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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Revisión: Aplicaciones ambientales de microorganismos inmovilizados]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Review article: Environmental applications of immobilized microorganisms]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The use of immobilized cells in the environmental field has been slight explored despite recognizing its potential in contaminant biodegradation due to increased tolerance to toxic compounds and the stability of the cells. The biodegradation assays of organic contaminants have been carried out mainly in liquid medium and there are few assays in soil, therefore the interest of this work focuses on reviewing the state of the art of using immobilized cells for degradation of organic pollutants in soils. Some advantages of support used in the immobilization of microorganisms for environmental purposes as well as the different approaches that have worked to identify potential areas of opportunity are also discussed.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Biotecnolog&iacute;a</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Revisi&oacute;n: Aplicaciones ambientales de microorganismos inmovilizados</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Review article: Environmental applications of immobilized microorganisms</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>M.A. Mart&iacute;nez&#45;Trujillo y M. Garc&iacute;a&#45;Rivero*</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Tecnol&oacute;gico de Estudios Superiores de Ecatepec, Laboratorio de Cat&aacute;lisis Enzim&aacute;tica, Divisi&oacute;n de Ciencias Qu&iacute;micas y Bioqu&iacute;micas, Av. Tecnol&oacute;gico s/n, Col. Valle de An&aacute;huac, C.P. 55210, Ecatepec de Morelos, Edo. de M&eacute;xico, M&eacute;xico.*Autora para la correspondencia. E&#45;mail:</i> <a href="mailto:mgarcia@tese.edu.mx">mgarcia@tese.edu.mx</a> <i>Tel. 50&#45;00&#45;23&#45;00, Fax 50&#45;00&#45;23&#45;00 ext. 2304</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido 30 de Agosto 2011    <br> 	Aceptado 16 de Diciembre 2011</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El uso de c&eacute;lulas inmovilizadas en el &aacute;rea ambiental ha sido poco explotado, a pesar de que se reconoce su potencial en la biodegradaci&oacute;n de contaminantes debido al incremento en la estabilidad de las c&eacute;lulas y la tolerancia ante ciertos compuestos t&oacute;xicos. Los ensayos de biodegradaci&oacute;n de contaminantes org&aacute;nicos se han realizado principalmente en medio l&iacute;quido, y son escasos los ensayos de biodegradaci&oacute;n de contaminantes en suelos, es por esto que el inter&eacute;s del presente trabajo se centro en revisar el estado del arte de la uso de microorganismos inmovilizados para la degradaci&oacute;n de contaminantes org&aacute;nicos en suelos. Se hace una revisi&oacute;n de los soportes com&uacute;nmente usados en la inmovilizaci&oacute;n de microorganismos para fines ambientales, as&iacute; como de los diferentes enfoques que se han trabajado, para as&iacute; identificar posibles &aacute;reas de oportunidad para futuras investigaciones.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> contaminantes org&aacute;nicos, suelos, soportes, degradaci&oacute;n, bacteria, hongos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The use of immobilized cells in the environmental field has been slight explored despite recognizing its potential in contaminant biodegradation due to increased tolerance to toxic compounds and the stability of the cells. The biodegradation assays of organic contaminants have been carried out mainly in liquid medium and there are few assays in soil, therefore the interest of this work focuses on reviewing the state of the art of using immobilized cells for degradation of organic pollutants in soils. Some advantages of support used in the immobilization of microorganisms for environmental purposes as well as the different approaches that have worked to identify potential areas of opportunity are also discussed.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> organic contaminants, soils, supports, degradation, bacteria, fungi.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>1 Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los &uacute;ltimos a&ntilde;os la biotecnolog&iacute;a ha tenido importantes avances en su aplicaci&oacute;n en procesos industriales para la obtenci&oacute;n de productos qu&iacute;micos, alimentarios y farmac&eacute;uticos, as&iacute; como en el &aacute;rea ambiental. Una gran variedad de procesos industriales son llevados a cabo mediante el uso de c&eacute;lulas inmovilizadas, en los cuales se han producido compuestos tales como aminoacidos, &aacute;cidos org&aacute;nicos, antibi&oacute;ticos, esteroides y enzimas (Najafpom\ 2007; Linhardt <i>y col.,</i> 1987). Entre las t&eacute;cnicas de inmovilizaci&oacute;n de ceiulas que se conocen, la adsorci&oacute;n y el atrapamiento en la matriz de un soporte polim&eacute;rico sin duda son las m&aacute;s utilizadas. En la inmovilizaci&oacute;n por adsorci&oacute;n los microorganismos se unen al soporte por interacciones i&oacute;nicas, que preferentemente deben ser materiales con grandes superficies, tales como el carbon activado (Ehrdardt y Rehm, 1985) o resinas de intercambio ionico (Jack y Zajic, 1977). La t&eacute;cnica de atrapamiento es aplicable a diversos microorganismos y en esta se utiliza gelatina, agar, gel de poliacrilamida, alginato de calcio, carragenina, quitosano, alcohol polivinilico o sol&#45;gel como materiales para la formaci&oacute;n de la matriz (Najafpour, 2007). Otros materiales com&uacute;nmente usados como soporte para la inmovilizaci&oacute;n son los residuos lignocelul&oacute;sicos, cuya ventaja adicional radica en la producci&oacute;n de az&uacute;cares durante su hidr&oacute;lisis, lo que a su vez minimiza la generaci&oacute;n de desechos (Zhang <i>y col.,</i> 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aunque actualmente los estudios respecto a la inmovilizaci&oacute;n se est&aacute;n enfocando en superar algunas limitaciones t&eacute;cnicas observadas durante el proceso de inmovilizaci&oacute;n y en la b&uacute;squeda de soportes de bajo costo, se tienen logros importantes en el incremento de la producci&oacute;n de metabolitos y en la vida media de las c&eacute;lulas. As&iacute;, el inter&eacute;s sobre los sistemas inmovilizados ha sido creciente debido a las numerosas ventajas que estos ofrecen, ya que permiten acortar el tiempo del proceso de fermentaci&oacute;n, incrementar la productividad, facilitar los procesos de separaci&oacute;n de productos y minimizar los costos de producci&oacute;n (Najafpour, 2007). Una descripci&oacute;n detallada de los aspectos fundamentales de la inmovilizaci&oacute;n de c&eacute;lulas se puede encontrar dentro del texto de "Biochemical Engineerig and Biotechnology" publicado por Najafpour (2007).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otra parte, las aplicaciones de la biotecnolog&iacute;a para resolver problemas ambientales han permitido el desarrollo de diversas t&eacute;cnicas de biorremediaci&oacute;n para suelos y aguas contaminadas, que se han basado de forma tradicional en el uso de microorganismos libres. Sin embargo la incorporaci&oacute;n de microorganismos libres en los sistemas de tratamiento tiene ciertas limitaciones debidas a la toxicidad inherente de los contaminantes, as&iacute; como a la competencia entre las poblaciones nativas y las ex&oacute;genas (Fantroussi y Agathos, 2005). Una forma de salvar estas limitantes es a trav&eacute;s del uso de microorganismos inmovilizados, ya que la inmovilizaci&oacute;n brinda a las c&eacute;lulas una protecci&oacute;n contra el efecto t&oacute;xico de las sustancias presentes en el medio y a la depredaci&oacute;n por parte de otras poblaciones (Mishra <i>y col.,</i> 2001). Cuando se usan c&eacute;lulas inmovilizadas en procesos de remoci&oacute;n de contaminantes se logra incrementar la tasa global de biodegradaci&oacute;n, debido a las altas densidades celulares que se alcanzan, adem&aacute;s de incrementar la estabilidad y tolerancia de los microorganismos a los compuestos t&oacute;xicos (Godjevargova <i>y col.,</i> 2003; Hanaki <i>y col.,</i> 1994). Las c&eacute;lulas inmovilizadas como una alternativa tecnol&oacute;gica para aplicaci&oacute;n ambiental se han usado en agricultura, biocontrol, aplicaci&oacute;n de pesticidas, biodegradaci&oacute;n de contaminantes en aguas subterr&aacute;neas (Cassidy <i>y col.,</i> 1996) y en aguas residuales de origen industrial (Nair <i>y col.,</i> 2007), y en menor proporci&oacute;n en suelos. Sin embargo, la mayor&iacute;a de las aplicaciones se han realizado a nivel de laboratorio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo del presente art&iacute;culo es revisar las aplicaciones de la inmovilizaci&oacute;n de diversas especies microbianas durante la biodegradaci&oacute;n de contaminantes, con &eacute;nfasis en la aplicaci&oacute;n de esta tecnolog&iacute;a para la biorremediaci&oacute;n de suelos contaminados con compuestos org&aacute;nicos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La informaci&oacute;n que aqu&iacute; se presenta se ha organizado en cuatro secciones. En la primera, relacionada con el uso de microorganismos en la recuperaci&oacute;n del ambiente, se analiza el uso de los sistemas inmovilizados a trav&eacute;s de la tecnolog&iacute;a de bioaumentaci&oacute;n. El an&aacute;lisis de publicaciones relacionadas con el tema, permitio identificar a la supervivencia de la poblaci&oacute;n microbiana introducida al suelo como una de las principales limitantes en el &eacute;xito de esta tecnolog&iacute;a. Es as&iacute; como el uso de microorganismos inmovilizados se convierte en una herramienta para incrementar la probabilidad de su establecimiento en el suelo. Una vez identificada la necesidad de incorporar microorganismos al suelo en forma inmovilizada se hace necesario conocer los tipos de soportes m&aacute;s usados (alginato de calcio, agar, poliuretano y el sol gel) y las cualidades que estos poseen, temas que se tratan en la segunda secci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la tercera secci&oacute;n se discute la aplicaci&oacute;n de microorganismos inmovilizados en la degradaci&oacute;n de contaminantes en sistemas l&iacute;quidos. Se demuestra c&oacute;mo el reconocido incremento en la resistencia a la toxicidad y concentraci&oacute;n de los compuestos en la fase l&iacute;quida cobra especial importancia en la degradaci&oacute;n de contaminantes. Se revisan los aspectos cin&eacute;ticos de la degradaci&oacute;n de contaminantes, encontr&aacute;ndose que los modelos cl&aacute;sicos usados en cultivo l&iacute;quido son adecuados para explicar el consumo de contaminantes, los efectos t&oacute;xicos e incluso el crecimiento que presentan los sistemas inmovilizados. Lo anterior se hace sin perder de vista que la actividad de las c&eacute;lulas inmovilizadas depende de las caracter&iacute;sticas de los sistemas microbianos y su interacci&oacute;n con el soporte.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la &uacute;ltima secci&oacute;n se hace una revisi&oacute;n del estado del arte de la aplicaci&oacute;n de los microorganismos inmovilizados en el tratamiento de suelos contaminados. En general los reportes se refieren a trabajos realizados a nivel de laboratorio, en los que se han empleado preferentemente soportes convencionales en forma de mezclas que permiten lograr una mayor resistencia del soporte. Estos estudios han reiterado el incremento de la eficiencia de las c&eacute;lulas inmovilizadas en la remoci&oacute;n de contaminantes.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>2 Los microorganismos en la recuperaci&oacute;n del ambiente</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La biodegradaci&oacute;n de compuestos org&aacute;nicos, tales como hidrocarburos, insecticidas y plaguicidas, compuestos clorados y compuestos arom&aacute;ticos, ha sido ampliamente estudiada a nivel de laboratorio y en estudios de campo. Dichos estudios han demostrado que la degradaci&oacute;n microbiana de contaminantes en el ambiente es un proceso complejo, cuyos resultados cuantitativos y cualitativos dependen de factores abi&oacute;ticos y bi&oacute;ticos. Entre los primeros se deben enumerar a las condiciones ambientales locales como pH, temperatura y humedad, principalmente, adem&aacute;s de la concentraci&oacute;n y la disponibilidad del contaminante. Entre los factores bi&oacute;ticos son fundamentales la composici&oacute;n, la adaptabilidad y capacidad fisiol&oacute;gica de las poblaciones microbianas. En suma, esos resultados han permitido el desarrollo de las llamadas tecnolog&iacute;as de biorremediaci&oacute;n (Boopathy, 2000).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los &uacute;ltimos a&ntilde;os, se ha desarrollado una amplia variedad de tecnolog&iacute;as de biorremediaci&oacute;n, tanto <i>in situ</i> como <i>ex situ.</i> Esas tecnolog&iacute;as han sido dise&ntilde;adas para lograr condiciones adecuadas de cultivo e incrementar la disponibilidad de los contaminantes y las poblaciones microbianas con reconocida capacidad de biodegradaci&oacute;n. A ese respecto destaca la t&eacute;cnica de bioaumentaci&oacute;n, que se refiere a la adici&oacute;n de microorganismos ex&oacute;genos a un sistema para incrementar la tasa y alcance de la biodegradaci&oacute;n. El &eacute;xito de la estrategia de bioaumentaci&oacute;n est&aacute; determinado por la interrelaci&oacute;n del microorganismo inoculado con su nuevo ambiente bi&oacute;tico y los factores ambientales, en t&eacute;rminos de su supervivencia y actividad de migraci&oacute;n (Mrozik y Piotrowska&#45;Seget, 2010). En un ambiente natural, la depredaci&oacute;n por protozoarios o bacteri&oacute;fagos, competencia con microorganismos aut&oacute;ctonos por nutrientes o aceptores de electrones y la presencia de ra&iacute;ces que liberan compuestos org&aacute;nicos, son elementos que afectan adversamente a la bioaumentaci&oacute;n (Fantroussi y Agathos, 2005). Varias t&eacute;cnicas han sido empleadas para incrementar la probabilidad del establecimiento, eficacia y actividad de un inoculo introducido en un ambiente natural. Esas t&eacute;cnicas incluyen la inmovilizaci&oacute;n de microorganismos, el desarrollo de nichos que favorezcan el crecimiento del in&oacute;culo (inoculaci&oacute;n en la rizosfera de una planta que es introducida en el sitio) y el uso de suelos activados (Mrozik y Piotrouska&#45;Seget, 2010; Gentry <i>y col.</i> 2004a). Esta &uacute;ltima se refiere a part&iacute;culas de suelo que han sido expuestas al contaminante de inter&eacute;s y que act&uacute;an como soporte para el desarrollo de una poblaci&oacute;n microbiana que puede eliminar un contaminante en particular (Barbeau <i>y col.,</i> 1997). Cuando se opta por la inmovilizaci&oacute;n de microorganismos, los resultados obtenidos han demostrado que el soporte de inmovilizaci&oacute;n proporciona una efectiva protecci&oacute;n al in&oacute;culo ante los microorganismos nativos. Adicionalmente, con la introducci&oacute;n de microorganismos inmovilizados se logra establecer micrositios con una poblaci&oacute;n microbiana &uacute;nica que trabaja de forma interactiva en la remoci&oacute;n del compuesto de inter&eacute;s.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En relaci&oacute;n al uso de suelos activados como ventajas potenciales se puede mencionar el uso de una poblaci&oacute;n naturalmente desarrollada, que podr&iacute;a ser m&aacute;s efectiva que una poblaci&oacute;n aislada, ya que al no haber sido cultivada fuera del suelo no pierde su habilidad para competir en el ambiente. Finalmente bajo las condiciones en las que se desarrolla la poblaci&oacute;n microbiana durante los procesos de bioaumentaci&oacute;n con suelos activados, ser&iacute;a posible incluir microorganismos degradadores no cultivables, que se pierden cuando se pretende aislar microorganismos de un sitio para llevarlos a otro (Gentry <i>y col.,</i> 2004a). Una revisi&oacute;n m&aacute;s amplia de las t&eacute;cnicas que pueden incrementar la supervivencia de los microorganismos ex&oacute;genos se presenta en el trabajo publicado por Gentry <i>y col.</i> (2004b). A partir de lo anterior, la siguiente secci&oacute;n se enfoca en la revisi&oacute;n de los diferentes soportes utilizados para la inmovilizaci&oacute;n de microorganismos con aplicaci&oacute;n en el &aacute;rea ambiental, mencionando casos de aplicaci&oacute;n, as&iacute; como sus ventajas y desventajas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>3 Soportes usados para inmovilizaci&oacute;n de microorganismos &uacute;tiles en el &aacute;rea ambiental</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Un soporte adecuado para la inmovilizaci&oacute;n de microorganismos con aplicaci&oacute;n en el &aacute;rea ambiental debe proporcionar condiciones apropiadas para la supervivencia de las c&eacute;lulas y su funcionamiento como in&oacute;culo, lo cual da como resultado una vida media suficientemente larga as&iacute; como el mejoramiento de la supervivencia y de la actividad en el suelo. Se requiere que el soporte no sea t&oacute;xico, ni contaminante y que tenga una calidad constante, para permitir una liberaci&oacute;n precisa de los microorganismos en el sitio de inter&eacute;s y eventualmente se evite la dispersi&oacute;n de los microorganismos (van Veen <i>y col.,</i> 1997; Cassidy <i>y col.,</i> 1996; Gentry <i>y col.,</i> 2004b). Es importante aclarar que en la bioremediaci&oacute;n de suelos contaminados una lenta liberaci&oacute;n de los microorganismos inmovilizados puede ser ventajosa (Cassidy <i>y col.,</i> 1996); en contraparte en los sistemas de tratamiento de aguas subterr&aacute;neas o residuales contaminadas es importante mantener la estabilidad del soporte para evitar el incremento en la formaci&oacute;n de lodos cuya disposici&oacute;n y tratamiento puede incidir en los costos del proceso de tratamiento del agua (Ju&aacute;rez&#45;Ram&iacute;rez <i>y col.,</i> 2011).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Son diversos los materiales que se han usado como soporte para la inmovilizaci&oacute;n de microorganismos con fines ambientales, entre ellos se incluye bios&oacute;lidos, suelos enmendados con carb&oacute;n, arcilla, esti&eacute;rcol o turba. Debido a que dichos materiales presentan una gran variabilidad en su calidad y composici&oacute;n, se ha preferido el uso de pol&iacute;meros naturales que forman matrices porosas tales como el alginato, la k&#45;carragenina y el agar (van Veen <i>y col.,</i> 1997) . Aunque los dos primeros son considerados como los m&aacute;s seguros y efectivos, el alginato de calcio y el agar son los que se han utilizado de manera m&aacute;s amplia. Entre los pol&iacute;meros sint&eacute;ticos que han sido usados como matrices para inmovilizaci&oacute;n con el objetivo de emplearlos en procesos de bioremediaci&oacute;n se puede mencionar el poliuretano (Oh <i>y col.,</i> 2000), el sol gel (Pannier <i>y col.,</i> 2010; Rietti&#45;Shati <i>y col.,</i> 1996), poliacrilonitrilo (Yordanova, <i>y col.,</i> 2009), poliacrilamida (Manohar y Karegoudar, 1998) y alcohol polivinilico (Chitiva y Dussan, 2003; Cunningham <i>y col.,</i> 2004; Zhang <i>y col.,</i> 2007).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Antes de analizar con detalle ejemplos espec&iacute;ficos de la aplicaci&oacute;n de sistemas biol&oacute;gicos inmovilizados en diversos procesos del &aacute;rea ambiental, es necesario revisar algunas caracter&iacute;sticas generales de los soportes que se utilizan con mayor frecuencia, lo que se hace en la siguiente secci&oacute;n.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>3.1 Alginato de calcio</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El alginato es un componente de la pared celular de las algas pardas, est&aacute; formado por dos tipos de unidades monomericas: el acido &#946;(1&#45;4) D&#45;manuronico y el acido &#945;(1,4)&#45;L&#45;guluronico. Cuando el alginato es expuesto a la presencia de iones calcio se forma una red de entrecruzamiento con los pol&iacute;meros del &aacute;cido gulur&oacute;nico, que permite la inmovilizaci&oacute;n de c&eacute;lulas (Smidsr&oslash;d y Skjak&#45;Brka, 1990).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inmovilizaci&oacute;n de microorganismos en alginato de calcio es el m&eacute;todo m&aacute;s usado, debido a que en su preparaci&oacute;n no se requieren condiciones de reacci&oacute;n extremas, es de bajo costo y de baja toxicidad (Sanjay <i>y col.,</i> 2008; de&#45;Bashan y Bashan, 2010). Ha sido considerado como un m&eacute;todo promisorio para incrementar la degradaci&oacute;n de compuestos t&oacute;xicos debido a que las c&eacute;lulas atrapadas en el interior de la matriz est&aacute;n protegidas contra ambientes adversos, lo cual no sucede cuando las c&eacute;lulas son retenidas en la superficie de un soporte. Adicionalmente, las c&eacute;lulas inmovilizadas son f&aacute;cilmente liberadas al medio por la disoluci&oacute;n del gel en presencia de agentes quelantes del calcio, tales como citrato de sodio y fosfato de potasio (Mohammad y Bustard, 2008), lo cual permite cuantificar la biomasa formada.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A pesar de sus caracter&iacute;sticas el uso del alginato de calcio se ha considerado adecuado solo para pruebas de laboratorio pero no para la aplicaci&oacute;n en campo, debido a su baja resistencia mec&aacute;nica, incompatibilidad con ciertos iones y su susceptibilidad a la biodegradaci&oacute;n (de&#45;Bashan y Bashan, 2010). No obstante, recientes investigaciones han sugerido que la resistencia mec&aacute;nica de las perlas de alginato de calcio puede incrementarse mediante la adici&oacute;n de silica, logrando la inmovilizaci&oacute;n de c&eacute;lulas e incluso de biomol&eacute;culas (Coradin <i>y col.,</i> 2003); Otra alternativa para el uso exitoso de perlas de alginato se ha logrado usando 4.9% de alginato y 4% de soluci&oacute;n de estronio en sistemas marinos (Moreira <i>y col.,</i> 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la pr&aacute;ctica el alginato de calcio ha sido ampliablemente utilizado para el atrapamiento de enzimas y c&eacute;lulas usadas para la remoci&oacute;n de iones met&aacute;licos por absorci&oacute;n en la biomasa de algas (de&#45;Bashan y Bashan, 2010) u hongos (Xiangliang <i>y col.,</i> 2005); remoci&oacute;n de colorantes (Chen y Lin, 2007) y compuestos fenolicos (Dursun y Tepea, 2005), entre otros compuestos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>3.2&nbsp;Agar</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El agar es una mezcla de polisacaridos extra&iacute;da a partir de diferentes especies de algas rojas, principalmente del genero <i>Gracilaria.</i> El polisacarido fundamental es la agarosa que posee propiedades gelificantes y tiene una estructura alternante de 3,6 anhidro&#45;L&#45;galactosa (3,6&#45;AG) y D&#45;galactosa.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El agar es ampliamente usado como aditivo alimenticio y en numerosas aplicaciones medicas, farmac&eacute;uticas y biotecnologicas (Pulz y Gross, 2004). Aunque t&iacute;picamente se ha utilizado como agente gelificante en cultivos microbianos, su uso como soporte para inmovilizaci&oacute;n de c&eacute;lulas se ha extendido debido a su nula toxicidad y a las condiciones de reacci&oacute;n suaves que se requieren llevar a cabo la matriz de inmovilizaci&oacute;n. Entre otras ventajas, se puede mencionar la diversidad en la formaci&oacute;n y licuefacci&oacute;n del gel, su estabilidad qu&iacute;mica y t&eacute;rmica, y su capacidad para el entrecruzamiento (Guiseley, 1989).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El agar se ha empleado exitosamente como soporte para preparar biosensores basados en microorganismos para detectar bifenilos, tiosulfunato y SDS en aguas contaminadas, y para la inmovilizaci&oacute;n de microorganismos usados en ensayos de biodegradaci&oacute;n de nafatleno (Manohar y Karegoudar, 1998), fenol (Ju&aacute;rez&#45;Ram&iacute;rez <i>y col.,</i> 2001) y 2,4&#45;Dinitrofenol (Kitova <i>y col.,</i> 2004), entre otros compuestos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>3.3&nbsp;Poliuretano</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El poliuretano es un pol&iacute;mero derivado de la condensaci&oacute;n de poli&#45;isocianatos y polialcoholes. Es qu&iacute;micamente inerte, completamente el&aacute;stico y mecanicamente resistente a la abrasi&oacute;n. Una de las ventajas del poliuretano es su alta porosidad, que permite retener a las c&eacute;lulas sin limitaciones difusionales para el sustrato, el producto e incluso para el ox&iacute;geno (Manohar <i>y col.,</i> 2001; Kadakol <i>y col.,</i> 2010). Los compuestos contaminantes se pueden adsorber de forma reversible al poliuretano. En consecuencia en la fase l&iacute;quida se establecen concentraciones por debajo del nivel de toxicidad, mientras que el compuesto se mantiene disponible para los microorganismos, y por tanto es posible el uso de una concentraci&oacute;n inicial m&aacute;s alta a la que podr&iacute;a fijarse para un cultivo de c&eacute;lulas libres (O'Reilly y Crawford 1989b).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Entre otras cualidades el poliuretano es de f&aacute;cil disponibilidad y manejo para la inmovilizaci&oacute;n de microorganismos, extremadamente vers&aacute;til y de bajo costo, altamente estable y permite una mayor viabilidad de las c&eacute;lulas inmovilizadas durante varios usos, y dadas sus caracter&iacute;sticas se considera aplicable en la destoxificaci&oacute;n de efluentes que contienen contaminantes org&aacute;nicos (Sharanagouda y Karegoudar, 2002; Tallur <i>y col.,</i> 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los primeros trabajos de inmovilizaci&oacute;n en poliuretano emplearon prepol&iacute;meros a partir de los cuales se gener&oacute; el poliuretano que conten&iacute;a a las c&eacute;lulas inmovilizadas. Sin embargo, se tienen evidencias de que los grupos isocianato, producidos durante la polimerizaci&oacute;n de este soporte, pueden tener un efecto toxico sobre las c&eacute;lulas (Branyik <i>y col.,</i> 2000), por lo que una pr&aacute;ctica com&uacute;n ha sido el uso de pol&iacute;meros prefabricados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Algunas de las aplicaciones de microorganismos inmovilizados en espuma de poliuretano ha sido en la degradaci&oacute;n de compuestos fenolicos (O'Reilly y Crawford, 1989b), 2&#45;metilnaftaleno (Sharanagouda y Karegoudar, 2002) y carburan fenol (Kadakol <i>y col.,</i> 2010), por citar algunos compuestos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>3.4 Matrices de silica gel</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las matrices de silica se forman por reacciones de hidr&oacute;lisis y policondensaci&oacute;n que ocurren en soluciones acuosas a temperatura ambiente, que generan una estructura porosa inorg&aacute;nica cuando las c&eacute;lulas son adicionadas a una soluci&oacute;n de silica prehidrolizada de tetraetoxisilicato o metoxisilicato (Bhatia <i>y col.,</i> 2000).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La qu&iacute;mica sol&#45;gel, basada en reacciones inorg&aacute;nicas de polimerizaci&oacute;n, ha sido empleada en diferentes &aacute;reas de investigaci&oacute;n, y debido a las condiciones en las cuales ocurre la reacci&oacute;n puede aplicarse para el atrapamiento de diferentes sistemas biol&oacute;gicos. La principales caracter&iacute;sticas de los materiales usados en los m&eacute;todos sol&#45;gel, y que los hacen adecuados para aplicaciones en biotecnolog&iacute;a ambiental, son su bajo costo, su car&aacute;cter hidrof&iacute;lico y su resistencia al ataque microbiano (Bhatia <i>y col.,</i> 2000); adicionalmente son qu&iacute;micamente inertes, presentan una alta estabilidad mec&aacute;nica, t&eacute;rmica y no se disuelven en solventes org&aacute;nicos como ocurre con la mayor&iacute;a de los pol&iacute;meros org&aacute;nicos (Conroy <i>y</i> col., 2000; Nassif <i>y col.,</i> 2003).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A pesar de sus caracter&iacute;sticas, una desventaja de las matrices de silica gel es que durante su formaci&oacute;n por procesos convencionales, se generan matrices con una porosidad promedio menor al tama&ntilde;o de las c&eacute;lulas comunes. A lo que se debe sumar la toxicidad de los alcoholes que se liberan (metanol o etanol) durante las reacciones de hidr&oacute;lisis y condensaci&oacute;n de alcoxidos de silicio Si(OCH<sub>3</sub>)<sub>4</sub>. Con la finalidad de proteger a las c&eacute;lulas de la toxicidad de los compuestos que se forman durante el proceso de inmovilizaci&oacute;n, se ha probado el uso de compuestos qu&iacute;micos que, entre otras caracter&iacute;sticas deseables, deben ser solubles en agua, biocompatibles y mantener la cohesi&oacute;n del gel (Nassif <i>y col.,</i> 2003). El compuesto que mejores resultados ha proporcionado es el glicerol, que incluso puede tener un efecto en el tama&ntilde;o del poro y en el &aacute;rea superficial del gel (&Aacute;lvarez <i>y col.,</i> 2009). Sin embargo, existen pocos estudios sobre el efecto de estos solutos compatibles sobre la estructura del gel y respecto a su funci&oacute;n como una fuente de nutrientes para los microorganismos inmovilizados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recientemente el uso del sol&#45;gel se ha orientado a la inmovilizaci&oacute;n de microorganismos para la elaboraci&oacute;n de biosensores de contaminantes como el fenol (Branyik y Kuncova, 2000); la inmovilizaci&oacute;n de enzimas o p&eacute;ptidos para la detecci&oacute;n de metales pesados (Bahrami <i>y col.,</i> 2007) o compuestos organofosforados (Dosoretz <i>y col.,</i> 1996); y la inmovilizaci&oacute;n de enzimas para la conversi&oacute;n oxidativa de compuestos en medios org&aacute;nicos (Li y Takahashi, 2000), que puede ser de especial inter&eacute;s en el desarrollo de biocatalizadores en el campo de la qu&iacute;mica verde. Otra aplicaci&oacute;n ambiental del solgel, aunque no mediante el uso de microorganismos, fue la formaci&oacute;n de pel&iacute;culas con la incorporaci&oacute;n de oxido de titanio, que fueron aplicadas en la remoci&oacute;n fotocatal&iacute;tica de fenol en soluci&oacute;n acuosa (Mediana&#45;Valtierra <i>y col.,</i> 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En nuestro grupo de trabajo se han realizado varias pruebas para la inmovilizaci&oacute;n de hongos con algunos de los soportes mencionados. Al respecto, inmovilizamos en sol&#45;gel pellets de <i>Phanerochaetechrysosporium</i> y <i>Asperguillis niger</i> que mantuvieron su actividad biol&oacute;gica y su capacidad para producir xilanasas; adem&aacute;s de haber empezado los procesos de inmovilizaci&oacute;n de <i>P. chrysosporium</i> en alginato de calcio con miras para su empleo en la degradaci&oacute;n de fenol, y tenemos un buen avance en los estudios de inmovilizaci&oacute;n de <i>Trametes versicolor</i> en poliuretano, con lo que se ha logrado la remoci&oacute;n de colorantes textiles. En la <a href="/img/revistas/rmiq/v11n1/a5f1.jpg" target="_blank">Fig. 1</a> se muestran algunas fotograf&iacute;as de los microorganismos con los que se ha trabajado.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la siguiente secci&oacute;n se hace una revisi&oacute;n de procesos espec&iacute;ficos donde se aplican los microorganismos inmovilizados en los diferentes soportes. A partir de lo anterior se analizan aspectos referentes a la resistencia que &eacute;stos ofrecen a los microorganismos con respecto a la toxicidad de los contaminantes, para concluir la revisi&oacute;n con el an&aacute;lisis de las cuestiones cin&eacute;ticas y difusionales que se presentan en estos sistemas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>4 Los microorganismos inmovilizados en la degradaci&oacute;n de contaminantes</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las aplicaciones de microorganismos inmovilizados en la degradaci&oacute;n de contaminantes se han enfocado principalmente a estudios desarrollados en medios acuosos, que han demostrado que el material usado como soporte puede crear microh&aacute;bitats de protecci&oacute;n (en la superficie o poros del soporte), y funcionar como una fuente temporal de sustratos espec&iacute;ficos para los microorganismos introducidos (Van Veen <i>y</i> col., 1997). Otra ventaja que puede listarse es la facilidad del manejo de las c&eacute;lulas inmovilizadas, que permite minimizar los riesgos de contaminaci&oacute;n durante el transporte, aplicaci&oacute;n y almacenamiento (Park y Chang, 2000).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la d&eacute;cada de los 80 s se dio inici&oacute; a los estudios de aplicaci&oacute;n de c&eacute;lulas inmovilizadas para la degradaci&oacute;n de contaminantes. En la <a href="/img/revistas/rmiq/v11n1/a5t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a> puede observarse que los soportes de uso com&uacute;n son el alginato, el poliuretano y el agar, y en menor proporci&oacute;n el sol&#45;gel. Es importante destacar que las bacterias son los microorganismos com&uacute;nmente empleados en los estudios realizados para degradaci&oacute;n de compuestos t&oacute;xicos con microorganismos inmovilizados, al igual que sucede en los ensayos de biodegradaci&oacute;n de contaminantes con c&eacute;lulas libres. Esto se explica debido a que el inter&eacute;s se ha centrado en el papel que juegan las bacterias del suelo en la degradaci&oacute;n de los compuestos, y en consecuencia se tiene un amplio conocimiento sobre sus rutas metab&oacute;licas y las condiciones en las que &eacute;stas llevan a cabo el proceso. En contraparte, a pesar de que los hongos poseen tambi&eacute;n un alto potencial para la degradaci&oacute;n de contaminantes poco se sabe sobre las enzimas y los mecanismos implicados en el proceso de biodegradaci&oacute;n que llevan a cabo. Debido a lo anterior los estudios de biodegradaci&oacute;n de contaminantes con hongos filamentosos inmovilizados son poco numerosos, a pesar de que el uso de estos microorganismos en la producci&oacute;n de enzimas de inter&eacute;s industrial ha sido exitoso. Por ende, podr&iacute;an representar un &aacute;rea de oportunidad para futuras investigaciones.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>4.1 Resistencia a la toxicidad</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una caracter&iacute;stica fundamental de los microorganismos inmovilizados es su mayor tolerancia a altas concentraciones de sustrato. Esta cualidad es de especial inter&eacute;s cuando se emplean compuestos contaminantes t&oacute;xicos. En este sentido, los primeros trabajos de aplicaci&oacute;n de microorganismos inmovilizados en el &aacute;rea ambiental para degradar compuestos fen&oacute;licos, demostraron que la inmovilizaci&oacute;n confiere una mayor resistencia a los microorganismos, incluso a altas concentraciones del contaminante, que resultan t&oacute;xicas cuando el microorganismo est&aacute; libre en la fase l&iacute;quida. Sin embargo, la respuesta difiere en funci&oacute;n del microorganismo usado. Por ejemplo <i>Pseudomonas putida</i> inmovilizada en alginato de calcio toler&oacute; hasta 3 g L<sup>&#45;1</sup> de fenol sin inhibici&oacute;n aparente, el doble de lo que las c&eacute;lulas libres pudieron soportar (Bettmann y Rehm, 1984). Sin embargo, una cepa de colecci&oacute;n del mismo microorganismo fue capaz de tolerar solo 1.2 g L<sup>&#45;1</sup> de fenol cuando se inmoviliz&oacute; en alginato de calcio (Hannaford y Kuek, 1999), comportamiento similar al demostrado por <i>Escherichia coli</i> inmovilizada, que se inhibio en concentraciones de fenol superiores a 1 g L<sup>&#45;1</sup> de fenol (Keweloh <i>y col.,</i> 1989). En contraparte, en pruebas de remoci&oacute;n de 4&#45;nitrofenol (50 mg L<sup>&#45;1</sup>) por <i>Corynebacterium</i> sp, la protecci&oacute;n por el soporte fue evidente a partir del segundo ciclo de reutilizaci&oacute;n, incluso las c&eacute;lulas mantuvieron su actividad biol&oacute;gica hasta por 10 ciclos (Kotouckov&aacute; <i>y col.,</i> 1997).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Si bien, la protecci&oacute;n de las c&eacute;lulas inmovilizadas por el soporte es un hecho comprobado, una elevada porosidad del soporte puede permitir que el compuesto contaminante ejerza un efecto toxico similar al observado en un cultivo de c&eacute;lulas libres, como se report&oacute; para la degradaci&oacute;n de tricloroetileno por <i>Bacillus</i> sp inmovilizado en agar (Dey y Roy, 2009), o bien en el caso en el que el alginato de calcio cuando pierde estabilidad debido a la presencia de sales de fosfato en el medio (Mohammad y Bustard, 2008; Keweloh <i>y col.,</i> 1989). Aunque esta limitante puede superarse usando una mayor concentraci&oacute;n del soporte durante el proceso de inmovilizaci&oacute;n, se deben tener en cuenta las consecuentes limitaciones difusionales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otra parte, se ha demostrado que la adsorci&oacute;n de los compuestos t&oacute;xicos en la matriz de inmovilizaci&oacute;n juega un papel importante en la reducci&oacute;n de la toxicidad de estos sobre el microorganismo. Se puede citar por ejemplo, la adsorci&oacute;n reversible del pentaclorofenol en poliuretano (O'reilly y Crawford, 1989b) o de fenol en quitosano (Annadurai <i>y col.,</i> 2000), en los cuales fue posible mantener en la fase l&iacute;quida concentraciones del compuesto menores al nivel t&oacute;xico. En el caso de los hidrocarburos del petr&oacute;leo, se ha sugerido que el uso del poliuretano, que tiene una gran capacidad de absorci&oacute;n, presenta un alto potencial en la biorremediaci&oacute;n de hidrocarburos en aguas superficiales. El poliuretano puede prevenir la migraci&oacute;n de los productos que flotan en la superficie y la biodegradaci&oacute;n por los microorganismos inmovilizados se puede llevar a cabo <i>in situ</i> o <i>ex situ</i> (Oh <i>y col.,</i> 2000; Quek <i>y col.,</i> 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>4.2 Estudios cin&eacute;ticos y de difusi&oacute;n</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cin&eacute;tica de biodegradaci&oacute;n de contaminantes por c&eacute;lulas inmovilizadas, tal como sucede en los cultivos desarrollados con c&eacute;lulas libres, es afectada por el pH, la temperatura y la concentraci&oacute;n inicial de contaminante, pero los l&iacute;mites de tolerancia son mayores cuando los microorganismos est&aacute;n inmovilizados (Chung <i>y col.,</i> 2003; Dursun y Tepea, 2005). Una alta concentraci&oacute;n de sustrato inclusive puede tener un efecto positivo en la tasa de biodegradaci&oacute;n. Por ejemplo, ensayos de biodegradaci&oacute;n de fenol en un cultivo semicontinuo en un lecho fluidizado con <i>C. tropicalis</i> (Ju&aacute;rez&#45;Ram&iacute;rez <i>y col.,</i> 2001) demostraron que en concentraciones superiores a 1000 mg L<sup>&#45;1</sup>, la tasa de biodegradaci&oacute;n de fenol por los microorganismos inmovilizados fue mayor a la de las c&eacute;lulas libres.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="/img/revistas/rmiq/v11n1/a5t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a> se muestra una comparaci&oacute;n de la tasa de degradaci&oacute;n de diferentes contaminantes por sistemas microbianos diversos, tanto libres como inmovilizados en soportes como el agar, alginato y el poliuretano. En general, cuando se compara la tasa de degradaci&oacute;n de fenol con c&eacute;lulas libres e inmovilizadas, se observa que a bajas concentraciones de contaminante sucede una cin&eacute;tica de primer orden, de manera tal que la tasa de degradaci&oacute;n resulta mayor con las c&eacute;lulas libres que con las inmovilizadas. Sin embargo, a mayores concentraciones de contaminante este efecto es inverso, y las c&eacute;lulas inmovilizadas resultan mejores para la remoci&oacute;n. A ese respecto, como se se&ntilde;al&oacute; antes, los soportes usados para inmovilizar a las c&eacute;lulas pueden ejercer una cierta protecci&oacute;n ante la toxicidad que les provoca el fenol, debido a que favorecen la formaci&oacute;n de microcolonias dentro de los poros de los soportes, las cuales dificultan la difusi&oacute;n del contaminante dentro de los mismos (Cassidy <i>y col.,</i> 1996); o bien puede suceder que la dificultad que encuentran los contaminantes para difundirse en el soporte modifique la concentraci&oacute;n real de este a la que se enfrenta el microorganismo, disminuyendola, por lo que alcanzan de manera tard&iacute;a la condici&oacute;n de saturaci&oacute;n (Dwyer <i>y col.,</i> 1986). Ambas hip&oacute;tesis se refuerzan al analizar los casos donde se utilizan contaminantes mas t&oacute;xicos, como el carbofurano, el p&#45;cresol o el 2&#45;metilnaftaleno, en los que la tasa de degradaci&oacute;n del contaminante por las c&eacute;lulas libres nunca fue mayor que la de las inmovilizadas, debido probablemente al efecto t&oacute;xico que ejercen estos compuestos <i>per se.</i> De hecho, cuando en estos casos se emplearon las mayores concentraciones del contaminante, se observ&oacute; una considerable disminuci&oacute;n de la velocidad de remoci&oacute;n por las c&eacute;lulas libres, en tanto que la de las c&eacute;lulas inmovilizadas se increment&oacute;.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A partir de lo anterior, se esquematiz&oacute; el mecanismo mediante el cual los contaminantes se difunden hasta llegar a las c&eacute;lulas inmovilizadas, para ser degradados mismo que se muestra en la <a href="#f2">Fig. 2</a>. Este esquema parte del hecho de que generalmente los tratamientos para la degradaci&oacute;n de un contaminante que se encuentra en fase l&iacute;quida se efect&uacute;an en reactores mezclados, en consecuencia el mecanismo de transporte predominante es convectivo (paso 1) y por tanto no limitante. Debido a lo anterior, la biodegradaci&oacute;n del contaminante estar&aacute; solo limitada por la difusi&oacute;n del contaminante y del ox&iacute;geno dentro de la matriz del soporte (paso 2). Esto explica que en bajas concentraciones de contaminante dentro de la matriz del soporte exista en consecuencia una baja concentraci&oacute;n y por tanto una baja tasa de degradaci&oacute;n. Cuando la concentraci&oacute;n en la fase l&iacute;quida se incrementa de forma significativa entonces en el interior del soporte se alcanzaran tambi&eacute;n concentraciones mayores, pero sin llegar al nivel de toxicidad a la que se enfrentan las c&eacute;lulas libres.</font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmiq/v11n1/a5f2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En relaci&oacute;n al an&aacute;lisis cin&eacute;tico de degradation de contaminantes por c&eacute;lulas inmovilizadas, se acostumbra tomar como base los modelos cin&eacute;ticos que describen este proceso en cultivos con c&eacute;lulas libres. Por ejemplo, el consumo de ox&iacute;geno durante la oxidaci&oacute;n de metano por <i>Hansenula polymorpha</i> fue explicado bas&aacute;ndose en un modelo desarrollado para describir la cin&eacute;tica de difusi&oacute;n de ox&iacute;geno en un pellet fungico (Hiemstra <i>y col.,</i> 1983). As&iacute;, se encontr&oacute; que el coeficiente de difusi&oacute;n en la matriz de alginato de bario fue un 25% del valor reportado en agua, y que un incremento de la densidad celular en la matriz polimerica limita la difusi&oacute;n de ox&iacute;geno desde la fase l&iacute;quida hacia el interior del gel, lo que finalmente influye en la velocidad de oxidaci&oacute;n del metano por las c&eacute;lulas inmovilizadas. En un estudio similar, la oxidaci&oacute;n de propeno por Mycobacterium inmovilizada en alginato de calcio fue explicada a partir del modelo de Michaelis&#45;Menten suponiendo una cin&eacute;tica de pseudo&#45;primer orden (dado que las concentraciones iniciales de sustrato fueron menores a las de la constante de saturaci&oacute;n) y despreciando la inhibici&oacute;n por producto (Brink y Tramper, 1986). En ambos casos, se encontr&oacute; que los datos predichos por el modelo se ajustan de forma adecuada a los datos experimentales, y que la principal resistencia a la transferencia de masa ocurre en los poros.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuando el sustrato tiene un fuerte efecto inhibitorio sobre el crecimiento microbiano se puede emplear el modelo de Haldane (Dwyer <i>y col.,</i> 1986; Pallerla y Chambers, 1998; Dursun y Tepea, 2005). Sin embargo, la aplicabilidad de los modelos depende de las caracter&iacute;sticas particulares del sistema. En la biodegradaci&oacute;n de fenol por <i>P. putida</i> inmovilizada en alginato de calcio, en una concentraci&oacute;n de fenol superior a 750 ppm, se observo que el comportamiento de la reacci&oacute;n se desv&iacute;a del modelo de MichaelisMenten, probablemente por efecto de la difusi&oacute;n intrapart&iacute;cula (Bandhyopadhyay <i>y col.,</i> 2001). Si bien el proceso global de biodegradaci&oacute;n en un sistema inmovilizado est&aacute; gobernado por la difusi&oacute;n intrapart&iacute;cula y la reacci&oacute;n qu&iacute;mica (Chung <i>y col.,</i> 2003), se ha identificado a la difusi&oacute;n intrapart&iacute;cula como el paso limitante (Annadurai <i>y col.,</i> 2000). De ah&iacute; que los modelos m&aacute;s acertados para describir las cin&eacute;ticas de biodegradaci&oacute;n deban considerar tanto el termino de reacci&oacute;n como el de la difusi&oacute;n, como es el modelo de reacci&oacute;n&#45;difusi&oacute;n propuesto por Xiaoqiang <i>y col.</i> (2006) para describir la biodegradaci&oacute;n de fenol por Alcaligenes faecalis inmovilizadas en poliuretano. Para una revisi&oacute;n detallada sobre los principios fundamentales de transferencia de masa en sistemas de c&eacute;lulas inmovilizadas se pueden consultar los trabajos relacionados con microorganismos de inter&eacute;s en la industria alimentaria (Raytchinova, 2011).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>4.3 Comparaci&oacute;n de soportes</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aunque el tipo de soporte utilizado para la inmovilizaci&oacute;n puede tener efecto sobre la degradaci&oacute;n de los contaminantes org&aacute;nicos, debido principalmente a su porosidad, son escasos los estudios de comparaci&oacute;n de la eficiencia de degradaci&oacute;n con diferentes matrices y no permiten establecer una relaci&oacute;n entre el tipo de soporte y la eficiencia lograda en la biodegradaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la biodegradaci&oacute;n de fenol con una concentraci&oacute;n inicial de 2 gL<sup>&#45;1</sup>, en un reactor "airlift" con <i>Pseudomonas</i> sp inmovilizada en alginato o poliacrilamida, se encontr&oacute; que la bacteria inmovilizada fue capaz de degradar el fenol en menos de dos d&iacute;as, mostrando una mayor eficiencia en poliacrilamida, en tanto que las c&eacute;lulas libres no fueron capaces de crecer en esa concentraci&oacute;n de fenol (Bettmann y Rehm, 1984). Posteriormente se demostr&oacute; que la degradaci&oacute;n de fenol ocurrio de forma efectiva en un reactor de lecho empacado, aunque se presentaron limitaciones en la difusi&oacute;n del sustrato hacia el interior del gel, debido al tama&ntilde;o del poro (1 a 10 nm) de la silica gel, por lo que la degradaci&oacute;n fue menos eficiente en comparaci&oacute;n a la obtenida cuando el consorcio fue inmovilizado en poliuretano (Br&aacute;nyik <i>y col.,</i> 2000).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Karigar <i>y col.</i> (2006) compararon la eficiencia de degradaci&oacute;n de fenol (22mM) por <i>Arthrobacter citreus</i> inmovilizado en alginato y en agar, encontrando una respuesta similar en la remoci&oacute;n de fenol y una actividad de degradaci&oacute;n continua hasta por una semana con ambos soportes. Sin embargo, en los resultados reportados en la degradaci&oacute;n de TCE por <i>Bacillus</i> sp, se demostr&oacute; que el alginato de calcio fue una mejor matriz que el agar para la inmovilizaci&oacute;n del microorganismo, debido a que la actividad de degradaci&oacute;n se preserv&oacute; por un mayor n&uacute;mero de ciclos (Dey y Roy, 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados obtenidos en la degradaci&oacute;n de naftaleno demostraron que la inmovilizaci&oacute;n de <i>Pseudomonas</i> sp en poliuretano fue mas eficiente comparada con la obtenida usando como soporte alginato de calcio, agar y poliacrilamida (Manohar <i>y</i> col., 2001). Como se se&ntilde;alo anteriormente, debido a su resistencia mec&aacute;nica y su porosidad el poliuretano facilita la transferencia de ox&iacute;geno, la difusi&oacute;n de los compuestos y posee una mayor resistencia mec&aacute;nica que impide que las c&eacute;lulas se han liberadas del soporte durante el cultivo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En otro estudio comparativo de matrices para la degradaci&oacute;n de 2&#45;metilnaftaleno por <i>Pseudomonas</i> sp se demostr&oacute; que el mejor soporte es el poliuretano, comparado contra agar, alginato y alcohol polivin&iacute;lico (Sharanagouda y Karegoudar, 2002). En ese trabajo se report&oacute; que el microorganismo inmovilizado fue capaz de degradar de 25 a 50 mM de 2&#45;metilnaftaleno y que en esas condiciones las c&eacute;lulas son reusables hasta por 30 ciclos sin p&eacute;rdida de actividad. Resultados similares se reportaron en la biodegradaci&oacute;n de p&#45;cresol por <i>Bacillus</i> sp en un cultivo usando como soportes alginato de calcio, agar, poliacrilamida y poliuretano (Tallur <i>y col.,</i> 2009). Las c&eacute;lulas inmovilizadas en poliuretano fueron reutilizadas por mas de 35 ciclos sin perdidas de actividad, y mostraron mayor tolerancia a cambios de pH, temperatura e incluso a altas concentraciones de p&#45;cresol. En la biodegradaci&oacute;n de carburan fenol por <i>Klebsiella pneumoniae</i> en un cultivo batch, Kadakol <i>y col.</i> (2010) reportaron el agotamiento casi total del compuesto, que fue explicado en t&eacute;rminos de la porosidad, resistencia mec&aacute;nica e hidrofobicidad del poliuretano.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En lo que respecta a la comparaci&oacute;n del comportamiento de degradaci&oacute;n del contaminante por las c&eacute;lulas inmovilizadas en los distintos soportes, los resultados indican que el poliuretano es la mejor opci&oacute;n para ser utilizado como soporte para la inmovilizaci&oacute;n, independientemente del contaminante utilizado. Esto puede deberse a las diferencias en la estabilidad mec&aacute;nica de los diferentes soportes (Sharanagouda <i>y col.,</i> 2002), lo que indica el potencial de estos materiales en la inmovilizaci&oacute;n de c&eacute;lulas para empleo en el &aacute;rea ambiental.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo a lo anteriormente expuesto es evidente que los modelos cin&eacute;ticos cl&aacute;sicos son aplicables cuando en el sistema el efecto de la difusi&oacute;n intrapart&iacute;cula no es el paso limitante, condici&oacute;n que puede lograrse variando el tama&ntilde;o de poro sin que ello comprometa la estabilidad y resistencia mec&aacute;nica del soporte.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dentro del &aacute;rea ambiental, un aspecto que continua siendo importante es el tratamiento de suelos contaminados. A ese respecto, el uso de sistemas inmovilizados sigue siendo un tema poco explorado, como se muestra en la siguiente secci&oacute;n, donde adem&aacute;s se discute lo que sucede con respecto a los problemas de difusi&oacute;n en dichos sistemas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>5 Degradaci&oacute;n de contaminantes org&aacute;nicos en suelo por microorganismos inmovilizados</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como se se&ntilde;al&oacute; anteriormente los trabajos de biodegradaci&oacute;n de contaminantes por c&eacute;lulas inmovilizadas se han realizado en medios acuosos, ya que estos se aplican com&uacute;nmente en el tratamiento de efluentes. En lo referente a los sistemas de degradaci&oacute;n de contaminantes en suelos, pese a que se reconocen las ventajas de aplicar microorganismos inmovilizados, se tienen pocos reportes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con respecto al uso de soportes convencionales para la inmovilizaci&oacute;n de microorganismos la lista es poco numerosa, y en general se trata de trabajos realizados a nivel de laboratorio. Los enfoques han sido variados, por ejemplo se ha sugerido el uso de soportes multicapa, conformados por agar, alginato o k&#45;carragenina cubiertos de una capa protectora de poliuretano, que permiten el establecimiento de condiciones adecuadas para alcanzar una alta densidad celular en el interior del soporte, donde los microorganismos pueden llevar a cabo su actividad de degradaci&oacute;n conforme el sustrato difunda hacia el soporte (Middeldorp <i>y col.,</i> 1990).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En otros trabajos se han usado las t&eacute;cnicas convencionales para la inmovilizaci&oacute;n de los microorganismos. Briglia <i>y col.</i> (1990) inmovilizaron <i>Rhodococcus chlorophenolicus</i> y <i>Flavobacterium</i> sp en poliuretano para estudiar la degradaci&oacute;n de pentaclorofenol en un suelo natural; los resultados obtenidos demostraron la mineralizaci&oacute;n del pentaclorofenol en el suelo y la presencia de c&eacute;lulas similares a <i>R. chlorophenolicus</i> en el poliuretano despu&eacute;s de un a&ntilde;o de la inoculaci&oacute;n. Su <i>y col.</i> (2006) inmovilizaron <i>Bacillus</i> sp. SB02 y <i>Mucor</i> sp. SF06 en vermiculita por adsorci&oacute;n f&iacute;sica, logrando una degradaci&oacute;n del 95.3% de benzo(a)pireno en 42 d, resultados considerablemente mejores a los logrados con las c&eacute;lulas libres. Karabika <i>y col.</i> (2009) realizaron pruebas en matraces Erlenmeyer de 250 mL que conten&iacute;an 50 g de suelo, adicionado con 100 ppm de pireno y 10<sup>6</sup> c&eacute;lulas g<sup>&#45;1</sup> de suelo, inmovilizadas en una mezcla de alginato de calcio y almidon de m&aacute;z. Aunque las c&eacute;lulas libres mostraron una mayor biodegradaci&oacute;n de pireno que las c&eacute;lulas inmovilizadas, estas &uacute;ltimas mostraron una mayor tolerancia al contaminante y mantuvieron su capacidad de biodegradaci&oacute;n y su viabilidad hasta por un a&ntilde;o de almacenamiento a 4&deg;C.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El uso de alcohol polivin&iacute;lico como soporte para inmovilizaci&oacute;n de microorganismos en el &aacute;rea ambiental se ha usado b&aacute;sicamente en sistemas de tratamientos de agua aplicados a la inmovilizaci&oacute;n de bacterias metanogenicas (Hanaki <i>y col.,</i> 1994) e inmovilizaci&oacute;n de lodos activados (Takizawa <i>y</i> col., 1996), en este &uacute;ltimo caso se han encontrado diversas limitaciones que han sido superadas mediante el uso de mezclas con otros agentes gelificantes. Por ejemplo, la capacidad del alcohol polivin&iacute;lico para retener suficiente humedad pudo superarse al generar hidrogeles complejos de alcohol polivin&iacute;lico y alginato de calcio. (Doria&#45;Serrano <i>y col.,</i> 2002). Posteriormente este hidrogel complejo (fue aplicado para desarrollar un sistema de degradaci&oacute;n de fenol con operaci&oacute;n en la modalidad de cultivo continuo, aunque se report&oacute; como una desventaja a considerar para investigaciones futuras el hecho de que la matriz puede ser inestable estructuralmente hablando (Hern&aacute;ndez&#45;Esparza <i>y col.,</i> 2006). Zhang <i>y col.,</i> (2007) mediante la adici&oacute;n de ortofosfato lograron resolver la aglomeraci&oacute;n de las perlas de alcohol polivin&iacute;lico y la toxicidad que se presentan cuando este se usa mezclado con acido borico. Partiendo de las primeras aplicaciones ambientales del alcohol polivinilico, Cunningham <i>y col.,</i> (2004) demostraron su uso exitoso en la remoci&oacute;n de diesel en una biopila a escala de laboratorio al incorporar un material hidrofobico durante la formaci&oacute;n de la matriz del soporte. En este trabajo los autores sugieren que una ventaja de este soporte es su baja degradabilidad, que puede garantizar que aunque sera eventualmente degradado, esto no sucedera durante la fase activa de bioremediaci&oacute;n, cuando el metabolismo microbiano debe ser encauzado a la degradaci&oacute;n del diesel. Si bien la resistencia mec&aacute;nica del soporte fue adecuada para las biolpilas a escala de laboratorio (con un mezclado manual) no es posible predecir si dicha estabilidad puede mantenerse en una escala mayor.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El uso de c&eacute;lulas inmovilizadas tambi&eacute;n se ha extendido a sistemas de tratamiento de dos fases, como es el reactor de suelo en suspensi&oacute;n a nivel de laboratorio. Li <i>y col.</i> (2005) estudiaron la remoci&oacute;n de fenantreno y pireno por la bacteria <i>Zoogloea</i> sp inmovilizada en un soporte compuesto por alcohol polivinilico, alginato de sodio y carbon activado. Se demostr&oacute; que al introducir las c&eacute;lulas inmovilizadas en el reactor con un suelo no esterilizado, la biodegradaci&oacute;n de los compuestos era el doble de la obtenida con las c&eacute;lulas libres, y ligeramente menor a la obtenida cuando se uso un suelo esterilizado. Wang <i>y col.</i> (2008) inmovilizaron <i>Trichoderma</i> sp., <i>A.niger</i> y <i>Fusarium</i> sp. en un soporte compuesto por alcohol polivinilico, alginato de sodio y carbon activado, para probarlos en la degradaci&oacute;n de pireno y benzo(a)pireno como pares o tr&iacute;adas. En un cultivo de suelo en suspensi&oacute;n con una concentraci&oacute;n de 100 mg kg<sup>&#45;1</sup> la mejor degradaci&oacute;n (81% de pireno y 43% de benzo(a)pireno despu&eacute;s de 240 h) se logro con la mezcla de <i>A. niger</i> y <i>Fusarium</i> sp. Esos resultados demostraron que los hongos inmovilizados fueron mas eficientes que las c&eacute;lulas libres suspendidas para la biodegradaci&oacute;n de los compuestos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Otras alternativas han sido el uso de arcillas para la inmovilizaci&oacute;n de <i>Alcaligenes</i> sp A 7&#45;2 aplicado en la biodegradaci&oacute;n de 4&#45;clorofenol en un suelo arenoso, usando un percolador (Balfanz y Rehm, 1991) o en un reactor de lecho empacado (Westmeier y Rehm, 1987). Este &uacute;ltimo sistema tambi&eacute;n fue aplicado en la degradaci&oacute;n de 2&#45;cloroetanol por <i>P. putida</i> US2 (Overmeyer y Rehm, 1995) y acido dicloroacetico por <i>Xanthobacter autotrophicus</i> (Meusel y Rehm, 1993).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se puede mencionar tambi&eacute;n el trabajo de Rubilar <i>y col.,</i> (2011), en el que emplearon <i>P. chrysospoiurm</i> y <i>Anthracophyllum discolor</i> inmovilizados en granos de trigo para remover pentaclorofenol de un suelo con una concentraci&oacute;n inicial de 350 mg Kg de suelo<sup>&#45;1</sup>. Los investigadores reportaron un incremento de la biodegradaci&oacute;n en ensayos realizados en matraces con suelo contaminado, y se&ntilde;alaron que en el caso particular de los hongos de la pudrici&oacute;n blanca, los materiales lignocelul&oacute;sicos usados como soporte para inmovilizaci&oacute;n tambi&eacute;n pueden funcionar como fuente de nutrientes, y por ende promover la producci&oacute;n de enzimas asociadas a la degradaci&oacute;n de contaminantes, adem&aacute;s de dar protecci&oacute;n a la c&eacute;lula ante diferentes condiciones de estr&eacute;s.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A trav&eacute;s del an&aacute;lisis de los trabajos citados es evidente que existe una falta de informaci&oacute;n sobre el transporte de contaminantes en sistemas inmovilizados cuando se realizan estudios de biodegradaci&oacute;n en suelos. Sobre todo el panorama podr&iacute;a tornarse m&aacute;s complejo cuando en el sistema se usan soportes de tipo hidrof&iacute;lico y los contaminantes son hidrof&oacute;bicos. Considerando esta incompatibilidad Cunningham <i>y col.,</i> (2004) incorporaron un material oleof&iacute;lico en la preparaci&oacute;n del soporte de inmovilizaci&oacute;n, que favoreci&oacute; el consumo del diesel, sin embargo los autores reconocen que hay muchos cuestionamientos no resueltos acerca de la difusividad de los n&#45;alcanos dentro de la matriz del soporte.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="#f3">Fig. 3</a> se muestra una representaci&oacute;n esquem&aacute;tica en la transferencia de masa de un contaminante hidrof&oacute;bico que est&aacute; sorbido en un suelo y que debe difundir hacia el soporte donde se encuentran los microorganismos. En sistemas s&oacute;lidos convencionales cuando el contaminante est&aacute; sorbido en los microporos del suelo se sabe (Medina&#45;Moreno <i>y col.,</i> 2009) que el paso limitante es la difusi&oacute;n en los poros de la matriz del suelo (paso 1), pero en los sistemas inmovilizados como se describe a continuaci&oacute;n puede presentarse otro paso limitante. Una vez que el contaminante ha sido transportado hacia la fase l&iacute;quida circundante a la part&iacute;cula de suelo, la presencia de agentes de tensi&oacute;n superficial producidos por los microorganismos, puede favorecer su disoluci&oacute;n y difusi&oacute;n en la fase liquida (paso 2) para alcanzar el soporte. En este punto surge una resistencia adicional en los sistemas inmovilizados. El compuesto es transportado s&oacute;lo por difusi&oacute;n trav&eacute;s de los poros del soporte (paso 3). En la matriz del soporte los contaminantes pueden quedar sorbidos en la pared del poro a trav&eacute;s de sus componentes polares, dejando los extremos no polares en el espacio poroso. Aqu&iacute;, la presencia de tensoactivos puede incrementar la transferencia de masa favoreciendo el consumo y transporte difusivo de contaminantes a trav&eacute;s de la matriz del soporte para llegar a los microorganismos.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmiq/v11n1/a5f3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El esquema antes propuesto puede ser v&aacute;lido para cualquier sustrato insoluble, incluyendo el ox&iacute;geno. Los problemas difusionales que se mencionan pueden minimizarse a trav&eacute;s del control del tama&ntilde;o del poro del soporte optimizando los procesos de inmovilizaci&oacute;n.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El uso de microorganismos inmovilizados ha sido ampliamente explorado, tanto a nivel industrial como de investigaci&oacute;n, pero en el campo de la biotecnolog&iacute;a ambiental a&uacute;n queda mucho por hacer. En lo que respecta a los soportes que se han utilizado para este fin, el poliuretano podr&iacute;a considerarse como el mas eficiente, debido a su alta resistencia y porosidad. Sin embargo, tambi&eacute;n se han probado diversos soportes de tipo natural, por considerarse mas adecuados debido a su biodegradabilidad. Aunque dichos soportes han mostrado su factibilidad para inmovilizar microorganismos y usarlos en distintos procesos ambientales, todav&iacute;a existe la necesidad de profundizar en los estudios que permitan mejorar su resistencia mec&aacute;nica, o bien en la b&uacute;squeda de microorganismos que eventualmente puedan degradar el poliuretano, y que al ser incorporados en el sistema de inmovilizaci&oacute;n garanticen la desaparici&oacute;n del soporte del sitio a tratar una vez que se ha concluido la fase de degradaci&oacute;n del contaminante.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En lo referente a los aspectos cin&eacute;ticos, a&uacute;n cuando ya se ha trabajo en el tema, se requiere el desarrollo de estudios minuciosos de los fen&oacute;menos de transferencia y de los aspectos cin&eacute;ticos que rigen el consumo de contaminantes en sistemas inmovilizados, para la generaci&oacute;n de expresiones y modelos matematicos que expliquen la degradaci&oacute;n de contaminantes en sistemas de tratamiento de aguas y suelos contaminados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por &uacute;ltimo, aunque se han aprovechado las bondades del uso microorganismos inmovilizados en algunos procesos ambientales, son pocos los estudios de aplicaci&oacute;n de estos en suelo, debido probablemente a las complicaciones que podr&iacute;an encontrarse al llevar los procesos a un tratamiento a gran escala. Mas aun, es necesario realizar pruebas en campo que permitan establecer la factibilidad t&eacute;cnica y econ&oacute;mica del uso de microorganismos inmovilizados para remover del suelo compuestos contaminantes de forma segura y factible, con lo que sera posible el desarrollo de las tecnolog&iacute;as adecuadas para tal fin.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ahamad, P.Y.A. y Kunhi, A.A.M. (2011). Enhanced degradation of phenol by <i>Pseudomonas</i> sp. CP4 entrapped in agar and calcium alginate beads in batch and continuous processes. <i>Biodegradation 22,</i> 253&#45;265.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556182&pid=S1665-2738201200010000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">&Aacute;lvarez, G.S., Foglia, M.L., Copello, G.J., Desimone, MF. y Diaz, LE. (2009). Effect of various parameters on viability and growth of bacteria immobilized in sol&#45;gel&#45;derived silica matrices. <i>Applied Microbiology and Biotechnology 82,</i> 639&#45;646.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556184&pid=S1665-2738201200010000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Annadurai, G., Rajesh B.S., Mahesh, K.P.O. y Murugesan, T. 2000. Adsorption and biodegradation of phenol by chitosan&#45;immobilized <i>Pseudomonas putida</i> (NICM 2174). <i>Bioprocess and Biosystems Engineering 22,</i> 493&#45;501.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556186&pid=S1665-2738201200010000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Anselmo, A.M., Mateus, M. y Cabral, J.M.S. 1985. Degradation of phenol by immobilized cells of <i>Fusarium flocciferum. Biotechnology Letters 7,</i> 889&#45;894.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556188&pid=S1665-2738201200010000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bahrami, S., Bassi, A. y Yanful, E. (2007). Investigation of sol&#45;gel matrices containing crude metallothionein from <i>Scchizosaccharomyces pombe</i> for water treatment applications. <i>The Journal of Sol&#45;Gel Science and Technology</i> 42,119&#45;126.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556190&pid=S1665-2738201200010000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Balfanz, J. y Rehm, H.J. (1991). Biodegradation of 4&#45;chlorophenol by adsorptive immobilized <i>Alcaligenes</i> sp A 7&#45;2 in soil. <i>Applied Microbiology and Biotechnology 35,</i> 662&#45;668.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556192&pid=S1665-2738201200010000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bandhyopadhyay, K., Das, D., Bhattacharyya, P. y Maiti, B.R. (2001). Reaction engineering studies on biodegradation of phenol by <i>Pseudomonas putida</i> MTCC 1194 immobilized on calcium alginate. <i>Biochemical Engineering Journal 8,</i> 179&#45;186.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556194&pid=S1665-2738201200010000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Barbeau, L. Deschenes, D. Karamanev, Y. Comeau y Samson, R. 1997. Bioremediation of pentachlorophenol&#45;contaminated soil by bioaugmentation using activated soil. <i>Applied Microbiology and Biotechnology 48,</i> 745&#45;752.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556196&pid=S1665-2738201200010000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Baumgarten W. F., Frommer, T. Mann, I. Pascik, H. Rast, y Schapel, D. <i>January 1987 U.S. patent no. 4,634,672.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556198&pid=S1665-2738201200010000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></i></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bettmann, H. y Rehm, H.J. (1984). Degradation of phenol by polymer entrapped microorganisms. <i>Applied Microbiology and Biotechnology 20,</i> 285&#45;290.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556200&pid=S1665-2738201200010000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Beunink, J. y Rehm, H.J. (1990). Coupled reductive and oxidative degradation of 4&#45;chloro&#45;2&#45;nitrophenol by a co&#45;immobilized mixed culture system. <i>Applied Microbiology and Biotechnology 34,</i> 108&#45;115.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556202&pid=S1665-2738201200010000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bhatia, R.B., Brinker, C.J., Gupta, A.K. y Singh, A.K. (2000). Aqueous sol&#45;gel process for protein encapsulation. <i>Chemical Material 12,</i> 2434&#45;2441.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556204&pid=S1665-2738201200010000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bleve, G., Lezzi, C., Chiriatti, M.A., D'Ostuni, I., Tristezza, M., Venere, D.D., Mita, S., Sergio, L. y Grieco, F. 2011. Selection of non&#45;conventional yeasts and their use in immobilized form for the bioremediation of olive oil mill wastewaters. <i>Bioresource Technology 102,</i> 982&#45;989.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556206&pid=S1665-2738201200010000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Boopathy, R. (2000). Factors limiting bioremediation technologies. <i>Bioresource Technology 74,</i> 63&#45;67.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556208&pid=S1665-2738201200010000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Br&aacute;nyik, T. y Kuncov&aacute;, G. (2000). Changes in phenol oxidation rate of a mixed microbial culture caused by sol&#45;gel immobilization. <i>Biotechnology Letters 22,</i> 555&#45;560.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556210&pid=S1665-2738201200010000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Br&aacute;nyik, T., Kuncov&aacute; G. y Paca J. (2000). The use of silica gel prepared by sol&#45;gel method and polyurethane foam as microbial carriers in the continuous degradation of phenol. <i>Applied Microbiology and Biotechnology 54,</i> 168&#45;172.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556212&pid=S1665-2738201200010000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Br&aacute;nyik, T., Kuncov&aacute; G., P&aacute;ca, J. y Demnerov&aacute; J. (1998). Encapsulation of microbial cells into silica&#45;gel. <i>Journal of Sol&#45;Gel Science and Technology 13,</i> 283&#45;287.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556214&pid=S1665-2738201200010000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Briglia, M., Nurmiaho&#45;Lassila, E.L., Vallini, G., y Salkinoja&#45;Salonen, M. (1990). The survival of the pentachlorophenol&#45;degrading <i>Rhodococcus chlorophenolicus</i> PCP&#45;1 and Flavobacterium sp. in natural soil. <i>Biodegradation 1,</i> 273&#45;281.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556216&pid=S1665-2738201200010000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brink, L.E.S y Tramper, J. (1986). Modelling the effects of mass transfer on kinetics of propene epoxidation of immobilized <i>Mycobacterium</i> cells, 1. Pseudo&#45;one&#45;substrate conditions and negligible product inhibition. <i>Enzyme andMicrobial Technology 8,</i> 281&#45;288.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556218&pid=S1665-2738201200010000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cassidy, M.B., Lee, H. y Trevors, J.T. (1996). Environmental applications of immobilized microbial cells, a review. <i>Journal of Industrial Microbiology 16,</i> 79&#45;100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556220&pid=S1665-2738201200010000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chen, J&#45;P. y Lin, Y&#45;S. (2007). Decolorization of azo dye by immobilized <i>Pseudomonas luteola</i> entrapped in alginate&#45;silicate sol&#45;gel beads. <i>Process Biochemistry 42,</i> 934&#45;942.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556222&pid=S1665-2738201200010000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chitiva, L.U. y Dussan, J. (2003). Evaluaci&oacute;n de matrices para la inmovilizaci&oacute;n de <i>Pseudomonas</i> sp. en biorremediaci&oacute;n de fenol. <i>Revista Colombiana de Biotecnolog&iacute;a 2,</i> 5&#45;10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556224&pid=S1665-2738201200010000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chung, T&#45;P., Tseng, H&#45;Y. y Juang, R&#45;S. 2003. Mass transfer effect and intermediate detection for phenol degradation in immobilized <i>Pseudomonas putida</i> systems. <i>Process Biochemistry 38,</i> 1497&#45;1507.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556226&pid=S1665-2738201200010000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Conroy, J.F.T., Power, M.E, Martin, J., Earp, B., Hosticka, B., Daitch, CH.E. y Norris P.M. (2000). Cells in sol&#45;gels I: a cytocompatible route for the production of macroporous silica gels. <i>Journal of Sol&#45;Gel Science and Technology18,</i> 269&#45;283.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556228&pid=S1665-2738201200010000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Coradin, T., Nassif, N. y Livage, J. (2003). Silicaalginate composites for microencapsulation. <i>Applied Microbiology and Biotechnology 61,</i> 429&#45;434.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556230&pid=S1665-2738201200010000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cunningham, C.J., Ivshina, I.B., Lozinsky, V.I., Kuyukina, M.S. y Philp, J.C. (2004). Bioremediation of diesel&#45;contaminated soil by microorganisms immobilized in polyvinyl alcohol. <i>International Biodeterioration and Biodegradation 54</i>,167&#45;174.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556232&pid=S1665-2738201200010000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">de&#45;Bashan, L.E. y Bashan, Y. (2010). Immobilized microalgae for removing pollutants, Review of practical aspects. <i>Bioresource Technology 101,</i> 1611&#45;1627.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556234&pid=S1665-2738201200010000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dey, K. y Roy, P. (2009). Degradation of Trichloroethylene by <i>Bacillus</i> sp., Isolation strategy, strain characteristics, and cell immobilization. <i>Current Microbiology 59,</i> 256&#45;260.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556236&pid=S1665-2738201200010000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Doria&#45;Serrano, M. C., Riva&#45;Palacio, G., Ruiz&#45;Trevi&ntilde;o, F. A. y Hern&aacute;ndez&#45;Esparza, M. (2002). Poly(N&#45;vinyl pyrrolidone)&#45;Calcium Alginate (PVP&#45;Ca&#45;alg) composite hydrogels: physical properties and activated sludge immobilization for wastewater treatment. <i>Industrial Engineering Chemistry Research 41,</i> 3163&#45;3168.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556238&pid=S1665-2738201200010000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dosoretz, C., Armon, R., Staroswtzky, J. y Rothschild, N. (1996). Entrapment of parathion hydrolase from <i>Pseudomonas</i> spp. in solgel glass. <i>Journal of Sol&#45;Gel Science and Technology 7,</i> 7&#45;1 1.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556240&pid=S1665-2738201200010000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dursun, A.Y. y Tepea, O. (2005). Internal mass transfer effect on biodegradation of phenol by Ca&#45;alginate immobilized <i>Ralstonia eutropha. Journal of Hazardous Materials 126,</i> 105&#45;111.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556242&pid=S1665-2738201200010000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dwyer, D.F., Krumme, M.L., Boyd, S.A. y Tiedje, J.M. (1986). Kinetics of phenol biodegradation by an immobilized methanogenic consortium. <i>Applied Environmental Microbiology 52,</i> 345&#45;351.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556244&pid=S1665-2738201200010000500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ehrdardt, H.M. y Rehm, H.J. (1985). Phenol degradation by microorganisms adsorbed on activated carbon. <i>Applied Microbiology and Biotechnology 21,</i> 32&#45;36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556246&pid=S1665-2738201200010000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fantroussi, S.E. y Agathos, S.N. (2005). Is bioaugmentation a feasible strategy forpollutant removal and site remediation? <i>Current Opinion in Microbiology 8,</i> 268&#45;275.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556248&pid=S1665-2738201200010000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gentry, T.J., Josephson, K.L., y Pepper, I.L. (2004a). Functional establishment of introduced chlorobenzoate degraders following bioaugmentation with newly activated soil. <i>Biodegradation 15,</i> 67.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556250&pid=S1665-2738201200010000500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gentry, T.J., Rensing, Ch. y Pepper, I.L. (2004b). New approaches for bioaugmentation as a Remediation Technology. <i>Critical Reviews in Environmental Science and Technology 34,</i> 447&#45;494.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556252&pid=S1665-2738201200010000500036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Godjevargova, T., Ivanova, D., Alexieva, Z. y Dimov, N. (2003). Biodegradation of toxic organic components from industrial phenol production waste waters by free and immobilized <i>Trichosporon cutaneum</i> R57. <i>Process Biochemistry 38,</i> 915&#45;920.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556254&pid=S1665-2738201200010000500037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Guiseley, K.B. 1989. Chemical and physical properties of algal polysaccharides used for cell immobilization. <i>Enzyme and Microbial Technology 11,</i> 706&#45;716.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556256&pid=S1665-2738201200010000500038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hackel, U., Klein, J., Megnet, R. y Wagner, F. (1975). Immobilization of microbial cells in polymeric matrices. <i>Applied Microbiology Biotechnology 1,</i> 291 293.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556258&pid=S1665-2738201200010000500039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hanaki, K., Hirunmasuwana, S., y Matsuo, T. (1994). Protection of methanogenic bacteria from low pH and toxic materials by immobilization using polyvinyl alcohol. <i>Water Research 28,</i> 877&#45;885.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556260&pid=S1665-2738201200010000500040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hannaford, A.M. y Kuek, C. (1999). Aerobic batch degradation of phenol using immobilized <i>Pseudomonas putida. Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology 22,</i> 121&#45;126.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556262&pid=S1665-2738201200010000500041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hern&aacute;ndez&#45;Esparza, M., Doria&#45;Serrano, M.C., Acero&#45;Salinas, G. y Ruiz&#45;Trevino, F.A. (2006). Removal of high phenol concentrations with adapted activated sludge in suspended form and entrapped in calcium alginate/cross&#45;linked poly(N&#45;vinyl pyrrolidone) hydrogels. <i>Biotechnology Progress 22,</i> 1552&#45;1559.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556264&pid=S1665-2738201200010000500042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hiemstra, H., Dijkhuizen, L. y Harder, W. (1983). Diffusion of oxygen in alginate gels related to the kinetics of methanol oxidation by immobilized <i>Hansenula polymorpha</i> cells. <i>European Journal of Applied Microbiology Biotechnology 18</i>,189&#45;196.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556266&pid=S1665-2738201200010000500043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jack, T.R. y Zajic, J.E. (1977). The immobilization of whole cells. <i>Advances in Biochemical Engineering/Biotechnology</i> 5,125&#45;145.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556268&pid=S1665-2738201200010000500044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jianlong, W., Liping, H., Hanchang, S. y Yi, Q. (2001). Biodegradation of quinoline by gel immobilized <i>Burkholderia</i> sp. <i>Chemosphere 44,</i> 1041&#45;1046.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556270&pid=S1665-2738201200010000500045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ju&aacute;rez&#45;Ram&iacute;rez, C, Ruiz&#45;Ordaz, N., Cristiani&#45;Urbina, E. y Galindez&#45;Mayer, J. (2001). Degradation kinetics of phenol by immobilized cells of <i>Candida tropicalis</i> in a fluidized bed bioreactor. <i>World Journal of Microbiology and Biotechnology</i> 17,697&#45;705.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556272&pid=S1665-2738201200010000500046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kadakol, J.C., Kamanavalli, Ch.M. y Shouche, Y. (2010). Biodegradation of carbofuran phenol by free and immobilized cells of <i>Klebsiella pneumonia</i> ATCC13883T. <i>World Journal of Microbiology Biotechnology 27,</i> 25&#45;29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556274&pid=S1665-2738201200010000500047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Karabika, E., Kallimanis, A., Dados, A., Pilidis, G., Drainas, C. y Koukkou, A.I. (2009). Taxonomic identification and use of free and entrapped cells of a new <i>Mycobacterium</i> sp., strain spyr1 for degradation of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs). <i>Applied Biochemistry and Biotechnology</i> 159,155&#45;167.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556276&pid=S1665-2738201200010000500048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Karigar, Ch., Mahesh, A., Nagenahalli, M. y Yun, D.J. (2006). Phenol degradation by immobilized cells of <i>Arthrobacter citreus. Biodegradation 17,</i> 47&#45;55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556278&pid=S1665-2738201200010000500049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Keweloh, H., Heipieper, H.J. y Rehm, H.J. (1989). Protection of bacteria against the toxicity of phenol by immobilization in calcium alginate. <i>Applied Microbiology and Biotechnology 31,</i> 383&#45;389.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556280&pid=S1665-2738201200010000500050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kitova, A.E., Kuvichkina, T.N, Arinbasarova A.Y y. Reshetilov, A.N. (2004). Degradation of 2,4&#45;dinitrophenol by free and immobilized cells of <i>Rhodococcus erythropolis</i> HL PM&#45;1. <i>Applied Biochemistry and Microbiology 40,</i> 258&#45;261.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556282&pid=S1665-2738201200010000500051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kotouckov&aacute;, L., Vavrik, J., Nemec, M., Plocek, J. y Zdrahal Z. (1997). Use of immobilized cells of the strain <i>Corynebacterium</i> sp. for 4&#45;nitrophenol degradation. <i>Folia Microbiology 42,</i> 509&#45;512.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556284&pid=S1665-2738201200010000500052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lee, C.M., Lu, C.J. y Chuang, M.S. (1994). Effects of immobilized cells on the biodegradation of chlorinated phenols. <i>Water Science Technology 30,</i> 87&#45;90.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556286&pid=S1665-2738201200010000500053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Li, B. y Takahashi, H. (2000). New immobilization method for enzyme stabilization involving a mesoporous material and an organic/inorganic hybrid gel. <i>Biotechnology Letters 22,</i> 1953&#45;1958.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556288&pid=S1665-2738201200010000500054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Li, P., Wang, X., Stagnitti, F., Li, L., Gong, Z., Zhang, H., Xiong, X. y Austin Ch. (2005). Degradation of phenanthrene and pyrene in soil slurry reactors with immobilized bacteria <i>Zoogloea</i> sp. <i>Environmental Engineering Science 22,</i> 390&#45;399.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556290&pid=S1665-2738201200010000500055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lin J&#45;E., Wang, H.J. y Hickey, R.F. (1991). Use of coimmobilized biological systems to degrade toxic organic compounds. <i>Biotechnology and Bioengineering 38</i>, 273&#45;279.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556292&pid=S1665-2738201200010000500056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Linhardt, R.J., Amotz, S., Rugh, S., Markussen, E.K., Thomsen, K., Bigwood, M.P., Naples, J.O., Blattler, W.A., Lambert, J. M. y Senter, P.D. (1987). Patents and literature immobilized biocatalysts. <i>Applied Biochemistry and Biotechnology 14,</i> 121&#45;145.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556294&pid=S1665-2738201200010000500057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Manohar, S. y Karegoudar, T.B. (1998). Degradation of naphthalene by cells of <i>Pseudomonas</i> sp. strain NGK 1 immobilized in alginate, agar and polyacrylamide. <i>Applied Microbiology and Biotechnology 49,</i> 785&#45;792.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556296&pid=S1665-2738201200010000500058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Manohar, S., Kim, S.K. y Karegoudar, T.B. (2001). Enhanced degradation of naphthalene by immobilization of <i>Pseudomonas</i> sp. strain NGK1 in polyurethane foam. <i>Applied Microbiology Biotechnology 55,</i> 311&#45;316.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556298&pid=S1665-2738201200010000500059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Medina&#45;Moreno, S.A., Huerta&#45;Ochoa, S., Lucho&#45;Constantino, C.A., Aguilera&#45;V&aacute;zquez, L., Jim&eacute;nez&#45;Gonz&aacute;lez, A. y Guti&eacute;rrez&#45;Rojas, M. (2009). Modelado de la biodegradaci&oacute;n en biorreactores de lodos de hidrocarburos totales del petr&oacute;leo intemperizados en suelos y sedimentos. <i>Revista Mexicana de Ingenier&iacute;a Qu&iacute;mica 8,</i> 245&#45;258.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556300&pid=S1665-2738201200010000500060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mediana&#45;Valtierra, J., Garc&iacute;a&#45;Servin, J., Frausto&#45;Reyes, C. y Calixto, S. (2005). Encapsulamiento de anatasa comercial en pel&iacute;culas delgadas de TiO2 depositadas sobre micro&#45;rodillos de vidrio para la fotodegradaci&oacute;n del fenol. <i>Revista Mexicana de Ingenier&iacute;a Qu&iacute;mica 4,</i> 191&#45;201</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556302&pid=S1665-2738201200010000500061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Meusel, M. y Rehm, H.J. (1993). Biodegradation of dichloroacetic acid by freely suspended and adsorptive immobilized <i>Xanthobacter autotrophicus</i> GJ10 in soil. <i>Applied Microbiology and Biotechnology 40,</i> 165&#45;171.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556303&pid=S1665-2738201200010000500062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Middeldorp, P.J.M., Briglia, M., y Salkinoja&#45;Salonen, M.S. (1990). Biodegradation of pentachlorophenol in natural polluted soil by inoculated <i>Rhodococcus chlorophenolicus. Microbiology Ecology</i> 20,123&#45;139.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556305&pid=S1665-2738201200010000500063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mishra, S., Jyot, J., Kuhad, R. y Lal, B. (2001). Evaluation of inoculum addition to stimulate it in situ bioremediation of oily&#45;sludge&#45;contaminated soil. <i>Applied and Environmental Microbiology 67,</i> 1675&#45;1681.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556307&pid=S1665-2738201200010000500064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mohammad, B.T. y Bustard, M.T. (2008). Fed batch bioconversion of 2&#45;propanol by a solvent tolerant strain of <i>Alcaligenes faecalis</i> entrapped in Ca&#45;alginate gel. <i>Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology 35,</i> 677&#45;684.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556309&pid=S1665-2738201200010000500065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Moreira, S.M., Moreira&#45;Santos, M., Guilhermino, L., Ribeiro, R., 2006. Immobilization of the marine microalga <i>Phaeodactylum tricornutum</i> in alginate for <i>in situ</i> experiments: bead stability and suitability. <i>Enzyme Microbiology Technology 38,</i> 135&#45;141.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556311&pid=S1665-2738201200010000500066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mrozik, A. y Piotrowska&#45;Seget, Z. (2010). Bioaugmentation as a strategy for cleaning up of soils contaminated with aromatic compounds. <i>Microbiological Research 165,</i> 363&#45;375.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556313&pid=S1665-2738201200010000500067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nair, I.C., Jayachandran, K., Shashidhar, S. (2007). Treatment of paper factory effluent using a phenol degrading <i>Alcaligenes</i> sp. under free and immobilized conditions. <i>Bioresource Technology 98,</i> 714&#45;716.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556315&pid=S1665-2738201200010000500068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Najafpour, R.G. (2007). <i>Biochemical Engineering and Biotechnology.</i> Elsevier, Holanda.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556317&pid=S1665-2738201200010000500069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nassif, N., Roux, C., Coradin, T., Rage, M.N., Bouvet, O.M.M., Livage, J. (2003). A sol&#45;gel matrix to preserve the viability of encapsulated bacteria. <i>Journal Material Chemistry 13,</i> 203&#45;208.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556319&pid=S1665-2738201200010000500070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nawaz, M.S, Franklin, W. y Cerniglia, C.E. (1992). Degradation of acrylamide by immobilized cells of a <i>Pseudomonas</i> sp and <i>Xanthomonas maltophilia. Canadian Journal of Microbiology 39,</i> 207&#45;212.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556321&pid=S1665-2738201200010000500071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Oh, Y&#45;S., Maeng, J. y Kim, S&#45;J. (2000). Use of microorganisms&#45;immobilized polyurethane foams to adsorb and degrade oil on water surface. <i>Applied Microbiology and Biotechnology 54,</i> 418&#45;423.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556323&pid=S1665-2738201200010000500072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">O'Reilly, K.T. y Crawford, R.L. (1989a). Kinetics of p&#45;cresol degradation by an immobilized <i>Pseudomonas</i> sp. <i>Applied EnvironmentalMicrobiology 55,</i> 866&#45;870.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556325&pid=S1665-2738201200010000500073&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">O'Reilly, K.T. y Crawford, R.L. (1989b). Degradation of pentachlorophenol by polyurethane&#45;immobilized <i>Flavobacterium</i> cells. <i>Applied and Environmental Microbiology 55,</i> 2113&#45;2118.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556327&pid=S1665-2738201200010000500074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Overmeyer, C. y Rehm, H.J. (1995). Biodegradation of 2&#45;chloroethanol by freely suspended and adsorbed immobilized <i>Pseudomonas putida</i> US2 in soil. <i>Applied Microbiology and Biotechnology 43,</i> 143&#45;149.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556329&pid=S1665-2738201200010000500075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pallerla, S. y Chambers, R.P. (1998). Reactor development for biodegradation of pentachlorophenol. <i>Catalysis Today 40,</i> 103&#45;111.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556331&pid=S1665-2738201200010000500076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pannier, A., Oehm, C., Fischer, A.R., Werner, P., Soltmann. U. y B&ouml;ttcher, H. (2010). Biodegradation of fuel oxygenates by sol&#45;gel immobilized bacteria <i>Aquincola tertiaricarbonis</i> L108. <i>Enzyme and MicrobialTechnology 47,</i> 291&#45;296.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556333&pid=S1665-2738201200010000500077&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Park, J.K. y Chang, H.N. (2000). Microencapsulation of microbial cells. <i>Biotechnology Advances 18,</i> 303&#45;319.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556335&pid=S1665-2738201200010000500078&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pulz, O. y Gross, W. (2004). Valuable products from biotechnology of microalgae. <i>Applied Microbiology and Biotechnology 65,</i> 635&#45;648.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556337&pid=S1665-2738201200010000500079&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Quek, E., Ting, Y&#45;P., Tan, H.M. (2006). <i>Rhodococcus</i> sp. F92 immobilized on polyurethane foam shows ability to degrade various petroleum products. <i>Bioresource Technology 97,</i> 32&#45;38.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556339&pid=S1665-2738201200010000500080&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Raytchinova K.M. 2011. Immobilization microbial cells in food process fermentation. <i>Food Bioprocess Technology 4,</i> 1089&#45;1118.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556341&pid=S1665-2738201200010000500081&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rietti&#45;Shati, M., Ronen, D. y Mandelbaum, R.T. (1996). Atrazine degradation by <i>Pseudomonas</i> strain ADP entrapped in sol&#45;gel glass. <i>Journal of Sol&#45;Gel Science Technology 7,</i> 77&#45;79.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556343&pid=S1665-2738201200010000500082&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rubilar, O., Bustamante, M., Tortella, G., Cea, M., Gianfreda, L., Acevedo, F. y Diez, M.C. (2011). Bioremediation of a Chilean Andisol contaminated with pentachlorophenol (PCP) by solid substrate cultures of white&#45;rot fungi. <i>Biodegradation</i> 22, 31&#45;41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556345&pid=S1665-2738201200010000500083&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sanjay, K., Asish, M., Pradeep, K., Saptadip, S., Bikash, R. Keshab, C. (2008). Production of xylanase by immobilized <i>Trichoderma reesi</i> SAF3 in Ca&#45;alginate beds. <i>Journal ofIndustrial Microbiology Biotechnology 35,</i> 2445&#45;249.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556347&pid=S1665-2738201200010000500084&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sharanagouda, U. y Karegoudar, T.B. (2002). Degradation of 2&#45;methylnaphthalene by free and immobilized cells of <i>Pseudomonas</i> sp. strain NGK1. <i>World Journal of Microbiology and Biotechnology 18,</i> 225&#45;230.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556349&pid=S1665-2738201200010000500085&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Smidsr&oslash;d O, y Skjak&#45;Brka. G. (1990). Alginate as immobilization matrix for cells. <i>Trends Biotechnology 8,</i> 71&#45;78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556351&pid=S1665-2738201200010000500086&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Su, D. LIa,P., Frank, S. y Xiong, Z. (2006). Biodegradation of benzo&#91;a&#93;pyrene in soil by <i>Mucor</i> sp. SF06 and <i>Bacillus</i> sp. SB02 co&#45;immobilized on vermiculite. <i>Journal of Environmental Sciences 18,</i> 1204&#45;1209.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556353&pid=S1665-2738201200010000500087&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Takizawa, S., Aravinthan, V., y Fujita, K., (1996). Nitrogen removal from domestic waste water using immobilized bacteria. <i>Water Science and Technology 34,</i> 431&#45;440.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556355&pid=S1665-2738201200010000500088&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tallur, P.N., Megadi, V.B. y Ninnekar, H. Z. 2009. Biodegradation of <i>p</i>&#45;cresol by immobilizedcells of <i>Bacillus</i> sp. strain PHN 1. <i>Biodegradation 20,</i> 79&#45;83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556357&pid=S1665-2738201200010000500089&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Valo, R.J, Haggblom, M.H. and Salkinoja&#45;Salonen, M. (1990). Bioremediation of chlorophenol containing simulated groundwater by immobilized bacteria. <i>Water Research 24,</i> 253&#45;258.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556359&pid=S1665-2738201200010000500090&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">van Veen J.D, van Overbeek L.S. y van Elsas J.D. (1997). Fate and activity of microorganisms introduced into soil. <i>Microbiology end Molecular Biology Reviews 61,</i> 121&#45;135.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556361&pid=S1665-2738201200010000500091&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wang, X., Gong, Z., Li, P., Zhang L. y Hu, X. (2008). Degradation of pyrene and benzo(a)pyrene in contaminated soil by immobilized fungi. <i>Environmental Engineering Science 25,</i> 677&#45;684.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556363&pid=S1665-2738201200010000500092&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Westmeier F. y Rehm H.J. (1987). Degradation of 4&#45;chlorophenol in municipal wastewater by adsorptive immobilized <i>Alcaligenes</i> sp. A 72. <i>Applied Microbiology and Biotechnology 26,</i> 78&#45;83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556365&pid=S1665-2738201200010000500093&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Westmeier F. y Rehm, H.J. (1985). Biodegradation of 4&#45;chlorophenol by entrapped <i>Alcaligenes</i> sp A 7&#45;2. <i>Applied Microbiology Biotechnology 22,</i> 301&#45;305.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556367&pid=S1665-2738201200010000500094&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Xiangliang, P., Jianlong, W., y Daoyong, Z. (2005). Biosorption of Pb(II) by <i>Pleurotus ostreatus</i> immobilized in calcium alginate gel. <i>Process Biochemistry 40,</i> 2799&#45;2803.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556369&pid=S1665-2738201200010000500095&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Xiaoqiang, J., Jianping, W., Yan, J., Bai, J. Xianrui, Ch. y Ying, Z. (2006). Modeling for batch phenol biodegradation with immobilized <i>Alcaligenes faecalis. AlChE Journal 52,</i> 1294&#45;1303.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556371&pid=S1665-2738201200010000500096&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yordanova, G., Ivanova, D., Godjevargova, G. y Krastanov, A. (2009). Biodegradation of phenol by <i>Aspergillus awamori</i> NRRL 3112 on modified polyacrylonitrile membrane. <i>Biodegradation 20,</i> 717&#45;726.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556373&pid=S1665-2738201200010000500097&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zhang, Y., Ma, Y., Yang, F. Zhang, Ch, (2009). Continuous acetone&#45;butanol&#45;ethanol production by corn stalk immobilized cells. <i>Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology 36,</i> 1117&#45;1121.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556375&pid=S1665-2738201200010000500098&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zhang L&#45;S, Wu, W&#45;Z, Wang, J&#45;L. (2007). Immobilization of activated sludge using improved polyvinyl alcohol (PVA) gel. <i>Journal of Environmental Sciences 1,</i> 1293&#45;1297.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8556377&pid=S1665-2738201200010000500099&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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