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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efectos hepatoprotector y antioxidante de Taraxacum officinale en el daño hepático agudo inducido por el tetracloruro de carbono en la rata]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The purpose of this study was to evaluate the hepatoprotective and antioxidant effects of Taraxacum officinale (100, 200 and 400 mg/kg) in the acute liver intoxication with carbon tetrachloride (CCl4) in rats that were protected with T. officinale and colchicine (positive control) orally for three days started three hours after the CCl4 administration. The aqueous extract of T. officinale decreased the elevated hepatic activities of alanine aminotransferase, alkaline phosphatase and gamma glutamyltranspeptidase, serum bilirubin and lipid peroxidation and elevated catalase and glutathione peroxidasa. The extract presented high total phenolic compound content and moderate DPPH. scavenging activity. Taraxacum officinale possessed hepatoprotective and antioxidant effects that evidenced the traditional use of this plant.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Trabajo cient&iacute;fico</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Efectos hepatoprotector y antioxidante de <i>Taraxacum officinale</i> en el da&ntilde;o hep&aacute;tico agudo inducido por el tetracloruro de carbono en la rata</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Hepatoprotective and antioxidant effects of <i>Taraxacum officinale</i> against carbon tetrachloride induced acute hepatic damage in the rat</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Liliana Favari,<sup>1</sup> Carlos Arce&#45;D&iacute;az,<sup>2</sup> Julieta Ort&iacute;z&#45;Mart&iacute;nez,<sup>2</sup> Saudy Pablo&#45;P&eacute;rez,<sup>2</sup> Claudia Soto,<sup>3</sup> Mar&iacute;a Estela Mel&eacute;ndez&#45;Camargo<sup>2</sup></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Departamento de Farmacolog&iacute;a, CINVESTAV&#45;IPN, M&eacute;xico</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Departamento de Farmacia, Escuela Nacional de Ciencias Biol&oacute;gicas&#45;Zacatenco, Unidad Profesional Adolfo L&oacute;pez Mateos, Instituto Polit&eacute;cnico Nacional, M&eacute;xico</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> Departamento de Sistemas Biol&oacute;gicos, Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana&#45;Xochimilco, M&eacute;xico</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Correspondencia:</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dra. Mar&iacute;a Estela Mel&eacute;ndez Camargo    <br> 	Departamento de Farmacia    <br> 	Escuela Nacional de Ciencias Biol&oacute;gicas Campus Zacatenco    <br> 	Instituto Polit&eacute;cnico Nacional    <br> 	Av. Wilfrido Massieu s/n, Unidad Profesional Adolfo L&oacute;pez    <br> 	Mateos, Col. Lindavista, CP 07738, M&eacute;xico, DF, M&eacute;xico.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> 	(52)(55) 57296000 exts. 52380 y 52408. Fax (52)(55)    <br> 	57473394    <br> 	e&#45;mail: <a href="mailto:mcamargo@ipn.mx" target="_blank">mcamargo@ipn.mx</a>, <a href="mailto:emelendezc@hotmail.com" target="_blank">emelendezc@hotmail.com</a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fecha de recepci&oacute;n: 31 de julio de 2013.    <br> 	Fecha de recepci&oacute;n de modificaciones: 27 de febrero de 2014.    <br> 	Fecha de aceptaci&oacute;n: 10 de marzo de 2014.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo del estudio fue evaluar los efectos hepatoprotector y antioxidante de <i>Taraxacum officinale</i> (100, 200 y 400 mg/kg) en la intoxicaci&oacute;n hep&aacute;tica aguda con tetracloruro de carbono (CCl<sub>4</sub>) en ratas que fueron protegidas oralmente con <i>T. officinale</i> y colchicina (testigo positivo), durante tres d&iacute;as comenzando tres horas despu&eacute;s de la administraci&oacute;n del CCl<sub>4</sub>. El extracto acuoso de <i>T. officinale</i> redujo las elevadas actividades de la alanino aminotransferasa, la fosfatasa alcalina y la gamma glutamiltranspeptidasa, la bilirrubina s&eacute;rica y la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica y elev&oacute; la catalasa y la glutati&oacute;n peroxidasa. El extracto present&oacute; un alto contenido de compuestos fen&oacute;licos y una moderada actividad de atrapamiento del DPPH. <i>Taraxacum officinale</i> mostr&oacute; actividad hepatoprotectora y antioxidante evidenciando el uso tradicional de esta planta.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>T. officinale</i>, dandelion, biomarcadores hep&aacute;ticos, compuestos fen&oacute;licos totales, hepatotoxicidad inducida por CCl<sub>4</sub>.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The purpose of this study was to evaluate the hepatoprotective and antioxidant effects of <i>Taraxacum officinale</i> (100, 200 and 400 mg/kg) in the acute liver intoxication with carbon tetrachloride (CCl<sub>4</sub>) in rats that were protected with <i>T. officinale</i> and colchicine (positive control) orally for three days started three hours after the CCl<sub>4</sub> administration. The aqueous extract of <i>T. officinale</i> decreased the elevated hepatic activities of alanine aminotransferase, alkaline phosphatase and gamma glutamyltranspeptidase, serum bilirubin and lipid peroxidation and elevated catalase and glutathione peroxidasa. The extract presented high total phenolic compound content and moderate DPPH<sup>.</sup> scavenging activity. <i>Taraxacum officinale</i> possessed hepatoprotective and antioxidant effects that evidenced the traditional use of this plant.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>T. officinale</i>, dandelion, liver biomarkers, total plenolic compounds, CCl<sub>4</sub>&#45;induced hepatotoxicity.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El h&iacute;gado es un &oacute;rgano vital que es vulnerable a varias enfermedades como la hepatitis A, B, C y E, el alcoholismo, el h&iacute;gado graso, la cirrosis, el c&aacute;ncer y la lesi&oacute;n por varios compuestos qu&iacute;micos.<sup>1,2</sup> La enfermedad hep&aacute;tica es un serio problema de salud a nivel mundial.<sup>3</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El da&ntilde;o hep&aacute;tico agudo producido por la administraci&oacute;n de varios compuestos qu&iacute;micos en humanos puede ser reproducido por el modelo experimental de da&ntilde;o hep&aacute;tico del tetracloruro de carbono ampliamente utilizado.<sup>4</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El tetracloruro de carbono (CCl<sub>4</sub>) es usado frecuentemente como un inductor qu&iacute;mico de da&ntilde;o hep&aacute;tico experimental debido a que cuando se metaboliza produce los radicales libres, el triclorometil (&#183;CCl<sub>3</sub>) que a su vez reacciona con el O<sub>2</sub> para formar el radical triclorometil peroxil (CCl<sub>3</sub>COO&#183;)<sup>4</sup> que puede interaccionar con los fosfol&iacute;pidos de la membrana. La destrucci&oacute;n oxidativa de los &aacute;cidos grasos poliinsaturados de los fosfol&iacute;pidos de la membrana, la llamada peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica es considerada un importante mecanismo de toxicidad de numerosos compuestos qu&iacute;micos. El efecto directo de la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica es la destrucci&oacute;n de la membrana y el efecto secundario incluye la p&eacute;rdida de las enzimas asociadas a la membrana, de los antioxidantes<sup>5</sup> y la necrosis.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los radicales libres se han implicado en numerosos procesos patol&oacute;gicos como la enfermedad hep&aacute;tica, la cardiovascular y el c&aacute;ncer.<sup>6</sup> El estr&eacute;s oxidativo es uno de los mecanismos involucrados en la hepatotoxicidad aguda inducida por el CCl<sub>4</sub><sub>&#183;</sub><sup>6&#45;7</sup> A pesar de los estudios acerca de la patog&eacute;nesis molecular del da&ntilde;o hep&aacute;tico, las terapias efectivas para estas enfermedades son todav&iacute;a limitadas.<sup>8</sup> La terapia antioxidante inhibe los cambios oxidativos delet&eacute;reos y es considerada una herramienta muy importante para los tratamientos de las enfermedades hep&aacute;ticas.<sup>9</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las plantas medicinales, las de uso tradicional como <i>Taraxacum officinale</i>, son consideradas una fuente importante de nuevos compuestos efectivos como los hepatoprotectores.<sup>10</sup> <i>Taraxacum officinale</i> (Asteraceae) es una planta ampliamente utilizada en la Medicina Tradicional Mexicana para el tratamiento de la hepatitis, la cirrosis, la ictericia, los c&aacute;lculos vesiculares y renales, la diarrea, la gota, la inflamaci&oacute;n abdominal y el reumatismo. En el estudio etnobot&aacute;nico realizado en esta investigaci&oacute;n con la especie, se encontr&oacute; que utilizan principalmente la parte a&eacute;rea en ensalada, licuada o en decocci&oacute;n para el tratamiento de padecimientos hep&aacute;ticos, principalmente hepatitis, la ictericia, los c&aacute;lculos vesiculares y renales. Esta planta tambi&eacute;n posee actividades antitumorales y antidiab&eacute;ticas y previene la bronquitis y la influenza.<sup>10&#45;12</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Otro estudio revel&oacute; que el extracto de las hojas del <i>T. officinale</i> suprimi&oacute; la producci&oacute;n del factor de necrosis tumoral (TNF&#45;&#945;) y de la interleucina&#45;6 durante la pancreatitis aguda inducida por el octap&eacute;ptido de colecistocinina en la rata.<sup>13</sup> Sch&#251;tz y colaboradores describen que el extracto de las hojas de dandelion mostr&oacute; una alta actividad de atrapamiento del per&oacute;xido de hidr&oacute;geno comparado con el extracto de la ra&iacute;z, debido a su alto contenido de polifenoles.<sup>10</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La capacidad antioxidante del extracto crudo de las flores de <i>T. officinale</i>, conocida com&uacute;nmente como dandelion ha sido observada tambi&eacute;n en modelos <i>in vitro</i>.<sup>12</sup> Se han encontrado en la planta compuestos qu&iacute;micos como el &aacute;cido p&#45;hidroxilfenoxiac&eacute;tico, la taraxantina, la aneurina, el tarac&oacute;xido, el &aacute;cido cafeico, el ladocerol, el androsterol, la levulosa, el taraxol, la colina, la inulina, la lute&iacute;na, el homotaraxterol, el taraxerol, el taraxasterol, el &aacute;cido tarax&iacute;mico, el &#946;&#45;caroteno, los lactacerol &#945; y &#946;, la sacarosa y la arabinosa.<sup>10&#45;12,14</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los compuestos fen&oacute;licos poseen un importante efecto antioxidante debido principalmente a sus propiedades redox y a sus grupos qu&iacute;micos tal como los hidroxilos que pueden atrapar radicales libres, quelar iones met&aacute;licos, apagar singuletes y tripletes de ox&iacute;geno o descomponer per&oacute;xidos<sup>15</sup> y estos metabolitos est&aacute;n presentes en esta planta.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este estudio fue evaluar las actividades hepatoprotectora y antioxidante de <i>T. officinale</i> utilizando el tetracloruro de carbono como inductor del da&ntilde;o hep&aacute;tico agudo, en ratas para validar su uso en la Medicina Tradicional Mexicana, espec&iacute;ficamente de la parte a&eacute;rea debido a que el estudio etnobot&aacute;nico mostr&oacute; como la parte de la planta m&aacute;s utilizada por la poblaci&oacute;n encuestada.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material biol&oacute;gico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Taraxacum officinale</i></b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La planta se recolect&oacute; en los jardines de la Escuela Nacional de Ciencias Biol&oacute;gicas (ENCB), M&eacute;xico, D.F. donde era cultivada por la bi&oacute;loga Delfina Ramos, que la identific&oacute; por comparaci&oacute;n con espec&iacute;menes depositados en el herbario del Departamento de Bot&aacute;nica, ENCB (voucher # 222). La planta se lav&oacute;, se sec&oacute; y se pulveriz&oacute;.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n del extracto acuoso</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Quinientos gramos de la parte a&eacute;rea de la planta se a&ntilde;adi&oacute; en 3 L de agua destilada en ebullici&oacute;n y se dej&oacute; hervir durante 5 minutos. Despu&eacute;s de la extracci&oacute;n, la mezcla se filtr&oacute; y se concentr&oacute; a presi&oacute;n reducida hasta un volumen final de 150 mL y se liofiliz&oacute;. El rendimiento fue de 62.5g (12.5%). El liofilizado se utiliz&oacute; en todos los experimentos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis fitoqu&iacute;mico</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El extracto acuoso de <i>T. officinale</i> se someti&oacute; a un an&aacute;lisis fitoqu&iacute;mico preliminar para identificar la presencia de los fitoconstituyentes.<sup>16</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Tratamiento de los animales e inducci&oacute;n de la hepatotoxicidad</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utilizaron ratas <i>Wistar</i> macho adultas de 200 a 250 g de peso corporal (pc) procedentes del CINVESTAV&#45;IPN. Se mantuvieron en el bioterio a la temperatura de 23&#45;24&deg;C y una humedad relativa de 50 a 55%. Se alimentaron con f&oacute;rmula Diet 5008 de la marca Lab Diet y agua ad <i>libitum</i> con un ciclo de luz&#45;oscuridad de 12 x 12 h.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los animales se dejaron siete d&iacute;as en el bioterio para su adaptaci&oacute;n a las condiciones del mismo. Todos los procedimientos y el cuidado de los animales estuvieron de acuerdo con la Gu&iacute;a para el Cuidado y Uso de los Animales de Laboratorio del Consejo Mexicano para el Cuidado de los Animales (NOM&#45;062&#45;ZOO&#45;1999).<sup>17</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los animales se dividieron en 7 grupos de 6 a 8 ratas cada uno. El grupo 1 (testigo) recibi&oacute; 0.5 mL/100 g de pc de aceite de ma&iacute;z <i>per os</i>. Los animales del grupo 2 recibieron 0.5 mL/100 g de pc de agua destilada. Los grupos 3, 4, 5, 6 y 7 recibieron el tratamiento con CCl<sub>4</sub>: una &uacute;nica dosis oral de 0.5 mL/100 g de pc de CCl<sub>4</sub> en aceite de ma&iacute;z (1:1 v/v), respectivamente. El tratamiento con el extracto acuoso de <i>T. officinale</i> o colchicina (testigo positivo) se comenz&oacute; 3 horas despu&eacute;s de la dosis de CCl<sub>4</sub> y se continu&oacute; durante 3 d&iacute;as. As&iacute;, los animales de los mismos grupos se volvieron a administrar: los grupos 1 (testigo) y 3 (CCl<sub>4</sub>) recibieron 0.5 mL/100 g de pc, de aceite de ma&iacute;z, los grupos 2 y 4 (CCl<sub>4</sub>) recibieron una dosis oral de 100 mg/ kg de pc del extracto acuoso de <i>T. officinale</i>, respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los grupos 5 y 6 (CCl<sub>4</sub>) recibieron una dosis oral de 200 y 400 mg/kg de pc del extracto acuoso de <i>T. officinale</i>, respectivamente y el grupo 7 recibi&oacute; una dosis oral de 10&#181;g/rata/d&iacute;a de colchicina.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Todos los tratamientos se administraron per os. En los animales que se trataron &uacute;nicamente con 200 y 400 mg/kg de pc del extracto acuoso (testigos), respectivamente, los niveles de los par&aacute;metros bioqu&iacute;micos no cambiaron con respecto a los niveles obtenidos en el grupo de 100 mg/kg de pc. Por dicha raz&oacute;n, dichos valores no se muestran en las figuras. Veinticuatro horas despu&eacute;s de la &uacute;ltima administraci&oacute;n, las ratas se anestesiaron y se tomaron muestras de sangre por punci&oacute;n card&iacute;aca y se removieron r&aacute;pidamente los h&iacute;gados. La sangre colectada se centrifug&oacute; a 800g por 10 minutos en una centr&iacute;fuga TC Sorvall 6 para obtener el suero.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estimaci&oacute;n de las actividades enzim&aacute;ticas</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Enzimas marcadoras de da&ntilde;o hep&aacute;tico y enzimas antioxidantes</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los homogeneizados de h&iacute;gado al 10% se midieron las actividades de las diferentes enzimas y el nivel de peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La alanino aminotransferasa (ALAT),<sup>18</sup> se determin&oacute; mediante el sustrato &#945;&#45;L&#45;alanina y &#945;&#45;oxoglutarato, agregando el homogeneizado al 10% y la 2,4&#45;dinitrofenilhidracina en medio alcalino, para formar la fenilhidrazona correspondiente que absorbe a 515 nm. La determinaci&oacute;n de la actividad de la gamma glutamiltranspeptidasa (&#947;&#45;GT) se bas&oacute; en la reacci&oacute;n de la &#947;&#45;glutamil&#45;4&#45;nitroanilina con glicilglicina para formar &#947;&#45;glutamilglicilglicina y 4&#45;nitroanilina, se mide la absorci&oacute;n de esta &uacute;ltima a 410 nm.<sup>19</sup> La actividad de la fosfatasa alcalina (FA), se llev&oacute; a cabo utilizando al p&#45;nitrofenilfosfato como sustrato, se midi&oacute; la absorci&oacute;n del producto final el p&#45;nitrofenol a 410 nm.<sup>20</sup> Para determinar la actividad de la catalasa (CAT)<sup>21</sup> se hizo reaccionar el per&oacute;xido de hidr&oacute;geno con un exceso del est&aacute;ndar del permanganato de potasio, el residual de &eacute;ste se ley&oacute; a 480 nm. El m&eacute;todo de Lawrence y Burk (1976) <sup>22</sup> se utiliz&oacute; para el ensayo de la actividad de la glutati&oacute;n peroxidasa (GPx) con el hidroper&oacute;xido de cumeno como sustrato.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La oxidaci&oacute;n del NADPH se midi&oacute; a 340 nm durante 4 minutos y la actividad enzim&aacute;tica se calcul&oacute; como nmol NADPH oxidado/mg prot/min usando el coeficiente de extinci&oacute;n molar de 6.22 X 10<sup>6</sup>/M X cm. El nivel de peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica (LPO) se estim&oacute; determinando la formaci&oacute;n del malondialdehido (MDA) mediante el m&eacute;todo del &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico.<sup>23</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n del contenido de fenoles y flavonoides totales</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fenoles totales</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de los f&eacute;noles totales en el extracto acuoso de <i>T. officinale</i> se determin&oacute; mediante el m&eacute;todo de Folin&#45;Ciocalteau descrito por Xu.<sup>24</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La absorbancia se ley&oacute; a 662 mm utilizando un espectrofot&oacute;metro UV/Vis (Cary 50 probe, Varian, Australia).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realiz&oacute; una curva est&aacute;ndar de quercetina y los resultados se expresaron como mg de equivalentes de quercetina por gramo de extracto acuoso.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Flavonoides totales</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de flavonoides totales en el extracto acuoso se midi&oacute; por el m&eacute;todo espectrofotom&eacute;trico de Kim.<sup>25</sup> La absorbancia de la muestra se determin&oacute; a 440 nm por medio del espectrofot&oacute;metro UV/Vis (Cary 50 probe, Varian, Australia). Se prepar&oacute; una curva est&aacute;ndar de quercetina y los resultados se expresaron como mg de equivalentes de quercetina por gramo de extracto acuoso.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad antioxidante del extracto acuoso de <i>Taraxacum officinale</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ensayo del atrapamiento del radical libre DPPH&#183;<sup>21</sup> se evalu&oacute; en el espectrofot&oacute;metro UV/Vis (Cary 50 probe, Varian, Australia). El radical DPPH&#183; se prepar&oacute; en metanol a una concentraci&oacute;n final de 63.4 mM. La absorbancia de la muestra se midi&oacute; a 514 nm. La actividad atrapadora se calcul&oacute; por la ecuaci&oacute;n:</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v44n4/a7e1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">siendo A<sub>1</sub> la absorbancia de la muestra y A<sub>0</sub> la absorbancia del testigo (metanol en lugar del extracto acuoso). Se us&oacute; quercetina como testigo positivo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Concentraci&oacute;n de bilirrubina</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las concentraciones s&eacute;ricas de la bilirrubina total y directa se determinaron mediante el kit Randox laboratories LTD. La bilirrubina total se determina en presencia de cafe&iacute;na, mediante la reacci&oacute;n con &aacute;cido sulfamlico diazotado. La bilirrubina directa o conjugada se determina en ausencia de cafe&iacute;na.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Contenido de prote&iacute;nas en el homogeneizado de h&iacute;gado</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se estim&oacute; el contenido total de prote&iacute;nas hep&aacute;ticas por el m&eacute;todo de Bradford26 utilizando alb&uacute;mina bovina s&eacute;rica como est&aacute;ndar.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos se expresaron como la media &plusmn; la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar de la media (DS) de 6&#45;8 animales por grupo. El an&aacute;lisis se realiz&oacute; mediante el an&aacute;lisis de variancia de una v&iacute;a seguido por la prueba de las comparaciones m&uacute;ltiples de Tukey.<sup>27</sup> Las diferencias se consideraron estad&iacute;sticamente significativas cuando p&lt;0.05.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis fitoqu&iacute;mico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El extracto acuoso de <i>T. officinale</i> revel&oacute; la presencia de flavonoides, taninos, az&uacute;cares reductores, quinonas y alcaloides.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto del extracto acuoso de <i>T. officinale</i> y de la colchicina en los marcadores de da&ntilde;o hep&aacute;tico y enzimas antioxidantes</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La administraci&oacute;n del CCl<sub>4</sub> produjo cambios en las actividades de las enzimas hep&aacute;ticas ALAT, FA y &#947;&#45;GT. El tratamiento con diferentes dosis de <i>T. officinale</i> revirti&oacute; significativamente los cambios en una forma dependiente de la dosis. El CCl<sub>4</sub> increment&oacute; significativamente (p&lt;0.05) la actividad de ALAT. <i>Taraxacum officinale</i>, a la dosis de 100 mg/kg no protegi&oacute;, por lo que se observ&oacute; este incremento (<a href="#t1">tabla 1</a>) pero a las dosis de 200 y 400 mg/kg aboli&oacute; completamente dichos incrementos. La administraci&oacute;n de <i>T. officinale</i> solo no modific&oacute; la actividad basal de la ALAT.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t1"></a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v44n4/a7t1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad hep&aacute;tica de la FA en el grupo intoxicado con CCl<sub>4</sub> aument&oacute; un 300% comparada con el valor testigo (<a href="#f1">fig. 1</a>). <i>T. officinale</i> protegi&oacute; totalmente de este aumento, a las dosis de 200 y 400 mg/kg, respectivamente. La administraci&oacute;n del extracto de la planta a los animales testigos no modific&oacute; el nivel basal de FA. Cuando los animales se trataron con CCl<sub>4</sub> m&aacute;s colchicina (grupo 7) la actividad de la FA permaneci&oacute; por arriba del testigo siendo significativamente diferente (p&lt;0.05) del grupo testigo y del grupo de CCl<sub>4</sub>.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v44n4/a7f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El valor basal de la actividad de la &#947;&#45;GT fue de 24.8 &plusmn;6.1 <i>&#181;</i>mol/min/mg pero el CCl<sub>4</sub> aument&oacute; este valor a 89.9 &plusmn; 19.5 <i>&#181;</i>mol/min/mg, el aumento fue del 362%. Tres d&iacute;as despu&eacute;s del tratamiento con <i>T. officinale</i>, el valor de la actividad de la &#947;&#45;GT fue similar al valor del testigo a las dosis de 200 y 400 mg/kg o colchicina. La dosis de 100 mg/kg de <i>T. officinale</i> no redujo la &#947;&#45;GT elevada por el CC1<sub>4</sub> (<a href="#f2">fig. 2</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v44n4/a7f2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al Said y colaboradores (2007)<sup>28</sup> encontraron en el modelo de CCl<sub>4</sub> que el extracto etan&oacute;lico de <i>Grewia tenax</i> (Forssk) a la dosis de 250 y 500 mg/kg previno significativamente la elevaci&oacute;n de la aspartato aminotransferasa, la FA, la ALAT y la &#947;&#45;GT y el nivel de la bilirrubina.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">You y cols (2010)<sup>29</sup> encontraron que la ra&iacute;z de <i>T officinale</i>, en un modelo de da&ntilde;o hep&aacute;tico inducido por etanol, redujo las actividades s&eacute;ricas de la aspartato aminotransferasa, la ALAT, la FA, y la lactato deshidrogenasa comparadas con las actividades del grupo de ratones tratados s&oacute;lo con el etanol. En el estudio realizado por Park y colaboradores en el 2010,<sup>30</sup> adem&aacute;s de los incrementos en las actividades de las enzimas, observaron histol&oacute;gicamente procesos inflamatorios con infiltraci&oacute;n de c&eacute;lulas, as&iacute; como cambios en la grasa centrilobular, en la apoptosis y en la necrosis. El pretratamiento con los polisac&aacute;ridos de <i>T. officinale</i> (TOP1 y TOP2), disminuyeron el proceso inflamatorio, los cambios en la grasa, la apoptosis y la necrosis, adem&aacute;s de disminuir la actividad de la ALAT entre otras variables, sugiriendo que estos polisac&aacute;ridos pudieran tener propiedades hepatoprotectoras por modular la respuesta inflamatoria y disminuir el estr&eacute;s oxidativo inducido por el CCl<sub>4</sub>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <a href="#f3">fig. 3</a> muestra que el CCl<sub>4</sub> produjo un aumento significativo de la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica comparada con el grupo testigo. Los animales intoxicados agudamente con el CCl<sub>4</sub> y tratados con 100, 200 y 400 mg/kg de <i>T. officinale</i>, respectivamente y colchicina mostraron una hepatoprotecci&oacute;n significativa (p&lt;0.05). Hubo un decremento de la LPO en los grupos intoxicados que recibieron <i>T. officinale</i>. En otro estudio,<sup>12</sup> el nivel incrementado del MDA inducido por el CCl<sub>4</sub> disminuy&oacute; con el tratamiento del extracto de flores de dandelion y los autores indicaron que esto podr&iacute;a deberse a la presencia de la luteolina y la luteolina&#45;7&#45;gluc&oacute;sido y otros polifenoles con actividad antioxidante.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v44n4/a7f3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El tratamiento con <i>T. officinale</i>, a la dosis de 200 y 400 mg/kg revirti&oacute; la hepatotoxicidad inducida por el CCl<sub>4</sub>. You y col., (2010)<sup>29</sup> obtuvieron la prevenci&oacute;n del aumento de la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica que podr&iacute;a ser debido a la capacidad de <i>T. officinale</i> de captar radicales libres.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los grupos de animales intoxicados con CCl<sub>4</sub>, las actividades de la glutati&oacute;n peroxidasa y la catalasa se incrementaron significativamente comparadas con los grupos testigo (<a href="#f4">Figs. 4</a> y <a href="#f5">5</a>). Ninguna de las tres dosis utilizadas de <i>T. officinale</i> disminuyeron este incremento y las actividades de la catalasa, la glutati&oacute;n peroxidasa permanecieron con valores muy semejantes a los del grupo de CCl4. You y cols (2010)<sup>29</sup> obtuvieron resultados semejantes a los de este estudio: la administraci&oacute;n de etanol m&aacute;s la ra&iacute;z de <i>T. officinale</i> a ratones aument&oacute; significativamente las actividades de la catalasa, la glutati&oacute;n&#45;S&#45;transferasa, la glutati&oacute;n peroxidasa y el glutati&oacute;n comparadas con los ratones que recibieron s&oacute;lo etanol. Nuestro estudio se realiz&oacute; con la parte a&eacute;rea de la planta, no con la ra&iacute;z como estos autores. Otros investigadores obtuvieron resultados similares a los obtenidos en nuestro estudio. Ellos evaluaron el efecto hepatoprotector del &aacute;cido salvian&oacute;lico A, (antioxidante) y la hepatotoxicidad inducida por el CCl<sub>4</sub><sup>31</sup> y tambi&eacute;n observaron la disminuci&oacute;n en el nivel de la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica hep&aacute;tica combinada con una elevaci&oacute;n de la super&oacute;xido dismutasa y el glutati&oacute;n. Sin embargo, otros autores<sup>32</sup> encontraron que el CCl<sub>4</sub> disminuy&oacute; significativamente las actividades de la SOD y GPx pero el antioxidante picnogenol evit&oacute; la disminuci&oacute;n. En nuestro estudio, el extracto acuoso del dandelion elev&oacute; la actividad de la CAT y la GPx, probablemente al ejercer un efecto hepatoprotector, lo mismo ha sido sugerido para <i>A. indica</i> que incremento la actividad de estas enzimas antioxidantes.<sup>33</sup></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v44n4/a7f4.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v44n4/a7f5.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En otro estudio,<sup>34</sup> ENA Actimneral Resource A (ENA&#45;A) indujo una disminuci&oacute;n de la producci&oacute;n de ROS y la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica, as&iacute; como un incremento de las actividades antioxidantes, incluyendo el glutati&oacute;n y la catalasa en el da&ntilde;o hep&aacute;tico subagudo inducido por CCl<sub>4</sub>. En nuestro estudio, el aumento de la CAT, la GPx y la LPO podr&iacute;a ser debido al aumento de la generaci&oacute;n de las ROS inducidas por el CCl<sub>4</sub> y podr&iacute;a indicar un estado antioxidante elevado para neutralizar el impacto de las ROS. El aumento de la CAT en el homogeneizado de h&iacute;gado en las ratas tratadas con CCl<sub>4</sub> y <i>T. officinale</i> podr&iacute;a reflejar la liberaci&oacute;n de la enzima debido al da&ntilde;o hep&aacute;tico o un incremento en la s&iacute;ntesis de <i>novo</i> de la enzima.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El valor basal de la bilirrubina total y directa fue de 0.19 &plusmn; 0.03 y 0.08 &plusmn; 0.03 mg/dl, respectivamente. El CCl<sub>4</sub> indujo un incremento del 105% y del 125% (0.39 &plusmn; 0.02 y 0.18 &plusmn; 0.04 mg/dl), respectivamente, en ambas bilirrubinas (<a href="#t1">tabla 1</a>). <i>T. officinale</i> a las dosis de 100, 200 y 400 mg/kg y la colchicina normalizaron completamente el incremento de la bilirrubina directa pero el tratamiento con <i>T. officinale</i> a la dosis de 100 y 200 mg/kg no disminuy&oacute; la concentraci&oacute;n de la bilirrubina total, ya que los valores correspondientes, 029&plusmn;0.04 y 0.25 &plusmn; 0.04 fueron diferentes a los valores del grupo testigo y del grupo tratado con CCl<sub>4</sub>.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Resultado similares fueron obtenidos por Ahsan y colaboradores<sup>35</sup> en ratas intoxicadas con CCl<sub>4</sub> y tratados con extractos metan&oacute;licos de diferentes especies vegetales, la bilirrubina total se increment&oacute; de 0.77 &plusmn; 0.35 mg/dL en el grupo testigo a 1.04 &plusmn; 0.01 mg/dL despu&eacute;s de la intoxicaci&oacute;n con CCl<sub>4</sub>. La administraci&oacute;n de los extractos de las diferentes especies a las ratas tratadas con CCl<sub>4</sub> redujo la bilirrubina total a valores cercanos al grupo testigo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La bilirrubina directa tambi&eacute;n se redujo al valor del testigo. En nuestro estudio, <i>T. officinale</i> previno el efecto del CCl<sub>4</sub> en los niveles de la bilirrubina s&eacute;rica total s&oacute;lo a la dosis de 400 mg/kg pero a las dosis de 200 y 400 mg/kg, la concentraci&oacute;n de la bilirrubina directa fue similar al testigo y es razonable sugerir que <i>T. officinale</i> limit&oacute; la severidad del da&ntilde;o hep&aacute;tico ya que redujo los niveles de la bilirrubina en una forma dependiente de la dosis. Tambi&eacute;n se observ&oacute; un incremento significativo de las enzimas antioxidantes y un decremento de la LPO en los grupos intoxicados que recibieron <i>T. officinale</i>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Contenido de fenoles y de flavonoides totales, as&iacute; como la actividad antioxidante del extracto de <i>T. officinale</i> por la actividad captadora del radical libre DPPH<sup>.</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="#t2">tabla 2</a>, se muestra que el extracto acuoso de <i>T. officinale</i> contiene m&aacute;s fenoles que flavonoides y que su actividad captadora del radical DPPH. fue moderada, menor que la de la quercetina. El mismo resultado se obtuvo con el extracto etan&oacute;lico de <i>Grewia tenax</i> (Forssk) en la intoxicaci&oacute;n con CCl<sub>4</sub> en ratas<sup>28</sup>. Este extracto demostr&oacute; una moderada habilidad de atrapamiento del DPPH. (21%) comparado con el alto efecto del &aacute;cido asc&oacute;rbico (96%).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcf/v44n4/a7t2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El mecanismo exacto por el cual <i>T. officinale</i> ejerce su efecto hepatoprotector es desconocido. Sin embargo, podr&iacute;a suponerse que las actividades hepatoprotectoras contra el tetracloruro de carbono podr&iacute;an deberse a la estabilizaci&oacute;n de la membrana celular, la regeneraci&oacute;n de las c&eacute;lulas hep&aacute;ticas y la activaci&oacute;n de las enzimas antioxidantes tal como la catalasa y la glutati&oacute;n peroxidasa. El estr&eacute;s oxidativo es uno de los mecanismos involucrados en la hepatotoxicidad aguda del CCl<sub>4</sub>. Varias sustancias naturales presentes en las plantas superiores son antioxidantes. Entre ellas, los compuestos fen&oacute;licos como los flavonoides, los taninos, las cumarinas, las xantonas y las procianidinas pueden atrapan radicales libres.<sup>36</sup> <i>T. officinale</i> contiene varios flavonoides tales como la quercetina, la luteolina y la luteolina&#45;7&#45;0&#45; gluc&oacute;sido,<sup>12</sup> las dos &uacute;ltimas con capacidad para atrapar radicales libres<sup>37</sup> y la quercetina con acci&oacute;n protectora contra el da&ntilde;o hep&aacute;tico inducido por el alcohol.<sup>33, 38</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El h&iacute;gado por las funciones que desempe&ntilde;a est&aacute; expuesto a numerosos compuestos de diferente naturaleza y se ha propuesto recientemente que dentro de las propiedades que presenta <i>T. officinale</i> est&aacute; la de mantener la salud del h&iacute;gado, se ha supuesto que puede aumentar el flujo biliar y evitar la hepatitis y la ictericia.<sup>33</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El presente estudio confirma la acci&oacute;n hepatoprotectora y antioxidante de <i>T. officinale</i> contra la inducci&oacute;n del da&ntilde;o hep&aacute;tico por el CCl<sub>4</sub>, a diferencia con otros estudios en el nuestro se utiliz&oacute; la parte a&eacute;rea, que es la usada com&uacute;nmente por la poblaci&oacute;n y en particular en la comunidad encuestada durante el estudio etnobot&aacute;nico. Con estos resultados se confirma el uso de la especie en la Medicina Tradicional para padecimientos hep&aacute;ticos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores agradecen la valiosa colaboraci&oacute;n y asistencia t&eacute;cnica de Ma. Teresa Garc&iacute;a Camacho. Esta investigaci&oacute;n fue parcialmente apoyada por la Secretaria de Investigaci&oacute;n y Posgrado del IPN. S. Pablo&#45;P&eacute;rez tiene beca de CONACYT, n&uacute;mero 237225, M&eacute;xico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Day CP. Alcohol and the liver. Medicine. 2007; 35:22&#45;25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921603&pid=S1870-0195201300040000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Abajo FJD, Montero D, Modurga M, Rodr&iacute;guez LAG. Acute and clinically relevant drug&#45;induced liver injury: a population based case&#45;control study. Br J Clin Pharmacol. 2004; 58:71&#45;80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921605&pid=S1870-0195201300040000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Joanne L, Thanavaro ACNP&#45;BC. An overview of drug&#45;induced liver injury. J Nat Prod. 2011; 7(10): 819&#45;826.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921607&pid=S1870-0195201300040000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Gurpreet K, Sarwar AM, Zoobi J, Kaleem J, Mohammed A. Evaluation of antioxidant activity of <i>Cassia seamea</i> flowers. J Ethnopharmacol. 2006; 108:340&#45;348.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921609&pid=S1870-0195201300040000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Weber LW, Boll M, Stampll A. Hepatotoxicity and mechanism of action of holoalkanes: carbon tetrachloride as a toxicological model. Crit Rev Toxicol. 2003; 22:105&#45;136.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921611&pid=S1870-0195201300040000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Seitz HK. Stickel F. Risks factors and mechanism of hepatocarcinogenesis with special emphasis on alcohol and oxidative stress. Biol Chem. 2006; 387:349&#45;360.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921613&pid=S1870-0195201300040000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Botsoglan NA, Taitzoglou IA, Botsoglou E, Lavrentiadou SN, Kokoli AN, Roubies N. Effect of long&#45;term dietary administration of oregano on the alleviation of carbon tetrachloride induced oxidative stress in rats. J Agric Food Chem. 2008; 56: 6287&#45;6293.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921615&pid=S1870-0195201300040000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Yang L, Wang CZ, Ye JZ, Li HT. Hepatoprotective effects of polyphenols from <i>Ginkgo biloba</i> L. leaves on CCl<sub>4</sub>&#45; induced hepatotoxicity in rats. Fitoterapia. 2011; 82: 834&#45;840.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921617&pid=S1870-0195201300040000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Wel&#45;Yun Y, Yu&#45;Quin L, Haji&#45;Akber A, Xue&#45;Lei X, Totahon Z, Yan M, Meng&#45;Ying H, Lei X, Rui&#45;Ping Z. Hepatoprotective activities of a sesquiterpene&#45;rich protection from the aerial part of <i>Cichorium glandulosum</i>. Chin Med. 2012; 7: 21&#45;33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921619&pid=S1870-0195201300040000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Schultz K, Carle R, Shieber A. <i>Taraxacum</i>&#45; A review on its phytochemical and pharmacological profile. J Ethnopharmacol. 2006;107: 313&#45;323.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921621&pid=S1870-0195201300040000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Argueta VA, Cano AMC, Rodarte ME. Atlas de las plantas de la Medicina Tradicional Mexicana. 1<sup>a</sup>. Ed. M&eacute;xico: Instituto Nacional Indigenista; 1994, p. 1374&#45;1380.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921623&pid=S1870-0195201300040000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Hu C, Kitts DD. Antioxidant, prooxidant and cytotoxic activities of solvent&#45;fractionated dandelion (<i>Taraxacum officinale</i>) flower extracts in vitro. J Agric Food Chem. 2003; 51(1): 301&#45;310.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921625&pid=S1870-0195201300040000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Seo SW, Koo HN, An HJ, Kwon KB, Lim BC, Seo EA, Ryu DG, Moo G, Kim HY, Kim HM, Hong SH. <i>Taraxacum officinale</i> protects against cholecystokinin&#45;induced acute pancreatitis in rat. World J Gastroenterol. 2005;11: 597&#45;599.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921627&pid=S1870-0195201300040000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Rzedowski J, Rzedowski G. Flora faner&oacute;gama del Valle de M&eacute;xico. 2<sup>a</sup>. Ed. M&eacute;xico: Instituto de Ecolog&iacute;a A.C.; 2001, p. 622&#45;624.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921629&pid=S1870-0195201300040000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Zheng W, Wang SY. Antioxidant activity and phenolic compounds in selected herbs. J Agric Food Chem. 2001; 49: 5165&#45;5170.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921631&pid=S1870-0195201300040000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Dom&iacute;nguez XA. M&eacute;todos de investigaci&oacute;n fitoqu&iacute;mica 2<sup>a</sup>. Ed. M&eacute;xico: Limusa; 1978, p. 39&#45;44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921633&pid=S1870-0195201300040000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. NOM&#45;062&#45;ZOO (1999). Norma Oficial mexicana que determina las especificaciones t&eacute;cnicas para la producci&oacute;n, cuidado y uso de los animales de laboratorio. Poder ejecutivo. Secretar&iacute;a de Agricultura y Desarrollo Rural. Diario oficial lunes 6 de diciembre 1999.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921635&pid=S1870-0195201300040000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Reitman S, Frankel SA. A colorimetric method for the determination of serum glutamic oxaloacetic and glutamic pyruvic transaminases. Am J Clin Pathol. 1957; 28: 56&#45;63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921637&pid=S1870-0195201300040000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Glossman M, Neville D. &#947;&#45;glutamyltransferase in kidney brush border membranes. FEBBS letters. 1972; 19: 340&#45;344.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921639&pid=S1870-0195201300040000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Berger L, Rudolph GN. Alkaline and acid phosphatases. In: Standard Methods of Clinical Chemistry. Meites E, editor. New York: Academic Press, 1963. p. 56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921641&pid=S1870-0195201300040000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Cohen G, Dembiec D, Marcus J. Measurement of catalase activity in tissue extracts. Biochemistry. 1970; 34: 30&#45;38.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921643&pid=S1870-0195201300040000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Lawrence RA, Burk R. Glutathione peroxidase activity in selenium&#45;deficient rat liver. Biochem Biophys Res Commun. 1976; 71: 952&#45;958.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921645&pid=S1870-0195201300040000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Buege A, Aust SD. Microsomal lipid peroxidation. Methods Enzymol. 1978; 53: 302&#45;310.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921647&pid=S1870-0195201300040000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. Xu ZS, Tang MT, Li YA, Liu FF, Li XM, Dai RT. Antioxidant properties of Du&#45;zhong (<i>Eucommia adenoides</i> oliv.) extracts and their effects on color stability and lipid oxidation on raw park patties. J Agric Food Chem. 2010; 58: 7289&#45;7296.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921649&pid=S1870-0195201300040000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Kim DO, Chun OK, Kim YJ, Moon HY, Lee CY. Quantification of polyphenolics and their antioxidant capacity in fresh plums. J Agric Food Chem. 2003 ; 51: 6509&#45;6515.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921651&pid=S1870-0195201300040000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantification of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein&#45;dye binding. Anal Biochem. 1976; 72: 248&#45;254.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921653&pid=S1870-0195201300040000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27. Brown BW, Hollander M. Statistics: A biomedical introduction. In: Analysis of K&#45;Sample Problems, Brown BW, Hollander M, editores. New York: John Wiley; 1977. p. 225&#45;233.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921655&pid=S1870-0195201300040000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28. Al&#45;Said MS, Mothana RA, Al&#45;Sohaibani MO, Rafatullah S. Ameliorative effect of Grewia tenax (Forssk) fiori fruit extract on CCL<sub>4</sub>&#45;induced oxidative stress and hepatotoxicity in rats. J Food Sci. 2011; 76(9): T200&#45;T206.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921657&pid=S1870-0195201300040000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29. You Y, Yoo S, Yoon HG, Park J, Lee YH, Kim S, Oh KT, Lee J, Cho HY, Jun W. <i>In vitro</i> and <i>in vivo</i> hepatoprotective effects of the aqueous extract from <i>Taraxacum officinale</i> (dandelion) root against alcohol&#45;induced oxidative stress. Food Chem Toxicol. 2010; 48: 1632&#45;1637.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921659&pid=S1870-0195201300040000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30. Park CM, Youn HJ, Chang HK, Song YS. TOP1 and 2, polysaccharides from <i>Taraxacum officinale</i>, attenuate CCl<sub>4</sub>&#45;induced hepatic damage through the modulation of NF&#45;kB and its regulatory mediators. Food Chem Toxicol. 2010; 48: 1255&#45;1261.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921661&pid=S1870-0195201300040000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">31. Wu ZM, Wen T, Tan YF, Liu Y, Ren F, Wu H. Effects of salvianolic acid on oxidative stress and liver injury induced by carbon tetrachloride in rats. Basic Clin Pharmacol Toxicol. 2007; 100: 115&#45;120.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921663&pid=S1870-0195201300040000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">32. Yang YS, Ahn TH, Lee JC, Moon CJ, Kim SH, Jun W, Park SC, Kim HC, Kim JC. Protective effects of pycnogenol on carbon tetrachloride&#45;induced hepatotoxicity in Sprague&#45;Dawley rats. Food Chem Toxicol. 2008; 46: 380&#45;387.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7921665&pid=S1870-0195201300040000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
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