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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación del Riesgo de Acidovorax avenae Subsp. citrulli Asociada a Semilla de Sandía de Importación a México]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Acidovorax avenae subsp. citrulli, causing bacterial fruit blotch of watermelon, is considered a pathogen with high potential for destruction capable of causing losses of 100% in nursery or plantation, when it is developed under favorable environmental conditions for their multiplication and dissemination. Therefore, the objective of this research was to analyze the risk of introduction and establishment of A. avenae subsp. citrulli (quarantine pest for Mexico) associated to import seed of watermelon. The assessment was based on the process of risk analysis version 5.02 APHIS-PPQ, modified to evaluate this pathogen, including a geoespacial analysis to determine the potential of establishment of the bacterium in growing areas of watermelon in Mexico using the NAPPFAST system. The results show that the range of total risk of A. avenae subsp. citrulli is high in Mexico, obtaining a value of 12 points accumulated on the risk elements categorized. The growing areas of watermelon located in the states of Yucatan, Quintana Roo, Campeche, Tabasco, and Southern veracruz, are at high risk of establishment, because the climatic conditions favor infection by the bacterium during May and June, when the crop is susceptible. Whereas the watermelon-producing areas in the states of Sinaloa, Durango, Zacatecas, Mexico, Hidalgo, Queretaro, Michoacan, Guanajuato, Tlaxcala, and Puebla, have low risk of establishment. The adoption of phytosanitary measures such as the treatment of the seed with peroxyacetic acid, to minimize this risk is widely recommended.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos cient&iacute;ficos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Evaluaci&oacute;n del Riesgo de <i>Acidovorax avenae</i> Subsp. <i>citrulli</i> Asociada a Semilla de Sand&iacute;a de Importaci&oacute;n a M&eacute;xico</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Risk Assessment of <i>Acidovorax avenae</i> Subsp. <i>citrulli</i> Associated to Watermelon Seed Imported to Mexico</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Norma Alejandra Elizalde Jim&eacute;nez</b><sup><b>1</b></sup><b>, Javier Hern&aacute;ndez Morales</b><sup><b>1</b></sup><b>, Santos Gerardo Leyva Mir</b><sup><b>1</b></sup><b>,</b> <b>Cristian Nava D&iacute;az</b><sup><b>2</b></sup><b>,</b> <b>Ronald A. Sequeira</b><sup><b>3</b></sup><b>, Glenn Fowler</b><sup><b>3</b></sup><b> y Roger Magarey</b><sup><b>3</b></sup></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Universidad Aut&oacute;noma Chapingo, Departamento de Parasitolog&iacute;a Agr&iacute;cola, Carr. M&eacute;xico&#45;Texcoco, km. 38.5, Chapingo, Edo. de M&eacute;xico, CP 56230, M&eacute;xico. Correspondencia:</i> <a href="mailto:lsantos@correo.chapingo.mx">lsantos@correo.chapingo.mx</a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Colegio de Postgraduados, km. 36.5 Carr. M&eacute;xico&#45;Texcoco, Montecillo, Edo. de M&eacute;xico, CP 56230, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> USDA&#45;APHIS&#45;PPQ, Center for Plant Health Science and Technology, Pest Epidemiological Risk Analysis Laboratory, 1730 Varsity Dr., Raleigh, NC, 27606, EUA.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: Septiembre 30, 2009    <br> 	Aceptado: Mayo 14, 2010</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Acidovorax avenae</i> subsp. <i>citrulli,</i> causante de la mancha bacteriana del fruto de la sand&iacute;a, se considera un pat&oacute;geno con alto potencial de destrucci&oacute;n capaz de causar p&eacute;rdidas del 100% en vivero o plantaci&oacute;n, cuando se desarrolla bajo condiciones ambientales favorables para su multiplicaci&oacute;n y diseminaci&oacute;n. Por lo anterior, el objetivo de esta investigaci&oacute;n fue analizar el riesgo de introducci&oacute;n y establecimiento de <i>A. avenae</i> subsp. <i>citrulli</i> (plaga cuarentenaria para M&eacute;xico), asociada a semilla de sand&iacute;a de importaci&oacute;n. El proceso se bas&oacute; en el an&aacute;lisis de riesgo versi&oacute;n 5.02 APHIS&#45;PPQ, modificado para evaluar a este pat&oacute;geno, incluyendo un an&aacute;lisis geoespacial para estimar el potencial de establecimiento de la bacteria en zonas productoras de sand&iacute;a en M&eacute;xico usando el sistema NAPPFAST. Los resultados indican que el rango de riesgo total de <i>A. avenae</i> subsp. <i>citrulli</i> es alto en M&eacute;xico, al obtener un valor de 12 puntos acumulado de los elementos de riesgo categorizados. Las zonas productoras de sand&iacute;a ubicadas en los estados de Yucat&aacute;n, Quintana Roo, Campeche, Tabasco y la parte sur de Veracruz, resultaron con mayor potencial de establecimiento, debido a que las condiciones clim&aacute;ticas favorecen la infecci&oacute;n por la bacteria durante los meses de mayo y junio, cuando el cultivo es susceptible. Mientras que las zonas productoras en los estados de Sinaloa, Durango, Zacatecas, Estado de M&eacute;xico, Hidalgo, Quer&eacute;taro, Michoac&aacute;n, Guanajuato, Tlaxcala y Puebla, presentan menor potencial de establecimiento. La adopci&oacute;n de medidas fitosanitarias tales como el tratamiento de la semilla con &aacute;cido peroxiac&eacute;tico, que minimicen este riesgo, es ampliamente recomendada.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Citrullus lanatus,</i> plaga cuarentenaria, zonas de establecimiento, potencial.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Acidovorax avenae</i> subsp. <i>citrulli,</i> causing bacterial fruit blotch of watermelon, is considered a pathogen with high potential for destruction capable of causing losses of 100% in nursery or plantation, when it is developed under favorable environmental conditions for their multiplication and dissemination. Therefore, the objective of this research was to analyze the risk of introduction and establishment of <i>A. avenae</i> subsp. <i>citrulli</i> (quarantine pest for Mexico) associated to import seed of watermelon. The assessment was based on the process of risk analysis version 5.02 APHIS&#45;PPQ, modified to evaluate this pathogen, including a geoespacial analysis to determine the potential of establishment of the bacterium in growing areas of watermelon in Mexico using the NAPPFAST system. The results show that the range of total risk of <i>A. avenae</i> subsp. <i>citrulli</i> is high in Mexico, obtaining a value of 12 points accumulated on the risk elements categorized. The growing areas of watermelon located in the states of Yucatan, Quintana Roo, Campeche, Tabasco, and Southern veracruz, are at high risk of establishment, because the climatic conditions favor infection by the bacterium during May and June, when the crop is susceptible. Whereas the watermelon&#45;producing areas in the states of Sinaloa, Durango, Zacatecas, Mexico, Hidalgo, Queretaro, Michoacan, Guanajuato, Tlaxcala, and Puebla, have low risk of establishment. The adoption of phytosanitary measures such as the treatment of the seed with peroxyacetic acid, to minimize this risk is widely recommended.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>Citrullus lanatus,</i> quarantine pest, establishment areas, potential.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el incremento de la comercializaci&oacute;n de productos agr&iacute;colas debido al tratado de libre comercio, el riesgo de la introducci&oacute;n de plagas ex&oacute;ticas tambi&eacute;n se incrementa. El establecimiento de nuevas plagas puede ser costoso porque se incrementa el da&ntilde;o a los cultivos, se requiere de programas de control y representa restricciones cuarentenarias en el comercio (Follett y Neven, 2006). Francia, Holanda, Dinamarca, Estados Unidos, Jap&oacute;n, Alemania e Inglaterra exportan a M&eacute;xico el 80% de las semillas en general. El otro 20% lo conforman pa&iacute;ses asi&aacute;ticos y sudamericanos, destaca Brasil en los primeros lugares. De la semilla de importaci&oacute;n se subraya la destinada para la producci&oacute;n de sand&iacute;a en M&eacute;xico, donde se siembra en 27 estados en una superficie de m&aacute;s de 48 mil hect&aacute;reas y cuyo valor de la producci&oacute;n oscila entre los 2,234 millones de pesos (SIAP, 2007). A causa de la importaci&oacute;n de semilla de sand&iacute;a, existe el riesgo en M&eacute;xico de la entrada de pat&oacute;genos con alto potencial de destrucci&oacute;n, como el caso de <i>Acidovorax avenae</i> subsp. <i>citrulli,</i> causante de la mancha bacteriana del fruto de sand&iacute;a, que puede causar p&eacute;rdidas del 100% en vivero o plantaci&oacute;n cuando se desarrolla bajo condiciones ambientales favorables para su multiplicaci&oacute;n y diseminaci&oacute;n (Mora y Araya, 2002). El an&aacute;lisis de riesgo de plagas (ARP), proporciona la informaci&oacute;n necesaria a quienes toman las decisiones acerca del riesgo que representan las plagas que pueden ser introducidas a trav&eacute;s de la importaci&oacute;n de productos vegetales. Un an&aacute;lisis de riesgo t&iacute;pico incluye la evidencia cient&iacute;fica, sus fuentes de consulta, fuentes de incertidumbre y criterios de raciocinio. En el &aacute;mbito fitosanitario, la Organizaci&oacute;n de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentaci&oacute;n (FAO), a trav&eacute;s de la Convenci&oacute;n Internacional de Protecci&oacute;n Fitosanitaria (CIPF), establece la Norma Internacional para Medidas Fitosanitarias No. 11, titulada An&aacute;lisis de Riesgo de Plagas para Plagas Cuarentenarias, incluido el An&aacute;lisis de Riesgo Ambiental y Organismos Vivos Modificados (FAO, 2004). Los requisitos generales para el ARP de acuerdo a la metodolog&iacute;a FAO/CIPF, est&aacute;n integrados en tres etapas: 1) iniciaci&oacute;n del an&aacute;lisis de riesgo, 2) evaluaci&oacute;n del riesgo, y 3) manejo del riesgo. El ARP basado en los lineamientos FAO/CIPF, ha sido formalmente aplicado para la toma de decisiones por parte de la Direcci&oacute;n General de Sanidad Vegetal en M&eacute;xico (DGSV), desde su versi&oacute;n inicial publicada en 1996 (Elizalde, 2008), como por ejemplo en el caso de la detecci&oacute;n de Huanglongbing <i>(Candidatus</i> Liberibacter asiaticus) en c&iacute;tricos en Yucat&aacute;n y Quintana Roo (NAPPO, 2009) y de la roya anaranjada <i>(Puccinia kuenii)</i> de la ca&ntilde;a de az&uacute;car (NAPPO, 2010). Para las autoridades de la DGSV, es importante actualizar sus m&eacute;todos de ARP y compararlos con los m&eacute;todos aplicados en otras partes del mundo. Los objetivos del presente estudio fueron: 1) utilizar la metodolog&iacute;a FAO/CIPF, para el an&aacute;lisis de riesgo de plagas, y 2) identificar el potencial de riesgo asociado a la introducci&oacute;n, establecimiento y dispersi&oacute;n de <i>A. avenae</i> subsp. <i>citrulli</i> en M&eacute;xico, asociado a la importaci&oacute;n de semilla de sand&iacute;a <i>(Citrullus lanatus).</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de riesgo de plagas.</b> Para cumplir con los objetivos, se consultaron las bases de datos del CABI, AGRICOLA y AGRIS, y las bibliotecas Central y del Departamento de Parasitolog&iacute;a Agr&iacute;cola de la Universidad Aut&oacute;noma Chapingo, la biblioteca del Colegio de Postgraduados, la biblioteca del Centro de Ciencia y Tecnolog&iacute;a Fitosanitaria (CPHST, por sus siglas en ingl&eacute;s), del Departamento de Agricultura de Estados Unidos&#45;Servicio de Inspecci&oacute;n de Sanidad Vegetal y Protecci&oacute;n&#45;Animal Fitosanitaria y Cuarentena (USDA&#45;APHIS&#45;PPQ), y la biblioteca de la Universidad Estatal de Carolina del Norte (NCSU). El proceso de an&aacute;lisis de riesgo de la introducci&oacute;n y establecimiento de <i>A. avenae</i> subsp. <i>citrulli (Aac)</i> se bas&oacute; en lo propuesto por el Departamento de Agricultura de los Estados Unidos (USDA), Servicio de Inspecci&oacute;n y Sanidad Agropecuaria (APHIS) y Protecci&oacute;n Cuarentenaria de las Plantas (PPQ) (USDA, 2000). Este proceso de evaluaci&oacute;n de riesgo corresponde a la versi&oacute;n 5.02, adaptada a la evaluaci&oacute;n de insectos y pat&oacute;genos (USDA, 2005; 2007) e incluy&oacute; los siguientes pasos: 1) Inicio del proceso. Se document&oacute; las razones de la evaluaci&oacute;n de riesgo de <i>Aac</i> asociada a la semilla de sand&iacute;a de importaci&oacute;n, considerando su categor&iacute;a cuarentenaria, los antecedentes de detecci&oacute;n en M&eacute;xico y la importancia econ&oacute;mica potencial. 2) Identificaci&oacute;n, biolog&iacute;a y epidemiolog&iacute;a. Para la evaluaci&oacute;n de las consecuencias de introducci&oacute;n de <i>Aac</i> con base en diversos factores de riesgo, se obtuvo informaci&oacute;n en bases de datos acerca de la taxonom&iacute;a, caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas, biolog&iacute;a y epidemiolog&iacute;a del pat&oacute;geno. 3) Distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica mundial. Si el pat&oacute;geno se introdujera a M&eacute;xico se esperar&iacute;a que su comportamiento estuviera relacionado al de sus &aacute;reas nativas si los hospedantes y clima fueran similares, por lo que se consultaron diversas fuentes de informaci&oacute;n para realizar un listado de los pa&iacute;ses donde ocurre el pat&oacute;geno. Esta informaci&oacute;n se analiz&oacute; con base en el sistema NAPPFAST (Magarey <i>et al.,</i> 2007), para conocer cuantas zonas clim&aacute;ticas en M&eacute;xico son similares a las zonas donde <i>Aac</i> est&aacute; o estuvo presente y se retom&oacute; en la categorizaci&oacute;n de h&aacute;bitat favorable. 4) Consecuencias de una introducci&oacute;n. Se categorizaron cinco elementos de riesgo correspondientes a: a) h&aacute;bitat favorable para la bacteria de acuerdo a la disponibilidad de zonas productoras de sand&iacute;a en una etapa susceptible y condiciones clim&aacute;ticas favorables en M&eacute;xico; b) rango de hospedantes presentes en M&eacute;xico; c) potencial de dispersi&oacute;n despu&eacute;s de su introducci&oacute;n a M&eacute;xico, considerando los patrones reproductivos de la bacteria, su capacidad de movilidad y factores que faciliten su dispersi&oacute;n como viento y agua; d) impacto econ&oacute;mico, en esta categor&iacute;a se consider&oacute; la capacidad de <i>Aac</i> de causar da&ntilde;os directos o indirectos, como disminuci&oacute;n en la producci&oacute;n de los cultivos que afecta, reducci&oacute;n en el valor de la sand&iacute;a y las p&eacute;rdidas de mercados que ha ocasionado en donde est&aacute; presente; e) impacto ambiental, se incluyen los impactos directos como disrupci&oacute;n ecol&oacute;gica, reducci&oacute;n de la biodiversidad, y la estimulaci&oacute;n de programas de control qu&iacute;mico. Los elementos de riesgo se calificaron como: bajo 1=punto, medio=2 puntos y alto=3 puntos. El valor acumulado es un indicador del potencial biol&oacute;gico de <i>Aac</i> para establecerse, dispersarse y causar impacto econ&oacute;mico y ambiental en M&eacute;xico. 5) V&iacute;as de introducci&oacute;n. Se identific&oacute; el potencial de introducci&oacute;n a M&eacute;xico de <i>Aac</i> a trav&eacute;s de la importaci&oacute;n de semilla de sand&iacute;a. 6) Opciones de control. Se documentaron las medidas de control para la exclusi&oacute;n de <i>Aac,</i> as&iacute; como control cultural y control qu&iacute;mico. 7) Opciones de mitigaci&oacute;n de riesgo. Se documentaron las medidas fitosanitarias como adoptadas por distintas Organizaciones Nacionales de Protecci&oacute;n Vegetal, para disminuir el riesgo de <i>Aac.</i> 8) Recomendaci&oacute;n. Para formular las medidas de mitigaci&oacute;n m&aacute;s apropiadas considerando el rango de riesgo. 9) Vac&iacute;os en informaci&oacute;n e incertidumbre. Necesidades en investigaci&oacute;n sobre el rango de hospedantes de <i>Aac.</i> 10) Conclusi&oacute;n. El riesgo potencial de <i>Aac,</i> el cual corresponde a la suma acumulativa de los rangos de las consecuencias de introducci&oacute;n. Para un rango de riesgo acumulado entre 5&#45;7 puntos, la categor&iacute;a es baja, por lo cual no se requieren medidas fitosanitarias espec&iacute;ficas; la inspecci&oacute;n en el punto de entrada se esperar&iacute;a que proporcionar&iacute;a suficiente seguridad cuarentenaria. Para un rango de riesgo entre 8&#45;11 puntos, la categor&iacute;a es media, por lo que medidas fitosanitarias espec&iacute;ficas podr&iacute;an ser necesarias. Si el rango de riesgo se encuentra entre 12&#45;15 puntos, la adopci&oacute;n de medidas fitosanitarias espec&iacute;ficas son ampliamente recomendadas, y la inspecci&oacute;n en el punto de entrada se considera como insuficiente seguridad cuarentenaria.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis geoespacial.</b> En el an&aacute;lisis geoespacial para identificar &aacute;reas de riesgo de establecimiento y dispersi&oacute;n de <i>Aac</i>, se emple&oacute; el sistema NAPPFAST (NCSU&#45;APHIS Plant Pest Forecast System), desarrollado por la Universidad Estatal de Carolina del Norte (NCSU) y Servicio de Inspecci&oacute;n y Sanidad Agropecuaria (APHIS). NAPPFAST es un sistema &uacute;til en el an&aacute;lisis de riesgo, es usado para generar mapas basados en par&aacute;metros clim&aacute;ticos para plagas ex&oacute;ticas e incluye un modelo gen&eacute;rico de infecci&oacute;n. El sistema de NAPPFAST tiene dos bases de datos separadas. La base de datos que corresponde a Norte Am&eacute;rica comprende m&aacute;s de 2000 estaciones meteorol&oacute;gicas, las cuales tienen una resoluci&oacute;n por cuadrante de 10 km usando una interpolaci&oacute;n 3D. Las variables clim&aacute;ticas de la base de datos corresponden a datos diarios de temperatura media, m&aacute;xima y m&iacute;nima (&deg;C); n&uacute;mero de horas totales de humedad (roc&iacute;o) en las hojas; humedad relativa promedio (%); velocidad promedio del viento (km h<sup>&#45;1</sup>); precipitaci&oacute;n (mm); temperatura promedio del suelo a 5 cm (&deg;C); y evaporaci&oacute;n (mm); adem&aacute;s cuenta con datos mensuales de temperatura media, m&aacute;xima y m&iacute;nima (&deg;C); rango de temperatura diaria (&deg;C); frecuencia de heladas; precipitaci&oacute;n (mm); frecuencia de d&iacute;as con humedad; presi&oacute;n de vapor (hectapascales); y nubosidad (%) (Magarey <i>et al.,</i> 2007). Con ayuda de esta interface se desarroll&oacute; el modelo gen&eacute;rico de infecci&oacute;n de <i>Aac.</i> El modelo de infecci&oacute;n de <i>Aac</i> consider&oacute; los siguientes par&aacute;metros: Tmin =26, Topt =28, Tmax =32&deg;C, Hmin =6 h, precipitaci&oacute;n &gt;2 mm por d&iacute;a, con al menos 30 min al 50% de humedad (roc&iacute;o) en las hojas y con humedad relativa del 90% (Hu <i>et al.</i>, 1997; Zitter <i>et al,</i> 1998). El per&iacute;odo en que el follaje y fruta son m&aacute;s susceptibles se defini&oacute; en los meses de mayo y junio por presentarse en estos meses un clima templado h&uacute;medo que favorece el desarrollo de la bacteria. Cada d&iacute;a fue calificado entre 0 y 1 para infecci&oacute;n y esos valores fueron acumulados con base en un registro hist&oacute;rico clim&aacute;tico de 10 a&ntilde;os para M&eacute;xico. Con base en las condiciones clim&aacute;ticas que se pueden presentar, al menos 30&#45;45 d&iacute;as favorables para infecci&oacute;n fue usado como umbral para representar alto riesgo y cinco d&iacute;as bajo riesgo. Con esta informaci&oacute;n se crearon diferentes capas de informaci&oacute;n como una serie de diferentes tonalidades de color, con la ayuda del sistema geogr&aacute;fico Arcview se gener&oacute; un mapa correspondiente a la presencia de la bacteria a nivel mundial a los principales estados productores de sand&iacute;a, en los Estados Unidos de Am&eacute;rica y M&eacute;xico en la estaci&oacute;n de producci&oacute;n en mayo y junio, dependiendo del color que se observ&oacute; en el mapa, las mejores condiciones ambientales y las no adecuadas para el desarrollo de la bacteria.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Motivos para la evaluaci&oacute;n del riesgo.</b> La evaluaci&oacute;n del riesgo de <i>Acidovorax avenae</i> subsp. <i>citrulli (Aac)</i> asociado a la semilla de sand&iacute;a de importaci&oacute;n, se debe a que es una bacteria cuarentenaria y a&uacute;n no reportada en M&eacute;xico. Se han registrado p&eacute;rdidas de hasta 100% en sand&iacute;a y mel&oacute;n <i>(Cucumis melo)</i> cantaloupe como consecuencia de esta enfermedad (Mora y Araya, 2002). El pat&oacute;geno es una amenaza significativa para la producci&oacute;n de las cucurbit&aacute;ceas en Estados Unidos y a nivel mundial con el mismo porcentaje de p&eacute;rdidas (Schaad <i>et al.</i>, 2003).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Identificaci&oacute;n, biolog&iacute;a y epidemiolog&iacute;a del pat&oacute;geno.</b> <i>A. avenae</i> subsp. <i>citrulli</i> agente causal de la mancha bacteriana del fruto (MBF) o bacterial fruit blotch (BFB) en ingl&eacute;s, se encuentra clasificada taxon&oacute;micamente en el Dominio: Bacteria, Phylum: Proteobacteria, Clase: Betaproteobacteria, Orden: Burkholderiales, Familia: Comamonadaceae, G&eacute;nero, especie y subespecie: <i>Acidovorax avenae</i> subsp. <i>citrulli.</i> Es una bacteria Gram negativa, aer&oacute;bica obligada y m&oacute;vil con un s&oacute;lo flagelo polar. La morfolog&iacute;a de la c&eacute;lula es en forma de bast&oacute;n, su tama&ntilde;o var&iacute;a de0.02 a 0.08 x 1.0a5.0 &#956;m. En agar nutritivo forma colonias redondas con m&aacute;rgenes irregulares de color beige a amarillo, convexas, lisas a ligeramente granulares y con una zona marginal translucida. Las colonias no fluorescen en medio B de King (Schaad <i>et al.,</i> 2001; 2003). La severidad de la enfermedad es modificada por alta humedad y temperatura as&iacute; como fuertes corrientes de viento. En Estados Unidos, el desarrollo de la bacteria es favorecido por el clima templado h&uacute;medo como el que existe en Florida en los meses de mayo y junio, &eacute;poca de producci&oacute;n de sand&iacute;a, cultivo que requiere de temperaturas que van de los 23 a 34&deg;C para el desarrollo de la planta y maduraci&oacute;n del fruto, y humedad relativa &oacute;ptima de 60 a 80%. La enfermedad puede progresar r&aacute;pidamente en estas condiciones clim&aacute;ticas (Latin y Hopkins, 1995), ya que la bacteria puede crecer en rangos de temperaturas que van desde 1&deg;C para la m&iacute;nima, 28&#45;32&deg;C &oacute;ptima y 32&#45;41&deg;C m&aacute;xima, seg&uacute;n algunos investigadores. Una vez en que la bacteria lograra introducirse a una zona productora de sand&iacute;a en M&eacute;xico, tendr&iacute;a un alto potencial reproductivo, ya que bajo condiciones favorables de temperaturas entre 27&#45;30&deg;C y 90% de humedad, se observan los primeros puntos clor&oacute;ticos dos d&iacute;as despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n, convirti&eacute;ndose en una necrosis despu&eacute;s de tres d&iacute;as (Hu <i>et al.</i>, 1997; Tanajura <i>et al.</i>, 2005; Zitter, 1998). Silveria <i>et al.</i> (2003), se&ntilde;alan que el per&iacute;odo de incubaci&oacute;n incluso puede presentarse en un rango de 1.3 a 2.7 d&iacute;as. El ciclo de la enfermedad en la mayor&iacute;a de los cultivos hospedantes aparentemente inicia con semilla contaminada y representa la fuente de in&oacute;culo, posteriormente la bacteria infecta los cotiledones de la pl&aacute;ntula cuando &eacute;sta emerge de la testa de la semilla. <i>Aac</i> puede sobrevivir por varios a&ntilde;os en semillas que han sido secadas y almacenadas. La mayor&iacute;a de la producci&oacute;n de sand&iacute;a en los Estados Unidos es a&uacute;n por siembra directa de semilla, pero el trasplante tambi&eacute;n se est&aacute; haciendo m&aacute;s com&uacute;n. La irrigaci&oacute;n a&eacute;rea dispersa con efectividad a la bacteria a pl&aacute;ntulas vecinas en invernaderos, lo que puede resultar en un alto n&uacute;mero de pl&aacute;ntulas infectadas las cuales pueden llegar a los campos de producci&oacute;n y ser el mecanismo a trav&eacute;s del cual la bacteria puede diseminarse. Generalmente los trasplantes no presentan s&iacute;ntomas (Latin y Hopkins, 1995). En el campo, el desarrollo de s&iacute;ntomas y la dispersi&oacute;n de <i>Aac</i> en el follaje y frutos son m&aacute;s r&aacute;pidos durante el verano, cuando el clima es c&aacute;lido y soleado con lluvias en r&aacute;fagas. <i>Aac</i> se dispersa desde las lesiones de las hojas a las flores y frutos a trav&eacute;s del agua salpicada durante la lluvia o en la irrigaci&oacute;n. Las lesiones en las hojas en el campo no resultan en defoliaci&oacute;n, pero son un importante reservorio de la bacteria para la infecci&oacute;n de frutos reci&eacute;n formados, los cuales son m&aacute;s vulnerables a la infecci&oacute;n del pat&oacute;geno. La bacteria penetra a trav&eacute;s de estomas en la superficie de los frutos en desarrollo donde forma lesiones peque&ntilde;as y acuosas de tres a siete d&iacute;as despu&eacute;s. Los frutos maduros de sand&iacute;a est&aacute;n cubiertos con una capa de cera que sella a los estomas y previene la entrada de la bacteria en el fruto. Una vez que la capa de cera se ha formado, las sand&iacute;as maduras pueden ser &uacute;nicamente invadidas por la bacteria a trav&eacute;s de heridas. Las lesiones en la superficie cesan su alargamiento despu&eacute;s de la cosecha (Hopkins <i>et al.</i>, 1995).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Distribuci&oacute;n mundial.</b> La bacteria fue reportada por primera vez en 1965 en Georgia, Estados Unidos (Sowel y Schaad, 1979), posteriormente se encontr&oacute; en Guam y Tiniam, en 1987 y en campos de producci&oacute;n comercial de sand&iacute;a en Florida en 1989 (Somodi <i>et al.</i>, 1991). No se tiene certeza del origen de la bacteria; sin embargo, se presume que la regi&oacute;n Xinjiang del este de China, puede estar implicada en la introducci&oacute;n de esta bacteria a los Estados Unidos (Gitaitis y Walcott, 2007). La presencia de <i>Aac</i> ha sido reportada en Asia: China, Xinjiang (Zhao <i>et al.,</i> 2001), Jap&oacute;n (Ogiso <i>et al.,</i> 2001), Turqu&iacute;a (Demir, 1996), Israel (Burdman <i>et al.,</i> 2005); Norte Am&eacute;rica: Estados Unidos: Alabama, Arkansas, California (CABI/EPPO, 1999; Hopkins <i>et al.</i>, 1995), Delaware (CABI/EPPO, 1999; Evans y Mulrooney, 1991), Florida(CABI/EPPO, 1999; Somodi <i>et al.,</i> 1991), Georgia (CABI/EPPO, 1999; Hopkins <i>et al.,</i> 1995), Illinois (Babadoost y Pataky, 2002), Indiana (CABI/EPPO, 1999; Latin y Rane, 1990), Iowa, Maryland, Mississippi, Missouri, Carolina del Norte (CABI/EPPO, 1999; Hopkins <i>et al.</i>, 1995), Oklahoma(CABI/EPPO, 1999; Jacobs <i>et al.,</i> 1992), Oregon (CABI/EPPO, 1999; Hamm <i>et al.,</i> 1997), Carolina del Sur (CABI/EPPO, 1999; Hopkins <i>et al.,</i> 1995), Texas (Black <i>et al.,</i> 1994; CABI/EPPO, 1999); Nicaragua: Tipitapa (Mu&ntilde;oz y Monterroso, 2002); Brasil: Rio Grande do Norte (Assis <i>et al.,</i> 1999); Australia (CABI/EPPO, 1999): Queensland (CABI/EPPO, 1999; O'Brien y Martin, 1999); Guam, Islas Mariana del Norte (CABI/EPPO, 1999; Wall <i>et al.</i>, 1990).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Consecuencias de una introducci&oacute;n.</b> Elemento de riesgo 1, h&aacute;bitat favorable. La evaluaci&oacute;n de riesgo fue hecha para evaluar las condiciones clim&aacute;ticas favorables de M&eacute;xico para <i>Aac</i> en sand&iacute;a. De acuerdo con el an&aacute;lisis geoespacial mediante el sistema NAPPFAST, las zonas con alto potencial de establecimiento de la plaga en M&eacute;xico, con 30 y 45 d&iacute;as acumulados de condiciones favorables para el desarrollo de la infecci&oacute;n durante los meses de mayo y junio, se ubican en los estados de Yucat&aacute;n, Quintana Roo, Campeche, Tabasco y la parte sur de Veracruz. Las zonas que podr&iacute;an considerarse con menor potencial de establecimiento en las que se acumulan entre     5&#45;10 d&iacute;as favorables se ubican en los estados de Sinaloa, Durango, Zacatecas, M&eacute;xico, Hidalgo, Quer&eacute;taro, Michoac&aacute;n, Guanajuato, Tlaxcala y Puebla (<a href="/img/revistas/rmfi/v29n2/a5f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). Se asign&oacute; para este elemento de riesgo una categor&iacute;a de media, porque ataca y sobrevive en sand&iacute;a en dos &oacute; tres zonas clim&aacute;ticas en M&eacute;xico. Elemento de riesgo 2, rango de hospedantes. <i>A. avenae</i> subsp. <i>citrulli,</i> tiene como hospedantes primarios a <i>Citrullus lanatus</i> (sand&iacute;a) y <i>Cucumis melo</i> (mel&oacute;n); secundarios: <i>C. sativus</i> (pepino), <i>Cucurbita moschata</i> (calabaza), y <i>C. pepo</i> (calabac&iacute;n) (Latin y Hopkins, 1995). La sand&iacute;a, el mel&oacute;n cantaloupe     y roc&iacute;o de miel <i>(Cucumis melo</i> var. <i>inodorus),</i> aparentemente son los m&aacute;s susceptibles, con s&iacute;ntomas foliares y manchas en el fruto, estos dos &uacute;ltimos cultivos est&aacute;n considerados en riesgo ante esta enfermedad (Isakeit <i>et al.,</i> 1997). Se han desarrollado s&iacute;ntomas en follaje en calabaza, pepino y otras cucurbit&aacute;ceas a trav&eacute;s de la inoculaci&oacute;n, pero se han observado s&iacute;ntomas en frutos en estos hospedantes. Citron <i>(Citrullus lanatus</i> var. <i>citroides),</i> una maleza com&uacute;n en la parte sur de Estados Unidos, y presente en M&eacute;xico, puede comportarse como un hospedante alterno. En estudios de laboratorio se pueden inducir s&iacute;ntomas en follaje de tomate <i>(Lycopersicon esculentum),</i>     berenjena <i>(Solanum melongena)</i> y chile <i>(Capsicum annuum),</i> pero no en fruto. De acuerdo a lo anterior, la categor&iacute;a para el elemento de riesgo correspondiente al rango de hospedantes para la bacteria <i>Aac,</i> es media, pues la bacteria ataca m&uacute;ltiples especies de plantas dentro de la familia de las cucurbit&aacute;ceas, varias de las cuales se encuentran en M&eacute;xico. En este caso en particular se identificaron las zonas productoras de sand&iacute;a (<a href="/img/revistas/rmfi/v29n2/a5f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). Elemento de riesgo 3, potencial de dispersi&oacute;n. La bacteria puede ser introducida y dispersada en el campo por medio de semilla infectada, pl&aacute;ntulas infectadas, o la diseminaci&oacute;n natural a trav&eacute;s de plantas hospederas como plantas     voluntarias de sand&iacute;a o cucurbit&aacute;ceas silvestres contaminadas. <i>Aac</i> puede sobrevivir por varios a&ntilde;os en semillas que han sido secadas y almacenadas. Hopkins <i>et al.</i> (1996), se&ntilde;alan que el almacenaje de las semillas a 12&deg;Cpor 12 meses no redujo el nivel de infecci&oacute;n. En muestras de semillas colectadas de frutos con s&iacute;ntomas se han obtenido porcentajes de infecci&oacute;n por arriba del 80% (CABI, 2007). Por otro lado, los invernaderos emplean sistemas de irrigaci&oacute;n que favorecen la dispersi&oacute;n de la bacteria por salpique, lo que deriva en pl&aacute;ntulas infectadas que llegan al campo, donde conforme las plantas van creciendo en el campo, el pat&oacute;geno se dispersa a otras hojas de la planta o a plantas vecinas. Las     pl&aacute;ntulas de sand&iacute;a voluntarias infectadas pueden servir como una fuente de in&oacute;culo local en la siguiente temporada. Las malezas infectadas de la familia de las cucurbit&aacute;ceas tambi&eacute;n pueden ser una amenaza en subsecuentes siembras de sand&iacute;a (Latin y Hopkins, 1995). Con base en la capacidad reproductiva de la bacteria, su habilidad para sobre vivir en la semilla, pl&aacute;ntulas y su posible dispersi&oacute;n a trav&eacute;s del sistema de irrigaci&oacute;n y el viento se asign&oacute; un rango de riesgo alto asociado con el potencial de dispersi&oacute;n. Elemento de riesgo 4, impacto econ&oacute;mico. <i>Aac</i> puede causar p&eacute;rdidas en la producci&oacute;n de sand&iacute;a, ya que posterior a la detecci&oacute;n de <i>Aac</i> en los Estados     ]]></body>
<body><![CDATA[Unidos, &eacute;stas fueron del 90% del total de la fruta destinada al mercado. En 1994, debido a la dispersi&oacute;n de la bacteria, se reportaron p&eacute;rdidas en miles de hect&aacute;reas distribuidas en al menos diez estados de la Uni&oacute;n Americana (Hopkins <i>et al.,</i> 1996). Desde entonces, la enfermedad ha representado una amenaza para la industria de la sand&iacute;a en este pa&iacute;s. En los &uacute;ltimos a&ntilde;os, la enfermedad se ha presentado en pocos campos pero ha devastado varios de &eacute;stos, algunos han resultado en p&eacute;rdidas totales de la fruta. Las p&eacute;rdidas por productor han sido del orden de los $100,000 d&oacute;lares en muchos de estos casos. Tambi&eacute;n ha causado p&eacute;rdidas econ&oacute;micas en varios campos e invernaderos de sand&iacute;a     y mel&oacute;n durante el per&iacute;odo de 2000 a 2003, en diferentes regiones de Israel (Burdman <i>et al.,</i> 2005; CABI, 2007). Por otro lado, ocasiona p&eacute;rdidas en el mercado, por ejemplo, a mediados de los 90's, para evitar el costo de la litigaci&oacute;n, debido a demandas por productores afectados por el presunto uso de semilla de sand&iacute;a infestada, diversas compa&ntilde;&iacute;as suspendieron su venta en varios estados del sureste de Estados Unidos, consideradas zonas de alto riesgo para la ocurrencia de brotes de la bacteria, resultando en p&eacute;rdidas econ&oacute;micas para las compa&ntilde;&iacute;as y los productores. Incluso los s&iacute;ntomas m&aacute;s leves en fruto (aspecto grasoso, acuoso, oscuro o manchado) impiden su comercializaci&oacute;n, produciendo     p&eacute;rdidas cuantiosas de mercado (Latin y Hopkins, 1995). Con base en lo anterior, <i>Aac</i> tuvo un rango de riesgo alto para el impacto econ&oacute;mico, ya que causa al menos tres de los impactos econ&oacute;micos previstos en este elemento de riesgo. Elemento de riesgo 5, impacto ambiental. Seg&uacute;n el Sistema Nacional de Informaci&oacute;n sobre Biodiversidad (SNIB) de CONABIO, de acuerdo a especies registradas en bases de datos de proyectos realizados por esta instituci&oacute;n, M&eacute;xico cuenta con un total de 207 especies de la familia cucurbit&aacute;cea. Ello indica que hay evidencia de plantas hospedantes; sin embargo, ninguna est&aacute; considerada en amenaza o en peligro de extinci&oacute;n en M&eacute;xico, aunque algunas de ellas se reportan con escasa presencia.     El impacto ambiental del pat&oacute;geno se puede categorizar como medio, considerando que por un lado puede ocasionar disrupciones importantes en h&aacute;bitats cr&iacute;ticos en donde se reportan estas 207 especies y que incluyen huerto, bosque tropical, selva baja caducifolia, matorral xer&oacute;filo con cact&aacute;ceas columnares, bosque de pino&#45;encino, ruderal, entre otros y su control requerir&iacute;a de un programa de manejo que puede implicar el uso del control qu&iacute;mico o biol&oacute;gico (CONABIO, 2009, comunicaci&oacute;n personal).</font></p>     	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>V&iacute;as de introducci&oacute;n.</b> La principal v&iacute;a de introducci&oacute;n y dispersi&oacute;n de la bacteria ha sido mediante la transmisi&oacute;n por semilla, debido a que <i>Aac</i> puede sobrevivir por varios a&ntilde;os en semillas que han sido secadas y almacenadas (Latin y Hopkins, 1995; Silveira <i>et al.,</i> 2003; Sowely Schaad, 1979).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Opciones de control.</b> Exclusi&oacute;n del pat&oacute;geno. Como parte de las medidas de prevenci&oacute;n, los productores usan semilla libre de <i>Aac</i> y certificada. Adicionalmente, para la producci&oacute;n comercial se establecen los lotes fundaci&oacute;n de semilla en regiones con climas fr&iacute;os y secos, regiones semi&aacute;ridas donde se logra un escape a la transmisi&oacute;n del pat&oacute;geno a la semilla, adem&aacute;s de una prueba negativa para <i>Aac</i> mediante la siembra de un m&iacute;nimo de 10,000 pl&aacute;ntulas por lote en invernadero bajo condiciones adecuadas de humedad y temperatura para comprobar que est&aacute; libre de la bacteria (Gitaitis y Walcott, 2007). Control cultural. Se recomienda eliminar la maleza y restos de cultivo, ya que pueden actuar como reservorio de la bacteria, no abandonar los cultivos al final del ciclo, proteger los primeros estados vegetativos de las plantas, tener cuidado para no transportar la bacteria con las operaciones habituales que se hacen en el cultivo, o con la ropa, calzado y herramientas de trabajo, realizar las labores de cultivo siguiendo siempre el mismo recorrido por pasillos y filas, evitar visitas excesivas a la plantaci&oacute;n, desinfectar los &uacute;tiles de trabajo y mesas de secado con una soluci&oacute;n de fosfato tris&oacute;dico al 10% &oacute; 2% NaOCl antes y despu&eacute;s de su uso, usar variedades resistentes o tolerantes, cuando existan, desinfectar el suelo mediante solarizaci&oacute;n antes de realizar la plantaci&oacute;n, desinfectar el agua de riego (desinfecci&oacute;n de balsa y estructuras de riego). Controlar las condiciones clim&aacute;ticas en el invernadero manteniendo adecuada ventilaci&oacute;n, baja humedad relativa y temperatura, as&iacute; como control en el suministro de agua para disminuir per&iacute;odos de roc&iacute;o en las hojas (Hopkins <i>et al.,</i> 1996). Control qu&iacute;mico. Las aplicaciones de fungicidas que contengan cobre como mancozeb e hidr&oacute;xido de cobre en dosis recomendadas, han reducido la incidencia de s&iacute;ntomas de la bacteria cuando las aplicaciones se inician en la primera floraci&oacute;n y una semana antes de la fructificaci&oacute;n (Hopkins <i>et al.</i>, 1995).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Opciones de mitigaci&oacute;n de riesgo.</b> Entre las medidas de mitigaci&oacute;n de riesgo para la importaci&oacute;n de semilla de sand&iacute;a de distintos or&iacute;genes y procedencias, el pa&iacute;s exportador cumple con la certificaci&oacute;n de la semilla de acuerdo a los procedimientos de su Organizaci&oacute;n Nacional de Protecci&oacute;n Fitosanitaria y lo manifiesta en la declaratoria adicional del Certificado Fitosanitario Internacional (CFI), de la siguiente forma: "El cultivo fue oficialmente inspeccionado durante el per&iacute;odo de cultivo y se encontr&oacute; libre de la mancha bacteriana del fruto <i>(A. avenae</i> subsp. <i>citrulli)",</i> o bien "No se ha reportado la presencia de <i>A. avenae</i> subsp. <i>citrulli</i> en el estado de producci&oacute;n", apoyada por una inspecci&oacute;n en el campo del pa&iacute;s exportador durante el per&iacute;odo de crecimiento para declarar libre de la plaga. Otras medidas fitosanitarias corresponden a una prueba de diagn&oacute;stico antes de la exportaci&oacute;n, la aplicaci&oacute;n de un tratamiento cuyos detalles se deben se&ntilde;alar en el CFI, inspecci&oacute;n y prueba de diagn&oacute;stico en el punto de ingreso al pa&iacute;s importador. Tratamiento qu&iacute;mico a la semilla. La prevenci&oacute;n de la transmisi&oacute;n de <i>Aac</i> a trav&eacute;s de la semilla es la forma m&aacute;s efectiva de control. Para ello se recomienda el tratamiento a la semilla con Tsunami 1.25%, cuyo ingrediente activo es &aacute;cido peroxiac&eacute;tico (AP), el cual a bajas concentraciones tiene una actividad antimicrobial y ha sido evaluado como uno de los desinfectantes que pueden erradicar eficazmente a <i>Aac</i> de semilla contaminada, as&iacute; como otras enfermedades que se transmiten por semilla en sand&iacute;a; &eacute;ste puede ser aplicado con seguridad a semillas cosechadas de sand&iacute;a triploide sin afectar la calidad de la semilla y la germinaci&oacute;n (Block, 2001). El protocolo de tratamiento m&aacute;s efectivo aplicado a la semilla en Estados Unidos correspondi&oacute; a 30 min con &aacute;cido peroxiac&eacute;tico a 1600 &#956;g mL<sup>&#45;1</sup>, seguido por el secado para disminuir la humedad de semilla en un horno secador a 40&deg;C (Hopkins <i>et al.</i>,2003).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Recomendaci&oacute;n.</b> Revisi&oacute;n de las medidas fitosanitarias aplicadas en M&eacute;xico para la mitigaci&oacute;n de riesgo de <i>A. avenae</i> subsp. <i>citrulli</i> asociada a la importaci&oacute;n de semilla de sand&iacute;a. Que se asegure el cumplimiento de la certificaci&oacute;n de la semilla de acuerdo a los procedimientos de su Organizaci&oacute;n Nacional de Protecci&oacute;n Fitosanitaria</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Vac&iacute;os en informaci&oacute;n e incertidumbre.</b> Es necesario la investigaci&oacute;n para descartar la afectaci&oacute;n en solan&aacute;ceas, ya que no hay reportes en campo, &uacute;nicamente a nivel de laboratorio a trav&eacute;s de inoculaci&oacute;n (Rueda <i>et al.,</i> 2006).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El rango de riesgo total de <i>A. avenae</i> subsp. <i>citrulli</i> es alto en M&eacute;xico, al obtener un valor de 12 puntos acumulado de los elementos de riesgo categorizados: podr&iacute;a atacar y sobrevivir en sand&iacute;a en dos &oacute; tres zonas clim&aacute;ticas en M&eacute;xico similares a las zonas donde el pat&oacute;geno est&aacute; presente; ataca m&uacute;ltiples especies de plantas pero todas dentro de la familia de las cucurbit&aacute;ceas; presenta un alto potencial de dispersi&oacute;n (reproducci&oacute;n uno en dos d&iacute;as, dispersi&oacute;n a grandes distancias sobre semilla y pl&aacute;ntulas, y a trav&eacute;s de sistemas de irrigaci&oacute;n y lluvia); presenta un alto potencial de causar severos da&ntilde;os econ&oacute;micos en zonas productoras de sand&iacute;a; podr&iacute;a tener un impacto ambiental al ocasionar disrupciones importantes en h&aacute;bitats cr&iacute;ticos en M&eacute;xico donde se reportan alrededor de 207 especies de cucurbit&aacute;ceas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo al an&aacute;lisis geoespacial NAPPFAST, M&eacute;xico representa un h&aacute;bitat favorable para la bacteria de acuerdo a la disponibilidad de material hospedante y condiciones clim&aacute;ticas. Las zonas con mayor potencial de establecimiento de la plaga en M&eacute;xico, con 30 y 45 d&iacute;as acumulados de condiciones favorables para la infecci&oacute;n de la bacteria, se ubican en los estados de Yucat&aacute;n, Quintana Roo, Campeche, Tabasco y la parte sur de Veracruz.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De las zonas con mayor potencial de establecimiento de la bacteria en M&eacute;xico, &uacute;nicamente se cuenta con informaci&oacute;n que se&ntilde;ala que en Yucat&aacute;n presenta producci&oacute;n de sand&iacute;a en los meses de mayo a junio, lo que puede influir en el establecimiento del pat&oacute;geno.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis geoespacial no incluy&oacute; otros hospedantes como mel&oacute;n, pepino, calabaza, por lo que ser&iacute;a recomendable realizar el pron&oacute;stico con base en los par&aacute;metros definidos en el sistema NAPPFAST.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dado el alto potencial de riesgo de la plaga, la adopci&oacute;n de medidas fitosanitarias espec&iacute;ficas es ampliamente recomendada. La inspecci&oacute;n en el puerto de entrada se considera insuficiente para proveer seguridad fitosanitaria. La certificaci&oacute;n de las medidas fitosanitarias aplicadas durante la producci&oacute;n de la semilla de sand&iacute;a, incluyendo el tratamiento a la semilla con &aacute;cido peroxiac&eacute;tico puede considerarse en la mitigaci&oacute;n de riesgo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La evaluaci&oacute;n del riesgo de <i>A. avenae</i> subsp. <i>citrulli</i> bajo el proceso utilizado est&aacute; cient&iacute;ficamente fundamentado, lo que ayuda a disminuir la subjetividad, y le confiere transparencia a la toma de decisi&oacute;n en el establecimiento de medidas fitosanitarias.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Assis SMP, Mariano RLR, Silva&#45;Hanlin DMW and Duarte V. 1999. Bacterial fruit blotch caused by <i>Acidovorax avenae</i> subsp. <i>citrulli</i> in melon in the state of Rio Grande do Norte, Brazil. Fitopatolog&iacute;a Brasileira 24:191.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479640&pid=S0185-3309201100020000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Babadoost M and Pataky N. 2002. First report of bacterial fruit blotch of watermelon caused by <i>Acidovorax avenae</i> subsp. <i>citrulli</i> in Illinois. Plant Disease 86:443.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479642&pid=S0185-3309201100020000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Black MC, Isakeit T, Barnes LW, Kucharek TA, Hoover RJ and Hodge NC. 1994. First report of bacterial fruit blotch of watermelon in Texas. Plant Disease 78:831.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479644&pid=S0185-3309201100020000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Block SS 2001. Peroxygen Compounds. Pp:185&#45;204. In: Disinfection, Sterilization, and Preservation. Fifth edition. Lippincott, Williams and Wilkins Press. Philadelphia, PA, USA. 1504p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479646&pid=S0185-3309201100020000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Burdman S, Kots N, Kritzman G and Kopelowitz J. 2005. Molecular, physiological, and host&#45;range characterization of <i>Acidovorax avenae</i> subsp. <i>citrulli</i> isolates from watermelon and melon in Israel. Plant Disease 89:1339&#45;1347.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479648&pid=S0185-3309201100020000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CABI. 2007. Crop protection compendium, 2007 ed. CAB International. Wallingford, UK. Encyclopedic Software.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479650&pid=S0185-3309201100020000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CABI/EPPO. 1999. <i>Acidovorax avenae</i> subsp. <i>citrulli.</i> Distribution Maps of Plant Diseases, Map 10 No. 787. CAB International. Wallingford, UK.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479652&pid=S0185-3309201100020000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Demir G. 1996. A new bacterial disease of watermelon in T&uuml;rkiye: bacterial fruit blotch of watermelon <i>(Acidovorax avenae</i> subsp. <i>citrulli).</i> Journal of Turkish Phytopathology 25:43&#45;49.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479654&pid=S0185-3309201100020000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Elizalde JNA. 2008. Evaluaci&oacute;n de Riesgo Fitosanitario Aplicado a los OGM: An&aacute;lisis, Manejo y Comunicaci&oacute;n. Pp:131&#45;144. En: Bioseguridad en la Aplicaci&oacute;n de la Biotecnolog&iacute;a y el uso de los Organismos Geneticamente Modificados. Comisi&oacute;n Intersecretarial de Bioseguridad de los Organismos Geneticamente Modificados CIOBIOGEM, UPND y GEF. M&eacute;xico, D.F. 383p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479656&pid=S0185-3309201100020000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Evans TA and Mulrooney RP. 1991. First report of watermelon fruit blotch in Delaware. Plant Disease 75:1074.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479658&pid=S0185-3309201100020000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">FAO, Food and Agriculture Organization. 2004. An&aacute;lisis de Riesgo de Plagas para Plagas Cuarentenarias, Incluido el An&aacute;lisis de Riesgos Ambientales y Organismos Vivos Modificados. NIMF No. 11. Normas Internacionales para Medidas Fitosanitarias. Secretar&iacute;a de la Convenci&oacute;n Internacional de Protecci&oacute;n Fitosanitaria. Roma, Italia. 18p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479660&pid=S0185-3309201100020000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Follett PA and Neven LG. 2006. Current trends in quarantine entomology. Annual Review of Entomology 51:359&#45;385.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479662&pid=S0185-3309201100020000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gitaitis R and Walcott RR. 2007. The epidemiology and management of seedborne bacterial diseases. Annual Review of Phytopathology 45:371&#45;97.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479664&pid=S0185-3309201100020000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hamm PB, Spink DS, Clough GH and Mohan KS. 1997. First report of bacterial fruit blotch of watermelon in Oregon. Plant Disease 81:113.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479666&pid=S0185-3309201100020000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hopkins DL, Cucuzza JD and Watterson JC. 1996. Wet seed treatments for the control of bacterial fruit blotch of watermelon. Plant Disease 80:529&#45;532.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479668&pid=S0185-3309201100020000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hopkins DL, Stall B, Kucharek T, Gay D, Gitaitis R, Cook W, Kenath A and Latin R. 1995. Bacterial fruit blotch of watermelon. Special Interstate Cooperative Publication. University of Florida, The University of Georgia, Clemson University and Purdue University. 5p. <a href="http://plantpath.ifas.ufl.edu/takextpub/FactSheets/sicp1.pdf" target="_blank">http://plantpath.ifas.ufl.edu/takextpub/FactSheets/sicp1.pdf</a> (consulta, enero 2009).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479670&pid=S0185-3309201100020000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hopkins DL, Thompson CM, Hilgren J and Lovic B. 2003. Wet seed treatment with peroxyacetic acid for the control of bacterial fruit blotch and other seedborne diseases of watermelon. Plant Disease 87:1495&#45;1499.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479672&pid=S0185-3309201100020000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hu PF, Young MJ, Triggs MC and Wilkie PJ. 1997. Pathogenic relationships of  the subspecies of <i>Acidovorax</i> <i>avenae.</i> Australasian Plant Pathology 26:227&#45;238.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479674&pid=S0185-3309201100020000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Isakeit T, Black MC, Barnes LW and Jones JB. 1997. First report of infection of honeydew with <i>Acidovorax avenae</i> subsp. <i>citrulli.</i> Plant Disease 81:694.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479676&pid=S0185-3309201100020000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jacobs JL, Damicone JP and McCraw BD. 1992. First report of bacterial fruit blotch of watermelon in Oklahoma. Plant Disease 76:1185.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479678&pid=S0185-3309201100020000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Latin RX and Hopkins DL. 1995. Bacterial fruit blotch of watermelon: The hypothetical exam question becomes reality. Plant Disease 79:761&#45;765.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479680&pid=S0185-3309201100020000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Latin RX and Rane KK. 1990. Bacterial fruit blotch of watermelon in Indiana. Plant Disease 74:331.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479682&pid=S0185-3309201100020000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Magarey RD, Fowler GA, Borchert DM, Sutton TB, Colunga&#45;Garcia M and Simpson JA. 2007. NAPPFAST an internet system for the weather&#45;based mapping of plantpathogens. Plant Disease 91:336&#45;345.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479684&pid=S0185-3309201100020000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mora UF y Araya CM. 2002. Mancha bacteriana del fruto de mel&oacute;n y sand&iacute;a: manejo integrado de una emergencia. Manejo Integrado de Plagas y Agroecolog&iacute;a 66:105&#45;106.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479686&pid=S0185-3309201100020000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mu&ntilde;oz M and Monterroso D. 2002. Identification of <i>Acidovorax avenae citrulli</i> in watermelon seeds in Nicaragua. Manejo Integrado de Plagas y Agroecolog&iacute;a 66:101&#45;104.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479688&pid=S0185-3309201100020000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">O'Brien RG and Martin HL. 1999. Bacterial blotch of melons caused by strains of <i>Acidovorax avenae</i> subsp. <i>citrulli.</i> Australian Journal of Experimental Agriculture 39:479&#45;485.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479690&pid=S0185-3309201100020000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ogiso H, Fujinaga M and Shimizu T. 2001. Occurrence of watermelon bacterial fruit blotch in Nagano prefecture. Annual Report of the Kanto&#45;Tosan Plant Protection Society 48:33&#45;36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479692&pid=S0185-3309201100020000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">NAPPO, Organizaciones Nacionales de Protecci&oacute;n Fitosanitaria. 2009. Actualizaci&oacute;n de la detecci&oacute;n de Huanglongbing <i>(Candidatus</i> Liberibacter asiaticus) en &aacute;rboles de traspatio en los estados de Yucat&aacute;n y Quintana Roo, M&eacute;xico. <a href="http://www.pestalert.org/espanol/oprDetail.cfm?oprID=401" target="_blank">http://www.pestalert.org/espanol/oprDetail.cfm?oprID=401</a> (consulta, enero 2010).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479694&pid=S0185-3309201100020000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">NAPPO, Organizaciones Nacionales de Protecci&oacute;n Fitosanitaria. 2010. Detecci&oacute;n de roya anaranjada de la ca&ntilde;a de az&uacute;car <i>(Puccinia kuenii)</i> en M&eacute;xico. <a href="http://www.pestalert.org/espanol/oprDetail.cfm?oprID=424" target="_blank">http://www.pestalert.org/espanol/oprDetail.cfm?oprID=424</a> (consulta, diciembre 2010).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479696&pid=S0185-3309201100020000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rueda PEO, Taraz&oacute;n HMA, Garc&iacute;a HJL, Murillo AB, Holg&iacute;n PRJ, Flores HA, S&aacute;nchez AA, Flores OA y Preciado RP. 2006. Producci&oacute;n de antisuero contra la mancha bacteriana del fruto &#91;<i>Acidovorax avenae</i> pv. <i>citrulli</i> (Schaad, Sowell, Goth, Colwelly Webb) Willems, Goor, Thielemans, Gillis, Kersters y De Ley&#93; y su detecci&oacute;n en el cultivo de sand&iacute;a <i>(Citrullus vulgaris</i> Schrad.) en la Comarca Lagunera, M&eacute;xico. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a 24:129&#45;136.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479698&pid=S0185-3309201100020000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schaad NW, Jones JB and Chun W. 2001. Laboratory Guide for Identification of Plant Pathogenic Bacteria. The American Phytopathological Society. Third Edition. St. Paul, Minnesota, USA. 373p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479700&pid=S0185-3309201100020000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schaad NW, Postnikova E and Randhawa P. 2003. Emergence of <i>Acidovorax avenae</i> subsp. <i>citrulli</i> as a crop&#45;threatening disease of watermelon and melon. <i>In:</i> Iacobellis NS, Collmer A, Hutcheson SW, Mansfield JW, Morris CE, Murillo J, Schaad NW, Stead DE, Surico G, Ullrich MS. (eds.). Document Title: Presentations from the 6th International Conference on <i>Pseudomonas syringae</i> pathovars and related pathogens, Maratea, Italy, September 15&#45;19, 2002. Kluver Academic Publishers. 708p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479702&pid=S0185-3309201100020000500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SIAP, Servicio de Informaci&oacute;n Agroalimentaria y Pesquera. 2007. Secretar&iacute;a de Agricultura, Ganader&iacute;a, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentaci&oacute;n. <a href="http://www.siap.gob.mx" target="_blank">http://www.siap.gob.mx</a> (consulta, julio 2008).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479704&pid=S0185-3309201100020000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Silveira EB, Michereff SJ e Mariano RLR. 2003. Severidade da mancha&#45;aquosa em meloeiro sob diferentes condi&ccedil;&otilde;es de molhamento foliar e concentra&ccedil;&atilde;o de in&oacute;culo de <i>Acidovorax avenae</i> subsp. <i>citrulli.</i> Fitopatologia Brasileira 28:171&#45;175.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479706&pid=S0185-3309201100020000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Somodi GC, Jones JB, Hopkins DL, Stall RE, Kucharek TA, Hodge NC and Watterson JC. 1991. Occurrence of a bacterial watermelon fruit blotch in Florida. Plant Disease 75:1053&#45;1056.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479708&pid=S0185-3309201100020000500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sowel GJr and Schaad NW. 1979. <i>Pseudomonas pseudoalcaligenes</i> subsp. <i>citrulli</i> on watermelon: Seed transmission and resistance of plant introductions. Plant Disease Reporter 63:437&#45;441.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479710&pid=S0185-3309201100020000500036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tanajura CM, Barbosada SE, Ramos MR de Le Oliveira VI. 2005. Crescimento de <i>Acidovoraxavenae</i> subsp. <i>citrulli</i> sob diferentes temperaturas, pH, concentra&ccedil;&otilde;es de cloreto de sodio e fontes de carbono. Ci&ecirc;ncia Rural, Santa Maria 35:1313&#45;1318.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479712&pid=S0185-3309201100020000500037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">USDA, United States Department of Agriculture. 2000. Guidelines for pathway&#45;initiated pest risk assessment. Version 5.02. Animal and Plant Health Inspection (APHIS). Plant Protection and Quarantine (PPQ). Permits and Risk Assessment. Commodity risk analysis branch. Riverdale, MD, USA. 30p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479714&pid=S0185-3309201100020000500038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">USDA, United States Department of Agriculture. 2005. Risk analysis for <i>Phytophthora ramorum</i> Werres, de Cock and 1 In't Veld, causal agent of Phytophthora Canker (Sudden Oak Death), Ramorum Leaf Blight, and Ramorum Dieback. Animal and Plant Health Inspection (APHIS). Plant Protection and Quarantine (PPQ). Center for Plant Health Science and Technology (CPHST). Raleigh, NC, USA. 77p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479716&pid=S0185-3309201100020000500039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">USDA, United States Department of Agriculture. 2007. Risk analysis of potential consequences associated with the introduction of the Red Palm Mite, <i>Raoiella indica,</i> into the United States. Animal and Plant Health Inspection (APHIS). Plant Protection and Quarantine (PPQ). Center for Plant Health Science and Technology (CPHST). Raleigh, NC, USA. 24p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479718&pid=S0185-3309201100020000500040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wall GC, Santos VM, Cruz FJ, Nelson DA and Cabrera I. 1990. Outbreak of watermelon fruit blotch in the Mariana Islands. Plant Disease 74:80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479720&pid=S0185-3309201100020000500041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zhao TC, Sun FZ, Wang BW and Hui WG. 2001. Pathogen identification of Hami melon bacterial fruit blotch. Acta Phytopathologica Sinica 31:357&#45;364.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479722&pid=S0185-3309201100020000500042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zitter TA, Hopkins DL and Thomas CF. 1998. Compendium of Cucurbit Diseases. The American Phytopathological Society. St. Paul, Minnesota, USA. 87p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8479724&pid=S0185-3309201100020000500043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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