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<publisher-name><![CDATA[Instituto Nacional de Psiquiatría Ramón de la Fuente Muñiz]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de la exposición al pesticida rotenona sobre el desarrollo del sistema dopaminérgico nigro-estriatal en ratas]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Developmental effects of rotenone exposure on the rat nigro-striatal dopaminergic system]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[La rotenona es un pesticida utilizado en México a pesar de que se ha demostrado experimentalmente que produce una degeneración de las neuronas dopaminérgicas, y puede derivar en deterioro psicomotor. Sin embargo, no existen estudios de la exposición indirecta a rotenona a través de las madres en el efecto que produzca sobre su descendencia. Nosotros administramos rotenona a ratas durante la gestación y la lactancia para evaluar las alteraciones producidas sobre las neuronas dopaminérgicas y la coordinación motora de sus crías, a los 30 o 60 días posnatales. Para cuantificar las neuronas inmunorreactivas a tirosina hidroxilasa de la sustancia nigra, se inyectaron subcutáneamente seis grupos de hembras Wistar: intactas (control), con solvente de rotenona (vehículo) y cuatro grupos con rotenona en dosis: 0.2, 0.4, 0.6 y 1.0 mg/kg/día. En un experimento paralelo, las crías de otros grupos de hembras tratadas con rotenona 1 mg/kg/día o controles fueron evaluados en la prueba de coordinación motora a los 30 y 60 días posnatales. Las madres tratadas con 1 mg/kg de rotenona tuvieron menos neuronas dopaminérgicas en la sustancia nigra. Dicho efecto se observó también en las crías, pero con todas las dosis de rotenona utilizadas, tanto a los 30 como a los 60 días posnatales. Además, la exposición indirecta a rotenona aumentó significativamente el tiempo que requirieron las crías para ejecutar la prueba de coordinación motora. Estos datos indican que la rotenona es capaz de inducir daño en las neuronas dopaminérgicas de las crías cuando son expuestas a través de sus madres. Este efecto en las crías se observa con dosis menores de rotenona que en ratas adultas. Por lo tanto, los individuos indirectamente expuestos a rotenona podrían tener menos neuronas dopaminérgicas desde etapas tempranas de la vida, lo que aumenta el riesgo de desarrollar trastornos relacionados con el sistema dopaminérgico.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culo original</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Efecto de la exposici&oacute;n al pesticida rotenona sobre el desarrollo del sistema dopamin&eacute;rgico nigro&#45;estriatal en ratas</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Developmental effects of rotenone exposure on the rat nigro&#45;striatal dopaminergic system</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Margarita G&oacute;mez&#45;Chavar&iacute;n,<sup>1</sup> Rosalinda D&iacute;az&#45;P&eacute;rez,<sup>1</sup> Rosario Morales&#45;Espinosa,<sup>1</sup> Juan Fern&aacute;ndez&#45;Ruiz,<sup>1</sup> Gabriel Rold&aacute;n&#45;Rold&aacute;n,<sup>1</sup> Carlos Torner<sup>2</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Facultad de Medicina, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Divisi&oacute;n de Ciencias Biol&oacute;gicas y de la Salud. Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Correspondencia:</b>    <br> 	Carlos A. Torner Aguilar.    <br> 	Divisi&oacute;n Ciencias Biol&oacute;gicas y de la Salud,    <br> 	Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana&#45;Xochimilco.    <br> 	Calz. del Hueso 1100, Villa Quietud,    <br> 	Coyoac&aacute;n, 04960, M&eacute;xico, DF.    <br> 	Tel. 5483 7000 ext. 3260. Fax: 5483 7200.    <br> 	E&#45;mail: <a href="mailto:ctorner@correo.uam.xoc.mx">ctorner@correo.uam.xoc.mx</a>.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido primera versi&oacute;n: 10 de octubre de 2011.    <br> 	Segunda versi&oacute;n: 28 de marzo de 2012.    <br> 	Tercera versi&oacute;n: 3 de mayo de 2012.    <br> 	Aceptado: 14 de mayo de 2012.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rotenone is a pesticide used in Mexico, despite the experimental evidence showing dopaminergic neurons degeneration induced by this compound, which may lead to a psychomotor impairment. However, the possible effects of rotenone on the offspring when they are indirectly exposed through their mothers are still unknown. In this study rotenone was administered to female rats during pregnancy and nursing, in order to assess its effects on the offspring's dopaminergic neurons in the substantia nigra, as well as on motor coordination at 30 or 60 postnatal days.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Six groups of pregnant Wistar rats were used: an intact control group, a vehicle group injected with the rotenone solvent, and four groups injected subcutaneously with the following doses of rotenone: 0.2, 0.4, 0.6, and 1 mg/kg/day. In a parallel experiment, the offspring of other groups of dams treated with rotenone 1 mg/kg/day, or controls vehicle&#45;treated, were used to evaluate motor coordination at 30 and 60 postnatal days.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rotenone treated dams showed a significant lower amount of dopaminergic neurons in the substantia nigra, but only with the 1 mg/kg dose. This effect was also observed in the offspring but at all doses of rotenone tested, either at 30 or 60 postnatal days. Furthermore, the offspring of rotenone exposed dams significantly increased the time in which they accomplished the motor coordination test, compared to the offspring of control dams.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">These data indicate that rotenone is able to damage the dopaminergic neurons of the offspring though their mothers. This effect requires lower rotenone doses than in adult rats. The reduced number of dopaminergic neurons at early stages of life enhances the risk of developing disorders related to the brains' dopaminergic system.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> Rotenone, Parkinson disease, tyrosine hydroxilase, substantia nigra, attention deficit hyperactivity disorder, and motor coordination.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La rotenona es un pesticida utilizado en M&eacute;xico a pesar de que se ha demostrado experimentalmente que produce una degeneraci&oacute;n de las neuronas dopamin&eacute;rgicas, y puede derivar en deterioro psicomotor. Sin embargo, no existen estudios de la exposici&oacute;n indirecta a rotenona a trav&eacute;s de las madres en el efecto que produzca sobre su descendencia. Nosotros administramos rotenona a ratas durante la gestaci&oacute;n y la lactancia para evaluar las alteraciones producidas sobre las neuronas dopamin&eacute;rgicas y la coordinaci&oacute;n motora de sus cr&iacute;as, a los 30 o 60 d&iacute;as posnatales. Para cuantificar las neuronas inmunorreactivas a tirosina hidroxilasa de la sustancia nigra, se inyectaron subcut&aacute;neamente seis grupos de hembras Wistar: intactas (control), con solvente de rotenona (veh&iacute;culo) y cuatro grupos con rotenona en dosis: 0.2, 0.4, 0.6 y 1.0 mg/kg/d&iacute;a. En un experimento paralelo, las cr&iacute;as de otros grupos de hembras tratadas con rotenona 1 mg/kg/d&iacute;a o controles fueron evaluados en la prueba de coordinaci&oacute;n motora a los 30 y 60 d&iacute;as posnatales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las madres tratadas con 1 mg/kg de rotenona tuvieron menos neuronas dopamin&eacute;rgicas en la sustancia nigra. Dicho efecto se observ&oacute; tambi&eacute;n en las cr&iacute;as, pero con todas las dosis de rotenona utilizadas, tanto a los 30 como a los 60 d&iacute;as posnatales. Adem&aacute;s, la exposici&oacute;n indirecta a rotenona aument&oacute; significativamente el tiempo que requirieron las cr&iacute;as para ejecutar la prueba de coordinaci&oacute;n motora.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estos datos indican que la rotenona es capaz de inducir da&ntilde;o en las neuronas dopamin&eacute;rgicas de las cr&iacute;as cuando son expuestas a trav&eacute;s de sus madres. Este efecto en las cr&iacute;as se observa con dosis menores de rotenona que en ratas adultas. Por lo tanto, los individuos indirectamente expuestos a rotenona podr&iacute;an tener menos neuronas dopamin&eacute;rgicas desde etapas tempranas de la vida, lo que aumenta el riesgo de desarrollar trastornos relacionados con el sistema dopamin&eacute;rgico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Rotenona, enfermedad de Parkinson, trastorno por d&eacute;ficit de atenci&oacute;n con hiperactividad, sustancia nigra, tirosina hidroxilasa, coordinaci&oacute;n motora.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La rotenona (ROT) es un compuesto que se extrae de las plantas del g&eacute;nero <i>Lonchocarpus,</i> que act&uacute;a como pesticida. Por su origen natural, la ROT es ampliamente utilizada como insecticida en el control de plagas en m&uacute;ltiples cultivos, y como piscicida para el control de ciertas especies de peces no deseables en mantos acu&iacute;feros. Su alta liposolubilidad le permite atravesar f&aacute;cilmente las membranas biol&oacute;gicas. Dentro de las c&eacute;lulas, la ROT tiene un efecto inhibitorio altamente espec&iacute;fico sobre el complejo I de la cadena respiratoria mitocondrial.<sup>1&#45;3</sup> En M&eacute;xico se usa particularmente en la producci&oacute;n camaronera de las costas del Pac&iacute;fico, donde los estanque son tratados con ROT al 5.8%, sin que existan estudios del impacto que &eacute;sta pueda tener en la salud humana por exposici&oacute;n ocupacional o por consumo. Dhillon et al.<sup>3</sup> analizaron el efecto de la exposici&oacute;n ocupacional a ROT en una poblaci&oacute;n de Texas y encontraron un incremento en la incidencia de enfermedad de Parkinson asociado con el uso de este pesticida; sin embargo, en M&eacute;xico el panorama es a&uacute;n desconocido.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La evidencia actual apunta a que la exposici&oacute;n a pesticidas como ROT, maneb o paraquat, produce lesiones degenerativas en las neuronas dopamin&eacute;rgicas cerebrales.<sup>4&#45;6</sup> La disminuci&oacute;n de este tipo de neuronas tiene una mayor probabilidad de producir alteraciones psicomotoras en un s&iacute;ndrome tipo enfermedad de Parkinson; sin embargo, a la fecha se ha estudiado escasamente el efecto de la degeneraci&oacute;n de c&eacute;lulas dopamin&eacute;rgicas sobre alteraciones funcionales que deriven en trastornos mentales. Se ha encontrado que la administraci&oacute;n subcut&aacute;nea de ROT en ratas adultas resulta en la degeneraci&oacute;n del sistema dopamin&eacute;rgico <i>nigroestriatal,</i> lo que produce deterioro psicomotor, adem&aacute;s de favorecer la agregaci&oacute;n de la prote&iacute;na asinucle&iacute;na en las terminales sin&aacute;pticas de dicha v&iacute;a.<sup>1,7</sup> El hecho de que la ROT induzca estos marcadores citol&oacute;gicos de la enfermedad de Parkinson en roedores ha contribuido a que se le considere como modelo animal de dicha enfermedad. Sin embargo, otros n&uacute;cleos dopamin&eacute;rgicos cerebrales tambi&eacute;n podr&iacute;an estar afectados, aunque el estudio funcional de las alteraciones psiqui&aacute;tricas que generan resulta particularmente dif&iacute;cil de evaluar en los animales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este trabajo estudiamos el efecto que tiene la exposici&oacute;n a ROT en etapas muy tempranas de la vida sobre las neuronas dopamin&eacute;rgicas de la sustancia nigra (SN) de ratas. El pesticida fue administrado a trav&eacute;s de la madre desde el inicio de la gestaci&oacute;n hasta el t&eacute;rmino de la lactancia, lo que permiti&oacute; estudiar su efecto sobre la descendencia, usando como referencia el da&ntilde;o provocado en las madres, puesto que &eacute;ste ya se ha caracterizado en animales adultos. Las ratas gestantes fueron evaluadas al final del tratamiento de 51 d&iacute;as, mientras que sus cr&iacute;as fueron evaluadas a los 30 y 60 d&iacute;as posteriores al nacimiento (DPN). La evaluaci&oacute;n consisti&oacute; en contar el n&uacute;mero de neuronas con inmunoreactividad positiva para tirosina hidroxilasa (IR&#45;TH) en la SN, la cual marca a las c&eacute;lulas dopamin&eacute;rgicas debido a que la tirosina hidroxilasa (TH) es la enzima limitante en la v&iacute;a biosint&eacute;tica de la dopamina. La disminuci&oacute;n de las neuronas IR&#45;TH es un indicativo de da&ntilde;o sobre este n&uacute;cleo dopamin&eacute;rgico. Adicionalmente, evaluamos el efecto sobre la coordinaci&oacute;n motora mediante la prueba de la viga inclinada de Drucker.<sup>8</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Sujetos y procedimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Veinticuatro ratas Wistar hembras de 250g se dividieron en doce cajas; se colocaron dos hembras con un macho sexualmente experto. Despu&eacute;s de 48h se verific&oacute; mediante el tap&oacute;n vaginal que las hembras estuvieran pre&ntilde;adas, lo que determin&oacute; el inicio del tratamiento con ROT. Las hembras pre&ntilde;adas se colocaron en cajas individuales y se mantuvieron en condiciones est&aacute;ndar con un ciclo invertido de luz&#45;obscuridad de 12&#45;12 horas (las luces se apagaban a las 7 am), a temperatura (21 &plusmn; 1.0 &deg;C) y humedad (55 &plusmn; 5%) constantes y con agua y alimento <i>ad libitum.</i> Las ratas gestantes se dividieron en seis grupos (n=4 c/u): un grupo control intacto que no recibi&oacute; ning&uacute;n tratamiento; un grupo control inyectado con 100 &#181;l de una soluci&oacute;n 1:1 de polietilenglicol y dimetilsulf&oacute;xido (PEG: DMSO) denominado grupo "veh&iacute;culo" por recibir s&oacute;lo el solvente de la ROT (Cat. R8875, Sigma, San Luis, MO), y cuatro grupos experimentales con diferentes dosis de ROT: 0.2 mg/kg, 0.4 mg/kg 0.6 mg/kg y 1.0 mg/kg, respectivamente.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tanto el veh&iacute;culo como la ROT fueron administrados diariamente por v&iacute;a subcut&aacute;nea a las ratas gestantes durante los 21 d&iacute;as de gestaci&oacute;n y los 30 d&iacute;as de lactancia. Todos los animales fueron manejados de acuerdo con la Norma Oficial Mexicana (NOM&#45;062&#45;ZOO&#45;1999). Al final del tratamiento se extrajeron los cerebros de las madres y de las cr&iacute;as de 30 d&iacute;as posnatales (DPN). Los cerebros de las cr&iacute;as de 60 DPN se estudiaron con el fin de tener un grupo para evaluar el efecto de la ROT 30 d&iacute;as despu&eacute;s de terminada la exposici&oacute;n. Los cerebros se congelaron a &#45;20&deg;C para hacer cortes coronales de 40|im, y las secciones fueron procesadas con anticuerpos contra TH, con el fin de marcar inmunohistoqu&iacute;micamente las c&eacute;lulas de la SN que tuvieran esta enzima (neuronas dopamin&eacute;rgicas).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Procedimiento inmunohistoqu&iacute;mico para TH</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las ratas hembras y sus cr&iacute;as fueron anestesiadas con una sobredosis de pentobarbital s&oacute;dico, 1 o 0.5 ml, respectivamente (Pfizer, M&eacute;xico, DF, M&eacute;xico) y se perfundieron transcardialmente con 200ml de una soluci&oacute;n PBS (soluci&oacute;n salina en buffer de fosfatos: 0,1 M, pH 7.4, NaCl 130 mM, Na<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub> 7mM y NaH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> 3 mM), y posteriormente fueron fijadas con 250 ml de paraformaldeh&iacute;do al 4% disuelto en la soluci&oacute;n PBS. Los cerebros se extrajeron y se posfijaron en la misma soluci&oacute;n durante 12h, y posteriormente se colocaron en una soluci&oacute;n crioprotectora consistente en sacarosa al 30% disuelta en soluci&oacute;n PBS a 4&deg;C.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">De la porci&oacute;n del cerebro correspondiente a la SN, de acuerdo con el atlas estereot&aacute;xico del cerebro de la rata,<sup>9</sup> se obtuvieron cortes de 40 &micro;m de grosor en un micr&oacute;tomo de congelaci&oacute;n (Cryo&#45;Cut American Optical).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la inmunohistoqu&iacute;mica de TH, las rebanadas de cerebro se colocaron en libre flotaci&oacute;n en cajas multipozos y se lavaron tres veces con PBS durante 10 min cada lavada (PBS 3X10 min); se incubaron por una hora a 4&deg;C en una soluci&oacute;n PBS con 3% de Triton X&#45;100 (Sigma) y 0.01% de alb&uacute;mina bovina (BSA; Sigma). Posteriormente, las secciones fueron incubadas 12 horas en una soluci&oacute;n de PBS que conten&iacute;a el anticuerpo policlonal de conejo contra TH (1:1000; Biotecnolog&iacute;a Santa Cruz); esta incubaci&oacute;n se mantuvo en condiciones de agitaci&oacute;n leve y a 4&deg;C. Al d&iacute;a siguiente, despu&eacute;s de lavarse en PBS 3X10 min, los cortes fueron incubados en soluci&oacute;n PBS con un anticuerpo secundario biotinilado (IgG de conejo biotinilado diluido a 1:250; ABC Vector Burlingame, CA, EE.UU.) durante 2h a temperatura ambiente; al t&eacute;rmino de este tiempo los cortes fueron lavados con PBS 3X10 min. Para visualizar la reacci&oacute;n de la uni&oacute;n ant&iacute;geno&#45;anticuerpo, las secciones se incubaron 2h en una soluci&oacute;n de avidina conjugada con peroxidasa de r&aacute;bano (ABC VectaStain Elite Kit Vector, Burlingame, CA, EE.UU.). Despu&eacute;s de lavarse 3X10 min con una soluci&oacute;n Tris&#45;HCl 0.1 M, pH 7.4, las secciones fueron incubadas 5 min con 0.1% de diaminobencidina (Sigma), y luego se agreg&oacute; per&oacute;xido de hidrogeno (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>) al 0.24% para revelar la localizaci&oacute;n de los anticuerpos. La reacci&oacute;n fue monitoreada con un microscopio, y cuando era claramente visible se detuvo mediante lavados con PBS 3X5 min. Finalmente, las secciones reveladas fueron colocadas sobre portaobjetos, se deshidrataron con alcoholes y xilol, para cubrirse por &uacute;ltimo con Cytoseal XYL (Richard Allan&#45;cient&iacute;fico) y un cubreobjetos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis inmunohistoqu&iacute;mico</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para cuantificar a las neuronas IR&#45;TH, los l&iacute;mites de la SN se establecieron de acuerdo con el atlas estereot&aacute;xico del cerebro de rata,<sup>9</sup> iniciando en &#45;5,20 y terminando a &#45;6,30 mm de Bregma (aproximadamente 800 &micro;m de la SN fueron evaluadas). Las im&aacute;genes fueron capturadas por una c&aacute;mara (Evolution VF Cooled Color Camera Medica Cybernetics) adaptada a un microscopio (Olympus IX&#45;71, Jap&oacute;n) con un aumento 4X y 20X; una vez adquiridas se analizaron con el programa Image ProPlus 6.0. Las neuronas IR&#45;TH fueron contadas manualmente. El criterio para considerar a una neurona dopamin&eacute;rgica IR&#45;TH fue encontrar el citoplasma completamente marcado, y el n&uacute;cleo perfectamente definido y sin marca. Veinte cortes del cerebro de cada animal se analizaron por dos investigadores independientes. Con estos datos se calcul&oacute; el promedio de las neuronas IR&#45;TH para cada uno de los 10 animales; los resultados son el promedio de las neuronas IR&#45;TH de 10 sujetos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Prueba de coordinaci&oacute;n motora</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Treinta cr&iacute;os de 30 DPN divididos en tres grupos: control, veh&iacute;culo y ROT 1 mg/kg (n=10 c/u) fueron evaluados a los 30 y 60 DPN con la prueba de coordinaci&oacute;n motora dise&ntilde;ada y validada por Drucker y Garc&iacute;a.<sup>8</sup> Este dispositivo consiste en una viga de madera de 2m de largo, colocada con una inclinaci&oacute;n de 15&deg;, para que la rata la escale. En el extremo superior de la viga se coloca su caja&#45;hogar como est&iacute;mulo para que ejecute la prueba. Inicialmente, las ratas se entrenan a trepar sobre una viga de 24mm de ancho durante cinco d&iacute;as antes de realizar la prueba; la prueba se inicia cambiando al azar el grosor de la viga en anchos de 9, 6 y 3 mm. La rata se coloca en la parte baja de la viga y se le permite caminar hasta alcanzar el extremo superior registrando el tiempo en el que llega. Se emplea un limite m&aacute;ximo de 120 seg, al t&eacute;rmino del cual si la rata no ha alcanzado su caja&#45;hogar se remueve manualmente y coloca en su caja y recibe una calificaci&oacute;n de 120seg. Los resultados se expresaron como el promedio del tiempo total (seg) que tardaron los 10 sujetos en cada condici&oacute;n experimental para ejecutar la prueba.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de la ROT en las ratas gestantes</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las ratas gestantes tratadas con ROT durante 51 d&iacute;as tuvieron un menor n&uacute;mero de neuronas IR&#45;TH en la SN. La <a href="#fig1">figura 1</a> (paneles A, D, J, M y P) muestra im&aacute;genes representativas de las &aacute;reas correspondientes a la SN, donde se observa una disminuci&oacute;n de las neuronas IR&#45;TH proporcional al aumento de la dosis de ROT. La media del n&uacute;mero de neuronas IR&#45;TH en las hembras adultas sin tratamiento (control) fue 200.5, y en las tratadas con el veh&iacute;culo fue 160.5; los animales tratados con ROT tuvieron valores de 219.5, 171.5, 128.5 y 41.75 neuronas por campo, que corresponden a las dosis de 0.2, 0.4, 0.6 y 1.0 mg/kg de ROT, respectivamente (<a href="#fig2">figura 2</a>).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="fig1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/sm/v36n1/a1f1.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="fig2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/sm/v36n1/a1f2.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis de varianza (ANOVA) de una v&iacute;a revel&oacute; un efecto significativo del tratamiento (F<sub>(5,18)</sub>=11.04; p&lt;0.0001). La prueba <i>post hoc</i> de comparaciones m&uacute;ltiples de Tukey mostr&oacute; que los grupos control, veh&iacute;culo y con 0.2 mg/kg de ROT tuvieron diferencias significativas contra el grupo que recibi&oacute; la mayor dosis de ROT (p&lt;0.001).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de la ROT en las cr&iacute;as</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El n&uacute;mero de neuronas IR&#45;TH en la SN de las cr&iacute;as mostr&oacute; un patr&oacute;n similar al de sus madres tratadas con ROT: las neuronas IR&#45;TH disminuyeron conforme aument&oacute; la dosis de ROT; este efecto se encontr&oacute; en las cr&iacute;as de 30 DPN expuestas indirectamente <i>in utero</i> y durante la lactancia a ROT. La <a href="#fig1">figura 1</a> (paneles: B, E, H, K, N y Q) muestra la SN de estos animales donde se observa la disminuci&oacute;n en la poblaci&oacute;n de neuronas IR&#45;TH. Un efecto similar de la ROT se encontr&oacute; en los animales de 60 DPN, los cuales hab&iacute;an estado 30 d&iacute;as sin exposici&oacute;n al xenobi&oacute;tico. La <a href="#fig1">figura 1</a> (paneles: C, F, I, L, O y R) muestra el efecto de la ROT sobre las neuronas IR&#45;TH de dichos animales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los animales de 30 DPN, los valores promedio del n&uacute;mero de neuronas en condiciones control y veh&iacute;culo fueron 190.7 y 161.7, mientras que en los grupos tratados con las diferentes dosis de ROT fueron de 135, 102.9, 75.18 y 56.5, respectivamente (<a href="/img/revistas/sm/v36n1/a1f3.jpg" target="_blank">figura 3A</a>). El ANOVA de una v&iacute;a mostr&oacute; diferencias significativas del tratamiento (F<sub>(5,54)</sub>=1268; p&lt;0.0001). La prueba <i>post hoc</i> de comparaciones m&uacute;ltiples de Tukey revel&oacute; que los grupos control y veh&iacute;culo tuvieron diferencias con todos los grupos tratados con ROT (p&lt;0.001). La densidad de neuronas IR&#45;TH disminuye de modo similar en las cr&iacute;as de 60 DPN; los valores promedio del n&uacute;mero de neuronas en condiciones control y veh&iacute;culo fueron 191 y 165, respectivamente, y en los grupos tratados con las diferentes dosis de ROT fueron de 106.8, 65.35, 56.38 y 32.52, respectivamente (<a href="/img/revistas/sm/v36n1/a1f3.jpg" target="_blank">figura 3B</a>). El ANOVA de una v&iacute;a mostr&oacute; diferencias significativas por el tratamiento (F<sub>(5,54)</sub> =344,1; p&lt;0.0001), y la prueba <i>post hoc</i> de Tukey revel&oacute; diferencias entre los grupos control y veh&iacute;culo, y todos los grupos tratados con ROT (p&lt;0.001).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de la ROT sobre la prueba de coordinaci&oacute;n motora</b></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados obtenidos al evaluar a las cr&iacute;as a los 30 y 60 DPN en la prueba de coordinaci&oacute;n motora se muestran en la <a href="/img/revistas/sm/v36n1/a1f4.jpg" target="_blank">figura 4</a>. Las cr&iacute;as expuestas a 1mg/kg de ROT requirieron m&aacute;s tiempo para ejecutar la prueba de coordinaci&oacute;n motora. Como se muestra en la <a href="/img/revistas/sm/v36n1/a1f4.jpg" target="_blank">figura 4A</a>, en las cr&iacute;as de 30 DPN aument&oacute; el tiempo total (seg) para ejecutar la prueba a medida que disminu&iacute;a el grosor de la barra de 9, a 6 y 3 mm. El an&aacute;lisis de varianza mostr&oacute; un efecto significativo del tratamiento con ROT (F<sub>(8,81)</sub>=478; p&lt;0.0001). La prueba <i>post hoc</i> de Tukey mostr&oacute; que en las cr&iacute;as expuestas a 1mg/kg de ROT aument&oacute; significativamente el tiempo para ejecutar la prueba en comparaci&oacute;n con las cr&iacute;as control y veh&iacute;culo (p&lt;0.001). En la <a href="/img/revistas/sm/v36n1/a1f4.jpg" target="_blank">figura 4B</a> se muestra que persiste el efecto delet&eacute;reo sobre la coordinaci&oacute;n motora en estas mismas cr&iacute;as a los 60 DPN (F<sub>(8,81)</sub>= 344.1; p&lt;0.0001). La prueba <i>post</i> <i>hoc</i> de Tukey mostr&oacute; diferencias significativas (p&lt;0.001) en el tiempo total (seg) que tardan en ejecutar la prueba bajo las mismas condiciones experimentales.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Existen m&uacute;ltiples factores ambientales que pueden provocar una variedad de efectos t&oacute;xicos en el organismo. Diversos estudios muestran que la exposici&oacute;n a xenobi&oacute;tico como metales,<sup>10</sup> pesticidas entre los que se incluye la ROT,<sup>1,4</sup> fungicidas y herbicidas como el maneb y paraquat,<sup>11&#45;13</sup> entre varios otros, pueden generar da&ntilde;os en el Sistema Nervioso Central.<sup>14</sup> Grandjean y Landrigan<sup>10</sup> encontraron que la exposici&oacute;n del feto humano a sustancias qu&iacute;micas industriales provocaba da&ntilde;os en el cerebro durante el proceso de neuro&#45;desarrollo que pod&iacute;an predisponer a diversas enfermedades neurol&oacute;gicas o psiqui&aacute;tricas en el largo plazo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hasta donde sabemos no hay estudios previos que aborden los efectos <i>in utero</i> de la ROT, por lo que evaluamos en ratas Wistar la exposici&oacute;n a este pesticida durante la gestaci&oacute;n y la lactancia sobre el n&uacute;mero de neuronas dopamin&eacute;rgicas de su descendencia y la coordinaci&oacute;n motora. El dise&ntilde;o experimental contempl&oacute; dos momentos posnatales para investigar los cambios que se manifestar&aacute;n en el cerebro de las cr&iacute;as: uno al t&eacute;rmino de la exposici&oacute;n indirecta a la ROT, y el otro 30 d&iacute;as despu&eacute;s de finalizar el tratamiento, para determinar si hab&iacute;a cambios relacionados con la maduraci&oacute;n cerebral.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La administraci&oacute;n de ROT por v&iacute;a s.c. en las madres sirvi&oacute; como control del da&ntilde;o sobre las c&eacute;lulas dopamin&eacute;rgicas, puesto que las madres y las cr&iacute;as estuvieron expuestas a las mismas concentraciones de ROT en sangre. Nuestros hallazgos indican que las ratas madres tuvieron una disminuci&oacute;n significativa en el n&uacute;mero de neuronas inmunoreactivas a TH (neuronas dopamin&eacute;rgicas) en la SN, pero solamente con la dosis de 1.0 mg/kg. Nuestros resultados replican los hallazgos previamente reportados por Betarbet et al.,<sup>1</sup> quienes trataron ratas macho adultas con 2mg/kg de ROT durante dos semanas y observaron una disminuci&oacute;n en el n&uacute;mero de neuronas IR&#45;TH. En todos los estudios previos se han empleado dosis superiores a 2 mg/kg de ROT y se han obtenido resultados similares a los nuestros.<sup>1,7,15&#45;18</sup> En nuestras condiciones experimentales no observamos efectos significativos con dosis menores, por lo que proponemos que 1 mg/kg de ROT debe ser la dosis m&iacute;nima efectiva para provocar un da&ntilde;o significativo sobre las neuronas dopamin&eacute;rgicas en la SN de ratas adultas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En un estudio previo se hab&iacute;a sugerido que las ratas hembras son resistentes a pesticidas como maneb y paraquat;<sup>19</sup> sin embargo, nuestros resultados no indican ninguna resistencia especial de las hembras a la ROT, lo que podr&iacute;a deberse a que esta &uacute;ltima afecta v&iacute;as metab&oacute;licas diferentes a las del maneb y el paraquat en su acci&oacute;n neurot&oacute;xica.<sup>20</sup></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El inter&eacute;s primordial de nuestro trabajo fue explorar los da&ntilde;os que la ROT puede producir sobre las neuronas dopamin&eacute;rgicas de la SN durante el desarrollo de las cr&iacute;as. Nuestros resultados muestran que las dosis de ROT administradas a trav&eacute;s de la madre produjeron disminuci&oacute;n significativa en el n&uacute;mero de neuronas dopamin&eacute;rgicas (IR&#45;TH). Esto contrasta con el efecto observado en las madres, en las cuales s&oacute;lo la dosis mayor de ROT provoc&oacute; un decremento significativo. Esta diferencia puede deberse a que el fenotipo neuronal est&aacute; definido en las madres y esto les confiere resistencia a los efectos a las neurotoxinas, mientras en las cr&iacute;as el fenotipo neuronal no est&aacute; comprometido y el proceso de diferenciaci&oacute;n las hace vulnerables a da&ntilde;os ocasionados por factores externos.<sup>21</sup> Adem&aacute;s, en las cr&iacute;as parece que la maduraci&oacute;n cerebral posnatal es tambi&eacute;n un factor importante para el efecto de la ROT, pues los animales de 60 DPN, los que estuvieron 30 d&iacute;as sin exposici&oacute;n, mostraron una disminuci&oacute;n mayor en el n&uacute;mero de neuronas IR&#45;TH en comparaci&oacute;n con los animales de 30 DPN, los que hab&iacute;an terminado su exposici&oacute;n al pesticida cuando fueron evaluadas. Esto podr&iacute;a atribuirse a la acumulaci&oacute;n de ROT en el tejido adiposo, que pudiera liberarse de manera t&oacute;nica posteriormente en las cr&iacute;as.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aunque ambos grupos de cr&iacute;as estuvieron expuestos a la ROT durante el mismo tiempo (la diferencia entre estos estriba en las cr&iacute;as que permanecieron sin exposici&oacute;n durante 30 d&iacute;as), el da&ntilde;o aparentemente mayor que la ROT provoc&oacute; sobre las neuronas de las cr&iacute;as de 60 DPN no se correlacion&oacute; con los resultados de la coordinaci&oacute;n motora, ya que no hubo diferencias significativas entre los animales probados a los 30 d&iacute;as y los probados a los 60 d&iacute;as de edad, en el tiempo de ejecuci&oacute;n para trepar por la viga inclinada (<a href="/img/revistas/sm/v36n1/a1f4.jpg" target="_blank">figura 4</a>).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante la etapa fetal el cerebro es sensible a los da&ntilde;os que pueden ocasionarle diversos factores externos; durante este periodo, la protecci&oacute;n que ofrece la placenta es limitada, sobre todo contra aquellas sustancias que son altamente liposolubles como la ROT. Adem&aacute;s, en los fetos la barrera hematoencef&aacute;lica no se encuentra completamente desarrollada pues &eacute;sta termina su desarrollo despu&eacute;s del nacimiento,<sup>22</sup> y debido a que el cerebro contin&uacute;a su desarrollo durante la etapa posnatal, el periodo de vulnerabilidad se prolonga. Se ha reportado que ratones reci&eacute;n nacidos expuestos a dosis bajas de agentes neurot&oacute;xicos, como el insecticida paraquat, no muestran efectos inmediatos; sin embargo en la edad adulta presentan cambios conductuales y deficiencias en el aprendizaje, lo que se ha interpretado como una consecuencia de los da&ntilde;os cerebrales provocados por la exposici&oacute;n temprana a esta substancia.<sup>11,23</sup></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Barlow et al.<sup>11</sup> mostraron que la presencia de pesticidas durante el periodo prenatal y perinatal causa la reducci&oacute;n del n&uacute;mero de neuronas dopamin&eacute;rgicas e incrementa la susceptibilidad de estas neuronas a la degeneraci&oacute;n por da&ntilde;os subsecuentes ocasionados por otros factores ambientales o por la edad.<sup>24&#45;26</sup> Nuestros resultados parecen apoyar sus hip&oacute;tesis.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha sugerido que los ni&ntilde;os accidentalmente expuestos durante el desarrollo fetal a pesticidas tienen mayor riesgo de desarrollar trastorno de d&eacute;ficit de atenci&oacute;n e hiperactividad (TDAH), sobre todo en casos donde la exposici&oacute;n es mediante alimentos tratados con pesticidas.<sup>27,28</sup> El TDAH est&aacute; estrechamente relacionado con trastornos en el funcionamiento del sistema dopamin&eacute;rgico. Warton sugiere que los ni&ntilde;os que lo padecen pueden tener alterada la liberaci&oacute;n de dopamina en las terminales nigroestriatales.<sup>29</sup> Nuestro estudio sugiere que la exposici&oacute;n a ROT por v&iacute;a materna podr&iacute;a tener alguna relaci&oacute;n causal con sus observaciones.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adicionalmente, se ha documentado que la exposici&oacute;n a pesticidas, entre los cuales se encuentra la ROT, aumenta la incidencia de la enfermedad de Parkinson en los individuos expuestos.<sup>3,4,30</sup> Por otra parte, Whatley ha propuesto un mecanismo fisiopatol&oacute;gico indirecto para el desarrollo de esquizofrenia, derivado de que la ROT puede afectar la expresi&oacute;n de genes mitocondriales en las neuronas dopamin&eacute;rgicas, y esto, a su vez, podr&iacute;a facilitar el desarrollo de dicha enfermedad.<sup>31</sup> M&aacute;s a&uacute;n, entre los efectos de la ROT est&aacute; la disminuci&oacute;n de serotonina en el hipocampo, que facilita conductas relacionadas con la depresi&oacute;n, que tambi&eacute;n han sido exploradas en modelos animales.<sup>32</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En resumen, la ROT es capaz de inducir da&ntilde;o neuronal desde antes del nacimiento; los individuos expuestos durante su desarrollo podr&iacute;an tener un n&uacute;mero menor de neuronas dopamin&eacute;rgicas desde etapas tempranas de la vida, lo que los har&iacute;a m&aacute;s vulnerables a otros factores nocivos, aumentando el riesgo de desarrollar en edades tempranas trastornos relacionados con disfunciones del sistema dopamin&eacute;rgico como el TDAH, o alteraciones tard&iacute;as como la enfermedad de Parkinson, sin descartar otros tipos de trastornos funcionales o psiqui&aacute;tricos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hasta donde sabemos, en M&eacute;xico se conoce muy poco sobre la asociaci&oacute;n entre xenobi&oacute;ticos ambientales y trastornos neurol&oacute;gicos en individuos expuestos durante etapas tempranas de la vida. Se supone que en M&eacute;xico hay aproximadamente 1.5 millones de ni&ntilde;os menores de 18 a&ntilde;os que padecen de TDAH, y la mayor&iacute;a no han sido diagnosticados.<sup>33</sup> Existe la posibilidad de que un n&uacute;mero importante de individuos se encuentre afectado debido a la exposici&oacute;n <i>in utero</i> a t&oacute;xicos ambientales.<sup>13</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A Gabriel P&eacute;rez Soto por su asistencia t&eacute;cnica. Este proyecto fue financiado por el proyecto 102314 del CONACyT.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Kilbourn MR, Charalambous A, Frey KA, Sherman P et al. Intrastriatal neurotoxin injections reduce in vitro and in vivo binding of radiolabeled rotenoids to mitochondrial complex I. J Cereb Blood Flow Metab 1997;17(3):265&#45;272.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082659&pid=S0185-3325201300010000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Betarbet R, Sherer TB, MacKenzie G, Garcia&#45;Osuna M et al. Chronic systemic pesticide exposure reproduces features of Parkinson's disease. Nat Neurosci 2000;3(12):1301&#45;1306.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082661&pid=S0185-3325201300010000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Dhillon AS, Tarbutton GL, Levin JL, Plotkin GM et al. Pesticide/environmental exposures and Parkinson's disease in East Texas. J Agromedicine 2008;13(1):37&#45;48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082663&pid=S0185-3325201300010000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Vanacore N, Nappo A, Gentile M, Brustolin A et al. Evaluation of risk of Parkinson's disease in a cohort of licensed pesticide users. Neurol Sci 2002;23(2):S119&#45;5120.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082665&pid=S0185-3325201300010000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Moretto A, Colosio C. Biochemical and toxicological evidence of neurological effects of pesticides: The example of Parkinson's disease. Neurotoxicology 2011;32(4):383&#45;391.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082667&pid=S0185-3325201300010000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Wang A, Costello S, Cockburn M, Zhang X et al. Parkinson's disease risk from ambient exposure to pesticides. Eur J Epidemiol 2011;26(7):547&#45;555.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082669&pid=S0185-3325201300010000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Sherer TB, Kim JH, Betarbet R, Greenamyre JT. Subcutaneous rotenone exposure causes highly selective dopaminergic degeneration and alpha&#45;synuclein aggregation. Exp Neurol 2003;179(1):9&#45;16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082671&pid=S0185-3325201300010000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Schapira AH, Cooper JM, Dexter D, Jenner P et al. Mitochondrial complex I deficiency in Parkinson's disease. Lancet 1989;1(8649):1269.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082673&pid=S0185-3325201300010000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Paxinos G, Watson Ch. The rat brain in stereotaxic coordinates. San Diego: Academic Press; 1997.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082675&pid=S0185-3325201300010000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Grandjean P, Landrigan PJ. Developmental neurotoxicity of industrial chemicals. Lancet 2006;368(9553):2167&#45;2178.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082677&pid=S0185-3325201300010000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Brown TP, Rumsby PC, Capleton AC, Rushton L et al. Pesticides and Parkinson's disease&#45; is there a link? Environ Health Perspect 2006;114(2):156&#45;164.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082679&pid=S0185-3325201300010000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Trash B, Uthayathas S, Karuppagounder SS, Suppiramaniam V et al. Paraquat and maneb induced neurotoxicity. Proc West Pharmacol Soc 2007;50:31&#45;42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082681&pid=S0185-3325201300010000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Barlow BK, Cory&#45;Slechta DA, Richfield EK, Thiruchelvam M. The gestational environment and Parkinson's disease: evidence for neurodevelopmental origins of a neurodegenerative disorder. Reprod Toxicol 2007;23(3):457&#45;470.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082683&pid=S0185-3325201300010000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Wigle DT, Arbuckle TE, Walker M, Wade MG et al. Enviromental hazards: Evidence for efectos on child health. J Toxicol Envir Health Part B 2007;10:3&#45;39.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082685&pid=S0185-3325201300010000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Alam M, Schmidt WJ. Rotenone destroys dopaminergic neurons and induces parkinsonian symptoms in rats. Behav Brain Res 2002;136(1):317&#45;324.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082687&pid=S0185-3325201300010000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Fleming SM, Zhu C, Fernagut PO, Mehta A et al. Behavioral and immunohistochemical effects of chronic intravenous and subcutaneous infusions of varying doses of rotenone. Exp Neurol 2004;187(2):418&#45;429.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082689&pid=S0185-3325201300010000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Luo C, Rajput AH, Akhtar S, Rajput A. Alpha&#45;synuclein and tyrosine hydroxylase expression in acute rotenone toxicity. Int J Mol Med 2007;19(3):517&#45;521.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082691&pid=S0185-3325201300010000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Cannon JR, Tapias V, Na HM, Honick AS et al. A highly reproducible rotenone model of Parkinson's disease. Neurobiol Dis 2009;34(2):279&#45;290.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082693&pid=S0185-3325201300010000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Thiruchelvam M, Richfield EK, Goodman BM, Baggs RB et al. Developmental exposure to the pesticides paraquat and maneb and the Parkinson's disease phenotype. Neurotoxicology 2002;23(4&#45;5):621&#45;633.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082695&pid=S0185-3325201300010000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Cory&#45;Slechta DA, Thiruchelvam M, Barlow BK, Richfield EK. Developmental pesticide models of the Parkinson disease phenotype. Environ Health Perspect 2005;113(9):1263&#45;1270.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082697&pid=S0185-3325201300010000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Cicchetti D, Walker E. Neurodevelopmental Mechanisms in Psycho&#45;pathology. Cambridge University Press; 2003.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082699&pid=S0185-3325201300010000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Julvez J, Grandjean P. Neurodevelopmental toxicity risks due to occupational exposure to industrial chemicals during pregnancy. Ind Health 2009;47(5):459&#45;468.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082701&pid=S0185-3325201300010000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Eriksson P. Developmental neurotoxicity of environmental agents in the neonate. Neurotoxicology 1997;18(3):719&#45;726.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082703&pid=S0185-3325201300010000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. Heindel JJ. The fetal basis of adult disease: Role of environmental exposures&#45;introduction. Birth Defects Res A Clin Mol Teratol 2005;73(3):131&#45;132.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082705&pid=S0185-3325201300010000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Landrigan PJ, Sonawane B, Butler RN, Trasande L et al. Early environmental origins of neurodegenerative disease in later life. Environ Health Perspect 2005;113(9):1230&#45;1233.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082707&pid=S0185-3325201300010000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. Richardson JR, Caudle WM, Wang M, Dean ED et al. Developmental exposure to the pesticide dieldrin alters the dopamine system and increases neurotoxicity in an animal model of Parkinson's disease. FASEB J 2006;20(10):1695&#45;1697.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082709&pid=S0185-3325201300010000100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27. Mehler&#45;Wex C, Riederer P, Gerlach M. Dopaminergic dysbalance in distinct basal ganglia neurocircuits: implications for the pathophysiology of Parkinson's disease, schizophrenia and attention deficit hyperactivity disorder. Neurotox Res 2006;10(3&#45;4):167&#45;179.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082711&pid=S0185-3325201300010000100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28. Kuehn BM. Increased risk of ADHD associated with early exposure to pesticides, PCBs. JAMA 2010;304(1):27&#45;28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082713&pid=S0185-3325201300010000100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29. Warton FL, Howells FM, Russell VA. Increased glutamate&#45;stimulated release of dopamine in substantia nigra of a rat model for attention&#45;deficit/hyperactivity disorder&#45;lack of effect of methylphenidate. Metab Brain Dis 2009;24(4):599&#45;613.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082715&pid=S0185-3325201300010000100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30. Wirdefeldt K, Adami HO, Cole P, Trichopoulos D et al. Epidemiology and etiology of Parkinson's disease: a review of the evidence. Eur J Epidemiol 2011;26 (Supl 1):S1&#45;58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9082717&pid=S0185-3325201300010000100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
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