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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Patrones de resistencia bacteriana en urocultivos en un hospital oncológico]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[OBJECTIVE: To describe the patterns of antimicrobial resistance of organisms isolated from urine cultures at a teaching oncological hospital for adult patients. MATERIAL AND METHODS: All strains obtained from urine cultures from 1998 to 2005 were included. Mean susceptibilities were obtained for each antimicrobial tested; nosocomial and community-acquired isolates were analyzed separately. RESULTS: A total of 9 232 positive urine cultures were obtained (20.7%) from 44 447 samples taken. Gram negative bacteria were reported in 78.8%, Gram-positive in 13.8% and yeasts in 7.4%. Escherichia coli was the most frequently isolated bacterium (41.3%); antimicrobial resistance was higher in nosocomial isolates than in community strains (amikacin 92.4 vs. 97%, ceftazidime 83.1 vs. 95.1% and ciprofloxacin 46.2 vs. 58.6%). Pseudomonas aeruginosa showed a greater resistance to amikacin and ceftazidime in nosocomial cultures compared to community-acquired bacterial cultures (55.7 vs. 66.6% and 65.5 vs. 84.8% respectively). Vancomycin-resistant enterococci were found in only 2.5% (3 of 119 E. faecium isolates). CONCLUSIONS: Higher bacterial resistance was observed in nosocomial cultures than in community ones. Antimicrobial resistance was found to be progressively increasing for E. coli, the most frequent pathogen isolated both in nosocomial and community infections. We consider imperative the establishment of an intense educational campaign for the use and control of antibiotics.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p ALIGN="right"><font size="2" face="Verdana"><b>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="4" face="verdana"><b>Patrones de resistencia bacteriana en urocultivos    en un hospital oncol&oacute;gico</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>Antimicrobial resistance patterns of isolates    from urine cultures at an oncological center</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="verdana"><b>Patricia Cornejo-Ju&aacute;rez, MD<SUP>I</SUP>;    Consuelo Vel&aacute;squez-Acosta, QFB<SUP>II</SUP>; Silvia Sandoval, Enf Gral<SUP>III</sup>;    Patricia Gordillo, Enf Gral<SUP>III</SUP>; Patricia Volkow-Fern&aacute;ndez,    MD<SUP>I</sup></b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana"><sup>I</sup>Departamento de Infectolog&iacute;a,    Instituto Nacional de Cancerolog&iacute;a (INCan). M&eacute;xico, DF, M&eacute;xico    <br>   <sup>II</sup>Laboratorio de Microbiolog&iacute;a, INCan. M&eacute;xico, DF,    M&eacute;xico    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <sup>III</sup>Comit&eacute; de Vigilancia y Control de Infecciones Nosocomiales,    INCan. M&eacute;xico, DF, M&eacute;xico</font></p>     <P>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr size="1" noshade>     <p><font size="2" face="verdana"><b>RESUMEN</b></font></p>     <P><font size="2" face="verdana"><B>OBJETIVOS: </b>Describir los patrones de resistencia    bacteriana en cultivos de orina en un hospital oncol&oacute;gico.     <br>   <B>MATERIAL Y M&Eacute;TODOS: </B> Se incluyeron las cepas obtenidas de cultivos    de orina de 1998 a 2005. Se obtuvo el porcentaje de sensibilidad para diferentes    antibi&oacute;ticos, tras analizar por separado cepas nosocomiales y compararlas    con las de la comunidad.     <br>   <B>RESULTADOS: </B>Se detectaron 9 232 cultivos positivos (20.7%) de 44 447    muestras: gramnegativos, 78.8%; grampositivos, 13.8%; y levaduras, 7.4 por ciento.    <I>Escherichia coli </I>fue el principal microorganismo identificado (41.3%);    la resistencia en aislados nosocomiales fue mayor que en la comunidad para amikacina    (92.4 y 97%), ceftazidima (83.1 y 95.1%) y ciprofloxacina (46.2 y 58.6%). De    igual manera, <I>Pseudomonas aeruginosa</I> present&oacute; mayor resistencia    para amikacina y ceftazidima en las cepas nosocomiales (55.7 y 66.6%; y 65.5    y 84.8%, respectivamente). <I>Enterococcus</I> resistente a vancomicina    se encontr&oacute; s&oacute;lo en 2.5% (3/119 aislados de <I>E. faecium</I>). <B>    <br>   CONCLUSIONES: </B> Existe una mayor resistencia bacteriana en las cepas de origen    nosocomial en comparaci&oacute;n con las cepas comunitarias. Se encontr&oacute;    un incremento progresivo de la resistencia para <I>E. coli</I>, el pat&oacute;geno    aislado con m&aacute;s frecuencia de infecciones nosocomiales y comunitarias.    Es prioritario intensificar una campa&ntilde;a educativa para el control y uso    racional de los antibi&oacute;ticos.</font></p>     <P><font size="2" face="verdana"><b>Palabras clave:</b> resistencia bacteriana    a drogas; antimicrobiano; nosocomial; orina; M&eacute;xico</font></p> <hr size="1" noshade>     <p><font size="2" face="verdana"><b>ABSTRACT</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="verdana"><B>OBJECTIVE: </b> To describe the patterns of    antimicrobial resistance of organisms isolated from urine cultures at a teaching    oncological hospital for adult patients.    <br>   <B>MATERIAL AND METHODS: </B> All strains obtained from urine cultures from    1998 to 2005 were included. Mean susceptibilities were obtained for each antimicrobial    tested; nosocomial and community-acquired isolates were analyzed separately.        <br>   <B>RESULTS: </B> A total of 9 232 positive urine cultures were obtained (20.7%)    from 44 447 samples taken. Gram negative bacteria were reported in 78.8%, Gram-positive    in 13.8% and yeasts in 7.4%. <I>Escherichia coli </I>was the most frequently    isolated bacterium (41.3%); antimicrobial resistance was higher in nosocomial    isolates than in community strains (amikacin 92.4 vs. 97%, ceftazidime 83.1    vs. 95.1% and ciprofloxacin 46.2 vs. 58.6%). <I>Pseudomonas aeruginosa</I> showed    a greater resistance to amikacin and ceftazidime in nosocomial cultures compared    to community-acquired bacterial cultures (55.7 vs. 66.6% and 65.5 vs. 84.8%    respectively). Vancomycin-resistant enterococci were found in only 2.5% (3 of    119 <I>E. faecium</I> isolates).     <br>   <B>CONCLUSIONS: </B>Higher bacterial resistance was observed in nosocomial cultures    than in community ones. Antimicrobial resistance was found to be progressively    increasing for <I>E. coli</I>, the most frequent pathogen isolated both in nosocomial    and community infections. We consider imperative the establishment of an intense    educational campaign for the use and control of antibiotics.</font></p>     <P><font size="2" face="verdana"><b>Key words:</b> bacterial drug resistance;    antimicrobial; nosocomial; urine; Mexico</font></p> <hr size="1" noshade>     <P>&nbsp;</p>     <P>&nbsp;</p>     <P><font size="2" face="verdana">Las infecciones de v&iacute;as urinarias son    una de las anormalidades m&aacute;s frecuentes y causa de incremento de la morbilidad    tanto en el hospital como en la comunidad. Conocer los principales g&eacute;rmenes    aislados, as&iacute; como los patrones de resistencia, permite determinar la    variaci&oacute;n que existe entre las diferentes especies bacterianas y orientar    el inicio emp&iacute;rico de antibi&oacute;ticos con mayores elementos de acierto.<SUP>1</sup></font></p>     <P><font size="2" face="verdana"> Los pat&oacute;genos urinarios m&aacute;s    comunes han desarrollado y expresado mecanismos de resistencia adquiridos o    intr&iacute;nsecos, por ejemplo, las enterobacterias con producci&oacute;n de    lactamasas beta de espectro extendido (BLEE), <I>Pseudomonas aeruginosa</I>    y <I>Acinetobacter spp. </I>multirresistentes<I>, Staphylococcus aureus</I>    resistente a meticilina y <I>Enterococcus spp.</I> resistentes a vancomicina.<SUP>1,2</sup></font></p>     <P><font size="2" face="verdana"> La frecuencia de aislamiento de pat&oacute;genos    y la resistencia bacteriana var&iacute;an en grado amplio seg&uacute;n sean    las diferentes regiones geogr&aacute;ficas, incluso entre hospitales del mismo    pa&iacute;s y ciudad.<SUP>1</SUP> La Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud    ha considerado la emergencia y diseminaci&oacute;n de la resistencia antimicrobiana    como un problema prioritario y por ello desde septiembre de 2001 se instituy&oacute;    una medida global para la contenci&oacute;n de la resistencia antimicrobiana    (<I>Global Strategy for Containtment of Antimicrobial Resistance</I>), que incluye    como medida fundamental la vigilancia de la sensibilidad antimicrobiana.<SUP>3</SUP>    Por eso es importante publicar y dar a conocer los patrones y tendencias de    sensibilidad en los diferentes hospitales del pa&iacute;s y el mundo para aplicar    o intensificar medidas estrictas de vigilancia y control del uso de los antibi&oacute;ticos.<SUP>4,5</SUP>    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="verdana"> El objetivo de este estudio fue describir    los patrones de resistencia antimicrobiana en los microorganismos aislados en    cultivos de orina de enero de 1998 a diciembre de 2005, analizar por separado    las muestras de pacientes con infecciones urinarias diagnosticadas como nosocomiales    y distinguirlas de aquellas adquiridas en la comunidad en pacientes del Instituto    Nacional de Cancerolog&iacute;a (INCan).</font></p>     <P>&nbsp;</p>     <P><FONT SIZE=3 face="Verdana"><B>Material y m&eacute;todos</b></font></p>     <p><font size="2" face="verdana"><b>Hospital</b></font></p>     <P><font size="2" face="verdana">El INCan es un hospital de tercer nivel, centro    de referencia de toda la Rep&uacute;blica mexicana de pacientes adultos con    c&aacute;ncer, que cuenta con 160 camas, seis camas en la unidad de terapia    intensiva (UTI), una media de 7 500 egresos hospitalarios, 3 100 operaciones    mayores y 130 000 consultas al a&ntilde;o.</font></p>     <p><font size="2" face="verdana"><b>Protocolo de trabajo</b></font></p>     <P><font size="2" face="verdana">Se realiz&oacute; un estudio retrospectivo basado    en los informes del laboratorio de microbiolog&iacute;a cl&iacute;nica del INCan.    Se incluyeron todos los cultivos de orina tomados entre enero de 1998 y diciembre    de 2005. </font></p>     <P><font size="2" face="verdana"> Las muestras se inocularon en los medios    agar sangre, MacConckey y Sabouraud. La identificaci&oacute;n y sensibilidad    antimicrobianas se realizaron a trav&eacute;s de un m&eacute;todo semiautomatizado    MicroScan (Dade-Behring, West Sacramento, CA, EUA). Se incluyeron los resultados    de las cepas aisladas de <I>E. coli, Klebsiella spp., Morganella morganii, Proteus    spp., Enterobacter spp., Citrobacter spp., P. aeruginosa, E. faecalis, E. faecium,    Candida albicans </I>y <I>Candida spp</I>. Los antibi&oacute;ticos analizados    para los g&eacute;rmenes gramnegativos fueron amikacina (AK), gentamicina (GM),    tobramicina (TOB), ceftazidima (CAZ), ceftriaxona (CAX), cefuroxima (CRM), trimetroprim/sulfametoxazol    (TMP/SMX) y ciprofloxacina (CIP). Para <I>P. aeruginosa</I> se estudi&oacute;    adem&aacute;s la piperacilina (PIP) y se excluy&oacute; el TMP/SMX. Para <I>Enterococcus    spp.</I> se incluyeron ampicilina (AMP), vancomicina (VAN) y CIP.</font></p>     <P><font size="2" face="verdana"> Se consider&oacute; cultivo positivo cuando    se obtuvo una cuenta mayor de 100 000 UFC/ml. Se determinaron cepas sensibles    o resistentes de acuerdo con la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria,    seg&uacute;n los par&aacute;metros del <I>Clinical and Laboratory Standards    Institute</I> (CLSI).<SUP>6</SUP> Las bacterias que se encontraban en un rango    intermedio se asumieron como susceptibilidad disminuida. </font></p>     <P><font size="2" face="verdana"> Las cepas de origen nosocomial se documentaron    mediante el Programa de Vigilancia de Infecciones Nosocomiales, a cargo del    personal adscrito al Comit&eacute; de Vigilancia y Control de Infecciones Nosocomiales,    quien coordina un programa permanente para la detecci&oacute;n de episodios    de infecci&oacute;n nosocomiales con base en los criterios de la Norma Oficial    SSA-26.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="verdana"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>     <P><font size="2" face="verdana">Se determin&oacute; la tendencia anual de la    frecuencia de resistencia de cada uno de los microorganismos especificados a    los distintos antibi&oacute;ticos<B>. </B>Se obtuvo la diferencia porcentual    (incremento o decremento) tras comparar las frecuencias de resistencia, al inicio    y al final del tiempo del estudio. Se utiliz&oacute; la prueba de la ji cuadrada    y se tom&oacute; como diferencia estad&iacute;sticamente significativa <I>p</I>    <u>&lt;</u> 0.05. Se analizaron en forma separada la cepas aisladas de muestras    de orina procedentes de infecciones urinarias nosocomiales.</font></p>     <P>&nbsp;</p>     <P><font size="3" face="Verdana"><b>Resultados</b></font></p>     <P><font size="2" face="verdana">Durante el periodo de estudio se incluyeron 44    447 cultivos de orina. Se notificaron positivos 9 232 (20.7%), de los cuales    7 269 (78.8%) fueron gramnegativos, 1 275 (13.8%) grampositivos y 688 (7.4%)    levaduras. Las muestras de origen comunitario representaron 92.7% (<I>n</I>=8    556) y las de origen nosocomial 7.3% (<I>n</I>=676) (<a href="#qdr01">cuadro    I</a>).</font></p>     <P><a name="qdr01"></a></p>     <P>&nbsp;</p>     <P align="center"><img src="/img/revistas/spm/v49n5/a03qdr01.gif"></p>     <P>&nbsp;</p>     <P><font size="2" face="verdana">Los principales microorganismos aislados en las    muestras de la comunidad fueron <I>E. coli </I>(<I>n</I>=3 621, 42.3%),<I> Klebsiella    spp. </I>(<I>n</I>=425, 4.9%)<I>, Proteus spp. </I>(<I>n</I>=399, 4.7%), <I>C.    albicans </I>(<I>n</I>=297, 3.5%),<I> E. faecalis </I>(<I>n</I>=294, 3.4%) y <I>P. aeruginosa </I>(<I>n</I>=175, 2%; <a href="#fig01">figura 1</a>).    Los principales microorganismos de las cepas nosocomiales fueron <I>E. coli    </I>(<I>n</I>=195, 28.8%), <I>C. albicans </I>(<I>n</I>=91 (13.5%)<I>, P. aeruginosa    </I>(<I>n</I>=57, 8.4%)<I>, E. faecium</I> (<I>n</I>=46, 6.8%) y <I>E. faecalis    </I>(<I>n</I>=45, 6.6%) (<a href="#fig02">figura 2</a>). Hasta 14.5% de las    muestras de origen nosocomial se aisl&oacute; en la UTI y 85.5% se aisl&oacute;    en pisos de hospitalizaci&oacute;n. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><a name="fig01"></a></p>     <P>&nbsp;</p>     <P align="center"><img src="/img/revistas/spm/v49n5/a03fig01.gif"></p>     <P>&nbsp;</p>     <P><a name="fig02"></a></p>     <P>&nbsp;</p>     <P align="center"><img src="/img/revistas/spm/v49n5/a03fig02.gif"></p>     <P>&nbsp;</p>     <P><font size="2" face="verdana">El germen aislado con mayor frecuencia fue <I>E.    coli </I>(41.3% del total). Las cepas de origen nosocomial presentaron menor    sensibilidad a todos los antibi&oacute;ticos estudiados en comparaci&oacute;n    con las cepas de la comunidad (AK, 92.4 y 97%; GM, 72.7 y 80.4%; TOB, 67.1 y    77.6%; CAZ, 83.1 y 95.1%; CAX, 82.6 y 94.6%; CRM, 62.7 y 80.2%; CIP, 46.2 y    58.6%; y TMP/SMX, 35 y 38%) (<a href="#fig03">figuras 3</a> y <a href="#fig04">4</a>).    La tendencia anual identificada mostr&oacute; una disminuci&oacute;n progresiva    del porcentaje de sensibilidad para <I>E. coli </I>de origen hospitalario durante    los &uacute;ltimos cuatro a&ntilde;os en relaci&oacute;n con todos los antibi&oacute;ticos    estudiados.</font></p>     <P><a name="fig03"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;</p>     <P align="center"><img src="/img/revistas/spm/v49n5/a03fig03.gif"></p>     <P>&nbsp;</p>     <P><a name="fig04"></a></p>     <P>&nbsp;</p>     <P align="center"><img src="/img/revistas/spm/v49n5/a03fig04.gif"></p>     <P>&nbsp;</p>     <P><font size="2" face="verdana"><I>P. aeruginosa</i> present&oacute; una diferencia    estad&iacute;sticamente significativa tan s&oacute;lo para CAZ al comparar el    promedio de sensibilidad de las cepas de la comunidad y las hospitalarias (84.8    y 65.5%, respectivamente; <I>p</I>=0.001). Los aminogluc&oacute;sidos tambi&eacute;n    mostraron menor sensibilidad en las cepas nosocomiales (AK, 55.7 y 66.6%; GM,    47.5 y 52.7%; TOB, 61 y 66.7%; <I>p</I>=ns). Para CIP, la sensibilidad promedio    de las cepas nosocomiales fue mayor en comparaci&oacute;n con las de la comunidad    (71 y 64.6%; <I>p</I>=ns).</font></p>     <P><font size="2" face="verdana"> Para otras enterobacterias se encontr&oacute;    que las especies de <I>Citrobacter </I>y <I>Enterobacter </I>han evidenciado    un incremento gradual y estad&iacute;sticamente significativo de la resistencia    para todos los antibi&oacute;ticos estudiados durante los a&ntilde;os de observaci&oacute;n.    <I>Citrobacter spp.</I> present&oacute; sensibilidad en cepas nosocomiales (<I>n</I>=21)    y comunitarias (<I>n</I>=200) para AK de 30 y 75%, CAZ de 30 y 71%, CIP de 28    y 58% y TMP/SMX de 26 y 65 por ciento. Las sensibilidades para <I>Enterobacter    spp.</I> de cepas nosocomiales (<I>n</I>=19) y comunitarias (<I>n</I>=171) fueron    para AK de 53 y 92%, CAZ de 46 y 85%, CIP de 55 y 93% y TMP/SMX de 31 y 84 por    ciento.</font></p>     <P><font size="2" face="verdana"><I> Enterococcus faecalis</i> fue el germen    grampositivo aislado con mayor frecuencia (quinto lugar de las cepas nosocomiales    y comunitarias). La sensibilidad a AMP se inform&oacute; en 86.7%, CIP en 48.3%    y VAN en 100 por ciento. <I>E. faecium</I> se aisl&oacute; en 1.3% del total    de los cultivos (<I>n</I>=119) y ocup&oacute; el cuarto lugar en las cepas hospitalarias.    Se encontraron s&oacute;lo tres cepas resistentes a VAN (2.5%), una en 2000,    otra en 2001 y una tercera en 2002, todas de origen nosocomial. Estas cepas    se enviaron a un laboratorio de referencia y la resistencia se confirm&oacute;    por medio de concentraciones m&iacute;nimas inhibitorias (Laboratorio de Microbiolog&iacute;a    del Instituto Nacional de Ciencias M&eacute;dicas y de la Nutrici&oacute;n Salvador    Zubir&aacute;n).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="verdana"> Respecto de las levaduras, <I>C. albicans</I>    fue la m&aacute;s aislada, al punto de ocupar el segundo lugar de las cepas    nosocomiales (13.5%, <I>n</I>=91) y el cuarto lugar en los aislamientos comunitarios    (3.8%, <I>n</I>=327).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>     <P><font size="2" face="verdana">En los resultados obtenidos destaca el hecho    de que, tal y como lo comunican estudios de vigilancia de infecciones urinarias    de otras regiones del mundo, las enterobacterias son los pat&oacute;genos aislados    m&aacute;s a menudo. <I>E. coli</I> ocup&oacute; el primer lugar en aislamientos,    si bien en un menor porcentaje (41.3%) en comparaci&oacute;n con los informes    de la bibliograf&iacute;a (~70%).<SUP>1,5,7-10</SUP> La distribuci&oacute;n    de los g&eacute;rmenes en las cepas de la comunidad incluy&oacute; a los notificados    con regularidad en otros estudios, como <I>Klebsiella spp.</I>, <I>Proteus spp.,    C. albicans</I> y <I>Enterococcus spp.</I><SUP>1</SUP> Asimismo, los microorganismos    aislados de las muestras nosocomiales fueron aquellos habitualmente relacionados    con la transmisi&oacute;n hospitalaria <I>(P. aeruginosa, E. faecium, C. albicans</I>).</font></p>     <P><font size="2" face="verdana"> Se reconoci&oacute; que la sensibilidad de    <I>E. coli</I> a f&aacute;rmacos utilizados con frecuencia en pacientes ambulatorios    con infecciones de v&iacute;as urinarias, como TMP/SMX y CIP, fue baja en grado    alarmante (38 y 58.6%, respectivamente); en consecuencia, es posible concluir    que debido a esta elevada tasa de resistencia, estos f&aacute;rmacos quedan    fuera del arsenal de la terapia emp&iacute;rica de las infecciones de la v&iacute;a    urinaria en la comunidad. Las cefalosporinas de tercera generaci&oacute;n presentaron    una sensibilidad promedio de 83% para las cepas nosocomiales, con una disminuci&oacute;n    progresiva durante los &uacute;ltimos cuatro a&ntilde;os. En las cepas de la    comunidad, la sensibilidad para ceftazidima y ceftriaxona se mantiene en 95    por ciento. Al comparar con los resultados de un estudio realizado en Chile,    antibi&oacute;ticos como AK, CIP y TMP/SMX presentaron mayor sensibilidad (98.7,    94.4 y 53.4%, respectivamente), mientras que CAX fue muy similar a los presentes    resultados (84.4% en Chile y 82.6% en este estudio).<SUP>8</SUP> Una investigaci&oacute;n    de Brasil tambi&eacute;n notific&oacute; mayor sensibilidad a TMP/SMX (54.3%)    y CIP (92.1%).<SUP>5</SUP> Un tercer protocolo realizado en Espa&ntilde;a mostr&oacute;    una gran sensibilidad a f&aacute;rmacos como CIP (88%) y GM (97%).<SUP>10</sup></font></p>     <P><font size="2" face="verdana"><I> P. aeruginosa</i> present&oacute; un decremento    de la frecuencia de los aislamientos de origen nosocomial. Se aisl&oacute; con    una frecuencia de 2.5% y un promedio de sensibilidad en cepas hospitalarias    para antibi&oacute;ticos potencialmente &uacute;tiles contra este pat&oacute;geno,    como CIP, CAZ y AK, de 71.5, 65.5 y 55.8%, respectivamente (mayor a lo comunicado    en otros pa&iacute;ses).<SUP>11</SUP> La sensibilidad a CIP fue de 58.6%    en las cepas de la comunidad y de 46% en las cepas nosocomiales en promedio    durante los a&ntilde;os de estudio, muy probablemente porque &eacute;ste es    un f&aacute;rmaco de amplia prescripci&oacute;n y promocionado por la industria    farmac&eacute;utica para suministrarse en diferentes procesos infecciosos,    incluida la infecci&oacute;n de la v&iacute;a respiratoria superior.</font></p>     <P><font size="2" face="verdana"> En un estudio multic&eacute;ntrico que incluy&oacute;    210 cepas de <I>P. aeruginosa</I> procedentes de sujetos con infecciones de    v&iacute;as urinarias, este germen represent&oacute; 7% de los aislamientos    y ocup&oacute; el tercer lugar despu&eacute;s de <I>E. coli</I> y <I>Klebsiella    spp</I>. La sensibilidad a CIP se registr&oacute; en 40.8% en Europa (71 cepas    en 16 centros hospitalarios); 29.2% en Norteam&eacute;rica (106 cepas en 31    hospitales) y 54.5% en Latinoam&eacute;rica (33 cepas en 10 hospitales).<SUP>7</SUP>    </font></p>     <P><font size="2" face="verdana"> La sensibilidad a CIP para otras enterobacterias    estudiadas fue en promedio de 57.5% en infecciones nosocomiales y 70% en infecciones    de la comunidad; por lo tanto, se confirma que CIP debe restringirse incluso    en infecciones urinarias no complicadas y adquiridas en la comunidad. En individuos    con infecciones urinarias complicadas o de origen nosocomial se recomienda la    combinaci&oacute;n de antimicrobianos con mayor sensibilidad, como las cefalosporinas    de tercera generaci&oacute;n junto con un aminogluc&oacute;sido, y aun f&aacute;rmacos    con mayor espectro, como aztreonam o carbapen&eacute;micos.<SUP>12,13</SUP>    Un estudio reciente hall&oacute; que estos &uacute;ltimos f&aacute;rmacos fueron    el grupo m&aacute;s efectivos contra pat&oacute;genos gramnegativos causantes    de infecciones urinarias.<SUP>9</SUP> En este estudio no se evalu&oacute; de    modo sistem&aacute;tico la sensibilidad a los agentes carbapen&eacute;micos,    excepto en cepas multirresistentes (datos no mostrados).</font></p>     <P><font size="2" face="verdana"> Se identificaron tres cepas de <I>E. faecium</I>    resistentes a VAN (2.5%), todas de origen nosocomial, en pacientes que hab&iacute;an    recibido antibi&oacute;ticos por tiempo prolongado debido a otro proceso infeccioso.    El suministro de VAN en el INCan est&aacute; restringido a pacientes con indicaciones    espec&iacute;ficas, los cuales se a&iacute;slan en forma estricta.<SUP>14</SUP>    Estos resultados son similares a los de otros protocolos efectuados en M&eacute;xico,    en los cuales el problema del enterococo resistente a la vancomicina parece    ser mucho menos frecuente que lo informado en Europa y Estados Unidos.<SUP>15-17</SUP>    </font></p>     <P><font size="2" face="verdana"> Las levaduras se han convertido en pat&oacute;genos    importantes en infecciones de v&iacute;as urinarias. La frecuencia de aislamiento    es similar a la comunicada en hospitales oncol&oacute;gicos y no oncol&oacute;gicos    de Estados Unidos.<SUP>18</SUP> <I>C. albicans </I>es la segunda causa de infecci&oacute;n    urinaria nosocomial, tal vez debido a que en los enfermos hospitalizados se    conjuntan otros factores de riesgo para este tipo de infecciones, entre ellos    el uso de antibi&oacute;ticos de amplio espectro, sondas urinarias, nutrici&oacute;n    parenteral y estancia hospitalaria prolongada.<SUP>19</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="verdana"> En el INCan se emplea una pol&iacute;tica    de restricci&oacute;n de antibi&oacute;ticos con base en la disponibilidad de    la farmacia del hospital. Esta investigaci&oacute;n, que complementa un estudio    previo en cultivos de sangre,<SUP>20</SUP> apoya el hecho de que a pesar de    la restricci&oacute;n del uso de antimicrobianos y un programa estricto de vigilancia    y control de las infecciones nosocomiales, existe una tendencia al incremento    progresivo de la resistencia de las cepas aisladas en orina, as&iacute; como    en las de sangre, con una disminuci&oacute;n progresiva de la resistencia a    CIP durante los &uacute;ltimos siete a&ntilde;os a pesar de su utilizaci&oacute;n    en M&eacute;xico durante apenas dos d&eacute;cadas. Destaca tambi&eacute;n que    AK fue el aminogluc&oacute;sido con mayor sensibilidad durante todo el periodo    de estudio (se ha utilizado en los &uacute;ltimos 18 a&ntilde;os en el hospital),    por lo que no se justifica la disposici&oacute;n de rotar estos antibi&oacute;ticos    propuesta en otros estudios.<SUP>21,22</SUP> </font></p>     <P><font size="2" face="verdana"> La resistencia antimicrobiana parece ser    un fen&oacute;meno mucho m&aacute;s complejo, no s&oacute;lo atribuible a un    factor como el uso de uno u otro tipo de antibi&oacute;ticos, sino a la existencia    de muchas variables a&uacute;n no estudiadas y que intervienen en las directrices    de prescripci&oacute;n, por ejemplo las medidas para el control de infecciones,    los diferentes tipos de antis&eacute;pticos y el movimiento de pacientes o del    personal de salud de un hospital a otro; todo constituye un puente de paso de    cepas multirresistentes entre diferentes hospitales.</font></p>     <P><font size="2" face="verdana"> Las principales limitaciones del estudio    fueron la ausencia de estudios gen&eacute;ticos en las cepas aisladas, lo que    impide conocer la relaci&oacute;n entre las cepas de la comunidad y las del    hospital. No se realiz&oacute; en forma sistem&aacute;tica la sensibilidad para    carbapen&eacute;micos, lo cual no permite conocer en este momento la sensibilidad    real a este grupo de f&aacute;rmacos. Sin embargo, el comportamiento de la resistencia    bacteriana en una instituci&oacute;n como el INCan, con gran n&uacute;mero de    pacientes inmunosuprimidos, tiene particular importancia para el tratamiento    de sujetos colonizados o infectados por cepas resistentes y de f&aacute;cil    transmisi&oacute;n nosocomial. </font></p>     <P><font size="2" face="verdana"> En el &aacute;mbito nacional, otros aspectos    a considerar son la legislaci&oacute;n de la prescripci&oacute;n de antibi&oacute;ticos    s&oacute;lo por personal m&eacute;dico, la promoci&oacute;n de una normatividad    para asegurar la calidad de los medicamentos gen&eacute;ricos y la garant&iacute;a    y verificaci&oacute;n por las instancias adecuadas de la bioequivalencia y biodisponibilidad.    Es necesario intensificar la educaci&oacute;n de ganaderos, agricultores y veterinarios    para la utilizaci&oacute;n correcta de antibi&oacute;ticos y evitar su uso con    fines no terap&eacute;uticos, como promover el crecimiento del ganado vacuno    o la industria av&iacute;cola.<SUP>9,23,24</sup></font></p>     <P><font size="2" face="verdana"> Todas estas medidas son indispensables para    asegurar el uso adecuado y racional de los antibi&oacute;ticos, lo cual permitir&aacute;    combatir el problema de la emergencia y diseminaci&oacute;n de la multirresistencia    antimicrobiana.</font></p>     <P>&nbsp;</p>     <P><FONT SIZE=3 face="Verdana"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">1. Turnidge J, Bell J, Biedenbach DJ, Jones RN.    Pathogen occurrence and antimicrobial resistance trends among urinary tract    infection isolates in the Asia-Western pacific region: report form the SENTRY    Antimicrobial Surveillance Program, 1998-1999. Int J Antimicrob Agents 2002;20:10-17.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237815&pid=S0036-3634200700050000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">2. Jones RN. Resistance patterns among nosocomial    pathogens: trends over the past few years. Chest 2001;119(suppl 2):397S-404S.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237816&pid=S0036-3634200700050000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">3. World Health Organization-Antimicrobial resistance.    Fact sheet N°194. Revised January 2002. &#91;Consultado 19 agosto 2006&#93;. Disponible    en: <A HREF="http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs194/en/print.html" target="_blank">www.who.int/mediacentre/factsheets/fs194/en/print.html</A>.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237817&pid=S0036-3634200700050000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">4. Goldmann DA, Huskins WC. Control of nosocomial    antimicrobial-resistant bacteria: a strategy priority for hospitals worldwide.    Clin Infect Dis 1997;24(suppl 1):S139-S145. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237818&pid=S0036-3634200700050000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">5. Oplustil CP, Nunes R, Mendes C, RESISTNET    Group. Multicenter evaluation of resistance patterns of Klebsiella pneumoniae,    Escherichia coli, Salmonella spp and Shigella spp isolated from clinical specimens    in Brazil. RESISTNET Surveillance Program. Braz J Infect Dis 2001;5:8-12.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237819&pid=S0036-3634200700050000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">6. National Committee for Clinical Laboratory    Standards. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing for    bacteria that grow aerobically. (Eleventh Informational Supplement). Wayne (PA):    NCCLS; 2001. Document M100-S11.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237820&pid=S0036-3634200700050000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">7. Jones RN, Beach ML, Pfaller MA. Spectrum and    activity of three contemporary fluoroquinolones tested against Pseudomonas aeruginosa    isolates from urinary tract infections in the SENTRY Antimicrobial Surveillance    Program (Europe and the Americas; 2000): more alike than different! Diagn Microbiol    Infect Dis 2001;41:161-3.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237821&pid=S0036-3634200700050000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">8. Valdivieso F, Trucco O, Prado V, D&iacute;az    MC, Ojeda A, Grupo PRONARES. Antimicrobial resistance of agents causing urinary    tract infections in 11 Chilean hospitals. PRONARES project. Rev Med Chil 1999;127:1033-40.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237822&pid=S0036-3634200700050000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">9. Savas L, Guvel S, Orlen Y, Savas N, Duran    N. Nosocomial urinary tract infections: micro-organisms, antibiotic sensitivies    and risk factors. West Indian Med J 2006;55:188-193.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237823&pid=S0036-3634200700050000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">10. Vallano A, Rodr&iacute;guez D, Barcelo ME,    L&oacute;pez A, Cano A, Vinado B, <I>et al.</I> Antimicrobial susceptibility    of uropathogens and outcome following antibiotic treatment for urinary tract    infections in primary healthcare. Enferm Infecc Microbiol Clin 2006;24:418-25.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237824&pid=S0036-3634200700050000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">11. Carmeli Y, Troillet N, Eliopoulos GM, Samore    MH. Emergence of antibiotic-resistant pseudomonas aeruginosa: comparison of    risks associated with different antipseudomonal agents. Antimicrob Agents Chemother    1999;43:1379-82.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237825&pid=S0036-3634200700050000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">12. Patterson JE. Hospital-acquired infections:    realities of risk and resistance. Chest 2001;119(suppl 2):426S-430S.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237826&pid=S0036-3634200700050000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">13. Fridkin SK, Edwards JR, Tenover FC, Gaynes    RP, McGowan JEJr. Intensive Care Antimicrobial Resistance Epidemiology (ICARE)    Project: National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) System Hospitals.    Antimicrobial resistance prevalence rates in hospital antibiograms reflect prevalence    rates among pathogens associated with hospital-acquired infections. Clin Infect    Dis 2001;33:324-30. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237827&pid=S0036-3634200700050000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">14. Recommendations for preventing the spread    of vancomycin resistance recommendations of the hospital infection control practices    advisory committee (HICPAC). MMWR 1995;44(RR12):1-13.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237828&pid=S0036-3634200700050000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">15. Sifuentes-Osornio J, Ponce de Le&oacute;n    A, Mu&ntilde;oz-Trejo T, Villalobos-Zapata Y, Ontiveros-Rodr&iacute;guez C,    G&oacute;mez-Rold&aacute;n C. Antimicrobial susceptibility patterns and high-level    gentamicin resistance among enterococci isolated in a Mexican tertiary care    center. Rev Invest Clin 1996;48:91-6.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237829&pid=S0036-3634200700050000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">16. Calder&oacute;n-Jaimes E, Arredondo-Garc&iacute;a    JL, Aguilar-Ituarte F, Garc&iacute;a-Roca P. In vitro antimicrobial susceptibility    in clinical isolates of Enterococcus species. Salud Publica Mex 2003;45:96-101.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237830&pid=S0036-3634200700050000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">17. Goldmann DA, Weinstein RA, Wenzel RP, Tublan    OC, Duma RJ, Gaynes RP, et al. Strategies to prevent and control the emergence    and spread of antimicrobial resistant microorganisms in hospitals. A challenge    to hospital leadership. JAMA 1996;275:234-40.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237831&pid=S0036-3634200700050000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">18. Anaissie E. Opportunistic mycoses in the    immunocompromised host: experience at a cancer center and review. Clin Infect    Dis 1992;14 (suppl 1):S43-S53.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237832&pid=S0036-3634200700050000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">19. Lundstrom T, Sobel J. Nosocomial candiduria:    a review. Clin Infect Dis 2001;32:1602-7. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237833&pid=S0036-3634200700050000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">20. Cornejo-Ju&aacute;rez P, Vel&aacute;squez-Acosta    C, D&iacute;az-Gonz&aacute;lez A, Volkow-Fern&aacute;ndez P. Tendencia del perfil    de sensibilidad antimicrobiana de los aislamientos de sangre en un hospital    oncol&oacute;gico (1998-2003). Salud Publica Mex 2005;47:288-293.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237834&pid=S0036-3634200700050000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">21. Raymond DP, Pelletier SJ, Cabtree TD, Gleason    TG, Hamm LL, Pruett TL, <I>et al.</I> Impact of a rotating empiric antibiotic    schedule on infectious mortality in an intensive care unit. Crit Care Med 2001;29:1101-1108.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237835&pid=S0036-3634200700050000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">22. Landman D, Quale JM, Mayorga D, Adedeji A,    Vangala K, Ravinshankar J, et al. Citywide clonal outbreak of multiresistant    Acinetobacter baumanii and Pseudomonas aeruginosa in Brooklyn, NY. Arch Intern    Med 2002;162:1515-1520.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237836&pid=S0036-3634200700050000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">23. Okeke IN, Laxminarayan R, Bhutta ZA, Duse    AG, Jenkins P, O'Brien TF, <I>et al.</I> Antimicrobial resistance in developing    countries. Part I: recent trends and current status. Lancet Infect Dis 2005;5:481-493.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237837&pid=S0036-3634200700050000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="verdana">24. Okeke IN, Klugman KP, Bhutta ZA, Duse AG,    Jenkins P, O'Brien TF, <I>et al. </I>Antimicrobial resistance in developing    countries. Part II: strategies for containment. Lancet Infect Dis 2005;5:568-80.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9237838&pid=S0036-3634200700050000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="verdana">Fecha de recibido: 22 de septiembre de 2006     <br>   Fecha de aceptado: 9 de julio de 2007</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="verdana">Solicitud de sobretiros: Dra. Patricia Cornejo    Ju&aacute;rez.Departamento de Infectolog&iacute;a. Instituto Nacional de Cancerolog&iacute;a.    Av. San Fernando 22, Col. Secci&oacute;n XVI, 14000 Tlalpan. M&eacute;xico,    DF Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:patcornejo@yahoo.com">patcornejo@yahoo.com</a></font></p>      ]]></body><back>
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