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<journal-title><![CDATA[Revista mexicana de ciencias agrícolas]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de la irradiación sobre nochebuena silvestre (Euphorbia pulcherrima Willd. ex Klotzsch) en Morelos]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In Mexico, there is no information on the effects that irradiation causes on poinsettia (Euphorbia pulcherrima Willd. ex Klotzsch) therefore there is a need to generate it. This study evaluated the effect of gamma irradiation on plant characteristics and poinsettia seed and determined the best dose. In 2010, seeds collected in Texcal, Morelos were treated with gamma rays at intervals of 25 Gray, from 50 to 275, plus control. These were germinated in trays with substrate Sunshine® No. 3 in the Experimental field, Zacatepec, Morelos. Seedlings with four true leaves were transplanted to pots of 16 L with substrate 60-20-20 v / v ocochal, alluvial soil and coconut fiber. It was established in a randomized block design with 10 replications. It was registered emergence percentage, hypocotyl height, plant height, cyathium diameter; length and width of bract, petiole length of bract, inflorescence peduncle length; length, width and weight of 100 seeds. For the Statistical analysis was performed an analysis of variance and mean comparison. Statistically significant differences were detected. The dose of 150 Gy reduced plant height. Cyathium diameter, peduncle length of inflorescence, length and width of seed was higher with 250 Gy. It gained higher bract width and weight of 100 seeds with 175 and 225 Gy, respectively. The best plant response was achieved by applying 250 Gray. Irradiation promoted genetic variation that can be used in genetic breeding programs on poinsettia.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Efecto de la irradiaci&oacute;n sobre nochebuena silvestre (<i>Euphorbia pulcherrima</i> Willd. ex Klotzsch) en Morelos*</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Effect of irradiation on wild poinsettia (<i>Euphorbia pulcherrima</i> Willd. ex Klotzsch) in Morelos</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Jaime Canul&#45;Ku<sup>1</sup><sup>&#167;</sup>, Faustino Garc&iacute;a&#45;P&eacute;rez<sup>1</sup>, Elio Campos&#45;Bravo<sup>2</sup>, Edwin Javier Barrios&#45;G&oacute;mez<sup>1</sup>, Eulogio De La Cruz&#45;Torres<sup>3</sup>, Juan Manuel Garc&iacute;a&#45;Andrade<sup>3</sup>, Felipe de Jes&uacute;s Osuna&#45;Canizalez<sup>1</sup> y Sergio Ram&iacute;rez&#45;Rojas<sup>1</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="left"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias, Campo Experimental Zacatepec. Carretera Zacatepec&#45;Galeana , km 0.5. Zacatepec, Morelos, C. P. 62780. Tel. 017343430230. Ext. 118, 104, 121, 128 y 108.</i> (<a href="mailto:garcia.faustino@inifap.gob.mx">garcia.faustino@inifap.gob.mx</a>), (<a href="mailto:barrios.edwin@inifap.gob.mx">barrios.edwin@inifap.gob.mx</a>), (<a href="mailto:osuna.felipe@inifap.gob.mx">osuna.felipe@inifap.gob.mx</a>), (<a href="mailto:ramirez.sergio@inifap.gog.mx">ramirez.sergio@inifap.gog.mx</a>). <sup>&#167;</sup><i>Autor para correspondencia:</i> <a href="mailto:canul.jaime@inifap.gob.mx">canul.jaime@inifap.gob.mx</a>.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>2</i></sup> <i>Posgrado en Ciencias Agropecuarias y Desarrollo Rural, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Aut&oacute;noma del Estado de Morelos. Tel. 017774174949.</i> (<a href="mailto:agrocam_2006@hotmail.com">agrocam_2006@hotmail.com</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>3</i></sup> <i>Instituto Nacional de Investigaciones Nucleares. Tel. 5553297200.</i> (<a href="mailto:Eulogio.delacruz@inin.gob.mx">Eulogio.delacruz@inin.gob.mx</a>), (<a href="mailto:jmanuel.garcia@inin.gob.mx">jmanuel.garcia@inin.gob.mx</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">* Recibido: febrero de 2012    <br> 	Aceptado: octubre de 2012</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico, no hay informaci&oacute;n sobre efectos que causa la irradiaci&oacute;n en nochebuena <i>(Euphorbia pulcherrima</i> Willd. ex Klotzsch), por tanto existe la necesidad de generarla. En este estudio se evalu&oacute; el efecto de irradiaci&oacute;n con rayos gamma sobre caracter&iacute;sticas de planta y semilla de nochebuena y se determin&oacute; la mejor dosis. En 2010, semillas colectadas en Texcal, Morelos fueron tratadas con rayos gamma en intervalos de 25 Gray, desde 50 hasta275, m&aacute;s el testigo. Estas fueron germinadas en charolas con sustrato Sunshine<sup>&#174;</sup> No. 3 en Campo Experimental, Zacatepec, Morelos. Pl&aacute;ntulas con cuatro hojas verdaderas se trasplantaron a macetas de 16 L con sustrato 60&#45;20&#45;20 v/v ocochal, suelo aluvial y fibra de coco. Se establecieron en un dise&ntilde;o de bloques al azar con 10 repeticiones. Se registr&oacute; porcentaje de emergencia, altura de hipocotilo, altura de planta, di&aacute;metro de ciatio; longitud y ancho de br&aacute;ctea, longitud de peciolo de br&aacute;ctea, longitud de ped&uacute;nculo de inflorescencia; largo, ancho y peso de 100 semillas. Para el an&aacute;lisis estad&iacute;stico se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza y comparaci&oacute;n de medias. Se detectaron diferencias estad&iacute;sticas significativas. La dosis de 150 Gy redujo la altura de planta. El di&aacute;metro de ciatio, longitud de ped&uacute;nculo de inflore scencia, largo y ancho de semilla fue mayor con 250 Gy. Se obtuvo mayor anchura de br&aacute;ctea y peso de 100 semillas con 175 y 225 Gy, respectivamente. La mejor respuesta de la planta se logr&oacute; aplicando 250 Gray. La irradiaci&oacute;n promovi&oacute; variaci&oacute;n gen&eacute;tica que puede ser utilizada en programas de mejoramiento gen&eacute;tico en nochebuena.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> br&aacute;ctea, dosis, mutag&eacute;nesis, semilla.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">In Mexico, there is no information on the effects that irradiation causes on poinsettia <i>(Euphorbia pulcherrima</i> Willd. ex Klotzsch) therefore there is a need to generate it. This study evaluated the effect of gamma irradiation on plant characteristics and poinsettia seed and determined the best dose. In 2010, seeds collected in Texcal, Morelos were treated with gamma rays at intervals of 25 Gray, from 50 to 275, plus control. These were germinated in trays with substrate Sunshine<sup>&#174;</sup> No. 3 in the Experimental field, Zacatepec, Morelos. Seedlings with four true leaves were transplanted to pots of 16 L with substrate 60&#45;20&#45;20 v / v ocochal, alluvial soil and coconut fiber. It was established in a randomized block design with 10 replications. It was registered emergence percentage, hypocotyl height, plant height, cyathium diameter; length and width of bract, petiole length of bract, inflorescence peduncle length; length, width and weight of 100 seeds. For the Statistical analysis was performed an analysis of variance and mean comparison. Statistically significant differences were detected. The dose of 150 Gy reduced plant height. Cyathium diameter, peduncle length of inflorescence, length and width of seed was higher with 250 Gy. It gained higher bract width and weight of 100 seeds with 175 and 225 Gy, respectively. The best plant response was achieved by applying 250 Gray. Irradiation promoted genetic variation that can be used in genetic breeding programs on poinsettia.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> bract, doses, mutagenesis, seed.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La nochebuena se encuentra en estado silvestre en &aacute;reas geogr&aacute;ficas bien definidas de M&eacute;xico, desde cero metros hasta aproximadamente 2 000 m (Steinmann, 2002). El pa&iacute;s es considerado centro de origen de la especie, en espacios geogr&aacute;ficos como la barranca "El Salto del Ni&ntilde;o", Tehuilotepec, perteneciente al municipio de Taxco de Alarc&oacute;n, Guerrero (Lee, 2000), la reserva ecol&oacute;gica el Texcal, ubicado en el municipio de Jiutepec, Morelos (Pagaza y Fern&aacute;ndez, 2004) y en Cerro Alto, de la localidad de Tecuitata, municipio de San Blas, Nayarit. La nochebuena en su sitio de origen evoluciona de manera natural y responde ante las condiciones ambientales cambiantes (Qualset <i>et al,</i> 1997).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La nochebuena es una planta que pertenece a la familia Euphorbiaceae y al g&eacute;nero <i>Euphorbia.</i> El g&eacute;nero es bastante grande e incluye muchas especies, aproximadamente 2 000 (Steinmann, 2002). La especie <i>E. pulcherrima</i> se caracteriza por tener solamente una flor femenina sin p&eacute;talos ni s&eacute;palos, rodeada por flores masculinas individuales que est&aacute;n contenidas en una estructura denominada ciatio, y es com&uacute;n que una o m&aacute;s gl&aacute;ndulas surjan a su alrededor (Ecke <i>et al.,</i> 2004). Es un arbusto que mide entre 3 y 5 metros de altura, es una planta caducifolia, sus hojas son simples, dispuestas de manera alterna, de forma ovada a el&iacute;ptica. La parte estructural m&aacute;s importante son las br&aacute;cteas de tama&ntilde;os diferentes, formas, colores, y rodean a las flores. Es una planta con diferente nivel de ploid&iacute;a, pero la condici&oacute;n diploide (2n= 28) es la m&aacute;s com&uacute;n, aunque tambi&eacute;n existen ejemplares triploides o tetraploides (Mej&iacute;a y Espinosa, 2003).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La evoluci&oacute;n de los organismos vivos, como el de las plantas, est&aacute; controlada por fuerzas evolutivas que son la mutaci&oacute;n, migraci&oacute;n, deriva g&eacute;nica, la recombinaci&oacute;n a trav&eacute;s de hibridaci&oacute;n y la selecci&oacute;n natural (Sigurbjornsson, 1983;Atak <i>et al,</i> 2004). El cambio gen&eacute;tico que ocurre en las plantas, a trav&eacute;s de la mutaci&oacute;n, por lo general es aleatorio, puntual y muchas veces perjudicial, pero existe la probabilidad de que ese cambio sea favorable y mejore las caracter&iacute;sticas fenot&iacute;picas y la capacidad de la planta para crecer, desarrollar y reproducirse en ambientes distintos y contrastantes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mutaci&oacute;n ocurre de forma natural a muy bajas frecuencias y de manera espont&aacute;nea, pero puede ser inducido a trav&eacute;s de un n&uacute;mero de agentes, tanto qu&iacute;micos como f&iacute;sicos, llamados mut&aacute;genos. Los de tipo qu&iacute;mico son etil metanosulfonato, sulfato de dimetilo y sulfato de dietilo (Maluszynsky <i>et al,</i> 2009); por otro lado, los de tipo f&iacute;sico pueden ser rayos x, gamma (Jain, 2006; Yamaguchi, 2008), ultravioleta (Ahloowalia y Maluszynski, 2001) e iones de carbono (Wu <i>et al.,</i> 2009; Matsumura <i>et al,</i> 2010). La mutaci&oacute;n en plantas ornamentales representa una herramienta poderosa, no solamente para esclarecer mecanismos fisiol&oacute;gicos en el funcionamiento de las plantas (Honda <i>et al,</i> 2006), sino tambi&eacute;n para obtener nuevas variantes morfol&oacute;gicas de utilidad para la industria flor&iacute;cola.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mutaci&oacute;n inducida por medio de la radiaci&oacute;n, representa una de las principales fuentes de variaci&oacute;n, para la creaci&oacute;n de nuevas variedades mejoradas o para generar genotipos que pueden ser usados como progenitores en programas de mejoramiento, al producir nuevas combinaciones gen&eacute;ticas o incrementar la variabilidad en una poblaci&oacute;n (Rangaiah, 2006). Su uso en la mejora gen&eacute;tica y producci&oacute;n agr&iacute;cola fue desde inicios del siglo pasado con excelentes resultados, en cultivos como ma&iacute;z, trigo, cebada, algod&oacute;n y frijol (Ahloowalia y Maluszynski, 2001; Chopra, 2005).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mutag&eacute;nesis, es uno de los m&eacute;todos de mejoramiento gen&eacute;tico que ha funcionado en especies ornamentales cultivadas, como el crisantemo <i>(Crhysanthemum</i> spp.) (Yamaguchi, 2008 y 2010), dalia <i>(Dahlia</i> spp.), rosa <i>(Rosa</i> spp.), y clavel <i>(Dianthus</i> spp.) y que han dado resultados satisfactorios (Ahloowalia y Maluszynski, 2001; Chopra, 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El mejoramiento gen&eacute;tico por mutaci&oacute;n se aplica para modificar pocos caracteres y en la poblaci&oacute;n de nochebuena silvestre existen ejemplares con caracter&iacute;sticas que cumplen las exigencias del mercado y solamente falta reducir el porte de la misma; es decir, el objetivo es modificar el car&aacute;cter de inter&eacute;s. Puesto que el efecto de la mutaci&oacute;n en plantas ornamentales es muy visible, la selecci&oacute;n es hacia color de flor fuera de lo com&uacute;n, a formas y tama&ntilde;os variables y casi todo lo nuevo que surge, tiene valor est&eacute;tico y comercial (Ahloowalia y Maluszynski, 2001). En plantas cultivadas las caracter&iacute;sticas mutantes que han sido com&uacute;nmente explotados son: precocidad, reducci&oacute;n en crecimiento y altura de planta, resistencia al acame y a enfermedades, rendimiento alto y mejor calidad (Szarejko y Forster, 2007).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La nochebuena es una especie ornamental muy demandada en la temporada navide&ntilde;a. En M&eacute;xico, la producci&oacute;n fue de 20 millones de planta terminada en 2011 y gener&oacute; ingresos por 700 millones de pesos. Los principales estados productores fueron: Morelos, Puebla, Michoac&aacute;n y Distrito Federal. Su producci&oacute;n genera tres mil empleos directos y nueve mil indirectos. El mercado es din&aacute;mico, cada a&ntilde;o el consumidor demanda nuevos productos y en presentaciones diferentes, a veces no es posible satisfacerlo, por lo que existe la necesidad de utilizar varias metodolog&iacute;as de mej oramiento, como el uso de la irradiaci&oacute;n, para obtener nuevas variantes y satisfacer las necesidades del consumidor(a).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la actualidad, las variedades comerciales que se cultivan en M&eacute;xico provienen del extranjero, no est&aacute;n adaptadas a las condiciones ambientales del pa&iacute;s, adem&aacute;s, el costo de producci&oacute;n es alto por el pago de regal&iacute;as. El genoma de las variedades comerciales de nochebuena es de origen mexicano, la cual est&aacute; presente en las poblaciones silvestres y semicultivadas. Del total de la diversidad gen&eacute;tica solamente una m&iacute;nima parte est&aacute; presente en las variedades comerciales y la mayor proporci&oacute;n no se ha utilizado para estos fines. Tambi&eacute;n existe la necesidad de parte de los productores de contar con variedades generadas en el pa&iacute;s y la mutag&eacute;nesis es un m&eacute;todo &uacute;til en mejoramiento gen&eacute;tico para producir cambios heredables (L&oacute;pez&#45;Mendoza <i>et al,</i> 2012).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otra parte, en M&eacute;xico no hay informaci&oacute;n sobre los efectos que causa la irradiaci&oacute;n en nochebuena silvestre, por lo que existe la necesidad de generarla. La informaci&oacute;n obtenida ser&aacute; de gran valor para realizar trabajos posteriores, con la finalidad de generar nuevos cultivares. A&uacute;n m&aacute;s, analizando la base de datos de la FAO, en M&eacute;xico todav&iacute;a no se liberan variedades de nochebuena aplicando el m&eacute;todo de mutag&eacute;nesis (Maluszynski <i>et al.,</i> 2000). Bajo estas condiciones, se debe sentar las bases para aplicar radiaci&oacute;n a los genotipos &eacute;lite o poblaciones de &eacute;sta especie. Dado que se requiere posicionar al productor en un mercado globalizado ser&aacute; necesario generar nuevos genotipos con valor est&eacute;tico y convencer al consumidor.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bajo este contexto, existe un potencial enorme que es posible utilizarlo para crear nuevos arreglos en el genoma y generar nuevos genotipos, con las caracter&iacute;sticas fenot&iacute;picas de inter&eacute;s que sean adaptadas a las condiciones de la agricultura del pa&iacute;s y con los est&aacute;ndares de calidad que demanda el mercado. Por lo que, se emprendi&oacute; el presente trabajo con el objetivo de evaluar el efecto de la irradiaci&oacute;n sobre caracter&iacute;sticas fenot&iacute;picas de plantas y semilla de nochebuena y determinar la mejor dosis.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realizaron recorridos en el &aacute;rea natural El Texcal, ubicado en Juitepec, estado de Morelos en los meses de noviembre&#45;diciembre de 2009 y febrero de 2010, es un espacio geogr&aacute;fico donde crece de manera natural la nochebuena <i>(Euphorbia pulcherrima</i> Willd. ex Klotzsch), cuenta con una superficie de 407.827 ha, ubicada en el municipio de Jiutepec (Pagaza y Fern&aacute;ndez, 2004), y geogr&aacute;ficamente a los 18&deg; 53' latitud norte y 99&deg; 10' longitud oeste, a una altitud promedio de 1 718 m. En la primera visita la poblaci&oacute;n de plantas estaba en la fase fenol&oacute;gica de pigmentaci&oacute;n de br&aacute;cteas y en el segundo recorrido solamente quedaban algunas plantas con br&aacute;cteas y la mayor&iacute;a con semilla, en estado de madurez fisiol&oacute;gica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El criterio de selecci&oacute;n de plantas fue el color verde oscuro de hojas y color rojo intenso de br&aacute;cteas, as&iacute; como la corta distancia de entre nudos, similar a la nochebuena mejorada como la Freedom o Prestige y que actualmente se utilizan para decorar interiores. El ideotipo que se pretende obtener en nochebuena es una planta compacta de altura baja, br&aacute;cteas grandes y de color rojo (Canul <i>et al,</i> 2010). Dado que &eacute;sta muestra presenta br&aacute;cteas similares a las del interior y al parecer solamente es necesario realizar peque&ntilde;as modificaciones en su composici&oacute;n gen&eacute;tico para utilizarlo como variedad o como progenitor para la generaci&oacute;n de nuevas variedades, adem&aacute;s de incrementar su valor agron&oacute;mico y comercial, se someti&oacute; al proceso de mutag&eacute;nesis.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El m&eacute;todo de muestreo de plantas fue dirigido y de manera visual, se seleccionaron aquellas que presentaron hojas de color verde oscuro y br&aacute;cteas de color rojo intenso, corta distancia de entre nudos y sanas (Canul <i>et al,</i> 2010). En total se colectaron frutos de veintid&oacute;s plantas y los frutos se recolectaron en madurez fisiol&oacute;gica en febrero de 2010, antes de que abriera la c&aacute;psula, ya que son dehiscentes, posteriormente se colocaron en bolsas de papel estraza donde quedaron hasta liberar la semilla. Finalmente se elimin&oacute; las impurezas y el material se almacen&oacute; en un cuarto fr&iacute;o con temperatura de &#45;2 &deg;C hasta la fecha de irradiaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El 1 de julio de 2010 en el Instituto Nacional de Investigaciones Nucleares (ININ) ubicado en la Marquesa, Municipio de Ocoyoacac, Estado de M&eacute;xico fueron irradiadas en el Gammacell 220 las semillas de nochebuena silvestre empleando 10 dosis, cada 25 Gray (Gy) de rayos gamma, iniciando desde 50 hasta 275 Gy, adem&aacute;s, del testigo sin irradiar.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dos d&iacute;as despu&eacute;s en el Campo Experimental "Zacatepec" del INIFAP, en el estado de Morelos, ubicado a los 18&deg; 39' 16" latitud norte y 99&deg; 11' 54'' longitud oeste, se sembr&oacute; las semillas irradiadas en charolas de poliestireno termoformado de color negro de 50 cavidades, empleando como sustrato una mezcla de turba, perlita y vermiculita. Las charolas con las semillas fueron envueltas en pl&aacute;stico para favorecer la germinaci&oacute;n y se colocaron dentro de un t&uacute;nel con techo y paredes de pl&aacute;stico lechoso 50% UV2 que funciona como enraizador, donde permanecieron hasta la emergencia de la pl&uacute;mula. Posteriormente, con fines de aclimataci&oacute;n fueron ubicadas en condiciones de sombra por un espacio de tres d&iacute;as, y despu&eacute;s transferidas a condiciones de malla sombra 80% hasta la etapa de cuarta hoja verdadera.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las plantas en etapa de cuarta hoja verdadera se cambiaron a macetas de 16 L con sustrato 60&#45;20&#45;20 v/v de ocochal (material org&aacute;nico compuesto por ac&iacute;culas de pino y hojas de encino), atocle (suelo de origen aluvial) y fibra de coco, al mismo tiempo se adicionaron 15 g de fertilizante granulado (15&#45;9&#45;12% de N, P y K) de lenta liberaci&oacute;n. Inmediatamente fueron colocadas en condiciones de malla aluminizada 60&#45;40 de luz y sombra. En estas condiciones la frecuencia de riego y de aplicaci&oacute;n de soluci&oacute;n nutritiva, durante el ciclo del cultivo, por lo general fueron dos de riego y una de fertilizaci&oacute;n, y as&iacute; sucesivamente; la soluci&oacute;n nutritiva estuvo compuesta por nitrato de potasio 0.22 gL<sup>&#45;1</sup>, nitrato de calcio 0.10 gL<sup>&#45;1</sup>, fosfato monopot&aacute;sico 0.27 gL<sup>&#45;1</sup>, kelatex 0.03 gL<sup>&#45;1</sup> y &aacute;cido n&iacute;trico 0.25 mlL<sup>&#45;1</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las diez dosis de irradiaci&oacute;n m&aacute;s el testigo se establecieron en campo, en condiciones de malla aluminizada 60&#45;40 de luz y sombra, bajo un dise&ntilde;o de bloques al azar con 10 repeticiones por dosis, la unidad experimental consisti&oacute; de una planta. Se registr&oacute; el porcentaje de emergencia siete d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra (dds) y se midi&oacute; la altura de hipocotilo (cm) catorce dds.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la etapa fenol&oacute;gica de tercer ciatio abierto se registr&oacute; la altura de planta (cm); di&aacute;metro del ciatio (cm); longitud (cm) y ancho (cm) de br&aacute;ctea; longitud de peciolo de la br&aacute;ctea (cm); y longitud de ped&uacute;nculo de la inflorescencia (cm).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuando el fruto lleg&oacute; a madurez fisiol&oacute;gica se cosecharon las semillas de cinco plantas por dosis m&aacute;s el testigo, previamente seleccionadas por tener hojas de color verde oscuro y br&aacute;cteas de color rojo intenso y corta distancia de entre nudos. De &eacute;sta muestra tres repeticiones de 10 semillas por dosis m&aacute;s el testigo se midi&oacute; el largo y ancho (mm) de la semilla, y se estim&oacute; el peso de 100 semillas (g). Con la informaci&oacute;n obtenida se realiz&oacute; an&aacute;lisis de varianza, y comparaci&oacute;n de medias mediante la prueba de Tukey <i>(p&#8804;</i> 0.05) utilizando el paquete estad&iacute;stico SAS (2000).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados del an&aacute;lisis de varianza en las dosis de radiaci&oacute;n gamma aplicado a semillas de nochebuena silvestre presentaron diferencias estad&iacute;sticas significativas respecto al testigo en siete caracter&iacute;sticas y en tres de ellas no hubo diferencias significativas. La altura de planta fue muy variable, ya que tuvo un rango de 87 cm, el di&aacute;metro de ciatio present&oacute; un rango de 36 cm, el ancho de la br&aacute;ctea de 3 cm, y la longitud del ped&uacute;nculo de la inflorescencia de 14 cm. El tama&ntilde;o de semilla present&oacute; variaci&oacute;n, pues el rango en largo fue de 2.41 mm, en ancho fue de 2.04 y de 7.5 g en peso de 100 semillas (<a href="/img/revistas/remexca/v3n8/a2c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ancho de la br&aacute;ctea present&oacute; diferencias altamente significativas en los tratamientos evaluados, por lo que la prueba de comparaci&oacute;n de medias permiti&oacute; discriminar la respuesta de las diferentes dosis, el menor tama&ntilde;o de br&aacute;ctea se obtuvo con la dosis de 200 y 250 Gy y el mayor ancho de br&aacute;ctea fue con la dosis de 175 Gy. En cuanto a di&aacute;metro de ciatio hubo diferencias entre las dosis aplicadas, as&iacute; el menor di&aacute;metro se observ&oacute; con 125 Gy y el mayor fue con 250 Gy (<a href="/img/revistas/remexca/v3n8/a2c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). La menor altura de planta se obtuvo con la dosis de 150 Gy y la mayor con 50 Gy. Con la dosis de 75 Gy se present&oacute; la menor longitud de ped&uacute;nculo de la inflorescencia y la mayor con 250 Gy.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La dosis de 250 Gy fue la que produjo el largo mayor de semilla, la dosis de 75 y 125 Gy produjeron el tama&ntilde;o menor medido en largo. El ancho mayor de semilla lo mostraron la dosis de 100, 250 y 275 Gy y el ancho menor fue con 75 Gy. En el mismo sentido, el peso mayor de 100 semillas fue con la dosis de 225 Gy y el menor con 75 Gy (<a href="/img/revistas/remexca/v3n8/a2c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). Esto indica que el menor tama&ntilde;o y peso de semilla se obtiene con la menor dosis y a medida que aumenta tambi&eacute;n se incrementa la respuesta.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuatro d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra, la emergencia de pl&aacute;ntulas solamente ocurri&oacute; en las dosis de 50, 175 y 250 Gy; en los d&iacute;as siguientes aument&oacute; dicho porcentaje en todas las dosis evaluadas, y a partir del sexto d&iacute;a despu&eacute;s de la siembra el testigo present&oacute; el mayor porcentaje de emergencia. Por lo general, en los tratamientos de irradiaci&oacute;n hubo una reducci&oacute;n en el porcentaje de emergencia en comparaci&oacute;n con el testigo (<a href="#f1">Figura 1</a>). En cambio en chile de agua no hubo diferencias estad&iacute;sticas en germinaci&oacute;n total e &iacute;ndice de emergencia entre semillas irradiadas y el testigo (L&oacute;pez&#45;Mendoza <i>et al,</i> 2012).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remexca/v3n8/a2f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La semilla es el material usado con m&aacute;s frecuencia para inducir mutaciones en especies vegetales (Szarejko y Forster, 2007). En este trabajo la aplicaci&oacute;n de la irradiaci&oacute;n en diferentes dosis a muestras de semillas de nochebuena silvestre procedentes de la reserva el Texcal, estado de Morelos produjo cambios importantes en caracter&iacute;sticas de altura de planta, ancho de br&aacute;ctea, di&aacute;metro de ciatio y tama&ntilde;o de semilla.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados indican que el tama&ntilde;o mayor de semilla se obtuvo con las dosis m&aacute;s altas. Desde el punto de vista del mejoramiento gen&eacute;tico, uno de los caracteres importantes es el tama&ntilde;o de semilla, puesto que hay una correlaci&oacute;n entre tama&ntilde;o y vigor de la pl&aacute;ntula, por lo general a mayor tama&ntilde;o hay un mayor crecimiento y tama&ntilde;o de pl&aacute;ntula (Carrillo <i>et al,</i> 2009). La semilla es una forma de supervivencia de la especie y contiene informaci&oacute;n gen&eacute;tica de ambos progenitores (materno y paterno).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En trabajos similares como en ricino <i>(Ricinus comunis</i> L.) Sarwar y Chaudhry (2008) obtuvieron mutantes a trav&eacute;s de irradiaci&oacute;n gamma de 100&#45;1000 Gy, donde el peso de 100 semillas mostr&oacute; una correlaci&oacute;n genot&iacute;pica significativa, pero la fenot&iacute;pica no lo fue y adem&aacute;s, se&ntilde;alan que la selecci&oacute;n de variantes mutantes altamente productivos de semilla se debe hacer &eacute;nfasis principalmente en el n&uacute;mero de espigas y peso de c&aacute;psula, y en menor medida en el peso de 100 semillas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ideotipo que se pretende obtener en nochebuena es una planta compacta de porte bajo, br&aacute;cteas grandes y de color rojo (Canul <i>et al,</i> 2010). En el germoplasma irradiado se encontr&oacute; amplia variaci&oacute;n y diferencias significativas (p&#8804;0.05) en altura de planta por la aplicaci&oacute;n de dosis de radiaci&oacute;n gamma, var&iacute;a entre 32 y 119 cm (<a href="/img/revistas/remexca/v3n8/a2c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>); con 150 Gy se obtuvieron plantas de porte menor (68.4 cm); mientras que, con 50 Gy fueron de tama&ntilde;o mayor (89.8 cm). Una de las principales respuestas de las plantas a la irradiaci&oacute;n es la reducci&oacute;n en el porte y h&aacute;bito de crecimiento (Schum, 2003).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La nochebuena de interior se produce en macetas de diferente di&aacute;metro y altura, pero el porte de la planta pigmentada debe ser el doble de la altura de la maceta. En base a la respuesta obtenida es posible obtener plantas con estos criterios, la selecci&oacute;n fenot&iacute;pica se debe dirigir hacia plantas compactas con buena ramificaci&oacute;n. Ahloowalia y Maluszynaki (2001) se&ntilde;alan que en arroz, trigo, cebada y ma&iacute;z la obtenci&oacute;n de plantas compactas a trav&eacute;s de la irradiaci&oacute;n ha contribuido significativamente a incrementar el rendimiento de grano debido a la resistencia al acame y a altas densidades de siembra.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La reducci&oacute;n en altura de planta aplicando irradiaci&oacute;n se ha obtenido en otros cultivos, en este sentido Lee <i>et al.</i> (2010) indican que la longitud de entrenudo y altura de planta fue geom&eacute;tricamente reducida de 2 a 4 veces con la aplicaci&oacute;n de rayos gamma a dosis de 40 y 50 Gy a esquejes enraizados del cultivar Beakma de <i>Dendranthama grandiflora</i> en comparaci&oacute;n con el testigo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El valor comercial de la nochebuena se debe a las caracter&iacute;sticas de la br&aacute;ctea como son: el tama&ntilde;o, la forma y sobretodo el color. La variaci&oacute;n en anchura de br&aacute;ctea fue de 1 a 4 cm. Si la tendencia es obtener br&aacute;cteas delgadas y largas, &eacute;stas las produjo la dosis de 200 y 250 Gy y si la elecci&oacute;n fuera hacia obtener un ancho mayor se escoger&iacute;an plantas obtenidas con la dosis de 175 Gy. La importancia del uso de la irradiaci&oacute;n, en este caso, es que se modific&oacute; el tama&ntilde;o de br&aacute;cteas, se obtuvieron ancho de br&aacute;cteas de menor y mayor tama&ntilde;o comparado con el testigo; es decir, se gener&oacute; variaci&oacute;n morfol&oacute;gica, la cual puede ser empleada en posteriores programas de mejoramiento gen&eacute;tico de la especie o su uso directo mediante selecci&oacute;n con el objetivo de generar una nueva variedad o como progenitor en hibridaci&oacute;n de plantas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Existe un gran n&uacute;mero de variedades mejoradas de nochebuena en el mercado, en 2010 las empresas extranjeras ofertaron m&aacute;s de 60 variedades, de las cuales 90% de plantas poseen br&aacute;cteas rojas y 10% son de color rosa, amarilla y variegada. A pesar de esta oferta amplia los consumidores demandan nuevos productos cada a&ntilde;o, y para satisfacerlo existe la necesidad de emplear diferentes m&eacute;todos de mejoramiento para generar nuevas variantes en cuanto a caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas de hoja, br&aacute;ctea y arquitectura de planta. Se han generado mediante mutag&eacute;nesis 552 variedades de plantas ornamentales (Maluszynski <i>et al.,</i> 2000).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la India se han liberado 103 variedades ornamentales provenientes de genotipos mutantes, de las cuales 46 corresponden a crisantemo y la mayor proporci&oacute;n de los mutantes fueron generados utilizando como mut&aacute;geno los rayos gamma (Chopra, 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La respuesta de las plantas a la irradiaci&oacute;n es m&aacute;s o menos lineal con la dosis empleada (Chopra, 2005; Yamaguchi <i>et</i> al., 2008) los organismos poliploides son m&aacute;s tolerantes a la irradiaci&oacute;n que los diploides (Chopra, 2005). En ocasiones los cambios no se presentan de manera inmediata, en este sentido Rangaiah (2006) indica que en chile <i>(Capsicum annuum</i> L.) la aplicaci&oacute;n de rayos gamma a la semilla no produjo cambios en la media o varianza de las poblaciones tratadas, pero pudo alterar la naturaleza de la distribuci&oacute;n de la informaci&oacute;n gen&eacute;tica, la cual posiblemente se vea reflejado en las generaciones siguientes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Maluszynsky <i>et al.</i> (2009) se&ntilde;alan que en plantas cultivadas como los cereales, muchos mutantes con caracter&iacute;sticas deseables fueron seleccionados en la segunda o tercera generaci&oacute;n despu&eacute;s del tratamiento mutag&eacute;nico y posteriormente liberado como nuevos cultivares despu&eacute;s de la evaluaci&oacute;n a nivel estado y pa&iacute;s.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La identificaci&oacute;n de mutante s en la descendencia se facilita, ya que es com&uacute;n obtener plantas de bajo porte, como sucedi&oacute; con el trigo enano (Maluszynsky <i>et al.,</i> 2009), arquitectura de la planta y en color de br&aacute;ctea y flor. Es importante identificar los individuos en el mejor momento, dado que es una labor minuciosa. En nochebuena el mejor momento es cuando la planta se encuentra en la etapa de pigmentaci&oacute;n de br&aacute;cteas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En futuros trabajos sobre mejoramiento gen&eacute;tico de nochebuena mediante mutag&eacute;nesis se puede incrementar la posibilidad de lograr &eacute;xito de varias maneras, ya sea teniendo un mejor control del proceso de mutaci&oacute;n, incrementando la tasa de mutaci&oacute;n o desarrollando m&eacute;todos m&aacute;s efectivos para la selecci&oacute;n pr&aacute;ctica de mutantes (Ukai, 2010), como puede ser la asistida por marcadores moleculares.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La aplicaci&oacute;n de diferentes dosis de rayos gamma a muestras de semillas de nochebuena silvestre procedentes de la reserva el Texcal, Jiutepec, estado de Morelos produjo cambios importantes en caracter&iacute;sticas de planta y semilla. Sin embargo, no modific&oacute; la altura de hipocotilo, longitud de br&aacute;ctea y longitud de peciolo de br&aacute;ctea. Se increment&oacute; el tama&ntilde;o de semilla y se redujo la altura de planta. La mejor respuesta se logr&oacute; con la dosis de 250 Gy.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El uso de la irradiaci&oacute;n para crear variaci&oacute;n es una alternativa viable y econ&oacute;mica, y la variaci&oacute;n puede ser utilizada con fines de mejoramiento gen&eacute;tico de la nochebuena, para ampliar la base gen&eacute;tica de la especie o en la b&uacute;squeda r&aacute;pida de mejorar un car&aacute;cter en un genotipo sobresaliente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores(as) agradecen el apoyado otorgado por Fondos Mixtos Consejo Nacional de Ciencia y Tecnolog&iacute;a (CONACyT) &#45;Morelos MOR&#45;2009&#45;C02&#45;120661.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura citada</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ahloowalia, B. S. and Maluszynski, M. 2001. Induced mutations&#45;A new paradigm in plant breeding. Euphytica 118:167&#45;173.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774282&pid=S2007-0934201200080000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Atak, C.; Alikamanoglu, S.; Acik, L. and Canbolat, S. 2004. Induced of plastid mutations in soybean plant <i>(Glicine max</i> L. Merrill) with gamma radiation and determination with RAPD. Mutation Research 556:35&#45;44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774284&pid=S2007-0934201200080000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Canul, K. J.; Garc&iacute;a, P. F.; Ram&iacute;rez, R. S. y Osuna, C. F. 2010. Estrategias para el mejoramiento gen&eacute;tico de nochebuena (Euphorbia pulcherrima Willd. ex Klotzsch). Investigaci&oacute;n Agropecuaria 7:44&#45;54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774286&pid=S2007-0934201200080000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Carrillo, E.; Mej&iacute;a, C. J.; Carballo, C. A.; Garc&iacute;a de los S, G.; Aguilar, R. V. y Corona, T. T. 2009. Calidad de semilla en colectas de chile de agua <i>(Capsicum annum</i> L.) de los Valles Centrales de Oaxaca. Agric. T&eacute;c. M&eacute;x. 35:257&#45;266.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774288&pid=S2007-0934201200080000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chopra, V. L. 2005. Mutagenesis: Investigating the process and processing the outcome for crop improvement. Current Sci. 89:353&#45;359.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774290&pid=S2007-0934201200080000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ecke, P; Faust, J E; Higgins, A and Williams, J. 2004. The ecke poinsettia manual. 1er edition. Ball publishing. Batavia, Illinois 60510. 287 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774292&pid=S2007-0934201200080000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Honda, I.; Kikuchi, K.; Matsuo, S.; Fukuda, M.; Saito, H.; Ryuto, H.; Fukunishi, N. and Abe, T. 2006. Heavyion&#45;induced mutants in sweet pepper isolated by M<sub>1</sub> plant selection. Euphytica 152:61&#45;66.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774294&pid=S2007-0934201200080000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jain, S. M. 2006. Mutation&#45;assisted breeding for improving ornamental plants. Acta Hortic. 714:85&#45;98.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774296&pid=S2007-0934201200080000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lee, I. 2000. Phytoplasma casts a magic spell that turns the fair poinsettia into a Christmas showpiece. Online. Plant Health Progress doi: 1094/PHP&#45;2000&#45;0914&#45;01&#45;RV.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774298&pid=S2007-0934201200080000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lee, J.; Chung, Y.; Joung, Y.; Han, T.; Kang, S.; Yoo, Y. and Lee, G. 2010. Inductions of mutations for stem quality in Chrysanthemum <i>(Dendranthema grandiflora)</i> by using gamma&#45;ray irradiation. Acta Hortic. 855:177&#45;182.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774300&pid=S2007-0934201200080000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">L&oacute;pez&#45;Mendoza, H.; Carrillo&#45;Rodr&iacute;guez, J. and Ch&aacute;vez&#45;Servia, J. 2012. Effects of gamma&#45;irradiated seeds on germination and grrowth in Capsicum annum L. plants growth in a greenhouse. Acta Hortic. 947:77&#45;81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774302&pid=S2007-0934201200080000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Maluszynski, M.; Nichterlein, K.; Van Zanten, L. and Ahloowalia, B. S. 2000. Officially released mutant varieties&#45;FAO/IAEA database. Mutation Breed. Rev. 12:1&#45;84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774304&pid=S2007-0934201200080000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Maluszynski, M.; Szarejko, I.; Bhatia, C.; Nichterlein, K. and Lagoda, P. 2009. Methodologies for generating variability part 4: Mutation techniques. <i>In:</i> Ceccarelli, S.; Guimaraes, E. and Wetlzien, E. (eds.). Plant Breeding and Farmer Participation. FAO, Rome, Italy. 159&#45;194 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774306&pid=S2007-0934201200080000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Matsumura, A.; Nomizu, T.; Furutani, N.; Hayashi, K.; Minamiyama, Y. and Hase, Y. 2010. Ray florets color and shape mutants induced by <sup>12</sup>C<sup>5</sup> ion beam irradiation in chrysanthemun. Sci. Hortic. 123:558&#45;561.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774308&pid=S2007-0934201200080000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mej&iacute;a, M. J. M. y Espinosa, F.A. 2003. Especies fotoperi&oacute;dicas mexicanas. <i>In:</i> Mej&iacute;a, M. J. M. y Espinosa, F. A. (Comps.). Plantas nativas de M&eacute;xico con potencial ornamental, an&aacute;lisis y perspectivas. Primera edici&oacute;n. UniversidadAut&oacute;noma Chapingo, Impreso en M&eacute;xico. 159&#45;166 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774310&pid=S2007-0934201200080000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pagaza, C. E. y Fern&aacute;ndez, N. R. 2004. La familia bombacaceae en la cuenca del r&iacute;o Balsas, M&eacute;xico. Polibot&aacute;nica 17:71&#45;102.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774312&pid=S2007-0934201200080000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Qualset, C. O.; Damania, A. B.; Zanatta, A. C. and Brush, S. B. 1997. Locally based crop plant conservation. <i>In:</i> Maxted, N.; Ford&#45;Lloyd, B. V. and Hawkes, J. G. (eds.). Plant genetic conservation the <i>In Situ</i> Approach. First edition. Chapman Hall. Great Britain. 160&#45;175 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774314&pid=S2007-0934201200080000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rangaiah, S. 2006. Induced genetic variation for days to flowering and maturity following hybridization and mutagenesis in chilli <i>(Capsicum annuum</i> L.). Karnataka J. Agric. Sci. 19:382&#45;384.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774316&pid=S2007-0934201200080000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sarwar, G. and Chaudhry, M. B. 2008. Short communication. Evaluation of castor <i>(Ricinus communis</i> L.) induced mutants for possible selection in the improvement of seed yield. Spanish J. Agric. Res. 6:629&#45;634.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774318&pid=S2007-0934201200080000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Szarejko, L. and Forster, B. P. 2007. Doubled haplody and induced mutation. Euphytica 158:359&#45;370.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774320&pid=S2007-0934201200080000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Steinmann V, W. 2002. Diversidad y endemismo de la familia Euphorbiaceae en M&eacute;xico. Acta Bot. Mex. 61:61&#45;93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774322&pid=S2007-0934201200080000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Statistical Analysis System (SAS). Institute Inc. 2000. SAS User's Guide. Release 8.1. (Eds.). SAS Institute, Inc. Cary, NC. 100&#45;120 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774324&pid=S2007-0934201200080000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schum, A. 2003. Mutation breeding in ornamentals: an efficient breeding method?Acta Hortic. 612:47&#45;60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774326&pid=S2007-0934201200080000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sigurbjornsson, B. 1983. Induced mutations. <i>In:</i> Wood, D. R. (ed.). Crop Breeding. Madison, Wisconsin. USA. Crop Sci. Soc. Am. 153&#45;176 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774328&pid=S2007-0934201200080000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ukai,Y. 2010. Theoretical studies on population development design in mutation breeding of allogamous plants. Breed. Sci. 60:267&#45;278.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774330&pid=S2007-0934201200080000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wu, D. L.; Hou, S. W.; Qian, P. P.; Sun, L. D.; Zhang,Y. C. and Li, W. J. 2009. Flower color quimera and abnormal leaf mutants induced by <sup>12</sup>C<sup>6</sup> heavy ions in Salvia Splendes Ker&#45;Gawl. Sci. Hortic. 121:462&#45;467.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774332&pid=S2007-0934201200080000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yamaguchi, H.; Shimizu, A.; Degi, K. and Morishita, T. 2008. Effects of dose rate of gamma ray irradiation on mutation induction and nuclear DNA content in chrysanthemum. Breed. Sci. 58:331&#45;335.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7774334&pid=S2007-0934201200080000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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