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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Etiología y epidemiología de la necrosis floral del zapote mamey (Pouteria sapota (Jacq.) H.E. Moore y Stearn) en Guerrero, México]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Etiology and epidemiology of floral necrosis in sapote mamey (Pouteria sapota (Jacq.) H.E. Moore y Stearn) in Guerrero, México]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Colegio de Postgraduados-Campus Montecillo Postgrado en Fitosanidad-Fitopatología ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In Alpoyeca, Guerrero, México, floral necrosis is a disease of unknown etiology that occurs with high incidence (80 to 100 %) in sapotes mamey (Pouteria sapota) and reduces the productivity of commercial orchards. The objectives of the present study were to determine the etiology and temporal progress of the disease. Penicillium olsonii and Alternaria alternata were isolated from necrotic flowers, and Pestalotiopsis paeoniicola was isolated from asymptomatic flowers. The pathogenicity of the fungi was verified in asymptomatic flowers in 2005 and 2006. P. olsonii and A. alternate, inoculated in a conidial suspension (1 x 103 conidia mL-1) caused necrosis, wilting, rot, and floral abscission at 5 d and 8 d, respectively. P. paeoniicola induced petal necrosis after 8 d. The temporal progress of floral necrosis was studied on 10 mamey sapote trees from May to August of 2005, with a final incidence varying between 80 and 100 %. Fifty percent of the epidemics fit the Gompertz model, 30 % fit the logistic model, and 20 % fit the monomolecular model. Disease incidence was associated with relative humidity of 65 to 75 % (r = 0.80) and greater than 5 km h-1 wind speed (r = 0.75). The conidial densities of Alternaria sp. and Pestalotiopsis sp. were correlated with relative humidity from 70 a 90 % (rAlternaria = 0.75 and rPestalotiopsis = 0.80) and with greater than 5 km h-1 wind speed for Alternaria sp. (rAlternaria = 0.70. In Alpoyeca, Guerrero, floral necrosis of mamey was induced by Penicillium olsonii and Alternaria alternata. The intensity of the disease was correlated with relative humidity and wind speed.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos cient&iacute;ficos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Etiolog&iacute;a y epidemiolog&iacute;a de la necrosis floral del zapote mamey (<i>Pouteria sapota</i> (Jacq.) H.E. Moore y Stearn) en Guerrero, M&eacute;xico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Etiology and epidemiology of floral necrosis in sapote mamey (<i>Pouteria sapota</i> (Jacq.) H.E. Moore y Stearn) in Guerrero, M&eacute;xico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Alfonso V&aacute;squez&#45;L&oacute;pez<sup>1, 2</sup> *, J. Antonio Mora&#45;Aguilera<sup>1</sup>, Cristian Nava&#45;D&iacute;az<sup>1</sup> y Daniel T&eacute;liz&#45;Ortiz<sup>1</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Postgrado en Fitosanidad&#45;Fitopatolog&iacute;a, Colegio de Postgraduados&#45;Campus Montecillo. Km. 36.5 carretera M&eacute;xico&#45;Texcoco. 56230, Montecillo, Texcoco, Edo. de M&eacute;xico, M&eacute;xico. * Autor para correspondencia</i> (<a href="mailto:avasquez@ipn.mx">avasquez@ipn.mx</a>)</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Direcci&oacute;n Actual: Centro Interdisciplinario de Investigaci&oacute;n para el Desarrollo Integral Regional&#45;Unidad Oaxaca, Instituto Polit&eacute;cnico Nacional. Calle Hornos 1003. 71230, Santa Cruz Xoxocotl&aacute;n, Oax. Tel y Fax 01 (951) 51 7 06 10 ext. 82705.</i></font>	</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 24 de Enero del 2012    <br> 	Aceptado: 18 de Octubre del 2012</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En Alpoyeca, Guerrero, M&eacute;xico, la necrosis floral del mamey (<i>Pouteria sapota</i>) es una enfermedad de etiolog&iacute;a desconocida que se presenta con alta incidencia (80 a 100 %) y reduce la productividad de los huertos comerciales. Los objetivos del presente estudio fueron determinar la etiolog&iacute;a y el progreso temporal de la enfermedad. De flores necr&oacute;ticas se aisl&oacute; a <i>Penicillium olsonii</i> y <i>Alternaria alternata</i> y de flores asintom&aacute;ticas <i>Pestalotiopsis paeoniicol</i>. La patogenicidad de los hongos se verific&oacute; en flores asintom&aacute;ticas en 2005 y 2006. <i>P. olsonii</i> y <i>A. alternata</i>, inoculados en suspensi&oacute;n conidial (1 x 10<sup>3</sup> conidios mL<sup>&#45;1</sup>), causaron necrosis, marchitez, pudrici&oacute;n y abscisi&oacute;n floral a los 5 y 8 d, respectivamente. <i>P. paeoniicola</i> indujo necrosis de p&eacute;talos despu&eacute;s de 8 d. El progreso temporal de la necrosis floral se estudi&oacute; en 10 &aacute;rboles de mamey de mayo a agosto de 2005; la incidencia final oscil&oacute; entre 80 y 100 %. De las epidemias, 50 % se ajustaron al modelo Gompertz, 30 % al log&iacute;stico y 20 % al monomolecular. La incidencia de la enfermedad se asoci&oacute; con humedad relativa de 65 a 75 % (<i>r</i> = 0.80) con la velocidad del viento &#8804;  5 Km h<sup>&#45;1</sup> (<i>r</i> = 0.75). La densidad conidial de <i>Alternaria</i> sp. y <i>Pestalotiopsis</i> sp. se relacion&oacute; con la humedad relativa de 70 a 90 % (<i>r</i><sub><i>Alternaria</i></sub> = 0.75 y <i>r</i><sub><i>Pestalotiopsis</i></sub> = 0.80) y con velocidad del viento &#8804;  5 km h<sup>&#45;1</sup> para Alternaria sp. (<i>r</i><sub><i>Alternaria</i></sub> = 0.70). En Alpoyeca, Guerrero, la necrosis floral del mamey fue inducida por <i>Penicillium olsonii</i> y <i>Alternaria</i> <i>alternata</i>. La intensidad de la enfermedad se correlacion&oacute; con humedad relativa y velocidad del viento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Pouteria sapota</i>, <i>Penicillium olsonii</i>, <i>Alternaria alternata</i>, <i>Pestalotiopsis paeniicola</i>, densidad conidial.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">In Alpoyeca, Guerrero, M&eacute;xico, floral necrosis is a disease of unknown etiology that occurs with high incidence (80 to 100 %) in sapotes mamey (<i>Pouteria sapota</i>) and reduces the productivity of commercial orchards. The objectives of the present study were to determine the etiology and temporal progress of the disease. <i>Penicillium</i> <i>olsonii</i> and <i>Alternaria alternata</i> were isolated from necrotic flowers, and <i>Pestalotiopsis paeoniicola</i> was isolated from asymptomatic flowers. The pathogenicity of the fungi was verified in asymptomatic flowers in 2005 and 2006. <i>P. olsonii</i> and <i>A. alternate</i>, inoculated in a conidial suspension (1 x 103 conidia mL<sup>&#45;1</sup>) caused necrosis, wilting, rot, and floral abscission at 5 d and 8 d, respectively. <i>P. paeoniicola</i> induced petal necrosis after 8 d. The temporal progress of floral necrosis was studied on 10 mamey sapote trees from May to August of 2005, with a final incidence varying between 80 and 100 %. Fifty percent of the epidemics fit the Gompertz model, 30 % fit the logistic model, and 20 % fit the monomolecular model. Disease incidence was associated with relative humidity of 65 to 75 % (<i>r</i> = 0.80) and greater than 5 km h<sup>&#45;1</sup> wind speed (<i>r</i> = 0.75). The conidial densities of <i>Alternaria</i> sp. and <i>Pestalotiopsis</i> sp. were correlated with relative humidity from 70 a 90 % (<i>r</i><sub><i>Alternaria</i></sub> = 0.75 and <i>r</i><sub><i>Pestalotiopsis</i></sub> = 0.80) and with greater than 5 km h<sup>&#45;1</sup> wind speed for <i>Alternaria</i> sp. (<i>r</i><sub><i>Alternaria</i></sub> = 0.70. In Alpoyeca, Guerrero, floral necrosis of mamey was induced by <i>Penicillium olsonii</i> and <i>Alternaria</i> <i>alternata</i>. The intensity of the disease was correlated with relative humidity and wind speed.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>Pouteria sapota</i>, <i>Penicillium olsonii</i>, <i>Alternaria alternata,</i> <i>Pestalotiopsis paeoniicola</i>, conidial density.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El mamey (<i>Pouteria sapota</i> (Jacq.) H.E. Moore y Stearn) se cultiva en los pa&iacute;ses que conforman el centro de origen y diversidad de la especie, entre ellos M&eacute;xico, Guatemala, El Salvador, Honduras, Costa Rica, Cuba y EE. UU. (Azurdia, 2006). En M&eacute;xico, en el a&ntilde;o 2011 se cultivaron 1702 ha con una producci&oacute;n estimada de 16 357 t. Las entidades federativas con mayor superficie y producci&oacute;n fueron Yucat&aacute;n (492 ha y 9448 t), Guerrero (390 ha y 2270 t) y Michoac&aacute;n (234 ha y 673 t) (SIAP, 2011). En Huamuxtitl&aacute;n y Alpoyeca, municipios situados en la monta&ntilde;a baja del Estado de Guerrero, se cultivan aproximadamente 250 ha con mamey con alto potencial de producci&oacute;n y alta rentabilidad, cuya producci&oacute;n total de fruto fresco es consumida por el mercado nacional.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En esta regi&oacute;n la necrosis floral del mamey es una enfermedad de etiolog&iacute;a desconocida que disminuye hasta en 35 % la productividad de los huertos. La enfermedad se detecta en flores reci&eacute;n abiertas cuyos p&eacute;talos muestran micelio de color verde&#45;olivo con esporulaci&oacute;n abundante (<a href="/img/revistas/rfm/v35n4/a9f1.jpg" target="_blank">Figura 1A</a>), micelio de color caf&eacute; oscuro con esporulaci&oacute;n escasa (<a href="/img/revistas/rfm/v35n4/a9f1.jpg" target="_blank">Figura 1B</a>) o desarrollo de ac&eacute;rvulos (<a href="/img/revistas/rfm/v35n4/a9f1.jpg" target="_blank">Figura 1C</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estos organismos fungosos provocan lesiones necr&oacute;ticas y marchitez de la corola; posteriormente colonizan todos los &oacute;rganos florales e inducen necrosis, marchitez y abscisi&oacute;n. No se encontraron antecedentes sobre el origen de la enfermedad; s&oacute;lo se hab&iacute;a documentado que las flores pueden sufrir antracnosis inducida por <i>Colletotrichum gloeos</i><i>porioides</i> (Penz.) Penz. &amp; Sacc. (Morton, 1987; Balerdi <i>et</i> <i>al.</i>, 2005). Tampoco hay registros sobre el comportamiento epid&eacute;mico de la necrosis floral.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Conocer el origen y progreso de una enfermedad permite identificar fases epid&eacute;micas cr&iacute;ticas como procesos de dispersi&oacute;n, periodos de mayor infecci&oacute;n, y condiciones clim&aacute;ticas que promueven el desarrollo del par&aacute;sito y la enfermedad. Estudios de esta naturaleza son necesarios para desarrollar un manejo fitosanitario sustentable y efectivo de la necrosis floral del mamey. Por ello, el presente estudio tuvo como objetivo determinar la etiolog&iacute;a y el progreso temporal de la enfermedad necrosis floral de mamey.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Sitio de estudio y aislamiento de hongos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En Alpoyeca, Guerrero, M&eacute;xico (17&deg; 40' LN y 98&deg; 31' LO, 960 m), en el a&ntilde;o 2005 se seleccionaron 30 &aacute;rboles de mamey de 20 a&ntilde;os de edad con flores necr&oacute;ticas y de cada uno se colectaron dos flores con necrosis, una de ellas con estructuras fungosas color verde&#45;olivo y la otra con signos fungosos color caf&eacute;&#45;oscuro; en total se recolectaron 60 flores enfermas. De cada flor se cortaron dos secciones de p&eacute;talos de 0.5 cm<sup>2</sup>, se lavaron con agua, se desinfestaron con hipoclorito de sodio a 1.0 % por 3 min, se lavaron tres veces con agua destilada est&eacute;ril, se secaron con toallas de papel y se sembraron en medio de cultivo papa&#45;dextrosa&#45;agar (PDA) (BD Bioxon&reg;, Becton Dickinson de M&eacute;xico). Las cajas de Petri estuvieron incubadas a 25 &deg;C con luz blanca por 3 d; las colonias fungosas que se desarrollaron se transfirieron individualmente a PDA, se incubaron a 25 &deg;C con luz blanca por 10 d, y se purificaron por cultivos monoconidiales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Pruebas de patogenicidad</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La patogenicidad de los hongos aislados se verific&oacute; en flores asintom&aacute;ticas de mamey en el verano del 2005 y el invierno del 2006. Cada hongo inoculado fue un tratamiento, m&aacute;s un testigo; la unidad experimental fue una flor. El in&oacute;culo se prepar&oacute; mediante cultivo individual de los hongos en PDA, a 25 &deg;C con luz blanca por 10 d. De cada hongo se prepar&oacute; una soluci&oacute;n conidial concentrada a 1 x 10<sup>3</sup> conidios mL<sup>&#45;1</sup>. Previo a la inoculaci&oacute;n, se seleccionaron 60 flores experimentales para cada tratamiento las cuales permanecieron adheridas al &aacute;rbol durante el estudio. Las flores de cada tratamiento se desinfestaron con hipoclorito de sodio a 0.5 % por 2 min, se enjuagaron tres veces con agua destilada est&eacute;ril y se asperjaron con 3 mL de soluci&oacute;n conidial. El testigo se asperj&oacute; con agua destilada est&eacute;ril. Las flores inoculadas se cubrieron durante los primeros 5 d con una bolsa de pl&aacute;stico desinfestada con alcohol y dentro se coloc&oacute; un algod&oacute;n est&eacute;ril humedecido con agua destilada est&eacute;ril. La incidencia de la necrosis floral por tratamiento se estim&oacute; con la ecuaci&oacute;n: <i>Ii = (&#931;ni / Ni)</i>, donde: <i>Ii</i> = incidencia de flores necr&oacute;ticas en el momento <i>i</i>; <i>ni</i> = n&uacute;mero de flores necr&oacute;ticas en el momento <i>i</i>; <i>Ni</i> = poblaci&oacute;n total de flores inoculadas. La evaluaci&oacute;n se realiz&oacute; a 3, 5, 8 y 12 d despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n (ddi). De tejidos infectados se reaislaron a los hongos en cultivo puro y se compararon morfol&oacute;gicamente con los aislamientos originales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica y molecular</b> <b>de fitopat&oacute;genos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los hongos pat&oacute;genos se identificaron con la clave taxon&oacute;mica para g&eacute;nero de Barnett y Hunter (2006). La especie de <i>Penicillium</i> se determin&oacute; con las referencias de Raper y Thom (1949) y Samson <i>et al.</i> (2004); la especie de <i>Pestalo</i><i>tiopsis</i> con las claves de Guba (1961) y Wei <i>et al.</i> (2005); y la especie de <i>Alternaria</i> con la clave de Rotem (1994).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ADN de los hongos fitopat&oacute;genos se extrajo con la t&eacute;cnica de Ahrens y Seem&uuml;ller (1992). La amplificaci&oacute;n de las regiones ITS1 e ITS2 de los genes ribosomales se hizo por PCR con los iniciadores ITS4 (TCC TCC GCT TAT TGA TAT GC) e ITS5 (GGA AGT AAA AGT CGT AAC AAG G) (White <i>et al.</i>, 1990), con la siguiente modificaci&oacute;n: agua ultrapura est&eacute;ril (13.22 &micro;L), soluci&oacute;n amortiguadora TBE 1X (2.5 &micro;L), MgCl<sub>2</sub> a 2.5 mM (2.08 &micro;L), dNTPs a 0.2 mM (2 &micro;L), iniciadores ITS4 e ITS5 a 20 &#961;mol (2&#956;L de cada uno), DNA polimerasa (Biogenica&reg;) a 1U (0.2 &#956;L), y muestra problema de ADN a 80 ng (1 &#956;L). El producto amplificado se purific&oacute; con el juego de Wizard (Promega&reg;) y se secuenci&oacute; con el analizador gen&eacute;tico modelo 3100 de Applied Biosystem&reg;. Las secuencias se analizaron con el programa Lasergene&reg; 2001, V5 (DNASTAR, Inc.) y se alinearon con la base de datos del banco de genes del National Center for Biotechnology Information (NCBI) (<a href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov" target="_blank">www.ncbi.nlm.nih.gov</a>). Las secuencias con el valor m&aacute;s alto de identidad se compararon con las de este estudio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Incidencia de la necrosis floral</b> <b>y an&aacute;lisis de epidemias</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El progreso temporal de la enfermedad se estudi&oacute; en 10 &aacute;rboles de mamey de tipo criollo de 25 a&ntilde;os de edad. En un huerto (HE1), sin manejo agron&oacute;mico, se eligieron cinco &aacute;rboles de 25 m de altura y copas entrelazadas. En otro huerto (HE2), con manejo agron&oacute;mico (podas, fertilizaci&oacute;n, riego), se seleccionaron cinco &aacute;rboles de 10 m de altura sin contacto foliar entre ellos. De cada &aacute;rbol se eligieron 400 botones florales en los que se estim&oacute; la incidencia de la enfermedad de mayo a agosto de 2005, en intervalos de 15 d, mediante la ecuaci&oacute;n citada en la secci&oacute;n "pruebas de patogenicidad". La intensidad de la enfermedad por &aacute;rbol se calcul&oacute; con el &aacute;rea bajo la curva del progreso de la enfermedad (abcpe) obtenida por el m&eacute;todo de integraci&oacute;n trapezoidal (Campbell y Maden, 1990).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El modelo epidemiol&oacute;gico para cada &aacute;rbol experimental se obtuvo con los datos porcentuales de incidencia estandarizados por el m&eacute;todo de Haldane (1956), y se transformaron con: logaritmo (incidencia), log (1/(1&#45;incidencia), log (incidencia/(1&#45;incidencia)) y &#45;log (&#45;log (incidencia)). La incidencia a trav&eacute;s del tiempo se ajust&oacute; con los modelos matem&aacute;ticos exponencial, monomolecular, log&iacute;stico y Gompertz (Campbell y Madden, 1990). El modelo elegido para cada epidemia fue el que dio el mayor coeficiente de determinaci&oacute;n (R<sup>2</sup>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para comparar las epidemias fue necesario homologar los modelos exponencial, monomolecular y log&iacute;stico con el modelo Gompertz. La homologaci&oacute;n se hizo con los par&aacute;metros <i>rho</i> y <i>k</i><sub><i>G</i></sub> estimados de los tres primeros modelos: <i>rho = k / ((m x 2) + 2)</i> (Richards, 1959), donde <i>rho</i> = tasa de homologaci&oacute;n entre epidemias; <i>k</i> = tasa de incremento de la enfermedad del modelo a homologar; <i>m</i> adquiere valores de 0, 1 y 2 para los modelos monomolecular, Gompertz y log&iacute;stico, respectivamente; <i>k</i><sub><i>G</i></sub> = <i>rho x ((m x 2) + 2)</i>, donde <i>k</i><sub><i>G</i></sub> = tasas homologadas al modelo de Gompertz; <i>m</i> = 1, debido a que las tasas de incremento se homologan al modelo Gompertz.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estudios de correlaci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se analiz&oacute; la relaci&oacute;n del progreso temporal de la enfermedad con temperatura (&deg;C), humedad relativa (%) y velocidad del viento (km h<sup>&#45;1</sup>), de mayo a agosto de 2005, mediante el coeficiente de correlaci&oacute;n de Pearson (<i>r</i>); tambi&eacute;n se relacion&oacute; la densidad conidial de <i>Alternaria</i> sp. y <i>Pestalotiopsis</i> sp. de enero a diciembre de 2007, con los siguientes intervalos de las variables clim&aacute;ticas: temperatura (&#8804;  19.9, 20&#45;25, 25.1&#45;30, 30.1&#45;35, &#8805; 35.1), humedad relativa (&#8804;  50, 51&#45;60, 61&#45;70, 71&#45;80, 81&#45;90, &#8805; 91) y velocidad del viento (&#8804;  2, 2.1&#45;5, &#8805; 5.1).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Variables clim&aacute;ticas y monitoreo de esporas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las variables clim&aacute;ticas se registraron con una estaci&oacute;n meteorol&oacute;gica Vantage Pro&reg; modelo 6310 (Davis Instruments) en intervalos de 2 h, de mayo a agosto de 2005. La consola se automatiz&oacute; con el programa WeatherLink&reg; versi&oacute;n 5.4 para Windows (Davis Instruments). La densidad diaria de esporas en el aire de <i>Alternaria</i> spp. y <i>Pestalotiopsis</i> spp. se cuantific&oacute; de enero a diciembre de 2007 con una trampa volum&eacute;trica tipo Burkard (Gadoury y MacHardy, 1983), modificada por Mora (2000) (Com. personal<sup><a href="#notas">1</a></sup>). Las esporas capturadas por impacto sobre una cinta adhesiva transparente de polipropileno (Contac&reg;) se cuantificaron con microscop&iacute;a de luz.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Hongos aislados</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De 60 secciones de p&eacute;talos necr&oacute;ticos con signos fungosos color verde&#45;olivo se aisl&oacute; a <i>Penicillium</i> sp. (100 %) y a <i>Pestalotiopsis</i> sp. (15 %). De 60 secciones de p&eacute;talos necr&oacute;ticos con micelio caf&eacute;&#45;oscuro se aisl&oacute; a <i>Alternaria</i> sp. (100 %), <i>Penicillium</i> sp. (30 %) y <i>Pestalotiopsis</i> sp. (10 %). De p&eacute;talos asintom&aacute;ticos se aisl&oacute; a <i>Pestalotiopsis</i> sp. (80 %).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Pruebas de patogenicidad</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las flores inoculadas con <i>Penicillium</i> sp. desarrollaron signos fungosos de color verde&#45;olivo. A 3 ddi el hongo coloniz&oacute; p&eacute;talos, estambres, ovario y s&eacute;palos en 60 y 52 % de las flores experimentales en verano e invierno (V/I); a 5 ddi se detectaron lesiones necr&oacute;ticas y marchitez de corola en 80 y 75 % de las flores de V/I; y a 8 ddi la incidencia de necrosis y abscisi&oacute;n floral final fue de 95 y 92 % (<a href="/img/revistas/rfm/v35n4/a9f2.jpg" target="_blank">Figura 2A</a>). Las flores inoculadas con <i>Alternaria</i> sp. desarrollaron micelio de color caf&eacute; oscuro; este hongo coloniz&oacute; p&eacute;talos, estambres, ovario y s&eacute;palos en 45 y 42 % de las flores experimentales de V/I, a 5 ddi; a 8 ddi caus&oacute; marchitez y necrosis floral con abundante desarrollo micelial (<a href="/img/revistas/rfm/v35n4/a9f2.jpg" target="_blank">Figura 2B</a>) y a 12 ddi la incidencia de pudrici&oacute;n y abscisi&oacute;n floral fue de 85 y 76 %. <i>Pestalotiopsis</i> sp. produjo ac&eacute;rvulos y necros&oacute; la corola en 55 y 38 % de las flores de V/I, a 5 ddi; a 8 ddi, 70 y 65 % de las flores de V/I presentaron necrosis y ca&iacute;da de p&eacute;talos, con pudrici&oacute;n de c&aacute;liz y ped&uacute;nculo (<a href="/img/revistas/rfm/v35n4/a9f2.jpg" target="_blank">Figura 2C</a>). En las flores testigo, 53.3 % de verano y 33.3 % de invierno, se desarrollaron ac&eacute;rvulos de <i>Pestalotiopsis</i> a 8 ddi (<a href="/img/revistas/rfm/v35n4/a9f2.jpg" target="_blank">Figura 2D</a>), lo cual evidenci&oacute; una infecci&oacute;n preexistente del hongo debido a su h&aacute;bito end&oacute;fito en los &aacute;rboles de mamey (G&oacute;mez <i>et al.,</i> 2009). Los s&iacute;ntomas reproducidos en flores inoculadas fueron similares a los que se presentaron por infecci&oacute;n natural en Alpoyeca, Gro.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica</b> <b>y molecular de fitopat&oacute;genos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Penicillium olsonii</i> Bainier y Sartory.</b> La colonia de 10 d de edad crecida en medio de cultivo con extracto de malta (MEA) exhibi&oacute; color verde olivo con micelio a&eacute;reo, algodonoso y septado. Conidi&oacute;foros largos y rectos, penicilo terverticilado y compacto con m&eacute;tulas de 9&#45;12 x 3.3&#45;5.5 &#956;m. Fi&aacute;lides en forma de botella con cuello corto de 9.3&#45;9.8 x 2.3&#45;2.6 &#956;m. Amerosporas ovoides con pared rugosa de 3.4&#45;4 x 2.4&#45;2.9 &#956;m (<a href="/img/revistas/rfm/v35n4/a9f3.jpg" target="_blank">Figuras 3A&#45;3D</a>). Las caracter&iacute;sticas morfom&eacute;tricas de este aislamiento coinciden con las reportadas por Raper y Thom (1949) y Samson <i>et al.</i> (2004).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Alternaria alternata</i> (Fr.) Keissler.</b> La colonia en PDA a 15 d de incubaci&oacute;n exhibi&oacute; color caf&eacute; oscuro con micelio a&eacute;reo y septado. Conidi&oacute;foros erectos e individuales de 28.9&#45;49 x 3&#45;3.3 &#956;m. Dictiosporas obpiriformes o elipsoides de 22.3&#45;35.7 x 7.3&#45;12.6 &#956;m con longitud apical de 6.6&#45;8.9 &#956;m; 3&#45;5 transeptos, 1&#45;2 longiseptos, catenulados (6 a 10 conidios por cadena). Las caracter&iacute;sticas de este aislamiento concuerdan con las reportadas por Rotem (1994).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Pestalotiopsis paeoniicola</i> (Tsukamoto y Hino) J. G. Wei y T. Xu.</b> La colonia en PDA a 15 d de incubaci&oacute;n exhibi&oacute; color blanco con micelio a&eacute;reo, algodonoso y septado. Esporodoquios negros esparcidos en el medio de cultivo. Fragmosporas de cinco c&eacute;lulas, fusiformes o alantoides (rectos o ligeramente curvos) de 23.09&#45;26.73 x 6.08&#45;7.29 &#956;m (promedio 25 x 6.91 &#956;m); tres c&eacute;lulas intermedias de color caf&eacute; de 14.58 x 17.25 &#956;m (promedio 16.25 &#956;m); c&eacute;lula apical hialina de forma c&oacute;nica con dos o tres ap&eacute;ndices hialinos, sin ramificaciones, de 18.22 a 27.95 &#956;m de longitud (promedio 22.20 &#956;m). C&eacute;lula basal hialina de forma c&oacute;nica con un solo ap&eacute;ndice central hialino y sin ramificaciones (<a href="/img/revistas/rfm/v35n4/a9f4.jpg" target="_blank">Figuras 4A&#45;4C</a>). Relaci&oacute;n largo/ancho de los conidios 3.62:1. Las caracter&iacute;sticas de este aislamiento coinciden con las reportadas por Guba (1961), Wei <i>et al.</i> (2005) y G&oacute;mez <i>et al.</i> (2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las secuencias experimentales tuvieron 98, 95 y 97 % de identidad con los aislamientos de <i>Penicillium olsonii</i> (DQ123662), <i>Pestalotiopsis paeoniicola</i> (AY687310) y <i>Al</i><i>ternaria alternata</i> (AY714479) depositados en el banco de genes (NCBI, 2008). Antes de este estudio no se encontraron reportes de <i>P. olsonii</i>, <i>A. alternata</i> o <i>P. paeniicola</i> como pat&oacute;genos de flores de mamey; s&oacute;lo se hab&iacute;a documentado que las flores sufr&iacute;an antracnosis por el ataque de <i>C. gloeos</i><i>porioides</i> en Florida, EE. UU. (Balerdi <i>et al.</i>, 2005; Mossler y Crane, 2009); sin embargo la enfermedad no se consider&oacute; de importancia econ&oacute;mica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Incidencia de la necrosis floral</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La incidencia inicial (<i>Y</i><sub><i>o</i></sub>) de la enfermedad en flores de HE1 se present&oacute; a partir de la cuarta semana de mayo del 2005 y se increment&oacute; en los primeros 15 d hasta en 80 %. La incidencia final (<i>Y</i><sub><i>f</i></sub>) fue de 100 % a principios de agosto (<a href="/img/revistas/rfm/v35n4/a9f5.jpg" target="_blank">Figura 5A</a>). Mientras que la <i>Y</i><sub><i>o</i></sub> en flores de HE2 se present&oacute; hasta la cuarta semana de junio del 2005, y en los primeros 15 d la incidencia se increment&oacute; hasta en 64 %.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En promedio, <i>Y</i><sub><i>f</i></sub> fue de 80 % en la tercera semana de agosto (<a href="/img/revistas/rfm/v35n4/a9f5.jpg" target="_blank">Figura 5B</a>). En el periodo de evaluaci&oacute;n la temperatura vari&oacute; de 22 a 25 &deg;C y la HR de 70 a 90 %.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La intensidad de enfermedad fue mayor en los &aacute;rboles experimentales de HE1 respecto a los &aacute;rboles de HE2. En HE1 la cantidad de enfermedad fluct&uacute;o de 3 278 a 4 514 unidades (abcpe) (<a href="/img/revistas/rfm/v35n4/a9f5.jpg" target="_blank">Figura 5A</a>) y en HE2 fluctu&oacute; de 2 225 a 3 618 unidades (<a href="/img/revistas/rfm/v35n4/a9f5.jpg" target="_blank">Figura 5B</a>). El comportamiento de las epidemias en ambos huertos puede explicarse por las condiciones contrastantes de manejo agron&oacute;mico del cultivo. En HE1 los &aacute;rboles experimentales fueron de 25 m de altura sin podas de saneamiento, con contacto entre ramas de &aacute;rboles vecinos que restringe la circulaci&oacute;n del aire y probablemente genera un microclima en el que la HR favorece el r&aacute;pido crecimiento de los hongos. Las ramas reproductivas de los &aacute;rboles en HE1 permanecieron mojadas por m&aacute;s tiempo en verano y tuvieron agua libre (condensada) por m&aacute;s tiempo que en HE2. En contraste, los &aacute;rboles en HE2 de 10 m de altura no tuvieron contacto entre ramas de &aacute;rboles vecinos, y posiblemente la mejor ventilaci&oacute;n retras&oacute; el crecimiento de los hongos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de epidemias</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En HE1, 60 % de las epidemias se ajustaron al modelo Gompertz (R<sup>2</sup> = 0.93, 0.92 y 0.78), 20 % al monomolecular (R<sup>2</sup> = 0.99) y 20 % al log&iacute;stico (R<sup>2</sup> = 0.70) (<a href="/img/revistas/rfm/v35n4/a9c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). En HE2, 40 % de las epidemias fueron descritas por el modelo Gompertz (R<sup>2</sup> = 0.98 y 0.87), igual porcentaje se ajust&oacute; al log&iacute;stico (R<sup>2</sup> = 0.94 y 0.96), y 20 % fue descrito por el monomolecular (R<sup>2</sup> = 0.75). El modelo epidemiol&oacute;gico para cada &aacute;rbol experimental, as&iacute; como los par&aacute;metros de homologaci&oacute;n (<i>rho</i> y <i>k</i><sub><i>G</i></sub>) de los modelos monomolecular y log&iacute;stico, se muestran en el <a href="/img/revistas/rfm/v35n4/a9c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estudios de correlaci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La incidencia de la necrosis floral se relacion&oacute; con la humedad relativa de 65 a 75 % (<i>r</i> = 0.80) y con la velocidad del viento &#8804;  5 km h<sup>&#45;1</sup> (<i>r</i> = 0.75). La densidad conidial en el aire de <i>Alternaria</i> sp. y <i>Pestalotiopsis</i> sp. se asoci&oacute; con la humedad relativa de 70 a 90 % (<i>r</i><sub><i>Alternaria</i></sub> = 0.75 y <i>r</i><sub><i>Pestalotiopsis</i></sub> = 0.80), y con la velocidad del viento &#8804;  5 km h<sup>&#45;1</sup> para <i>Alternaria</i> sp. (<i>r</i><sub><i>Alternaria</i></sub> = 0.70). La temperatura de 20 a 25 &deg;C favoreci&oacute; a <i>Pestalotiopsis</i> sp. (<i>r</i><sub><i>Pestalotiopsis</i></sub> = 0.65).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los factores ambientales considerados fueron &uacute;tiles para el estudio epid&eacute;mico de la necrosis floral del mamey, porque permitieron conocer los intervalos que favorecen su desarrollo. Con un enfoque similar, Mora (2000; Com. Personal) estudi&oacute; la epidemiolog&iacute;a de la "escoba de bruja" (<i>Fu</i><i>sarium oxysporum</i> y <i>F. subglutinans</i>) del mango (<i>Mangifera</i> <i>indica</i>) en Michoac&aacute;n, y document&oacute; que la enfermedad se correlacion&oacute; con el n&uacute;mero de esporas de <i>Fusarium</i> spp., y el in&oacute;culo en el aire correlacion&oacute; con temperatura, humedad relativa, velocidad y direcci&oacute;n del viento. Seg&uacute;n Rotem (1994) y Timmer <i>et al.</i> (1998), los principales factores que intervienen en la liberaci&oacute;n de esporas de varias especies de hongos, entre ellos <i>Alternaria</i> spp., son humedad relativa, temperatura, luz roja e infrarroja, humedad de la hoja, velocidad del viento, vibraci&oacute;n de la hoja y los periodos de lluvia.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Conocer los factores ambientales que favorecen la esporulaci&oacute;n y liberaci&oacute;n de esporas ayuda a tomar medidas profil&aacute;cticas oportunas (aspersi&oacute;n de fungicidas, podas de ventilaci&oacute;n, etc.) para proteger temporalmente las etapas m&aacute;s susceptibles de las plantas, al reducir la liberaci&oacute;n de esporas (Gottwald <i>et al.</i>, 1997) y limitar el n&uacute;mero de infecciones potenciales. En el huerto de mamey de Alpoyeca, Gro. se capturaron esporas de <i>Alternaria</i> spp. y <i>Pestalotiop</i><i>sis</i> spp. en la mayor parte del a&ntilde;o, aunque la captura fue mayor durante la floraci&oacute;n de verano que ocurre de junio a noviembre, por lo que esta etapa fenol&oacute;gica (floraci&oacute;n) representa un sustrato altamente favorable para incrementar las poblaciones del hongo (presi&oacute;n de infecci&oacute;n), y a la vez identifica el periodo para ejercer un control qu&iacute;mico oportuno y racional.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con base en los modelos que describen el progreso de la enfermedad a trav&eacute;s del tiempo, se puede afirmar que estos tres pat&oacute;genos tienen un comportamiento polic&iacute;clico, por lo que aplicaciones previas durante la etapa fenol&oacute;gica susceptible y en las condiciones ambientales favorables para los hongos, tienen el potencial de reducir el impacto de la enfermedad en campo. No se encontraron estudios publicados para comparar la epidemiolog&iacute;a de las especies de hongos aqu&iacute; reportadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Penicillium olsonii y Alternaria alternata</i> se identificaron como agentes causales de la necrosis floral del mamey (<i>P.</i> <i>sapota</i>) en Alpoyeca, Guerrero, M&eacute;xico. La intensidad de la enfermedad se correlacion&oacute; principalmente con la humedad relativa (<i>r</i> = 0.80) y con la velocidad del viento &#8804;  5 km h<sup>&#45;1</sup> (<i>r</i> = 0.75). La esporulaci&oacute;n de <i>Alternaria alternata</i> y <i>Pestalotiopsis pa&eacute;oniicola</i> se asoci&oacute; con la humedad relativa (<i>r</i><sub><i>Alternaria</i></sub> = 0.75 y <i>r</i><sub><i>Pestalotiopsis</i></sub> = 0.80). Las epidemias de la necrosis floral del mamey en Alpoyeca, Guerrero se ajustaron al modelo Gompertz (50 %), log&iacute;stico (30 %) y monomolecular (20 %).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Ahrens U, E Seem&uuml;ller (1992)</b> Detection de DNA of plant pathogenic mycoplasmalike organisms by polymerase chain reaction that amplifies a sequence of the 16S rRNA gene. Phytopathology 82:828&#45;832.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085518&pid=S0187-7380201200040000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Azurdia C (2006)</b> Tres Especies de Zapote en Am&eacute;rica Tropical. Southampon Centre for Underutilised Crops, Universidad de Southampon, Southampon, UK. 216 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085520&pid=S0187-7380201200040000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Balerdi C F, J H Crane, I Maguire (2005)</b> Mamey sapote growing in the Florida Home Landscape. Horticultural Sciences Department, Florida Cooperative Extension Service, Institute of Food and Agricultural Sciences. University of Florida U.S.A. Document FC&#45;30. Disponible en: <a href="http://edis.ifas.ufl.edu" target="_blank">http://edis.ifas.ufl.edu</a> (Julio 2008).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085522&pid=S0187-7380201200040000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Barnett L H, B B Hunter (2006)</b> Illustrated Genera of Imperfect Fungi. 4th ed. The American Phytopathological Society. St. Paul, Minnesota, USA. 218 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085524&pid=S0187-7380201200040000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Campbell L C, L V Madden (1990)</b> Introduction to Plant Disease Epidemiology. John Wiley and Sons, Inc. New York, USA. 532 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085526&pid=S0187-7380201200040000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Gadoury M D, W E MacHardy (1983)</b> A 7&#45;day recording volumetric spore trap. Phytopathology 73:1526&#45;1531.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085528&pid=S0187-7380201200040000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>G&oacute;mez J R, D Nieto A, D T&eacute;liz O, A Mora A, M T Mart&iacute;nez D, M Vargas H (2009)</b> Evaluaci&oacute;n de la calidad e incidencia de hongos en frutos refrigerados de zapote mamey (<i>Pouteria sapota</i> (Jacq.) H.E. Moore y Stearn). Agrociencia 43:37&#45;48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085530&pid=S0187-7380201200040000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Gottwald T R, M T Trocine, W L Timmer (1997)</b> A computer&#45;controlled environmental chamber for the study of aerial fungal spore release. Phytopathology 87:1078&#45;1084.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085532&pid=S0187-7380201200040000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Guba E F (1961)</b> Monograph of Monochaetia and Pestalotia. Harvard University Press. Cambridge, Massachusetts, USA. 342 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085534&pid=S0187-7380201200040000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Haldane J B S (1956)</b> The estimation and significance of the logarithm of a ratio of frequencies. Ann. Human Genet. 20:309&#45;314.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085536&pid=S0187-7380201200040000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Morton J (1987)</b> Sapote: <i>In</i>: Fruits of Warm Climate. J Morton (ed). Miami, Florida, USA. pp:336&#45;346.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085538&pid=S0187-7380201200040000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Mossler M A, J Crane (2009)</b> Florida crop/pest management profile: mamey sapote and sapodilla. Florida Cooperative Extension Service, Institute of Food and Agricultural Sciences, University of Florida. University of Florida, Gainesville, Fl. U.S.A. Disponible en: <a href="http://edis.ifas.ufl.edu" target="_blank">http://edis.ifas.ufl.edu</a> (Septiembre 2010).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085540&pid=S0187-7380201200040000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>NCBI, National Center for Biotechnology Information (2008)</b> Blast&reg;. Disponible en: <a href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/" target="_blank">www.ncbi.nlm.nih.gov/</a> (Octubre 2008).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085542&pid=S0187-7380201200040000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Raper K B, C Thom (1949)</b> A Manual of the Penicillia. The Williams &amp; Wilkins Company. Baltimore, Maryland, USA. 875 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085544&pid=S0187-7380201200040000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Richards F J (1959)</b> A flexible growth function for empirical use. J. Exp. Bot. 10:290&#45;301.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085546&pid=S0187-7380201200040000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Rotem J (1994)</b> The Genus <i>Alternaria</i>. Biology, Epidemiology, and Pathogenicity. APS Press. St. Paul, Minnesota, USA. 326 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085548&pid=S0187-7380201200040000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Samson R A, E S Hoekstra, J C Frisvad (2004)</b> Introduction to Food&#45; and Airborne Fungi. 7th ed. ASM Press. Utrecht, Netherlands. 389 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085550&pid=S0187-7380201200040000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>SIAP, Servicio de Informaci&oacute;n Agroalimentaria y Pesquera (2011)</b> Agricultura. Disponible en: <a href="http://www.siap.gob.mx/index.php?option=com_wrapper&view=wrapper&Itemid=351" target="_blank">http://www.siap.gob.mx/index.php?option=com_wrapper&amp;view=wrapper&amp;Itemid=351</a> (Junio 2012).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085552&pid=S0187-7380201200040000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Timmer L W, Z Solel, T R Gottwald, M A Iba&ntilde;ez, E S Zitko (1998)</b> Environmental factors affecting production, release, and field populations of conidia of <i>Alternaria alternata</i>, the cause of brown spot of citrus. Phytopathology 88:1218&#45;1223.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085554&pid=S0187-7380201200040000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Wei J G, T Xu, L D Guo, H X Pan (2005)</b> Endophytic <i>Pestalotiopsis</i> species from Southern China. Mycosystema 24:481&#45;493.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085556&pid=S0187-7380201200040000900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>White T J, T D Bruns, S B Lee, J W Taylor (1990)</b> Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. <i>In</i>: PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications. M A Innis, D H Gelfand, J J Sninsky, T J White (eds). Academic Press, San Diego, CA, U.S.A. pp: 315&#45;322.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085558&pid=S0187-7380201200040000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><a name="notas"></a><b>NOTA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>1</sup> <b>Mora A A (2000)</b> Patog&eacute;nesis y epidemiolog&iacute;a de la "escoba de bruja" (<i>Fusarium subglutinans</i> (Wollenweb. &amp; Reinking) y <i>F. oxysporum</i> (Schlecht)) del mango (<i>Mangifera indica</i> L.) en Michoac&aacute;n, M&eacute;xico. Tesis Doctoral. Colegio de Postgraduados. Texcoco, M&eacute;xico. 107 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7085562&pid=S0187-7380201200040000900022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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