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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Comportamiento agronómico de plántulas de poblaciones nativas de jitomate (Solanum lycopersicum L.) en producción intensiva en invernadero]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In Mexico there is genotype diversity of tomato (Solatium lycopersicum L.) with outstanding characteristics of plant development, resistance to different biotic and abiotic factors, fruit yield and quality, but its production and use is local. Commercial production of tomato is based on patented hybrids such as saladette, bola and cherry, which limits the expression of the genetic store in the country. However, Mexico is considered one of the domestication centers of this horticultural product. The objective of the present study was to compare agronomic characteristics related to seedling development from 13 native populations of tomato with two commercial hybrids and to identify those with seedling quality equivalent to that of the commercial hybrids. Styrofoam germination trays of 200 cavities were used with commercial mixture Sunshine©3 plus Agrolite 3:1 (v/v) as substrate and irrigations with Steiner solution at 50 %. The populations and commercial hybrids were placed in a greenhouse for 31 d. Variables registered were percentage and germination rate, leaf exposure, seedling height, stem diameter, total number of leaves, leaf area, root length and volume, dry and fresh matter content of root and stem. The experimental design was completely randomized with 15 treatments and four replicates with 10 seedlings as experimental unit. Seedling development of populations 96 and 49, respectively, was similar to that of the commercial hybrids, and their germination and morphology were superior. Using principal components, the following were identified as variables to characterize quality: the presence of cotyledons, stem diameter, height, root length and number of leaves. Five native populations presented similarity in seedling quality with the commercial hybrids.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Fitociencia</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Comportamiento agron&oacute;mico de pl&aacute;ntulas de poblaciones nativas de jitomate <i>(Solanum lycopersicum</i> L.) en producci&oacute;n intensiva en invernadero</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Agronomic behavior of native populations of tomato <i>(Solanum lycopersicum</i> L.) under intensive production in a greenhouse</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>E. Alejandro Berrospe&#45;Ochoa<sup>*</sup>, Crescenciano Saucedo&#45;Veloz, Porfirio Ram&iacute;rez&#45;Vallejo, M. Elva Ram&iacute;rez&#45;Guzm&aacute;n</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Fruticultura. Campus Montecillo. Colegio de Postgraduados. 56230. Montecillo, Estado de M&eacute;xico. * Autor responsable</i> (<a href="mailto:beocedal@colpos.mx">beocedal@colpos.mx</a>).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: abril, 2014.    <br> 	Aprobado: abril, 2015.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico existe diversidad de genotipos de jitomate <i>(Solatium lycopersicum</i> L.) con caracter&iacute;sticas sobresalientes de desarrollo de la planta, resistencia a diferentes factores bi&oacute;ticos y abi&oacute;ticos, rendimiento y calidad de fruto, pero su producci&oacute;n y aprovechamiento es local. La producci&oacute;n comercial del jitomate se basa en h&iacute;bridos patentados tipo saladette, bola y cherry, lo que limita la expresi&oacute;n del acervo gen&eacute;tico en el pa&iacute;s. No obstante, M&eacute;xico es considerado uno de los centros de domesticaci&oacute;n de este producto hort&iacute;cola. El objetivo del estudio fue comparar caracter&iacute;sticas agron&oacute;micas relacionadas con el desarrollo de las pl&aacute;ntulas de 13 poblaciones nativas de jitomate con dos h&iacute;bridos comerciales e identificar aquellas con la calidad de pl&aacute;ntula equivalente a la de los h&iacute;bridos comerciales. Charolas germinadoras de poliestireno, de 200 cavidades, se usaron con mezcla comercial Sunshine<sup>&copy;</sup>3 m&aacute;s Agrolita 3:1(v/v) como sustrato y riegos con soluci&oacute;n Steiner a 50 %. Las poblaciones y los h&iacute;bridos comerciales se colocaron en un invernadero por 31 d. Las variables fueron el porcentaje y tasa de germinaci&oacute;n, exposici&oacute;n de hojas, altura de pl&aacute;ntula, di&aacute;metro de tallo, n&uacute;mero total de hojas, &aacute;rea foliar, longitud y volumen radical, contenido de materia seca y fresca de ra&iacute;z y tallo. El dise&ntilde;o experimental fue completamente al azar con 15 tratamientos y cuatro repeticiones con 10 pl&aacute;ntulas como unidad experimental. El desarrollo de las pl&aacute;ntulas de las poblaciones 96 y 49 fue similar a la de los h&iacute;bridos comerciales, y su germinaci&oacute;n y morfolog&iacute;a fueron superiores. Mediante componentes principales se identificaron como variables para caracterizar la calidad: la presencia de cotiledones, el di&aacute;metro de tallo, la altura, la longitud radical y el n&uacute;mero de hojas. Cinco poblaciones nativas presentaron similitud en calidad de pl&aacute;ntula con los h&iacute;bridos comerciales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Solanum lycopersicum,</i> semillero, germinaci&oacute;n, calidad.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">In Mexico there is genotype diversity of tomato <i>(Solatium lycopersicum</i> L.) with outstanding characteristics of plant development, resistance to different biotic and abiotic factors, fruit yield and quality, but its production and use is local. Commercial production of tomato is based on patented hybrids such as saladette, bola and cherry, which limits the expression of the genetic store in the country. However, Mexico is considered one of the domestication centers of this horticultural product. The objective of the present study was to compare agronomic characteristics related to seedling development from 13 native populations of tomato with two commercial hybrids and to identify those with seedling quality equivalent to that of the commercial hybrids. Styrofoam germination trays of 200 cavities were used with commercial mixture Sunshine<sup>&copy;</sup>3 plus Agrolite 3:1 (v/v) as substrate and irrigations with Steiner solution at 50 %. The populations and commercial hybrids were placed in a greenhouse for 31 d. Variables registered were percentage and germination rate, leaf exposure, seedling height, stem diameter, total number of leaves, leaf area, root length and volume, dry and fresh matter content of root and stem. The experimental design was completely randomized with 15 treatments and four replicates with 10 seedlings as experimental unit. Seedling development of populations 96 and 49, respectively, was similar to that of the commercial hybrids, and their germination and morphology were superior. Using principal components, the following were identified as variables to characterize quality: the presence of cotyledons, stem diameter, height, root length and number of leaves. Five native populations presented similarity in seedling quality with the commercial hybrids.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>Solanum lycopersicum,</i> seedbed, germination, quality.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con Emmatty (2006), M&eacute;xico y Per&uacute; son los centros de domesticaci&oacute;n del jitomate <i>(Solanum lycopersicum</i> L.) de donde los espa&ntilde;oles lo llevaron a Europa en 1523, y se extendi&oacute; a Francia, Inglaterra e Italia; en EE.UU. se introdujo en el siglo XVII.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La producci&oacute;n de jitomate en M&eacute;xico se basa en el uso de h&iacute;bridos comerciales principalmente del tipo bola, saladette y cherry, provenientes de semilla mejorada con caracter&iacute;sticas de calidad alta de planta y de fruto (Mac&iacute;as, 2003). Sin embargo, en diversas regiones del pa&iacute;s se identificaron poblaciones nativas con potencial alto para la adaptaci&oacute;n, el desarrollo de planta, el rendimientos y la resistencia al ataque de algunas plagas y enfermedades; adem&aacute;s, de la variaci&oacute;n en tama&ntilde;o, forma, color y composici&oacute;n qu&iacute;mica, as&iacute; como en valor nutricional y nutrac&eacute;utico (&Aacute;lvarez&#45;H&eacute;rnandez <i>et al.,</i> 2009; San Mart&iacute;n&#45;Hern&aacute;ndez <i>et al.,</i> 2012). El valor nutrimental y comercial de las poblaciones nativas es poco conocido debido, en parte, a que comparadas con los h&iacute;bridos comerciales, se encuentran en sistemas agr&iacute;colas heterog&eacute;neos, donde normalmente se desarrollan en ambientes naturales y de cultivo frecuentemente limitantes, y con incidencia recurrente de factores relacionados con estr&eacute;s bi&oacute;tico y abi&oacute;tico. As&iacute;, Ju&aacute;rez&#45;L&oacute;pez <i>et al.</i> (2009) se&ntilde;alaron que la ocurrencia de estos factores, cuya intensidad, frecuencia y cantidad var&iacute;a entre a&ntilde;os, permiti&oacute; un proceso intenso de selecci&oacute;n que aument&oacute; su rusticidad y adaptaci&oacute;n en estas poblaciones. Por lo tanto, las poblaciones nativas adem&aacute;s de producir frutos, a&uacute;n en condiciones de ambientes limitados, tienen relevancia en la producci&oacute;n de alimentos debida a su tolerancia a plagas y enfermedades. Crisanto <i>et al.</i> (2010) se&ntilde;alaron que las variaciones en la forma, color, sabor, textura y aroma da a los frutos de estas poblaciones una demanda local o regional alta, incluso con precios superiores al de los h&iacute;bridos comerciales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En algunas regiones de M&eacute;xico, el cultivo de hortalizas ha cambiado del sistema tradicional de producci&oacute;n al tecnificado, en el que la calidad de la pl&aacute;ntula repercute en la productividad (San Mart&iacute;n&#45;Hern&aacute;ndez <i>et al,</i> 2012). Seg&uacute;n Noordegraaf (1994), la calidad es definida por el consumidor y conlleva par&aacute;metros externos e internos del producto.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los campesinos se han especializado en la producci&oacute;n intensiva de pl&aacute;ntulas para cultivo en invernadero o campo abierto. Esto llev&oacute; a buscar alternativas para obtener el material necesario para el trasplante, y, el uso de semilleros permite un control productivo mayor (Berrospe&#45;Ochoa <i>et al.</i> , 2012). Para los productores de jitomate es importante tener pl&aacute;ntulas con caracter&iacute;sticas para un desarrollo vegetativo adecuado para la producci&oacute;n. As&iacute;, el problema principal de las poblaciones nativas de jitomate es el desconocimiento, en la mayor&iacute;a de los casos, del crecimiento vegetativo en condiciones de producci&oacute;n intensiva en semilleros y en densidad poblacional alta.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mediante recorridos de campo realizados durante los a&ntilde;os 2000 a 2010, en la zona mesoamericana mexicana, se recolectaron poblaciones con tipos diferentes de frutos de jitomate, catalogados como bola o saladette, pero tambi&eacute;n frutos con forma arri&ntilde;onada e irregular, y diversidad de colores. As&iacute;, ahora existe una colecci&oacute;n de 600 poblaciones con frutos con caracter&iacute;sticas diversas. De esta colecci&oacute;n, 13 muestras presentaron crecimiento vegetativo indeterminado y calidades de frutos que pueden ser producidas en condiciones de agricultura protegida intensiva.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este estudio fue caracterizar el comportamiento agron&oacute;mico de las pl&aacute;ntulas de 13 poblaciones nativas de jitomate, mediante la evaluaci&oacute;n de variables de crecimiento y desarrollo en producci&oacute;n intensiva en invernadero, e identificar las variantes con calidad de pl&aacute;ntula similar a la de los h&iacute;bridos comerciales actuales. La hip&oacute;tesis fue que en condiciones adecuadas de crecimiento, las pl&aacute;ntulas obtenidas de semillas de frutos de poblaciones nativas de jitomate pueden presentar periodos de emergencia y crecimiento vegetativo similares a los h&iacute;bridos comerciales (testigos) en invernadero, y que las pl&aacute;ntulas tienen calidad similar.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Trece poblaciones de jitomate fueron seleccionadas de un total de 600 nativas, recolectadas en zonas productoras diversas de M&eacute;xico. Ellas presentan caracter&iacute;sticas sobresalientes de adaptaci&oacute;n para la producci&oacute;n en invernadero, como sanidad, morfolog&iacute;a, arquitectura de la planta, rendimiento y calidad del fruto. Las poblaciones estudiadas de Puebla se identificaron como 16, 17A, 17R, 21B y 21Original; las de Guerrero fueron 34, 35 y 38; las de Oaxaca fueron 48 y 49; y las de Campeche, Yucat&aacute;n y Estado de M&eacute;xico fueron 75, 83 y 96. Estas poblaciones fueron comparadas con los h&iacute;bridos comerciales. SUN7705<sup>&copy;</sup> de Nunhems, de fruto tipo saladette, y Daniela<sup>&copy;</sup> de Hazera Genetics, de fruto tipo bola. Las poblaciones y los h&iacute;bridos comerciales son de crecimiento indeterminado. Las semillas evaluadas se obtuvieron en el 2012.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El estudio se realiz&oacute; en el 2013 en un invernadero tipo t&uacute;nel con cubierta pl&aacute;stica, de color blanco lechoso, ubicado a 19&deg; 27' 42.45'' N, 98&deg; 54' 32.58'' O y 2241 msnm. Semilleros de poliestireno, con 200 cavidades, se llenaron con una mezcla de peat moss y agrolita (3:1 v/v) humedecida y compactada, dejando unos 0.5 cm entre la superficie del semillero y la superficie del sustrato. Una semilla (inundada con agua acidulada a pH 5.5 por 12 h) se coloc&oacute; en cada cavidad, y las cavidades se llenaron con el mismo sustrato. Los semilleros se regaron manualmente una vez al d&iacute;a, se mantuvieron estribados en columnas y cubiertos con pl&aacute;stico hasta la emergencia de las pl&aacute;ntulas; despu&eacute;s el riego se aplic&oacute; dos veces por d&iacute;a. Cuando las primeras hojas verdaderas se expusieron y hasta el momento del trasplante, el agua de riego fue sustituida por una soluci&oacute;n Steiner al 25 % (Steiner, 1984).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las variables fueron: la masa promedio de 10 semillas evaluada con una balanza anal&iacute;tica (SCIENTECH, Modelo ZSA&#45;120, USA con sensibilidad 0.0001g), el n&uacute;mero de d&iacute;as para la emergencia de la primera pl&aacute;ntula desde la siembra, el tiempo (d) para la emergencia total de las pl&aacute;ntulas, periodo efectivo (d) en que ocurri&oacute; la emergencia de pl&aacute;ntulas desde la aparici&oacute;n de la primera pl&aacute;ntula hasta la &uacute;ltima, total de pl&aacute;ntulas emergidas, promedio de emergencia diario, porcentaje de germinaci&oacute;n y tiempo (d) para la exposici&oacute;n de las primeras hojas verdaderas. A los 31 d despu&eacute;s de la siembra se muestrearon tres pl&aacute;ntulas tomadas al azar, de las poblaciones e h&iacute;bridos, y se evalu&oacute; su altura (cm, de la base al &aacute;pice), di&aacute;metro de tallo (mm; con vernier digital Truper, modelo CALDI&#45;6MP), presencia de cotiledones, n&uacute;mero total de hojas, &aacute;rea foliar (cm<sup>2</sup>; con un integrador de &aacute;rea, modelo LI&#45;300, LI&#45;COR, Lincoln, NE), longitud de ra&iacute;z (cm), volumen de ra&iacute;z (cm<sup>3</sup>; mediante desplazamiento volum&eacute;trico), masa de materia fresca y seca del v&aacute;stago y de la ra&iacute;z (g).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dise&ntilde;o experimental fue completamente al azar con 15 tratamientos, cuatro repeticiones y diez semillas por repetici&oacute;n. Las variables se analizaron mediante an&aacute;lisis univariado, de componentes principales, can&oacute;nico y tipo cluster mediante el m&eacute;todo Ward considerando distancias Euclidianas de los datos recopilados, para la caracterizaci&oacute;n de calidades de pl&aacute;ntula, con SAS System<sup>&reg;</sup> versi&oacute;n 9.0 de SAS Institute, Inc., Cary, NC, USA.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La materia fresca de las semilla de las poblaciones 48 y 96 fue la mayor (3.8 mg) y con excepci&oacute;n de las poblaciones 16 y 34, la del resto fue similar a los testigos comerciales (<a href="/img/revistas/agro/v49n6/a4f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). Ramos&#45;Ortega <i>et al.</i> (2006) observaron que las semillas de jitomate con masa mayor generaron pl&aacute;ntulas vigorosas y rendimientos mayores. En contraste, en nuestro estudio las correlaciones no fueron significativas entre la masa de la semilla y el proceso germinativo y morfolog&iacute;a final de pl&aacute;ntula.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Torres <i>et al.</i> (2008) se&ntilde;alaron que en la producci&oacute;n de pl&aacute;ntulas es conveniente que la germinaci&oacute;n se realice en poco tiempo para reducir costos de producci&oacute;n. La germinaci&oacute;n es el cambio fisiol&oacute;gico interno de la semilla que concluye con la emisi&oacute;n de la rad&iacute;cula a trav&eacute;s de la cubierta seminal y emergencia posterior de la pl&aacute;ntula por arriba del sustrato. Berrospe&#45;Ochoa <i>et al.</i> (2012) reportaron promedios de emergencias de 7 a 8 d posteriores a la siembra, con un periodo efectivo de germinaci&oacute;n de 10 a 18 d. As&iacute;, la poblaci&oacute;n 96 y 16 se pueden considerarse las m&aacute;s precoces en germinaci&oacute;n y emergencia de pl&aacute;ntula.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los testigos emergieron en un periodo efectivo de 8 a 10 d desde la primera emergencia. Seg&uacute;n Berrospe&#45;Ochoa <i>et al.</i> (2012), en poblaciones nativas no hubo diferencia estad&iacute;stica en el tiempo de la primera emergencia (4 d despu&eacute;s de siembra), pero s&iacute; en el tiempo para la emergencia total. La poblaci&oacute;n 38 requiri&oacute; 21 d para completar la germinaci&oacute;n total de las semillas, pero la poblaci&oacute;n 96 requiri&oacute; 10.5 d; el tiempo menor efectivo para que germinaran todas las semillas fue en las poblaciones 96 y 83 (5.25 y 5.5 d), con la mitad empleada por los testigos comerciales (<a href="/img/revistas/agro/v49n6/a4f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los testigos tuvieron germinaci&oacute;n de 92.5 y 95 % (SUN7705 y Daniela) y fueron los primeros en exponer la primera hojas, entre 13 y 14 d despu&eacute;s de la siembra, todas las plantas mostrando follaje 5 despu&eacute;s de la exposici&oacute;n de las primeras hojas en el caso de Daniela y 4 d en SUN7705; del total de semillas de Daniela solo 87.5 % expusieron hojas, y en SUN7705 fue 67.5 %.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las poblaciones nativas evaluadas no mostraron diferencias estad&iacute;sticas (p&gt;0.05) con los testigos en porcentaje de germinaci&oacute;n, d&iacute;as para la exposici&oacute;n de las primeras hojas, periodo efectivo de exposici&oacute;n de hojas o porcentaje de semillas que generan hojas visibles (<a href="/img/revistas/agro/v49n6/a4c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Leviatov <i>et al.</i> (1994) y Sinha (1999) se&ntilde;alaron que la exposici&oacute;n de las hojas es un evento fenol&oacute;gico importante porque el embri&oacute;n en desarrollo genera estructuras vegetativas que pueden realizar procesos fisiol&oacute;gicos, como la fotos&iacute;ntesis, d&aacute;ndole la capacidad de formar compuestos bioqu&iacute;micos esenciales para su sobrevivencia y a la vez disminuir su dependencia a las reservas nutrimentales, que pueden alcanzar hasta el 15 % del volumen seminal, contenidas en los cotiledones y el endospermo. Las poblaciones nativas tuvieron la misma capacidad de desarrollo de hojas que los testigos, usados comercialmente para la producci&oacute;n de pl&aacute;ntula.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los testigos Daniela y SUN7705, al finalizar la etapa de evaluaci&oacute;n de 31 d, conservaron los dos cotiledones. Las poblaciones nativas 75 y 83 fueron estad&iacute;sticamente (p&le;0.05) diferentes porque perdieron los cotiledones antes de finalizar el periodo de evaluaci&oacute;n; las otras poblaciones conservaron sus cotiledones hasta el t&eacute;rmino del estudio (<a href="/img/revistas/agro/v49n6/a4c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La materia seca del endospermo constituye hasta 75 % del total de la semilla (Burg <i>et al.,</i> 1994; Leviatov <i>et al,</i> 1994), pero su volumen es menor a 15 % de la semilla y las reservas nutrimentales almacenadas en el endospermo son insuficientes para el desarrollo del nuevo individuo durante los primeros 15 d. Las reservas lip&iacute;dicas almacenadas (&aacute;cidos linoleico, oleico, palm&iacute;tico y este&aacute;rico, principalmente) en los glioxisomas y cuerpos &oacute;leos en los cotiledones toman importancia, acetil CoA deriva de la <i>&#946;</i>&#45;oxidaci&oacute;n y se produce succinato que se usa para generar sacarosa por gluconeog&eacute;nesis, y as&iacute; apoyar el desarrollo de la pl&aacute;ntula (Nieri <i>et al.,</i> 1997; Giannelos <i>et al.,</i> 2005; Graham, 2008; Baud y Lepiniec, 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El hecho de que una pl&aacute;ntula pierda los cotiledones antes del periodo de producci&oacute;n intensiva (entre 30 y 35 d) pone en desventaja al material vegetativo por disponibilidad menor de reservas, y la pl&aacute;ntula depender&aacute; de los fotosintatos de hojas inmaduras; este es el caso de las poblaciones 75 y 83.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los testigos comerciales tuvieron en promedio cuatro hojas y la poblaci&oacute;n 96 tuvo el n&uacute;mero mayor de hojas y m&aacute;s &aacute;rea foliar (<a href="/img/revistas/agro/v49n6/a4c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Las pl&aacute;ntulas de jitomate con 31 a 35 d de edad tienen en promedio entre tres y ocho hojas (Larqu&eacute;&#45;Saavedra <i>et al.,</i> 2010; Parra&#45;Terraza <i>et al.,</i> 2010; Berrospe&#45;Ochoa <i>et al.,</i> 2012) y en nuestro estudio tuvieron &aacute;rea foliar de 1 a 24 cm<sup>2</sup> (<a href="/img/revistas/agro/v49n6/a4f3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cantidad de hojas y &aacute;rea foliar influyen significativamente en la captura de luz y CO<sub>2</sub>, esto afecta el rendimiento fotosint&eacute;tico y la s&iacute;ntesis de compuestos esenciales para el desarrollo de la pl&aacute;ntula (Walter <i>et al.,</i> 2009; Xiao&#45;Xue <i>et al.,</i> 2013). La poblaci&oacute;n 96 mostr&oacute; la mayor calidad foliar en nuestro estudio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La poblaci&oacute;n 96 fue la m&aacute;s alta sin diferencias estad&iacute;sticas con respecto a poblaciones 17R, 21or y los testigos comerciales. La poblaci&oacute;n 21B tuvo la altura menor. Seg&uacute;n Vavrina (1998), pl&aacute;ntulas muy altas tienden a generar producci&oacute;n temprana, pero con problemas frecuentes de plagas y enfermedades; de ser as&iacute;, los testigos comerciales y las poblaciones 17R, 21or y 96 ser&iacute;an proclives a problemas fitosanitarios despu&eacute;s del trasplante, lo cual se debe comprobar.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las pl&aacute;ntulas de Daniela tuvieron di&aacute;metro de tallo bajo, aunque dentro del intervalo reportado en la literatura (Herrera <i>et al.,</i> 2008; Terefe <i>et al.,</i> 2009; Larqu&eacute;&#45;Saavedra <i>et al.,</i> 2010; Parra&#45;Terraza <i>et al.,</i> 2010; Berrospe&#45;Ochoa <i>et al.,</i> 2012; Luna <i>et al.,</i> 2013) pero fue uno de los m&aacute;s altos de este estudio (<a href="/img/revistas/agro/v49n6/a4c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). La variedad SUN7705 y la poblaci&oacute;n 21B tuvieron los di&aacute;metros menores y las poblaciones 16, 17A, 17R, 21or, 38 y 96 tuvieron di&aacute;metros de tallo similares a la variedad Daniela. Vavrina (1998) indic&oacute; que los tallos delgados, en contraste con los gruesos, pueden da&ntilde;arse f&aacute;cilmente durante el trasplante, debido al rompimiento de paredes celulares o ingreso de pat&oacute;genos. As&iacute;, las pl&aacute;ntulas de la variedad SUN7705 y las poblaciones 21B, 34, 35, 48, 49, 75 y 83 podr&iacute;an presentar este problema al transplante.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por longitud de ra&iacute;z ambos testigos comerciales est&aacute;n en la parte baja del intervalo registrado, pero el volumen de &eacute;stas fue mayor al reportado por Berrospe&#45;Ochoa <i>et al.</i> (2012), Larqu&eacute;&#45;Saavedra <i>et al.</i> (2010) y Luna <i>et al.</i> (2013). Las poblaciones nativas de jitomate no mostraron diferencias en longitud y volumen radical con los testigos comerciales. La configuraci&oacute;n espacial del sistema radical determina la capacidad de exploraci&oacute;n en suelo y en sustrato; la longitud y volumen radical determinan el potencial de transporte de agua y nutrientes al interior de la planta. Por lo tanto, no hay evidencia estad&iacute;stica que sustente diferencias morfol&oacute;gicas entre las poblaciones nativas y los testigos comerciales, y tendr&iacute;an el mismo potencial de absorci&oacute;n de agua y nutrimentos.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La masa fresca del v&aacute;stago en las pl&aacute;ntulas, 31 d despu&eacute;s de la siembra, es similar a la de las pl&aacute;ntulas con el mismo tiempo de desarrollo evaluadas por Berrospe&#45;Ochoa <i>et al.</i> (2012), Larqu&eacute;&#45;Saavedra <i>et al.</i> (2010) y Luna <i>et al.</i> (2013). Pero los testigos comerciales y las poblaciones 17R, 21or, 38 y 96 presentaron contenido mayor de masa en el v&aacute;stago; asimismo, el contenido de materia seca del v&aacute;stago de Daniela y SUN7705 fue menor en comparaci&oacute;n con otros h&iacute;bridos comerciales de jitomate, pero estad&iacute;sticamente (p&le;0.05) mayor que en los materiales en estudio. El contenido de masa seca fue 7 a 10 % de la masa total del v&aacute;stago, lo cual sugiere que el desarrollo celular entre los testigos comerciales y poblaciones nativas de jitomate fue similar.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La masa fresca en las ra&iacute;ces de los testigos fue inferior al intervalo reportado en otros h&iacute;bridos de jitomate (Larqu&eacute;&#45;Saavedra <i>et al.,</i> 2010; Berrospe&#45;Ochoa <i>et al.,</i> 2012; Luna <i>et al.,</i> 2013). Las diferencias entre la materia de las ra&iacute;ces de los testigos comerciales y poblaciones nativas no fueron significativas. Daniela y SUN7705 acumularon menos materia seca que la reportada en la literatura (Larqu&eacute;&#45;Saavedra <i>et al.,</i> 2010; Berrospe&#45;Ochoa <i>et al.,</i> 2012; Luna <i>et al.,</i> 2013). Las poblaciones 48 y 49 tuvieron 6 % de materia seca respecto al contenido de masa total en ra&iacute;z.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La correlaci&oacute;n can&oacute;nica fue altamente significativa (p&le;0.001) entre el n&uacute;mero de cotiledones, altura de la pl&aacute;ntula y di&aacute;metro de tallo, con las variables can&oacute;nicas 1 y 2 (<a href="#f4">Figura 4</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v49n6/a4f4.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La variable can&oacute;nica 1 relacion&oacute; la proporci&oacute;n de cotiledones y el di&aacute;metro del tallo de la pl&aacute;ntula y la variable can&oacute;nica 2 relacion&oacute; la altura de la pl&aacute;ntula. Al considerar en conjunto las variables can&oacute;nicas se observaron cuatro grupos: el primero estuvo integrado por los testigos comerciales y las poblaciones 16, 17A, 38 y 49, que se caracterizaron por pl&aacute;ntulas con tama&ntilde;o medio de tallo y altura, y cotiledones presentes; el segundo lo formaron las poblaciones 21B, 48 y 34, con pl&aacute;ntulas de menor altura y presencia de cotiledones; en el tercero estaban las poblaciones 17R, 21or y 96, y su caracter&iacute;stica morfol&oacute;gica fue la presencia de cotiledones, tallo grueso y plantas altas; el cuarto lo formaron las poblaciones 75 y 83, individuos sin cotiledones, con tallo delgado y ligeramente m&aacute;s altos que los testigos comerciales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis cluster permiti&oacute; confirmar tres (a una distancia de 30 unidades) o cuatro grupos (a una distancia de 15 unidades), de los cuales dos poblaciones comparten grupo con la variedad Daniela, ocho poblaciones comparten grupo con la variedad SUN7705 y tres poblaciones nativas integran otro grupo (<a href="#f5">Figura 5</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v49n6/a4f5.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis de componentes principales permiti&oacute; identificar cuatro indicadores significativos que explicaron 98.8 % de la variabilidad de los datos: el componente principal uno (CP1, 55 %) fue un indicador de la calidad de la hoja y la cantidad de materia que presenta la pl&aacute;ntula, y valores altos son recomendados; CP2 (21.2 %) fue indicador de la calidad del material vegetal durante la emergencia y la formaci&oacute;n de hojas verdaderas, valores altos corresponden a las semillas con excelente emergencia y exposici&oacute;n de hojas verdaderas; CP3 (16.2 %) fue un indicador de la emergencia, tiempo de emergencia y formaci&oacute;n de hojas, valores menores son mejores porque indican porcentaje mayor de emergencia en menos tiempo y exposici&oacute;n de hojas verdaderas; CP4 (5 %) fue indicador de la cantidad de materia de la ra&iacute;z y los valores altos son convenientes (<a href="/img/revistas/agro/v49n6/a4f6.jpg" target="_blank">Figura 6</a>).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la producci&oacute;n intensiva de pl&aacute;ntula de jitomate en invernadero las variables significativas fueron la presencia de cotiledones, el di&aacute;metro de tallo, la altura, el n&uacute;mero de hojas y la longitud radical de la pl&aacute;ntula. Todas ellas las proponemos como caracter&iacute;sticas agron&oacute;micas para la caracterizaci&oacute;n de calidad de pl&aacute;ntula.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las poblaciones 21original, 38, 48, 49 y 96, los testigos comerciales Daniela y SUN7705 presentaron la calidad mayor de pl&aacute;ntula. Las poblaciones nativas 21orginal y 96 se identificaron como similares en calidad de pl&aacute;ntula a la variedad Daniela; y la de las poblaciones 38, 35 y 49 fue similar a la variedad SUN7705.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Alvarez&#45;H&eacute;rnandez, J. C., H. Cortez&#45;Madrigal, e I. Garc&iacute;a&#45;Ruiz. 2009. Exploraci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n de poblaciones silvestres de tomate <i>(Solanaceae)</i> en tres regiones de Michoac&aacute;n, M&eacute;xico. Polibot&aacute;nica 28: 139&#45;159.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602010&pid=S1405-3195201500060000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Baud, S. and L. Lepiniec. 2010. Physiological and developmental regulation of seed oil production. Prog. Lipid Res. 49: 235&#45;249.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602012&pid=S1405-3195201500060000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Berrospe&#45;Ochoa, E. A., V. M. Ordaz&#45;Chaparro, M. N. Rodr&iacute;guez&#45;Mendoza, y R. Quintero&#45;Lisaola. 2012. Cachaza como sustrato para la producci&oacute;n de pl&aacute;ntula de tomate. Rev. Chapingo Ser. Hortic. 18:141&#45;156.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602014&pid=S1405-3195201500060000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Burg, W. J., J. W. Aartse, R. A. Zwol, H. Jalink, and R. J. Bino. 1994. Predicting tomato seedling morphology by X&#45;ray analysis of seeds. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 119:258&#45;263.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602016&pid=S1405-3195201500060000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Crisanto&#45;Ju&aacute;rez, A. U., A. M. Vera&#45;Guzm&aacute;n, J. L. Chav&eacute;s&#45;Servia, y J. C. Carrillo&#45;Rodr&iacute;guez. 2010. Calidad de frutos de tomates silvestres <i>(Lycopersicum esculentum</i> var. Cerasiforme Dunal) de Oaxaca, M&eacute;xico. Rev. Fitotec. Mex. 33:7&#45;13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602018&pid=S1405-3195201500060000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Emmatty, D. A. 2006. Mejoramiento gen&eacute;tico de tomate: pasado, presente y futuro. <i>In:</i> Saavedra G. R. y M. Gonz&aacute;lez Y. (ed). Seminario Internacional: Producci&oacute;n de Tomate para Procesamiento. Serie Actas Instituto de Investigaciones Agropecuarias No. 32., Chile. p 9&#45;16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602020&pid=S1405-3195201500060000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Giannelos, P. N., S. Sxizas, E. Lois, F. Zannikos and Anastopoulus, G. 2005. Physical, chemical and fuel related properties of tomato seed oil for evaluating its direct use in diesel engines. Ind. Crops Prod. 22: 193&#45;199.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602022&pid=S1405-3195201500060000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Graham, I. A. 2008. Seed storage oil mobilization. Annu. Rev. Plant. Biol. 59: 115&#45;142.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602024&pid=S1405-3195201500060000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Herrera, F., J. E. Castillo, A. F. Chica and L. L&oacute;pez B. 2008. Use of municipal solid waste compost (MSWC) as a growing medium in the nursery production of tomato plants. Biores. Technol. 99: 287&#45;296.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602026&pid=S1405-3195201500060000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ju&aacute;rez&#45;L&oacute;pez, P., R. Castro&#45;Brindis, T. Colinas&#45;Le&oacute;n, P. Ramir&eacute;z&#45;Vallejo, M. Sandoval&#45;Villa, D. W. Reed, L. Cisneros&#45;Zevallos y S. King. 2009. Evaluaci&oacute;n de calidad de frutos de siete genotipos nativos de jitomate <i>(Lycopersicon esculentum</i> var. Cerasiforme). Rev. Chapingo Ser. Hortic. 15: 5&#45;9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602028&pid=S1405-3195201500060000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Larqu&eacute;&#45;Saavedra, A., R. Mart&iacute;n&#45;Mex, A. Nexticapan&#45;Garc&eacute;z, S. Vergara&#45;Yoisura y M. Guti&eacute;rrez&#45;Rend&oacute;n. 2010. Efecto del &aacute;cido salic&iacute;lico en el crecimiento de pl&aacute;ntulas de tomate <i>(Lycopersicon esculentum</i> Mill.). Rev. Chapingo Ser. Hortic. 16: 183&#45;187.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602030&pid=S1405-3195201500060000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Leviatov, S., O. Shoseyov and S. Wolf. 1994. Roles of different seed components in controlling tomato seed germination at low temperatura. Scientia Horticulturae 56: 197&#45;206.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602032&pid=S1405-3195201500060000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Luna M., L., R. A. Mart&iacute;nez P., M. Hern&aacute;ndez I., S. M. Arvizu M. y J. R. Pacheco A. 2013. Caracterizaci&oacute;n de rizobacterias aisladas de tomate y su efecto en el crecimiento de tomate y pimiento. Rev. Fitotec. Mex. 36: 63&#45;69.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602034&pid=S1405-3195201500060000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mac&iacute;as, M. A., 2003. Enclaves agr&iacute;colas modernos: el caso del jitomate mexicano en los mercados internacionales. Regi&oacute;n y Sociedad. 26: 103&#45;151.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602036&pid=S1405-3195201500060000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nieri, B., A. Ciurli, L. Pistelli, S. M. Smith, A. Alpi and L. De Bellis. 1997. Glyoxylate cycle enzymes in seedlings and mature plants of tomato <i>(Lycopersicon esculentum</i> Mill.). Plant Sci. 129: 39&#45;47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602038&pid=S1405-3195201500060000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Noordegraaf, C. V. 1994. Production and marketing of high quality plants. Acta Horticulturae 353: 134&#45;148.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602040&pid=S1405-3195201500060000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Parra&#45;Terraza, S., E. Salas&#45;N&uacute;&ntilde;ez, M. Villareal&#45;Romero, S. Hern&aacute;ndez&#45;Verdugo y P. S&aacute;nchez&#45;Pe&ntilde;a. 2010. Relaciones nitrato/ amonio/ urea y concentraciones de potasio en la producci&oacute;n de pl&aacute;ntulas de tomate. Rev. Chapingo Ser. Hortic. 16: 37&#45;47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602042&pid=S1405-3195201500060000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ramos&#45;Ortega, A., A. Carballo C., A. Hern&aacute;ndez L., T. Corona T. y M. Sandoval V. 2006. Caracterizaci&oacute;n de l&iacute;neas de jitomate en hidropon&iacute;a. Agric. T&eacute;c. M&eacute;x. 32: 213&#45;223.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602044&pid=S1405-3195201500060000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">San Mart&iacute;n&#45;Hern&aacute;ndez, C.; V. M. Ordaz&#45;Chaparro; P. S&aacute;nchez&#45;Garc&iacute;a; M. T. B. Colinas&#45;Leon; and L. Borges&#45;G&oacute;mez. 2012. Calidad de tomate <i>(Solanum lycopersicum</i> L.) producido en hidroponia con diferentes granulometr&iacute;as de tezontle. Agrociencia 46: 243&#45;254.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602046&pid=S1405-3195201500060000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sinha, N. 1999. Leaf development in angyosperms. Annu. Rev. Plant. Physiol. 50: 419&#45;446.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602048&pid=S1405-3195201500060000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Steiner, A. A. 1984. The universal nutrient solution. Sixth International Congress on Soilless Culture. ISOSC. Proceedings. The Netherlands. pp: 633&#45;649.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602050&pid=S1405-3195201500060000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Terefe, M., T. Tefera and P. K. Sakhuja. 2009. Effect of a formulation of Bacillus firmus on root&#45;knot nematode Meloidogyne incognita infestation and the growth of tomato plants in the greenhouse and nursery. J. Invertebr. Pathol. 100:94&#45;99.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602052&pid=S1405-3195201500060000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Torres, C., J. E. D&iacute;az, y P. A. Cabal. 2008. Efectos de campos magn&eacute;ticos en la germinaci&oacute;n de semillas de arroz <i>(Oryza sativa</i> L.) y tomate <i>(Solanum licopersucum</i> L.). Agron. Colom. 26:177&#45;185.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602054&pid=S1405-3195201500060000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vavrina, C. S. 1998. Transplante age in vegetables crops. Hort&#45;Technology 8: 1&#45;7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602056&pid=S1405-3195201500060000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Walter, A., W. K. Silk and U. Schurr. 2009. Environmental effects on spatial and temporal patterns of leaf and root growth. Annu. Rev. Plant. Biol. 60: 279&#45;304.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602058&pid=S1405-3195201500060000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Xiao&#45;Xue, F., X. Zhi&#45;Gang, L. Xiao&#45;Ying, T. Can&#45;Ming, W. Li&#45;Wen, and H. Xue&#45;Lin. 2013. Effects of light intensity on the growth and leaf development of young tomato plants grown under a combination of red and blue light. Scientia Horticulturae 153: 50&#45;55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=602060&pid=S1405-3195201500060000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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