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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Técnicas moleculares clásicas para la diferenciación de formas especiales de Fusarium oxysporum]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The characterization and differentiation of special forms of Fusarium oxysporum by analysis of DNA polymorphisms are more appropriate than just considering morphological or physiological characteristics. Currently, they have developed sophisticated molecular techniques to estimate genetic variation, differentiate or identify microorganisms, such as those based on second-generation sequencing, but they still have high costs and are not accessible to many laboratories that require diagnose or differentiate a particular plant pathogen. In this paper, three classical molecular techniques were compared: RAPD, MP-PCR and RAMPnr in order to differentiate isolates of F. oxysporum f. sp. ciceris, F. oxysporum f. sp. lycopersici, F. oxysporum f. sp. radicis-lycopersici and F. oxysporum f. sp coffeae. These techniques detected polymorphisms between the special forms of Fusarium and even between genotypes of F. o f. sp. lycopersici. The groups represented in dendrograms indicate that F. oxysporum is very diverse and that special forms analyzed are genetically different. These techniques provide a simple, fast and inexpensive routine procedure for the characterization and subsequent pathogen's identification.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Originales</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>T&eacute;cnicas moleculares cl&aacute;sicas para la diferenciaci&oacute;n de formas especiales de <i>Fusarium oxysporum</i></b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Classical molecular techniques for differentiation of special forms of <i>Fusarium oxysporium</i></b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Iobana Alanis&#45;Mart&iacute;nez<sup>1</sup>, Carmen Medina&#45;Mendoza<sup>2</sup>, Nahum Marb&aacute;n&#45;Mendoza<sup>1</sup> y Ernestina Valadez&#45;Moctezuma</b></font><font face="verdana" size="2"><b><sup>2</sup>*</b></font></p>      <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1 </sup>Departamento de Parasitolog&iacute;a Agr&iacute;cola.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Departamento de Fitotecnia de la Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. Chapingo, Estado de M&eacute;xico</i>.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>*Autor para correspondencia</b>    <br>     Ernestina Valadez&#45;Moctezuma <a href="mailto:evaladez@correo.chapingo.mx">evaladez@correo.chapingo.mx</a></font></p>      <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 27/02/ 2014.    <br> 	Aceptado: 28/10/2015.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La caracterizaci&oacute;n y diferenciaci&oacute;n de formas especiales de <i>Fusarium oxysporum</i> mediante an&aacute;lisis de polimorfismos gen&eacute;ticos es m&aacute;s apropiado que solo considerar caracteres morfol&oacute;gicos o fisiol&oacute;gicos. Actualmente se han desarrollado t&eacute;cnicas moleculares sofisticadas para estimar variaci&oacute;n gen&eacute;tica, diferenciar o identificar microorganismos, tales como las basadas en secuenciaci&oacute;n de segunda generaci&oacute;n, pero &eacute;stas <i>a&uacute;n</i> tienen altos costos y no son accesibles para muchos laboratorios que requieren diagnosticar o diferenciar a un determinado fitopat&oacute;geno. En este trabajo se compararon tres t&eacute;cnicas moleculares cl&aacute;sicas: RAPD, MP&#45;PCR y RAMPnr con la finalidad de diferenciar aislamientos de <i>F. oxysporum</i> f. sp. <i>ciceris, F. oxysporum</i> f. sp. <i>lycopersici, F. oxysporum</i> f. sp. <i>radicis&#45;lycopersici</i> y <i>F. oxysporum</i> f. sp <i>coffeae.</i> Estas <i>t&eacute;cnicas</i> detectaron polimorfismos entre las formas especiales de <i>Fusarium</i> e incluso entre los genotipos de <i>F. o.</i> f. sp. <i>lycopersici.</i> Los agrupamientos representados en los dendrogramas, indican que <i>F. oxysporum</i> es muy diverso y que las formas especiales analizadas son gen&eacute;ticamente diferentes. Estas t&eacute;cnicas proporcionan un procedimiento simple, r&aacute;pido y de bajo costo para la caracterizaci&oacute;n y posterior identificaci&oacute;n rutinaria de pat&oacute;genos.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Palabras clave: MP&#45;PCR, RAMPnr, RAPD, pat&oacute;geno, polimorfismo.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The characterization and differentiation of special forms of <i>Fusarium oxysporum</i> by analysis of DNA polymorphisms are more appropriate than just considering morphological or physiological characteristics. Currently, they have developed sophisticated molecular techniques to estimate genetic variation, differentiate or identify microorganisms, such as those based on second&#45;generation sequencing, but they still have high costs and are not accessible to many laboratories that require diagnose or differentiate a particular plant pathogen. In this paper, three classical molecular techniques were compared: RAPD, MP&#45;PCR and RAMPnr in order to differentiate isolates of <i>F. oxysporum</i> f. sp. <i>ciceris, F. oxysporum</i> f. sp. <i>lycopersici, F. oxysporum</i> f. sp. r<i>adicis&#45;lycopersici</i> and <i>F. oxysporum</i> f. sp <i>coffeae.</i> These techniques detected polymorphisms between the special forms of <i>Fusarium</i> and even between genotypes of <i>F. o</i> f. sp. <i>lycopersici.</i> The groups represented in dendrograms indicate that <i>F. oxysporum</i> is very diverse and that special forms analyzed are genetically different. These techniques provide a simple, fast and inexpensive routine procedure for the characterization and subsequent pathogen's identification.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> MP&#45;PCR, RAMPnr, RAPD, pathogen, polymorphism.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Fusarium oxysporum</i> Schlechtend.:Fr es un complejo de especies econ&oacute;micamente importante, porque causa da&ntilde;os a una amplia variedad de cultivos agr&iacute;colas (Baayen <i>et al.,</i> 2000). Se han descrito m&aacute;s de 150 formas especiales que se caracterizan por presentar propiedades fisiol&oacute;gicas que le otorgan la especializaci&oacute;n patog&eacute;nica a determinadas especies, g&eacute;neros o grupos de plantas (Arbel&aacute;ez, 2000; Baayen <i>et al.,</i> 2000); por lo que se ha asumido que est&aacute;n altamente relacionadas y presentan morfolog&iacute;a similar a&uacute;n cuando pertenecen a diferentes grupos biol&oacute;gicos (Kistler, 1997).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los marcadores moleculares han sido eficientes en el estudio de la diversidad gen&eacute;tica de fitopat&oacute;genos (Baysal, 2013) y en la identificaci&oacute;n de formas especiales (Baysal, 2009). Algunas t&eacute;cnicas utilizadas para determinar la diversidad gen&eacute;tica del g&eacute;nero <i>Fusarium</i> son RAPD (Random Amplified Polymorphyc DNA), RFLP (Restriction Fragment Length Polymorphism) (Bentley, 1998), AFLP (Amplified Fragment Length Polymorphism), SSR (Simple Sequence Repeats) y actualmente la secuenciaci&oacute;n de porciones o genes completos (Wulff <i>et al.,</i> 2010; Geiser <i>et al.,</i> 2004; Kristensen <i>et al.,</i> 2005). La t&eacute;cnica RAPD ha sido empleada para el estudio de formas especiales, razas y aislamientos con diferentes patotipos de <i>Fusarium oxysporum</i> (Kelly <i>et al.,</i> 1998, Luna <i>et al.,</i> 2004), ya que reduce el tiempo necesario para la caracterizaci&oacute;n y prove&eacute; informaci&oacute;n gen&eacute;tica. La tecnica MP&#45;PCR (Microsatellite Primed&#45;PCR) y RAMPnr (non radioactive Random Amplified Microsatellite Polymorphism) fueron utilizadas por Valadez <i>et al.</i> (2005) como una opci&oacute;n para la detecci&oacute;n de perfiles de ADN m&aacute;s abundantes e informativos, ofreciendo mayor estabilidad y cantidad de huellas. Actualmente existen t&eacute;cnicas sofisticadas basadas en secuenciaci&oacute;n de segunda generaci&oacute;n para el estudio de la diversidad gen&eacute;tica de <i>Fusarium</i> y de otros organismos, pero &eacute;stas a&uacute;n tienen altos costos. Es por ello que este trabajo tuvo como objetivo utilizar t&eacute;cnicas moleculares cl&aacute;sicas para diferenciar de forma r&aacute;pida cuatro formas especiales de <i>Fusarium oxysporum:</i> f. sp. <i>ciceris,</i> f. sp. r<i>adicis&#45;lycopersici,</i> f. sp. <i>lycopersici</i> y f. sp. <i>coffeae,</i> los cuales pertenecen a un g&eacute;nero de hongos fitopat&oacute;genos que morfol&oacute;gicamente no es posible distinguir. El conocimiento de las diferencias entre este tipo de pat&oacute;genos es importante para su adecuado control, adem&aacute;s de que estas t&eacute;cnicas consumen poco tiempo, proporcionan resultados confiables y son de bajo costo.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aislamientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se emplearon cuatro aislamientos por duplicado de formas especiales de <i>Fusarium oxysporum:</i> dos cepas (f. sp. <i>lycopersici</i> y f. sp. <i>radicis&#45;lycopersici</i>.) procedentes de la colecci&oacute;n de hongos fitopat&oacute;genos del Colegio de Postgraduados (Montecillos), Estado de M&eacute;xico. La f. sp. <i>ciceris</i> se aisl&oacute; de plantas de garbanzo con s&iacute;ntomas de marchitez de la zona del Baj&iacute;o y la f. sp. <i>coffeae</i> se aisl&oacute; de plantas de caf&eacute; con corchosis en la ra&iacute;z, procedentes del estado de Veracruz. Los hongos se cultivaron en medio PDA (150g de papa, 10g de dextrosa, 18g de agar y 4 gotas de &aacute;cido l&aacute;ctico (25%, MERCK); se desarrollaron cultivos mon&oacute;sporicos, los cuales fueron cultivados en medio l&iacute;quido Czapeck&#45;Dox (30g de sacarosa, 2g NaNO<sub>3</sub>, 0.1g K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub>, 0.5g MgS0<sub>4</sub> 7H<sub>2</sub>O, 0.5g KCL, 0.01g FeSO<sub>4</sub> 7H<sub>2</sub>O) para extracci&oacute;n de ADN.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Extracci&oacute;n de</b> <b>ADN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; el m&eacute;todo reportado por Kelly <i>et al.</i> (1994). La calidad de la mol&eacute;cula se determin&oacute; mediante electroforesis en gel de agarosa 0.8% y se cuantific&oacute; mediante espectrofotometr&iacute;a. Por cada forma especial se emplearon dos genotipos procedentes del mismo aislamiento, pero de conidio diferente: <i>Fusarium oxysporum</i> f. sp. <i>coffeae A, coffeae B, ciceris A, ciceris B, radicislyco A, radicis&#45;lyco B, lycopersici A, lycopersici B</i> y una planta de garbanzo como grupo comparativo.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RAPD</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el an&aacute;lisis de huellas aleatorias de ADN, se seleccionaron siete iniciadores de la serie C (05, 08, 09, 14, 16, 18 y 19) de la Casa comercial Carl Roth GMBH. La reacci&oacute;n de PCR se llev&oacute; a cabo en un volumen final de 25 &#956;L con 80 ng de DNA, 20 pmoles de iniciador, amortiguador de reacci&oacute;n 1X, 200 &#956;M de dNTPs, 1.5 mM de MgCl<sub>2</sub> y 2U <i>Taq</i> ADN polimerasa. La amplificaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo con las siguientes condiciones: 94 &deg;C, 1min, 38 ciclos &#91;94 &deg;C, 30 s; 35 &deg;C, 30 s; 72 &deg;C , 1.5 min&#93; y 72 &deg;C, 2.5 min de extensi&oacute;n final en un termociclador Perkin Elmer 480.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MP&#45;PCR</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para esta t&eacute;cnica se emplearon cinco iniciadores complementarios a microsat&eacute;lite: &#91;GGAT&#93;<sub>4</sub>, &#91;GACA&#93;<sub>4</sub>, &#91;GATA&#93;<sub>4</sub>, &#91;CT&#93;<sub>8</sub> y &#91;CA&#93;<sub>8</sub> de Gibco&#45;BRL. La mezcla de reacci&oacute;n de 25 &#956;L conten&iacute;a 50 ng de ADN; 20 pg del iniciador, amortiguador de reacci&oacute;n 1X, 200 &#956;M dNTPs, 3 mM MgCl y 1.5 U <i>Taq</i> ADN polimerasa. Las condiciones de termociclaje fueron las siguientes: 93 &deg;C, 1 min; 40 ciclos &#91;93 &deg;C, 2 s; 40 &deg;C, 1 min para &#91;GATA&#93;<sub>4</sub> y 48 &deg;C 1 min para &#91;GGAT&#93;<sub>4</sub>, &#91;GACA&#93;<sub>4</sub>, &#91;CT&#93;<sub>8</sub> y &#91;CA&#93;<sub>8</sub>); 72 &deg;C, 20 s&#93; y 72 &deg;C por 6 min de extensi&oacute;n final.</font></p>      <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RAMPnr</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta t&eacute;cnica consiste en la combinaci&oacute;n de dos tipos de iniciadores en cada reacci&oacute;n, uno para microsat&eacute;lites y otro aleatorio, ambos sin marcaje (Valadez <i>et al.,</i> 2005). Se utilizaron seis pares de iniciadores: &#91;GACA&#93;<sub>4</sub>+C05; &#91;GACA&#93;<sub>4</sub>+C19; &#91;GATA&#93;<sub>4</sub>+C05; &#91;GATA&#93;<sub>4</sub>+C19; &#91;CT&#93;<sub>8</sub>+C05 y (CT)<sub>8</sub>+C19. El volumen final de reacci&oacute;n tambi&eacute;n fue de 25 &#956;L y conten&iacute;a 80 ng de ADN, 10 pg de cada iniciador, amortiguador de reacci&oacute;n 1X, 200 &#956;M dNTPs, 3 mM MgCl<sub>2</sub> y 1.5 U <i>Taq</i> ADN polimerasa. Los productos de amplificaci&oacute;n para las tres t&eacute;cnicas utilizadas se separaron en geles de agarosa Ultra PureTM de GIBCO BRL 1.2, 1.4 y 2 % respectivamente, se ti&ntilde;eron con bromuro de etidio 10 min y se documentaron con la c&aacute;mara Kodak Digital Science 1D 2.0.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las huellas de ADN obtenidas se codificaron en una matriz binaria, a partir de la cual se construy&oacute; una matriz de similitud con el programa NTSyS pc.2.0 y el coeficiente de similitud Dice. Para el an&aacute;lisis de conglomerados se utiliz&oacute; el m&eacute;todo del promedio aritm&eacute;tico de pares no ponderados (UPGMA). Se obtuvieron los valores de correlaci&oacute;n cofen&eacute;tica y por &uacute;ltimo se utiliz&oacute; el programa WinBoot para obtener los valores del Boos&#45;traping con 5000 replicaciones. En el an&aacute;lisis se incluy&oacute; al garbanzo con el fin de contrastar los agrupamientos.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las formas especiales de <i>F. oxysporum</i> cultivadas en medio PDA desarrollaron abundante micelio de distintas tonalidades que van desde violeta tenue hasta rojo intenso, lo cual ha sido reportado previamente por Seifert (2001). La forma especial <i>lycopersici</i> present&oacute; micelio escaso a diferencia de las formas especiales restantes.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis molecular</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RAPD</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ADN obtenido con la t&eacute;cnica empleada fue de buena calidad y de cantidad adecuada para el an&aacute;lisis molecular propuesto. Las huellas gen&oacute;micas obtenidas con los distintos iniciadores RAPDs presentaron polimorfismos entre las formas especiales y entre los genotipos de la f. sp. <i>lycopersici</i> (<a href="#f1">Figura 1</a>). En el dendograma se conformaron seis grupos con un coeficiente de similitud de 0.7 (<a href="/img/revistas/rmm/v42/a2f5.jpg" target="_blank">Figura 5</a>). La t&eacute;cnica considera id&eacute;nticos a los genotipos de la f. sp. <i>coffeae</i> con una confiabilidad del 100% al igual que a la f. sp. <i>ciceris.</i> Para en el caso de la f. sp. <i>radicis&#45;lycopersici,</i> los dos aislamientos no se mantienen juntos como se esperaba; lo que sugiere contaminaci&oacute;n en los aislamientos iniciales. El genotipo <i>lycopersici</i> A se relaciona con los genotipos de la f. sp. <i>radicis&#45;lycopersici</i> a una distancia aproximadamente de 0.57 y confiabilidad del 99.9%. El genotipo <i>lycopersici</i> B se mantiene fuera del agrupamiento, relacion&aacute;ndose con las otras formas especiales a una distancia de 0.05 y una confiabilidad del 98.4%, lo que indica que este genotipo presenta un nivel de asociaci&oacute;n muy bajo. El garbanzo se mantiene fuera del agrupamiento de <i>Fusarium.</i> El valor del coeficiente de correlaci&oacute;n cofen&eacute;tica fue de r = 0.98, lo que indica muy buen ajuste.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmm/v42/a2f1.jpg"></font></p> 	    <p align="center">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MP&#45;PCR</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con esta t&eacute;cnica se detectaron pocos datos y tambi&eacute;n pocos polimorfismos; pero abundantes barridos (caracter&iacute;sitica propia de la t&eacute;cnica) entre las cuatro formas especiales. El iniciador &#91;GGAT&#93;<sub>4</sub> detect&oacute; cambios a nivel de ADN entre los genotipos de la f. sp. <i>radicis&#45;lycopersici</i> (<a href="#f2">Figura 2</a>) y &#91;GACA&#93;<sub>4</sub> mostr<i>&oacute;</i> diferencias entre los genotipos de la f. sp. <i>Coffeae</i> (datos no mostrados). Con el dendrograma generado a partir de la codificaci&oacute;n de 35 datos, se identificaron cinco grupos a una distancia de 0.67 (<a href="/img/revistas/rmm/v42/a2f6.jpg" target="_blank">Figura 6</a>). La t&eacute;cnica consider&oacute; como id&eacute;nticos a los genotipos de la f. sp. <i>ciceris</i> con una confiabilidad del 94.4%. Los genotipos de la f. sp. <i>coffeae</i> se relacionaron con una distancia de 0.77 y confiabilidad de 98.5%. El genotipo <i>lycopersici A</i> se agrup&oacute; con los dos genotipos de la f. sp. <i>radicis&#45;lycopersici.</i> El genotipo <i>lycopersici B</i> se relaciona con el resto de las formas especiales a una distancia de 0.04 y confiabilidad del 52.2%. El garbanzo se asocia con el resto de los genotipos a una distancia de 0.06 y confiabilidad de 46.5%. El valor de correlaci&oacute;n cofen&eacute;tica fue de r = 0.95, valor que indica muy buen ajuste.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmm/v42/a2f2.jpg"></font></p> 	    <p align="center">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RAMPnr</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con esta t&eacute;cnica las huellas de ADN obtenidas fueron m&aacute;s abundantes y definidas con respecto a las dos t&eacute;cnicas anteriormente descritas. Tambi&eacute;n detectaron polimorfismos entre las cuatro formas especiales y entre los genotipos de f. sp. <i>lycopersici</i> con los seis pares de iniciadores utilizados (<a href="#f3">Figuras 3</a> y <a href="#f4">4</a>). El dendograma se construy&oacute; con 150 datos, identificando a seis grupos con un coeficiente de 0.99 (<a href="/img/revistas/rmm/v42/a2f7.jpg" target="_blank">Figura 7</a>). Esta t&eacute;cnica consider&oacute; a los genotipos <i>coffeae A&#45;coffeae B,</i> as&iacute; como a <i>ciceris A&#45;ciceris</i> B como id&eacute;nticos con una confiabilidad del 100%. A los dos genotipos de la f. sp. <i>radicis&#45;lycopersici</i> los relaciona a una distancia de 0.99 y confiabilidad del 100% y a su vez se relacionan con el genotipo <i>lycopersici A</i> a una distancia 0.66 con una confiabilidad del 82.4%. El genotipo <i>lycopersici B</i> se relaciona con el resto de los genotipos a una distancia de 0.08 con una confiabilidad de 97.2% lo que indica, una menor relaci&oacute;n con el resto de las formas especiales (Figura 9). El garbanzo se mantiene fuera del agrupamiento. El valor de correlaci&oacute;n cofen&eacute;tica fue de r=0.99198 que representa un buen ajuste.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmm/v42/a2f3.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmm/v42/a2f4.jpg"></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con las t&eacute;cnicas moleculares utilizadas y comparadas RAPD, MP&#45;PCR y RAMPnr, se observaron diferencias claras en los patrones de bandas de las cuatro formas especiales: <i>F. oxysporum</i> f. sp. <i>coffeae, F. oxysporum</i> f. sp. <i>ciceris, F. oxysporum</i> f. sp. <i>lycopersici</i> y <i>F. oxysporum</i> f. sp. <i>radicis&#45;lycopersici,</i> lo cual indica que existen diferencias gen&eacute;ticas. Estos resultados concuerdan con lo reportado por Vakalounakis y Fragkiadakis (1999) quienes establecieron diferencias gen&eacute;ticas por medio de RAPD entre las formas especiales: <i>cucumerinum</i> y <i>radicis&#45;cucumerinum.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al comparar los agrupamientos de las tres t&eacute;cnicas, los resultados se muestran similares, pero los genotipos <i>lycopersici</i> se mantienen separados entre si, lo que sugiere que existe variabilidad gen&eacute;tica entre la misma forma especial, o que posiblemente est&aacute; contaminada desde su aislamiento original, que es lo m&aacute;s probable. Tambi&eacute;n se observa la separaci&oacute;n entre el genotipo <i>lycopersici B</i> y los dos genotipos de <i>radicis&#45;lycopersici,</i> lo cual puede deberse a variaci&oacute;n molecular a nivel de ADN entre estas formas especiales (Kistler <i>et al.</i> 1987, Kuninaga y Yokosawa 1989). Los polimorfismos detectados en este tipo de hongos indican que existen fuentes de variabilidad gen&eacute;tica entre s&iacute;, debido a que tienen un origen polifil&eacute;tico (O'Donell, <i>et al.,</i> 1998; Baayen <i>et al.,</i> 2000). Por otro lado, el genotipo <i>lycopersici A</i> se agrupa con los dos genotipos de <i>radicis&#45;lycopersici,</i> lo que sugiere que existen similitudes gen&eacute;ticas entre estas dos formas especiales, tal como lo han reportado Van Putten <i>et al.</i> (2003).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los an&aacute;lisis con marcadores moleculares permiten identificar diferencias a nivel de ADN y en este estudio las tres t&eacute;cnicas lo evidenciaron sobre las cuatro formas especiales utilizadas. RAPD detect&oacute; polimorfismos entre los genotipos: <i>coffeae, ciceris, radicis&#45;lycopersici</i> y <i>lycopersici,</i> e incluso variaci&oacute;n entre los genotipos <i>lycopersici;</i> esta t&eacute;cnica ha sido ampliamente usada para estimaci&oacute;n de la diversidad gen&eacute;tica de especies y razas de <i>Fusarium</i> (Chandra <i>et al.,</i> 2008). Por otra parte Paavanen <i>et al.</i> (1999) detectaron alta variabilidad gen&eacute;tica en aislamientos de <i>F. oxysporum</i> con RAPD, adem&aacute;s de que la resoluci&oacute;n fue mejor comparada con isoenzimas; por otro lado, Manulis <i>et al.</i> (1994) indicaron que RAPD es un procedimiento simple, r&aacute;pido y reproducible comparado con otras t&eacute;cnicas. MP&#45;PCR tambi&eacute;n detect&oacute; polimorfismos entre las cuatro forma especiales, sin embargo, &eacute;stos no fueron lo suficientemente claros en este estudio debido a que hay presencia de barridos originados por una gran cantidad de fragmentos amplificados por la secuencia de los iniciadores utilizados, caracter&iacute;stica propia de la t&eacute;cnica que indica la gran cantidad de amplicones; pero que debido a su cercan&iacute;a en pesos moleculares, no se aprecian en esta clase de geles. Barve <i>et al.</i> (2001) identificaron diferencias con este tipo de marcadores en cuatro razas de <i>F. oxysporum</i> f. sp. <i>ciceris</i> y Bogale <i>et al.</i> (2005) mostraron que los polimorfismos detectados son suficientes para el estudio de la diversidad gen&eacute;tica en aislamientos de <i>F. oxysporum.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La t&eacute;cnica RAMPnr detect&oacute; alta variabilidad gen&eacute;tica a trav&eacute;s de perfiles abundantes y mayor n&uacute;mero de polimorfismos claramente n&iacute;tidos. Seg&uacute;n Barve <i>et al.</i> (2001) se&ntilde;alan que los marcadores basados en microsat&eacute;lites son los mejores para el estudio de <i>F. oxysporum,</i> debido a que son marcadores vers&aacute;tiles particularmente &uacute;tiles para el an&aacute;lisis de poblaciones. Por otro lado, Hancock y Simon (2005) mencionan que este tipo de marcadores son capaces de diferenciar especies altamente relacionadas y de acuerdo a Esselman <i>et al.</i> (1999) tambi&eacute;n detectan mayor cantidad de polimorfismos, por lo que se han utilizado ampliamente para el an&aacute;lisis de poblaciones de hongos (Chandra <i>et al.</i> 2008). El an&aacute;lisis filogen&eacute;tico hace posible la identificaci&oacute;n de formas especiales y razas de pat&oacute;genos, este tipo de comparaciones es necesario para la identificaci&oacute;n de estos organismos, en donde las medidas de control pueden resultar poco efectivas si no se identifica correctamente al organismo causal, sobre todo cuando no existe diferencia a nivel morfol&oacute;gico. Las tres t&eacute;cnicas utilizadas fueron capaces de diferenciar de manera r&aacute;pida e inequ&iacute;voca a cada forma especial de <i>Fusarium oxysporum,</i> adem&aacute;s de proporcionar datos con los cuales es posible diferenciar organismos de una misma especie tan compleja como es el caso de <i>F. oxysporum.</i></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura citada</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Arbela&eacute;z, T.G., 2000. Algunos aspectos de los hongos del g&eacute;nero <i>Fusarium</i> y de la especie <i>Fusarium oxysporum.</i> Agronom&iacute;a Colombiana 17: 11&#45;22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739649&pid=S0187-3180201500020000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Baayen, R.P., K. O'Donnell, P.J.M. Bonants, E. Cigelnik, L.P.N.M. Kroon, E.J.A. Roebroeck, C. Waalwijk, 2000. Gene genealogies and AFLP analyses in <i>Fusarium oxysporum</i> complex identify mononphyletic and nonmonophyletic formae speciales causing wilt and rot disease. Phytopathology 90: 891&#45;900.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739651&pid=S0187-3180201500020000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Barve, M.P., M.P. Haware, M.N. Sainani, P.K. Ranjekar, V.S. Gupta, 2001. Genetic diversity in Indian isolates of <i>Fusarium oxysporum</i> f. sp. <i>ciceris,</i> chickpea wilt pathogen. Theoretical and Applied Genetics 102: 138&#45;147.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739653&pid=S0187-3180201500020000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Baysal, &Ouml;., &Ccedil;. Karaaslan, M. Siragusa, R. Alessandro, F. Carimi, F. De Pasquale, J.A. Teixeira da Silva, 2013. Molecular markers reflect differentiation of <i>Fusarium oxysp</i>orum forma speciales on tomato and forma on eggplant. Biochemical Systematics and Ecology 47: 139&#45;147.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739655&pid=S0187-3180201500020000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Baysal, &Ouml;., M. Siragusa, H. Ikten, I. Polat, E. G&Uuml;mrkc&Uuml;, F. Yigit, F. Carimi, J. A. Teixeira da Silva, 2009. <i>Fusarium oxysporum</i> f. sp. <i>lycopersici</i> races and their genetic discrimination by molecular markers in West Mediterranean region of Turkey. Physiological and Molecular Plant Pathology 74: 68&#45;75.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739657&pid=S0187-3180201500020000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bentley, S., K.G. Pegg, N.Y. Moore, R.D. Davis, I.W. Buddenhagen, 1998. Genetic variation among vegetative compatibility groups of <i>Fusarium oxysporum</i> f. sp. <i>cubense</i> analyzed by DNA fingerprinting. Phytopathology 88: 1283&#45;1293.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739659&pid=S0187-3180201500020000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bogale, M.B., D. Wingfield, M.J. Wingfield, E.J. Steenkamp, 2005. Characterization of <i>Fusarium oxysporum</i> isolates from Ethiopia using AFLP, SSR and DNA sequence analyses. Fungal Diversity 23: 51&#45;66.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739661&pid=S0187-3180201500020000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chandra, N.S., S.A.C. Udaya, S.R. Niranjana, H.S. Prakash, 2008. Molecular detection and characterisation of <i>Fusarium verticillioides</i> in maize ( <i>Zea mays</i> L.) grown in southern India. Annals of Microbiology 58: 359&#45;367.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739663&pid=S0187-3180201500020000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esselman, E.J., L. Jianqiang, D.J. Crawford, J.L. Windus, A.D. Wolfe, 1999. Protocols for the inter simple sequence approach. Molecular Ecolology 8: 443&#45;451.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739665&pid=S0187-3180201500020000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Geiser, D.M., G.M.M. Jim&eacute;nez, S. Kang, I. Makalowska, N. Veeraraghavan, T.J. Ward, N. Zhang, G.A. Kuldau, K. O'Donnell, 2004. FUSARIUM&#45;ID v. 1.0: a DNA sequence database for identifying <i>Fusarium.</i> European Journal of Plant Pathology 110: 473&#45;479.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739667&pid=S0187-3180201500020000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hancock, J.M., M. Simon, 2005. Simple sequence repeats in proteins and their significance for network evolution. Gene 345: 113&#45;118.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739669&pid=S0187-3180201500020000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kelly, A.G., B.W. Bainbridge, J.B. Heale, A.E. P&eacute;rez, D.R.M. Jim&eacute;nez, 1998. In plant&#45;polymerase chain reaction detections of the wilt indicing pathotypes of <i>Fusarium oxysporum</i> f. sp. <i>ciceris</i> in chickpea <i>(Cicer arietinum).</i> Physiological and molecular Plant Pathology 52: 397&#45;409.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739671&pid=S0187-3180201500020000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kelly, A., J.A.R. Alcal&aacute;, B.W. Bainbridge, J.B. Heale, A.E. P&eacute;rez, D.R.M. Jim&eacute;nez, 1994. Use of genetic fingerprinting and random amplified polymorphic DNA to characterize pathotypes of <i>Fusarium oxysporum</i> f. sp. <i>ciceris</i> infecting chickpea. Phytopathology 84: 1293&#45;1298.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739673&pid=S0187-3180201500020000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kistler, H.C., 1997. Genetic diversity in the plant&#45;pathogenic fungus <i>Fusarium oxysporum.</i> Phytopathology 87: 474&#45;479.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739675&pid=S0187-3180201500020000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kistler, H.C., P.W. Bosland, U. Benny, S. Leong, P.H. Williams, 1987. Relatedness of strains of <i>Fusarium oxysporum</i> from crucifer measured by examination of mitochondrial and ribosomal DNA. Phytopathology 77: 1289&#45;1293.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739677&pid=S0187-3180201500020000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kristensen, R., M. Torp, B. Kosiak, J.A. Holst, 2005. Phylogeny and toxigenic potential is correlated in <i>Fusarium</i> species as revealed by partial translation elongation factor 1 alpha gene sequences. Mycological Research 109: 173&#45;186.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739679&pid=S0187-3180201500020000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kuninaga, S., R. Yokosawa, 1989. Genetic relatedness within and between formae speciales of <i>Fusarium oxysporum</i> measured by DNA&#45;DNA reassociation kinetics. Annals of the Phytopathological Society of Japan 55: 216&#45;223.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739681&pid=S0187-3180201500020000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Luna, P.A., R.H.V. Silva, M.N. Marb&aacute;n, M.E. Valadez, 2004. Variabilidad gen&eacute;tica de <i>Fusarium oxysporum</i> Schlechtend.:FR. f. sp. <i>ciceris</i> (Padwick) Matuo y &#1050;. Sato mediante PCR&#45;RAPD's en el Baj&iacute;o M&eacute;xico. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a 22: 44&#45;51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739683&pid=S0187-3180201500020000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Manulis, S., R.M. Kogan, Y. Benyephet, 1994. Use of the RAPD technique for identification of <i>Fusarium oxysporum</i> f. sp. <i>dianthi</i> from carnation. Journal of Phytopathology 84: 98&#45;101.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739685&pid=S0187-3180201500020000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">O'Donnell, &#1050;., H.C. Kistler, P.R.C. Cigelnik, 1998. Multiple evolutionary origins of the fungus causing Panama disease of banana: concordant evidence from nuclear and mitochondrial gene genealogies. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA 95: 2044&#45;2049.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739687&pid=S0187-3180201500020000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Paavanen, H.S., N.J. Hyvo, S.A. Bulat, M.T. Yli, 1999. RAPD&#45;PCR, isozyme, rDNA RFLP and rDNA sequence analyses in identification of Finnish <i>Fusarium oxysporum</i> isolates. Mycological Research 103: 625&#45;634.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739689&pid=S0187-3180201500020000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Seifert K.A., 2001. <i>Fusarium</i> and anamorph generic concepts. In: Summerell B.A., J.F. Leslie, D. Backhouse, W.L. Bryden, L.W. Burgess (eds.), <i>Fusarium.</i> APS Press. St. Paul, Minnesota. pp. 15&#45;28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739691&pid=S0187-3180201500020000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vakalounakis, D.J., G.A. Fragkiadakis, 1999. Genetic diversity of <i>Fusarium oxysporum</i> isolates from Cucumber: Differentiation by pathogenicity, vegetative compatibility and RAPD fingerprinting. Phytopathology 89: 161&#45;168.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739693&pid=S0187-3180201500020000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Valadez, M.E., G. Kahl., I.A. Rubluo, R. Arregu&iacute;n&#45;Espinoza de los Monteros, 2005. Optimizaci&oacute;n de las huellas de DNA obtenidas con RAPDs y MP&#45;PCR mediante la t&eacute;cnica RAMPnr. Revista Chapingo Serie Horticultura XI: 351&#45;356.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739695&pid=S0187-3180201500020000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Van Putten, W.F., A. Biere, J.M.M. Van Damme, 2003. Intraspecific competition and mating between fungal strains of the anther smut <i>Microbotryum violaceum</i> from the host plants <i>Silene latifolia</i> and <i>S. dioica.</i> Evolution 57: 766&#45;776.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739697&pid=S0187-3180201500020000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wulff, E.G., J.S. S	&oslash;rensen, M. L&uuml;beck, K.F. Nielsen, U. Thrane, J. Torp, 2010. <i>Fusarium</i> spp. associated with rice Bakanae: ecology, genetic diversity, pathogenicity and toxigenicity. Environmental Microbiology 12: 649&#45;657.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8739699&pid=S0187-3180201500020000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
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