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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[La sustitución de la sabana nativa por plantaciones de pino y la variabilidad temporal en la biomasa microbiana y la mineralización del carbono y nitrógeno en el suelo]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Land use change and the temporal variability characteristic of the eastern plains of Venezuela are factors that have ecological impact on populations and microbial activities. Specifically, in this region, a large extension of native savanna has been replaced by plantations of Pinus caribaea var. hondurensis; however, little is known about the impact that this land use change produces in the quality of these soils. This study investigates the magnitude in which the microbial biomass and the parameters involved in the carbon (C) and nitrogen (N) mineralization activities are affected by land use change and temporal variability. The study was conducted during the dry and rainy periods. Microbial biomass was determined through the fumigation-extraction method (FE). Carbon mineralization activity was measured by determining the &#946;-glucosidase activity and N mineralization through arginine ammonification (AA) and protease-N&#945;-benzoyl-L-arginamide activity (protease-BAA).The results showed that these parameters are indicators of changes in soil quality. Land use change affected the microbial biomass and C and N mineralization rate. The higher microbial biomass in the pine plantation, as well as the lower C and N mineralization activity in this plantation, suggests that more of these nutrients are preserved in pine plantations, improving soil quality. The temporal dynamics of microbial biomass in the native savanna and in the pine plantation is not related to the temporal variability of C and N mineralization of these systems.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[amonificación de la arginina]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Divisi&oacute;n III</font></p> 	         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	         <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>La sustituci&oacute;n de la sabana nativa por plantaciones de pino y la variabilidad temporal en la biomasa microbiana y la mineralizaci&oacute;n del carbono y nitr&oacute;geno en el suelo</b></font></p> 	         <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>The substitution of native savanna by pine plantations, and the temporal variability in microbial</b> <b>biomass and carbon and nitrogen mineralization</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Yrma G&oacute;mez<sup>1</sup>*, Jorge Paolini<sup>2</sup> y R. M. Hern&aacute;ndez<sup>3</sup></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Universidad de Oriente, Laboratorio de Investigaciones Biol&oacute;gicas Apartado Postal 1231 Puerto la Cruz, Estado Anzo&aacute;tegui, Venezuela. *Autor responsable:</i> (<a href="mailto:irmagomez52@hotmail.com">irmagomez52@hotmail.com</a>).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>2</i></sup> <i>Instituto Venezolano de Investigaciones Cient&iacute;ficas (IVIC), Centro de Ecolog&iacute;a. Apartado Postal 21827, 1020&#45;A Caracas, Venezuela.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>3</i></sup> <i>Universidad Sim&oacute;n Rodr&iacute;guez IDECYT, Laboratorio de Biogeoqu&iacute;mica. Apartado Postal 47925, 1041&#45;A Caracas, Venezuela.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: noviembre de 2007.    <br> 	Aceptado: enero de 2010.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El cambio de uso de la tierra y la variabilidad temporal caracter&iacute;stica de los llanos orientales de Venezuela, son factores que tienen impacto ecol&oacute;gico sobre las poblaciones y actividades microbianas. Espec&iacute;ficamente, en esta regi&oacute;n, una gran extensi&oacute;n de sabanas nativas, ha sido reemplazada por plantaciones de <i>Pinus caribaea</i> var. <i>hondurensis;</i> sin embargo, se conoce poco sobre el impacto que este cambio de uso de la tierra produce en la calidad de los suelos. Este estudio investiga la magnitud en la cual la biomasa microbiana y los par&aacute;metros involucrados en las actividades mineralizadoras del carbono (C) y el nitr&oacute;geno (N) son afectados por el cambio de uso de la tierra y la variabilidad temporal. El estudio se realiz&oacute; durante los per&iacute;odos de sequ&iacute;a y lluvias. La biomasa microbiana se determin&oacute; a trav&eacute;s del m&eacute;todo de la fumigaci&oacute;n&#45;extracci&oacute;n (FE). La actividad mineralizadora del C no se realiz&oacute; determinando la actividad de la &#946;&#45;glucosidasa, y la mineralizaci&oacute;n del N a trav&eacute;s de la amonificaci&oacute;n de la arginina (AA) y la actividad de la proteasa&#45;N&#945;&#45;benzoil&#45; L&#45;arginamida (proteasa&#45;BAA). Los resultados evidenciaron que estos par&aacute;metros son indicadores de variaciones en la calidad del suelo. El cambio de uso de la tierra afect&oacute; la biomasa microbiana y la tasa de mineralizaci&oacute;n del C y el N. La mayor biomasa microbiana presente en la plantaci&oacute;n de pino, as&iacute; como la menor actividad mineralizadora del C y el N en esta plantaci&oacute;n, sugieren, que una mayor preservaci&oacute;n de estos nutrientes ocurre en pinares; lo cual favorece la calidad del suelo. La din&aacute;mica temporal de la biomasa microbiana en la sabana nativa y en la plantaci&oacute;n de pino no est&aacute; acoplada a la variaci&oacute;n temporal de la mineralizaci&oacute;n del C y el N de estos sistemas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> amonificaci&oacute;n de la arginina, carbono microbiano, nitr&oacute;geno microbiano, &#946;&#45;glucosidasa, proteasa&#45;BAA.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>SUMMARY</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Land use change and the temporal variability characteristic of the eastern plains of Venezuela are factors that have ecological impact on populations and microbial activities. Specifically, in this region, a large extension of native savanna has been replaced by plantations of <i>Pinus caribaea</i> var. <i>hondurensis;</i> however, little is known about the impact that this land use change produces in the quality of these soils. This study investigates the magnitude in which the microbial biomass and the parameters involved in the carbon (C) and nitrogen (N) mineralization activities are affected by land use change and temporal variability. The study was conducted during the dry and rainy periods. Microbial biomass was determined through the fumigation&#45;extraction method (FE). Carbon mineralization activity was measured by determining the &#946;&#45;glucosidase activity and N mineralization through arginine ammonification (AA) and protease&#45;N&#945;&#45;benzoyl&#45;L&#45;arginamide activity (protease&#45;BAA).The results showed that these parameters are indicators of changes in soil quality. Land use change affected the microbial biomass and C and N mineralization rate. The higher microbial biomass in the pine plantation, as well as the lower C and N mineralization activity in this plantation, suggests that more of these nutrients are preserved in pine plantations, improving soil quality. The temporal dynamics of microbial biomass in the native savanna and in the pine plantation is not related to the temporal variability of C and N mineralization of these systems.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> arginine amonification, &#946;&#45;glucosidase, microbial carbon, microbial nitrogen, protease&#45;BAA.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En Venezuela una gran extensi&oacute;n (615 000 ha) de las llanuras orientales ha sido sustituida por plantaciones de pino caribe <i>(Pinus caribaea</i> var. <i>hondurensis</i> Barr. y Golf.); sin embargo, a pesar de la importancia y magnitud de este desarrollo forestal, el cual constituye la plantaci&oacute;n monoespec&iacute;fica m&aacute;s grande del tr&oacute;pico (Cede&ntilde;o <i>et al.,</i> 2001), se conoce poco sobre el impacto que este cambio de uso de la tierra y la variabilidad temporal tienen sobre la biomasa microbiana y sus actividades. La importancia de este estudio radica fundamentalmente, en que la actividad microbiana es responsable en gran medida, entre otras cosas, de los procesos de transformaci&oacute;n y descomposici&oacute;n de los residuos org&aacute;nicos, y del ciclaje de los nutrientes, factores que influyen sobre la fertilidad del suelo, la productividad, y por ende sobre la calidad del mismo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dado que la biomasa microbiana y la mineralizaci&oacute;n de la materia org&aacute;nica son par&aacute;metros que est&aacute;n determinados por la acumulaci&oacute;n y calidad de la materia org&aacute;nica incorporada al suelo, por cada una de las especies vegetales que caracterizan a los ecosistemas, as&iacute; como por las condiciones f&iacute;sicas y qu&iacute;micas del suelo y la actividad microbiana (Swift <i>et al.,</i> 1979), es de esperarse que la sustituci&oacute;n de la sabana nativa por plantaciones de pino caribe en Uverito, provoque cambios en la estructura de las poblaciones microbianas, la tasa de los procesos biogeoqu&iacute;micos y la calidad del suelo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la actualidad, es posible la detecci&oacute;n temprana de cambios de la calidad del suelo a trav&eacute;s de diversos par&aacute;metros biol&oacute;gicos. Entre los par&aacute;metros microbiol&oacute;gicos usados como indicadores altamente sensibles, ante el efecto de las pr&aacute;cticas de manejo y cambios de uso de la tierra, est&aacute; la biomasa microbiana (Anderson y Domsch, 1993; Sparling, 1997; Yeates y Saggar, 1998), la cual a pesar de constituir el reservorio m&aacute;s l&aacute;bil del C y el N (Jenkinson y Ladd, 1981), determina la productividad de los ecosistemas. El carbono de la biomasa microbiana (Cmic) permite predecir, en un corto plazo, la sustentabilidad de las pr&aacute;cticas de manejo del suelo y del cambio de uso de la tierra (Goberna <i>et al.,</i> 2007), mientras que el nitr&oacute;geno microbiano (Nmic) es un indicador importante para la cuantificaci&oacute;n de la din&aacute;mica del N en los ecosistemas, ya que &eacute;ste controla la disponibilidad y las p&eacute;rdidas del N en el suelo (Moore <i>et al.,</i> 2000).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Entre los par&aacute;metros bioqu&iacute;micos que dan informaci&oacute;n sobre la din&aacute;mica del C y el N en el suelo, est&aacute;n las actividades de la &#946;&#45;glucosidasa, la proteasa&#45;N&#945;&#45;Benzoil&#45;L&#45;arginamida (BAA) y la amonificaci&oacute;n de la arginina (AA). La determinaci&oacute;n de la actividad de la &#946;&#45;glucosidasa, es importante por su papel clave en el ciclaje de la materia org&aacute;nica del suelo y es un par&aacute;metro bioqu&iacute;mico de gran utilidad para monitorizar la calidad del mismo (Bandick y Dick, 1999; Turner <i>et al.,</i> 2002). Mientras que la actividad de la proteasa&#45;BAA y la amonificaci&oacute;n de la arginina, brindan informaci&oacute;n sobre la tasa de mineralizaci&oacute;n del N en el suelo. La primera es una enzima limitante en este proceso (Ladd y Paul, 1973), y la segunda se emplea como un &iacute;ndice de la mineralizaci&oacute;n del N (Bonde <i>et al.,</i> 2001.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dada la escasa informaci&oacute;n sobre estos aspectos en sabanas tropicales, y espec&iacute;ficamente en suelos de los llanos orientales de Venezuela, en esta investigaci&oacute;n se plante&oacute; como objetivo examinar el efecto de la sustituci&oacute;n de la sabana nativa por plantaciones de pino caribe, y de la variabilidad temporal, sobre el C y N microbiano y los par&aacute;metro bioqu&iacute;micos involucrados en las actividades mineralizadoras del C y el N en estos suelos. La determinaci&oacute;n de estos par&aacute;metros permitir&aacute; establecer, si este cambio de uso de la tierra afecta la biomasa microbiana, el ciclaje de nutrientes y la calidad del suelo.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>&Aacute;rea de estudio</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El &aacute;rea de estudio est&aacute; localizada en Uverito, Venezuela, a una altitud entre 50&#45;60 m. &Eacute;sta es parte de una antigua altiplanicie del Pleistoceno conocida como Mesa de Guanipa (Brito <i>et al.,</i> 1975). La sabana nativa de esta &aacute;rea est&aacute; dominada por una vegetaci&oacute;n herb&aacute;cea <i>(Trachypogon</i> spp.) con parches aislados de &aacute;rboles de bosques de vegetaci&oacute;n semidecidua <i>(Curatella americana, Bowdichia virgiloides</i> y <i>Byrsonimia crassifolia).</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La zona est&aacute; caracterizada por suelos altamente intemperizados y de baja fertilidad (Brito <i>et al.,</i> 1975), lo cual se explica por su origen e historia erosiva. Estos suelos han sido clasificados como Arenic Haplustox, Psamentic Haplustox y Oxic Haplustults (M&aacute;rquez <i>et al.,</i> 1994).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El muestreo fue llevado a cabo durante el per&iacute;odo de sequ&iacute;a, (marzo, valores promedio mensual: precipitaci&oacute;n 7.3 mm, evaporaci&oacute;n 254.39 mm) y lluvias (julio, valores promedio mensual: precipitaci&oacute;n 188.3 mm, evaporaci&oacute;n 154.46 mm). La media anual de la temperatura del aire durante estos per&iacute;odos vari&oacute; de 32.7 a 22.4 &deg;C, y la temperatura del suelo registrada en los primeros 10 cm de profundidad vari&oacute; de 34.5 a 28.1 &deg;C durante las temporadas de sequ&iacute;a y lluvia, respectivamente (Viz&aacute;es, 2004).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el &aacute;rea objeto de estudio se seleccionaron dos sitios: la sabana nativa (8&deg; 31' N, 62&deg; 38' O), considerada como control, y una plantaci&oacute;n de <i>P. caribaea</i> var. <i>hondurensis</i> de 29 a&ntilde;os de edad (8&deg; 39' N, 62&deg; 38' O).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cada una de ellas se demarcaron tres transeptos, a lo largo de los cuales se establecieron cinco puntos de muestreo. En cada punto se tomaron muestras por triplicado, las cuales se homogenizaron para formar tres muestras compuestas por transepto. Las muestras de suelo fueron recolectadas con un barreno a una profundidad de 0&#45;10 cm. La hojarasca del piso del bosque fue removida previo al muestreo. Las muestras fueron colocadas en bolsas pl&aacute;sticas, transferidas al laboratorio, tamizadas (2 mm) y almacenadas a 4 &deg;C hasta su an&aacute;lisis.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis f&iacute;sico y qu&iacute;mico del suelo</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de humedad fue determinado mediante un analizador de humedad y el pH del suelo se estim&oacute; en agua (1:5). El C org&aacute;nico total se estim&oacute; por el m&eacute;todo de oxidaci&oacute;n del dicromato de Walkey&#45;Black (Anderson e Ingram, 1993), el N total por el m&eacute;todo de Kjeldahl (Bremner, 1965) y la concentraci&oacute;n de P total por el m&eacute;todo colorim&eacute;trico del azul de molibdeno (Murphy y Riley, 1962) depu&eacute;s de un digesti&oacute;n n&iacute;trico&#45;percl&oacute;rica.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Biomasa microbiana</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El Cmic y el Nmic se determinaron por el m&eacute;todo de la fumigaci&oacute;n&#45;extracci&oacute;n (Sparling y West, 1988). Triplicados de 20 g de suelo a humedad de campo fueron estabilizados por cinco d&iacute;as, posteriormente fumigada con cloroformo libre de alcohol (Jenkinson y Polwson, 1976) e incubados por 24 h. Los controles permanecieron sin fumigar. Una vez evacuado el cloroformo las muestras se sometieron a extracci&oacute;n con 100 mL de K<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> 0.5 M.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El Cmic y el Nmic fueron calculados por diferencia entre el C y el N extra&iacute;dos de la soluci&oacute;n del suelo de las muestras fumigadas y no fumigadas. Para el c&aacute;lculo del Nmic y el Cmic se usaron factores de conversi&oacute;n (Brookes <i>et al.,</i> 1985; Vance <i>et al.,</i> 1987, respectivamente).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad de la</b> <b>&#946;&#45;glucosidasa</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad de la &#946;&#45;glucosidasa fue determinada por el m&eacute;todo de Eivazi y Tabatabai (1988). Un gramo de las muestras de suelo fueron incubadas a 37 &deg;C por 1 h con 4 mL del buffer universal modificado (BUM), ajustado a pH 6.0, y 1 mL de p&#45;nitrofenil&#45;&#946;&#45;lucopiranosido 25 mM como sustrato. La reacci&oacute;n fue detenida mediante la adici&oacute;n de 1 mL de CaCl<sub>2</sub> 0.5 M. El p&#45;nitrofenol liberado fue extra&iacute;do con 4 mL de la soluci&oacute;n amortiguadora trishidrometilaminometano (0.1 M pH 12) y determinado espectrofotom&eacute;tricamente a 420 nm. Los valores se expresaron en &#956;g de p&#45;nitrofenol g<sup>&#45;1</sup> h<sup>&#45;1</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>La actividad de la proteasa&#45;N&#945;&#45;benzoil&#45;L&#45;arginamida (proteasa&#45;BAA)</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad de la proteasa&#45;BAA se determin&oacute; por el m&eacute;todo descrito por Alef y Nannipieri (1995). Para ello, 1 g de suelo fue incubado por 90 min en una soluci&oacute;n buffer fosfato 0.2 M, pH 7. Como sustrato se emplearon 0.5 mL de N&#45;&#945;&#45;benzoil&#45;L&#45;argininamida (BAA). El volumen de la muestra fue completado a 10 mL con agua destilada y centrifugado a 1250 g por 10 min. El NH<sub>4</sub><sup>+</sup> liberado fue determinado por el m&eacute;todo del indofenol descrito por Kandeler y Gerber (1988) y medido con un espectrofot&oacute;metro a 660 nm. Los resultados fueron expresados en ug N&#45;NH<sub>4</sub><sup>+</sup> g<sup>&#45;1</sup> h<sup>&#45;1</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Amonificaci&oacute;n de la arginina</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La amonificaci&oacute;n de la arginina (AA) fue determinada por triplicado seg&uacute;n el m&eacute;todo descrito por Alef y Kleiner (1986). A 2 g de suelo a humedad de campo se le a&ntilde;adieron gota a gota 0.5 mL de una soluci&oacute;n de arginina (0.2% en agua). Las muestras fueron incubadas por 4 h a 37 &deg;C y extra&iacute;das con 8 mL de KCl (2 M). Luego fueron agitadas por 30 min y centrifugadas a 1250 g por 10 min.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El amonio liberado en cada extracto fue determinado espectrofotom&eacute;tricamente a 600 nm por el m&eacute;todo del indofenol utilizando salicilato de sodio e hipoclorito de sodio (Kandeler y Gerber, 1988). Los resultados fueron expresados en ug N&#45;NH<sub>4</sub><sup>+</sup> g<sup>&#45;1</sup> h<sup>&#45;1</sup>.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;sticos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Todos los an&aacute;lisis se realizaron por triplicado y los datos fueron tratados estad&iacute;sticamente mediante un an&aacute;lisis de varianza de dos v&iacute;as para determinar el efecto del cambio de uso de la tierra, la variabilidad temporal y la interacci&oacute;n de ambos factores. Los an&aacute;lisis se realizaron a trav&eacute;s del programa estad&iacute;stico SPSS.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis f&iacute;sico y qu&iacute;mico de los suelos de Uverito refleja que &eacute;stos son arenosos en su horizonte superficial (en promedio es de 86.64%), lo cual permite un drenaje excesivo, efecto que explica el bajo contenido de humedad de los mismos (1.9% durante la &eacute;poca seca y 4.1 % durante la &eacute;poca lluviosa). Son suelos fuertemente &aacute;cidos (pH 3.5 &#45; 4.9) que poseen una fertilidad natural muy baja, en los cuales el contenido de C org&aacute;nico total no supera los 3 g kg<sup>&#45;1</sup>, el N total var&iacute;a entre 0.1 y 0.4 g kg<sup>&#45;1</sup> y el contenido de P total entre 25 y 36 mg kg<sup>&#45;1</sup> (<a href="../img/revistas/tl/v28n2/a7c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Estas son caracter&iacute;sticas que constituyen factores altamente limitantes para las poblaciones microbianas y sus actividades.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Biomasa microbiana</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La sustituci&oacute;n de la sabana nativa por plantaciones de pino caribe provoc&oacute; un incremento significativo (P &lt; 0.001) del C microbiano (Cmic) y del nitr&oacute;geno microbiano (Nmic) en el suelo (<a href="../img/revistas/tl/v28n2/a7f1.jpg" target="_blank">Figura 1A</a> y <a href="../img/revistas/tl/v28n2/a7f1.jpg" target="_blank">B</a>). Este incremento, puede estar relacionado en parte a las mejores condiciones microclim&aacute;ticas, y al mayor contenido de C presente en el pinar con respecto a la sabana nativa, as&iacute; como a la composici&oacute;n y eficiencia de la comunidad microbiana en la utilizaci&oacute;n del sustrato disponible presente en este sistema forestal. G&oacute;mez <i>et al.</i> (2008) informaron sobre valores m&aacute;s bajos del cociente metab&oacute;lico (qCO<sub>2</sub>) en Uverito con respecto a la sabana nativa, lo cual indica una mayor eficiencia en la utilizaci&oacute;n del C para la s&iacute;ntesis celular bajo este sistema. Estos par&aacute;metros microbiol&oacute;gicos sugieren que una cantidad significativa de C se encuentra preservada en el suelo de esta zona, por lo que este sistema podr&iacute;a contribuir, no s&oacute;lo con su biomasa a&eacute;rea y subterr&aacute;nea, sino tambi&eacute;n con la biomasa microbiana del suelo, a la captura de parte del CO<sub>2</sub> emitido hacia la atm&oacute;sfera.</font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En contraste, al efecto de la sustituci&oacute;n del sistema de sabanas por pinares sobre la biomasa microbiana, la variaci&oacute;n temporal no ejerci&oacute; un efecto significativo sobre el Cmic y el Nmic presentes en ambos sistemas (<a href="../img/revistas/tl/v28n2/a7f1.jpg" target="_blank">Figura 1A</a> y <a href="../img/revistas/tl/v28n2/a7f1.jpg" target="_blank">B</a>). Estos resultados coinciden con los informes de Luizao <i>et al.</i> (1992) en estudios realizados para suelos de zonas tropicales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>&#946;&#45;glucosidasa</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El cambio de uso de la tierra provoc&oacute; una variaci&oacute;n significativa (P &lt; 0.001) sobre la actividad de la &#946;&#45;glucosidasa (<a href="../img/revistas/tl/v28n2/a7f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). Los mayores valores de la actividad de esta enzima en la sabana nativa, evidenciaron que en &eacute;sta ocurre una mayor tasa de mineralizaci&oacute;n del C, efecto atribuido a la mejor calidad de la materia org&aacute;nica incorporada al suelo, la cual est&aacute; caracterizada por un sustrato celul&oacute;sico con baja relaci&oacute;n C/N, de m&aacute;s f&aacute;cil degradaci&oacute;n que el del pinar, el cual posee una alta relaci&oacute;n C/N (Pastor <i>et al.,</i> 1987). En el caso espec&iacute;fico de los tejidos del <i>P. caribaea</i> y otras especies del g&eacute;nero, &eacute;stos poseen un alto contenido de compuestos recalcitrantes (Paul y Clark 1989; Barnola <i>et al.,</i> 1997), que afectan la actividad microbiana y la mineralizaci&oacute;n del C y de otros nutrientes contenidos en sus residuos (Martens <i>et al.,</i> 2000).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La variabilidad temporal afect&oacute; significativamente la actividad de la &#946;&#45;glucosidasa, la cual mostr&oacute; una mayor tasa de la mineralizaci&oacute;n del C durante la temporada lluviosa, efecto asociado a las mejores condiciones de humedad, temperatura y actividad microbiana, factores que influyen sobre la actividad microbiana y controlan los procesos de descomposici&oacute;n de la materia org&aacute;nica (Maire <i>et al.,</i> 1999). Las mejores condiciones de humedad favorecen el proceso de mineralizaci&oacute;n de la materia org&aacute;nica que permanece acumulada durante el per&iacute;odo de sequ&iacute;a (Bottner, 1985).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Proteasa&#45;BAA</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La sustituci&oacute;n de la sabana nativa por plantaci&oacute;n de pino caribe provoc&oacute; un efecto significativo <i>(P</i> &lt; 0.001) sobre la actividad de la proteasa&#45;BAA, la cual fue mayor en la sabana nativa (4.83 &#956;g de N&#45;NH<sub>4</sub><sup>+</sup> g<sup>&#45;1</sup> h<sup>&#45;1</sup>) (<a href="../img/revistas/tl/v28n2/a7f3.jpg" target="_blank">Figura 3A</a>). Las diferencias en el grado de actividad de esta enzima, que se producen entre la sabana nativa y el pinar, est&aacute;n determinadas por las caracter&iacute;sticas qu&iacute;micas de la materia org&aacute;nica presente en los residuos de ambos sistemas. En el caso del pinar, la menor actividad de la proteasa&#45;BAA est&aacute; asociada al bajo contenido de N de las ac&iacute;culas de pino; as&iacute; como a la relaci&oacute;n C/N (Taylor <i>et al.,</i> 1989), al contenido de lignina (Fogel y Cromack, 1997) y a la relaci&oacute;n lignina/N presentes en estos residuos (Melillo <i>et al.,</i> 1982); caracter&iacute;sticas que determinan a su vez, la calidad de la materia org&aacute;nica para los organismos degradadores presentes en este sistema (Cornu <i>et al.,</i> 1997).</font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Otro factor importante asociado a las diferencias en la actividad mineralizadora del N en los sistemas de sabanas y pinares, son las poblaciones microbianas propias de cada una de ellos; as&iacute; como la actividad metab&oacute;lica de los mismos. Es posible, que ante la introducci&oacute;n del pino caribe, el cual no es nativo de la zona de estudio, el contenido qu&iacute;mico de sus hojas pudiese resultar en un sustrato inadecuado para mantener las poblaciones microbianas aut&oacute;ctonas de la zona, y favorecer a las poblaciones zim&oacute;genas, lo cual afecta la diversidad catab&oacute;lica en esta zona, y por ende la tasa de mineralizaci&oacute;n en estos suelos, en el cual domina el componente f&uacute;ngico (Scheu y Parkinson, 1994).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al igual que la actividad de la &#946;&#45;glucosidasa, la actividad de la proteasa&#45;BAA vari&oacute; con la temporada clim&aacute;tica (P &lt; 0.001), tanto en la sabana nativa como en la plantaci&oacute;n de pino caribe (<a href="../img/revistas/tl/v28n2/a7f3.jpg" target="_blank">Figura 3A</a>). Esta tendencia temporal de la actividad de la proteasa&#45;BAA, en ambos sistemas, confirma que una mayor tasa de mineralizaci&oacute;n del N se produce durante el per&iacute;odo de lluvias, lo cual coincide con los informes de Watanabe y Hayano (1996) y Wick <i>et al.</i> (2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Amonificaci&oacute;n de la arginina</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El cambio de uso de la tierra en Uverito influy&oacute; en forma significativa (P &lt; 0.000) sobre la AA, la cual mostr&oacute; su mayor actividad en la sabana nativa (<a href="../img/revistas/tl/v28n2/a7f3.jpg" target="_blank">Figura 3B</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este grado de actividad de la AA en la sabana nativa con respecto al pinar indica, que en &eacute;sta existe un mayor potencial para llevar a cabo la mineralizaci&oacute;n del N. Similares resultados han sido informados por Lin y Brookes (1999) y Saggar <i>et al.</i> (2001), quienes indicaron que en los sistemas de gram&iacute;neas se produce una mayor AA, en comparaci&oacute;n a los sistemas de bosques, y confirman los informes de Lilienfein <i>et al.</i> (2000), quienes se&ntilde;alaron que una reducida degradaci&oacute;n de la materia org&aacute;nica ocurr&iacute;a en los bosques de <i>P. caribaea</i> con respecto a la vegetaci&oacute;n del Cerrado (sabana tropical localizada en la regi&oacute;n de las llanuras altas de Brasil). Una vez m&aacute;s, estas diferencias est&aacute;n relacionadas a la calidad de los residuos y a la diversidad catab&oacute;lica caracter&iacute;stica de las poblaciones microbianas que se desarrollan en cada uno de estos sistemas, las cuales determinan la actividad mineralizadora en el suelo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aunque la AA ha sido considerada como un indicador de la biomasa microbiana del suelo (Alef y Kleiner, 1987; Leir&oacute;s <i>et al.,</i> 2000), en esta investigaci&oacute;n, &eacute;sta no mostr&oacute; el mismo patr&oacute;n experimentado por la biomasa microbiana frente al cambio de uso de la tierra y la variabilidad temporal (<a href="../img/revistas/tl/v28n2/a7f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a> y <a href="../img/revistas/tl/v28n2/a7f3.jpg" target="_blank">3B</a>), lo cual sugiere, que &eacute;sta parece ser un par&aacute;metro m&aacute;s eficiente en detectar las variaciones de la actividad mineralizadora del N, tal como lo informaron Bonde <i>et al.</i> (2001).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de este estudio confirman los se&ntilde;alamientos de Raubuch y Joergensen (2002), e indican que en la sabana nativa y en la plantaci&oacute;n de pino caribe, los patrones de variaci&oacute;n temporal del Cmic y Nmic no est&aacute;n acoplados al patr&oacute;n temporal de la mineralizaci&oacute;n del C y el N. Estas diferencias se deben a que en el suelo no s&oacute;lo se encuentran las enzimas bi&oacute;ticas provenientes de los microorganismos proliferantes, sino que tambi&eacute;n se encuentran las enzimas libres acumuladas en la fracci&oacute;n del suelo (Burns, 1982) las cuales act&uacute;an independientemente de las variaciones de la biomasa microbiana.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La temporada lluviosa increment&oacute; la AA tanto en la sabana nativa como en el pinar (<a href="../img/revistas/tl/v28n2/a7f3.jpg" target="_blank">Figura 3B</a>). La mayor actividad de la AA (2.2 &#956;g N&#45;NH<sub>4</sub><sup>+</sup> g<sup>&#45;1</sup> h<sup>&#45;1</sup>) ocurrida durante la temporada h&uacute;meda en los sistemas estudiados apoya los se&ntilde;alamientos de Bonde <i>et al.</i> (2001), referentes a que &eacute;sta responde r&aacute;pida y efectivamente a las lluvias, y confirma que una mayor mineralizaci&oacute;n del N se produce durante este per&iacute;odo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#45;&nbsp;La sustituci&oacute;n de la sabana nativa por pinares en Uverito, Venezuela afecta la calidad de suelo y el ciclaje del carbono y nitr&oacute;geno en &eacute;ste. El mayor contenido de carbono microbiano (Cmic) y nitr&oacute;geno microbiano (Nmic), y la menor tasa de mineralizaci&oacute;n del C y del N en el sistema de pinares, sugiere, que en este sistema ocurre una mayor preservaci&oacute;n de estos nutrientes en el suelo. En la plantaci&oacute;n de pino caribe, tanto la biomasa vegetal como la biomasa microbiana que se desarrolla en este sistema, pueden actuar como mitigadores del CO<sub>2</sub> que se libera a la atm&oacute;sfera. En contraste, el sistema de sabana promueve una menor calidad del suelo debido a su menor biomasa microbiana y mayor tasa de mineralizaci&oacute;n del C y el N.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#45;&nbsp;La din&aacute;mica temporal de la biomasa microbiana en la sabana nativa y en la plantaci&oacute;n de pino caribe no est&aacute; acoplada a la variaci&oacute;n temporal de la mineralizaci&oacute;n del C y el N en Uverito.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Alef, K. and D. Kleiner. 1986. Arginine ammonification a simple method to estimate microbial activity potentials in soils. Soil Biol. Biochem. 18: 233&#45;235.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806671&pid=S0187-5779201000020000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Alef, K. and D. Kleiner. 1987. Applicability of arginine ammonification as indicator of microbial activity in different soils. Biol. Fertil. Soils 5: 148&#45;151.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806673&pid=S0187-5779201000020000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Alef, K. and P. Nannipieri. 1995. Methods in applied soil microbiology and biochemistry. Academic Press. London, UK.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806675&pid=S0187-5779201000020000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Anderson, J. M. and J. S. Ingram. 1993. Tropical soil biology and fertility: A handbook of methods. CAB International, Wallingford, UK.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806677&pid=S0187-5779201000020000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Anderson,T. H. and K. H. Domsch. 1993. The metabolic quotient for CO<sub>2</sub> (qCO<sub>2</sub>) as a specific activity parameter to assess the effects of environmental conditions, such as pH, on the microbial biomass of forest soils. Soil Biol. Biochem. 25: 393&#45;395.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806679&pid=S0187-5779201000020000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bandick, A. K. and R. P. Dick. 1999. Field management effects on soil enzyme activities. Soil Biol. Biochem. 31: 1471&#45;1479.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806681&pid=S0187-5779201000020000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Barnola, L. F., M. Hasegawa, and A. Cede&ntilde;o. 1997. Mono and sesquiterpene variation in <i>Pinus caribaea</i> and its relationship to <i>Atta laevigata</i> herbivory. Biochem. Syst. Ecol. 22: 437&#45;455.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806683&pid=S0187-5779201000020000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bonde, T. A., T. H. Nielsen, M. Miller, and J. S&oslash;rensen. 2001. Arginine ammonification assay as a rapid index of gross N mineralization in agricultural soils. Biol. Fertil. Soils 34: 179&#45;184.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806685&pid=S0187-5779201000020000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bottner, P. 1985. Response of microbial biomass to alternate moist and dry conditions with<sup> 14</sup>C and <sup>15</sup>N labeled plant material. Soil Biol. Biochem. 17: 329&#45;337.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806687&pid=S0187-5779201000020000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bremner, J. M. 1965. Total nitrogen. pp. 1149 &#45; 1178. <i>In:</i> A. Black. (ed.). Methods of soil analysis. (Part 2). (Agronomy 9). American Society Agronomy. Madison, WI, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806689&pid=S0187-5779201000020000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brito, P., J. Comerma y R. Ca&ntilde;izales. 1975. Aptitud de las tierras de la zona de Chaguaramas, Estado Monagas, para la siembra de <i>Pinus caribaea.</i> Agron. Trop. 25: 295&#45;304.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806691&pid=S0187-5779201000020000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brookes, P. C., A. Landman, G. Pruden, and D. S. Jenkinson. 1985. Chloroform fumigation and the release of soil nitrogen: a rapid direct extraction method to measure microbial biomass nitrogen in soil. Soil Biol. Biochem. 17: 837&#45; 842.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806693&pid=S0187-5779201000020000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Burns, R. G. 1982. Enzyme activity in soil: location and a possible role in microbial ecology. Soil Biol. Biochem. 14: 423&#45;427.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806695&pid=S0187-5779201000020000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cede&ntilde;o, L., C. Carrero, W. Franco y A. Torres L. 2001. <i>Sphaeropsis sapinea</i> asociado con quema de cogollo muerte regresiva y c&aacute;ncer en troncos, ramas y ra&iacute;ces del pino caribe en Venezuela. Interciencia 26: 210&#45;215.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806697&pid=S0187-5779201000020000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cornu, S. F., R. C. C. Luizao, J. Rouiller, and Y. Lucas. 1997. Comparative study of litter decomposition and mineral element release in two Amazonian forest ecosystems: litter bag experiments. Pedobiologia 41: 456&#45;471.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806699&pid=S0187-5779201000020000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Eivazi, F. and M. A. Tabatabai. 1988. Glucosidase and galactosidase in soils. Soil Biol. Biochem. 20: 601&#45;606.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806701&pid=S0187-5779201000020000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fogel, R. and K. Cromack Jr. 1977. Effect of habitat and substrate quality on Douglas fir litter decomposition in western Oregon. Can. J. Bot. 55: 1632&#45;1640.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806703&pid=S0187-5779201000020000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Goberna, M., J. S&aacute;nchez, J. A. Pascual. and C. Garc&iacute;a. 2007. <i>Pinus halapensis</i> Mill. plantations did not restore organic carbon, microbial biomass and activity levels in a semiarid Mediterranean soil. App. Soil Ecol. 36: 107&#45;115.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806705&pid=S0187-5779201000020000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">G&oacute;mez, Y., J. Paolini y R. M. Hern&aacute;ndez. 2008. Efecto de la sustituci&oacute;n de la sabana nativa de los llanos orientales de Venezuela por plantaciones <i>Pinus caribaea</i> var. <i>hondurensis</i> (pinaceae) sobre par&aacute;metros indicadores de cambios en el contenido de carbono del suelo. Rev. Biol. Trop. 56: 2041&#45;2053.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806707&pid=S0187-5779201000020000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jenkinson, D. S. and D. S. Polwson. 1976. The effects of biocidal treatments on metabolism in soil&#45; I. Fumigation with chloroform. Soil Biol. Biochem. 8: 167&#45;177.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806709&pid=S0187-5779201000020000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jenkinson, D. S. and J. N. Ladd. 1981. Microbial biomass in soil: Measurement and turnover. pp. 415&#45;471 <i>. In:</i> E. A. Paul y J. N. Ladd (eds.). Soil biochemistry. Vol.5. Marcel Dekker, Nueva York, NY, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806711&pid=S0187-5779201000020000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kandeler, E. and H. Gerber. 1988. Short&#45;term assay of soil urease activity using colorimetric determination of ammonium. Biol. Fertil. Soils 6: 68&#45;72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806713&pid=S0187-5779201000020000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ladd, J. N. and E. A. Paul. 1973. Changes in enzymic activity and distribution of acid&#45;soluble, amino acid&#45;nitrogen in soil during nitrogen immobilization and mineralization. Soil Biol. Biochem. 5: 825&#45;840.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806715&pid=S0187-5779201000020000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Leir&oacute;s, M. C., C. Trasar&#45;Cepeda, S. Seoane, and F. Gil&#45;Sotres. 2000. Biochemical properties of acid soils under climax vegetation (Atlantic oakwood) in an area of the European temperate&#45;humid zone (Galicia, NW Spain): general parameters. Soil Biol. Biochem. 32: 733&#45;745.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806717&pid=S0187-5779201000020000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lilienfein, J., W. Wilcke, S. do Cormo Lima, L. Vilela, R. Thomas, and W. Zech. 2000. Nutrient concentrations in soil solution of some Brazilian Oxisols under conventional and no&#45;tillage systems in the early part of the rainy season. Aust. J. Soil Res. 38: 851&#45;866.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806719&pid=S0187-5779201000020000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lin, Q. and P. C. Brookes. 1999. Arginine ammonification as a method to estimate soil microbial biomass and microbial community structure. Soil Biol. Biochem. 31: 1985&#45;1997.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806721&pid=S0187-5779201000020000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Luizao, R. C. C., T. A. Bonde, and T. Rosswall. 1992. Seasonal variation of soil microbial biomass&#45; the effects of clearfelling a tropical rainforest and establishment of pasture in the central Amazon. Soil Biol. Biochem. 24: 805&#45;813.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806723&pid=S0187-5779201000020000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Maire, N., D. Borcard, E. Laczko, and W. Matthey. 1999. Organic matter cycling in grassland soils of the Swiss Jura mountains: biodiversity and strategies of the living communities. Soil Biol. Biochem. 31: 1281&#45;1293.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806725&pid=S0187-5779201000020000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">M&aacute;rquez, O., R. Hern&aacute;ndez G., W. Franco y F. Vis&aacute;ez. 1994. Factores ed&aacute;ficos y estado nutricional de plantaciones de <i>Pinus caribaea</i> en relaci&oacute;n a la muerte regresiva, en Uverito, Estado Monagas. Venesuelos. 2: 15&#45;18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806727&pid=S0187-5779201000020000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Martens, D. A. 2000. Plant residue biochemistry regulates soil carbon cycling and carbon sequestration. Soil Biol. Biochem. 32: 361&#45;369.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806729&pid=S0187-5779201000020000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Melillo, J. M., J. D. Aber, and J. F. Muratore. 1982. Nitrogen and lignin control of hardwood leaf litter decomposition dynamics. Ecology 63: 621&#45;626.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806731&pid=S0187-5779201000020000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Moore, J. M., S. Klose, and M. A. Tabatabai. 2000. Soil microbial biomass carbon and nitrogen as affected by cropping systems. Biol. Fertil. Soils 31: 200&#45;210.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806733&pid=S0187-5779201000020000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Murphy, J. and J. P. Riley. 1962. A modified single solution method for the determination of phosphate in natural water. Anal. Chem. Acta 27: 31&#45;36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806735&pid=S0187-5779201000020000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pastor, J., R. H. Gardner, V. H. Dale, and W. M. Post. 1987. Successional changes in nitrogen availability as a potential factor contributing to spruce declines in boreal North America. Can. J. For. Res. 17: 1394&#45;1400.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806737&pid=S0187-5779201000020000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Paul, E. A. and F. E. Clark. 1989. Soil microbiology and biochemistry. Academic Press. San Diego, CA, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806739&pid=S0187-5779201000020000700035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Raubuch, M. and R. G. Joergensen. 2002. C and net N mineralization in a coniferous forest soil: the contribution of the temporal variability of microbial biomass C and N. Soil Biol. Biochem. 34: 841&#45;849.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806741&pid=S0187-5779201000020000700036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Saggar, S., C. B. Hedley, and G. J. Salt. 2001. Soil microbial biomass, metabolic quotient, and carbon and nitrogen mineralization in 25&#45;year&#45;old <i>Pinus radiata</i> agroforestry regimes. Aust. J. Soil. Res. 39: 491&#45;504.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806743&pid=S0187-5779201000020000700037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Scheu, S. and D. Parkinson. 1994. Changes in bacterial and fungal biomass C, bacterial and fungal biovolume and ergosterol content after drying, remoistening and incubation of different layer of cool temperate forest soils. Soil Biol. Biochem. 26: 1515&#45;1525.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806745&pid=S0187-5779201000020000700038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sparling, G. P. 1997. Soil microbial biomass, activity and nutrient cycling as indicators of soil health. pp. 67&#45;119. <i>In:</i> C. E Pankhurst, B. M. Doube, and V. V. S. R. Gupta (eds.). Biological indicators of soil health. CABI. 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Plant Anal. 19: 327&#45;344.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806749&pid=S0187-5779201000020000700040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Swift, M. J., O. W. Heal, and J. M. Anderson. 1979. Decomposition in terrestrial ecosystems. Blackwell Scientific Publications. Witham, Essex, UK.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806751&pid=S0187-5779201000020000700041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Turner, B. L., D. W. Hopkins, P. M. Haygarth, and N. Ostle. 2002. &#946;&#45;Glucosidase activity in pasture soils. Appl. Soil Ecol. 20: 157&#45;162.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806753&pid=S0187-5779201000020000700042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tylor, B. R., D. Parkinson, and W. F. J. Parsons. 1989. Nitrogen and lignin content as predictors of litter decay rates: a microcosm test. Ecology 70: 97&#45;104.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806755&pid=S0187-5779201000020000700043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vance, E. D., P. C. Brookes, and D. S. Jenkinson. 1987. An extraction method for measuring soil with microbial biomass C. Soil Biol. Biochem. 19: 703&#45;707.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806757&pid=S0187-5779201000020000700044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vis&aacute;ez, F. J. 2004. Anuario climatol&oacute;gico para el per&iacute;odo 1991&#45;2004 en. CVG&#45;PROFORCA, CVG&#45;Productos Forestales de Oriente. El Merey, Venezuela.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806759&pid=S0187-5779201000020000700045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Watanabe, K. and K. Hayano. 1996. Seasonal variations in extracted protease's and relationship to overall soil protease and exchangeable ammonia in paddy soils. Biol. Fertil. Soils 21: 89&#45;94.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806761&pid=S0187-5779201000020000700046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wick, B., R. F. K&uuml;hne, K. Vielhauer, and P. L. G. Vlek. 2002. Temporal variability of selected soil microbial and biochemical indicators under different soil quality conditions in south&#45;western Nigeria. Biol. Fertil. Soils 35: 155&#45;167.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806763&pid=S0187-5779201000020000700047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yeates, G. W. and S. Saggar. 1998. Comparision of soil microbial properties and fauna under tussock&#45;grassland and pine plantation. J. Royal Soc. New Zealand 28: 523&#45;535.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9806765&pid=S0187-5779201000020000700048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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