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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In vitro mango seedlings free of external and seed-transmitted contaminants were obtained from immature embryos. Then, they were transplanted to soil using only sterilized materials. Mango embryos 45-60 days old were plated in modified B5 medium; and after seedlings attained 10 cm height, they were transplanted to soil + expanded perlite in specially designed plastic containers. Plants were irrigated with nutritive universal solution. During the in vitro stage 10% contamination with Penicillium, Aspergillus, Xanthomonas and Cladosporium was observed. Contamination in plastic containers gradually reached 15% after five months. Cladosporium, Alternaria, Aspergillus, Rhizopus, and Fusarium were identified in the substrate, whereas Helminthosporium, Curvularia, Penicillium, and Syncephalastrum appeared in the plastic containers.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Notas fitopatol&oacute;gicas</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Manejo de Pl&aacute;ntulas de Mango (<i>Mangifera indica </i>L.) Obtenidas <i>in vitro </i>para Estudios de Sanidad Vegetal</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Management of mango (<i>Mangifera indica</i> L.) seedlings obtained <i>in vitro</i> for plant health studies</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Martha Elena L&oacute;pez&#150;Estrada<sup>1</sup>, Mar&iacute;a Concepci&oacute;n Acosta&#150;Rodr&iacute;guez<sup>2</sup>, Gabriel Otero&#150;Colina<sup>3</sup>, Alejandro Casimiro Michel&#150;Aceves<sup>4</sup>, y David Heriberto Noriega&#150;Cant&uacute;<sup>5</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Brigada de Educaci&oacute;n para el Desarrollo Rural No. 90, SEP&#150;DGETA, Maya No. 30, Iguala, Guerrero, M&eacute;xico CP 40000.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2 </sup>Centro de Bachillerato Tecnol&oacute;gico Agropecuario No. 35, SEP&#150;DGETA, km 22.5 Carr. Fed. M&eacute;xico&#150;Puebla, Apdo. Postal 38, Tlalpiz&aacute;huac, Edo. de M&eacute;xico CP 56576.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> Colegio de Postgraduados, Campus Montecillo, km 36.5 Carr. M&eacute;xico&#150;Texcoco, Montecillo, Edo. de M&eacute;xico CP 56230. </i>Correspondencia: <a href="mailto:gotero@colpos.mx">gotero@colpos.mx</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>4 </sup>Colegio Superior Agropecuario del Estado de Guerrero, SAGARPA, km 14.5 Carr. Iguala&#150;Cocula, Apdo. Postal 6 y 9, Iguala, Guerrero, M&eacute;xico CP 40000.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>5 </sup>INIFAP, Campo Experimental Iguala, km 2.5 Carr. Iguala&#150;Tuxpan, Iguala, Guerrero, M&eacute;xico CP 40000.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: Junio 27, 2007     <br> Aceptado: Diciembre 4, 2007</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A partir de embriones inmaduros de mango se obtuvieron pl&aacute;ntulas <i>in vitro </i>libres de contaminantes externos y transmitidos por semilla; luego se trasplantaron a suelo usando s&oacute;lo materiales esterilizados. Se sembraron embriones de mango de 45 a 60 d&iacute;as de edad en medio B5 modificado; cuando las pl&aacute;ntulas alcanzaron 10 cm de altura se trasplantaron a suelo + perlita expandida en recipientes de pl&aacute;stico especialmente dise&ntilde;ados y ah&iacute; se regaron con soluci&oacute;n nutritiva universal. En la etapa <i>in vitro </i>se present&oacute; 10% de contaminaci&oacute;n por <i>Penicillium, Aspergillus, Xanthomonas </i>y <i>Cladosporium. </i>La contaminaci&oacute;n en los recipientes as&eacute;pticos alcanz&oacute; gradualmente 15% despu&eacute;s de cinco meses. En el sustrato se determin&oacute; a <i>Cladosporium, Alternaria, Aspergillus, Rhizopus </i>y <i>Fusarium, </i>mientras que en los recipientes se identific&oacute; a <i>Helminthosporium, Curvularia, Penicillium </i>y <i>Syncephalastrum.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras claves:</b> Cultivo de embriones, contaminantes, sustrato, micropropagaci&oacute;n, desinfecci&oacute;n.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>In vitro </i>mango seedlings free of external and seed&#150;transmitted contaminants were obtained from immature embryos. Then, they were transplanted to soil using only sterilized materials. Mango embryos 45&#150;60 days old were plated in modified B5 medium; and after seedlings attained 10 cm height, they were transplanted to soil + expanded perlite in specially designed plastic containers. Plants were irrigated with nutritive universal solution. During the <i>in vitro </i>stage 10% contamination with <i>Penicillium, Aspergillus, Xanthomonas </i>and <i>Cladosporium </i>was observed. Contamination in plastic containers gradually reached 15% after five months. <i>Cladosporium, Alternaria, Aspergillus, Rhizopus, </i>and <i>Fusarium </i>were identified in the substrate, whereas <i>Helminthosporium, Curvularia, Penicillium, </i>and <i>Syncephalastrum </i>appeared in the plastic containers.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> Embryo culture, contaminants, substrate, micropropagation, disinfection.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El cultivo de tejidos vegetales es un conjunto de t&eacute;cnicas que se basan en la siembra as&eacute;ptica de tejidos y &oacute;rganos sobre un medio de cultivo espec&iacute;fico para lograr diferentes objetivos, entre los que destaca la obtenci&oacute;n de plantas libres de contaminantes (Kozai, 2006). Los embriones normalmente se desarrollan dentro de &oacute;vulos que a su vez est&aacute;n cubiertos por los ovarios; puesto que existen ya en un ambiente est&eacute;ril, la desinfecci&oacute;n de la superficie del embri&oacute;n es innecesaria a menos que se da&ntilde;en las capas de la semilla o est&eacute; presente una infecci&oacute;n sist&eacute;mica (Razdan, 2003). La propagaci&oacute;n <i>in vitro </i>tiene tambi&eacute;n la aplicaci&oacute;n de obtener material biol&oacute;gico para trabajar sobre los aspectos de sanidad, como es el caso del presente trabajo, cuyo objetivo fue conseguir un ambiente as&eacute;ptico durante el establecimiento <i>in vitro </i>de embriones de mango <i>(Mangifera indica </i>L.), germinaci&oacute;n y trasplante a un sistema de frasco cerrado, a fin de obtener plantas libres de contaminantes para observar fen&oacute;menos patol&oacute;gicos. Se colectaron 250 frutos inmaduros de 45 a 60 d&iacute;as de edad a partir de la antesis, procedentes de &aacute;rboles de mango criollo poliembri&oacute;nico en Iguala, Guerrero, M&eacute;xico. Se lavaron con detergente y se enjuagaron con agua de la llave. En la campana de flujo laminar se desinfectaron con hipoclorito de sodio al 6% por 15 min y se lavaron dos veces con agua destilada est&eacute;ril (autoclave, 121&deg;C, 1.05 kg/cm<sup>2</sup>, 60 min). Con instrumentos est&eacute;riles se extrajo el &oacute;vulo de cada mango y se le retir&oacute; la nucela, se desinfectaron en hipoclorito de sodio al 0.6% por 10 min, se lavaron tres veces con agua destilada est&eacute;ril, se sembraron en frascos con medio basal B5 modificado (Gamborg <i>et al., </i>1968), y se incubaron en un cuarto de crecimiento con temperatura de laboratorio (entre 20 y 32&deg;C) e iluminaci&oacute;n fluorescente. Todos los contaminantes observados se sembraron en papa&#150;dextrosa&#150;agar (PDA) y se identificaron a nivel de g&eacute;nero mediante las claves de Barnet y Hunter (1998). Para determinar si las semillas eran o no portadoras de g&eacute;rmenes, se sembraron 50 embriones y sus nucelas en cajas Petri con PDA y otros 50 embriones y sus nucelas en medio de Nash&#150;Snyder (peptona&#150;PCNB, pentacloronitrobenceno) (Leslie y Summerell, 2006). A este &uacute;ltimo medio se le adicionaron sulfato de estreptomicina (1 g en 20 mL de agua) y neomicina (0.12 g en 12 mL de agua), previo tratamiento en filtros milipor de 0.22 &#956;m de abertura y una vez que el medio se esteriliz&oacute; en autoclave y bajara a una temperatura de aproximadamente 50&deg;C. Las cajas Petri se colocaron bajo luz artificial a 25&deg;C y se revisaron a 24, 48 y 72 h. Cuando hab&iacute;an alcanzado aproximadamente 10 cm de altura, las plantas se trasplantaron a suelo org&aacute;nico + perlita expandida (Agrolita&reg;) + tezontle (2:1:1 por volumen), en recipientes especialmente dise&ntilde;ados (<a href="/img/revistas/rmfi/v26n2/a12f1.jpg" target="_blank">Fig. 1</a>). Los frascos y las macetas se lavaron con agua y detergente, posteriormente, en la campana de flujo laminar se lavaron con agua destilada y con alcohol al 96%. Cuando quedaron completamente secos se introdujeron en bolsas dobles de polietileno, las que se sellaron con calor, exponiendo los recipientes a rayos UV Las torundas se hicieron con rect&aacute;ngulos de algod&oacute;n de 6 x 7 cm envueltos en gasa. Las tapaderas se lavaron igual que los frascos y las macetas, pero se esterilizaron con autoclave, ya que resistieron el calor. En el <a href="#c1">Cuadro 1</a> se muestran las variantes usadas para esterilizar los diferentes materiales usados. En todos los casos, se us&oacute; el m&eacute;todo que result&oacute; en 100% de asepsia. Luego de su trasplante (<a href="/img/revistas/rmfi/v26n2/a12f1.jpg" target="_blank">Fig. 1</a>), las plantas se incubaron a temperatura de laboratorio (20&#150;32&deg;C) y dentro de la campana de flujo laminar se regaron cada 45 d&iacute;as con soluci&oacute;n nutritiva universal de Ju&aacute;rez&#150;Hern&aacute;ndez <i>et al. </i>(2006). A los 18 d&iacute;as pr&aacute;cticamente 100% de los embriones de mango hab&iacute;an germinado, lo que se asocia con su condici&oacute;n de semillas recalcitrantes (Corbinaeu <i>et al., </i>1987). El uso de mango criollo poliembri&oacute;nico permiti&oacute; obtener de una a cuatro plantas de cada &oacute;vulo, las que crecieron r&aacute;pidamente hasta alcanzar aproximadamente 15 cm en 21 d&iacute;as. El hecho de haber usado mangos poliembri&oacute;nicos permite trabajar con material gen&eacute;ticamente diferente, con lo que se cuenta con variaci&oacute;n en el material biol&oacute;gico en consecuencia mayor representatividad en la respuesta de plantas en estudios de patogenicidad. El <a href="#c2">Cuadro 2</a> muestra los contaminantes observados en los materiales usados a lo largo del proceso de desarrollo de las plantas. Todos los contaminantes identificados se consideran organismos oportunistas que se establecieron durante el proceso a pesar de las condiciones de asepsia, y ninguno ha sido citado como pat&oacute;geno o end&oacute;f&iacute;to en mango (Morales&#150;Rond&oacute;n y Rodr&iacute;guez&#150;Gonz&aacute;lez, 2006). En ninguno de los &oacute;vulos sembrados aparecieron contaminantes. El hecho de que las plantas hayan sido trasplantadas a suelo, ofrece como ventaja que son independientes de reguladores de crecimiento y sustancias org&aacute;nicas que podr&iacute;an afectar el crecimiento de hongos o bacterias inoculadas durante estudios de patogenicidad <i>in vitro. </i>Las plantas obtenidas por el m&eacute;todo <i>in vitro </i>desarrollado pueden ser sacadas de sus frascos y aclimatadas al ambiente de laboratorio o invernadero, en cuyo caso inevitablemente perder&aacute;n su condici&oacute;n de asepsia. Sin embargo, podr&aacute; garantizarse que est&aacute;n libres de pat&oacute;genos selectos y con un manejo adecuado podr&aacute;n mantenerse libres de &eacute;stos o inocularlas selectivamente, lo que las hace &uacute;tiles para determinar relaciones de etiolog&iacute;a.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmfi/v26n2/a12c1.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmfi/v26n2/a12c2.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Barnet, L.H., and Hunter, B.B. 1998. Illustrated Genera of Imperfect Fungi. Fourth Edition. The American Phytopathological Society. St. Paul, Minnesota, USA. 218 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8471404&pid=S0185-3309200800020001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Corbineau, F., Kante, M., et Come, D. 1987. Germination des graines et d&eacute;veloppement des plantules de manguier <i>(Mangiferae indica </i>L.). Fruits 42:113&#150;120.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8471406&pid=S0185-3309200800020001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Gamborg, O., Miller, P.A., and Ojima, K. 1968. Nutrient requirements of suspension culture of soybean root cells. Experimental Cell Research 50:151&#150;158.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8471408&pid=S0185-3309200800020001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Ju&aacute;rez&#150;Hern&aacute;ndez, Ma.J., Baca&#150;Castillo, G.A., Aceves&#150;Navarro, L.A., Sanchez&#150;Garc&iacute;a, P., Tirado&#150;Torres, J.L., Sah&uacute;n&#150;Castellano, J. y Colinas&#150;Le&oacute;n, Ma.T. 2006. Propuesta para la formulaci&oacute;n de soluciones nutritivas en estudios de nutrici&oacute;n vegetal. Interciencia 31:246&#150;253.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8471410&pid=S0185-3309200800020001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kozai, T. 2006. Closed systems for high quality transplants using minimum resources. pp. 275&#150;312. In: S. Dutta&#150;Gupta, and Y. Ibaraki (eds.). Plant Tissue Culture Engineering. Springer. Dordrecht, The Netherlands. 480 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8471412&pid=S0185-3309200800020001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Leslie, J.F., and Summerell, B.A. 2006. The Laboratory <i>Fusarium </i>Manual. Blackwell Publishing. Ames, Iowa, USA, 388 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8471414&pid=S0185-3309200800020001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Morales&#150;Rond&oacute;n, V. y Rodr&iacute;guez&#150;Gonz&aacute;lez, M. 2006. Hongos end&oacute;fitos en plantaciones de mango "Haden" de la planicie de Maracaibo, Venezuela. Revista de la Facultad de Agronom&iacute;a de la Universidad de Zulia (LUZ) 23:273&#150;283.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8471416&pid=S0185-3309200800020001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Razdan, M.K. 2003. Introduction to Plant Tissue Culture. Second Edition. Science Publishers, Inc. Enfield, New Hampshire, USA. 375 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8471418&pid=S0185-3309200800020001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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