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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efectos individuales de la ciclidogiriasis y estreptococosis inducidas en la bioquímica sanguínea de la tilapia Oreochromis niloticus]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Individual effects of cichlidogyriasis and streptococosis induced on the blood biochemistry of tilapia Oreochromis niloticus]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In this study, we propose to evaluate the blood biochemistry as diagnosis technique of a pathologic process in tilapias Oreochromis niloticus by means of infections induced by Streptococcus sp. or by the activation of the immune response induced by antigens of Cichlidogyrus spp. Specifically, variations of some metabolites from the blood biochemistry were evaluated in experimentally infected tilapia Oreochromis niloticus. The organisms were intraperitoneally challenged (IP) with individual antigenic extracts of Streptococcus sp. (STREP Group, n = 10) and Cichlidogyrus spp. (C-EXP Group, n = 10), respectively, while 10 other tilapia were inoculated with a saline solution buffer (SS Group) and were used as immunization control. Another group of 70 tilapias was maintained in aquaculture conditions included the baseline group (LB). The negative control (CN) included 10 fish free of infection. The blood chemistry (metabolites and ions) were tested in a microplate format. No differences were observed between the LB and the CN groups (p &gt; 0.05). Only fish injected with Streptococcus sp. (STREP) and Cichlidogyrus spp. (C-EXP) were significantly different with the values of glucose, total proteins, albumin, and globulins, when comparing with LB fish (p < 0.05). Furthermore, the cholesterol, calcium and the chlorine changed significantly in the STREP fish (p &gt; 0.05). The results from the induced infections with Streptococcus sp. and Cichlidogyrus spp., respectively, modified some parameters of the blood biochemistry of tilapia that could be used for some preliminary diagnosis of infectious diseases.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Bioquímica sanguínea]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ 
	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>

	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Efectos individuales de la ciclidogiriasis y estreptococosis inducidas en la bioqu&iacute;mica</b> <b>sangu&iacute;nea de la tilapia</b> <i><b>Oreochromis niloticus</b></i></font></p>

	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>

	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Individual effects of cichlidogyriasis and streptococosis induced on the blood biochemistry of</b> <b>tilapia</b> <i><b>Oreochromis niloticus</b></i></font></p>

	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>

	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>J</b><b>uan Jos&eacute; Sandoval&#45;G&iacute;o<sup>1,3</sup>, Miguel Rosado&#45;Vallado<sup>2</sup> y Rossanna Rodr&iacute;guez&#45;Canul<sup>1</sup></b></font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Laboratorio de Inmunolog&iacute;a y Biolog&iacute;a Molecular, Centro de Investigaci&oacute;n y de Estudios Avanzados del Instituto Polit&eacute;cnico Nacional (CINVESTAV&#45;IPN) Unidad M&eacute;rida, Carretera Antigua a Progreso Km. 6, A. P. 73 Cordemex, M&eacute;rida, Yucat&aacute;n, 97310. M&eacute;xico</i></font>.</p>

	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Facultad de Qu&iacute;mica. Universidad Aut&oacute;noma de Yucat&aacute;n. Calle 41 No. 421 x 26 y 28. M&eacute;rida, Yucat&aacute;n, 97150. M&eacute;xico</i></font>.</p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup>Instituto Tecnol&oacute;gico de Tizim&iacute;n. Final Aeropuerto Cupul s/n. Apartado Postal No. 79, Tizim&iacute;n, Yucat&aacute;n, 97700. M&eacute;xico.</i> E&#45;mail: <a href="mailto:jsandoval29@hotmail.com">jsandoval29@hotmail.com</a></font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 23 de mayo del 2012.    <br>
	Aceptado; 11 de abril del 2013.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este estudio se propone evaluar la posibilidad de utilizar los datos de la bioqu&iacute;mica sangu&iacute;nea como diagn&oacute;stico presuntivo de un proceso infeccioso en tilapias <i>Oreochromis niloticus,</i> mediante infecciones inducidas por <i>Streptococcus</i> sp. o por la activaci&oacute;n de la respuesta inmune inducida por ant&iacute;genos de <i>Cichlidogyrus</i> spp. Espec&iacute;ficamente, se evalu&oacute; la variabilidad de algunos metabolitos de la bioqu&iacute;mica sangu&iacute;nea de tilapias <i>O. niloticus,</i> desafiadas de manera individual con inyecciones intraperitoneales (IP) de cultivos celulares de <i>Streptococcus</i> sp. (Grupo STREP, <i>n</i> = 10) y extractos tisulares de <i>Cichlidogyrus</i> spp. (Grupo C&#45;EXP, <i>n</i> = 10). Adicionalmente, a 10 tilapias, se les inyect&oacute; b&uacute;fer salino de fosfato (PBS) (pH = 7), para ser usados como control de inmunizaciones (Grupo soluci&oacute;n salina, SS). Adem&aacute;s, 70 tilapias se mantuvieron en condiciones acuaculturales usuales y conformaron el grupo l&iacute;nea base (LB). Diez peces m&aacute;s, libres de infecci&oacute;n, sirvieron como control negativo (Grupo CN). La bioqu&iacute;mica sangu&iacute;nea (metabolitos y iones), se analiz&oacute; por el m&eacute;todo de microplaca. Los resultados mostraron que no hubo diferencias entre los grupos LB y CN (<i>p</i> &gt; 0.05). En los peces STREP y C&#45;EXP se encontraron diferencias significativas en las concentraciones de glucosa, prote&iacute;nas totales, alb&uacute;mina y globulinas al compararlos con los peces LB (p &lt; 0.05). Asimismo, el colesterol, calcio y cloro variaron significativamente en los peces STREP <i>(p</i> &gt; 0.05). Para esta especie y en las condiciones de cultivo establecidas, las variaciones producidas por la infecci&oacute;n con <i>Streptococcus</i> sp. y los ant&iacute;genos de <i>Cichlidogyrus</i> spp., modificaron algunos par&aacute;metros de su bioqu&iacute;mica sangu&iacute;nea, los cuales pueden servir como indicadores de posibles patolog&iacute;as infecciosas.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Bioqu&iacute;mica sangu&iacute;nea, <i>Cichlidogyrus</i> spp., microplaca, <i>Streptococcus</i> sp., tilapia.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>

	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">In this study, we propose to evaluate the blood biochemistry as diagnosis technique of a pathologic process in tilapias <i>Oreochromis niloticus</i> by means of infections induced by <i>Streptococcus</i> sp. or by the activation of the immune response induced by antigens of <i>Cichlidogyrus</i> spp. Specifically, variations of some metabolites from the blood biochemistry were evaluated in experimentally infected tilapia <i>Oreochromis niloticus.</i> The organisms were intraperitoneally challenged (IP) with individual antigenic extracts of <i>Streptococcus</i> sp. (STREP Group, <i>n</i> = 10) and <i>Cichlidogyrus</i> spp. (C&#45;EXP Group, <i>n</i> = 10), respectively, while 10 other tilapia were inoculated with a saline solution buffer (SS Group) and were used as immunization control. Another group of 70 tilapias was maintained in aquaculture conditions included the baseline group (LB). The negative control (CN) included 10 fish free of infection. The blood chemistry (metabolites and ions) were tested in a microplate format. No differences were observed between the LB and the CN groups (<i>p</i> &gt; 0.05). Only fish injected with <i>Streptococcus</i> sp. (STREP) and <i>Cichlidogyrus</i> spp. (C&#45;EXP) were significantly different with the values of glucose, total proteins, albumin, and globulins, when comparing with LB fish (<i>p</i> &lt; 0.05). Furthermore, the cholesterol, calcium and the chlorine changed significantly in the STREP fish (<i>p</i> &gt; 0.05). The results from the induced infections with <i>Streptococcus</i> sp. and <i>Cichlidogyrus</i> spp., respectively, modified some parameters of the blood biochemistry of tilapia that could be used for some preliminary diagnosis of infectious diseases.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> Blood biochemistry, <i>Cichlidogyrus</i> spp., microplate, <i>Streptococcus</i> sp., tilapia.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La tilapia <i>Oreochromis niloticus</i> (Linnaeus, 1757), representa una fuente alternativa de prote&iacute;na animal de comprobada calidad en pa&iacute;ses en desarrollo, debido entre otros aspectos, a que posee una tasa &oacute;ptima de crecimiento&#45;reproducci&oacute;n y tolera altas densidades de siembra. Estas condiciones han promovido un car&aacute;cter intensivo de su cultivo, lo que en ocasiones desmejora su manejo y la vuelven susceptible a adquirir enfermedades infecciosas (Kabata, 1985). En la actualidad, dos de los pat&oacute;genos que m&aacute;s afligen a los cultivos de tilapia, son los estreptococos y los monog&eacute;neos del g&eacute;nero <i>Cichlidogyrus</i> spp., que, en distintos grados de severidad, han llegado a ocasionar mortandades en los cultivos (Popma &amp; Masser, 1999; Shoemaker <i>et al.,</i> 2001).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La enfermedad estreptoc&oacute;cica ocasiona anualmente p&eacute;rdidas millonarias a los acuacultores de tilapia en todo el mundo, causando hasta el 50% de detrimento de la producci&oacute;n en estanques. Las manifestaciones cl&iacute;nicas incluyen letargo, p&eacute;rdida de apetito y hemorragias de &oacute;rganos internos (Chen <i>et al.,</i> 2003; Pulido et al., 2004; Hern&aacute;ndez et al., 2009). Estos signos son semejantes a los que se presentan en otras enfermedades como la producida por <i>Enterococcus</i> sp. o la septicemia hemorr&aacute;gica bacteriana, por lo que el diagn&oacute;stico oportuno y certero es una prioridad (Martins <i>et al.,</i> 2008). <i>Cichlidogyrus</i> spp. ocasiona da&ntilde;os severos en branquias de tilapias cultivadas, especialmente cuando la abundancia parasitaria es alta (~800 monog&eacute;neos por pez). La transmisi&oacute;n parasitaria entre hospederos, se favorece por el ciclo de vida directo del pat&oacute;geno, calidad del agua poco atendida y pr&aacute;cticas de manejo inadecuado, que generan una situaci&oacute;n que requiere de una detecci&oacute;n r&aacute;pida y efectiva, antes de recurrir a tratamientos costosos (Prieto, 1987; Bondad&#45;Reantaso &amp; Arthur, 1990; Paperna, 1991; Jim&eacute;nez&#45;Garc&iacute;a <i>et al.,</i> 2001).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los m&eacute;todos de detecci&oacute;n habituales de estos dos agentes infecciosos incluyen a la microbiolog&iacute;a convencional, as&iacute; como la microscop&iacute;a &oacute;ptica y el estudio histol&oacute;gico de los arcos branquiales de los peces, respectivamente (Austin &amp; Austin, 1989; Paperna, 1991). No obstante, en sanidad acu&iacute;cola, se promueve el diagn&oacute;stico oportuno antes de tener que recurrir a tratamientos que incrementan riesgos y costos de los acuacultores. As&iacute;, con la necesidad de contar con diagn&oacute;sticos expeditos, econ&oacute;micos y utilizados de manera rutinaria, diversos autores (Grayson <i>et al.,</i> 1991; Al&#45;Harbi <i>et al.,</i> 2000; Klesius <i>et al.,</i> 2000; Rubio&#45;Godoy <i>et al.,</i> 2004; Figueiredo <i>et al.,</i> 2005; Pasnik <i>et al.,</i> 2005), han propuesto t&eacute;cnicas usadas en medicina humana o veterinaria, que poseen fundamentos inmunol&oacute;gicos o de biolog&iacute;a molecular, que han resultado &uacute;tiles para la detecci&oacute;n de pat&oacute;genos en organismos acu&aacute;ticos; sin embargo, una desventaja de tales an&aacute;lisis es que emplean reactivos de alto costo y dif&iacute;cil accesibilidad (Chen <i>et al.,</i> 2003). Una alternativa viable por su bajo costo y disponibilidad de equipo es la bioqu&iacute;mica sangu&iacute;nea. Esta metodolog&iacute;a ha funcionado para determinar variaciones en la concentraci&oacute;n de diversos metabolitos s&eacute;ricos de organismos bajo situaciones de estr&eacute;s por pat&oacute;genos, as&iacute; como por la presencia de t&oacute;xicos o debido a des&oacute;rdenes nutricionales (Hrubec &amp; Smith, 1999; Chen <i>et al.,</i> 2003; Silveira&#45;Coffigny et al., 2004; Manera &amp; Britti, 2006; Fanouraki <i>et al.,</i> 2007).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este sentido, la estandarizaci&oacute;n de las pruebas bioqu&iacute;micas para determinar metabolitos y/o iones en suero o plasma de vertebrados distintos a los humanos, como peces, anfibios, reptiles y aves, tienen el mismo fundamento de aqu&eacute;llas utilizadas en diagn&oacute;stico cl&iacute;nico humano e incluso veterinario/pecuario, ya que tienen la capacidad de establecer la concentraci&oacute;n del metabolito/electrolito a analizar, en muestras sangu&iacute;neas (Kakuta &amp; Namba, 1989; Jung <i>et al.,</i> 2003; Bailone <i>et al.,</i> 2010).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este estudio fue analizar la bioqu&iacute;mica sangu&iacute;nea de tilapias infectadas individualmente con extractos antig&eacute;nicos de <i>Streptococcus</i> sp. y <i>Cichlidogyrus</i> spp. para conocer las variaciones espec&iacute;ficas del hospedero en respuesta a la infecci&oacute;n de cada pat&oacute;geno. Estos cambios podr&iacute;an ser de utilidad para los acuacultores que monitorean sus estanques en la b&uacute;squeda de pat&oacute;genos en etapas sub cl&iacute;nicas y antes de desencadenarse mortandades dif&iacute;ciles de controlar. Para lograr par&aacute;metros de comparaci&oacute;n confiables y establecer las variaciones correspondientes, se cont&oacute; con datos de tilapias <i>O. niloticus,</i> libres de infecci&oacute;n y en condiciones habituales de cultivo (l&iacute;nea base) para contrastarlos con los peces sometidos a las infecciones provocadas (Silveira&#45;Coffigny <i>et al.,</i> 2004). Asimismo, con el objetivo de aumentar la reproducibilidad del an&aacute;lisis, se implement&oacute; la t&eacute;cnica de microplaca de 96 pocillos como soporte f&iacute;sico y un lector an&aacute;logo de densidades &oacute;pticas para la valoraci&oacute;n de los sueros.</font></p>

	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Selecci&oacute;n de peces y mantenimiento.</b> 300 tilapias <i>Oreochromis niloticus</i> de 19 &plusmn; 4 cm de longitud total (LT); 169 &plusmn; 46 g de peso (P), sin signos de enfermedad, ni distinci&oacute;n de sexo, se mantuvieron en condiciones habituales de cultivo por 30 d&iacute;as en estanques de concreto de 3 m de di&aacute;metro y 1.2 m de altura de columna de agua, en el Centro de Investigaci&oacute;n y de Estudios Avanzados del Instituto Polit&eacute;cnico Nacional (CINVESTAV&#45;IPN) Unidad M&eacute;rida, Yucat&aacute;n. A los peces se les suministr&oacute; alimento comercial (40% prote&iacute;na) <i>ad libitum.</i> Transcurrido este tiempo, 100 peces se seleccionaron al azar y se colocaron en cuatro tinas redondas de fibra de vidrio de 1000 litros cada una en un lugar cerrado y ventilado, con suministro de aire constante (ver abajo conformaci&oacute;n de grupos). La captura de los organismos se realiz&oacute; con redes de mano (2.5 cm de luz de malla), procur&aacute;ndose provocar a cada pez el m&iacute;nimo de estr&eacute;s por manipulaci&oacute;n. La temperatura y el ox&iacute;geno disuelto en el agua de las tinas se monitorearon diariamente con un ox&iacute;metro digital (YSI 550) y se tomaron muestras de agua cada semana para an&aacute;lisis de pH, amonio y nitrito (Eaton et al., 1998), manteni&eacute;ndose dentro de los rangos establecidos (T&deg; = 25 &plusmn; 5 &deg;C, O<sub>2</sub> = 5.87 &plusmn; 0.76 mg/L, pH: 6.9 &plusmn; 0.8; amonio = 0.079 &plusmn; 0.018 mg/L; nitrito: 2.87 &plusmn; 1.40 mg/L).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conformaci&oacute;n de grupos.</b> Los peces se dividieron de la siguiente manera (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>):</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grupo Estreptococosis inducida (STREP). 10 tilapias se infectaron intraperitonealmente (IP) con un cultivo celular de <i>Streptococcus</i> sp. de acuerdo a lo descrito en la <a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grupo Ciclidogiriasis experimental (C&#45;EXP). 10 tilapias fueron inmunizadas IP con un extracto de <i>Cichlidogyrus</i> spp. (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grupo soluci&oacute;n salina (SS). Como control de inmunizaciones, a 10 peces se les administr&oacute; soluci&oacute;n amortiguadora salina est&eacute;ril (b&uacute;fer salino de fosfato, PBS), v&iacute;a IP (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grupo control l&iacute;nea base (LB). Setenta tilapias, sin tratamiento experimental alguno y en condiciones acuaculturales usuales sirvieron para catalogar la l&iacute;nea base del CINVESTAV y se analizaron <i>post&#45;mortem</i> para colectar monog&eacute;neos que sirvieron para preparar la fuente de ant&iacute;geno que se inocular&iacute;a a las tilapias del grupo experimental C&#45;EXP.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grupo control negativo (CN). Diez tilapias con una ausencia total de infecci&oacute;n por <i>Streptococcus</i> sp. y <i>Cichlidogyrus</i> spp., obtenidas de un cultivo experimental libre de pat&oacute;genos donados por la Universidad de Stirling (Escocia, Reino Unido), los cuales se mantuvieron en el &aacute;rea de cuarentena del CINVESTAV durante tres meses.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n del in&oacute;culo de <i>Streptococcus</i> sp.</b> Las bacterias del g&eacute;nero <i>Streptococcus</i> se aislaron del tracto vaginal de pacientes gestantes del Hospital Regional "Ignacio Medina T&eacute;llez" de M&eacute;rida, Yucat&aacute;n. Se cultivaron en medio para estreptococos fecales de Kenner KF (Sigma) y se incubaron en ba&ntilde;o Mar&iacute;a a 28&deg;C durante 24 horas. Despu&eacute;s, el medio de cultivo se retir&oacute; por centrifugaci&oacute;n y las c&eacute;lulas bacterianas se lavaron tres veces con PBS est&eacute;ril, pH 7.2. Los microorganismos se confirmaron hasta g&eacute;nero, como <i>Streptococcus</i> sp. con un 99.5% de similitud, realizando procesos de inoculaci&oacute;n/incubaci&oacute;n por 24&#45;48 horas en un analizador mini API 20Strep (Biomeriux). Para preparar el in&oacute;culo, se realizaron diluciones del cultivo en forma seriada en tubos de infusi&oacute;n coraz&oacute;n&#45;cerebro (BHI) (Sigma) hasta ajustarse a una densidad &oacute;ptica (DO) de 1.0 a 540 nm. Esto se logr&oacute; hasta alcanzar una concentraci&oacute;n de 5 x 10<sup>7</sup> unidades formadoras de colonias (UFC)/ml con una diluci&oacute;n 1:10 (Shelby <i>et al.,</i> 2001).</font></p>

	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n del ant&iacute;geno de <i>Cichlidogyrus</i> spp.</b> Para preparar el extracto que se inocul&oacute; a los peces del grupo C&#45;EXP, alrededor de 8000 monog&eacute;neos (~1.6 g) se aislaron de las branquias de un n&uacute;mero indeterminado de tilapias provenientes de los estanques del CINVESTAV IPN, Unidad M&eacute;rida (incluidas las del grupo LB), a los cuales se les diagnostic&oacute; con ciclidogiriasis por m&eacute;todos parasitol&oacute;gicos. Las especies de <i>Cichlidogyrus</i> identificadas mediante microscopia &oacute;ptica fueron <i>C. sclerosus</i> Paperna <i>et</i> Thurston, <i>C.</i> <i>tilapiae</i> Paperna, <i>C. dossui</i> Paperna y <i>C. longicornis</i> Paperna <i>et</i> Thurston. Sin embargo, dado que independiente de la especie, estos organismos producen ciclidogiriasis, no se clasificaron hasta el nivel de especie, sino que en su lugar se trabaj&oacute; con el g&eacute;nero (Jim&eacute;nez&#45;Garc&iacute;a et al., 2001). Para preparar el extracto antig&eacute;nico se necesit&oacute; una buena cantidad de prote&iacute;na por lo que posteriormente, los par&aacute;sitos se colocaron en viales y se lavaron dos veces con ~ 1.5 mL de PBS est&eacute;ril y fr&iacute;o (pH 7.2, 0.01 M). Luego se colocaron en un tubo Eppendorf y se centrifugaron tres veces a 13,000 <i>g</i> durante 5 minutos. Entonces, se adicion&oacute; 0.5 ml de PBS est&eacute;ril, macerando manualmente con ayuda de una punta de pl&aacute;stico est&eacute;ril. Posteriormente, el tubo se introdujo en un contenedor con nitr&oacute;geno l&iacute;quido y se le agreg&oacute; proteinasa K (20 pg/&#956;l) para propiciar la ruptura de tejidos. El homogeneizado se centrifug&oacute; dos veces a 14,000 <i>g</i> por 30 minutos y el sobrenadante (extracto proteico) se separ&oacute; del sedimento (cut&iacute;cula) y ambos se almacenaron a una temperatura de &#45;70 &deg;C hasta su uso (Sandoval&#45;G&iacute;o <i>et al.,</i> 2008).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Protocolo de infecci&oacute;n e inmunizaciones.</b> El procedimiento de infecci&oacute;n <i>(Streptococcus)</i> e inmunizaci&oacute;n <i>(Cichlidogyrus)</i> para los peces de los grupos STREP y C&#45;EXP, respectivamente, consisti&oacute; en tres inoculaciones v&iacute;a IP, sin administraci&oacute;n de anest&eacute;sicos, con un intervalo de dos semanas entre cada inoculaci&oacute;n, seg&uacute;n los esquemas siguientes (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>):</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grupo STREP. Los diez peces del grupo STREP fueron inoculados IP con 100 &#956;l de un cultivo celular de <i>Streptococcus</i> sp. con una concentraci&oacute;n de 5 x 10<sup>7</sup> CFU/ml en PBS est&eacute;ril, con adyuvante completo de Freund (FCA), en proporci&oacute;n 1:1. A los 14 y d8 d&iacute;as se aplic&oacute; una segunda y tercera inoculaci&oacute;n, respectivamente, con la misma concentraci&oacute;n bacteriana pero adicionada con adyuvante incompleto de Freund (FIA, 50 &#956;l), de acuerdo al protocolo establecido por Harlow y Lane (1988). Dos semanas despu&eacute;s de la &uacute;ltima inoculaci&oacute;n, los peces se sacrificaron para extracci&oacute;n del coraz&oacute;n, ri&ntilde;&oacute;n craneal, h&iacute;gado y cerebro para realizar el cultivo reaislado del pat&oacute;geno.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grupo C&#45;EXP. Los diez peces se inyectaron IP con 150 &#956;l del extracto de <i>Cichlidogyrus</i> spp. (1 &#956;g/&#956;l) en FCA (1:1) y para las siguientes dos inoculaciones, la inyecci&oacute;n consisti&oacute; en igual concentraci&oacute;n del extracto del par&aacute;sito + FIA (50 &#956;l) (Sandoval&#45;G&iacute;o <i>et al.,</i> 2008).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grupo SS: como control de inmunizaci&oacute;n, diez peces se inocularon 3 veces cada 14 d&iacute;as, con 150 &#956;l de PBS est&eacute;ril, respectivamente.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Colecta de muestras sangu&iacute;neas y obtenci&oacute;n de suero.</b> Los peces bajo el protocolo de infecci&oacute;n o inmunizaci&oacute;n se sangraron cuatro veces (inmediatamente antes de cada inoculaci&oacute;n antig&eacute;nica y 15 d&iacute;as despu&eacute;s de la &uacute;ltima inoculaci&oacute;n, respectivamente) (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>). A su vez, los peces del control negativo (CN), se sangraron solo en una ocasi&oacute;n, despu&eacute;s de tres meses de cuarentena. Por su parte, las tilapias LB, se sangraron tambi&eacute;n una sola vez, antes de ser sacrificadas para la colecta de monog&eacute;neos. La sangre obtenida de la vena caudal (~1 a 5 ml) se coloc&oacute; en tubos Eppendorf a temperatura ambiente, dej&aacute;ndola coagular durante 30 minutos y centrifug&aacute;ndola a 1500 <i>g</i> por 10 minutos. El suero obtenido se coloc&oacute; en tubos Eppendorf en al&iacute;cuotas de 200 &#956;l para congelarse a &#45;20&deg; C, para su posterior an&aacute;lisis (Sandoval&#45;G&iacute;o <i>et al.,</i> 2008).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n de la bioqu&iacute;mica sangu&iacute;nea (metabolitos y iones) en suero por la t&eacute;cnica de microplaca.</b> Las variables hematol&oacute;gicas (bioqu&iacute;mica sangu&iacute;nea) se determinaron usando los estuches diagn&oacute;sticos de varios proveedores (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>). Estas variables se clasificaron como METABOLITOS (glucosa, colesterol, prote&iacute;nas totales, alb&uacute;mina, globulinas, &aacute;cido &uacute;rico, urea, creatinina, bilirubina total) e IONES (calcio, cloro, magnesio, f&oacute;sforo). El protocolo general consisti&oacute; en el uso de microplacas de policarbonato (Sigma) de 96 pocillos, probando previamente la cantidad de reactivo (R), soluci&oacute;n est&aacute;ndar (E) y muestra (M), que permiti&oacute; la mayor maniobrabilidad durante la aplicaci&oacute;n de la t&eacute;cnica. De acuerdo a estos ensayos preliminares, la cantidad de R se estableci&oacute; en d00 &#956;l para todas las pruebas; las cantidades de E y de M a probar fueron siempre equivalentes y se obtuvieron mediante la proporci&oacute;n sugerida para cada protocolo. Para el an&aacute;lisis de las muestras de <i>O. niloticus,</i> se coloc&oacute; la cantidad de R en cada pocillo de la placa, seguida de E y M. Posteriormente, las placas se incubaron a temperatura ambiente en micro agitadores circulares, durante 10 a 30 minutos, dependiendo del an&aacute;lisis. A continuaci&oacute;n, se coloc&oacute; cada placa en un espectrofot&oacute;metro de ELISA (Dynex, MRX) para la lectura de las densidades &oacute;pticas (DO), a las longitudes de onda propuestas por los protocolos respectivos (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>). Cada prueba se realiz&oacute; por triplicado. Los c&aacute;lculos para cada determinaci&oacute;n se realizaron conforme a cada kit diagn&oacute;stico, con previa obtenci&oacute;n de curvas de calibraci&oacute;n, obteni&eacute;ndose la precisi&oacute;n y exactitud de cada una de las metodolog&iacute;as (coeficientes de variaci&oacute;n &lt; 3% y errores relativos, en las unidades respectivas de cada protocolo &lt; 4%). Como excepci&oacute;n, el an&aacute;lisis de la alb&uacute;mina se obtuvo por sustracci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de las globulinas de las prote&iacute;nas totales. Los resultados para cada metabolito e ion, correspondientes a los cuatro tiempos de sangrado de los peces sometidos a inoculaciones (STREP, C&#45;EXP, SS), se presentaron como el valor promedio de esos an&aacute;lisis. En el caso de los peces LB y CN, los valores expresados son el resultado de determinaciones &uacute;nicas.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico.</b> A los valores de la concentraci&oacute;n de cada metabolito o ion se les aplic&oacute; un an&aacute;lisis de normalidad Wilk Shapiro. En caso de no cumplir con criterios de normalidad, en los par&aacute;metros se aplic&oacute; un logaritmo natural (ln + 1) para estabilizar la varianza. Los valores obtenidos se compararon mediante un dise&ntilde;o unifactorial desbalanceado (DUD), ya que el n&uacute;mero de tratamientos fue diferente. Las diferencias entre medias se analizaron mediante el m&eacute;todo de LSD, por medio del programa Statistics 6.0, resultando las diferencias con <i>p</i> &lt; 0.05, consideradas estad&iacute;sticamente significativas.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>

	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores obtenidos de los metabolitos y iones en los distintos grupos de peces se muestran en la <a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>. En primera instancia, los resultados en los an&aacute;lisis de los peces de l&iacute;nea base (LB) y control negativo (CN), no mostraron diferencias significativas entre s&iacute; (p &gt; 0.05). Asimismo, en el estudio del desaf&iacute;o en los peces inoculados se observ&oacute;:</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grupo STREP. El nivel de glucosa para STREP fue mayor (~176), en comparaci&oacute;n con los peces de los grupos LB y CN (~100 y 9d mg/dl, respectivamente) (p &lt; 0.05) (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>). Por otro lado, el colesterol fue menor en los peces STREP (~ 177 mg/dl), en comparaci&oacute;n con LB y CN (210 y 213 mg/dl, respectivamente) (p &gt; 0.05). A su vez, la determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas totales (PT), tambi&eacute;n result&oacute; con variaciones significativamente mayores para los peces STREP (5.4 g/dl), en comparaci&oacute;n con el grupo de l&iacute;nea base LB (3.6 g/dl) y el grupo CN (3.3 g/dl) (p &lt; 0.05). Las globulinas fueron m&aacute;s altas tambi&eacute;n (3 g/dl), en comparaci&oacute;n con LB y CN (1.9 g/dl) (p &lt; 0.05).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el caso de los iones, el calcio en los peces STREP tuvo valores de ~10 mg/dl por debajo de los grupos LB y CN (entre 12 y 14 mg/dl) <i>(p</i> &gt; 0.05). El cloro s&eacute;rico tambi&eacute;n fue significativamente menor (~103 mEq/L) al de los de peces LB: ~ 131 y CN: ~124 mEq/L <i>(p</i> &gt; 0.05).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grupo C&#45;EXP. Para C&#45;EXP se observ&oacute; una disminuci&oacute;n de la glucosa (~ 61) en comparaci&oacute;n con los peces LB y CN (~100; 92 mg/dl, respectivamente) <i>(p</i> &lt; 0.05). (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>). Por su parte, el colesterol en el grupo C&#45;EXP (~207 mg/dl), no tuvo diferencias significativas al compararlo con LB y CN (p &lt; 0.05). En contraste, las PT fueron mayores en C&#45;EXP (6.1 g/dl, respectivamente) en comparaci&oacute;n con LB (3.6 g/dl) y CN (3.3 g/dl) (p &lt; 0.05). Los niveles de globulinas tambi&eacute;n fueron m&aacute;s altos, 3.6 g/dl, en comparaci&oacute;n con 1.9 g/dl de LB y CN (p &lt; 0.05).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grupo SS. Los peces SS tuvieron diferencias significativas en la glucosa (~ 58 mg/dl) con respecto a LB y CN (p &lt; 0.05) y adem&aacute;s alcanzaron un valor cercano a los 275 mg/dl de colesterol s&eacute;rico, muy por encima de los valores de los dem&aacute;s grupos (entre 177 Y 214 mg/dl) (p &lt; 0.05).El grupo SS tuvo una PT de 4.4 g/dl, significativamente mayor que los grupos de referencia, pero las globulinas no variaron significativamente <i>(p</i> &lt; 0.05) (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>). Con respecto al &aacute;cido &uacute;rico, los valores obtenidos para todos los grupos estudiados estuvieron entre 3.8 y 4.9 mg/dl, excepto los inoculados con soluci&oacute;n salina (SS) que promedi&oacute; 8.1 mg/ dl. En el caso de los iones, el calcio present&oacute; concentraciones significativamente distintas, en las tilapias SS, que aumentaron (~22 mg/dl) por encima de LB y CN (entre 12 y 14 mg/dl) <i>(p</i> &gt; 0.05).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por &uacute;ltimo, para todos los peces desafiados, la urea, creatinina y bilirrubina total (~4.6; ~0.2 y ~1 mg/dl, respectivamente), as&iacute; como los valores de magnesio y f&oacute;sforo (~ 2 y 4 mg/dl, respetivamente) no presentaron cambios relevantes en las situaciones experimentales propuestas (p &lt; 0.05) (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A la tilapia <i>Oreochromis niloticus</i> se le conoce como la especie acuacultural del siglo XXI, debido a su creciente demanda y excelente panorama de comercializaci&oacute;n a nivel mundial (Fitzsimmons, 2000; Shelton &amp; Popma, 2006; FAO, 2010). Esta actividad ha incorporado t&eacute;cnicas que buscan incrementar la producci&oacute;n por unidad de &aacute;rea, estrategia que ha aumentado las cosechas pero tiene la desventaja de que propicia un acrecentamiento en la susceptibilidad de los peces para contraer diversos padecimientos. Esta situaci&oacute;n ha obligado a realizar un monitoreo constante del cultivo mediante la implementaci&oacute;n de t&eacute;cnicas diagn&oacute;sticas, especialmente aquellas que sean capaces de evaluar periodos prepatentes de enfermedades, as&iacute; como de detectar estados subletales de enfermedades, con el fin de prevenir mortalidades repentinas de los peces en los estanques (Sahu <i>et al.,</i> 1999).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Un m&eacute;todo que resulta de utilidad, es la bioqu&iacute;mica sangu&iacute;nea de los peces debido a su factibilidad de ejecuci&oacute;n, f&aacute;cil reproducci&oacute;n y a la disponibilidad de reactivos (Anderson &amp; Barney, 1991; Yavuzkan Yildiz, 2009).</font></p>

	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este estudio se consider&oacute; tomar como referencia a dos grupos control, en primer lugar, los peces del CINVESTAV se mostraban saludables, con patrones de comportamiento y alimentaci&oacute;n adecuados, por lo que constituyeron el patr&oacute;n de comparaci&oacute;n de organismos en condiciones acuaculturales o l&iacute;nea base (LB). Un aspecto que robusteci&oacute; la elecci&oacute;n de este subgrupo fue que los registros hist&oacute;ricos de la calidad del agua de los estanques de CINVESTAV (2004&#45;2011), se han mantenido dentro de los rangos sugeridos para la actividad acu&iacute;cola (ver apartado de Materiales y M&eacute;todos, selecci&oacute;n de peces y mantenimiento). Por otro lado, el Control Negativo (CN), se conform&oacute; con peces de l&iacute;nea gen&eacute;tica pura, libres de ambos pat&oacute;genos provenientes de un cultivo ax&eacute;nico de Stirling, Reino Unido.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La pertinencia de utilizar a los peces de los grupos LB y CN como control de referencia, se evidenci&oacute; al encontrar que los valores de todos los metabolitos e iones no mostraron diferencias significativas entre s&iacute;, aval&aacute;ndolos su buen estado de salud (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La estreptococosis en peces es considerada una patolog&iacute;a emergente de importancia global por el Centro para la Prevenci&oacute;n y Control de Enfermedades de los Estados Unidos (CDC, por sus siglas en ingl&eacute;s). En tilapias, este padecimiento es causado por <i>Streptococcus iniae</i> Pier <i>et</i> Madin y <i>S. difficile</i> Eldar, con manifestaciones cl&iacute;nicas an&aacute;logas entre s&iacute;, lo que ha redundado en un diagn&oacute;stico confuso de la enfermedad (Eldar <i>et al.,</i> 1995; Weinstein <i>et al.,</i> 1997; Romano &amp; Mej&iacute;a, 2003). A&uacute;n m&aacute;s, en a&ntilde;os recientes <i>S. agalactie</i> Lehmann and Neumann, ha sido motivo de preocupaci&oacute;n ya que se demostr&oacute; que una vez aislado de casos cl&iacute;nicos de neonatos enfermos, causaron mortalidad en <i>Oreochromis niloticus</i> (Evans <i>et al.,</i> 2009). No obstante las diferencias ultraestructurales entre estas especies de <i>Streptococcus,</i> todas producen estreptococosis. As&iacute;, en este estudio, los peces se inocularon con un cultivo celular de <i>Streptococcus</i> sp. (Grupo STREP), que demostr&oacute; su viabilidad al crecer en cultivos re aislados de agar, sin embargo, su inoculaci&oacute;n experimental en los peces, no mostr&oacute; signos cl&iacute;nicos de la enfermedad, ni se observ&oacute; mortalidad (Austin &amp; Austin, 1989; Madigan <i>et al.,</i> 2000).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el grupo STREP, los cambios m&aacute;s notorios se originaron en las determinaciones de glucosa, colesterol, calcio y cloro, s&eacute;ricos, respectivamente. Diversos autores (Hrubec et al., 2000; Bittencourt <i>et al.,</i> 2003; Karasu Benli &amp; Yavuzcan Yildiz, 2004; Manera &amp; Britti, 2006; Mauel <i>et al.,</i> 2007), sit&uacute;an los valores basales de glucosa en tilapias y otros tele&oacute;steos en un rango de ~30 hasta ~100 mg/dl. As&iacute;, el valor de este metabolito para los peces sometidos a la estreptococosis inducida (STREP) fue significativamente m&aacute;s alto (~176 mg/dl) en comparaci&oacute;n con los peces LB y CN, que se ubicaron dentro de los rangos se&ntilde;alados en la literatura (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los niveles de glucosa s&eacute;rica en organismos acu&aacute;ticos pueden variar como consecuencia de diversos factores intr&iacute;nsecos como la talla, estado nutricional o reproductivo y estr&eacute;s, siendo este &uacute;ltimo aspecto, el par&aacute;metro fisiol&oacute;gico m&aacute;s sensible (Smith, 1991; Fivelstad et al., 1995; Barreto &amp; Volpato, 2006). Para el presente estudio, todos los peces proven&iacute;an de una misma cohorte, con un patr&oacute;n de alimentaci&oacute;n similar, por lo que el incremento de glucosa observado en los peces STREP, pudo deberse &uacute;nicamente a la tensi&oacute;n producida por alg&uacute;n proceso concomitante a la inoculaci&oacute;n de la bacteria.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estudios registrados en <i>Cyprinus carpio</i> (Linnaeus,1758) sometidos a estr&eacute;s debido a un tratamiento quimioterap&eacute;utico con formalina, demostraron que los niveles de glucosa alcanzaron valores significativamente mayores (hasta 119 mg/dL) en comparaci&oacute;n con peces en estado basal (~ 57 mg/dL) (Kakuta <i>et al.,</i> 1991). Otras investigaciones en otras especies de tele&oacute;steos, han revelado que bajo un estado de estr&eacute;s agudo, ocurre una r&aacute;pida elevaci&oacute;n en los niveles de glucosa (hasta ~150 mg/dL), correspondiente a un incremento de la concentraci&oacute;n de cortisol, entre 30, 60 y hasta 120 minutos despu&eacute;s de la presencia del agente estresor (McGeer <i>et al.,</i> 1991; Kebus <i>et al.,</i> 1992; Cnaani <i>et al.,</i> 2004). Esta hiperglicemia se produce por el efecto de la liberaci&oacute;n de catecolaminas, sustancias que determinan la glicogen&oacute;lisis hep&aacute;tica en peces &oacute;seos (Barcellos <i>et al.,</i> 2001).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La ubicaci&oacute;n de los valores de glucosa en las otras tilapias desafiadas de esta investigaci&oacute;n (C&#45;EXP y SS), dentro del rango establecido por la literatura, sugiere que el protocolo de inoculaci&oacute;n IP no result&oacute; estresante para los peces, o al menos no se manifest&oacute; en el tiempo estudiado. En este sentido, la variaci&oacute;n significativa de la concentraci&oacute;n de glucosa en el grupo STREP con respecto a los peces LB y CN, pudiese significar un indicador preliminar que deba atenderse como criterio diagn&oacute;stico, en peces que estuviesen en riesgo de enfermedad estreptococ&oacute;cica y en un estado pre patente.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A su vez, el nivel de colesterol obtenido para los peces STREP disminuy&oacute; hasta ~ 177 mg/dl, en contraste con los grupos LB y CN, que guardaron similitud con los basales reportados por otros autores para <i>O. niloticus</i> y otras especies de tele&oacute;steos (valores entre ~200 y 275 mg/dl) (Yavuzcan Yildiz et al., 1997; Chen <i>et al.,</i> 2003; Manera &amp; Britti, 2006; Atencio&#45;Garc&iacute;a et al., 2007). El colesterol s&eacute;rico ha estado asociado a la capacidad de resistencia a enfermedades en diversas especies de peces y el estado de madurez sexual o la tasa de alimentaci&oacute;n tambi&eacute;n pueden influir en su cin&eacute;tica de respuesta (Groff &amp; Zinkl, 1999). En los peces de este estudio, se pretendi&oacute; que las condiciones de madurez sexual no ejercieran influencia en los resultados, ya que se encontraban en la misma etapa reproductiva. Hrubec <i>et al.</i> (2000) y Cnaani <i>et al.</i> (2004), encontraron valores de colesterol de ~ 170 mg/dl en tilapia, como resultado del uso de peces h&iacute;bridos y bajo estr&eacute;s por hipoxia, respectivamente. As&iacute;, los valores de colesterol en los peces STREP de este estudio por debajo de 180 mg/dl para <i>O. niloticus,</i> podr&iacute;an estar indicando un posible mecanismo de reacci&oacute;n frente a la infecci&oacute;n inducida de <i>Streptococcus</i> sp.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En referencia a las prote&iacute;nas totales (PT), en los peces STREP estos valores alcanzaron 5.4 g/dl, significativamente mayores que en LB y CN, los cuales se conservaron entre 3.3 y 3.6 g/dl, guardando similitud con los obtenidos por otros autores para esta misma especie y otros peces &oacute;seos (Hrubec <i>et al.,</i> 2000; Bittencourt et al., 2003; Chen et al., 2003; Manera &amp; Britti, 2006). La concentraci&oacute;n de prote&iacute;na est&aacute; fuertemente relacionada con situaciones de defensa espec&iacute;fica contra pat&oacute;genos, por lo que al detectarse un incremento significativo en las PT de los peces inoculados con el cultivo celular de estreptococos, pudiera deducirse de manera indirecta que existi&oacute; una reacci&oacute;n espec&iacute;fica por parte del hospedero frente a la infecci&oacute;n inducida bacteriana, aunque para comprobarlo se necesitar&iacute;a de pruebas de mayor especificidad y sensibilidad, como el ELISA (Pasnik <i>et al.,</i> 2005).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cuanto a los iones, el calcio decreci&oacute; significativamente en los peces inoculados con el cultivo celular de <i>Streptococcus</i> (~10 mg/dl), en comparaci&oacute;n con los peces LB y CN (~14 mg/dl). Nuestros peces de referencia tuvieron valores de este electrolito coincidentes con otros registros para <i>O. niloticus</i> y otras especies de peces &oacute;seos en condiciones acuaculturales usuales (Hrubec et al., 2000; Chen et al., 2003; Chen et al., 2004; Manera &amp; Britti, 2006). A este respecto, se sugiere que este electrolito posee alto nivel de correlaci&oacute;n con la disponibilidad de calcio ambiental, por ejemplo, la dureza del agua de los estanques (Hrubec <i>et al.,</i> 2000). La pen&iacute;nsula de Yucat&aacute;n se caracteriza por poseer niveles elevados de dureza total (250 mg/l de sales disueltas, especialmente de CaCO<sub>3</sub>), originados por la naturaleza c&aacute;rstica del subsuelo (Pacheco&#45;&Aacute;vila <i>et al.,</i> 2004). Hrubec <i>et al.</i> (2000), encontraron 31 mg/dl de calcio en <i>O. niloticus</i> mantenidos en alta densidad y Cnaani <i>et al.</i> (2004), hallaron 63 mg/dl en su cong&eacute;nere <i>O. aureus</i> (Steindachner, 1864). Tomando en cuenta que el agua de abastecimiento para el presente estudio, fue el mismo para todos los grupos de peces, es posible que este decremento en el calcio de los peces STREP (~10 mg/dl) sea un indicador preliminar de la infecci&oacute;n inducida por <i>Streptococcus,</i> ya que existen antecedentes que mencionan la reducci&oacute;n en la concentraci&oacute;n s&eacute;rica de este ion (~2 mg/dl de disminuci&oacute;n) en carpas infectadas experimentalmente con <i>Pseudomona fluorescens</i> Migula, as&iacute; como en tilapias inoculadas con <i>S. iniae</i> (Pier, 1976) (Yavuzcan Yildiz, 1998; Chen <i>et al.,</i> 2003).</font></p>

	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otra parte, el cloro en STREP disminuy&oacute; hasta ~103 mEq/ L, en comparaci&oacute;n con la fluctuaci&oacute;n entre ~125 y 132 mg/dl para los peces controles de este estudio, coincidentes con los valores de referencia para <i>O. niloticus, Oncorhynchus mykiss</i> (Walbaum, 1792) y <i>Piaractus brachypomus</i> (Cuvier, 1818) (Hrubec <i>et al.,</i> 2000; Sakamoto <i>et al.,</i> 2001; Chen <i>et al.,</i> 2003; Chen <i>et al.,</i> 2004; Manera &amp; Britti, 2006). Se sabe que este ion puede decrecer cuando la temperatura alcanza niveles inferiores a las condiciones naturales de la especie (Yavuzcan Yildiz <i>et al.,</i> 1997). En nuestro estudio, las condiciones de temperatura se monitorearon constantemente, manteni&eacute;ndose dentro de los rangos establecidos para el cultivo de <i>O. niloticus</i> (25 &plusmn; 5&deg;C). As&iacute;, esta situaci&oacute;n de disminuci&oacute;n del cloro pudiera ser de potencial relevancia diagn&oacute;stica, ya que es an&aacute;loga a las descritas por Barham <i>et al.</i> (1980) y Chen <i>et al.</i> (2004), para infecciones inducidas por <i>Streptococcus,</i> aunque en combinaci&oacute;n con <i>Aeromonas</i> spp. y <i>Vibrio vulnificus</i> Farmer, respectivamente (~10 mEq/L de disminuci&oacute;n). Estos &uacute;ltimos investigadores correlacionaron esta variaci&oacute;n sangu&iacute;nea con da&ntilde;o hep&aacute;tico y renal, en este sentido, aunque en nuestra investigaci&oacute;n no se traz&oacute; como meta la evaluaci&oacute;n histol&oacute;gica de &oacute;rganos internos de los peces infectados, los cultivos reaislados en estos &oacute;rganos dieron positivo a <i>Streptococcus</i> sp.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con respecto a los peces con la ciclidogiriasis inducida, en este estudio se realiz&oacute; una <i>imprompta</i> de los par&aacute;sitos dado que la literatura se&ntilde;ala que existen ocho especies de <i>Cichlidogyrus</i> que afectan a las tilapias (le Roux &amp; Avenant&#45;Oldewage, 2010). De &eacute;stas, en las instalaciones de CINVESTAV IPN M&eacute;rida se han registrado cinco, siendo la m&aacute;s abundante <i>C. sclerosus</i> Paperna <i>et</i> Thurston. Independientemente del g&eacute;nero, todas causan ciclidogiriasis (Prieto, 1987; Vidal&#45;Mart&iacute;nez <i>et al.,</i> 2002; Jim&eacute;nez&#45;Garc&iacute;a et al., 2001). En este grupo de estudio, las determinaciones de prote&iacute;nas totales&#45;globulinas manifestaron mayor relevancia, porque aunque los niveles de glucosa fueron significativamente diferentes que los peces LB y CN, se ubicaron dentro de los rangos destacados por la literatura (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>). No as&iacute;, las PT del grupo C&#45;EXP alcanzaron el valor m&aacute;s alto de todos los grupos de estudio, sugiriendo una respuesta espec&iacute;fica de anticuerpos, las prote&iacute;nas involucradas en la inmunidad adaptativa (Barret, 1991). As&iacute;, niveles altos de prote&iacute;nas totales del suero e incrementos correspondientes de globulinas, en especial las inmunoglobulinas (IgM), se asocian a una respuesta inmunol&oacute;gica adquirida en peces con capacidad de memoria y de respuesta espec&iacute;fica (Margni, 1996). Sandoval&#45;G&iacute;o <i>et al.</i> (2008), encontraron por ELISA un t&iacute;tulo de anticuerpos positivo en <i>O. niloticus</i>desafiados con un extracto antig&eacute;nico de <i>Cichlidogyrus,</i> por lo que puede inferirse que el incremento de las PT en los peces C&#45;EXP, fue un indicador indirecto de la estimulaci&oacute;n antig&eacute;nica experimental. El incremento concomitante en los niveles de alb&uacute;minas y globulinas para estos mismos peces (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>), as&iacute; como el nulo efecto del adyuvante, comprobado en un lote complementario de peces (datos no mostrados), refuerza esta suposici&oacute;n.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por su parte, los peces desafiados con soluci&oacute;n salina (SS) presentaron para la glucosa y colesterol, respectivamente, cambios significativos, en comparaci&oacute;n con los controles, pero dentro de los rangos reportados por otros autores para <i>O. niloticus</i> y otras especies de tele&oacute;steos (glucosa, valores entre 30 y 60 mg/dl; colesterol, valores entre ~200 y 275 mg/dl) (Yavuzcan Yildiz <i>et al.,</i> 1997; Chen <i>et al.,</i> 2003; Manera &amp; Britti, 2006; Atencio&#45;Garc&iacute;a <i>et al.,</i> 2007). Una situaci&oacute;n similar ocurri&oacute; con las PT (4.4 g/dl) que variaron significativamente con respecto a LB y CN, pero son similares a los indicados en la literatura para esta especie de pez y otras m&aacute;s de tele&oacute;steos (entre ~3 y 4.5 g/dl) (Hrubec <i>et al.,</i> 2000; Bittencourt <i>et al.,</i> 2003; Chen <i>et al.,</i> 2003; Manera &amp; Britti, 2006). El &aacute;cido &uacute;rico no vari&oacute; significativamente para los grupos estudiados (alrededor de 4 mg/dl), excepto los inoculados con soluci&oacute;n salina (SS; 8.1 mg/I) (p &lt; 0.05). Cnaani <i>et al.</i> (2004) realizaron un estudio comparativo entre varias especies de tilapias, encontrando para <i>O. niloticus</i> un valor de &aacute;cido &uacute;rico de ~2.5 mg/dl y de ~3.7 mg/dl para <i>O. aureus</i> y <i>O. mossambicus</i> (Peters, 1852). El &aacute;cido &uacute;rico es un producto del catabolismo de los &aacute;cidos nucl&eacute;icos, en especial de aquellos cuya base de nucle&oacute;tidos est&aacute;n formados por la purina, por lo que se ha sugerido que un incremento en los registros de nitr&oacute;geno no prot&eacute;ico, pudiera originarse de mecanismos derivados del rompimiento muscular (McKee, 2003). En este punto se podr&iacute;a deducir que el procedimiento de la inoculaci&oacute;n antig&eacute;nica increment&oacute; el &aacute;cido &uacute;rico en el grupo SS, pero puesto que los peces STREP y C&#45;EXP no manifestaron cambio alguno en la concentraci&oacute;n de ese electrolito, esta variaci&oacute;n pudo deberse m&aacute;s a un desequilibrio de tipo osm&oacute;tico, dada la naturaleza de la sustancia inoculada (b&uacute;fer salino de fosfato) (Zaki <i>et al.,</i> 2008).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los dem&aacute;s metabolitos estudiados (urea, creatinina, bilirrubina) en <i>O. niloticus</i> de nuestro estudio, no presentaron variaciones significativas entre los grupos estudiados y se mantuvieron en los rangos establecidos por diversos autores, para la tilapia y otras especies de peces &oacute;seos (<a href="/img/revistas/hbio/v23n3/a6t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>) (Hrubec <i>et al.,</i> 2000; Sakamoto et al., 2001; Cnaani et al., 2004, Manera &amp; Britti, 2006). Asimismo, aunque significativamente superiores que los dem&aacute;s peces del presente estudio, los registros del cloro en SS, no se apartaron de los establecidos en el rango de otras especies de <i>Oreochromis</i> spp. (~135 &#45; 160 mg/dl) (Papoutsoglou et al., 2001; Cnaani <i>et al.,</i> 2004).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por &uacute;ltimo, los peces de los grupos experimentales (STREP, C&#45;EXP y SS) no mostraron diferencias significativas en la concentraci&oacute;n de magnesio y f&oacute;sforo con respecto a las tilapias LB y CN <i>(p</i> &lt; 0.05). Adem&aacute;s, estos iones ocurrieron dentro del intervalo basal descrito por otros autores para la tilapia (2.3&#45;3.5 mg/dl) y (4.4&#45;4.9 mg/dl), respectivamente (Hrubec <i>et al.,</i> 2000; Chen et al., 2004; Cnaani et al., 2004).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En conclusi&oacute;n, este trabajo conforma un primer intento para destacar el uso de la bioqu&iacute;mica sangu&iacute;nea, para evidenciar el efecto de una infecci&oacute;n inducida por estreptococos en tilapias. En este sentido, el incremento significativo de la concentraci&oacute;n de glucosa en el grupo STREP con respecto a los peces controles pudiese significar un par&aacute;metro que deba atenderse como criterio diagn&oacute;stico, en peces que estuviesen en riesgo de enfermedad estreptococ&oacute;cica, sin presentar signos cl&iacute;nicos de la patolog&iacute;a. Esto, en conjunto con decrementos en los niveles de colesterol, calcio y cloro, pudieran ser indicadores preliminares de prevalencias iniciales de estreptococos en tilapias cultivadas. Se sugiere reforzar estos resultados con organismos en etapas cl&iacute;nicas de la infecci&oacute;n para robustecer nuestros hallazgos. De igual manera, los niveles de los diversos metabolitos y iones estudiados para los grupos LB y CN, resultaron dentro de los rangos destacados en la literatura para <i>O. niloticus,</i> lo que permiti&oacute; confirmarlos como l&iacute;nea de control y referencia. Asimismo, la utilizaci&oacute;n de la t&eacute;cnica de microplaca, se propone como herramienta diagn&oacute;stica para determinar la bioqu&iacute;mica sangu&iacute;nea permitiendo disminuir la cantidad de reactivo utilizado y aumentar el n&uacute;mero de muestras para procesar en un tiempo cada vez, lo que sugiere una reducci&oacute;n de la inversi&oacute;n econ&oacute;mica y optimizaci&oacute;n de la relaci&oacute;n horas/hombre para el trabajo de laboratorio. Aun as&iacute;, su accesibilidad para cualquier laboratorio de diagn&oacute;stico acu&iacute;cola no puede garantizarse <i>per se,</i> dada la inversi&oacute;n para la obtenci&oacute;n del lector de microplacas (Anderson &amp; Barney, 1991; Shelby <i>et al.</i> 2001).</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este trabajo es un extracto de la tesis doctoral de J. J. Sandoval&#45;G&iacute;o, apoyado por el Consejo Nacional de Ciencia y Tecnolog&iacute;a (CONACYT) con la beca 209205 y registro 129336. Se agradece al Q.F.B. Juan Antonio P&eacute;rez Vega su apoyo t&eacute;cnico en la implementaci&oacute;n de la t&eacute;cnica de microplaca.</font></p>

	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>

	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al&#45;Harbi, A. H., R. Truax &amp; R. L. Thune. 2000. Production and characterization of monoclonal antibodies against tilapia <i>Oreochromis niloticus</i> immunoglobulin. <i>Aquaculture</i> 188 (3&#45;4): 219&#45;227</font>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109600&pid=S0188-8897201300030000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Anderson, D. P. &amp; P. J. Barney. 1991. The role of the diagnostic laboratory in fish disease control. <i>Annual Review of Fish Diseases</i> 1: 41&#45;62.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109602&pid=S0188-8897201300030000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Atencio&#45;Garc&iacute;a, V., F. Genes&#45;L&oacute;pez, D. Madariaga&#45;Mendoza &amp; S. Pardo&#45;carrasco. 2007. Hematolog&iacute;a y qu&iacute;mica sangu&iacute;nea de rubio <i>(Salminus affinis</i> Pisces: Characidae) del r&iacute;o Sin&uacute;. <i>Acta Biol&oacute;gica Colombiana</i> 12S: 27&#45;40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109604&pid=S0188-8897201300030000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Austin &#914;. &amp; D. A. Austin. 1989. <i>Methods for the Microbiological Examination of Fish and Shellfish.</i> Ellis Horwood, Chichester, 317 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109606&pid=S0188-8897201300030000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bailone, R. L., M. L. Martins, J. L. P. Mouri&ntilde;o, F. &#925;. Vieira, F. S. Pedrotti, G. e. Nunes &amp; &#914;. C. Silva. 2010. Hematology and agglutination titer after polyvalent immunization and subsequent challenge with <i>Aeromonas hydrophila</i> in Nile tilapia <i>(Oreochromis niloticus). Archivos de Medicina Veterinaria</i> 42 (3): 221&#45;227.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109608&pid=S0188-8897201300030000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Barcellos, L. J. G., V. M. Woehl, G. F. Wassermann, R. M. Quevedo, I. Ittz&eacute;s &amp; M. H. Krieger. 2001. Plasma levels of cortisol and glucose in response to capture and tank transference in <i>Rhamdia quelen</i> (Quoy &amp; Gaimard), a South American catfish. <i>Aquaculture Research</i> 32 (2): 121&#45;123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109610&pid=S0188-8897201300030000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Barham, W. T., G. L. Smit &amp; H. J. Schoonbee. 1980. The haematological assessment of bacterial infection in rainbow trout, <i>Salmo gairdneri</i> Richardson. <i>Journal of Fish Biology</i> 17 (3): 275&#45;281.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109612&pid=S0188-8897201300030000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Barret, J. T. 1991. <i>Inmunolog&iacute;a m&eacute;dica.</i> Editorial Interamericana, M&eacute;xico, 346 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109614&pid=S0188-8897201300030000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Barreto R. E &amp; G. L Volpato. 2006. Stress response of the fish Nile tilapia subjected to electroshock and social stressors. Brazilian <i>Journal of Medical and Biological Research</i> 39 (12): 1605&#45;1612.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109616&pid=S0188-8897201300030000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bittencourt &#925;. l., L. Molinari, D. Scoaris, R. Pedroso, C. Nakamura &amp; T. Uedanakamura. 2003. Haematological and Biochemical Values for Nile Tilapia <i>Oreochromis niloticus</i> Cultured in SemiIntensive System. <i>Acta Scientiarum. Biological sciences</i> 25 (2): 38&#45;59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109618&pid=S0188-8897201300030000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bondad&#45;Reantaso, M. G. &amp; J. R. Arthur. 1990. The parasites of Nile Tilapia <i>Oreochromis niloticus</i> (L.) in the Philippines, including an analysis of changes in the parasite fauna of cultured tilapia from fry to marketable size. <i>In:</i> Proceedings of dnd Asian Fisheries Forum. Tokyo, Japan, pp. 729&#45;734.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109620&pid=S0188-8897201300030000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chen, C.Y., G. A. Wooster, R. G. Getchell, P. R. Bowser &amp; M. &#914;. Timmons. 2003. Blood chemistry of healthy, nephrocalcinosis&#45;affected and ozone&#45;treated tilapia in a recirculation system, with application of discriminant analysis. <i>Aquaculture</i> 218 (1&#45;4): 89&#45;102.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109622&pid=S0188-8897201300030000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chen, C. Y., G. A. Wooster &amp; P. R. Bowser. 2004. Comparative blood chemistry and histopathology of tilapia infected with <i>Vibrio vulnificus</i> or <i>Streptococcus iniae</i> or exposed to carbon tetrachloride, gentamicin, or copper sulfate. <i>Aquaculture</i> 239 (1&#45;4): 421&#45;443.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109624&pid=S0188-8897201300030000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cnaani, &#913;., S. Tinman, Y. Avidar, M. Ron &amp; G. Hulata. 2004. Comparative study of biochemical parameters in response to stress in <i>Oreochromis aureus, O. mossambicus</i> and two strains of <i>O. niloticus. Aquaculture Research</i> 35 (15): 1434&#45;1440.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109626&pid=S0188-8897201300030000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Doumas &#914;. T., W. &#913;. Watson &amp; H. G. Biggs. 1971. Albumin standards and the measurement of serum albumin with bromocresol green. <i>Clinica Chimica Acta</i> 31 (1): 87&#45;96.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109628&pid=S0188-8897201300030000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Eaton, &#913;. D., L. S. Clesceri &amp; &#913;. E. Greenberg (Eds.). 1998. <i>Standard methods for the examination of water and wastewater.</i> 20th Ed. American Public Health Association (APHA). Washington, D.C. 1325 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109630&pid=S0188-8897201300030000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Eldar &#913;., P. F. Frelier, L. Asanta, P.W. Varner, S. Lawhon &amp; H. Bercovier. 1995. <i>Streptococcus shiloi,</i> the name for an agent causing septicemic infection in fish, is a junior synonym of <i>Streptococcus iniae. International Journal of Systematic Bacteriology</i> 45 (4): 840&#45;842.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109632&pid=S0188-8897201300030000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Evans, J.J., P.H. Klesius, D.J. Pasnik &amp; J.F. Bohnsack. 2009. Human <i>Streptococcus agalactiae</i> Isolate in Nile Tilapia <i>(Oreochromis niloticus). Emerging Infectious Diseases</i> 15 (5): 774&#45;776.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109634&pid=S0188-8897201300030000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fanouraki, E., P. Divanach &amp; M. Pavlidis. 2007. Baseline values for acute and chronic stress indicators in sexually inmature red porgy <i>(Pagrus pagrus). Aquaculture</i> d65 (1&#45;4): 294&#45;304.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109636&pid=S0188-8897201300030000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">FAO. 2010. El estado mundial de la pesca y la acuicultura&#45;2010 (Roma, Italia). Disponible en l&iacute;nea en <a href="http://www.fao.org/docrep/013/i18d0s/i1820s00.htm" target="_blank">http://www.fao.org/docrep/013/i18d0s/i1820s00.htm</a> (consultado el 16 de enero de 2012).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109638&pid=S0188-8897201300030000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Farell, E. C. 1984. Calcium. In: Kaplan L. A. &amp; A. J. Pesce (Eds.). <i>Clinical chemistry: theory, analysis, and correlation,</i> 2nd edition. The C.V. Mosby Co., St Louis, pp. 1051&#45;1255 and 418.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109640&pid=S0188-8897201300030000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Figueiredo, H. C. P., P. H. Klesius, C. R. Arias, J. Evans, C. &#913;. Shoemaker, D. J. Pereira Jr. &amp; M. T. D. Peixoto. 2005. Isolation and characterization of strains of <i>Flavobacterium columnare</i> from Brazil. <i>Journal of Fish Diseases</i> 28 (4): 199&#45;204.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109642&pid=S0188-8897201300030000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Finley P. R, R. &#914;. Schifman, R. J. Williams &amp; D. &#913;. Lichti. 1978. Cholesterol in high&#45;density lipoprotein: use of Mgd+/dextran sulfate in its enzymic measurement. <i>Clinical Chemistry</i> 24 (6): 931&#45;933.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109644&pid=S0188-8897201300030000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fitzsimmons, K. 2000. Tilapia: The most important aquaculture species in the 21<sup>st</sup> Century. <i>In:</i> Fitzsimmons K. &amp; J. Carvalho (Eds.). Tilapia Aquaculture in the 21<sup>st</sup> century: Proceedings from the Fifth International Symposium on Tilapia Aquaculture. Rio de Janeiro, September 3&#45;7. pp. 3&#45;8</font>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109646&pid=S0188-8897201300030000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fivelstad, S., J. Schwarz, H. Str0MSNES &amp; &#913;. Berit Olsen. 1995. Sublethal effects and safe levels of ammonia in seawater for Atlantic salmon postsmolts <i>(Salmo salar</i> L.) <i>Aquacultural Engineering</i> 14 (3): 271&#45;280.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109648&pid=S0188-8897201300030000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fossati, P., L. Prencipe &amp; &#913;. Berti. 1980. Use of 3,5&#45;dichloro&#45;d&#45;hydroxyben&#45;zenesulfonic acid/ 4 aminophenazone chromogenic system in direct enzymic assay of uric acid in serum and urine <i>Clinical Chemistry</i> 26 (2): 227&#45;231.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109650&pid=S0188-8897201300030000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grayson, T. H., P. G. Jenkins, &#913;. &#914;. Wrathmell &amp; J. E. Harris. 1991. Serum response to the salmon louse <i>Lepeophtheirus salmonis</i> (Kroyer, 1838) in naturally infected salmonids and immunised rainbrow trout <i>Onchorhynchus mykiss</i> (Walbaum) and rabbits. <i>Fish and Shellfish Immunology</i> 1 (2): 141&#45;155.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109652&pid=S0188-8897201300030000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Groff, J. M. &amp; J. G Zinkl. 1999. Hematology and clinical chemistry of cyprinid fish. Common carp and gold fish. <i>Veterinary Clinics of North America: Exotic animal practice. California</i> 2 (3): 741&#45;776.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109654&pid=S0188-8897201300030000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Harlow, E. &amp; D. Lane. 1988. <i>Antibodies, a Laboratory Manual.</i> Cold Spring Harbor Laboratory, New York, 726 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109656&pid=S0188-8897201300030000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hern&aacute;ndez, E., J. Figueroa &amp; C. Iregui. 2009. Streptococcosis on a red tilapia, <i>Oreochromis</i> sp., farm: a case study. <i>Journal of Fish Diseases</i> 32 (3): 247&#45;252.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109658&pid=S0188-8897201300030000600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hrubec, T. C. &amp; S. &#913;. Smith. 1999. Differences between plasma and serum samples for the evaluation of blood chemistry values in rainbow trout, channel catfish, hybrid tilapias and striped bass. <i>Journal of Aquatic Animal Health</i> 11 (2): 116&#45;122.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109660&pid=S0188-8897201300030000600031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hrubec, T. C., J. L. Cardinale &amp; S. &#913;. Smith. 2000. Hematology and plasma chemistry reference intervals for cultured Tilapia <i>(Oreochromis</i> hybrid). <i>Veterinary Clinical Pathology</i> 29 (1): 7&#45;12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109662&pid=S0188-8897201300030000600032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jim&eacute;nez&#45;Garc&iacute;a, M. I, V. M. Vidal&#45;Mart&iacute;nez &amp; S. L&oacute;pez&#45;Jim&eacute;nez. 2001. Monogeneans in introduced and native cichlids in Mexico: Evidence for transfer. <i>The Journal of Parasitology</i> 87 (4): 907&#45;909.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109664&pid=S0188-8897201300030000600033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jung, S. H., D. S. Sim, M. S. Park, Q. T. Jo &amp; Y. Kim. 2003. Effects of formalin on haematological and blood chemistry in olive flounder, <i>Paralichthys olivaceus</i> (Temminck et Schlegel). <i>Aquaculture Research</i> 34 (14): 1269&#45;1275.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109666&pid=S0188-8897201300030000600034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kabata, &#918;. 1985. <i>Parasites and diseases of fish cultured in the tropics.</i> Taylor &amp; Francis, London, 318 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109668&pid=S0188-8897201300030000600035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kakuta, I. &amp; K. Namba. 1989. Urine properties in carp, <i>Cyprinus carpio</i> L., with sekoke disease. <i>Journal of Fish Diseases</i> 12 (3): 241&#45;248.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109670&pid=S0188-8897201300030000600036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kakuta, I., K. Namba, K. Uematsu &amp; S. Murachi. 1991. Physiological response of the fish, <i>Cyprinus carpio,</i> to formalin exposure. I. Effects of formalin on urine flow, heart rate, respiration. <i>Comparative Biochemistry and Physiology</i> 100C (3): 405&#45; 411.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109672&pid=S0188-8897201300030000600037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kaplan, &#913;. 1984. Urea. In: Kaplan, L. A. &amp; A. J. Pesce (Eds.). <i>Clinical chemistry: theory, analysis, and correlation,</i> 2nd edition. The C.V. Mosby Co., St Louis. 1257&#45;1260 and 437 and 418.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109674&pid=S0188-8897201300030000600038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Karasu Benli, &#913;. C. &amp; H. Yavuzcan Yildiz. 2004. Blood parameters in Nile tilapia <i>(Oreochromis niloticus</i> L.) spontaneously infected with <i>Edwardsiella tarda. Aquaculture Research</i> 35 (14): 1388&#45;1390.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109676&pid=S0188-8897201300030000600039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kebus, M. J., M. T. Collins, M. S. Brownfield, C. H. Amundson, &#932;. &#914;. Kayes &amp; J. &#913;. Malison. 1992. Effects of rearing density on the stress response and growth of rainbow trout. <i>Journal of Aquatic Animal Health</i> 4 (1): 1&#45;6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109678&pid=S0188-8897201300030000600040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kingsley, G. R. 1939. The determination of serum total protein, albumin and globulin by the Biuret reaction. <i>The Journal of Biological Chemistry</i> 131 (1): 197&#45;200.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109680&pid=S0188-8897201300030000600041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Klesius P. H., C. &#913;. Shoemaker &amp; J. J. Evans. 2000. Efficacy of a single and combined <i>Streptococcus iniae</i> isolate vaccine administered by intraperitoneal and intramuscular routes in tilapia <i>(Oreochromis niloticus). Aquaculture</i> 188 (3&#45;4): 237&#45;246.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109682&pid=S0188-8897201300030000600042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Koller, &#913;. &amp; L. &#913;. Kaplan. 1984. Total serum protein. In: L. A Kaplan &amp; A. J. Pesce (Eds.). <i>Clinical chemistry: theory, analysis, and correlation,</i> 2nd edition. The C.V. Mosby Co., St Louis. 1057&#45;1060.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109684&pid=S0188-8897201300030000600043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">le Roux, L. E. &amp; &#913;. Avenant&#45;Oldewage. 2010. Checklist of the fish parasitic genus <i>Cichlidogyrus</i> (Monogenea), including its cosmopolitan and host species. <i>African Journal of Aquatic Science</i> 35 (1): 21&#45;36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109686&pid=S0188-8897201300030000600044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Madigan, M.T., J. M. Martinko &amp; J. Parker. 2000. Host&#45;Parasite Relationships. In: Madigan, M. T., J. M. Martinko &amp; J. Parker (Eds.). <i>Brock Biology of Microorganisms</i> (9th ed.). Prentice Hall. New Jersey. pp. 773&#45;800.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109688&pid=S0188-8897201300030000600045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Margni, R. &#913;. 1996. <i>Inmunolog&iacute;a e Inmunoqu&iacute;mica. Fundamentos.</i> Editorial M&eacute;dica Panamericana. Buenos Aires. 976 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109690&pid=S0188-8897201300030000600046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Martins, M. L., J. L. P. Mouri&ntilde;o, G. V. Amaral, F. &#925;. Vieira, G. Dotta, &#913;. M. &#914;. Jatob&aacute;, F. S. Pedrotti, G. &#932;. Jer&ocirc;nimo, C. C. Buglione&#45;Neto &amp; G. Pereira&#45;Jr. 2008. Haematological changes in Nile tilapia experimentally infected with <i>Enterococcus</i> sp. <i>Brazilian Journal of Biology</i> 68 (3): 657&#45;661.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109692&pid=S0188-8897201300030000600047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Manera, M. &amp; D. Britti. 2006. Assessment of blood chemistry normal ranges in rainbow trout. <i>Journal of Fish Biology</i> 69 (5): 1427&#45;1434.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109694&pid=S0188-8897201300030000600048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mauel, M. J., D. L. Miller &amp; &#913;. L. Merrill. 2007. Hematologic and plasma biochemical values of healthy hybrid tilapia <i>(Oreochromis aureus</i> &#967; <i>Oreochromis nilotica)</i> maintained in a recirculating system. <i>Journal of Zoo and Wildlife Medicine</i> 38 (3): 420&#45;424.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109696&pid=S0188-8897201300030000600049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">McGeer J. C., L. Baranyi &amp; G. &#922; Iwama. 1991. Physiological responses to challenge tests in six stocks of coho salmon <i>(Oncorhynchus kisutch). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences</i> 48 (9): 1761&#45;1771.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109698&pid=S0188-8897201300030000600050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">McKee &#932;. 2003. <i>Bioqu&iacute;mica. La Base Molecular De La Vida.</i> 3<sup>a</sup> ed. McGraw&#45;Hill/Interamericana, Madrid, 800 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109700&pid=S0188-8897201300030000600051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mu&ntilde;oz M. &#913;, M. Bal&oacute;n &amp; C. Fern&aacute;ndez. 1983. Direct determination of inorganic phosphorus in serum with a single reagent. <i>Clinical Chemistry</i> 29 (2): 372&#45;374.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109702&pid=S0188-8897201300030000600052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pacheco&#45;&Aacute;vila, J., &#913;. Cabrera&#45;Sansores &amp; R. P&eacute;rez&#45;Ceballos. 2004. Diagn&oacute;stico de la calidad del agua subterr&aacute;nea en los sistemas municipales de abastecimiento en el estado de Yucat&aacute;n, M&eacute;xico. <i>Ingenier&iacute;a</i> 8 (2): 165&#45;179.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109704&pid=S0188-8897201300030000600053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Paperna, I. 1991. Diseases caused by parasites in the aquaculture of warm water fish. <i>Annual Review of Fish Diseases</i> 1: 155&#45;194</font>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109706&pid=S0188-8897201300030000600054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Papoutsoglou, S. e., H. Miliou, &#925;. P. Karakatsouli, M. Tzitzinakis &amp; S. Chadio. 2001. Growth and physiological changes in scaled carp and blue tilapia under behavioral stress in mono&#45; and polyculture rearing using a recirculated water system. <i>Aquaculture International</i> 9 (6): 509&#45;518.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109708&pid=S0188-8897201300030000600055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pasnik, D. J., J. J. Evans, V. S. Panangala, P. H. Klesius, R. &#913;. Shelby &amp; C. &#913;. Shoemaker. 2005. Antigenicity of <i>Streptococcus agalactiae</i> extracellular products and vaccine efficacy. <i>Journal of Fish Diseases</i> 28 (4): 205&#45;212.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109710&pid=S0188-8897201300030000600056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Prieto, &#913;. 1987. Monog&eacute;neos (Platyhelmintes). Par&aacute;sitos de peces de inter&eacute;s comercial sometidos a cultivos intensivos en Cuba; sistem&aacute;tica, patolog&iacute;a y control. Tesis de Doctorado. Academia de Ciencias de Cuba, La Habana, Cuba. 151 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109712&pid=S0188-8897201300030000600057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Popma, &#932;. &amp; M. Masser. 1999. <i>Tilapia Life History and Biology.</i> Southern Regional Aquaculture Center, USA, Publication No. 283.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109714&pid=S0188-8897201300030000600058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pulido, &#913;., C. Iregui, J. Figueroa &amp; P. Klesius. 2004. Estreptococosis en Tilapia <i>(Oreochromis</i> spp) cultivadas en Colombia. <i>AquaTIC</i> 20: 97&#45;106. Disponible en l&iacute;nea en <a href="http://www.revistaaquatic.com/aquatic/art.asp?t=p&c=170" target="_blank">http://www.revistaaquatic.com/aquatic/art.asp?t&#61;p&amp;c&#61;170</a> (consultado el 5 de enero de 2012).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109716&pid=S0188-8897201300030000600059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Romano, L. &#913;. &amp; J. Mej&iacute;a. 2003. Infecci&oacute;n por <i>Streptococcus iniae:</i> Una enfermedad emergente que afecta a peces de cultivo y a humanos. <i>Revista AquaTIC</i> 18: 25&#45;32. Disponible en l&iacute;nea en <a href="http://www.revistaaquatic.com/aquatic/art.asp?t=p&c=1d" target="_blank">http://www.revistaaquatic.com/aquatic/art.asp?t&#61;p&amp;c&#61;1d</a> (consultado el 14 de enero de 2012).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109718&pid=S0188-8897201300030000600060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rubio&#45;Godoy, M., R. Porter &amp; R. C. Tinsley. 2004. Evidence of complementmediated killing of <i>Discocotyle sagittata</i> (Platyhelrninthes, Monogenea) oncomiracidia. <i>Fish and Shellfish Immunology</i> 17 (2): 95&#45;103.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109720&pid=S0188-8897201300030000600061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sahu, &#914;. &#914;., &#913;. M. Radheyshy, &#922;. Kumar, S. C. Mukherjee &amp; S. Ayyappan. 1999. Farmer participatory fish disease surveillance and monitoring: Use of PRA tools. <i>Tropical Agricultural Research and Extension</i> 2(2): 118&#45;123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109722&pid=S0188-8897201300030000600062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sakamoto &#922;., G. &#913;. Lewbart &amp; &#932;. M. Smith II. 2001. Blood chemistry values of juvenile red pacu <i>(Piaractus brachyp</i>omus). <i>Veterinary Clinical Pathology</i> 30 (2): 50&#45;52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109724&pid=S0188-8897201300030000600063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sandoval&#45;G&iacute;o, J. J., R. Rodr&iacute;guez&#45;Canul &amp; V. M. Vidal&#45;Mart&iacute;nez. 2008. Humoral antibody response of the Tilapia <i>Oreochromis niloticus</i> against <i>Cichlidogyrus</i> spp. (Monogenea). <i>The Journal of Parasitology</i> 94 (2): 404&#45;409.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109726&pid=S0188-8897201300030000600064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Shelby, R. &#913;., J. Shoemaker, J. Evans &amp; P. H. Klesius. 2001. Development of an indirect ELISA to detect humoral response to <i>Streptococcus iniae</i> of Nile tilapia, <i>Oreochromis niloticus. Journal of Applied Aqua&#45;culture</i> 11 (1&#45;2): 35&#45;44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109728&pid=S0188-8897201300030000600065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Shelton, W. L. &amp; &#932;. J. Popma. 2006. Tilapia biology. In: Lim C. E. &amp; C. D. Webster (Eds.). <i>Tilapia: Biology, Culture and Nutrition,</i> Haworth Press, Binghamton, NY, pp. 1&#45;49.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109730&pid=S0188-8897201300030000600066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Shoemaker, C. &#913;., P. H. Klesius &amp; J. J. Evans. 2001. Prevalence of <i>Streptococcus iniae</i> in tilapia, hybrid striped bass, and channel catfish on commercial fish farms in the United States. <i>American Journal of Veterinary Research</i> 62 (2): 174&#45;177.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109732&pid=S0188-8897201300030000600067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Shull, &#914;. C., H. Lees &amp; P. &#922;. Li. 1980. Mechanism of interference by hemoglobin in the determination of total bilirubin. I. Method of Malloy&#45;Evelyn. <i>Clinical Chemistry</i> 26 (1): 22&#45;25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109734&pid=S0188-8897201300030000600068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Silveira&#45;Coffigny, R., &#913;. Prieto&#45;Trujillo &amp; F. Ascencio&#45;Valle. 2004. Effects of different stressors in haematological variables in cultured <i>Oreochromis aureus S. Comparative Biochemistry and Physiology,</i> Part C 139 (4): 245&#45;250.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109736&pid=S0188-8897201300030000600069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Slot, C. 1965. Plasma creatinine determination a new and specific Jaffe reaction method. <i>Scandinavian Journal of Clinical and Laboratory Investigation</i> 17 (4): 381&#45;387.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109738&pid=S0188-8897201300030000600070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Smith, S. L. 1991. <i>Introduction to fish physiology.</i> Argent Lab., Redmond, WA, 352 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109740&pid=S0188-8897201300030000600071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Trinder, P. 1969. Determination of blood glucose using an oxidase peroxidase system with a non&#45;carcinogenic chromogen. <i>Journal of Clinical Pathology</i> 22 (2): 158&#45;161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109742&pid=S0188-8897201300030000600072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vidal&#45;Mart&iacute;nez, V. M., M. L. Aguirre&#45;Macedo, &#932;. Scholz, D. Gonz&aacute;lez&#45;Sol&iacute;s &amp; E. F. Mendoza&#45;Franco. 2002. <i>Atlas de los helmintos par&aacute;sitos de c&iacute;clidos de M&eacute;xico.</i> Instituto Polit&eacute;cnico Nacional, M&eacute;xico, 184 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109744&pid=S0188-8897201300030000600073&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Weinstein, M. R., M. Litt, D. &#913;. Kertesz, P. Wyper, D. Rose, M. Coulter, &#913;. McGeer, R. Facklam, C. Ostach, &#914;. M. Willey, &#913;. Borczyk &amp; D. E. Low. 1997. Invasive infections due to a fish pathogen, <i>Streptococcus iniae. The New England Journal of Medicine</i> 337 (9): 589&#45;594.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109746&pid=S0188-8897201300030000600074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wu, &#913;. 2006. <i>Tietz clinical guide to laboratory tests,</i> 4<sup>th</sup> Edition, W.B. Saunders, Philadelphia, PA, USA. 1856 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109748&pid=S0188-8897201300030000600075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yavuzcan Yildiz, H., S. Pulatsu &amp; F. Kurtoglu. 1997. Baseline haematological and serological parameters of healthy Nile tilapia <i>(Oreochromis niloticus</i> L.). <i>Animal Science Papers and Reports</i> 15 (4): 213&#45;217.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109750&pid=S0188-8897201300030000600076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yavuzcan Yildiz, H. 1998. Effects of experimental infection with <i>Pseudomonas fluorescens</i> on different blood parameters in carp <i>(Cyprinus carpio</i> L.). <i>The Israeli Journal of Aquaculture&#45;Bamidgeh</i> 50 (2): 82&#45;85.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109752&pid=S0188-8897201300030000600077&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yavuzcan Yildiz, H. 2009. Reference biochemical values for three cultured Sparid fish: striped sea bream, <i>Lithognathus mormyrus;</i> common dentex, <i>Dentex dentex;</i> and gilthead sea bream, <i>Sparus aurata. Comparative Clinical and Pathology</i> 18 (1): 23&#45;27.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109754&pid=S0188-8897201300030000600078&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>

	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zaki, M. S., O. M. Fawzi &amp; J. El&#45;Jackey. 2008. Pathological and biochemical studies in <i>Tilapia nilotica</i> infected with <i>Saprolegnia parasitica</i> and treated with potassium permanganate. <i>American&#45;Eurasian Journal of Agricultural and Environmental Science</i> 3 (5): 677&#45;680.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4109756&pid=S0188-8897201300030000600079&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>
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