 &micro;L), se agit&oacute; y dej&oacute; reposar 6 minutos, luego se agreg&oacute; Na<sub>2</sub>CO<sub>3</sub> 7% (1,25 mL) y agua libre de CO<sub>2</sub> (1 mL). Los tubos se agitaron nuevamente y dejaron reposar (90 minutos), protegidos de la luz (Waterman y Mole, 1994). Despu&eacute;s se midi&oacute; la absorbancia a 760 nm en un espectrofot&oacute;metro Cary50. Se construy&oacute; una curva de calibraci&oacute;n de catequina como est&aacute;ndar (40 &micro;g/mL &#150;120 &micro;g/mL). Los resultados se reportan como miligramos equivalentes de catequina por gramo de extracto seco. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de taninos condensados. </b>Los extractos crudos y fracciones purificadas se prepararon a 1000 ppm. A 50 &micro;L de muestra se le agregaron 3 mL de vainillina (4% en metanol), 1,5 mL de HCl (concentrado), se agit&oacute; y dej&oacute; reposar 15 minutos en la oscuridad. Despu&eacute;s se midi&oacute; la absorbancia a 500 nm contra un blanco de metanol. Al mismo tiempo se construy&oacute; una curva de calibraci&oacute;n con catequina en un rango de 100 ppm a 600 ppm (Heimler et <i>al., </i>2005). Los resultados se reportan como miligramos equivalentes de catequina por 100 mg de extracto. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de capacidad antioxidante</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>M&eacute;todo del DPPH (2,2&#150;difenil&#150;1&#150;picrilhidracilo). </i>Los extractos acet&oacute;nicos se evaluaron a 200, 250, 300 y 350 ppm, los de metanol a 500, 750, 1000 y 1200 ppm y las fracciones purificadas a 100 y 2000 ppm. Se colocaron 2900 &micro;L del reactivo de DPPH y 100 &micro;L de muestra, se agit&oacute; y midi&oacute; la absorbancia a 515 nm a tiempo cero y a 30 minutos (Brand&#150;Williams et <i>al., </i>1995). Se calcul&oacute; la concentraci&oacute;n efectiva media (CE<sub>50</sub>) de cada muestra como indicador de la concentraci&oacute;n requerida para estabilizar 50% del radical presente. Los resultados se reportan como CE<sub>50</sub> en ppm. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>M&eacute;todo del ABTS (&aacute;cido 2,2'&#150;azinobis&#150;3&#150;etilbenzotiazolin&#150;6&#150;sulf&oacute;nico). </i>Las muestras se probaron a 100 ppm en etanol absoluto. El radical se diluy&oacute; a una absorbancia de (0,70&plusmn;0,1) nm a 754 nm. Se utilizaron 40 &micro;L de muestra y 960 &micro;L de radical y se ley&oacute; a 754 nm; la absorbancia se monitore&oacute; a 1 y 6 minutos despu&eacute;s de adicionar el radical (Re et <i>al., </i>1999). Los resultados obtenidos se reportan como capacidad atrapadora de radicales libres (%RSA). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Inhibici&oacute;n de la oxidaci&oacute;n de Lipoprote&iacute;nas de Baja Densidad (LDL). </i>Las LDL se precipitaron a partir de plasma de voluntarios sanos. Las muestras se probaron a 30, 60 y 90 ppm. En tubos falcon de 15 mL, se colocaron 400 &micro;L de buffer de fosfatos, 100 <i>&micro;L </i>de sulfato de cobre, 100 &micro;L de muestra y 400 &micro;L de LDL. Se agitaron e incubaron a 37 &deg;C por 180 minutos. Luego se agreg&oacute; 1 mL de &aacute;cido tricloroac&eacute;tico (5%) y 1 mL de &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico (0,37%), se agit&oacute; por 20 minutos en ba&ntilde;o Mar&iacute;a a punto de ebullici&oacute;n, despu&eacute;s se enfri&oacute; en hielo por 10 minutos y se agregaron 2 mL de butanol, se mezcl&oacute; bien y centrifug&oacute; a 3500 rpm (10 min). Se extrajo el sobrenadante (fracci&oacute;n soluble en butanol) y se ley&oacute; a 532 nm contra un blanco de butanol (Re et <i>al., </i>1999). Se utiliz&oacute; catequina como referencia. Los resultados se reportan como porcentaje de inhibici&oacute;n de oxidaci&oacute;n de LDL. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Purificaci&oacute;n en columna. </i>Una parte del extracto crudo de acetona se purific&oacute; en una columna con Fractogel HW&#150;40. Se eluy&oacute; primero con metanol, separando dos fracciones de 100 mL (F1, F2), posteriormente se eluy&oacute; con acetona 70%, y se obtuvieron tres fracciones m&aacute;s de 150 mL (F3, F4 y F5). </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Identificaci&oacute;n por HPLC. </i>Se emple&oacute; un sistema HPLC (Waters 2489) con columna C<sub>18</sub> (250 mm x 4,6 mm), usando flujo de 1 mL/min de fase m&oacute;vil A, agua acidificada (pH 3,3) con &aacute;cido fosf&oacute;rico, y fase m&oacute;vil B, acetonitrilo (Sakakibara et <i>al., </i>2003). Se inici&oacute; 5 minutos con 100% de A, luego 30 minutos con 25% de B, 10 minutos a 50% y 20 minutos con 100% de A. Se emplearon los est&aacute;ndares, catequina, catequina galato, galocatequina, galocatequina galato, &aacute;cido caf&eacute;ico, &aacute;cido g&aacute;lico y &aacute;cido el&aacute;gico. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>An&aacute;lisis estad&iacute;stico. </i>Los datos obtenidos se valoraron mediante an&aacute;lisis de varianza de una sola v&iacute;a (&alpha;= 0,05). Se realiz&oacute; una prueba de comparaci&oacute;n de medias por el m&eacute;todo de Tukey (&alpha;= 0,05). En todos los casos los experimentos fueron realizados al menos por duplicado. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los rendimientos obtenidos en las extracciones sucesivas de ac&iacute;culas de pino con acetona 70% y metanol 50% se muestran en la <a href="/img/revistas/mb/v16n3/a3t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>. Salvo por el extracto COO, los extractos acet&oacute;nicos presentaron un rendimiento similar cercano a 10%, mientras que ENG sorprende con un rendimiento a&uacute;n mayor en el extracto metan&oacute;lico. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La evaluaci&oacute;n de fenoles totales se muestra en la <a href="/img/revistas/mb/v16n3/a3t2.jpg" target="_blank">tabla 2</a>. Los extractos acet&oacute;nicos oscilaron entre 169,6 y 399,2 equivalentes de catequina (EC), mientras que los extractos metan&oacute;licos resultaron considerablemente m&aacute;s bajos (p&lt;0,05) de 49,0 a 140,6 EC. El contenido de fenoles totales en las fracciones purificadas a partir del extracto acet&oacute;nico de TEO vari&oacute; entre 163,5 y 489,6 EC (<a href="/img/revistas/mb/v16n3/a3t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>), en un rango similar al que presentan los extractos acet&oacute;nicos. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de taninos condensados en los extractos acet&oacute;nicos se present&oacute; de 18,4 a 24,3 mg/g y en los metan&oacute;licos de 13,2 a 15,7) de extracto seco (<a href="/img/revistas/mb/v16n3/a3t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>), siendo diferentes unos de otros (p&lt;0,05). Los taninos condensados en los extractos acet&oacute;nicos fueron mayores, mostrando la misma tendencia que su contenido de fenoles totales. De manera similar, en las fracciones purificadas del extracto acet&oacute;nico de TEO se encontr&oacute; un contenido de taninos condensados disperso de 6,8 a 44,4 mg/g de extracto seco, siendo F3&#150;TEO y F5&#150;TEO las fracciones con la mayor concentraci&oacute;n (<a href="/img/revistas/mb/v16n3/a3t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la evaluaci&oacute;n de capacidad antioxidante por el m&eacute;todo del DPPH, la CE<sub>50 </sub>m&aacute;s  eficiente  que  se  obtuvo  de  los extractos crudos correspondi&oacute; al extracto acet&oacute;nico TEO con un valor de 223,5 ppm (<a href="/img/revistas/mb/v16n3/a3t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>). Entre los extractos metan&oacute;licos, esta misma especie fue la &uacute;nica que mostr&oacute; actividad antioxidante suficiente por encima del umbral de 50%, aunque a concentraciones muy altas (784,1 ppm), ya que para las condiciones del an&aacute;lisis, los otros tres extractos mostraron una actividad m&aacute;xima del orden de 30%, que es insuficiente para estimar su CE<sub>50</sub>. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Entre las fracciones purificadas, destacan la F3&#150;TEO y la F4&#150;TEO con CE<sub>50</sub> de 145,0 ppm y 150.8 ppm, respectivamente, como las m&aacute;s eficientes de las muestras analizadas (<a href="/img/revistas/mb/v16n3/a3t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>). Sin embargo, estos valores est&aacute;n a&uacute;n alejados del est&aacute;ndar catequina con una CE<sub>50</sub> de 90,5 ppm. Se encontraron diferencias significativas (p&lt;0,05) entre los extractos acet&oacute;nicos excepto para COO y ENG. De igual manera se analizaron los resultados de las fracciones purificadas, mismas que mostraron diferencias significativas (p&lt;0,05) entre los extractos excepto entre F3&#150;TEO y F4&#150;TEO. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de la actividad antioxidante de los extractos acet&oacute;nicos ante el radical libre ABTS, expresados como porcentaje de actividad antioxidante, se encontraron en el rango de 18,8% a 27,7%, mientras que los metan&oacute;licos de 10,3% a 18,2% (<a href="/img/revistas/mb/v16n3/a3t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>) muy alejados del est&aacute;ndar catequina (66,83%). Sin embargo las fracciones purificadas de TEO oscilaron entre 32,51% a 64,33%, donde F3 y F4 presentaron una actividad comparable a dicho est&aacute;ndar (<a href="/img/revistas/mb/v16n3/a3t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>). </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los porcentajes de inhibici&oacute;n de la oxidaci&oacute;n de las LDLmostraron tendencia similar a las determinaciones anteriores, ya que los extractos acet&oacute;nicos mostraron los mejores resultados (<a href="/img/revistas/mb/v16n3/a3t4.jpg" target="_blank">Tabla 4</a>). Sin embargo, los extractos de ENG presentaron el mayor porcentaje de inhibici&oacute;n   (99,4%),  superando  incluso  al est&aacute;ndar catequina (93,0%)(p&lt;0,05). Por el contrario, los extractos metan&oacute;licos (<a href="/img/revistas/mb/v16n3/a3t5.jpg" target="_blank">Tabla 5</a>) de TEO y ENG, aunque pueden considerarse buenos con una inhibici&oacute;n de casi 40%, dado su car&aacute;cter residual, comparados con los extractos acet&oacute;nicos son apenas la mitad. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el an&aacute;lisis cromatogr&aacute;fico por HPLC de las 13 muestras analizadas, 11 resultaron positivas cualitativamente para el compuesto catequina&#150;galato. Sin embargo, s&oacute;lo en cinco de ellas se les encontr&oacute; de manera significativa, como fue el caso de los extractos crudos acet&oacute;nicos de TEO, ENG y DUR, as&iacute; como en las primeras fracciones purificadas F1 y F2, del extracto acet&oacute;nico de ac&iacute;culas de TEO, aunque la F3 fue la que mostr&oacute; mayor respuesta antioxidante (<a href="/img/revistas/mb/v16n3/a3f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como era previsible el rendimiento de los extractos acet&oacute;nicos es mayor que los metan&oacute;licos, excepto por los extractos de ENG que muestran contenidos similares en ambos casos (p&lt;0,05). El rendimiento de las extracciones acet&oacute;nicas de las cuatro especies es similar excepto en los extractos de COO que corresponden aproximadamente a la mitad del resto de los pinos (p&lt;0,05). En los extractos metan&oacute;licos, ENG present&oacute; el m&aacute;ximo valor acumulado cercano a 19%. Cabe se&ntilde;alar que la extracci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos de material vegetal est&aacute; influenciada por la naturaleza qu&iacute;mica de &eacute;ste, por el m&eacute;todo de extracci&oacute;n, el tama&ntilde;o de part&iacute;cula, el tiempo y las condiciones de almacenamiento (Prior y Cao, 1999). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se puede observar la mayor selectividad por polifenoles del solvente acetona acuosa al comparar los valores obtenidos con metanol acuoso, aunque se debe recordar que son extracciones sucesivas. El metanol como segundo solvente solamente extrae los componentes fen&oacute;licos residuales que no fueron extra&iacute;dos por la acetona (Heimler et <i>al., </i>2007). Esta diferencia en el solvente de extracci&oacute;n determina el rendimiento y calidad del contenido fen&oacute;lico de ambos extractos (Stratil et <i>al., </i>2006; Ninfali et <i>al., </i>2005). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La determinaci&oacute;n de taninos condensados es un indicador del contenido de proantocianidinas presentes en los extractos crudos tanto acet&oacute;nicos como metan&oacute;licos. Este es un grupo muy importante de flavonoides que brindan en su mayor&iacute;a pigmentaci&oacute;n a las plantas que los contienen. Al analizar individualmente los resultados de los extractos crudos de cada especie de pino, se encontr&oacute; que TEO, tanto en su extracto acet&oacute;nico como en el metan&oacute;lico, result&oacute; con el mayor contenido de taninos condensados (p&lt;0,05). En las fracciones purificadas a partir de TEO se observ&oacute; una mayor concentraci&oacute;n de taninos en las fracciones F3&#150;TEO y F5&#150;TEO, lo que sugiere al menos dos fracciones polifen&oacute;licas oligom&eacute;ricas de diferente grado de polimerizaci&oacute;n. Se encontraron diferencias significativas (p&lt;0,05) entre los extractos acet&oacute;nicos de TEO y ENG respecto a COO y DUR, y los extractos metan&oacute;licos de TEO y ENG, as&iacute; como en las fracciones F2&#150;TEO y F4&#150;TEO. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con el contenido de taninos condensados presente en extractos crudos y fracciones purificadas, se observa una relaci&oacute;n entre el contenido de taninos condensados y la capacidad antioxidante de los mismos representada por su CE<sub>50</sub> del ensayo DPPH. Esto indica que la actividad antioxidante de los extractos est&aacute; en funci&oacute;n directa con su contenido de taninos, y &eacute;stos juegan un papel muy importante en el metabolismo del g&eacute;nero y sobre todo de la especie <i>Pinus teocote </i>(Katsube et <i>al., </i>2004). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al analizar la posible correlaci&oacute;n entre el contenido fen&oacute;lico y la actividad antioxidante de los extractos y considerando que los m&eacute;todos utilizados para el an&aacute;lisis de ambos se fundamentan en el mismo mecanismo de propensi&oacute;n a donar hidr&oacute;genos, se puede tener una lectura predictiva de que a mayor contenido fen&oacute;lico en el extracto, mayor ser&aacute; su capacidad antioxidante (Katsube et <i>al., </i>2004). Sin embargo, esta correlaci&oacute;n no se presenta en todos los casos. La correlaci&oacute;n lineal obtenida entre el blanqueamiento del DPPH y el contenido fen&oacute;lico de las fracciones purificadas fue de r<sup>2</sup> = 0,6836. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ensayo del radical libre ABTS se recomienda para medir la actividad antioxidante de gran diversidad de sustancias, tanto en medios acuosos como lip&iacute;dicos, sin embargo, en cada caso se encuentran diferentes radicales, por ejemplo, en medio lip&iacute;dico se tienen radicales peroxilos (Rice&#150;Evans et <i>al., </i>1996). Esta t&eacute;cnica se utiliza como referente para confirmar los resultados obtenidos de la prueba de DPPH (Okonogi et <i>al., </i>2007), ya que ambas se fundamentan en el mismo mecanismo de acci&oacute;n: la donaci&oacute;n de electrones. Por ello se analiz&oacute; una correlaci&oacute;n lineal entre las dos t&eacute;cnicas, dando como resultado una r<sup>2</sup> de 0,684, lo cual nos indica que s&iacute; hay cierta relaci&oacute;n entre las mismas. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la inhibici&oacute;n de la oxidaci&oacute;n de la LDL a 30 ppm de muestra, de acuerdo con el solvente de extracci&oacute;n, no se observaron diferencias significativas para las muestras acet&oacute;nicas, pero s&iacute; para las metan&oacute;licas. A 60 ppm se encontraron diferencias significativas entre los cuatro extractos acet&oacute;nicos y entre los metan&oacute;licos s&oacute;lo entre DUR y ENG. Finalmente, a 90 ppm se encontraron diferencias significativas entre los extra&iacute;bles acet&oacute;nicos y metan&oacute;licos de TEO y ENG (p&lt;0,05). De acuerdo con lo anterior, se puede inferir que el extracto acet&oacute;nico de ENG es un buen inhibidor de la oxidaci&oacute;n de LDL, sin embargo, se debe enfatizar su papel como inhibidor y no como agente previsor. Existen evidencias de que la formaci&oacute;n de la placa ateroscler&oacute;tica se da en la pared arterial, aislada de la acci&oacute;n de los antioxidantes plasm&aacute;ticos, pero a&uacute;n no hay sustento documentado de los beneficios aportados por el consumo de antioxidantes en la prevenci&oacute;n o reducci&oacute;n del riesgo de enfermedades cardiovasculares. Por otra parte, se ha demostrado que algunos antioxidantes con capacidad estabilizadora de radicales libres como fenoles simples y polifenoles pueden presentar efectos prooxidantes bajo determinadas condiciones (P&eacute;rez&#150;Guerra, 2007). Sin embargo, el mecanismo por el cual se lleva a cabo la oxidaci&oacute;n de LDL, es diferente al de las determinaciones anteriores y su actividad no debe subestimarse (Katsube <i>et al., </i>2004). El mecanismo que se sigue es la quelaci&oacute;n de metales &oacute;xido&#150;reductores, lo que muestra que los antioxidantes act&uacute;an de manera diferente frente a radicales libres diferentes, presentando en cada caso un mecanismo de acci&oacute;n espec&iacute;fico (P&eacute;rez&#150;Guerra, 2007). As&iacute;, resulta que los extractos de ac&iacute;culas de TEO mostraron la mejor actividad antioxidante por atrapamiento de radicales libres, mientras que las de ENG, la mejor actividad antioxidante por acci&oacute;n contra metales. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presencia dominante del compuesto catequina galato en extractos y fracciones purificadas activas sugiere una acci&oacute;n quelante y antioxidante por atrapamiento de radicales libres. Lo anterior confirma el car&aacute;cter monom&eacute;rico de las fracciones iniciales (F1 y F2). Sin embargo, la mayor actividad, contenido fen&oacute;lico y de taninos condensados se presentaron en las fracciones subsecuentes (F3, F4, F5), resaltadas por el hecho que se trata de fracciones fen&oacute;licas oligom&eacute;ricas y polim&eacute;ricas bioactivas que podr&iacute;an ser evaluadas en ensayos de mutagenicidad (Kwak <i>et al., </i>2006). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las ac&iacute;culas de pinos representan una fuente potencial de polifenoles a&uacute;n por explotar. Los extra&iacute;bles polares presentes pueden representar hasta 19% en peso, como en el caso de <i>P. engelmannii. </i>Estos extractos constituyen un significativo contenido fen&oacute;lico rico en taninos condensados que se correlaciona con la actividad antioxidante mostrada contra los radicales libres DPPH y ABTS, como resulta en el caso particular de los extractos de <i>P. teocote </i>y sus fracciones purificadas. Por otra parte, se muestra tambi&eacute;n acci&oacute;n contra metales, inhibiendo la oxidaci&oacute;n de sistemas lip&iacute;dicos como es el caso de los extractos de <i>P engelmanii.</i> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Catequina&#150;galato se encontr&oacute; de manera significativa en los extractos acet&oacute;nicos de <i>Pinus durangensis, P engelmanii </i>y <i>P. teocote </i>al igual que en las fracciones purificadas iniciales (F1 y F2) de este &uacute;ltimo. En estas fracciones fen&oacute;licas monom&eacute;ricas, catequina&#150;galato puede ser el componente fen&oacute;lico m&aacute;s significativo que explique su acci&oacute;n estabilizadora sobre radicales libres y metales &oacute;xido&#150;reductores. Adem&aacute;s, esta capacidad qued&oacute; mas evidenciada en las fracciones fen&oacute;licas oligom&eacute;ricas (F4 y F5). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad antioxidante que present&oacute; la especie <i>P. teocote </i>fue la m&aacute;s relevante de las muestras evaluadas y est&aacute; relacionada con el contenido de taninos condensados de la misma. Complementariamente, la actividad mostrada por <i>P. engelmannii </i>en modelos lip&iacute;dicos resulta sobresaliente y puede relacionarse con su alto contenido fen&oacute;lico. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores expresan su agradecimiento al fondo sectorial Conacyt&#150;Conafor por el apoyo financiero (clave 2006&#150;041839). Se agradece al Conacyt la beca para realizar estudios de Maestr&iacute;a en Ciencias. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bors, W., W. Heller, C. Michel y M. Saran. 1990. Flavonoids as antioxidants determination of radical scavenging efficiencies. Methods Enzymol. 186:343&#150;355.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163367&pid=S1405-0471201000030000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brand&#150;Williams, W., M.E. Cuvelier y C. Berset. 1995. Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. Food Sci and Tech. 28:25&#150;30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163369&pid=S1405-0471201000030000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Conafor. Ecosistemas Forestales: Bosques. 2000&#150;2006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163371&pid=S1405-0471201000030000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Formica, J.V. y W. Regelson. 1995. Review of the biology of quercetina and related bioflavonoids. <i>Food Chem Toxicol. </i>33:1061&#150;1080.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163373&pid=S1405-0471201000030000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Garc&iacute;a A., A. y M. Gonz&aacute;lez E. 2003. <i>Pin&aacute;ceas de Durango. </i>Instituto de Ecolog&iacute;a&#150;Conafor. 187 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163375&pid=S1405-0471201000030000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Heimler, D., L. Isolani, P. Vignolini, S. Tombelli y A. Romani. 2007. Polyphenol content and antioxidative activity in some species of freshly consumed   salads.   J Agric   Food Chem. 55:1724&#150;1729.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163377&pid=S1405-0471201000030000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Heimler, D.P,. Vignolini, M.G. Dini, y A. Romani. 2005. Rapid tests to assess the antioxidant activity of <i>Phaseolus vulgaris </i>L. dry beans. J Agric Food Chem. 53:3053&#150;3056.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163379&pid=S1405-0471201000030000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Im, S.H. 2000. Method for preparing a bean curd containing pine leaves. U.S. Pat. No. 6,048,568.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163381&pid=S1405-0471201000030000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ji, L. 2001. Extract of pine needle and the use thereof. U.S. Pat. No. 6,329,000.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163383&pid=S1405-0471201000030000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kang, K.J. 1987. Process for manufacturing an herb tea from the leaves of Ginkgo, Persimmon and Pine. U.S. Pat. No. 4,683,140.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163385&pid=S1405-0471201000030000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Katsube, T., H. Tabata, Y. Ohta, Y. Yamasaki, E. Anuurad, K. Shiwaku y Y. Yamane. 2004. Screening for antioxidant activity in edible plant products: comparison of low&#150;density lipoprotein oxidation assay, DPPH radical scavening assay and Folin&#150;Ciocalteu assay. J Agric Food Chem. 52:2391&#150;2396.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163387&pid=S1405-0471201000030000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kofujita, H., K. Ettyu y M. Ota 1999. Characterization of the major components in bark from five Japanese tree species for chemical utilization. Wood Sci Tech. 33:223&#150;228.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163389&pid=S1405-0471201000030000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kwak, Ch.S., S.Ch. Moon y M.S. Lee. 2006. Antioxidant, antimutagenic, and antitumor effects of pine needles <i>(Pinus densiflora). </i>Nutr &amp; Cancer. 56(2):162&#150;171.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163391&pid=S1405-0471201000030000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Markham, K.R. 1989. Flavones, flavonols and their glycosides. <i>In: </i>Dey, P.M. y J.B. Harborne, eds. Methods in Plant Biochemistry. Vol 1. Academic Press. pp. 197&#150;235.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163393&pid=S1405-0471201000030000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ninfali, P., G. Mea, S. Giorgini, M. Rocchi y M. Bacchiocca. 2005. Antioxidant capacity of vegetables, spices and dressing relevant to nutrition. Br J Nutr. 93:257&#150;266.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163395&pid=S1405-0471201000030000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Okonogi, S., C. Duangrat, S. Anuchpreeda, S. Tachakittirungrod y S. Chowwanapoonpohn. 2007. Comparison of antioxidant capacities and cytotoxicities of certain fruit peels. Food Chem. 103:839&#150;846.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163397&pid=S1405-0471201000030000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">P&eacute;rez&#150;Guerra, S. 2007 Oxidaci&oacute;n de las LDL(Lipoprote&iacute;na de baja densidad) y su relaci&oacute;n con la patog&eacute;nesis de la aterosclerosis. Rev CENIC Ciencias Biol&oacute;gicas. 38(1):3&#150;11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163399&pid=S1405-0471201000030000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Perry, J.P. 1991. The pines of Mexico and Central America. Timber Press. 231 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163401&pid=S1405-0471201000030000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Prior, R.L. y G.H. Cao. 1999. In <i>vivo </i>total antioxidant capacity: comparison of different analytical methods. Free Radical Biol Med. 27:1173&#150;1181.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163403&pid=S1405-0471201000030000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Re, R., N. Pellegrini, A. Proteggente, A. Pannala, M. Yang y C. Rice&#150;Evans. 1999. Antioxidant activity applying and improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biol Med. 26(9,10):1231&#150;1237.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163405&pid=S1405-0471201000030000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rice&#150;Evans, C., N.J. Miller y G. Papanga. 1996. Structure antioxidant activity: activity relationships of flavonoids and phenolic acids. Free Radical Biol Med. 20:933&#150;956.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163407&pid=S1405-0471201000030000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sakakibara, H., Y. Honda, S. Nakagawa, H. Ashida y K. Kanazawa. 2003. Simultaneous determination of all polyphenols in vegetables, fruits, and teas. J Agric Food Chem. 51(3):571&#150;581.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163409&pid=S1405-0471201000030000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stratil, P., B. Klejdus y V. Kuban. 2006. Determination of total content of phenolic compounds and their antioxidant activity in vegetables&#150; Evaluation of spectrophotometric methods. J Agric Food Chem. 54:607&#150;616.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163411&pid=S1405-0471201000030000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Uchida. 1996. Topically applied hair restorer containing pine extract. US Pat. No. 5,494,667.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163413&pid=S1405-0471201000030000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Waterman, P.G. y S. Mole. 1994. Analysis of phenolic plant metabolites. Blackwell Sci. Publ. London. pp. 66&#150;103.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5163415&pid=S1405-0471201000030000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Nota</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este documento se debe citar como: S&aacute;enz&#150;Esqueda, M. &Aacute;., M. Rosales&#150;Castro, N.E. Rocha&#150;Guzm&aacute;n, J.A. Gallegos&#150;Infante y R.F. Gonz&aacute;lez&#150;Laredo. 2010. Contenido fen&oacute;lico y acci&oacute;n antioxidante de extractos de ac&iacute;culas de <i>Pinus cooperi, P. durangensis, P engelmanii </i>y <i>P teocote. Madera y Bosques </i>16(3):37&#150;48. </font></p>      ]]></body><back>
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