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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Hongos asociados a pudrición del pedúnculo y muerte descendente del mango (Mangifera indica L.)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Stem-end rot of fruits and dieback of branches in mango (Mangifera indica L.) are associated with fungi of the family Botryosphaeriaceae. The objectives of the present study were to identify morphologically and phylogenetically different strains of fungi isolated from fruits with stem-end rot and branches with dieback of the cultivars Ataulfo, Kent and Tommy Atkins, of five producing states of México, and to determine their association with both diseases. The samples were collected between March of 2010 and June of 2011. The fungi associated with stem-end rot corresponded to Lasiodiplodia theobromae and Neofusicoccum parvum, and Neofusicoccum sp. was also detected; the fungi associated with dieback of branches corresponded to L. pseudotheobromae and N. parvum. The possible association of stem-end rot with dieback was identified, given that the associated fungi were pathogenic when inoculated in the stems of fruits of Ataulfo, Kent and Tommy Atkins. This would be the first study that identifies stem-end rot or dieback in branches of mango in Mexico from L. pseudotheobromae, L. theobromae and N. parvum.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Protecci&oacute;n vegetal </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Hongos asociados a pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo y muerte descendente del mango (<i>Mangifera indica</i> L.)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Fungi associated to stem-end rot and dieback of mango (<i>Mangifera indica</i> L.)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Maricarmen Sandoval&#45;S&aacute;nchez<sup>1</sup>, Daniel Nieto&#45;&Aacute;ngel<sup>1</sup>*, J. Sergio Sandoval&#45;Islas<sup>1</sup>, Daniel T&eacute;liz&#45;Ortiz<sup>1</sup>, Mario Orozco&#45;Santos<sup>2</sup>, H. Victoria Silva&#45;Rojas<sup>3</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Fitosanidad&#45;Fitopatolog&iacute;a. *Autor responsable:</i> (<a href="mailto:dnieto@colpos.mx">dnieto@colpos.mx</a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias. Carretera Colima-Manzanillo. Km. 35. 28930. Tecom&aacute;n, Colima.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> Gen&eacute;tica y Productividad&#45;Producci&oacute;n de Semillas. Campus Montecillo. Colegio de Postgraduados. 56230. Montecillo, Estado de M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: mayo, 2012.     <br> Aprobado: noviembre, 2012.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las pudriciones del ped&uacute;nculo de frutos y muerte descendente de ramas de mango (<i>Mangifera indica</i> L.) son asociadas con hongos de la familia Botryosphaeriaceae. Los objetivos de este estudio fueron identificar morfol&oacute;gica y filogen&eacute;ticamente diferentes cepas de hongos aisladas de frutos con pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo y ramas con muerte descendente de los cultivares Ataulfo, Kent y Tommy Atkins, de cinco estados productores de M&eacute;xico, y determinar su asociaci&oacute;n con ambas enfermedades. Las muestras se recolectaron entre marzo del 2010 y junio del 2011. Los hongos asociados con la pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo correspondieron a <i>Lasiodiplodia theobromae</i> y <i>Neofusicoccum parvum,</i> y se detect&oacute; tambi&eacute;n a <i>Neofusicoccum</i> sp.; los hongos asociados con la muerte descendente de ramas correspondieron a <i>L. pseudotheobromae</i> y <i>N. parvum.</i> Se identific&oacute; la posible asociaci&oacute;n de pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo con muerte descendente, ya que los hongos asociados fueron patog&eacute;nicos al inocularlos en los ped&uacute;nculos de frutos de Ataulfo, Kent y Tommy Atkins. Este ser&iacute;a el primer estudio que identifica pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo o muerte descendente de ramas de mango en M&eacute;xico por <i>L. pseudotheobromae, L. theobromae</i> y <i>N. parvum.</i></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> hongos postcosecha, <i>Lasiodiplodia pseudotheobromae, Lasiodiplodia theobromae, Neofusicoccum parvum, Neofusicoccum</i> sp., <i>Mangifera indica.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;	</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stem&#45;end rot of fruits and dieback of branches in mango (<i>Mangifera indica</i> L.) are associated with fungi of the family Botryosphaeriaceae. The objectives of the present study were to identify morphologically and phylogenetically different strains of fungi isolated from fruits with stem&#45;end rot and branches with dieback of the cultivars Ataulfo, Kent and Tommy Atkins, of five producing states of M&eacute;xico, and to determine their association with both diseases. The samples were collected between March of 2010 and June of 2011. The fungi associated with stem&#45;end rot corresponded to <i>Lasiodiplodia theobromae</i> and <i>Neofusicoccum parvum,</i> and <i>Neofusicoccum</i> sp. was also detected; the fungi associated with dieback of branches corresponded to <i>L. pseudotheobromae</i> and <i>N. parvum.</i> The possible association of stem&#45;end rot with dieback was identified, given that the associated fungi were pathogenic when inoculated in the stems of fruits of Ataulfo, Kent and Tommy Atkins. This would be the first study that identifies stem&#45;end rot or dieback in branches of mango in Mexico from <i>L. pseudotheobromae, L. theobromae</i> and <i>N. parvum.</i></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> postharvest fungi, <i>Lasiodiplodia pseudotheobromae, Lasiodiplodia theobromae, Neofusicoccum parvum, Neofusicoccum sp., Mangifera indica.</i></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo de frutos de mango (<i>Mangifera indica</i> L.) causa p&eacute;rdidas severas despu&eacute;s de la cosecha y son m&aacute;s importantes durante el almacenamiento prolongado, porque reducen la calidad de los frutos y limitan su comercializaci&oacute;n (Johnson <i>et al.,</i> 1991). La pudrici&oacute;n es ocasionada por los hongos <i>Dothiorella dominicana</i> Petr. &amp; Cif. (Johnson <i>et al.,</i> 1991), <i>Lasiodiplodia theobromae</i> (Pat.) Griff. &amp; Maubl. (Johnson <i>et al.,</i> 1991; Mirzaee <i>et al.,</i> 2002), <i>Neofusicoccum mangiferae</i> (Syd. &amp; P. Syd.) Crous, Slippers &amp; A. J. L. Phillips (Ni <i>et al,</i> 2010), <i>N. parvum</i> (Pennycook &amp; Samuels) Crous, Slippers &amp; A. J. L. Phillips (Costa <i>et al.,</i> 2010), <i>Phomopsis mangiferae</i> (Sacc.) Bub&aacute;k y <i>Pestalotiopsis mangiferae</i> (Henn.) Steyaert (Johnson <i>et al.,</i> 1991; Ko <i>et al.,</i> 2009). Los des&oacute;rdenes de declinaci&oacute;n que comprenden s&iacute;ntomas como tiz&oacute;n, cancrosis, gomosis y muerte descendente de ramas comparten etiolog&iacute;as similares con las pudriciones del ped&uacute;nculo (Khanzada <i>et al.,</i> 2004; Javier&#45;Alva <i>et al.,</i> 2009). En M&eacute;xico no existen reportes que precisen los agentes causales de la pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo, ni su asociaci&oacute;n con la muerte descendente de ramas que proporcionen informaci&oacute;n para el manejo de la enfermedad desde la etapa de crecimiento de la planta hasta la &eacute;poca de desarrollo del fruto y cosecha. Los objetivos del presente estudio fueron identificar morfol&oacute;gica y mole&#45;cularmente los hongos aislados de frutos de mango, de las regiones productoras de la Costa del Pac&iacute;fico, con s&iacute;ntomas de pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo y de muerte descendente en ramas y determinar la asociaci&oacute;n de ambas patolog&iacute;as.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Recolecci&oacute;n de frutos y ramas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De marzo del 2010 a junio del 2011 se recolectaron 110 frutos de los cultivares Ataulfo, Kent y Tommy Atkins con s&iacute;ntomas de pudrici&oacute;n de ped&uacute;nculo y muerte descendente en ramas, en huertos de mango en cinco estados productores de la Costa del Pac&iacute;fico de M&eacute;xico. De esos frutos &uacute;nicamente 58 presentaban s&iacute;ntoma de pudrici&oacute;n de ped&uacute;nculo. Las recolectas se hicieron en huertos ubicados en los estados de Colima (Coquimatl&aacute;n y Tecom&aacute;n: 16 Tommy Atkins y cuatro Ataulfo), Guerrero (Acapulco de Ju&aacute;rez: siete Tommy Atkins y 13 'Ataulfo), Jalisco (Tomatl&aacute;n: 10 Tommy Atkins) y Nayarit (Jalcocot&aacute;n: ocho Kent). Adem&aacute;s, se seleccionaron 60 ramas con s&iacute;ntomas de muerte descendente en 10 huertos ubicados en Guerrero (Atoyac de &Aacute;lvarez y San Jer&oacute;nimo de Ju&aacute;rez: Tommy Atkins; San Luis de la Loma, Tecpan de Galeana y Zacualpan: Ataulfo) y Michoac&aacute;n (Nueva Italia: Ataulfo).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aislamientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se obtuvieron segmentos de aproximadamente 125 mm<sup>3</sup> de la zona de avance de la pudrici&oacute;n en frutos y de la necrosis en ramas. Los tejidos de frutos y ramas se desinfestaron por inmersi&oacute;n en hipoclorito de sodio al 2 % durante 3 min y al 3 % durante 4 min. Se lavaron con agua destilada esterilizada, se secaron con papel filtro esterilizado y se colocaron cuatro trozos por caja petri con medio de cultivo Papa&#45;Dextrosa&#45;Agar (PDA). Las cajas se incubaron bajo luz negra continua y a 25 &plusmn;1 &deg;C durante el d&iacute;a. Se realizaron cultivos monosp&oacute;ricos y se transfirieron a cajas petri nuevas con PDA.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Pruebas de patogenicidad y de asociaci&oacute;n entre hongos aislados de frutos y ramas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se inocularon ped&uacute;nculos de frutos de mango con los hongos aislados de la pudrici&oacute;n de frutos y de la muerte de ramas para tener evidencia de la etiolog&iacute;a de la pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo, caracterizar las pudriciones y establecer su posible relaci&oacute;n con la muerte descendente. Tres aislados de frutos y cuatro de ramas se seleccionaron, seg&uacute;n su prevalencia, localidad, cultivar y procedencia. Se usaron frutos sanos en madurez fisiol&oacute;gica, con tama&ntilde;o uniforme y sin da&ntilde;os f&iacute;sicos de los tres cultivares, se lavaron con agua jabonosa, se desinfestaron durante 3 min por inmersi&oacute;n en hipoclorito de sodio al 2 % y se enjuagaron con agua destilada esterilizada. Se inocularon cinco frutos por cultivar y se evalu&oacute; el porcentaje de frutos que produjeron s&iacute;ntomas con cada uno de los siete aislamientos, para lo cual se observaron diariamente registrando s&oacute;lo los s&iacute;ntomas y signos externos. Hubo dos tratamientos: 1) bajo condiciones as&eacute;pticas se realiz&oacute; una herida de aproximadamente 5 mm de profundidad sobre el ped&uacute;nculo de cada fruto, mediante punci&oacute;n con un palillo de madera esterilizado; sobre cada herida se coloc&oacute; un disco de PDA de 5 mm de di&aacute;metro con crecimiento micelial de seis d&iacute;as de edad y se sostuvo con una cinta Parafilm*; hubo frutos testigo con herida y disco de PDA sin in&oacute;culo; 2) se realiz&oacute; el mismo procedimiento, pero sin herida, los frutos se colocaron en charolas de unicel con toallas est&eacute;riles de papel, humedecidas con agua destilada esterilizada, dentro de bolsas pl&aacute;sticas, a 24 &plusmn; 2 &deg;C; los hongos se reaislaron en cultivos puros a partir de los frutos inoculados en cada tratamiento y sus colonias y estructuras reproductivas se compararon con las de los aislamientos inoculados originalmente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se registr&oacute; el crecimiento micelial, pigmentaci&oacute;n y formaci&oacute;n de estructuras reproductivas de 10 colonias por aislamiento de los hongos sembrados en cajas petri. Las colonias fueron incubadas bajo luz negra continua a 25 &plusmn; 1 &deg;C durante el d&iacute;a. Los aislamientos se identificaron morfol&oacute;gicamente con base en el color, forma de la colonia, crecimiento del micelio, esporulaci&oacute;n, forma de conidios y dimensiones. Se usaron las claves y descripciones taxon&oacute;micas de Sutton (1980) y Barnett y Hunter (1998) para g&eacute;neros, de Punithalingam (1976), Burgess <i>et al.</i> (2006) y Alves <i>et al.</i> (2008) para especies de <i>Lasiodiplodia</i> y de Pennycook y Samuels (1985) y Crous <i>et al.</i> (2006) para especies de <i>Neofusicoccum.</i> Las cepas identificadas se conservaron en tubos de ensaye con aceite mineral esterilizado para estudios posteriores.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Identificaci&oacute;n molecular y an&aacute;lisis filogen&eacute;tico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ADN se extrajo de cultivos monoconidiales crecidos en medio PDA, con la metodolog&iacute;a descrita por Ahrens y Seem&uuml;ller (1992). La calidad del ADN se verific&oacute; mediante electroforesis horizontal en gel de agarosa al 1 % (Ultrapure, Gibco, USA) y las bandas se visualizaron en un transiluminador (Gel Doc 2000, BIO RAD*, USA). La concentraci&oacute;n de ADN se cuantific&oacute; con un espectrofot&oacute;metro Lambda BIO 10 (Perkin Elmer*), diluciones con 20 ng se usaron para la amplificaci&oacute;n de los espaciadores transcritos internos ITS1 e ITS2, y el gen 5.8S ribosomal, mediante la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) y la combinaci&oacute;n de los iniciadores universales ITS4 (5'&#45;TCCTCCGCTTATTGATATGC) e ITS5 (5'&#45;GGAAGTA&#45;AAAGTCGTAACAAGG).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El producto amplificado se purific&oacute; con el kit Wizard (Promega*, USA) y se secuenci&oacute; con el Genetic Analyzer modelo 3730XL* (Applied Biosystem*, USA). Las secuencias consenso se ensamblaron, editaron con la opci&oacute;n CAP (Contig Assembly Program) del Software BioEdit v7.0.9.1 (Hall, 1999) y depositaron en el GenBank (NCBI, 2012). Para los an&aacute;lisis evolutivos, todas las secuencias consenso fueron alineadas con el ClustalW 1.8.1 (Thompson <i>et al.,</i> 1994) incluido en el Software MEGA 4.0.2 (Tamura <i>et al.,</i> 2007). Las reconstrucciones filogen&eacute;ticas se realizaron para los conjuntos de datos de la regi&oacute;n ITS1&#45;5.8S&#45;ITS2 con el m&eacute;todo de m&aacute;xima parsimonia. Este an&aacute;lisis se efectu&oacute; mediante el Close Neighbour Interchange (CNI), opci&oacute;n de b&uacute;squeda (nivel=1) con el &aacute;rbol inicial por adici&oacute;n al azar (10 repeticiones), y los espacios o datos faltantes fueron considerados deleciones completas. Para conocer los valores de confianza para los clados del &aacute;rbol, se realiz&oacute; un an&aacute;lisis bootstrap con 1000 repeticiones (Felsenstein, 1985). Las secuencias de <i>L. pseudotheobromae</i> (no. de acceso EU101311, Namibia), <i>L. theobromae</i> (no. de acceso FJ150695, USA), <i>N. parvum</i> (no. de acceso EU080926, Uruguay), <i>Neofusicoccum</i> sp. (no. de acceso FJ900608, Camer&uacute;n) y P. <i>theae</i> (no. de acceso HQ832793, China), depositadas en la base de datos del GenBank, fueron seleccionadas para incluirlas como especies de referencia junto con las obtenidas en este estudio. <i>Phaeomoniella capensis</i> (no. de acceso FJ372391) se design&oacute; como la especie fuera de grupo para la construcci&oacute;n del &aacute;rbol evolutivo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Descripci&oacute;n de s&iacute;ntomas de frutos y ramas recolectados</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La pudrici&oacute;n en frutos, color caf&eacute; claro a oscuro, se origin&oacute; alrededor del ped&uacute;nculo y se extendi&oacute; a lo largo de &eacute;l con m&aacute;rgenes ondulados. En los &aacute;rboles muestreados se observaron ramas con secamiento descendente que iniciaba en el &aacute;pice y avanzaba hacia la base de la rama, contrastaban con ramas de aspecto normal, y mostraban haces vasculares necrosados y exudados gomosos rojizos. En un estado avanzado de muerte descendente, los &aacute;rboles exhib&iacute;an secamiento con defoliaci&oacute;n parcial y ramas con hojas secas y verdes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Frecuencias de aislamientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De los frutos recolectados se aislaron <i>Colletotrichum</i> sp., <i>L. theobromae, N. parvum, Neofusicoccum</i> sp. y <i>Pestalotiopsis</i> sp. y de las ramas <i>L. pseudotheobromae, N. parvum, Pestalotiopsis</i> sp., <i>P. theae</i> y <i>Phomopsis</i> sp. (<a href="/img/revistas/agro/v47n1/a6c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Pruebas de asociaci&oacute;n entre hongos aislados de frutos y ramas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los siete aislamientos utilizados en las pruebas de asociaci&oacute;n se nombraron seg&uacute;n el hospedante (fruto o rama), especie de hongo y lugar de procedencia: FLaGr (Fruto <i>Lasiodiplodia</i> Guerrero), RLaGr (Rama <i>Lasiodiplodia</i> Guerrero), RLaMi (Rama <i>Lasiodiplodia</i> Michoac&aacute;n), FNeJa (Fruto, <i>Neofusicoccum</i> Jalisco), FNeNa (Fruto <i>Neofusicoccum</i> Nayarit, RNeMi (Rama, <i>Neofusicoccum</i> Michoac&aacute;n) y RPeMi (Rama <i>Pestalotiopsis</i> Michoac&aacute;n). En todos los frutos del cultivar Ataulfo inoculados con los aislamientos de <i>Lasiodiplodia</i> y <i>Neofusicoccum</i> del tratamiento con herida, se observaron s&iacute;ntomas iniciales de pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo 7 d despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n (ddi). Los s&iacute;ntomas con ambos hongos fueron similares y consistieron de manchas negras, con crecimiento de micelio, alrededor de la base del ped&uacute;nculo. Luego de 10 ddi se observaron lesiones difusas, hundidas y h&uacute;medas, originadas en el ped&uacute;nculo, con forma de proyecciones radiales, las cuales oscurecieron r&aacute;pidamente, coalescieron y presentaron m&aacute;rgenes negros ondulados; y 14 ddi las manchas oscuras se hab&iacute;an extendido a lo largo de la curvatura c&oacute;ncava o convexa del fruto. Tambi&eacute;n se observ&oacute; micelio sobre la epidermis o emergente a trav&eacute;s de rupturas de ella y un exudado acuoso, caf&eacute; que sal&iacute;a de las lenticelas o del ped&uacute;nculo. La pudrici&oacute;n total de los frutos ocurri&oacute; 20 ddi. El aislamiento RPeMi 20 ddi, s&oacute;lo ocasion&oacute; una mancha negra limitada alrededor del ped&uacute;nculo y desarroll&oacute; crecimiento de micelio. En el tratamiento sin herida se registraron los mismos s&iacute;ntomas, aunque fueron visibles 9 ddi. En todos los frutos de los cultivares Kent y Tommy Atkins inoculados, se registraron los mismos s&iacute;ntomas con los aislamientos de <i>Lasiodiplodia</i> y <i>Neofusicoccum;</i> 5 ddi se apreciaron manchas radiales, alargadas, delgadas y oscuras originadas en el ped&uacute;nculo, que coalescieron 7 ddi torn&aacute;ndose amarillentas, hundidas y h&uacute;medas y formando m&aacute;rgenes negros ondulados. La pudrici&oacute;n total de los frutos ocurri&oacute; 10 ddi. No se observaron s&iacute;ntomas con RPeMi. Los frutos testigo no desarrollaron s&iacute;ntomas (<a href="/img/revistas/agro/v47n1/a6f1.jpg" target="_blank">Figura 1 A&#45;F</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las colonias de <i>Lasiodiplodia</i> spp. desarrollaron inicialmente (1 a 3 d) micelio algodonoso color blanco&#45;gris&aacute;ceo, con crecimiento a&eacute;reo, r&aacute;pido y abundante; posteriormente, cambi&oacute; a gris oliv&aacute;ceo, denso en el centro de la caja con color gris oscuro. Desde los 15 d se apreciaron conidiomas picnidiales producidos en estroma, semi&#45;inmersos, dispersos, simples o compuestos y en agregados; picnidios negros, piriformes y ostiolados; tambi&eacute;n, conidi&oacute;foros hialinos, cil&iacute;ndricos, simples, septados o aseptados, que nac&iacute;an de la pared interior de c&eacute;lulas que recubr&iacute;an la cavidad picnidial y par&aacute;fisis hialinos, cil&iacute;ndricos y aseptados. <i>Lasiodiplodia theobromae</i> mostr&oacute; conidios inmaduros sin septos (amerosporas) hialinos, subovoides a elipsoidales, con pared gruesa y citoplasma granulado, de 20 a 31.02 x 11.36 a 16.36 <i>&#181;</i>m (25.53 x 13.16 <i>&#181;</i>m, promedio de 100 conidios). Los conidios maduros presentaron un septo (didimosporas) de color caf&eacute; oscuro, elipsoidales a ovoides, con estriaciones longitudinales irregulares de 19.44 a 28.86 &times; 11.25 a 15.91 <i>&#181;</i>m (24.32 x 12.27 <i>&#956;</i>m, promedio de 100 conidios).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En contraste con <i>L. theobromae, L. pseudotheobromae</i> produjo conidios m&aacute;s grandes y elipsoidales, con el &aacute;pice y base redondeados, m&aacute;s amplios en el centro y maduros midieron 23.82 a 31.57 x 13.89 a 17.44 <i>&#181;</i>m (26.17 x 16.23 <i>&#181;</i>m, promedio de 100 conidios). Las colonias de <i>N. parvum</i> desarrollaron micelio algodonoso, blanco&#45;gris&aacute;ceo y abundante al inicio (1 a 3 d) y se torn&oacute; gris oscuro despu&eacute;s, m&aacute;s denso en el centro de la caja. La formaci&oacute;n de conidiomas picnidiales se observ&oacute; desde los 13 d: uni o multiloculares, individuales o constituidos en estroma, picnidios globosos, piriformes con una papila corta y aguda, y ostiolados; adem&aacute;s: conidi&oacute;foros reducidos a c&eacute;lulas conidiog&eacute;nicas, hialinas, holobl&aacute;sticas, que formaron conidios en sus extremos y surg&iacute;an de la pared interior del l&oacute;culo y recubri&eacute;ndolo; tambi&eacute;n, conidios fusiformes a elipsoidales con &aacute;pice subobtuso y base truncada, lisos o gutulados, de paredes delgadas, hialinos y unicelulares, que midieron 21.77 a 26.99 x 5.18 a 8.55 <i>&#956;</i>m (24.92 x 7.09 <i>&#956;</i>m, promedio de 150 conidios), y microconidios hialinos, lisos, en forma de barra y truncados en los extremos (<a href="/img/revistas/agro/v47n1/a6f2.jpg" target="_blank">Figura 2 A&#45;H</a>).</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis filogen&eacute;tico con la secuencia ribosomal</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con las amplificaciones, con los primers ITS5 e ITS4, se obtuvieron fragmentos de 500, 540 y 570 pares de bases (bp) aproximadamente. Los resultados del BLASTN confirmaron que los aislamientos FNeJa, FNeNa y RNeMi correspondieron a <i>N. parvum,</i> el aislamiento FLaGr a <i>L. theobromae</i> (n&uacute;meros de acceso GenBank JQ619648, JQ619649, JQ619650, JQ619651) y la regi&oacute;n ITS revel&oacute; identidades de nucle&oacute;tidos de las secuencias de 100 %. Tambi&eacute;n, los aislamientos RLaGr y RLaMi se asemejaron 100 % a <i>L. pseudotheobromae,</i> y el aislamiento RPeMi 99 % a <i>Pestalotiopsis theae</i> (n&uacute;meros de acceso JQ619644, JQ619645, JQ619652). Las secuencias de los otros dos aislamientos no evaluados en las pruebas de patogenicidad, presentaron 99 % de identidad de sus nucle&oacute;tidos con <i>Neofusicoccum</i> sp. (JQ619646, JQ619647). Los aislamientos evaluados se separaron en cinco clados con el m&eacute;todo de m&aacute;xima parsimonia y fueron denominados <i>Lp</i> para <i>L. pseudotheobro</i>mae, <i>Lt</i> para L. <i>theobromae, Np</i> para <i>N. parvum, Nsp</i> para <i>Neofusicoccum</i> sp. y <i>Pt</i> para <i>P.theae</i> (<a href="/img/revistas/agro/v47n1/a6f3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo se reporta como una enfermedad de la postcosecha en las regiones productoras de mango alrededor del mundo, y su etiolog&iacute;a es imprecisa (Slippers <i>et al.,</i> 2005). En esta investigaci&oacute;n, las poblaciones de pat&oacute;genos de los estados de Colima, Guerrero, Jalisco, Michoac&aacute;n y Nayarit fueron identificadas para decidir los hongos involucrados en los s&iacute;ntomas de pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo en frutos de mango y reconocer la posible asociaci&oacute;n de la muerte descendente con la pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo. El estudio es la primera exploraci&oacute;n de especies de la familia Botryosphaeriaceae donde la pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo es asociada con la muerte descendente de mango en M&eacute;xico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las especies <i>L. theobromae, N. mangiferum</i> y <i>N. parvum</i> de la familia Botryosphaeriaceae se asocian com&uacute;nmente con enfermedades en las regiones productoras de mango en el mundo, principalmente des&oacute;rdenes de declinaci&oacute;n de &aacute;rboles y pudriciones del ped&uacute;nculo (Sakalidis <i>et al.,</i> 2011). De frutos de los tres cultivares con pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo, se aisl&oacute; a <i>L. theobromae</i> y <i>N. parvum,</i> y de ramas de Ataulfo y Tommy Atkins con muerte descendente, se aisl&oacute; a <i>N. parvum</i> y <i>L. pseudotheobromae.</i> Aunque las especies aisladas en este estudio muestran algunas variaciones en caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas de otros estudios (Pennycook y Samuels, 1985; Burgess <i>et al.</i> , 2006; Alves <i>et al.,</i> 2008), la amplificaci&oacute;n con iniciadores universales que amplifican secuencias ribosomales, revel&oacute; un nivel elevado de concordancia en la identificaci&oacute;n taxon&oacute;mica. En aislamientos de la misma especie no se observ&oacute; diversidad gen&eacute;tica. El &aacute;rbol consenso (<a href="/img/revistas/agro/v47n1/a6f3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>) mostr&oacute; la identidad de nucl&eacute;otidos de las secuencias del estudio con las de Camer&uacute;n, China, Namibia, Uruguay y USA (Marincowitz, <i>et</i> al., 2008; Begoude <i>et al.,</i> 2010; Perez <i>et al.,</i> 2010).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Lasiodiplodia pseudotheobromae</i> fue reclasificada por Alves <i>et al.</i> (2008) como especie cr&iacute;ptica de <i>L. theobromae</i> y la consideraron especie nueva. Desde entonces se ha reconocido en hospedantes con importancia comercial, como <i>Citrus</i> spp., <i>Coffea</i> sp., <i>Mangifera</i> spp. y <i>Rosa</i> sp. (Zhao <i>et al.,</i> 2010). Hasta ahora no hab&iacute;a reportes de su presencia en M&eacute;xico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los aislamientos identificados como <i>Neofusicoccum</i> sp. (procedentes de Nayarit) revelaron que este g&eacute;nero presenta un evento de especiaci&oacute;n, ya que al no definirse la especie, posiblemente N. <i>parvum</i> u otra especie del mismo g&eacute;nero, est&aacute; cambiando. La comparaci&oacute;n de los aislamientos de <i>Neofusicoccum</i> sp. de este estudio con la base de datos del BLASTN, mostraron la secuencia <i>Neofusicoccum</i> sp. CMW28320 de Camer&uacute;n como la m&aacute;s cercana a ellos. <i>Neofusicoccum</i> sp. se reporta causando da&ntilde;os en <i>Persea americana</i> (McDonald y Eskalen, 2011), <i>Vaccinium corymbosum</i> (Espinoza <i>et al.,</i> 2009) y <i>Vitis vinifera</i> (Urbez&#45;Torres <i>et al.,</i> 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Similar a lo se&ntilde;alado por Costa <i>et al.</i> (2010), <i>N. parvum</i> fue aislado de los cultivares Tommy Atkins y Kent y <i>L. theobromae</i> fue aislado s&oacute;lo de Tommy Atkins y Ataulfo. Las diferencias de las especies de hongos en mango pueden deberse a las condiciones clim&aacute;ticas, la eficacia de medidas cuarentenarias, la proximidad a los end&oacute;fitos que dominan la vegetaci&oacute;n nativa (Sakalidis <i>et al.,</i> 2011) y especificidad hacia cultivares particulares de mango.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La patogenicidad de los hongos aislados de frutos se mostr&oacute; al reproducir los s&iacute;ntomas en frutos inoculados artificialmente y al reaislarlos. <i>Pestalotiopsis</i> sp. y <i>Phomopsis</i> sp. fueron inoculadas para comparar los s&iacute;ntomas reportados por Jhonson <i>et al.</i> (1991) y Ko, (2009) y s&iacute; coincidieron. La infecci&oacute;n cruzada en frutos, con los aislamientos de <i>L. pseudotheobromae</i> y <i>N. parvum</i> obtenidos de ramas con muerte descendente, permiti&oacute; establecer una posible asociaci&oacute;n con pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo, ya que todos los aislamientos fueron patog&eacute;nicos en los tres cultivares y produjeron s&iacute;ntomas similares a los de los aislamientos de frutos. Estudios de patogenicidad en ramas son necesarios para confirmar la asociaci&oacute;n obtenida aqu&iacute; y si N. <i>parvum</i> causa muerte regresiva de &aacute;rboles de mango, pues esta enfermedad com&uacute;nmente se atribuye <i>L. theobromae.</i> La v&iacute;a de infecci&oacute;n de hongos pat&oacute;genos debe conocerse para seleccionar pr&aacute;cticas de manejo que reduzcan el in&oacute;culo e infecci&oacute;n en los hospedantes. Las especies de la familia Botryosphaeriaceae pueden infectar a las plantas a trav&eacute;s de colonizaci&oacute;n endof&iacute;tica por heridas o semillas (Slippers y Wingfield, 2007; Sakalidis <i>et al.</i> 2011). La informaci&oacute;n de las fuentes de in&oacute;culo, modo y tiempo de infecci&oacute;n y respuesta de los pat&oacute;genos en la postcosecha a las temperaturas de almacenamiento puede contribuir en el control de esas patolog&iacute;as.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los hongos asociados con la pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo de frutos de mango, en los estados de la Costa del Pac&iacute;fico de M&eacute;xico, corresponden a <i>L. theobromae</i> y <i>N. parvum,</i> y se detect&oacute; a <i>Neofusicoccum</i> sp. Los asociados con la muerte descendente de ramas corresponden a <i>L. pseudotheobromae</i> y <i>N. parvum.</i> Se evidenci&oacute; una posible asociaci&oacute;n de pudrici&oacute;n del ped&uacute;nculo con muerte descendente, ya que todos los aislamientos de <i>L. pseudotheobromae</i> y <i>N. parvum,</i> obtenidos de ramas con muerte descendente al inocularlos en ped&uacute;nculos de frutos de Ataulfo, Kent y Tommy Atkins fueron patog&eacute;nicos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Agradecemos al M. C. Juan Manuel Tovar Pedraza, M. C. Luis Alfonso Aguilar P&eacute;rez (Fitopatolog&iacute;a, Colegio de Postgraduados) y al Ing. Jes&uacute;s Orozco Santos (CESAVENAY) por su apoyo en la recoleccci&oacute;n de material vegetal. Al Colegio de Postgraduados por el financiamiento otorgado con el Fideicomiso revocable de administraci&oacute;n e inversi&oacute;n N&uacute;m. 167304 para el establecimiento y operaci&oacute;n de los fondos para la investigaci&oacute;n cient&iacute;fica y desarrollo tecnol&oacute;gico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ahrens, U. and E. Seem&uuml;ller. 1992. Detection de DNA of plant pathogenic mycoplasmalike organisms by polymerase chain reaction that amplifies a sequence of the 16S rRNA gene. Phytopathology 82: 828&#45;832.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573543&pid=S1405-3195201300010000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Alves, A., P. W. Crous, A. Correia, and A. J. L. Phillips. 2008. Morphological and molecular data reveal cryptic species in <i>Lasiodiplodia theobromae.</i> Fungal Divers. 28: 1&#45;13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573545&pid=S1405-3195201300010000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Barnett, L. H. and B. B. Hunter. 1998. Illustrated Genera of Imperfect Fungi. Fourth Edition. The American Phytopathological Society. St. Paul, Minnesota, USA. 218 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573547&pid=S1405-3195201300010000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Begoude, A. D., B. Slippers, M. J. Wingfeld, and J. Roux, 2010. Botryosphaeriaceae associated with <i>Terminalia catappa</i> in Cameroon, South Africa and Madagascar. Mycol. Prog. 9: 101&#45;123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573549&pid=S1405-3195201300010000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Burgess, T. I., P. A. Barber, S. Mohali, G. Pegg, W. de Beer, and M. J. Wingfield. 2006. Three new <i>Lasiodiplodia</i> spp. from the tropics, recognized based on DNA sequence comparisons and morphology. Mycologia 98: 423&#45;435.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573551&pid=S1405-3195201300010000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Costa, V. S. de O., S. J. Michereff, R. B. Martins, C. A. T. Gava, E. S. G. Mizubuti, and M. P. S. C&aacute;mara. 2010. Species of Botryosphaeriaceae associated on mango in Brazil. Eur. J. Plant Pathol. 127: 509&#45;519.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573553&pid=S1405-3195201300010000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Crous, P. W., B. Slippers, M. J. Wingfield, J. Rheeder, W. F. O. Marasas, A. J. L. Philips, A. Alves, T. Burgess, P. Barber, and J. Z. Groenewald. 2006. Phylogenetic lineages in the Botr&#45;yosphaeriaceae. Stud. Mycol. 55: 235&#45;253.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573555&pid=S1405-3195201300010000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Espinoza, J. G., E. X. Brice&ntilde;o, E. R. Chavez, J. R. Urbez&#45;Torres, and B. A. Latorre, 2009. <i>Neofusicoccum</i> spp. associated with stem canker and dieback of blueberry in Chile. Plant Dis. 93: 1187&#45;1194.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573557&pid=S1405-3195201300010000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Felsenstein, J. 1985. Confidence limits on phylogenies: an approach using the bootstrap. Evolution 39: 783&#45;791.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573559&pid=S1405-3195201300010000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hall, T. A. 1999. BioEdit: a user&#45;friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/ NT. Nuc. Acids Symp. Ser. 41: 95&#45;98.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573561&pid=S1405-3195201300010000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Javier&#45;Alva, J., D. Gramaje, L. A. Alvarez, and J. Armengol. 2009. First report of <i>Neofusicoccum parvum</i> associated with dieback of mango trees in Peru. Plant Dis. 93: 426.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573563&pid=S1405-3195201300010000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Johnson, G. I., A. J. Mead, A. W. Cooke, and J. R. Dean. 1991. Mango stem end rot pathogens &#45; Infection levels between flowering and harvest. Ann. Appl. Biol. 119: 465&#45;473.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573565&pid=S1405-3195201300010000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Khanzada, M. A., A. M. Lodhi, and S. Saleem. 2004. Pathogenicity of <i>Lasiodiplodia theobromae</i> and <i>Fusarium solani</i> on mango. Pak. J. Bot. 36: 181&#45;189.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573567&pid=S1405-3195201300010000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ko, Y., C. W. Liu, C. Y. Chen, S. Maruthasalam, and C. H. Lin. 2009.&nbsp;First report of stem end rot of mango caused by <i>Pho&#45;mopsis mangiferae</i> in Taiwan. Plant Dis. 93: 764.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573569&pid=S1405-3195201300010000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Marincowitz, S., J. Z. Groenewald, M. J. Wingfield, and P. W. Crous. 2008. Species of Botryosphaeriaceae occurring on Proteaceae. Persoonia 21: 111&#45;118.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573571&pid=S1405-3195201300010000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">McDonald, V. and A. Eskalen, 2011. Botryosphaeriaceae species associated with avocado branch cankers in California. Plant Dis. 95: 1465&#45;1473.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573573&pid=S1405-3195201300010000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mirzaee, M. R., M. Azadvar, and D. Ershad. 2002. The incidence of <i>Lasiodiplodia theobromae</i> the cause of fruit and stem&#45;end rot of mango in Iran. Iran. J. Plant Pathol. 38: 62&#45;65.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573575&pid=S1405-3195201300010000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Molina, G. E., H. V. Silva R., and S. Garc&iacute;a M. 2012. First report of black spots on avocado fruit caused by <i>Neofusicoccum parvum</i> in Mexico. Plant Dis. 96: 287.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573577&pid=S1405-3195201300010000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ni, H. F., R. F. Liou, T. H. Hung, R. S. Chen, and H. R. Yang. 2010.&nbsp;First report of fruit rot disease of mango caused by <i>Botryosphaeria dothidea</i> and <i>Neofusicoccum mangiferae</i> in Taiwan. Plant Dis. 94: 128.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573579&pid=S1405-3195201300010000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pennycook, S. R. and G. J. Samuels. 1985. <i>Botryosphaeria</i> and <i>Fusicoccum</i> species associated with ripe fruit rot of <i>Actinidia deliciosa</i> (Kiwifruit) in New Zealand. Mycotaxon 24: 445-458.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573581&pid=S1405-3195201300010000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Perez, C. A., M. J. Wingfield, B. Slippers, N. A. Altier, and R. A. Blanchette, 2010. Endophytic and canker&#45;associated Botryosphaeriaceae occurring on non&#45;native <i>Eucalyptus</i> and native Myrtaceae trees in Uruguay. Fungal Divers. 41: 53&#45;69.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573583&pid=S1405-3195201300010000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Punithalingam, E. 1976. <i>Botryodiplodia theobromae.</i> Commonwealth Mycological Institute. Descriptions of Pathogenic Fungi and Bacteria 519: 1&#45;3.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573585&pid=S1405-3195201300010000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sakalidis, M. L., J. D. Ray, V. Lanoiselet, G. E. StJ. Hardy, and T. I. Burgess. 2011. Pathogenic Botryosphaeriaceae associated with <i>Mangifera indica</i> in the Kimberley Region of Western Australia. Eur. J. Plant Pathol. 130: 379&#45;391.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573587&pid=S1405-3195201300010000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Slippers, B., G. I. Johnson, P. W. Crous, T. A. Coutinho, B. D. Wingfield, and M. J. Wingfield. 2005. Phylogenetic and morphological re&#45;evaluation of the <i>Botryosphaeria</i> species causing diseases of <i>Mangifera indica.</i> Mycologia 97: 99&#45;110.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573589&pid=S1405-3195201300010000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Slippers, B. and M. J. Wingfield. 2007. Botryosphaeriaceae as endophytes and latent pathogens of woody plants: diversity, ecology and impact. Fungal Biol. Rev. 21: 90&#45;106.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573591&pid=S1405-3195201300010000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sutton, B. C. 1980. The Coelomycetes. Commonwealth Mycological Institute, Kew, Surrey, UK. 696 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573593&pid=S1405-3195201300010000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tamura, K., J., M. N. Dudley, and S. Kumar. 2007. MEGA4: Molecular evolutionary genetics analysis (MEGA) software version 4.0. Mol. Biol. Evol. 24: 1596&#45;1599.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573595&pid=S1405-3195201300010000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Thompson, J. D., D. G. Higgins, and T. J. Gibson. 1994. Clustal W: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position&#45;specific gap penalties and weight matrix choice. Nucl. Acids Res. 22: 4673&#45;80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573597&pid=S1405-3195201300010000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Urbez&#45;Torres, J. R., M. Battany, L. J. Bettiga, C. Gispert, G. McGourty, J. Roncoroni, R. J. Smith, P. Verdegaal, and W. D. Gubler. 2010. Botryosphaeriaceae species spore&#45;trapping studies in California vineyards. Plant Dis. 94: 717&#45;724.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573599&pid=S1405-3195201300010000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zhao, J. P., Q. Lu, J. Liang, C. Decock, and X. Y. Zhang, 2010. <i>Lasiodiplodia pseudotheobromae,</i> a new record of pathogenic fungus from some subtropical and tropical trees in southern China. Cryptogamie Mycologie. 31: 431&#45;439.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=573601&pid=S1405-3195201300010000600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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