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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Variación anual, diaria y en el dosel de compuestos nitrogenados en hojas de almendro y nectarina]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Traditionally, total leaf nitrogen has been used to indicate the nutritional status of orchard trees. With the objective of exploring new alternatives, in the present study we tested different nitrogen compounds as indicators and determined their variability in the tree canopy over time. The seasonal, diurnal and positional variability of nitrate, ammonium, soluble nitrogen (SN) extracted with formic acid 0.2 N, as well as total nitrogen (TN) were determined in the leaves of young field-grown almond (Prunus dulcis (Mill) D. A. Webb) and nectarine (Prunuspersica L. Batsch) trees. Over a 3 year period, four nitrogen treatments (0, 78, 157, and 313 g N tree-1 year-1) were established in field grown trees. The third year two treatments (0 and 157 g N tree-1 year-1), representing nitrogen deficiency and sufficiency, respectively, were chosen for leaf analysis. Both species showed high concentrations of ammonium, SN and TN at the beginning of season. However, in Nfertilized almond and nectarine trees, ammonium and SN tended to increase slightly during the day after 9:00 h. In contrast, nitrate exhibited the opposite trend. Leaf TN and SN concentrations decreased from the apical to the basal leaves while nitrate concentrations showed and opposite tendency and ammonium did not vary consistently. All the nitrogen compounds in the leaves of both species were sensitive to the nitrogen supplied. However, considering the variability of the nitrogen compounds over time, within tree canopies and, in particular, the variability among trees with the same fertilization treatment, it was concluded that TN was the best nitrogen indicator.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Divisi&oacute;n II</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Variaci&oacute;n anual, diaria y en el dosel de compuestos nitrogenados en hojas de almendro y nectarina</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Seasonal, diurnal, and within canopy variation of leaf nitrogen compounds in</b> <b>almond and nectarine leaves</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Rubio&#45;Covarrubias, Oswaldo A.<sup>1</sup>*, Patrick H. Brown<sup>2</sup> y Steven A. Weibaum<sup>2</sup></b></font></p>          <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i>&nbsp;Campo Experimental Valle de Toluca, INIFAP. km 45 carretera Toluca&#45;Zit&aacute;cuaro. 51350 Zinacantepec, Estado de M&eacute;xico. <sup>*</sup> Autor responsable</i> (<a href="mailto:oswaldorubio@terra.com.mx">oswaldorubio@terra.com.mx</a>).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup>&nbsp;Universidad de California, Departamento de Pomolog&iacute;a. Davis CA. 95616 USA.</i></font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: abril de 2008.    <br>     Aceptado: abril de 2009.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tradicionalmente se ha utilizado la concentraci&oacute;n de nitr&oacute;geno total en las hojas como indicador del estado nutricional de &aacute;rboles frutales. Con el prop&oacute;sito de comparar diferentes compuestos nitrogenados como indicadores del estado de este elemento en &aacute;rboles de almendro <i>(Prunus dulcis</i> (Mill) D. A. Webb) y de nectarina <i>(Prunus persica</i> L. Batsch), sometidos a niveles crecientes de fertilizante nitrogenado. Se determin&oacute; la variaci&oacute;n anual, diaria y en el dosel de la concentraci&oacute;n foliar de nitrato, amonio, nitr&oacute;geno soluble (NS) extra&iacute;dos con &aacute;cido f&oacute;rmico 0.2 N, as&iacute; como la de nitr&oacute;geno total (NT). Durante tres a&ntilde;os los &aacute;rboles se fertilizaron con cuatro tratamientos de nitr&oacute;geno (0, 78, 157 y 313 g N &aacute;rbol<sup>&#45;1</sup> a&ntilde;o<sup>&#45;1</sup>). El primero y segundo a&ntilde;o, muestras foliares de todos los tratamientos fueron analizadas durante la estaci&oacute;n de crecimiento, pero, al tercer a&ntilde;o se seleccionaron s&oacute;lo dos tratamientos (0 y 157 g N &aacute;rbol<sup>&#45;1</sup> a&ntilde;o<sup>&#45;1</sup>). Los &aacute;rboles de ambas especies mostraron las mayores concentraciones de amonio, NS y NT al inicio de la temporada de crecimiento. Las concentraciones de amonio y NS aumentaron durante el d&iacute;a despu&eacute;s de las 9:00 h, pero las correspondientes al nitrato presentaron una tendencia opuesta. La concentraci&oacute;n de NT y NS fue mayor en las hojas apicales que en las hojas basales, mientras que el nitrato mostr&oacute; una tendencia contraria y el amonio no vari&oacute; de manera consistente. Los resultados mostraron que los compuestos nitrogenados monitoreados en las hojas de ambas especies fueron sensibles a los dos niveles de nitr&oacute;geno. Sin embargo, considerando los resultados relacionados con la variabilidad durante el a&ntilde;o, durante el d&iacute;a, dentro del dosel de los &aacute;rboles y sobre todo con la variabilidad entre &aacute;rboles con el mismo tratamiento, se concluy&oacute; que el NT fue el mejor indicador en &aacute;rboles de almendro y nectarina.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Prunus dulcis</i>, <i>Prunus persica</i>, amonio, nitrato, nitr&oacute;geno soluble.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Traditionally, total leaf nitrogen has been used to indicate the nutritional status of orchard trees. With the objective of exploring new alternatives, in the present study we tested different nitrogen compounds as indicators and determined their variability in the tree canopy over time. The seasonal, diurnal and positional variability of nitrate, ammonium, soluble nitrogen (SN) extracted with formic acid 0.2 N, as well as total nitrogen (TN) were determined in the leaves of young field&#45;grown almond <i>(Prunus dulcis</i> (Mill) D. A. Webb) and nectarine <i>(Prunuspersica</i> L. Batsch) trees. Over a 3 year period, four nitrogen treatments (0, 78, 157, and 313 g N tree<sup>&#45;1</sup> year<sup>&#45;1</sup>) were established in field grown trees. The third year two treatments (0 and 157 g N tree<sup>&#45;1</sup> year<sup>&#45;1</sup>), representing nitrogen deficiency and sufficiency, respectively, were chosen for leaf analysis. Both species showed high concentrations of ammonium, SN and TN at the beginning of season. However, in Nfertilized almond and nectarine trees, ammonium and SN tended to increase slightly during the day after 9:00 h. In contrast, nitrate exhibited the opposite trend. Leaf TN and SN concentrations decreased from the apical to the basal leaves while nitrate concentrations showed and opposite tendency and ammonium did not vary consistently. All the nitrogen compounds in the leaves of both species were sensitive to the nitrogen supplied. However, considering the variability of the nitrogen compounds over time, within tree canopies and, in particular, the variability among trees with the same fertilization treatment, it was concluded that TN was the best nitrogen indicator.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> <i>Prunus dulcis</i>, <i>Prunus persica</i>, ammonium, nitrate, soluble nitrogen.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con los datos proporcionados por la FAO (2008), el consumo mundial de fertilizantes nitrogenados es de aproximadamente 127 820 000 Mg a&ntilde;o<sup>&#45;1</sup>. La cantidad de &eacute;stos empleada aumenta constantemente, as&iacute; como la preocupaci&oacute;n mundial por la contaminaci&oacute;n del agua que propicia su uso excesivo. La utilizaci&oacute;n correcta de los fertilizantes se basa principalmente en el diagn&oacute;stico nutricional apoyado en an&aacute;lisis de suelos y de las partes vegetativas de las plantas, y existe una b&uacute;squeda constante de compuestos nitrogenados en los tejidos de las plantas que sean sensibles a los cambios nutricionales que &eacute;stas experimentan (Demotes&#45;Mainard <i>et al.,</i> 2008). En diversas especies perennes se han empleado como indicadores del estado nutrimental del N ciertos compuestos nitrogenados de las hojas, como amino&aacute;cidos, nitrato, nitr&oacute;geno total (NT) y nitr&oacute;geno soluble (NS) (Taylor y Van den Ende, 1969; Prassad y Ravenwood, 1986; Balsberg, 1992; Gebler y Rennenberg, 2000; Fotelli <i>et al.,</i> 2002). La sensibilidad de estos compuestos a las aplicaciones del referido elemento se ha determinado con base en la magnitud y rapidez del cambio que experimenta su concentraci&oacute;n en la planta. Sin embargo, esta sensibilidad a la aplicaci&oacute;n de nitr&oacute;geno puede estar relacionada a variaciones asociadas a la &eacute;poca del a&ntilde;o, a la hora del d&iacute;a y a la posici&oacute;n de las hojas en los &aacute;rboles frutales (Righetti <i>et al.,</i> 1990). Para controlar estas variaciones, se han adoptado procedimientos que implican muestreos foliares durante los meses de julio y agosto (hemisferio norte) cuando la acumulaci&oacute;n de materia seca en las hojas es m&aacute;xima. Para evitar la acci&oacute;n de la nitrato reductasa se muestrea en las primeras horas del d&iacute;a, se seleccionan las hojas de la parte media de los brotes anuales que cesaron su crecimiento (Righetti <i>et al.,</i> 1990). En &aacute;rboles de durazno se ha demostrado que existe una disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n del NT en las hojas a medida que avanza la estaci&oacute;n de crecimiento (Taylor y May, 1967; Taylor y Van den Ende, 1969). Tambi&eacute;n se ha observado, en &aacute;rboles de durazno, que hay una estrecha relaci&oacute;n entre los contenidos elevados de N y la actividad fotosint&eacute;tica en las hojas situadas en la periferia del &aacute;rbol (DeJong <i>et al.,</i> 1989).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los estudios sobre la variaci&oacute;n del N en las hojas de almendro y nectarina se han realizado al analizar el NT (Taylor y May, 1967; Taylor y Van den Ende, 1969; Stassen <i>et al.,</i> 1981; DeJong <i>et al.,</i> 1989; Johnson <i>et al.,</i> 1995; Rufat y DeJong, 2001). Sin embargo, no se ha determinado la variabilidad de los compuestos solubles de N que podr&iacute;an servir como indicadores del estado nutricional de los &aacute;rboles, porque su movilidad y din&aacute;mica lo dificulta, aunque estas fracciones pudiesen ser indicadores m&aacute;s sensibles del estado nutricional del N que el propio NT.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el prop&oacute;sito de explorar la utilizaci&oacute;n de nitrato, amonio, NT y NS como indicadores del estado nutrimental nitrogenado de &aacute;rboles de almendro y nectarina, en el presente trabajo se determin&oacute; su variaci&oacute;n anual, diurna y en el dosel de individuos de estas especies tratados con dos niveles de N despu&eacute;s de tres a&ntilde;os de aplicaciones continuas de fertilizantes nitrogenados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&Aacute;rboles de un a&ntilde;o de edad de almendro <i>(Prunus dulcis</i> (Mill) D. A. Webb) y de nectarina <i>(Prunus persica</i> L. Batsch) se plantaron en dos lotes contiguos en marzo de 1992 en la huerta del Departamento de Pomolog&iacute;a de la Universidad de California en Davis, Estados Unidos. El suelo experimental es Xerofluvents M&oacute;lico, serie Yolo (USDA&#45;NRCS, 2002) de textura migaj&oacute;n limoso y pH neutro.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuatro tratamientos de N (0, 78, 157, y 313 g &aacute;rbol<sup>&#45;1</sup> a&ntilde;o<sup>&#45;1</sup> equivalentes a 0, 72.5, 145 y 290 kg ha<sup>&#45;1</sup>) fueron impuestos en 1992 y se repitieron en 1993 y 1994. El dise&ntilde;o experimental para cada especie de &aacute;rbol fue de bloques completos al azar. Cada parcela experimental estuvo constituida por un total de 24 &aacute;rboles de cada especie, agrupados en cuatro bloques de seis &aacute;rboles cada uno. La distancia entre los &aacute;rboles de almendro fue de 2.7 m y de 1.8 m entre los &aacute;rboles de nectarina. La distancia entre hileras en ambas especies fue de 6 m. Para evitar efectos de borde, las observaciones se tomaron &uacute;nicamente en los cuatro &aacute;rboles centrales de cada bloque.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La dosis de N anual, correspondiente a cada &aacute;rbol, se fraccion&oacute; en cinco aplicaciones iguales, realizadas cada mes entre marzo y julio. Como fuente de N se utiliz&oacute; sulfato de amonio, el cual se esparci&oacute; sobre la superficie del suelo, alrededor de cada &aacute;rbol, en c&iacute;rculo con un di&aacute;metro de 1.8 m. Inmediatamente despu&eacute;s, de cada aplicaci&oacute;n de fertilizante, los &aacute;rboles se regaron por microaspersi&oacute;n. Los &aacute;rboles recibieron una fertilizaci&oacute;n complementaria de 180 g &aacute;rbol<sup>&#45;1</sup> a&ntilde;o<sup>&#45;1</sup> de forma de sulfato de potasio; se realiz&oacute; en el mes de marzo durante los tres a&ntilde;os del estudio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El portainjerto de los &aacute;rboles de almendro y de nectarina fue la variedad de durazno "Nemaguard". El injerto de almendro fue la variedad "Mission&#45;Texas" y el de nectarina la variedad "Fantasia". La poda de los &aacute;rboles se hizo anualmente en el mes de febrero para darles forma de V (nectarinas) y de l&iacute;der central en los almendros. El riego se hizo por microaspersi&oacute;n de marzo a octubre, aplicando la l&aacute;mina de agua necesaria para mantener el nivel de humedad de los primeros 40 cm del suelo entre 60 y 100% de su capacidad de campo. El control de malezas se realiz&oacute; con una chapoleadora cada vez que se requer&iacute;a. Las plagas y enfermedades se controlaron con aplicaciones de insecticidas y fungicidas, llevadas a cabo cuando se observaba alg&uacute;n riesgo de ellas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La evaluaci&oacute;n del efecto de las dosis de N sobre el desarrollo de los &aacute;rboles se efectu&oacute; empleando tres criterios: (a) incremento en di&aacute;metro del tronco de los &aacute;rboles (a una altura de 45 cm del suelo) entre el inicio del experimento y 1994; (b) peso y n&uacute;mero de frutos, que s&oacute;lo se us&oacute; en el caso de nectarinas, ya que los almendros a&uacute;n no entraban en producci&oacute;n; y, (c) la concentraci&oacute;n foliar de nitrato, amonio, NS extra&iacute;dos con &aacute;cido f&oacute;rmico 0.2 N y NT.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al tercer a&ntilde;o despu&eacute;s de haber plantado los &aacute;rboles en el campo y de ser sometidos continuamente a los cuatro tratamientos de fertilizaci&oacute;n nitrogenada ya mencionados, se seleccionaron los tratamientos con 0 y 157 g &aacute;rbol<sup>&#45;1</sup> a&ntilde;o<sup>&#45;1</sup> de N para realizar en ellos el an&aacute;lisis foliar de los compuestos nitrogenados. Estos dos tratamientos se escogieron bas&aacute;ndose en el crecimiento transversal de su tronco, ya que se concluy&oacute; que estos representaban deficiencia y suficiencia de N.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para observar la variaci&oacute;n que experimentaban el nitrato, amonio, NS y NT durante el periodo correspondiente a ese tercer a&ntilde;o de crecimiento de los &aacute;rboles, se muestrearon cada mes seis hojas de cada &aacute;rbol, tres semanas despu&eacute;s del inicio de la brotaci&oacute;n de primavera hasta dos semanas antes de la ca&iacute;da de las hojas en el oto&ntilde;o. Los muestreos de las hojas se realizaron en la parte media de los brotes anuales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar la variaci&oacute;n a lo largo de un d&iacute;a, el 1 de julio de 1994 se colectaron hojas de la parte media de los brotes correspondientes al flujo de crecimiento de ese tercer a&ntilde;o, en intervalos de 3 h, desde las 6:00 hasta las 21:00 h.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El muestreo, para medir la variaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de las variables de respuestas dentro del dosel de los &aacute;rboles, tambi&eacute;n se hizo el 1 de julio de 1994. Se muestrearon las hojas de la parte basal, media y de la punta de las ramas emitidas en ese mismo a&ntilde;o (tercer a&ntilde;o).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las muestras foliares se secaron en estufa a 70 &deg;C, se molieron y analizaron por separado. El NS, el nitrato y el amonio se extrajeron con &aacute;cido f&oacute;rmico 0.2 N de acuerdo con el m&eacute;todo descrito por Roberts <i>et al.</i> (1980) y el NT el m&eacute;todo de microkjeldahl (Carlson, 1978). Las prote&iacute;nas solubles, pigmentos nitrogenados, amino&aacute;cidos y amidas que en su conjunto constituyeron la mayor parte del NS, se midieron directamente en los extractos, usando el m&eacute;todo de difusi&oacute;n y conductividad (Carlson <i>et al.,</i> 1990). El NS en el extracto y el NT en el tejido vegetal, fueron primero digeridos por el m&eacute;todo de microkjeldahl (Carlson, 1978) y posteriormente, el amonio producido se cuantific&oacute; por el m&eacute;todo de difusi&oacute;n y conductividad (Carlson <i>et al.</i>, 1990).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las medias de las variables obtenidas en cada tratamiento y sus respectivos errores est&aacute;ndar se calcularon usando el programa estad&iacute;stico SAS (SAS Institute, 1988).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Di&aacute;metro del tronco y producci&oacute;n de frutos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El di&aacute;metro de los troncos de los &aacute;rboles de almendro se increment&oacute; hasta alcanzar un m&aacute;ximo con la dosis 157 g &aacute;rbol<sup>&#45;1</sup> de N (<a href="#a3fi1">Figura 1</a>). Sin embargo, la nectarina experiment&oacute; s&oacute;lo un ligero incremento en el di&aacute;metro de los troncos hasta llegar a un m&aacute;ximo con la dosis 78 g &aacute;rbol<sup>&#45;1</sup> de N. La adici&oacute;n de nuevos incrementos de fertilizante nitrogenado no se tradujo en mayores aumentos de este variable (<a href="#a3fi1">Figura 1</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="a3fi1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El rendimiento de frutos s&oacute;lo se determin&oacute; en los &aacute;rboles de nectarina; los &aacute;rboles de almendro a&uacute;n no produc&iacute;an frutos en su tercer a&ntilde;o despu&eacute;s de haberse plantado en el campo. Algo similar a la tendencia en crecimiento del tronco ocurri&oacute; con la producci&oacute;n de frutos de nectarina, ya que el m&aacute;ximo rendimiento se obtuvo tambi&eacute;n con 78 g &aacute;rbol<sup>&#45;1</sup>de N. En contraste, el peso de los frutos de nectarina alcanz&oacute; el m&aacute;ximo con 157 g &aacute;rbol<sup>&#45;1</sup> de N (promedio de fruto de 187 g fruto<sup>&#45;1</sup>). Estos resultados indican que con 78 g &aacute;rbol<sup>&#45;1</sup> de N no se satisficieron completamente las necesidades de N, por una competencia por carbohidratos y nutrientes entre el crecimiento vegetativo y el desarrollo de los frutos. La competencia por recursos energ&eacute;ticos (carbohidratos y nutrientes) entre las partes vegetativas y las reproductivas dentro de &aacute;rboles de durazno ha sido previamente demostrada por Grossman y DeJong (1995). El m&aacute;ximo incremento de rendimiento de nectarinas ocurri&oacute; entre el testigo sin N y el tratamiento con 78 g &aacute;rbol<sup>&#45;1</sup> de N, respuesta que no se observ&oacute; en el peso individual de los frutos debido a la competencia por recursos energ&eacute;ticos explicada previamente (Grossman y DeJong, 1995).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto de la aplicaci&oacute;n de N sobre el di&aacute;metro de los troncos de almendro y nectarina, as&iacute; como sobre el rendimiento y tama&ntilde;o de los frutos de nectarina, es una respuesta t&iacute;pica que muestra un nivel inicial de deficiencia, un nivel &oacute;ptimo y un nivel de exceso de N. Esta respuesta confirma que los tratamientos seleccionados para observar la variabilidad de los compuestos nitrogenados (0 y 157 g &aacute;rbol<sup>&#45;1</sup> de N equivalentes a 0 y 145 kg N ha<sup>&#45;1</sup>) representaron los l&iacute;mites del rango en el cual se manifest&oacute; respuesta a la fertilizaci&oacute;n nitrogenada. Aun cuando los requerimientos de N dependen de varios factores, como las caracter&iacute;sticas del suelo, la edad de los &aacute;rboles, la variedad, la densidad de plantaci&oacute;n, el manejo de la huerta, etc., los resultados del presente estudio concuerdan con los obtenidos por Johnson <i>et al.</i> (1995), quienes, en un estudio realizado durante 12 a&ntilde;os en una huerta de nectarina en Kearney, California, no observaron respuesta en rendimiento ni tama&ntilde;o de los frutos con dosis de N mayores de 112 kg ha<sup>&#45;1</sup>.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Variaci&oacute;n anual de los compuestos nitrogenados foliares</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante la mayor parte del a&ntilde;o hubo un efecto muy marcado y consistente de las dos dosis de fertilizaci&oacute;n nitrogenada. Los &aacute;rboles de almendro y nectarina con fertilizante tuvieron concentraciones m&aacute;s altas de todos los compuestos nitrogenados que los &aacute;rboles sin fertilizante, con una excepci&oacute;n, la del primer muestreo realizado el 2 de abril. En esa ocasi&oacute;n, la concentraci&oacute;n foliar de la mayor&iacute;a de los compuestos nitrogenados fue m&aacute;s elevada en los &aacute;rboles de ambas especies que no hab&iacute;an fertilizado con N (<a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). Este efecto puede ser explicado por el hecho de que los &aacute;rboles sin fertilizante brotaron cinco d&iacute;as m&aacute;s tarde que los &aacute;rboles que se fertilizaron y, por lo tanto, sus hojas eran fisiol&oacute;gicamente m&aacute;s j&oacute;venes y con mayor contenido de N en el momento del muestreo. El mismo efecto se ha observado previamente en &aacute;rboles de durazno (Stassen <i>et al.,</i> 1981).</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hubo una disminuci&oacute;n constante de la concentraci&oacute;n foliar de NT durante el ciclo anual de desarrollo de los &aacute;rboles de almendro y nectarina <a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi2.jpg" target="_blank">(Figura 2</a>). Esta misma tendencia tambi&eacute;n ha sido observada por otros investigadores en &aacute;rboles de durazno (Taylor y May, 1967; Taylor y Van den Ende, 1969), quienes indican que se debe a la diluci&oacute;n del contenido de N en las hojas durante su crecimiento y el desarrollo de nuevos brotes en la primavera, a la traslocaci&oacute;n de este nutriente de las hojas a los frutos durante la etapa de crecimiento de los mismos, y a su removilizaci&oacute;n de las hojas hacia los tejidos de reserva en el tronco y ra&iacute;ces antes de la ca&iacute;da de las hojas. Fotelli <i>et al.</i> (2002) observaron que m&aacute;s que un efecto de diluci&oacute;n del N, su abatimiento en el follaje se debe a la reducci&oacute;n paulatina del transporte de este elemento desde los tejidos de almacenamiento y a la disminuci&oacute;n de su disponibilidad en el suelo durante el transcurso del a&ntilde;o. Este &uacute;ltimo factor se descarta en el presente estudio, puesto que el fertilizante nitrogenado se aplic&oacute; peri&oacute;dicamente durante la etapa de crecimiento de los &aacute;rboles.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adem&aacute;s del NT, el NS tambi&eacute;n present&oacute; su m&aacute;s alta concentraci&oacute;n en el primer muestreo realizado inmediatamente despu&eacute;s del inicio de la brotaci&oacute;n (<a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). Estos resultados se asocian a la removilizaci&oacute;n del N almacenado durante el invierno en las ra&iacute;ces y ramas de los &aacute;rboles del g&eacute;nero <i>Prunus</i> (Rufat y DeJong, 2001; Grassi <i>et al.</i>, 2002). Algunos amino&aacute;cidos, como el &aacute;cido asp&aacute;rtico, la glutamina y la asparagina, en &aacute;rboles de cereza (Grassi <i>et.al.,</i> 2002) y de manzano (Malaguti <i>et al.,</i> 2001) constituyeron la mayor parte del N transportado en la savia del xilema poco despu&eacute;s del inicio de la brotaci&oacute;n. El ligero aumento del NS en ambas especies de &aacute;rboles, durante el mes de octubre (<a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>), se asoci&oacute; con la hidr&oacute;lisis de las prote&iacute;nas de las hojas durante su periodo de envejecimiento, fen&oacute;meno que ocurre para que el N sea transportado a los tejidos de almacenamiento (Rufat y DeJong, 2001; Grassi <i>et al.,</i> 2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente estudio, la mayor parte del NS estuvo constituido por prote&iacute;nas solubles, pigmentos nitrogenados, amino&aacute;cidos y amidas, ya que los an&aacute;lisis indican que s&oacute;lo una peque&ntilde;a fracci&oacute;n del NS estuvo compuesta por nitrato y amonio. En almendro, el amonio m&aacute;s el nitrato constituyeron menos del 7% del NS y, en nectarina, esta fracci&oacute;n represent&oacute; menos del 2% <a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi2.jpg" target="_blank">(Figura 2</a>). Es de esperarse que si las muestras foliares se hubieran secado por liofilizaci&oacute;n, entonces el contenido de NS hubiera sido mayor, ya que se ha detectado una disminuci&oacute;n hasta de 40% del NS en muestras foliares secadas en la estufa (Burns <i>et al.,</i> 1966). Sin embargo, estas p&eacute;rdidas ocurrieron de manera proporcional en todas las muestras y, por lo tanto, los valores son comparables entre ellas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las concentraciones del amonio en las hojas de almendro y nectarina fueron relativamente bajas (menos del 7 % del NS) y la concentraci&oacute;n m&aacute;s alta se obtuvo en el primer muestreo realizado en el mes de abril (<a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). El amonio de las hojas se genera por cuatro procesos: (1) la reducci&oacute;n del nitrato transportado desde las ra&iacute;ces; (2) la transformaci&oacute;n de la asparagina en aspartato m&aacute;s amon&iacute;aco en las hojas j&oacute;venes; (3) el catabolismo de amino&aacute;cidos y la s&iacute;ntesis de lignina en el tejido senescente y (4) la conversi&oacute;n de glicina a serina durante la fotorespiraci&oacute;n (Lea <i>et al.,</i> 1992; Hodges, 2002). Puesto que el inicio de la brotaci&oacute;n depende del N almacenado durante el invierno y que el nitrato absorbido por las ra&iacute;ces en el mismo a&ntilde;o se detecta en las hojas tres semanas despu&eacute;s del inicio de la brotaci&oacute;n (Grassi <i>et al.,</i> 2002), se deduce que el alto contenido de amonio encontrado en las hojas j&oacute;venes en esta ocasi&oacute;n se debe a las transformaciones de los compuestos aminados en las hojas j&oacute;venes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente estudio se observ&oacute; que todas las fracciones de N fueron capaces de discriminar los dos tratamientos de fertilizaci&oacute;n nitrogenada durante la mayor parte del a&ntilde;o, pero se debe considerar que las concentraciones foliares de amonio y nitrato fueron bajas y, por lo tanto, m&aacute;s dif&iacute;ciles de analizar que el NT y el NS, esto se reflej&oacute; en la mayor magnitud de los errores est&aacute;ndar del amonio y del nitrato (<a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). En almendro, el NS; present&oacute; su mayor periodo de estabilidad y sensibilidad (definida como capacidad discriminatoria entre el testigo sin fertilizantes y el tratamiento fertilizado) entre junio y julio. En cambio, el NT present&oacute; buena sensibilidad durante la mayor parte del a&ntilde;o, al mismo tiempo que disminuy&oacute; constantemente, lo cual lo hace predecible. En nectarina, el NS fue sensible de junio a octubre, pero estable s&oacute;lo en junio, y el NT se comport&oacute; de igual manera que en almendro. La sensibilidad y la consistencia en los cambios de concentraci&oacute;n foliar del NT durante el a&ntilde;o hacen que sea el indicador m&aacute;s confiable del estado nutricional de los &aacute;rboles de almendro y nectarina. El NS tambi&eacute;n present&oacute; buena sensibilidad, aunque s&oacute;lo en las muestras colectadas en el mes de junio. En general, se ha considerado que los d&iacute;as finales de julio y principio de agosto es la &eacute;poca m&aacute;s propicia para realizar el muestreo de las hojas con el prop&oacute;sito de hacer un diagn&oacute;stico nutricional en &aacute;rboles frutales de hojas caducifolias (Righetti <i>et al.,</i> 1990). Los resultados del presente estudio indican que el muestreo para NT puede extenderse de junio a octubre, siempre y cuando se establezcan los valores cr&iacute;ticos para las diferentes fechas. Lo anterior se debe a que las hojas en ese periodo han alcanzado su m&aacute;xima acumulaci&oacute;n de materia seca y la concentraci&oacute;n que se mide es un indicador del suministro de N que hace el suelo a la planta.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Variaci&oacute;n diurna</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En contraste con los &aacute;rboles fertilizados, los no fertilizados mostraron una concentraci&oacute;n m&aacute;s baja y relativamente estable de todas las fracciones de N durante todo el d&iacute;a (<a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>). Debouba <i>et al.</i> (2006) observaron resultados similares en la actividad de las enzimas asimilatorias del N en plantas de tomate, cuando &eacute;stas crecieron con tratamientos de baja y alta disponibilidad de N en el medio de cultivo. En la <a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi3.jpg" target="_blank">Figura 3</a> tambi&eacute;n es notorio, que la variaci&oacute;n diurna del NT en las hojas de los &aacute;rboles de ambas especies fue relativamente peque&ntilde;a, comparada con las variaciones de los compuestos nitrogenados solubles, lo cual es de esperarse, ya que el nitrato, el amonio y los amino&aacute;cidos son compuestos nitrogenados en constante transformaci&oacute;n en las hojas, y en cambio la mayor parte del NT representa a una fracci&oacute;n m&aacute;s estable como son las prote&iacute;nas.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La variaci&oacute;n diurna de nitrato en &aacute;rboles de almendro fertilizados sigui&oacute; una tendencia contraria a la del amonio y del NS (<a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>). Esto indica que los incrementos de amonio fueron producto de la reducci&oacute;n del nitrato. Resultados similares se obtuvieron en experimentos con plantas de tabaco, en los que se demostr&oacute; que, durante la primera parte del d&iacute;a, la asimilaci&oacute;n del nitrato puede ser dos veces mayor que la cantidad de nitrato absorbido por las ra&iacute;ces, dando como resultado una acumulaci&oacute;n del amonio y de amino&aacute;cidos en las hojas (Matt <i>et al.,</i> 2001). La dependencia de la luz para la reducci&oacute;n del nitrato en las hojas se demostr&oacute; por Lea <i>et al.</i> (2006). La actividad m&aacute;s alta de la nitrato reductasa (la enzima que controla la reducci&oacute;n del nitrato) se ha observado en la primera parte del per&iacute;odo de luz durante el d&iacute;a (Matt <i>et al.,</i> 2001) y la actividad de la glutamino sintetasa aument&oacute; notoriamente en las hojas conforme el amonio fue producido por la reducci&oacute;n del nitrato (Matt <i>et al.</i> , 2001; Debouba <i>et al.,</i> 2006). Esto explica el porqu&eacute; las mayores concentraciones de amonio y de NS se observaron despu&eacute;s del medio d&iacute;a en los &aacute;rboles de almendro y nectarina.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Comparando las dos especies de &aacute;rboles se aprecia que los cambios diurnos de los compuestos nitrogenados fueron similares, pero menos marcados en los &aacute;rboles de nectarina que en los de almendro (<a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>). Si se consideran que el portainjerto de ambas especies fue el mismo (la variedad de durazno Nemaguard), las diferencias observadas fueron dependientes del injerto. Las nectarinas y los almendros son dos especies del mismo g&eacute;nero, pero con diferencias fisiol&oacute;gicas que se reflejaron en las variaciones de los compuestos nitrogenados durante el a&ntilde;o, durante el d&iacute;a y dentro de la copa de los &aacute;rboles. Comparado con las variaciones durante el a&ntilde;o, las variaciones diurnas de los compuestos nitrogenados solubles fueron relativamente peque&ntilde;as. Sin embargo, los valores de comparaci&oacute;n de cualquier indicador del estado nutricional nitrogenado de los &aacute;rboles se deben establecer en cierta hora definida del d&iacute;a. En este estudio se observ&oacute; que la mayor estabilidad y la m&aacute;xima diferencia entre los &aacute;rboles con y sin fertilizante se obtuvieron entre las 12:00 y las 21:00 h.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Variaci&oacute;n dentro de la copa de los &aacute;rboles</b></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se observ&oacute; un aumento de la concentraci&oacute;n del NT y NS de las hojas desde la posici&oacute;n basip&eacute;tala dentro del &aacute;rbol, hacia las hojas acrop&eacute;talas en los &aacute;rboles de almendro y nectarina con y sin fertilizante (<a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi4.jpg" target="_blank">Figura 4</a>). Esta variaci&oacute;n estuvo asociada con el grado de exposici&oacute;n de las hojas a la luz y a su edad. Las hojas apicales normalmente reciben m&aacute;s luz y son m&aacute;s j&oacute;venes que las hojas de la base de los brotes anuales. Niinemets <i>et al.</i> (2004) encontraron que la concentraci&oacute;n de N disminu&iacute;a con la edad de las hojas debido a la translocaci&oacute;n del N para la formaci&oacute;n de nuevos tejidos. La influencia de la exposici&oacute;n de la luz sobre la distribuci&oacute;n del N en las hojas dentro de la copa de los &aacute;rboles se ha tambi&eacute;n demostrado en varias especies de &aacute;rboles de hojas caducas en clima templado (Weinbaum <i>et al.,</i> 1989; Sanchez y Righetti, 1990). La concentraci&oacute;n de nitrato fue mayor en las hojas de la base que en las de la punta de las ramas de almendro y nectarina (<a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi4.jpg" target="_blank">Figura 4</a>). Estos resultados coinciden con los de Siebrecht <i>et al.</i> (2003), quienes observaron que la asimilaci&oacute;n de nitrato ocurre principalmente en las hojas j&oacute;venes y que las hojas m&aacute;s viejas almacenan este compuesto nitrogenado. Las hojas j&oacute;venes que est&aacute;n m&aacute;s expuestas a la luz en general tienen una actividad m&aacute;s alta de la nitrato reductasa que las hojas m&aacute;s viejas y, por consiguiente, mayor capacidad de reducci&oacute;n de nitrato a amonio (Chang <i>et al.</i> , 1981). Consecuentemente, esto indujo una mayor acumulaci&oacute;n de nitrato en las hojas de la base de las ramas de las dos especies de &aacute;rboles y tambi&eacute;n explica la ligera tendencia a disminuir la concentraci&oacute;n de amonio en estas mismas hojas en los &aacute;rboles de almendro.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La posici&oacute;n de las hojas que manifest&oacute; m&aacute;s ampliamente las diferencias del estado nutricional de los &aacute;rboles vari&oacute; de acuerdo con la fracci&oacute;n nitrogenada que se analiz&oacute; (<a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi4.jpg" target="_blank">Figura 4</a>). Las mayores diferencias de NT se observaron en las hojas ubicadas en la mitad de las ramas del &uacute;ltimo flujo de crecimiento de los almendros y nectarinas. Para NS del almendro las diferencias eran las mismas en las tres posiciones de las hojas, pero, en nectarina, las hojas apicales presentaron las mayores diferencias. Para el amonio del almendro, las hojas en la posici&oacute;n media de la rama fueron las m&aacute;s sensibles, pero, en nectarina, s&oacute;lo las hojas de la punta y de la base presentaron diferencias significativas. Para el caso del nitrato, las hojas de la base de las ramas de ambas especies de &aacute;rboles presentaron las m&aacute;ximas diferencias. En la <a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi4.jpg" target="_blank">Figura 4</a> se observa que el NT fue el indicador con los menores errores est&aacute;ndar en las tres posiciones de las hojas, lo cual le da ventaja sobre los dem&aacute;s indicadores. Tradicionalmente, se ha recomendado que para fines de diagn&oacute;stico nutricional se deben muestrear las hojas ubicadas en la posici&oacute;n media de las ramas emitidas en el &uacute;ltimo a&ntilde;o de crecimiento de los &aacute;rboles de hojas caducifolias (Righetti <i>et al.</i> , 1990). Los resultados del presente estudio, respecto al NT, coinciden con esta recomendaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una observaci&oacute;n general que se puede apreciar en las Figuras <a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi2.jpg" target="_blank">2</a>, <a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi3.jpg" target="_blank">3</a> y <a href="../img/revistas/tl/v27n3/a3fi4.jpg">4</a>, es que la variaci&oacute;n de los diferentes compuestos nitrogenados entre los &aacute;rboles que recibieron el mismo tratamiento de fertilizaci&oacute;n (expresada como el error est&aacute;ndar en las gr&aacute;ficas) fue relativamente m&aacute;s alta en los compuestos solubles que en el NT. En orden descendente, la variabilidad entre &aacute;rboles con el mismo tratamiento fue: nitrato &gt; amonio &gt; NS &gt; NT. Este orden es tambi&eacute;n el de la magnitud de las concentraciones de cada fracci&oacute;n nitrogenada en las hojas de los &aacute;rboles de las dos especies. Esto indica que los compuestos nitrogenados solubles son indicadores muy sensibles del estado nutricional de los &aacute;rboles, pero son compuestos en constante transformaci&oacute;n, cuyas concentraciones en las hojas pueden ser f&aacute;cilmente influenciadas por factores relacionados con el riego, la poda, la carga de frutos, el tama&ntilde;o de los &aacute;rboles, etc. Esta alta sensibilidad a factores relacionados con el manejo de la huerta causa variaciones temporales que los pone en desventaja al compararlos con indicadores m&aacute;s estables, como lo es la concentraci&oacute;n de NT en las hojas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#45;&nbsp;Los resultados de este estudio demostraron que las concentraciones foliares de los compuestos nitrogenados solubles (amonio y nitrato) variaron en coordinaci&oacute;n con la concentraci&oacute;n de nitr&oacute;grno total (NT) durante el a&ntilde;o, durante el d&iacute;a y dentro de la copa de los &aacute;rboles.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#45;&nbsp;Estas variaciones estuvieron relacionadas con procesos fisiol&oacute;gicos de removilizaci&oacute;n del N durante la primavera, translocaci&oacute;n del N de las hojas a los tejidos de reserva durante el oto&ntilde;o, dependencia de la luz para la asimilaci&oacute;n del N en formas cada vez m&aacute;s estables, pasando por nitrato, amonio, amino&aacute;cidos y prote&iacute;nas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#45;&nbsp;Los resultados demostraron que los compuestos nitrogenados solubles presentes en las hojas de los &aacute;rboles respondieron sensiblemente a las aplicaciones de N al suelo, pero presentaron una mayor variaci&oacute;n que el NT entre los &aacute;rboles que recibieron el mismo tratamiento de fertilizaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#45;&nbsp;Analizando en forma integral los resultados relacionados con la sensibilidad de los diferentes compuestos nitrogenados a las aplicaciones de N, la consistencia en sus cambios y la variabilidad entre &aacute;rboles con el mismo tratamiento, se concluy&oacute; que el NT fue el mejor indicador en &aacute;rboles de almendro y nectarina.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#45;&nbsp;La variabilidad del NT durante el a&ntilde;o, durante el d&iacute;a y dentro del dosel del &aacute;rbol indica que el diagn&oacute;stico nutricional, utilizando NT como indicador, se puede hacer de junio a octubre; para ello se deben muestrear por la ma&ntilde;ana las hojas del centro de las ramas emitidas durante el &uacute;ltimo a&ntilde;o de crecimiento de los &aacute;rboles de almendro y nectarina.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores agradecen al Departamento de Alimentaci&oacute;n y Agricultura de California por el financiamiento de este proyecto a trav&eacute;s del Programa de Investigaci&oacute;n en Fertilizantes y Educaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA </b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Balsberg, P. A. M. 1992. Influence of nitrogen fertilization on minerals, carbohydrates, amino acids and phenolic compounds in beech <i>(Fagus sylvatica</i> L.) leaves. Tree Physiol. 10: 93&#45;100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800298&pid=S0187-5779200900030000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Burns, J. C., C. H. Noller, and C. J. Rhykeerd. 1966. Influence of drying method and fertility treatments on the total and water soluble nitrogen contents of alfalfa. Agron. J. 58: 13&#45;15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800300&pid=S0187-5779200900030000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Carlson, R. M. 1978. Automated separation and conductimetric determination of ammonia and dissolved carbon dioxide. Anal. Chem. 50: 1928&#45;1931.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800302&pid=S0187-5779200900030000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Carlson, R. M., R. I. Cabrera, J. L. Paul, J. Quick, and R. Y. Evans. 1990. Rapid direct determination of ammonium and nitrate in soil and plant tissue extracts. Comm. Soil Sci. Plant Anal. 21:1519&#45;1529.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800304&pid=S0187-5779200900030000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chang, N. K., H. M. Vines, and C. C. Black. 1981. Nitrate assimilation and crassulacean acid metabolism in leaves of <i>Kalancho&euml; fedtschenkoi</i> variety marginata. Plant Physiol. 68: 464&#45;468.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800306&pid=S0187-5779200900030000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Debouba, M., H. Gouia, M. H. Valadier, M. H. Ghorbel, and A. Suzuki. 2006. Salinity&#45;induced tissue&#45;specific diurnal changes in nitrogen assimilatory enzymes in tomato seedlings grown under high or low nitrate medium. Plant Physiol. Biochem. 44: 409&#45;419.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800308&pid=S0187-5779200900030000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">DeJong, T. M., K. R. Day, and R. S. Johnson. 1989. Partitioning of leaf nitrogen with respect to within canopy light exposure and nitrogen availability in peach <i>(Prunus persica).</i> Trees 3: 89&#45;95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800310&pid=S0187-5779200900030000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Demotes&#45;Mainard, S., R. Boumaza, S. Meyer, and Z. G. Cerovic. 2008. Indicators of nitrogen status for ornamental woody plants based on optical measurements of leaf epidermal polyphenol and chlorophyll contents. Sci. Hortic. 115:377&#45;385.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800312&pid=S0187-5779200900030000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">FAO (Food and Agriculture Organization). 2008. Current world fertilizer trends and outlook to 2011/12. <a href="ftp//ftp.fao.org/agl/agll/docs/cwfto11&#45;pdf" target="_blank">ftp//ftp.fao.org/agl/agll/docs/cwfto11&#45;pdf</a>. (Consulta: abril de 2008).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800314&pid=S0187-5779200900030000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fotelli, M. N., M. Nahm, A. Heidenfelder, H. Papen, H. Rennenberg, and A. Gebler. 2002. Soluble nonprotein nitrogen compounds indicate changes in the nitrogen status of beech seedlings due to climate and thinning. New Phytol. 154: 85&#45;97.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800316&pid=S0187-5779200900030000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gebler, A. and H. Rennenberg. 2000. The effect of liming on the soluble nitrogen pool in Norway spruce <i>(Picea abies)</i> exposed to high loads of nitrogen. Phyton 40: 51&#45;64.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800318&pid=S0187-5779200900030000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grassi, G., P. Millard, R. Wendler, G. Minotta, and M. Tagliavin. 2002. Measurement of xylem sap amino acid concentration in conjunction with whole tree transpiration estimates spring N remobilization by cherry <i>(Prunus avium</i> L.) trees. Plant Cell Environ. 25: 1689&#45;1699.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800320&pid=S0187-5779200900030000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Grossman, Y. L. and T. M. DeJong. 1995. Maximum vegetative growth potential and seasonal patterns of resource dynamics during peach growth. Ann. Bot. 76: 473&#45;482.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800322&pid=S0187-5779200900030000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hodges, M. 2002. Enzyme redundancy and the importance of 2&#45;oxoglutarate in plant ammonium assimilation. J. Exp. Bot. 53: 905&#45;916.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800324&pid=S0187-5779200900030000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Johnson, R. S., M. F. Gordon, and C. H. Crisosto. 1995. Nitrogen fertilization on Fantasia nectarine: a 12 year study. UC Kearney Tree Fruit. Rev. 1: 9&#45;14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800326&pid=S0187-5779200900030000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lea, P. J., R. D. Blackwell, and K. W. Joy. 1992. Ammonia assimilation in higher plants. pp. 154&#45;186. <i>In:</i> K. Mengel and D. J. Pilbeam (eds.). Nitrogen metabolism of plants. Oxford University Press. New York, NY, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800328&pid=S0187-5779200900030000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lea, U. S., M. T. Leydecker, I. Quillere, C. Meyer, and C. Lillo. 2006. Posttranslational regulation of nitrate reductase strongly affects the levels of free amino acids and nitrate, whereas transcriptional regulation has only minor influence. Plant Physiol. 140: 1085&#45;1094.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800330&pid=S0187-5779200900030000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Malaguti, D., P. Millard, R. Wendler, A. Hepburn, and M. Tagliavini. 2001. Translocation of amino acids in the xylem of apple <i>(Malus domestica</i> Borkh) trees in spring as a consequence of both N remobilization and root uptake. J. Exp. Bot. 52: 1665&#45;1671.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800332&pid=S0187-5779200900030000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Matt, P., M. Geiger, P. Walch&#45;Liu, C. Engels, A. Krapp, and M. Stitt. 2001. The immediate cause of the diurnal changes of nitrogen metabolism in leaves of nitrate&#45;replete tobacco: a major imbalance between the rate of nitrate reduction and the rates of nitrate uptake and ammonium metabolism during the first part of the light period. Plant Cell Environ. 24: 177&#45;190.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800334&pid=S0187-5779200900030000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Niinemets, U., O. Kull, and J. D. Tenhunen. 2004. Within canopy variation in the rate of development of photosynthetic capacity is proportional to integrated quantum flux density in temperate deciduous trees. Plant Cell Environ. 27: 293&#45;313.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800336&pid=S0187-5779200900030000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Prassad, M. and I. C. Ravenwood. 1986. Evaluation of a rapid sap nitrate test for young kiwifruit vines. Commun. Soil Sci. Plant Anal. 17: 829&#45;837.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800338&pid=S0187-5779200900030000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Righetti, T. L., K. L. Wilder, and G. A. Cummings. 1990. Plant analysis as an aid in fertilizing orchards. pp. 563&#45;601. <i>In</i>: R. L. Westerman (ed.). Soil testing and plant analysis. 3<sup>rd</sup> ed. SSSA Book Series 3. Soil Science Society of America. Madison, WI, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800340&pid=S0187-5779200900030000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Roberts, H. M., H. M. Reisenauer, and R. M. Carlson. 1980. Determination of ammonium, amides and soluble carboxylates in plant tissues. J. Plant Nutr. 2: 395&#45;405.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800342&pid=S0187-5779200900030000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rufat, J. and T. M DeJong. 2001. Estimating seasonal nitrogen dynamics in peach trees in response to nitrogen availability. Tree Physiol. 21: 1133&#45;1140.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800344&pid=S0187-5779200900030000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sanchez, E. E. and T. L. Righetti. 1990. Tree nitrogen status and leaf canopy position influence postharvest nitrogen accumulation and efflux from pear leaves. J. Am. Soc. Hort. Sci. 115: 934&#45;937.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800346&pid=S0187-5779200900030000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SAS Institute. 1988. SAS&#45;STAT user's guide. Release 6.03. SAS Institute. Cary, NC, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800348&pid=S0187-5779200900030000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Siebrecht, S., K. Herdel, U. Schur, and R. Tischner. 2003. Nutrient translocation in the xylem of poplar diurnal variations and spatial distribution along the shoot axis. Planta 217: 783&#45;793.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800350&pid=S0187-5779200900030000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stassen P. J. C., J. H. Terblanche, and D. K. Strydom. 1981. The effect of time and rate of nitrogen application on development and composition of peach trees. Agroplantae 13: 55&#45;61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800352&pid=S0187-5779200900030000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Taylor, B. K. and L. L. H. May. 1967. The nitrogen nutrition of the peach tree. II. Storage and mobilization of nitrogen in young trees. Aust. J. Biol. Sci. 20: 389&#45;411.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800354&pid=S0187-5779200900030000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Taylor B. K. and B. van den Ende. 1969. The nitrogen nutrition of the peach tree. IV. Storage and mobilization of N in mature trees. Aust. J. Agric. Res. 20: 869&#45;881.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800356&pid=S0187-5779200900030000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">United States Department of Agriculture&#45;Natural Resources Conservation Service (USDA&#45;NRCS). 2002. National Survey Handbook. US Department of Agriculture. Washington, DC, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800358&pid=S0187-5779200900030000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Weinbaum, S. A., S. M. Southwick, K. A. Shackel, T. T. Muraoka, W. Krueger, and J. T. Yeager. 1989. Photosynthetic photon flux influences macroelement weight and leaf dry weight per unit leaf area in prune tree canopy. J. Am. Soc. Hort. Sci. 114: 720&#45;723.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9800360&pid=S0187-5779200900030000300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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