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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Variación intratalo de compuestos fenólicos, actividad antioxidante y actividad de la fenolsulfatasa en Cystoseira tamariscifolia (Phaeophyceae) del sur de España]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Intra-thallus variation of phenolic compounds, antioxidant activity, and phenolsulphatase activity in Cystoseira tamariscifolia (Phaeophyceae) from southern Spain]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Intra-thallus variation in phenolic content, antioxidant activity, and phenolsulphatase activity (EC 3.1.6.1) was studied in Cystoseira tamariscifolia (Phaeophyceae) from southern Spain. Significant differences in the content of phenolic compounds were found among apical, middle, and basal sections of the thallus of C. tamariscifolia. The concentrations of phenolic compounds and of phenolsulphatase activity were highest in the apical section and decreased toward the basal section. There was a highly significant correlation between the concentration of phenolic compounds and antioxidant and phenolsulphatase activities in C. tamariscifolia. Phenol excretion and phenolsulfatase activity were significantly correlated with integrated irradiance. Cystoseira tamariscifolia grows in tightly packed turfs that promote auto-shading in the middle and basal sections of its thalli, and it is thus likely that the higher polyphenol content in the apical section of this species is a response to the higher exposure to ultraviolet radiation and photosynthetically active radiation relative to the middle and basal sections. These results suggest that this excretion of phenolic compounds might function as a protective mechanism serving as a radiation filter in the immediate surroundings of the C. tamariscifolia thalli.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>          <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Variaci&oacute;n intratalo de compuestos fen&oacute;licos, actividad antioxidante y actividad de la fenolsulfatasa en <i>Cystoseira tamariscifolia</i> (Phaeophyceae) del sur de Espa&ntilde;a</b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Intra&#45;thallus variation of phenolic compounds, antioxidant activity, and phenolsulphatase activity in <i>Cystoseira tamariscifolia</i> (Phaeophyceae) from southern Spain</b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Roberto Te&oacute;filo Abdala&#45;D&iacute;az<sup>1,*</sup>, Alejandro Cabello&#45;Pasini<sup>2</sup>, Eugenia M&aacute;rquez&#45;Garrido<sup>1</sup>, F&eacute;lix L&oacute;pez Figueroa<sup>1</sup></b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Departamento de Ecolog&iacute;a, Facultad de Ciencias, Universidad de M&aacute;laga, Campus Universitario de Teatinos s/n, M&aacute;laga E&#45;29071, Spain.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Instituto de Investigaciones Oceanol&oacute;gicas, Universidad Aut&oacute;noma de Baja California, Carretera Transpeninsular Ensenada&#45;Tijuana No. 3917, Fraccionamiento Playitas, Ensenada 22860, Baja California, M&eacute;xico.</i></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Received October 2013    <br>     Accepted January 2014.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>* Corresponding author.</b>    <br>     E&#45;mail: <a href="mailto:abdala@uma.es">abdala@uma.es</a></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se estudi&oacute; la variaci&oacute;n intratalo del contenido fen&oacute;lico, la actividad antioxidante y la actividad de la fenolsulfatasa (EC 3.1.6.1) en <i>Cystoseira tamariscifolia</i> (Phaeophyceae) del sur de Espa&ntilde;a. Se encontraron diferencias significativas en el contenido de los compuestos fen&oacute;licos entre las secciones apical, media y basal del talo de <i>C. tamariscifolia.</i> La concentraci&oacute;n de los compuestos fen&oacute;licos y la actividad de la fenolsulfatasa fueron mayores en la secci&oacute;n apical y disminuyeron hacia la secci&oacute;n basal. Se observ&oacute; una correlaci&oacute;n significativa entre la concentraci&oacute;n de los compuestos fen&oacute;licos y la actividad antioxidante y de la fenolsulfatasa en <i>C. tamariscifolia.</i> Tanto la excreci&oacute;n de fenoles en el agua de mar como la actividad de la fenolsulfatasa se correlacionaron significativamente con la radiaci&oacute;n integrada. Esta especie crece en bosques densos que proporcionan autosombra a las secciones media y basal de los talos, y es probable que el mayor contenido de polifenoles en la secci&oacute;n apical se debe a una mayor exposici&oacute;n a radiaci&oacute;n fotosint&eacute;ticamente activa y radiaci&oacute;n ultravioleta en comparaci&oacute;n con las secciones media y basal. Estos resultados sugieren que la excreci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos funciona como un mecanismo de protecci&oacute;n que proporciona un filtro de radiaci&oacute;n en las inmediaciones de los talos de <i>C. tamariscifolia.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> actividad antioxidante, <i>Cystoseira tamariscifolia,</i> compuestos fen&oacute;licos, actividad de la fenolsulfatasa.</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Intra&#45;thallus variation in phenolic content, antioxidant activity, and phenolsulphatase activity (EC 3.1.6.1) was studied in <i>Cystoseira tamariscifolia</i> (Phaeophyceae) from southern Spain. Significant differences in the content of phenolic compounds were found among apical, middle, and basal sections of the thallus of <i>C. tamariscifolia.</i> The concentrations of phenolic compounds and of phenolsulphatase activity were highest in the apical section and decreased toward the basal section. There was a highly significant correlation between the concentration of phenolic compounds and antioxidant and phenolsulphatase activities in <i>C. tamariscifolia.</i> Phenol excretion and phenolsulfatase activity were significantly correlated with integrated irradiance. <i>Cystoseira tamariscifolia</i> grows in tightly packed turfs that promote auto&#45;shading in the middle and basal sections of its thalli, and it is thus likely that the higher polyphenol content in the apical section of this species is a response to the higher exposure to ultraviolet radiation and photosynthetically active radiation relative to the middle and basal sections. These results suggest that this excretion of phenolic compounds might function as a protective mechanism serving as a radiation filter in the immediate surroundings of the <i>C. tamariscifolia</i> thalli.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> antioxidant activity, <i>Cystoseira tamariscifolia,</i> phenolic compounds, phenolsulphatase activity.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los organismos marinos, incluyendo las algas que habitan en la zona intermareal, est&aacute;n expuestos a radicales libres y otros agentes oxidantes (Abdala&#45;D&iacute;az <i>et al.</i> 2006, Rodr&iacute;guez&#45;Troncoso <i>et al.</i> 2013). Por consiguiente, las algas marinas sintetizan las enzimas protectoras (e.g., super&oacute;xido dismutasa, peroxidasa, glutati&oacute;n reductasa, catalasa) y los compuestos antioxidantes (e.g., florotaninos, fosfol&iacute;pidos, &aacute;cido asc&oacute;rbico, carotenoides, bromofenoles, catequinas, amino&aacute;cidos tipo micosporina, polisac&aacute;ridos) como mecanismo de defensa (Abdala&#45;D&iacute;az <i>et al.</i> 2006, Korbee <i>et al.</i> 2006, Bellassoued <i>et al.</i> 2012). Adem&aacute;s de las enzimas, las algas y plantas superiores sintetizan los polifenoles estructurales que tambi&eacute;n poseen una alta capacidad antioxidante (Goodwin y Mercer 1988). Entre las algas marinas, las pertenecientes a la clase Phaeophyceae contienen los niveles m&aacute;s altos de compuestos fen&oacute;licos, principalmente en forma de florotaninos, i.e., floroglucinol (1,3,5&#45;trihidroxibenceno). Los mayores niveles de florotaninos han sido encontrados en las algas del orden Fucales y orden Dictyotales (20&#45;30&#37; de peso seco (PS), Targett <i>et al.</i> 1995).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los florotaninos, empaquetados en ves&iacute;culas llamadas fisoides unidas a la membrana, parecen desempe&ntilde;ar m&uacute;ltiples funciones en las algas pardas, tanto a nivel celular como del organismo (Schoenwaelder 2002). Por ejemplo, estos polifenoles juegan un papel fundamental en la protecci&oacute;n de las algas pardas contra el pastoreo (Pavia y Toth 2000) y en el proceso de anclaje de la planta al sustrato (Vreeland <i>et al.</i> 1998). Las concentraciones de estos compuestos muestran variaciones estacionales, geogr&aacute;ficas y diarias, y son afectadas por los niveles de radiaci&oacute;n fotosint&eacute;ticamente activa (PAR, por sus siglas en ingl&eacute;s) y radiaci&oacute;n UV, la concentraci&oacute;n de nutrientes y la salinidad (Pedersen 1984, Ragan y Glombitza 1986, Yates y Peckol 1993, Pavia <i>et al.</i> 1997, Abdala&#45;D&iacute;az <i>et al.</i> 2006). La diversidad de los compuestos fen&oacute;licos y la variedad de los par&aacute;metros que condicionan su acumulaci&oacute;n en las algas pardas pueden explicar por qu&eacute; los contenidos fen&oacute;licos y la zonificaci&oacute;n de algas no son totalmente interdependientes (Connan <i>et al.</i> 2004).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha documentado que el proceso de s&iacute;ntesis y excreci&oacute;n de compuestos polifen&oacute;licos en algas marinas es un mecanismo de defensa contra el herbivorismo y niveles altos de radiaci&oacute;n UV y PAR. La concentraci&oacute;n de florotaninos en el alga <i>Lessonia nigrescens,</i> por ejemplo, aumenta seg&uacute;n incrementa el nivel de radiaci&oacute;n UV (G&oacute;mez y Huovinen 2010). La excreci&oacute;n de coumarinas en el alga verde <i>Dasycladus vermicularis</i> aument&oacute; cuatro veces a mayores niveles de PAR (P&eacute;rez&#45;Rodr&iacute;guez <i>et al.</i> 2001). Un incremento de los compuestos polifen&oacute;licos en el agua circundante reduce la transmisi&oacute;n de luz y protege a las algas contra niveles altos de radiaci&oacute;n UV y PAR.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La fenolsulfatasa (arilsulfatasa) (E.C. 3.1.6.1) es una enzima ampliamente distribuida en bacterias, algas, hongos, plantas superiores y animales. Esta enzima es parcialmente responsable de la hidr&oacute;lisis de &eacute;steres de sulfato en los extractos crudos de plantas (Farooqui <i>et al.</i> 1977). En el talo del alga marina <i>Cystoseira tamariscifolia</i> se ha detectado la hidr&oacute;lisis de &eacute;steres sulfatados (sulfato de <i>p</i>&#45;nitrocatecol, sulfato de <i>p</i>&#45;nitrofenil, sulfato de 6&#45;benzol&#45;2&#45;naftil, etc.) por la fenolsulfatasa (Kn&ouml;ss y Glombitza 1993); sin embargo, se desconoce si esta enzima juega un papel importante en la hidr&oacute;lisis y excreci&oacute;n de polifenoles en condiciones de estr&eacute;s.</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Cystoseira tamariscifolia</i> es abundante en la zona intermareal de la costa mediterr&aacute;nea de Espa&ntilde;a. Las algas que habitan en la zona intermareal, incluyendo <i>C. tamariscifolia,</i> est&aacute;n expuestas a diferentes niveles de radiaci&oacute;n UV y PAR. Mientras est&aacute;n inmersas, estas plantas reciben poca luz, pero cuando emergen, sus porciones apicales pueden quedar expuestas a desecaci&oacute;n y a dosis altas de radiaci&oacute;n UV y PAR. Aparte de la fotoinhibici&oacute;n din&aacute;mica, <i>C. tamariscifolia</i> ha desarrollado mecanismos eficientes de fotoprotecci&oacute;n contra estas condiciones ambientalmente estresantes (Hader y Figueroa 1997). Varios trabajos han mostrado, por ejemplo, que la excreci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos incrementa en condiciones de alta radiaci&oacute;n (P&eacute;rez&#45;Rodr&iacute;guez <i>et al.</i> 2001, Koivikko <i>et al.</i> 2005, Abdala&#45;D&iacute;az <i>et al.</i> 2006, G&oacute;mez y Huovinen 2010). Por tanto, es posible que la actividad de la fenolsulfatasa forme las sustancias naturales activas a tasas correlacionadas con los de su excreci&oacute;n. El objetivo de este trabajo fue relacionar la distribuci&oacute;n intratalo de los compuestos fen&oacute;licos y la actividad antioxidante y actividad de la fenolsulfatasa como un balance entre la producci&oacute;n y excreci&oacute;n de fenoles en <i>C. tamariscifolia</i> (Phaeophyceae) del sur de Espa&ntilde;a.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material algal</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En julio de 2010 se recolectaron muestras de <i>C. tamariscifolia</i> temprano en la ma&ntilde;ana en el Parque Natural Cabo de Gata&#45;N&iacute;jar (36&#176;52' N, 2&#176;12' W; Almer&iacute;a, Espa&ntilde;a) en el Mediterr&aacute;neo. Las algas fueron desprendidas del sustrato rocoso (zona intermareal) y transportadas en nitr&oacute;geno l&iacute;quido al laboratorio para su an&aacute;lisis.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Extracci&oacute;n y ensayo de fenoles</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los talos fueron divididos en tres secciones: basal, media y apical. Se homogeneizaron muestras de cada secci&oacute;n <i>(n</i> = 5) en nitr&oacute;geno l&iacute;quido con un mortero y se extrajeron con 2.5 mL de metanol al 80&#37; (v/v). Se centrifug&oacute; el homogenado a 19,000 <i>g</i> durante 15 min y se recolect&oacute; el sobrenadante. Los compuestos fen&oacute;licos totales fueron determinados usando floroglucinol (1,3,5&#45;trihidroxibenceno, Sigma P&#45;3502) como un est&aacute;ndar (Folin y Ciocalteu 1927).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad de la fenolsulfatasa</b></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad de la enzima fenolsulfatasa en el talo de <i>C. tamariscifolia</i> se determin&oacute; colorim&eacute;tricamente. Se incubaron aproximadamente 50 mg (peso h&uacute;medo) de tejido en 2.1 mL de tamp&oacute;n de ensayo (225 &#956;L de MES&#45;Tris 0.4 M, pH 6.2, 225 &#956;L de sulfato de <i>p</i>&#45;nitrocatecol 2.22 mM, 600 &#956;L de H<sub>2</sub>O) y H<sub>2</sub>O (1:1) en la oscuridad durante 24 h a temperatura ambiente seg&uacute;n Kn&ouml;ss y Glombitza (1993). La reacci&oacute;n se detuvo a&ntilde;adiendo tres gotas de NaOH 5 M. Se evalu&oacute; la absorbancia de la soluci&oacute;n a 510 nm y se estim&oacute; la concentraci&oacute;n de <i>p</i>&#45;nitrocatecol con una curva est&aacute;ndar. Se calcul&oacute; la actividad de la fenolsulfatasa (&#956;mol nitrocatecol g<sup>&#45;1</sup> PS h<sup>&#45;1</sup>) en cada secci&oacute;n de tejido de <i>C. tamariscifolia.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad antioxidante</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evaluaron las actividades antioxidante y antirradical de los extractos mediante el m&eacute;todo del radical libre 2,2&#45;difenil&#45;1&#45;picrilhidrazil (DPPH) (Brand&#45;Williams <i>et al.</i> 1995). Se adicionaron al&iacute;quotas de 300 &#956;L de los extractos a una soluci&oacute;n de 3 mL de DPPH (0.358 mM) en metanol al 90&#37; (v/v). Las muestras se incubaron durante 1 h y se midi&oacute; la absorbancia a 517 nm usando agua desmineralizada como blanco. La absorbancia fue transformada en un porcentaje de inhibici&oacute;n contra agua desmineralizada. Para determinar la concentraci&oacute;n requerida para obtener un efecto antioxidante del 50&#37; (EC<sub>50</sub>), se diluy&oacute; la soluci&oacute;n del extracto en metanol y se realiz&oacute; el ensayo DPPH.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Excreci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para evaluar el efecto de los niveles de PAR en la tasa de excreci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos y la actividad de la fenolsulfatasa, se incub&oacute; el tejido de <i>C. tamariscifolia</i> bajo diferentes intensidades de luz amarilla proporcionada por l&aacute;mparas de sodio de baja presi&oacute;n (Philips, EUA, SOX bajo = 30 &#956;mol m<sup>&#45;2</sup> s<sup>&#45;1</sup> y SOX alto = 360 &#956;mol m<sup>&#45;2</sup> s<sup>&#45;1</sup>). Los experimentos se realizaron en contenedores de acr&iacute;lico (2 L, <i>n</i> = 3) en una c&aacute;mara de crecimiento a 15 &#176;C, manteniendo el tejido en suspensi&oacute;n constante mediante la introducci&oacute;n de burbujas de aire. Se tomaron muestras de agua despu&eacute;s de 18, 24, 36, 48 y 60 h, y se determin&oacute; la aborbancia a &#955; = 266 nm (absorbancia m&aacute;xima de floroglucinol, Waterman y Mole 1994). Se evalu&oacute; la concentraci&oacute;n de fenoles excretados en el agua de mar mediante el coeficiente de extinci&oacute;n molar de floroglucinol en agua de mar (&#949; = 0.00169 M cm<sup>&#45;1</sup>). La concentraci&oacute;n molar se determin&oacute; con la siguiente ecuaci&oacute;n:</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v40n1/a1s1.jpg"></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde <i>C</i> es la concentraci&oacute;n de fenoles (M), <i>A</i><sub>266</sub> es la absorbancia a 266 nm, &#949; es el coeficiente de extinci&oacute;n molar de floroglucinol en agua de mar y <i>L</i> es la longitud de paso de la luz de la cubeta de cuarzo. Se expres&oacute; la concentraci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos excretados en el agua de mar en mM.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;sticos</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las diferencias significativas entre la concentraci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos y la actividad antioxidante y de la fenolsulfatasa en <i>C. tamariscifolia</i> fueron analizadas mediante un an&aacute;lisis de varianza de una v&iacute;a (ANOVA) despu&eacute;s de comprobar la normalidad y homocedasticidad de los datos (Sokal y Rohlf 1995). Se determinaron las diferencias de las concentraciones en las secciones espec&iacute;ficas de los talos mediante la prueba <i>post hoc</i> de Newman&#45;Keuls, con un nivel de significancia de <i>P</i> &#60; 0.05. La significancia de la correlaci&oacute;n entre el contenido fen&oacute;lico y la actividad antioxidante y entre el contenido fen&oacute;lico y la actividad de la fenolsulfatasa se verific&oacute; mediante correlaciones producto&#45;momento de Pearson. Se estableci&oacute; un nivel m&iacute;nimo de significancia de <i>P</i> &#60; 0.05.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Contenido fen&oacute;lico y actividad de la fenolsulfatasa</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La concentraci&oacute;n de los compuestos fen&oacute;licos en las diferentes secciones del talo de <i>C. tamariscifolia</i> mostr&oacute; diferencias significativas (P &#60; 0.05, <a href="#f1">fig. 1</a>). La concentraci&oacute;n de los compuestos fen&oacute;licos fue de dos a cuatro veces mayor en la secci&oacute;n apical que en las secciones media y basal. La actividad de la fenolsulfatasa tambi&eacute;n mostr&oacute; diferencias significativas entre las muestras de tejido de <i>C. tamariscifolia (P</i> &#60; 0.05, fig. 1), observ&aacute;ndose la mayor actividad (P &#60; 0.05) en la secci&oacute;n apical (900 &#956;mol nitrocatecol g<sup>&#45;1</sup> PS h<sup>&#45;1</sup>) y la menor en la secci&oacute;n basal.</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v40n1/a1f1.jpg"></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Capacidad antioxidante</b></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se observaron diferencias significativas <i>(P</i> &#60; 0.05) en la capacidad antioxidante entre las tres secciones del talo de <i>C. tamariscifolia</i> (<a href="#f2">fig. 2</a>), siendo mayor en la secci&oacute;n apical y cinco veces menor (P &#60; 0.05) hacia la secci&oacute;n basal. Se observ&oacute; una correlaci&oacute;n positiva y significativa <i>(P</i> &#60; 0.05) entre los niveles de compuestos fen&oacute;licos en el tejido y la actividad de la fenolsulfatasa, as&iacute; como entre los niveles de compuestos fen&oacute;licos en el tejido y la capacidad antioxidante (<a href="#f3">fig. 3</a>). La actividad de la fenolsulfatasa y la capacidad antioxidante fueron menores en los tejidos con menores niveles de compuestos fen&oacute;licos y fueron mayores en los tejidos con mayores niveles de compuestos fen&oacute;licos.</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v40n1/a1f2.jpg"></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v40n1/a1f3.jpg"></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Irradiaci&oacute;n y excreci&oacute;n de fenoles</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se observ&oacute; una correlaci&oacute;n positiva y significativa (P &#60; 0.05) entre la dosis de radiaci&oacute;n integrada y la excreci&oacute;n de fenoles, y entre la dosis de radiaci&oacute;n integrada y la actividad de la fenolsulfatasa (<a href="#f4">fig. 4</a>). La actividad de la fenolsulfatasa y la excreci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos fueron menores a dosis integradas bajas y mayores a dosis integradas altas. Adem&aacute;s, se observ&oacute; un incremento de la excreci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos en funci&oacute;n del tiempo cuando el tejido fue expuesto a luz SOX baja o alta (<a href="#f5">fig. 5</a>); sin embargo, la tasa de excreci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos fue dos veces mayor (P &#60; 0.05) en tejidos incubados con luz SOX alta que con luz SOX baja. Las tasas de excreci&oacute;n se mantuvieron constantes durante el periodo de incubaci&oacute;n de 60 h.</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v40n1/a1f4.jpg"></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v40n1/a1f5.jpg"></font></p>              <p align="justify">&nbsp;</p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las algas marinas intermareales han desarrollado mecanismos para reducir el estr&eacute;s causado por cambios en el r&eacute;gimen de luz y variaciones estacionales de la temperatura. Estos mecanismos de defensa incluyen la producci&oacute;n de antioxidantes, la captaci&oacute;n de radicales libres mediante compuestos fen&oacute;licos, y/o enzimas antioxidantes (Jim&eacute;nez&#45;Escring <i>et al.</i> 2001, Lohrmann <i>et al.</i> 2004, Zubia <i>et al.</i> 2009). En <i>Chondrus crispus</i> y <i>Mastocarpus stellatus,</i> por ejemplo, la actividad de las enzimas antioxidantes super&oacute;xido dismutasa, ascorbato peroxidasa y glutati&oacute;n reductasa es mayor en invierno que en verano (Lohrmann <i>et al.</i> 2004). Esto sugiere que las algas responden al incremento en la producci&oacute;n de especies reactivas del ox&iacute;geno aumentando la producci&oacute;n de enzimas antioxidantes y compuestos fen&oacute;licos. <i>Cystoseira tamariscifolia</i> del sur de Espa&ntilde;a tambi&eacute;n est&aacute; expuesta a grandes fluctuaciones de luz, radiaci&oacute;n UV y temperatura a lo largo del a&ntilde;o (Hader <i>et al.</i> 1997), y es probable que tambi&eacute;n experimenta variaciones estacionales de compuestos y enzimas antioxidantes, como ha sido documentado para algas de Breta&ntilde;a, Francia (Connan <i>et al.</i> 2007).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha demostrado que el contenido de compuestos fen&oacute;licos var&iacute;a entre especies as&iacute; como entre las secciones del talo de diferentes especies. En <i>Ascophyllum nodosum</i> se ha observado una mayor concentraci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos en la secci&oacute;n apical que en las secciones media y basal del talo (Geiselman 1980). Tambi&eacute;n se han documentado variaciones intratalo en dos especies de <i>Sargassum</i> y en el alga verde <i>Dasycladus vermicularis</i> a lo largo del a&ntilde;o, observ&aacute;ndose los niveles m&aacute;s altos en la secci&oacute;n apical y las concentraciones m&aacute;s bajas en la secci&oacute;n basal y el &oacute;rgano de fijaci&oacute;n (Rao y Untawale 1991, P&eacute;rez&#45;Rodr&iacute;guez <i>et al.</i> 2001). En el presente estudio, el contenido de compuestos fen&oacute;licos en el talo de <i>C. tamariscifolia</i> tambi&eacute;n fue mayor en la secci&oacute;n apical que en las secciones media y basal. <i>Cystoseira tamariscifolia</i> crece en bosques densos que proporcionan autosombra a las secciones media y basal del talo; por lo tanto, es probable que el mayor contenido de polifenoles en la secci&oacute;n apical de esta especie se debe a una mayor exposici&oacute;n a radiaci&oacute;n UV y PAR en comparaci&oacute;n con las secciones media y basal.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Asimismo, se han registrado variaciones en el contenido de fenoles en el alga parda <i>Macrocystis integrifolia,</i> las cuales se han relacionado con un aumento en los niveles de luz solar y radiaci&oacute;n UV (Swanson y Druehl 2002). En <i>C. tamariscifolia,</i> Abdala&#45;D&iacute;az <i>et al.</i> (2006) encontraron que los niveles de compuestos fen&oacute;licos son bajos en la ma&ntilde;ana y aumentan progresivamente durante el d&iacute;a. Esto sugiere una relaci&oacute;n entre la fotoregulaci&oacute;n de la producci&oacute;n de fenoles y la radiaci&oacute;n acumulativa durante la exposici&oacute;n.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La desulfuraci&oacute;n de polifenoles por la fenolsulfatasa ha sido observada en varias especies (Abdala&#45;D&iacute;az 2001). Se ha encontrado que esta desulfuraci&oacute;n se correlaciona con la excreci&oacute;n de fenoles libres cuando las algas est&aacute;n expuestas a condiciones de estr&eacute;s como la radiaci&oacute;n solar en verano. Como tambi&eacute;n se ha mostrado en otros estudios, el contenido fen&oacute;lico y la actividad de la fenolsulfatasa incrementan en <i>C. tamariscifolia</i> cuando es incubada bajo altos niveles de PAR. Craigie y McLachlan (1964) analizaron el efecto de temperatura, pH, salinidad y luz en la coloraci&oacute;n del agua por puntas cortadas de <i>Fucus vesiculosus</i> y encontraron que esta especie excret&oacute; aproximadamente 0.25&#37; de su peso seco como flavonoides despu&eacute;s de 10 h a 20 &#176;C. Asimismo, <i>F. vesiculosus</i> puede excretar al menos 0.05&#37; de su peso seco como material fen&oacute;lico en un periodo de 24 h a 6&#45;7 &#176;C (Sieburth y Jensen 1969). Estos autores tambi&eacute;n observaron un aumento de material fen&oacute;lico al incrementar la salinidad del agua. Nuestros resultados muestran que la excreci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos aumenta en tejido expuesto a niveles altos de PAR. Estos resultados sugieren que la excreci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos puede funcionar como un mecanismo de protecci&oacute;n proporcionando un filtro de radiaci&oacute;n en las inmediaciones de los talos de <i>C. tamariscifolia.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los compuestos fen&oacute;licos y los amino&aacute;cidos tipo micosporina funcionan como un mecanismo de defensa contra altos niveles de luz en varias algas marinas (Korbee <i>et al.</i> 2006). En <i>C. tamariscifolia,</i> la porci&oacute;n apical del talo queda expuesta a mayores niveles de radiaci&oacute;n, mientras que la secci&oacute;n basal est&aacute; fija al sustrato y protegida de altos niveles de PAR (Abdala&#45;D&iacute;az 2001). En estas circunstancias la secci&oacute;n apical del talo necesitar&iacute;a una mayor protecci&oacute;n contra el fotoda&ntilde;o. Los mayores niveles de compuestos fen&oacute;licos en la secci&oacute;n apical son consistentes con una mayor exposici&oacute;n a radiaci&oacute;n. Adem&aacute;s, la correlaci&oacute;n entre la dosis de radiaci&oacute;n integrada y la excreci&oacute;n de fenoles indica que hay una respuesta r&aacute;pida a un incremento en los niveles de luz.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de fenoles en el talo es un balance entre la s&iacute;ntesis y la excreci&oacute;n. Se han descrito dos diferentes fracciones internas de florotaninos: una fracci&oacute;n soluble en los fisoides del citoplasma y una fracci&oacute;n insoluble unida a la pared celular (Koivikko <i>et al.</i> 2005, G&oacute;mez y Huovinen 2010). La proporci&oacute;n de excreci&oacute;n y florotaninos solubles e insolubles puede ser afectada por procesos morfofuncionales intr&iacute;nsecos y el proceso de aclimataci&oacute;n estacional (G&oacute;mez y Huovinen 2010). En <i>Lessonia nigrescens,</i> durante el verano cuando las algas est&aacute;n expuestas a altos niveles de radiaci&oacute;n UV, se inducen los florotaninos solubles y se observa una alta tasa de excreci&oacute;n, mientras que su transici&oacute;n a florotaninos insolubles puede estar relacionada con requerimientos de crecimiento ya que el alargamiento de las hojas sucede durante esta temporada (G&oacute;mez y Huovinen 2010).</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La correlaci&oacute;n positiva entre el contenido de compuestos fen&oacute;licos en los tejidos y la actividad antioxidante de <i>C.&nbsp;tamariscifolia</i> sugiere que los compuestos activos en los extractos de las secciones del talo son principalmente sustancias fen&oacute;licas. Esto coincide con otros estudios que muestran que la actividad antioxidante de los extractos medidos mediante el m&eacute;todo de DPPH se relaciona estrechamente con el contenido fen&oacute;lico de algas pardas (Jim&eacute;nez&#45;Escring <i>et al.</i> 2001). Tambi&eacute;n se ha observado una relaci&oacute;n entre las coumarinas y la actividad antioxidante en el alga verde <i>D.&nbsp;vermicularis</i> (P&eacute;rez&#45;Rodr&iacute;guez <i>et al.</i> 2001).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este trabajo fue financiado por el Ministerio de Ciencia e Innovaci&oacute;n de Espa&ntilde;a (proyecto CGL08&#45;05407&#45;C03&#45;01). El primer autor agradece la Agencia Espa&ntilde;ola de Cooperaci&oacute;n Internacional para el Desarrollo. Los autores agradecen el uso de las facilidades de la Delegaci&oacute;n Provincial (Consejer&iacute;a de Medio Ambiente, Junta de Andaluc&iacute;a) en el Parque Natural Cabo de Gata&#45;N&iacute;jar.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Abdala&#45;D&iacute;az RT. 2001. Fotocontrol de la acumulaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos en algas pardas. PhD dissertation, Universidad de M&aacute;laga, 325 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953574&pid=S0185-3880201400010000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Abdala&#45;D&iacute;az R, Cabello&#45;Pasini A, P&eacute;rez&#45;Rodr&iacute;guez E, Conde&#45;Alvarez R, Figueroa FL. 2006. Daily and seasonal variations of optimum quantum yield and phenolic compounds in <i>Cystoceira tamariscifolia</i> (Phaeophyta). Mar. Biol. 148: 459&#151;165.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953576&pid=S0185-3880201400010000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bellassoued K, Hamza A, Abdelmouleh A, van Pelt CJ, Elfeki A. 2012. Antioxidant response of a common herbivorous fish species <i>(Sarpa salpa):</i> Seasonal variation. Cienc. Mar. 38: 57&#45;71.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953578&pid=S0185-3880201400010000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brand&#45;Williams W, Cuvelier M, Berset C. 1995. Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. Lebensm. Wiss. Technol. 28: 25&#45;30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953580&pid=S0185-3880201400010000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Connan S, Goulard F, Stiger V, Deslandes E, Ar Gall E. 2004. Interspecific and temporal variation in phlorotannin levels in an assemblage of brown algae. Bot. Mar. 47: 410&#45;116.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953582&pid=S0185-3880201400010000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Connan S, Deslandes E, Ar Gall E. 2007. Influence of day&#45;night and tidal cycles on phenol content and antioxidant capacity in three temperate intertidal brown seaweeds. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 349: 359&#45;369.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953584&pid=S0185-3880201400010000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Craigie JS, McLachlan J. 1964. Excretion of coloured ultraviolet&#45;absorbing substances by marine algae. Can. J. Bot. 42: 23&#45;33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953586&pid=S0185-3880201400010000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Farooqui AA, Samiullah S, Afridi MMRK. 1977. Arylsulphatase activity of corn (Zea <i>mays</i> L.) seedling roots. Planta 133: 157&#45;160.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953588&pid=S0185-3880201400010000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Folin O, Ciocalteu V. 1927. On tyrosine and tryptophane determinations in protein. J. Biol. Chem. 12: 239&#45;243.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953590&pid=S0185-3880201400010000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Geiselman JL. 1980. Ecology of chemical defenses of algae against the herbivorous snail, <i>Littorina littorea,</i> in the New England rock intertidal community. Dissertation, Massachusetts Institute of Technology.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953592&pid=S0185-3880201400010000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">G&oacute;mez I, Huovinen P. 2010. Induction of phlorotannins during UV exposure mitigates inhibition of photosynthesis and DNA damage in the kelp <i>Lessonia nigrescens.</i> Photochem. Photobiol. 86: 1056&#45;1063.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953594&pid=S0185-3880201400010000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Goodwin TW, Mercer EI. 1988. Introduction to Plant Biochemistry. Pergamon Press, New York, 677 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953596&pid=S0185-3880201400010000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hader DP, Figueroa FL. 1997. Photoecophysiology of marine macroalgae. Photochem. Photobiol. 66: 1&#45;14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953598&pid=S0185-3880201400010000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hader DP, Lebert M, Flores&#45;Moya A, Jimenez C, Mercado J, Salles S, Aguilera J, Figueroa FL. 1997. Effects of solar radiation on the photosynthetic activity of the red alga <i>Corallina elongata</i> Ellis et Soland. J. Photochem. Photobiol. 37: 196&#45;202.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953600&pid=S0185-3880201400010000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jim&eacute;nez&#45;Escring A, Jim&eacute;nez&#45;Jim&eacute;nez I, Pulido R, Saura&#45;Calixto F. 2001. Antioxidant activity of fresh and processed edible seaweeds. J. Sci. Food Agric. 81: 530&#45;534.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953602&pid=S0185-3880201400010000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kn&ouml;ss W, Glombitza KW. 1993. A phenolsulphatase from the marine brown alga <i>Cystoseira tamariscifolia.</i> Phytochemistry 32: 1119&#45;1123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953604&pid=S0185-3880201400010000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Koivikko R, Loponen J, Honkanen T, Jormalainen V. 2005. Contents of soluble, cell&#45;wall&#45;bound and exuded phlorotannins in the brown alga <i>Fucus vesiculosus,</i> with implications on their ecological aspects. J. Chem. Ecol. 31: 195&#45;212.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953606&pid=S0185-3880201400010000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Korbee N, Figueroa F, Aguilera J. 2006. Effect of light quality on the accumulation of photosynthetic pigments, proteins and mycosporine&#45;like aminoacids in the red alga <i>Porphyra leucosticta</i> (Bangiales, Rhodophyta). Mar. Biol. 80: 71&#45;78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953608&pid=S0185-3880201400010000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lohrmann N, Logan B, Johnson A. 2004. Seasonal acclimatization of antioxidants and photosynthesis in <i>Chondrus crispus</i> and <i>Mastocarpus stellatus,</i> two co&#45;occurring red algae with differing stress tolerances. Biol. Bull. 207: 225&#45;232.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953610&pid=S0185-3880201400010000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pavia H, Toth GB. 2000. Inducible chemical resistance to herbivory in the brown seaweed <i>Ascophyllum nodosum.</i> Ecology 81: 3212&#45;3225.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953612&pid=S0185-3880201400010000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pavia H, Cervin G, Lindgren A, Aberg P. 1997. Effects of UV&#45;B radiation and simulated herbivory on phlorotannins in the brown alga <i>Ascophyllum nodosum.</i> Mar. Ecol. Prog. Ser. 157: 139&#45;146.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953614&pid=S0185-3880201400010000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pedersen A. 1984. Studies on phenol content and heavy metal uptake in fucoids. Proc. Int. Seaweed Symp. 11: 498&#45;504.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953616&pid=S0185-3880201400010000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">P&eacute;rez&#45;Rodr&iacute;guez E, Aguilera J, G&oacute;mez I, Figueroa FL. 2001. Excretion of coumarins by the Mediterranean green alga <i>Dasycladus vermicularis</i> in response to enviromental stress. Mar. Biol. 139: 633&#45;639.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953618&pid=S0185-3880201400010000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ragan MA, Glombitza KW. 1986. Phlorotannins, brown algal polyphenols. Prog. Phycol. Res. 4: 129&#45;241.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953620&pid=S0185-3880201400010000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rao CKH, Untawale AG. 1991. Polyphenols content of Indian seaweeds. Mahasagar 24: 99&#45;102.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953622&pid=S0185-3880201400010000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodr&iacute;guez&#45;Troncoso AP, Carpizo&#45;Ituarte E, Cupul&#45;Maga&ntilde;a A. 2013. Oxidative damage associated with thermal stress in <i>Pocillopora</i> <i>verrucosa</i> from the Mexican Pacific. Cienc. Mar. 39: 113&#45;118. <a href="http://www.cienciasmarinas.com.mx/index.php/cmarinas/article/view/2168" target="_blank">http://dx.doi.org/10.7773/cm.v39i1.2168</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953624&pid=S0185-3880201400010000100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schoenwaelder M. 2002. The occurrence and cellular significance of physodes in brown algae. Phycologia 41: 125&#45;139. <a href="http://www.phycologia.org/doi/abs/10.2216/i0031-8884-41-2-125.1" target="_blank">http://dx.doi.org/10.2216/i0031&#45;8884&#45;41&#45;2&#45;125.1</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953625&pid=S0185-3880201400010000100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sieburth J, Jensen JR. 1969. Studies on algal substances in the sea. II. The formation of Gelbstoff (humic material) by exudates of Phaeophyta. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 3: 275&#45;289.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953626&pid=S0185-3880201400010000100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sokal RR, Rohlf FJ. 1995. Biometry. WH Freeman, New York, 887 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953628&pid=S0185-3880201400010000100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Swanson AK, Druehl L. 2002. Induction, exudation and the UV protective role of kelp phlorotannins. Aquat. Bot. 73: 241&#45;253.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953630&pid=S0185-3880201400010000100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Targett NM, Boettcher AA, Targett TE, Vrolijk NH. 1995. Tropical marine herbivore assimilation of phenolic&#45;rich plants. Oecologia 103: 170&#45;179.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953632&pid=S0185-3880201400010000100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vreeland V, Waite J, Epstein L. 1998. Polyphenols and oxidases in substratum adhesion by marine algae and mussels. J. Phycol. 34: 1&#45;8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953634&pid=S0185-3880201400010000100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Waterman PG, Mole S. 1994. Analysis of Phenolic Plant Metabolites. Blackwell Scientific, Oxford, 248 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953636&pid=S0185-3880201400010000100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yates J, Peckol P. 1993. Effects of nutrient availability and herbivory on polyphenolics in the seaweed <i>Fucus vesiculosus.</i> Ecology 74: 1757&#45;1766.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953638&pid=S0185-3880201400010000100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zubia M, Fabre MS, Kerjean V, Lann KL, Stiger&#45;Pouvreau V, Fauchon M, Deslandes E. 2009. Antioxidant and antitumoural activities of some Phaeophyta from Brittany coasts. Food Chem. 116: 693&#45;701.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1953640&pid=S0185-3880201400010000100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Nota</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Traducido al espa&ntilde;ol por Christine Harris.</font></p>      ]]></body><back>
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