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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Expresión atípica en la detección y cuantificación del virus de Epstein-Barr utilizando PCR en tiempo real]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Background. Epstein-Barr virus (EBV) viral load is useful not only for detection of an active infection but also as a tumor marker for certain malignant forms. In immunocompromised patients it is related to postransplant lymphoproliferative syndrome (PTLS) with an incidence on the order of 1 to 20%. It is recommended to determine viral load in whole blood and plasma to monitor patients at risk for developing PTLS. Real-time polymerase chain reaction (RT-PCR) is a useful tool for this determination. In these determinations the melting curve (Tm) plays an important role because changes in Tm suggest that the target sequence has suffered mutations, although the selected regions for detection and quantification of EBV are highly conserved. We undertook this study to describe the findings of the variations identified in the EBV genome and to perform the detection and quantification in samples of pediatric patients using RT-PCR. Methods. Results from 352 pediatric patients were analyzed retrospectively in whom investigation of the EBV was performed in peripheral blood and plasma by RT-PCR. For detection and quantification of EBV, a 166-bp fragment of the genome was amplified using a design of TIB MOLBIOL and the LightCycler® equipment with a Tm of 68 °C. Results. Of the 352 patients studied, in 132 (37.5%) presence of EBV was detected and quantified the viral load. In five (3.8%) of the positive patients, a change of the Tm was identified Using electrophoresis running in agarose gel, it was proved that the obtained amplification corresponds to the 166-bp fragment. Conclusion. The specific product and size of the amplified remained unchanged; therefore, we there is a high probability of decrease in the concentration of guanine-cytosine in the target sequence because the Tm showed a decrease in all the reported cases. It is required the sequence of the amplification is required to precisely determine the cause of the decrease in the Tm.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culo original</font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Expresi&oacute;n at&iacute;pica en la detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n del virus de Epstein&#45;Barr utilizando PCR en tiempo real</b></font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Atypic expression in the detection and quantification of Epstein&#45;Barr virus using real&#45;time PCR</b></font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Israel Parra&#45;Ortega, Briceida L&oacute;pez&#45;Mart&iacute;nez, Jos&eacute; Luis S&aacute;nchez&#45;Huerta, Armando Vilchis&#45;Ord&oacute;&ntilde;ez, Leticia Barrera D&aacute;vila</b></font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Laboratorio Cl&iacute;nico, Hospital Infantil de M&eacute;xico Federico G&oacute;mez, M&eacute;xico D.F., M&eacute;xico</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Autor de correspondencia:</b><i>    <br> M. en C. Jos&eacute; Luis S&aacute;nchez Huerta</i>    <br> Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:jlshuerta@yahoo.com.mx">jlshuerta@yahoo.com.mx</a></font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fecha de recepci&oacute;n: 18&#45;11&#45;09.    <br>     Fecha de aceptaci&oacute;n: 28&#45;05&#45;10.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Introducci&oacute;n.</i> La carga viral del virus de Epstein&#45;Barr (VEB) no solamente sirve para detectar una infecci&oacute;n activa, sino tambi&eacute;n como marcador tumoral de ciertas formas malignas. En los pacientes inmunocomprometidos est&aacute; relacionado con el s&iacute;ndrome linfoproliferativo postrasplante (SLPT) y la incidencia se encuentra en el orden de 1 a 20%. Se recomienda la determinaci&oacute;n de la carga viral del VEB en sangre total y plasma para dar seguimiento a los pacientes en riesgo de padecer el SLPT; para esto, se utiliza como herramienta la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa en tiempo real (PCR&#45;TR). El objetivo de este trabajo es describir los hallazgos de las variaciones identificadas en el genoma del VEB al realizar la detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n en muestras de pacientes pedi&aacute;tricos, utilizando la tecnolog&iacute;a de PCR&#45;TR.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>M&eacute;todos</i>. Se analizaron retrospectivamente los resultados de 352 pacientes pedi&aacute;tricos a los que se les hab&iacute;a realizado la detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n del VEB en sangre perif&eacute;rica y plasma por medio de PCR&#45;TR. Se amplific&oacute; un fragmento de 166 pb del genoma, utilizando un dise&ntilde;o de la compa&ntilde;&iacute;a TIB MOLBIOL y el equipo LightCycler<sup>&reg;</sup>, con una temperatura espec&iacute;fica de desnaturalizaci&oacute;n (Tm) de 68 &deg;C.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Resultados.</i> De los 352 pacientes estudiados, se detect&oacute; la presencia del VEB en 132 (37.5%) y se cuantific&oacute; la carga viral. En 5 de los pacientes positivos (3.8%), se identific&oacute; un cambio de la Tm. Por medio de electroforesis en gel de agarosa, se comprob&oacute; que el amplificado obtenido corresponde al fragmento de 166 pb.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Conclusiones.</i> Consideramos que puede existir una disminuci&oacute;n en la concentraci&oacute;n de guanina&#45;citosina (G&#45;C) en la secuencia blanco, ya que la Tm sufri&oacute; una disminuci&oacute;n en todos los casos reportados. Sin embargo, se requiere la secuenciaci&oacute;n de los amplificados para determinar con precisi&oacute;n la causa de disminuci&oacute;n en la Tm.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Palabras clave:</b> carga viral, pacientes inmunocomprometidos, s&iacute;ndrome linfoproliferativo postrasplante, virus Epstein&#45;Barr.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Background.</i> Epstein&#45;Barr virus (EBV) viral load is useful not only for detection of an active infection but also as a tumor marker for certain malignant forms. In immunocompromised patients it is related to postransplant lymphoproliferative syndrome (PTLS) with an incidence on the order of 1 to 20%. It is recommended to determine viral load in whole blood and plasma to monitor patients at risk for developing PTLS. Real&#45;time polymerase chain reaction (RT&#45;PCR) is a useful tool for this determination. In these determinations the melting curve (Tm) plays an important role because changes in Tm suggest that the target sequence has suffered mutations, although the selected regions for detection and quantification of EBV are highly conserved. We undertook this study to describe the findings of the variations identified in the EBV genome and to perform the detection and quantification in samples of pediatric patients using RT&#45;PCR.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Methods.</i> Results from 352 pediatric patients were analyzed retrospectively in whom investigation of the EBV was performed in peripheral blood and plasma by RT&#45;PCR. For</font> <font face="verdana" size="2">detection and quantification of EBV, a 166&#45;bp fragment of</font> <font face="verdana" size="2">the genome was amplified using a design of TIB MOLBIOL and the LightCycler<sup>&reg;</sup> equipment with a Tm of 68 &deg;C.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Results.</i> Of the 352 patients studied, in 132 (37.5%) presence of EBV was detected and quantified the viral load. In five (3.8%) of the positive patients, a change of the Tm was identified Using electrophoresis running in agarose gel, it was proved that the obtained amplification corresponds to the 166&#45;bp fragment.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Conclusion.</i> The specific product and size of the amplified remained unchanged; therefore, we there is a high probability of decrease in the concentration of guanine&#45;cytosine in the target sequence because the Tm showed a decrease in all the reported cases. It is required the sequence of the amplification is required to precisely determine the cause of the decrease in the Tm.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> viral load, immunocompromised patients, posttransplant lymphoproliferative syndrome, Epstein&#45;Barr virus.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El virus Epstein&#45;Barr (VEB) fue descubierto por Dennis Burkitt en 1950, mediante el estudio de una forma de c&aacute;ncer que afectaba la mand&iacute;bula de ni&ntilde;os y adolescentes del &Aacute;frica Ecuatorial. Posteriormente, en 1964, Tony Epstein, Ivonne Barr y Burt Achong examinaron las biopsias de tumores extirpados y encontraron un virus parecido a las part&iacute;culas de los herpesvirus y establecieron que este virus (VEB) era el causante de estos tumores.<sup>1</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los VEB son virus grandes (100 a 200 nm de di&aacute;metro) que poseen una nucleoc&aacute;pside con simetr&iacute;a icosa&eacute;drica, rodeada por una cubierta externa que contiene l&iacute;pidos. Su genoma est&aacute; constituido por una mol&eacute;cula de ADN bicatenario de 170 a 175 kpb, y codifica para 100 prote&iacute;nas, aproximadamente. La mol&eacute;cula de ADN est&aacute; flanqueada, en ambos extremos, por un n&uacute;mero variable de repeticiones terminales, cada una de una longitud aproximada de 500 pb.<sup>2</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El VEB es un virus ampliamente distribuido en todo el mundo; se sabe que m&aacute;s del 90% de la poblaci&oacute;n mundial se encuentra infectada por &eacute;ste.<sup>3</sup> El virus entra en el hu&eacute;sped y provoca la infecci&oacute;n, generalmente como resultado de la transmisi&oacute;n oral con un individuo portador.<sup>4</sup> Cuando la infecci&oacute;n por el VEB se presenta durante la infancia, generalmente pasa cl&iacute;nicamente inadvertida, mientras que si se presenta hasta la adolescencia o despu&eacute;s, puede provocar la mononucleosis infecciosa. En los individuos inmunocoprometidos, el VEB ha sido relacionado con enfermedades malignas como el linfoma de Burkitt, carcinoma nasofar&iacute;ngeo, linfoma no Hodgkin y el s&iacute;ndrome linfoproliferativo postrasplante (SLPT) asociado a VEB.<sup>3</sup> Durante la infecci&oacute;n, el VEB infecta principalmente dos tipos de c&eacute;lulas, las c&eacute;lulas epiteliales y los linfocitos B, aunque bajo ciertas circunstancias puede infectar tambi&eacute;n linfocitos T, c&eacute;lulas asesinas naturales, c&eacute;lulas de m&uacute;sculo liso y astrocitos.<sup>4&#45;6</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Inicialmente, el VEB se une a las c&eacute;lulas B por medio de la interacci&oacute;n de la glicoprote&iacute;na gp 350/220, predominante en su envoltura, con el receptor celular tipo 2 del complemento (CR2/CD21).<sup>7,8</sup> La fusi&oacute;n con la membrana celular y la invasi&oacute;n a la c&eacute;lula hu&eacute;sped es facilitada por la uni&oacute;n de una segunda glicoprote&iacute;na viral, gp42, a las mol&eacute;culas MHC clase II y por la adici&oacute;n de otras tres glicoprote&iacute;nas virales gB, gH y gL.<sup>9&#45;11</sup> Las c&eacute;lulas B infectadas por el VEB pueden expresar cuatro diferentes programas de genes y el uso del programa va a depender del estado de diferenciaci&oacute;n y localizaci&oacute;n de las c&eacute;lulas B infectadas. Uno de estos programas es usado para producir virus infecciosos; los otros tres est&aacute;n asociados con la infecci&oacute;n latente y estos no producen virus infecciosos.<sup>4</sup> El VEB produce una infecci&oacute;n latente, con reactivaciones espor&aacute;dicas, debido a que la mayor parte de la poblaci&oacute;n de los linfocitos B humanos infectados mantiene un estado latente de replicaci&oacute;n y expresi&oacute;n gen&eacute;tica viral, pero poca entra a una fase productiva del virus, a menos que el individuo se encuentre inmunosuprimido. Cuando esto sucede, el virus coloniza las c&eacute;lulas del epitelio nasofar&iacute;ngeo donde establece su ciclo l&iacute;tico de replicaci&oacute;n, provocando una respuesta inflamatoria localizada que produce un exudado far&iacute;ngeo. De esta manera, el virus es llevado por v&iacute;a linf&aacute;tica hasta los ganglios locales, lo que ocasiona una viremia que desarrolla la linfadenopat&iacute;a local y generalizada, as&iacute; como esplenomegalia. Los mecanismos patog&eacute;nicos por los que el VEB es capaz de inducir la aparici&oacute;n de tumores, se relacionan con las prote&iacute;nas codificadas por algunos de los genes expresados en la infecci&oacute;n latente. Dichos productos inducen diferentes efectos sobre la c&eacute;lula. Las c&eacute;lulas B infectadas por el VEB pueden expresar un grupo bien definido de genes de latencia que incluye seis ant&iacute;genos nucleares (EBNAs) y tres prote&iacute;nas latentes de membrana (LMP1, LMP2A, LMP2B). De estas prote&iacute;nas de latencia, LMP1 es considerada la oncoprote&iacute;na m&aacute;s fuerte y es esencial para la inmortalizaci&oacute;n de las c&eacute;lulas B, adem&aacute;s de que comparte propiedades funcionales con los miembros de la superfamilia de los receptores del factor de necrosis tumoral, particularmente CD40.<sup>4,12</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La enfermedad que se asocia con mayor</font> <font face="verdana" size="2">frecuencia al VEB en ni&ntilde;os trasplantados es el s&iacute;ndrome linfoproliferativo asociado a trasplante (SLPT), que es la proliferaci&oacute;n neopl&aacute;sica de c&eacute;lulas B en individuos inmunosuprimidos; la incidencia del SLPT se encuentra en el orden del 1 al 20%. El SLPT es una entidad que tiene un amplio espectro de presentaci&oacute;n cl&iacute;nica que va desde formas localizadas a formas sist&eacute;micas, incluyendo el linfoma de c&eacute;lulas B. Entre los factores de riesgo para el desarrollo de SLPT est&aacute;n la combinaci&oacute;n de donador seropositivo/receptor seronegativo, el haber recibido globulina anti&#45;linfocito para inducir la inmunosupresi&oacute;n y el tratamiento con OKT&#45;3 para el rechazo temprano.<sup>13,14</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los laboratorios cl&iacute;nicos se ha incrementado el uso de la carga viral como herramienta para el diagn&oacute;stico y seguimiento de las enfermedades relacionadas con virus. La carga viral del VEB no solamente sirve para detectar una infecci&oacute;n activa, sino tambi&eacute;n como marcador tumoral de ciertas formas malignas. Existen algunas publicaciones que recomiendan la determinaci&oacute;n de la carga viral del VEB en muestras de sangre perif&eacute;rica y plasma, para dar seguimiento a los pacientes en riesgo de padecer el SLPT; sin embargo, no existen valores de corte concordantes a partir de los cuales pueda predecirse el desarrollo de SLPT. Por otra parte, no se tiene informaci&oacute;n suficiente respecto a la posibilidad de desarrollar enfermedad por el VEB cuando se detecta la infecci&oacute;n activa, ya que no todos los pacientes que sufren una infecci&oacute;n activa desarrollan SLPT.<sup>14,15</sup> En estas determinaciones, la temperatura de desnaturalizaci&oacute;n (Tm) juega un papel relevante, ya que sirve para identificar el producto de la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa; cambios en esta Tm permiten suponer que la secuencia blanco ha sufrido mutaciones, a pesar que los genes seleccionados para la detecci&oacute;n del VEB son altamente conservados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este trabajo es describir los hallazgos de las variaciones identificadas en el genoma del VEB al realizar la detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n en muestras de pacientes pedi&aacute;tricos, utilizando la tecnolog&iacute;a de reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa en tiempo real (PCR&#45;TR).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>M&eacute;todos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se analizaron retrospectivamente los resultados de 352 pacientes pedi&aacute;tricos. Se realiz&oacute; la detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n del VEB en sangre perif&eacute;rica y plasma por medio de PCR&#45;TR.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utilizaron 3 mL de sangre perif&eacute;rica anticoagulada con EDTA. Se separ&oacute; una al&iacute;cuota de 400 &micro;L de sangre perif&eacute;rica. La muestra restante se centrifug&oacute; a 3 000 rpm por 10 minutos y se tom&oacute; una al&iacute;cuota de 400 &micro;l de plasma. Para la extracci&oacute;n de ADN se utiliz&oacute; el equipo MagNA Pure Compac<sup>&reg;</sup>, con un juego de reactivos Magna Pure Compact Nucleic Acid Isolation Kit I (Roche Molecular Diagnostics). Se utilizaron los programas de extracci&oacute;n de ADN a partir de 400 &micro;L de sangre perif&eacute;rica, con un volumen de elusi&oacute;n de 200 &micro;L, y el programa de &aacute;cidos nucleicos totales a partir de 400 &micro;L de plasma, con un volumen de elusi&oacute;n de 100 &micro;L. Para la detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n del VEB se amplific&oacute; un fragmento de 166 pb del genoma utilizando un dise&ntilde;o de la compa&ntilde;&iacute;a TIB MOLBIOL y el equipo LightCycler<sup>&reg;</sup>; como control positivo interno se utiliz&oacute; un juego de iniciadores y una sonda que amplifica un fragmento de 278 pb. La mezcla de reacci&oacute;n se llev&oacute; a un volumen final de 20 &micro;l, utilizando 5 &micro;l de ADN extra&iacute;do de cada una de las muestras. Las mezclas de reacci&oacute;n fueron sometidas a un programa de desnaturalizaci&oacute;n de la muestra y activaci&oacute;n de la enzima a una temperatura de 95 &deg;C por 10 minutos, seguido de un programa de 50 ciclos de amplificaci&oacute;n por 5 seg a 95 &deg;C, 10 seg a 60 &deg;C, 15 seg a 72 &deg;C. Despu&eacute;s, una curva de desnaturalizaci&oacute;n para identificar el producto de la PCR derivado del ADN del VEB, con un programa de 1 ciclo por 20 seg a 95 &deg;C, 20 seg a 40 &deg;C y 0 seg a 85 &deg;C, con un incremento de la temperatura de 0.2 &deg;C/seg y en modo de adquisici&oacute;n de fluorescencia continua. El amplificado fue dise&ntilde;ado para tener una temperatura espec&iacute;fica de desnaturalizaci&oacute;n (Tm) de 68 &deg;C. En todos los casos se siguieron las instrucciones del fabricante.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De los 352 pacientes estudiados, se detect&oacute; la presencia de VEB en 132 (37.5%) y se cuantific&oacute; la carga viral. En la <a href="/img/revistas/bmim/v67n5/a4f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a> se muestran 12 curvas de amplificaci&oacute;n, que incluyen los seis puntos de la curva de cuantificaci&oacute;n (10<sup>1</sup> a 10<sup>6</sup>), cinco muestras (de las cuales tres tuvieron un resultado positivo, dos un resultado negativo) y el control negativo. En cinco pacientes, que equivale al 3.8% de los pacientes positivos, se identific&oacute; un cambio en la Tm: un paciente con una Tm de 57.4&deg;C (<a href="/img/revistas/bmim/v67n5/a4f2.jpg" target="_blank">Figura 2a</a>), dos pacientes con 61.5 &deg;C (<a href="/img/revistas/bmim/v67n5/a4f2.jpg" target="_blank">Figura 2b</a>), uno con 62 &deg;C y uno m&aacute;s con 62.5 &deg;C. La cuantificaci&oacute;n del VEB de estos pacientes con Tm disminuida se realiz&oacute; en dos ocasiones y en tiempos diferentes, observ&aacute;ndose el mismo comportamiento, lo que confirma que son hallazgos del VEB y no del proceso anal&iacute;tico. Por otro lado, se realiz&oacute; un corrimiento electrofor&eacute;tico en gel de agarosa y se comprob&oacute; que el amplificado obtenido corresponde al tama&ntilde;o del fragmento esperado del VEB (166 pb) y del control positivo interno un fragmento de 278 pb, que es &uacute;til para demostrar que no existen inhibidores de la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa en la mezcla de reacci&oacute;n (<a href="#f3">Figura 3</a>).</font></p> 	    <p align="center"><a name="f3"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/bmim/v67n5/a4f3.jpg"></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el corrimiento electrofor&eacute;tico demostramos que se obtiene el producto espec&iacute;fico y el tama&ntilde;o del amplificado no sufre variaciones. De acuerdo a los resultados anteriores, se puede concluir que existe una gran probabilidad de disminuci&oacute;n en la concentraci&oacute;n de guanina&#45;citosina (G&#45;C)en la secuencia blanco, ya que la Tm sufri&oacute; una disminuci&oacute;n de 10.6 &deg;C en uno de los casos, 6.5&deg;C en otros dos, 6 &deg;C y 5.5&deg;C en dos m&aacute;s, con respecto a la Tm esperada. Sin embargo, es necesaria la secuenciaci&oacute;n de los amplificados para determinar con precisi&oacute;n la causa de disminuci&oacute;n de la Tm.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con este hallazgo surgen varias preguntas que esperamos aclarar en un futuro: 1) el cambio de la Tm, &iquest;es ocasionado por una disminuci&oacute;n en la concentraci&oacute;n de guanina&#45;citosina (G&#45;C) en la secuencia blanco?; 2) este cambio &iquest;tiene alg&uacute;n efecto en la patogenia del VEB?; y 3) &iquest;tiene alguna repercusi&oacute;n cl&iacute;nica en los pacientes infectados por VEB?</font></p>      <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Kieff E, Rickinson AB. Epstein&#45;Barr virus and its replication. En: Knipe DM, Howley PM, Griffin DE, Lamb RA, Martin MA, Roizman B, Straus SE, eds. Fields Virology. Philadelphia, PA: Lippincott Williams &amp; Wilkins; 2001. p. 2511.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1519896&pid=S1665-1146201000050000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Rickinson AB, Kieff E. Epstein&#45;Barr virus. En: Knipe DM, Howley PM, Griffin DE, Lamb RA, Martin MA, Roizman B, Straus SE, eds. Fields Virology. Philadelphia, PA: Lippincott Williams &amp; Wilkins; 2001. p. 2576.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1519898&pid=S1665-1146201000050000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Young KA, Herbert AP, Barlow PN, Holers VM, Hannan JP. Molecular basis of the interaction between complement receptor type 2 (CR2/CD21) and Epstein&#45;Barr virus glycoprotein gp350. J Virol 2008;82:11217&#150;11227.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1519900&pid=S1665-1146201000050000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  		    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Thorley&#45;Lawson DA. Epstein&#45;Barr virus: exploting the immune system. Nat Rev Immunol 2001;1:75&#45;82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1519902&pid=S1665-1146201000050000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  		    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Rickinson AB, Kieff E. Epstein&#45;Barr virus and its replication. En: Knipe DM, Howley PM, Griffin DE, Lamb RA, Martin MA, Roizman B, Straus SE (eds). Fields Virology. Philadelphia, PA: Lippincott Williams &amp; Wilkins; 2001. pp. 2594&#45;2612.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1519904&pid=S1665-1146201000050000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  		    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Menet A, Speth C, Larcher C, Prodinger WM, Schwendinger MG, Chan P, et al. Epstein&#45;Barr virus infection of human astrocyte cell lines. J Virol 1999;73:7722&#150;7733.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1519906&pid=S1665-1146201000050000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  		    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Fingeroth JD, Weis JJ, Tedder TF, Strominger JL, Biro PA, Fearon DT. Epstein&#45;Barr virus receptor of human B lymphocytes is the C3d receptor CR2. Proc Natl Acad Sci USA 1984;81:4510&#150;4514.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1519908&pid=S1665-1146201000050000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  		    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Frade R, Barel M, Ehlin&#45;Henriksson B, Klein G. gp140, the C3d receptor of human B lymphocytes, is also the Epstein&#45;Barr virus receptor. Proc Natl Acad Sci USA 1985;82:1490&#150;1493.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1519910&pid=S1665-1146201000050000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  		    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Haan KM, Lee SK, Longnecker R. Different functional domains in the cytoplasmic tail of glycoprotein B are involved in Epstein&#45;Barr virus&#45;induced membrane fusion. Virology 2001;290:106&#150;114.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1519912&pid=S1665-1146201000050000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	 		    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Haddad RS, Hutt&#45;Fletcher LM. Depletion of glycoprotein gp85 from virosomes made with Epstein&#45;Barr virus proteins abolishes their ability to fuse with virus receptor&#45;bearing cells. J Virol 1989;63:4998&#150;5005.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1519914&pid=S1665-1146201000050000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  		    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Hutt&#45;Fletcher LM. Epstein&#45;Barr virus entry. J Virol 2007;81:7825&#150;7832.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1519916&pid=S1665-1146201000050000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  		    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Terrin L, Dal Col J, Rampazzo E, Zancai P, Pedrotti M, Ammirabile G, et al. Latent membrane protein 1 of Epstein&#45;Barr virus activates the hTERT promoter and enhances telomerase activity in B lymphocytes. J Virol 2008;82:10175&#45;10187.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1519918&pid=S1665-1146201000050000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  		    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Kogan DL, Burroughs M, Emre S, Fishbein T, Moscona A, Ramson C, et al. Prospective longitudinal analysis of quantitative Epstein&#45;Barr virus polymerase chain reaction in pediatric liver transplant recipients. Transplantation 1999;67:1068&#45;1070.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1519920&pid=S1665-1146201000050000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Green M, Cacciarelli TV, Mazariegos GV, Sigurdsson L, Qu L, Rowe DT, et al. Serial measurement of Epstein&#45;Barr viral load in peripheral blood in pediatric liver transplant recipients during treatment for postransplant lymphoproliferative disease. Transplantation 1998;66:1641&#45;1644.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1519922&pid=S1665-1146201000050000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  		    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Patel S, Zuckerman M, Smith M. Real&#45;time quantitative PCR of Epstein&#45;Barr virus BZLF1 DNA using the LightCycler. J Virol Methods 2003;109:227&#45;233.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1519924&pid=S1665-1146201000050000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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