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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto del pH y de la Fuente de Carbono Sobre el Crecimiento Vegetativo de Ustilago cynodontis (Pass.) Henn. en medio de cultivo sólido y líquido]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Mycelial growth of Ustilago cynodontis was observed in Petri plates with solid medium MM glucose at pH 3-7 and in MM glycerol pH 3-5. Mycelial-yeast growth type was observed in Petri plates with MM glucose pH 8 at 96 h incubation, and in MM glycerol pH 5 at 96 h and with pH 8 at 24 h. Yeast growth type was observed in the last medium with pH 6-8 at 48 and 96 h. Mycelial growth was observed in tubes with liquid medium MM glucose at pH 3 and 4, and pH 5, 6, 7, and 8 at 24 and 48 h. Similar growth was observed in MM glycerol at the same pH 6 and time intervals. The mycelial-yeast growth type occurred at pH 5 and 6 at 96 h in both media and at pH 7 and 8 in MM glucose at 96 h, while the yeast type of growth occurred at pH 7 and 8 in MM glycerol at 96 h.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Notas fitopatol&oacute;gicas</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Efecto del pH y de la Fuente de Carbono Sobre el Crecimiento Vegetativo de <i>Ustilago cynodontis </i>(Pass.) Henn. en medio de cultivo s&oacute;lido y l&iacute;quido</b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Effect of pH and Carbon Source on the Vegetative Growth of <i>Ustilago cynodontis </i>(Pass.) Henn. in a solid and liquid culture medium</b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Patricio Adri&aacute;n Zapata&#150;Mor&iacute;n<sup>1</sup>, Guillermo Fuentes&#150;D&aacute;vila<sup>2</sup>, Juan Manuel Adame&#150;Rodr&iacute;guez<sup>3</sup> y Elva Teresa Ar&eacute;chiga&#150;Carvajal<sup>3</sup></b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Univ. Aut. de Nuevo Le&oacute;n, Fac. de Ciencias Biol&oacute;gicas, Lab. de Micolog&iacute;a y Fitopatolog&iacute;a (UANL&#150;FCB&#150;LMF), Unidad C 2&deg; Piso, Av. Pedro de Alba y Manuel L. Barrag&aacute;n s/n, Ciudad Universitaria, San Nicol&aacute;s de los Garza, Nuevo Le&oacute;n, M&eacute;xico CP 66451.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>2</sup> <i>INIFAP, Campo Experimental Valle del Yaqui, Norman E. Borlaug, km 12, Apdo. Postal 155, Cd. Obreg&oacute;n, Sonora, M&eacute;xico CP 85000.</i></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i> <sup>3</sup> UANL&#150;FCB&#150;LMYF. Correspondencia:</i> <a href="mailto:elva.arechigacr@uanl.edu.mx">elva.arechigacr@uanl.edu.mx</a></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: Abril 12, 2010    <br> Aceptado: Julio 21, 2010</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El desarrollo de <i>Ustilago cynodontis </i>en cajas Petri con medio s&oacute;lido en MM glucosa con pH 3&#150;7 fue predominantemente micelial; crecimiento similar se observ&oacute; en MM glicerol con pH de 3&#150;5. El crecimiento micelial y de levadura se observ&oacute; en cajas Petri en MM glucosa con pH 8 a las 96 h de incubaci&oacute;n, y en MM glicerol con pH 5 a las 96 h y con pH 8 a las 24 h. La forma de levadura se observ&oacute; en este &uacute;ltimo medio con pH 6&#150;8 a las 48 y 96 h. En tubos c&oacute;nicos en medio l&iacute;quido con MM glucosa, el crecimiento fue micelial en pH 3 y 4, y en pH 5,6,7 y 8 a las 24 y 48 h. Crecimiento similar se observ&oacute; en MM glicerol en los mismos pH e intervalos de tiempo. La forma de micelio y levadura se present&oacute; en pH 5 y 6 a las 96 h en ambos medios y en pH 7 y 8 en MM glucosa a las 96 h, mientras, que la forma de levadura se present&oacute; en pH 7 y 8 en MM glicerol a las 96 h.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Cynodon dactylon, </i>Ustilaginales, carb&oacute;n.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mycelial growth of <i>Ustilago cynodontis </i>was observed in Petri plates with solid medium MM glucose at pH 3&#150;7 and in MM glycerol pH 3&#150;5. Mycelial&#150;yeast growth type was observed in Petri plates with MM glucose pH 8 at 96 h incubation, and in MM glycerol pH 5 at 96 h and with pH 8 at 24 h. Yeast growth type was observed in the last medium with pH 6&#150;8 at 48 and 96 h. Mycelial growth was observed in tubes with liquid medium MM glucose at pH 3 and 4, and pH 5, 6, 7, and 8 at 24 and 48 h. Similar growth was observed in MM glycerol at the same pH 6 and time intervals. The mycelial&#150;yeast growth type occurred at pH 5 and 6 at 96 h in both media and at pH 7 and 8 in MM glucose at 96 h, while the yeast type of growth occurred at pH 7 and 8 in MM glycerol at 96 h.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> <i>Cynodon dactylon, </i>Ustilaginales, smut.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La importancia de la introducci&oacute;n de modelos en Ustilaginales reside en el conocimiento de los mecanismos de infecci&oacute;n y para comparaci&oacute;n de especies. Una propuesta de un modelo es <i>Ustilago cynodontis </i>(Pass.) Henn., ya que posee caracter&iacute;sticas representativas de los Ustilaginales y es un hongo dim&oacute;rfico con capacidad de desarrollo como micelio y como levadura. Una caracter&iacute;stica importante de este organismo es que predomina en su forma de micelio en la mayor&iacute;a de las condiciones de cultivo de laboratorio al tener condiciones de pH en un rango de 3 a 7 con presencia de glucosa al 1 %. El objetivo de este estudio fue determinar el efecto del pH y de la fuente de carbono sobre el crecimiento vegetativo de <i>U. cynodontis.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aislamiento de teliosporas y preparaci&oacute;n de in&oacute;culo. </b>La muestra de <i>C. dactylon </i>infectada por <i>U. cynodontis </i>se obtuvo de la colecci&oacute;n de Dur&aacute;n (1987) la cual se mantuvo a 20&#150;22 &deg;C &plusmn; 2 &deg;C. Las teliosporas se aislaron de ovarios infectados sobre una soluci&oacute;n de agua con Tween 20 (1 gota L<sup>&#150;1</sup> de agua) y se desinfestaron con hipoclorito de sodio (0.5% i.a.) mientras se centrifugaba a 3,000 rpm min&#150;<sup>&#150;1</sup>; el mismo procedimiento de centrifugaci&oacute;n se hizo con agua destilada esterilizada. Las teliosporas se transfirieron a cajas Petri con agar&#150;agua y se incubaron a 20&#150;22 &deg;C &plusmn; 2 &deg;C durante 48 h. A partir de las colonias del hongo, se tom&oacute; una muestra y se sembr&oacute; en medio agar&#150;levadura&#150;peptona&#150;dextrosa (YPD, 50 g/L) +1 &mu;L mL<sup>&#150;1</sup> de ampicilina con una concentraci&oacute;n de 50 mg mL<sup>&#150;1</sup>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Inducci&oacute;n a la diferenciaci&oacute;n. </b>En tubos c&oacute;nicos Falcon de 50 mL se agregaron de 5 a 10 mL de YPD, y luego se sembr&oacute; material propagativo (levadura) del hongo y se incub&oacute; por 24 h. Se inocul&oacute; <i>U. cynodontis </i>en 10 mL de medio completo (MC) (Holliday, 1961). El cultivo se creci&oacute; en un tubo c&oacute;nico a 28 &deg;C y en constante agitaci&oacute;n durante 48 h, luego se centrifug&oacute; a 3,000 rpm por 5 min. Se desech&oacute; el sobrenadante y luego en un matraz de 1 litro se agregaron 250 mL de medio completo pH 7 y se incub&oacute; de 18&#150;20 h a 28 &deg;C. Se centrifug&oacute;, se lav&oacute; con agua destilada est&eacute;ril y se resuspendi&oacute; en 30 mL de agua bidestilada est&eacute;ril; se afor&oacute; a 250 mL en agua bidestilada est&eacute;ril a 28 &deg;C y se mantuvo en agitaci&oacute;n por 3 h. Se cosecharon nuevamente las c&eacute;lulas vegetativas por centrifugaci&oacute;n y se lavaron dos veces con agua bidestilada est&eacute;ril. Se resuspendi&oacute; el precipitado en 25 mL de agua bidestilada y se le dio un choque fr&iacute;o por 15&#150;30 min antes de su uso, posterior a esto se mantuvo a 4 &deg;C por 24 h. Se determin&oacute; la morfolog&iacute;a del hongo durante su crecimiento a las 24, 48 y 96 h, tanto en cajas Petri como en tubos c&oacute;nicos con medio m&iacute;nimo (MM) (Kempner y Miller, 1972) con glucosa y glicerol (1%) como fuente de carbono.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS  Y  DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El   desarrollo   de   <i>U. cynodontis </i>en cajas Petri con MM + glucosa (<a href="/img/revistas/rmfi/v28n2/a9c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>, S1) fue predominantemente de micelio (<a href="#f1">Fig. 1A</a>) en pH 3 a 7, durante los diferentes intervalos de tiempo, y con 8, a las 24 y 48 h; desarrollo similar se observ&oacute; en cajas Petri con glicerol y MM (S2) con pH de 3 y 4, con 5 a las 24 y 48 h, y con 6 y 7 a las 24 h. El desarrollo micelial y levaduriforme se observ&oacute; en cajas Petri en MM + glucosa (S1) con pH 8 a las 96 h, y en MM + glicerol (S2) con pH 5 a las 96 h y con pH 8 a las 24 h (<a href="#f1">Fig. 1B</a>). El desarrollo levaduriforme se observ&oacute; en este &uacute;ltimo medio con pH 6&#150;8 a las 48 y 96 h (<a href="#f1">Fig. 1C</a>). En los tubos c&oacute;nicos con MM + glucosa (<a href="/img/revistas/rmfi/v28n2/a9c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>, L1), el desarrollo fue micelial en pH 3 y 4, y en pH 5, 6, 7 y 8 a las 24 y 48 h. Desarrollo similar se observ&oacute; en MM + glicerol (L2) en los mismos pH e intervalos de tiempo. La forma micelial y levaduriforme se present&oacute; en pH 5 y 6 a las 96 h en ambos medios y en pH 7 y 8 en MM + glucosa a las 96 h, mientras, que la forma de levadura se present&oacute; en pH 7 y 8 en MM + glicerol a las 96 h. <i>U. cynodontis </i>predomin&oacute; en forma micelial tanto en medio l&iacute;quido como s&oacute;lido, mientras que el tipo levaduriforme s&oacute;lo se observ&oacute; cuando se utiliz&oacute; una forma de carbono no fermentativa (Durieu&#150;Trautmann y Tavlitzki, 1975). En el presente estudio se utiliz&oacute; glicerol y glucosa como fuentes de carbono, y se observaron cambios notables morfol&oacute;gicos de <i>U. cynodontis </i>a trav&eacute;s de las diferentes concentraciones de potenciales de iones hidr&oacute;genos que se adicionaron al medio; sin embargo, la forma de levadura s&oacute;lo se observ&oacute; en medios con pH b&aacute;sicos en los cuales la fuente de carbono fue glicerol. El crecimiento del hongo en estos medios fue similar a lo reportado por Durieu&#150;Trautmann y Tavlitzki (1975). El crecimiento de <i>U. cynodontis </i>en los medios s&oacute;lido y l&iacute;quido con glicerol (<a href="/img/revistas/rmfi/v28n2/a9c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>, S2, L2) en pH 6,7 y 8, pudo ser una respuesta al factor adicional de estr&eacute;s que se gener&oacute; en la v&iacute;a de desarrollo del hongo, ya que en el medio s&oacute;lido el crecimiento a las 48 h fue en forma de levadura en contraste con la estructura micelial del medio l&iacute;quido.</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmfi/v28n2/a9f1.jpg"></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durieu&#150;Trautmann, O., and Tavlitzki, J. 1975. Reversible and permanent effects of the carbon sources and various antibiotics on the morphology and metabolic properties of <i>Ustilago cynodontis </i>cells. The Journal of Cell Biology 66:102&#150;113.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8477616&pid=S0185-3309201000020000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Holliday, R. 1961. The genetics <i>of Ustilago maydis. </i>Genetic Research Cambridge 2:204&#150;230.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8477618&pid=S0185-3309201000020000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kempner E., and Miller, J.H. 1972. Inorganic requirements for a minimal culture medium. The molecular biology of <i>Euglena gracilis. </i>Journal of Protozoology 19:343&#150;346.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8477620&pid=S0185-3309201000020000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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