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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Leaf and seeds extracts of Casimiroa pubescens, C. edulis and C. calderoniae were analyzed by HPLC. The results showed that coumarins phellopterin (6), isopimpinellin (9), heraclenol (15) and heraclenin (16) were present in all species studied. Of all species, C. calderoniae showed the highest concentration of this type of metabolites. These results, in addition to those previously reported, indicate that 16 different coumarins occur in the genus. Even though it has been proposed that the umbelliferone is a common precursor in the biogenesis of the Casimiroa coumarins, there is a clear difference between the coumarins synthesized by C. greggii and those present in the rest of the species. Thus, seselin and O-geranylosthenol, both synthesized from an umbelliferone prenylated at C-8, are present in C. greggii, while the coumarins present in the other species originate from umbelliferone prenylated at C-6.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="Verdana" size="4">Investigaci&oacute;n</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="4"><b>Cumarinas presentes en especies del g&eacute;nero <i>Casimiroa</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><b>A&iacute;da N. Garc&iacute;a&#45;Arg&aacute;ez,<sup>1</sup> Nadia M. Gonz&aacute;lez&#45;Lugo,<sup>2</sup> Carmen M&aacute;rquez<sup>2</sup> y Mariano Mart&iacute;nez&#45;V&aacute;zquez<sup>2</sup>*</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Departamento de Ecolog&iacute;a y Recursos Naturales, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, Circuito Exterior, Ciudad Universitaria, Coyoac&aacute;n 04510, M&eacute;xico D. F.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Instituto de Qu&iacute;mica, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, Circuito Exterior, Ciudad Universitaria, Coyoac&aacute;n 04510, M&eacute;xico D. F. Tel: +(52) 56224403; Fax: + (52) 56162203.</i> E&#45;mail: <a href="mailto:marvaz@servidor.unam.mx">marvaz@servidor.unam.mx</a></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el 21 de abril del 2003.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Aceptado el 13 de junio del 2003.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Dedicado al Dr. Alfonso Romo de Vivar.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los extractos org&aacute;nicos de hojas y semillas de <i>Casimiroa pubescens</i>, <i>C. edulis</i> y <i>C. calderoniae</i> se analizaron mediante cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta resoluci&oacute;n; los resultados mostraron la presencia de las cumarinas felopterina (<b>6</b>), isopimpinelina (<b>9</b>), heraclenol (<b>15</b>) y heraclenina (<b>16</b>) en las tres especies estudiadas. En promedio la mayor concentraci&oacute;n de este tipo de metabolitos se present&oacute; en <i>C. calderoniae</i>. Estos resultados, adem&aacute;s de los previamente reportados en la literatura indican la presencia de 16 cumarinas en el g&eacute;nero. Aun cuando se ha postulado que las cumarinas aisladas del g&eacute;nero <i>Casimiroa</i> tienen como precursor com&uacute;n a la umbeliferona, existe una clara diferencia entre las cumarinas sintetizadas por <i>C. greggii</i> y al resto de las especies estudiadas. As&iacute; la seselina y el O&#45;geranilostenol, ambas provenientes de la umbeliferona prenilada en C&#45;8, son sintetizadas por <i>C. greggii</i>, mientras que las furanocumarinas sintetizadas por las dem&aacute;s especies tienen como precursor a la umbeliferona prenilada en C&#45;6. El presente trabajo constituye el primer estudio fitoqu&iacute;mico de <i>C. pubescens</i> y <i>C. calderoniae</i>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Casimiroa</i>, cumarinas, Rutaceae, umbeliferona.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Leaf and seeds extracts of <i>Casimiroa pubescens</i>, <i>C. edulis</i> and <i>C. calderoniae</i> were analyzed by HPLC. The results showed that coumarins phellopterin (6), isopimpinellin (9), heraclenol (15) and heraclenin (16) were present in all species studied. Of all species, <i>C. calderoniae</i> showed the highest concentration of this type of metabolites. These results, in addition to those previously reported, indicate that 16 different coumarins occur in the genus. Even though it has been proposed that the umbelliferone is a common precursor in the biogenesis of the <i>Casimiroa</i> coumarins, there is a clear difference between the coumarins synthesized by <i>C. greggii</i> and those present in the rest of the species. Thus, seselin and O&#45;geranylosthenol, both synthesized from an umbelliferone prenylated at C&#45;8, are present in <i>C. greggii</i>, while the coumarins present in the other species originate from umbelliferone prenylated at C&#45;6. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">This is the first study of <i>C. pubescens</i> and <i>C. calderoniae</i>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> <i>Casimiroa</i>, coumarins, Rutaceae, umbelliferone.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cumarinas son probablemente los metabolitos m&aacute;s comunes derivados de la ruta biosint&eacute;tica del shikimato&#45;corismato (1). En miembros de la familia Rutaceae se han encontrado aproximadamente 200 cumarinas y las evidencias experimentales han demostrado que &eacute;stas se sintetizan por las mismas rutas biosint&eacute;ticas observadas en otras familias de plantas, donde la umbeliferona se considera el intermediario com&uacute;n para la bios&iacute;ntesis de cumarinas lineales y angulares (2).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El principal factor de diversificaci&oacute;n estructural de las cumarinas en las Rutaceae es la amplia incorporaci&oacute;n de unidades prenilo al n&uacute;cleo cumar&iacute;nico; en algunas especies de esta familia se ha demostrado que la prenilaci&oacute;n ocurre cuando se ha formado la umbeliferona (1, 2). Las modificaciones secundarias sobre los grupos prenilo, usualmente iniciadas por epoxidaci&oacute;n del doble enlace, contribuyen a esta diversificaci&oacute;n estructural de manera importante. La transformaci&oacute;n del doble enlace al diol respectivo en la cadena prenilada lateral, teniendo al ep&oacute;xido como intermediario, ha sido demostrada con marcadores radioactivos (1).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha postulado que las furano&#45; y pirano&#45;cumarinas se forman biogen&eacute;ticamente cuando al n&uacute;cleo cumar&iacute;nico se adiciona un grupo prenilo y &eacute;ste interacciona con un grupo ortofen&oacute;lico, de tal modo que se generan diferentes estructuras con un anillo heteroc&iacute;clico adicional. Con base a lo anterior se ha propuesto que una prenilaci&oacute;n en la posici&oacute;n 6 de la umbeliferona da origen a las furanocumarinas lineales como el psoraleno, mientras que una prenilaci&oacute;n en la posici&oacute;n 8 da origen a las furanocumarinas angulares como la angelicina (3).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Algunos autores argumentan que las pirano&#45; y furano&#45;cumarinas, tanto lineales como angulares, comparten caminos biosint&eacute;ticos y solo se diferencian en la etapa final de ciclizaci&oacute;n; lo anterior se ha demostrado experimentalmente, utilizando marcadores radioactivos, en la elucidaci&oacute;n de la transformaci&oacute;n biogen&eacute;tica de la demetilsuberosina a psoraleno en <i>Ruta graveolens</i> (3).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente trabajo se dan a conocer los resultados del an&aacute;lisis por cromatograf&iacute;a de l&iacute;quidos de alta resoluci&oacute;n, de las cumarinas presentes en extractos de hojas y semillas de <i>Casimiroa pubescens</i>, <i>C. edulis</i> y <i>C. calderoniae</i>. Adicionalmente se comparan los resultados obtenidos, con los diferentes tipos de cumarinas presentes en <i>C. greggii</i>.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados del an&aacute;lisis cromatogr&aacute;fico indicaron la presencia de las cumarinas felopterina (<b>6</b>), isopimpinelina (<b>9</b>), heraclenol (<b>15</b>) y heraclenina (<b>16</b>), tanto en hojas como en semillas de las tres especies estudiadas (<a href="../img/revistas/rsqm/v47n2/a13c1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>). La presencia de estos compuestos se comprob&oacute; mediante procedimientos de co&#45;cromatograf&iacute;a. Sin embargo, no se detect&oacute; la presencia de la seselina (<b>1</b>), cumarina previamente aislada de <i>C. greggii</i> (<b>5</b>). El an&aacute;lisis de resultados para cada especie se presenta por separado.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>C. pubescens</b>.</i> El extracto de las hojas de esta especie mostr&oacute; a la heraclenina como la &uacute;nica y m&aacute;s abundante cumarina presente en los cinco individuos estudiados; la felopterina se detect&oacute; en cuatro individuos, mientras que la isopimpinelina se encontr&oacute; en dos individuos y el heraclenol solamente en uno. La misma tendencia se observ&oacute; en el an&aacute;lisis del extracto de semillas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estos resultados indicaron que en esta etapa de crecimiento de las plantas, y en este sitio de colecta, la especie acumula y/o sintetiza preferentemente heraclenina y felopterina (<a href="#f2">Fig. 1</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="../img/revistas/rsqm/v47n2/a13f2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>C. edulis</b>.</i> El estudio del extracto de las hojas de esta especie mostr&oacute; una presencia abundante de las cuatro cumarinas de referencia (<b>6</b>, <b>9</b>, <b>15</b> y <b>16</b>). Por otra parte, en el extracto de las semillas, la presencia de las cuatro cumarinas fue escasa; la &uacute;nica cumarina presente en todos los individuos fue la felopterina mientras que el heraclenol solamente se detect&oacute; en un solo individuo (<a href="#f2">Fig. 1</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>C. calderoniae</b>.</i> Los resultados del an&aacute;lisis de esta especie muestran un patr&oacute;n similar al observado en <i>C. pubescens</i>, <i>i.e.</i> la presencia de <b>6</b>, <b>9</b>, <b>15</b> y <b>16</b>, tanto en frecuencia como en concentraci&oacute;n, es mayor en las hojas que en las semillas. Sin embargo son notables las altas concentraciones de heraclenina (20.9 mg / g) y de felopterina (23.8 mg / g) en el extracto de hojas (<a href="#f2">Fig. 1</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estos resultados combinados con los reportados previamente, demuestran la presencia de 16 cumarinas en el g&eacute;nero (<a href="../img/revistas/rsqm/v47n2/a13c1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>) (2, 5&#45;10).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presencia de <b>10</b> y <b>11</b> en el g&eacute;nero se puede considerar un hecho poco frecuente ya que solo la <i>C. edulis</i> sintetiza este tipo de cumarinas.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La distribuci&oacute;n del resto de las cumarinas en el g&eacute;nero indican claramente que difieren en el sitio de prenilaci&oacute;n; en C&#45;8 en <i>C. greggii</i> como en <b>1</b> y en C&#45;6 en <i>C. edulis</i>, <i>C. pubescens</i>, <i>C. pringlei</i> y <i>C. calderoniae</i>, como en <b>3&#45;9</b>.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusi&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de las tres especies estudiadas indican que la presencia de <b>6</b>, <b>9</b>, <b>15</b> y <b>16</b>, pero no de <b>1</b>, previamente aislada de <i>C. greggii</i>. No obstante existen diferencias notables en los resultados de los an&aacute;lisis de hojas, as&iacute; en <i>C. pubescens</i> y <i>C. calderoniae</i> las cumarinas con mayor presencia fueron heraclenina (<b>16</b>) y felopterina (<b>6</b>). Sin embargo, la concentraci&oacute;n de estas cumarinas fue del orden de cien veces m&aacute;s en <i>C. calderoniae</i> que en <i>C. pubescens</i>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hasta el momento, las cumarinas aisladas del g&eacute;nero <i>Casimiroa</i> indican que tienen como precursor com&uacute;n a la umbeliferona, propuesta biogen&eacute;tica que es general a la familia Rutaceae (2). Sin embargo, tomando en cuenta nuestros resultados y lo reportado hasta el momento, existe una clara diferencia de la distribuci&oacute;n entre las cumarinas sintetizadas por la <i>C. greggii</i> y las especies <i>C. edulis</i>, <i>C. pringlei</i>, <i>C. pubescens</i> y <i>C. calderoniae</i>.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="../img/revistas/rsqm/v47n2/a13f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Parte experimental</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realizaron los an&aacute;lisis a cinco individuos de cada especie, recolectados en el mismo sitio y en etapa de fructificaci&oacute;n. Las cumarinas <b>1</b>, <b>6</b>, <b>9</b>, <b>15</b> y <b>16</b>, utilizadas como metabolitos secundarios de referencia, se aislaron previamente de <i>Decatropis bicolor</i> (Rutaceae) (4).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material biol&oacute;gico</b>. Se colectaron cinco individuos de cada especie, y los ejemplares de herbario se depositaron en el Herbario de la Facultad de Ciencias de la Universidad Nacional de M&eacute;xico, (FCME). <i>Casimiroa edulis</i> se colect&oacute; en el Mpio. de Comala, Colima, en julio de 2000 (Nos. de registro del herbario 84847, 84849&#45;84852). <i>C. pubescens</i> se colect&oacute; en Ixmiquilpan, Hidalgo, en junio de 2000 (Nos. de registro 84835&#45;84839), y <i>C. calderoniae</i> en la zona &aacute;rida oaxaque&ntilde;o&#45;poblana, Oaxaca, en octubre de 2000, (Nos. de registro 84876&#45;8480).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cromatograf&iacute;a L&iacute;quida de Alta Resoluci&oacute;n</b>. La cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta resoluci&oacute;n (CLAR) se efectu&oacute; en un cromat&oacute;grafo de l&iacute;quidos Waters modelo Delta PREP 4000, equipado con detector UV modelo 486 que se mantuvo a una longitud de onda de 310 nm. Se utiliiz&oacute; 1 mL / min de flujo del disolvente. Se utiliz&oacute; MeOH / H<sub>2</sub>O 50/50 en gradiente hasta MeOH / H<sub>2</sub>O 90/10 en 20 min. Para el procesamiento de los datos se utiliz&oacute; el software Millenium (Waters).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Est&aacute;ndares y curvas de calibraci&oacute;n</b>. Se utilizaron est&aacute;ndares de seselina (<b>1</b>), felopterina (<b>6</b>), isopimpinelina (<b>9</b>), heraclenol (<b>15</b>) y heraclenina (<b>16</b>), aislados previamente de <i>Decatropis bicolor</i> (4). De cada cumarina se prepararon disoluciones en acetato de etilo a concentraciones de 2.9, 2.6, 2.6, 2.7 y 3.6 mg / mL, respectivamente. Las soluciones est&aacute;ndar se utilizaron para preparar cinco diluciones de cada cumarina en el rango de 0.013 a 0.13 mg / mL. Las curvas de calibraci&oacute;n se prepararon inyectando, por triplicado, las diferentes diluciones est&aacute;ndar. Los coeficientes de correlaci&oacute;n (<i>r</i><sup>2</sup>) para cada gr&aacute;fica de cada cumarina se calcularon teniendo valores para <i>r</i><sup>2</sup> mayores a 0.997.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Obtenci&oacute;n y an&aacute;lisis de los extractos hex&aacute;nico y metan&oacute;lico</b>. Hojas o semillas secas y molidas de cada individuo se extrajeron tres veces con hexano, por maceraci&oacute;n a temperatura ambiente durante 24 h. Los extractos se combinaron y despu&eacute;s de evaporar el disolvente a presi&oacute;n reducida se obtuvo el extracto hex&aacute;nico. Este procedimiento se repiti&oacute; utilizando metanol para obtener el extracto metan&oacute;lico correspondiente a cada muestra. De cada extracto se prepararon disoluciones de concentraci&oacute;n conocida y se inyectaron en el cromat&oacute;grafo de l&iacute;quidos. Con el fin de identificar la presencia de las cumarinas de referencia a las muestras analizadas se les adicionaron cantidades conocidas de las soluciones est&aacute;ndar. Para el procesamiento de los datos se emple&oacute; el software Millenium (Waters), que calcula la cantidad de cada componente presente en cada mililitro de disoluci&oacute;n inyectada, tomando como base las curvas de calibraci&oacute;n preparadas con los est&aacute;ndares. La cantidad de cada cumarina presente en el extracto hex&aacute;nico se suma a la de la cumarina correspondiente presente en el extracto metan&oacute;lico y de esta manera se obtiene el rendimiento de cada producto por gramo de planta seca.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores agradecen el apoyo en el financiamiento parcial del CONACyT (proyecto No. 34992&#45;N) y la Beca de PASPA, DGAPA para los estudios de doctorado de la M. en C. Garc&iacute;a&#45;Arg&aacute;ez.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Dewick, P.M. <i>Nat. Prod. Rep.</i> <b>1994</b>, <i>11</i>, 173&#45;203.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6935683&pid=S0583-7693200300020001300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Gray, A. I.; Waterman, P.G. <i>Phytochem.</i> <b>1978</b>, <i>17</i>, 845&#45;864.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6935685&pid=S0583-7693200300020001300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Murray, R.; M&eacute;ndez, J.; Brown, S. <i>The Natural Coumarins</i>, John Wiley &amp; Sons Ltd.; Norwich; <b>1982</b>; 163&#45;185.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6935687&pid=S0583-7693200300020001300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Garc&iacute;a&#45;Arg&aacute;ez, A. N.; Ram&iacute;rez, A. T. O.; Parra, D. H.; Vel&aacute;zquez, G.; Mart&iacute;nez&#45;V&aacute;zquez, M. <i>Planta Medica</i> <b>2000</b>, <i>66</i>, 279&#45;281.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6935689&pid=S0583-7693200300020001300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Meyer, B. N., Wall, M.E., Wani, M.C., Taylor, H.L. <i>J. Nat. Prod</i>. <b>1985</b>, <i>48</i>, 952&#45;956.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6935691&pid=S0583-7693200300020001300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Castellanos, S. V. Tesis FES Zaragoza, UNAM, M&eacute;xico, <b>1998</b>. 124 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6935693&pid=S0583-7693200300020001300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Rizvi, S. H.; Kapil, R.S.; Shoe, A. <i>J. Nat. Prod.</i> <b>1985</b>, <i>48</i>, 146.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6935695&pid=S0583-7693200300020001300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Iriarte, J.; Kincl, F.A.; Rosenkranz, G.; Sondheimer, F. <i>J. Chem. Soc. 1956</i>, 4170&#45;4173.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6935697&pid=S0583-7693200300020001300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Kincl, F.; Romo, J.; Rosenkranz, G.; Sondheimer, F. <i>J. Chem. Soc.</i>, <b>1956</b>, 4163&#45;4169.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6935699&pid=S0583-7693200300020001300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Enr&iacute;quez, R. G.; Romero, M. L.; Escobar, L. I.; Joseph&#45;Nathan, P.; Reynolds, W. F. <i>J. Chrom.</i>, <b>1984</b>, <i>287</i>, 209&#45;214.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6935701&pid=S0583-7693200300020001300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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