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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[La citocinina BAP retrasa senescencia, aumenta antioxidantes, proteina y crecimiento en el pasto ovillo (Dactylis glomerata L.)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The cytokinin BAP delays senescence and increases antioxidants, protein and growth in orchard grass (Dactylis glomerata L.)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Senescence is one of the main causes in the reduction of forage nutritive quality and green area. Cytokinins promote delay of leaf senescence, but little is known of their effect on regulation of oxidative stress in forages. This study assessed the effect of the cytokinin 6-benzylaminopurine (BAP) on growth, senescence, soluble protein (PS) ascorbic acid (AA), hydrogen peroxide (H2O2), and activity of ascorbate peroxidase (APX) in orchard grass (Dactylis glomerata L.). Ten-month-old plants were used to measure growth and 4-month-old plants were used to assess APX, AA, H2O2, and soluble protein (PS). After cutting the plants 5 cm above ground level, they were sprayed weekly for seven weeks with a BAP (0.1 mM) solution. The experimental design was completely random. Results were analyzed with ANOVA (SAS, 1995), and means compared with the Tukey test (p£0.05). Spraying with BAP increased (p<0.05) leaf elongation and growth (cm stem-1) by 36% 17 weeks after cutting. Accumulated leaf senescence per stem (cm stem -1) decreased (p<0.05) in plants treated with BAP, and senescence was delayed from week 13 after cutting. Leaves sprayed with BAP increased (p<0.05) PS by 18% between 14 and 47 d after cutting and surpassed (p<0.05) the control by 64%. In plants with delayed senescence (BAP) the AA content, APX activity, and H2O2 increased. It is concluded that the cytokinin BAP promoted growth, accumulation of soluble protein, and delayed leaf senescence, by regulating signaling through H2O2, in AA accumulation and APX activity, with a protective function against the oxidative stress of senescence.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Fitociencia</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>La citocinina BAP retrasa senescencia, aumenta antioxidantes, proteina y crecimiento en el pasto ovillo (<i>Dactylis glomerata</i> L.)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>The cytokinin BAP delays senescence and increases antioxidants, protein and growth in orchard grass (<i>Dactylis glomerata </i>L.)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Claudia Y. Wilson&#150;Garc&iacute;a<sup>1</sup>, Hilda A. Zavaleta&#150;Mancera<sup>1</sup>*, Humberto L&oacute;pez&#150;Delgado<sup>2</sup> y Alfonso Hern&aacute;ndez&#150;Garay<sup>3</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1 </sup>Bot&aacute;nica, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agr&iacute;colas y Pecuarias (INIFAP). 52140. Metepec, Estado de M&eacute;xico. M&eacute;xico. * Autor responsable</i>: (<a href="mailto:arazavaleta@colpos.mx">arazavaleta@colpos.mx</a>)</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Programa Nacional de Papa, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agr&iacute;colas y Pecuarias (INIFAP). 52140. Metepec, Estado de M&eacute;xico. M&eacute;xico</i>.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> Ganader&iacute;a. Campus Montecillo Colegio de Postgraduados. 56230. Montecillo, Estado de M&eacute;xico. M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: Noviembre, 2007.     <br> Aprobado: Octubre, 2008.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La senescencia es una de las principales causas en la reducci&oacute;n de la calidad nutritiva y &aacute;rea verde de los forrajes. Las citocininas promueven el retraso de la senescencia foliar, pero poco se conoce de su efecto en la regulaci&oacute;n del estr&eacute;s oxidativo en forrajes. En el presente trabajo se evalu&oacute; el efecto de la citocinina 6&#150;bencilaminopurina (BAP) en el crecimiento, senescencia, prote&iacute;na soluble (PS), &aacute;cido asc&oacute;rbico (AA), per&oacute;xido de hidr&oacute;geno (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>) y actividad de la ascorbato peroxidasa (APX) en el pasto ovillo <i>(Dactylis glomerata </i>L.). Plantas de 10 meses de edad para medir crecimiento y de cuatro meses de edad para evaluar APX, AA, H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> y prote&iacute;na soluble (PS) fueron cortadas a 5 cm sobre el nivel del suelo; luego fueron asperjadas semanalmente por siete semanas con una soluci&oacute;n BAP 0.1 mM. El dise&ntilde;o experimental fue completamente al azar. Los resultados se analizaron con una ANOVA (SAS, 1995) y las medias se compararon con una prueba de Tukey (p<u>&lt;</u>0.05). Las aspersiones con BAP aumentaron (p<u>&lt;</u>0.05) la elongaci&oacute;n y el crecimiento de la hoja (cm tallo <sup>&#150;1</sup>) en 36% a la semana 17 despu&eacute;s del corte. La senescencia foliar acumulada por tallo (cm tallo <sup>&#150;1</sup>) se redujo (p<u>&lt;</u>0.05) en las plantas con BAP, y se retras&oacute; la senescencia desde la semana 13 despu&eacute;s del corte. Las hojas asperjadas con BAP aumentaron (p<u>&lt;</u>0.05) su PS en 18% a los 47 d despu&eacute;s del corte (DDC) con respecto al registrado a los 14 DDC y superaron (p<u>&lt;</u>0.05) en 64% al testigo. En las plantas con retraso de senescencia (BAP) aument&oacute; el contenido de AA, la actividad APX y el H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>. Se concluye que la citocinina BAP promovi&oacute; el crecimiento, acumulaci&oacute;n de prote&iacute;na soluble y retras&oacute; la senescencia foliar, regulando la se&ntilde;alizaci&oacute;n mediante el H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>, en la acumulaci&oacute;n de AA y actividad de la APX, con una funci&oacute;n protectora ante el estr&eacute;s oxidativo de la senescencia.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Dactylis glomerata, </i>&aacute;cido asc&oacute;rbico (AA), ascorbato peroxidada (APX), crecimiento, senescencia, 6&#150;bencilaminopurina.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Senescence is one of the main causes in the reduction of forage nutritive quality and green area. Cytokinins promote delay of leaf senescence, but little is known of their effect on regulation of oxidative stress in forages. This study assessed the effect of the cytokinin 6&#150;benzylaminopurine (BAP) on growth, senescence, soluble protein (PS) ascorbic acid (AA), hydrogen peroxide (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>), and activity of ascorbate peroxidase (APX) in orchard grass (<i>Dactylis glomerata </i>L.). Ten&#150;month&#150;old plants were used to measure growth and 4&#150;month&#150;old plants were used to assess APX, AA, H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>, and soluble protein (PS). After cutting the plants 5 cm above ground level, they were sprayed weekly for seven weeks with a BAP (0.1 mM) solution. The experimental design was completely random. Results were analyzed with ANOVA (SAS, 1995), and means compared with the Tukey test (p&pound;0.05). Spraying with BAP increased (p<u>&lt;</u>0.05) leaf elongation and growth (cm stem<sup>&#150;1</sup>) by 36% 17 weeks after cutting. Accumulated leaf senescence per stem (cm stem <sup>&#150;1</sup>) decreased (p<u>&lt;</u>0.05) in plants treated with BAP, and senescence was delayed from week 13 after cutting. Leaves sprayed with BAP increased (p<u>&lt;</u>0.05) PS by 18% between 14 and 47 d after cutting and surpassed (p<u>&lt;</u>0.05) the control by 64%. In plants with delayed senescence (BAP) the AA content, APX activity, and H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> increased. It is concluded that the cytokinin BAP promoted growth, accumulation of soluble protein, and delayed leaf senescence, by regulating signaling through H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>, in AA accumulation and APX activity, with a protective function against the oxidative stress of senescence.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b><i>Dactylis glomerata, </i>ascorbic acid, ascorbate peroxidase, growth, senescence, 6&#150;benzylaminopurine.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los sistemas intensivos de producci&oacute;n pecuaria se requieren alternativas como la producci&oacute;n en pastoreo, con pasto ovillo <i>(Dactylis glomerata </i>L.), ballico perenne <i>(Lolium perenne </i>L.) y praderas asociadas con alfalfa <i>(Medicago sativa </i>L., en zonas templadas. Adem&aacute;s, la determinaci&oacute;n de las curvas de crecimiento de las plantas forrajeras (Velasco&#150;Zebad&uacute;a <i>et al., </i>2001) permiten mejorar la productividad y calidad del forraje, reduciendo los efectos de la edad y su deterioro (Hodgson y Brookes, 1999). Los pastos despu&eacute;s de la madurez sufren envejecimiento o senescencia foliar, que es un tipo de muerte celular programada y un proceso degenerativo gen&eacute;ticamente regulado (Buchanan&#150;Wollaston <i>et al., </i>2003). En la senescencia foliar hay p&eacute;rdida de clorofila y de actividad fotosint&eacute;tica; se reducen las prote&iacute;nas, ARN y el tejido sufre estr&eacute;s oxidativo con la producci&oacute;n de especies reactivas de ox&iacute;geno (ERO): ox&iacute;geno en estado singulete (<sup>1</sup>O<sub>2</sub>), super&oacute;xido(O<sup>&#150;2</sup>), radicales hidroxilo (OH <sup>&#150;</sup>) y H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> que da&ntilde;an la c&eacute;lula y contribuyen a la muerte de la planta (Prochazkova <i>et al., </i>2001). Los principales sistemas antioxidantes en las c&eacute;lulas vegetales son: 1) compuestos de destoxificaci&oacute;n enzim&aacute;ticos: catalasa (CAT), peroxidasas (POX), super&oacute;xido dismutasa (SOD), glutati&oacute;n reductasa; 2) no enzim&aacute;ticos: &aacute;cido asc&oacute;rbico (AA), carotenoides, antocianinas (Foyer y Noctor, 2005). En condiciones normales estos mecanismos de protecci&oacute;n pueden controlar la concentraci&oacute;n de ERO y reducir sus efectos (Scandalios, 2005). Durante la senescencia foliar hay un desequilibrio porque aumenta la concentraci&oacute;n de ERO y disminuye la producci&oacute;n de antioxidantes. Entonces, un aumento en los mecanismos antioxidantes es determinante en la protecci&oacute;n al estr&eacute;s oxidativo (Foyer y Noctor, 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La citocinina 6&#150;bencilaminopurina (BAP) puede retrasar la senescencia foliar de varias especies (Gan y Amasino 1996), reduciendo la degradaci&oacute;n de pigmentos, de prote&iacute;nas fotosint&eacute;ticas y membranas cloropl&aacute;sticas y manteniendo el equilibrio h&iacute;drico del tejido (Dangl <i>et al., </i>2000), pero poco se conoce de su efecto biol&oacute;gico en el crecimiento, contenido de prote&iacute;na y balance oxidativo en el pasto ovillo. Por tanto, el objetivo del presente trabajo fue estudiar el efecto de la citocinina BAP en el crecimiento, senescencia y acumulaci&oacute;n de prote&iacute;na soluble en pasto ovillo, midiendo la respuesta antioxidante enzim&aacute;tica (APX) y no enzim&aacute;tica (AA), y la acumulaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> durante la senescencia.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El presente estudio se efectu&oacute; en los invernaderos de Bot&aacute;nica, Colegio de Postgraduados, Montecillo, Estado de M&eacute;xico, (48' 27<sup>'</sup>' O y 19&deg; 48' 23<sup>'</sup>' N). Se sembr&oacute; un promedio de 27 semillas de pasto ovillo por maceta (30 kg ha<sup>&#150;1</sup>) en 135 macetas (23.5 cm di&aacute;metro; 20 cm profundidad) con una mezcla 1:1:1 de suelo arcillo&#150;arenoso (prevaleciente en Montecillo), sustrato comercial (peat&#150;moss comercial, COSMOCEL) y agrolita est&eacute;ril (Dicalite de M&eacute;xico). Desde la siembra (03 de marzo 2005) a su establecimiento (tres meses) las plantas fueron regadas cada tercer d&iacute;a, y despu&eacute;s cada 4 d.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Crecimiento foliar y retraso de senescencia</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se usaron ocho macetas con plantas de 10 meses de edad y se tomaron datos del 31 de enero al 30 de mayo de 2006. Los tratamientos (cuatro macetas en cada uno) fueron: 1) una soluci&oacute;n BAP 0.1 mM (0.1 mM 6&#150;bencilaminopurina, 0.02% dimetilsulf&oacute;xido (DMSO) y 0.02% Tween 20 en agua); 2) una soluci&oacute;n testigo (0.02% DMSO y 0.02% Tween 20 en agua). Se hizo un corte de uniformizaci&oacute;n a 5 cm del suelo y una semana despu&eacute;s se asperjaron semanalmente (en siete ocasiones) con 100 mL de soluci&oacute;n de BAP y testigo por maceta, a las 07:00 h.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las mediciones se hicieron en cinco tallos por maceta, seleccionados al azar (Bircham y Hodgson, 1983). Los tallos se identificaron con etiquetas pl&aacute;sticas de colores. En cada hoja de cada tallo marcado se midi&oacute; la longitud total de la l&aacute;mina (distancia de la l&iacute;gula al &aacute;pice); la longitud de la parte verde y la longitud de la parte senescente se calcul&oacute; por diferencia de las anteriores. Las longitudes de la parte senescente y de la parte verde se sumaron y dividieron entre cinco tallos por repetici&oacute;n, para obtener el promedio por tallo. Los datos se reportan (cm tallo<sup>&#150;1</sup>) como crecimiento acumulado, senescencia acumulada y crecimiento neto de la hoja (diferencia entre crecimiento acumulado y la senescencia acumulada.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Prote&iacute;na soluble y actividad antioxidante</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En plantas (100 macetas) de cuatro meses de edad (5 de julio) se hizo un corte de uniformidad, a 5 cm del nivel del suelo. El experimento inici&oacute; el 12 de julio y termin&oacute; el 22 de septiembre de 2006. De cada tallo se marc&oacute; (corrector tipogr&aacute;fico) la hoja m&aacute;s joven expuesta, para monitorear cada d&iacute;a el crecimiento de las hojas nuevas. Se muestrearon: hojas j&oacute;venes, 7 d despu&eacute;s del corte (DDC); parcialmente expandidas, sin l&iacute;gula expuesta; hojas maduras (14 DDC), con l&iacute;gula expuesta y totalmente expandidas. Desde 14 DDC edad (hojas maduras) 50 macetas fueron asperjadas semanalmente (siete aspersiones) con soluci&oacute;n BAP y 50 con soluci&oacute;n testigo. Se muestrearon hojas senescentes (47 DDC) con 30&#150;40% de senescencia y hojas (59 DDC) con 50&#150;60% de senescencia de plantas testigo y asperjadas con BAP. La actividad de ascorbato peroxidasa (APX) se midi&oacute; seg&uacute;n Jim&eacute;nez <i>et al. </i>(1997); el contenido de &aacute;cido asc&oacute;rbico (AA) seg&uacute;n Noctor y Foyer (1998) y la prote&iacute;na soluble (PS) seg&uacute;n Bradford (1976). El contenido de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> se determin&oacute; con el m&eacute;todo de quimioluminiscencia (Warm y Laties, 1982).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dise&ntilde;o experimental fue completamente al azar. Los resultados se analizaron con ANO VA (SAS, 1995) y las medias se compararon con la prueba de Tukey (p<u>&lt;</u>0.05).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Crecimiento foliar y retraso de senescencia</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las aspersiones BAP promovieron la elongaci&oacute;n de la hoja (crecimiento acumulado; <a href="#f1">Figura 1A</a>) desde la semana tres del corte; en la semana seis las plantas tratadas aumentaron (p<u>&lt;</u>0.05) su crecimiento con respecto a las testigo y en la semana 17 el crecimiento acumulado fue 36% superior al testigo. En las primeras cuatro semanas el crecimiento neto no fue diferente (p&gt;0.05) entre tratamientos (<a href="#f1">Figura 1C</a>), mientras que las plantas testigo desde la semana 15 mostraron una ca&iacute;da marcada hasta alcanzar valores negativos, ya que las p&eacute;rdidas por descomposici&oacute;n superaron al crecimiento foliar. Al respecto, Chapman y Lemaire (1993) mencionan que al final de la curva de acumulaci&oacute;n de forraje las p&eacute;rdidas por senescencia superan al crecimiento y, por tanto, se reduce la acumulaci&oacute;n neta de forraje. Seg&uacute;n Velasco&#150;Zebad&uacute;a <i>et al. </i>(2001), en pasto ovillo las m&aacute;ximas tasas de crecimiento ocurren en la semana tres de primavera, en la cuarta de verano, en la sexta de oto&ntilde;o y en la s&eacute;ptima de invierno; despu&eacute;s las tasas de crecimiento disminuyen debido a un aumento progresivo de tallos y material senescente. El mayor crecimiento en pasto ovillo se relaciona con una promoci&oacute;n de la divisi&oacute;n y el alargamiento celular, efectos conocidos de las citocininas en cotiledones y hojas de mostaza <i>(Brassica nigra) </i>cucurbit&aacute;ceas <i>(Cucurbita pepo) </i>y girasol <i>(Helianthus annuus) </i>(Taiz y Zeiger, 2002). Adem&aacute;s, la extensi&oacute;n de la pared celular es regulada por auxinas y citocininas; la falta de citocininas detiene la fase G2 del ciclo celular (Jacobs, 1995).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v42n7/a6f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La senescencia acumulada no cambi&oacute; (p&gt;0.05) en las primeras semanas (<a href="#f1">Figura 1B</a>), pero desde la semana 11 el BAP redujo la senescencia; en la semana 17, las plantas asperjadas con BAP tuvieron 28.6% menos senescencia que las testigo. Estos resultados son nuevos para el pasto ovillo donde el BAP puede retrasar su senescencia foliar y prolongar la vida de las hojas verdes, como ha sido observado en hojas de otras especies: arroz, <i>Oriza sativa </i>(Ookawa <i>et al., </i>2004); ma&iacute;z, <i>Zea mayz </i>(He <i>et al., </i>2005); trigo, <i>Triticum aestivum </i>(Zavaleta&#150;Mancera <i>et al., </i>2007) donde el retraso de la senescencia foliar est&aacute; asociado con retenciones de clorofila (50&#150;70%) y una disminuci&oacute;n de clorofilasas, nucleasas y proteasas. Durante la senescencia natural disminuyen las concentraciones de citocininas en el xilema (Gan y Amasino, 1996); entonces, las aspersiones con BAP compensaron las deficiencias de este regulador en las hojas y retrasaron el envejecimiento en pasto ovillo. Se midi&oacute; el porcentaje de senescencia en la hoja y no la clorofila en el pasto ovillo, ya que su patr&oacute;n de senescencia se presenta como muerte foliar, la cual inicia en el &aacute;pice y avanza hacia la base de la l&aacute;mina (bas&iacute;peta). Adem&aacute;s, en forrajes la senescencia se mide como presencia de material muerto (Hern&aacute;ndez&#150;Garay <i>et al., </i>1997; Velasco&#150;Zebad&uacute;a <i>et al., </i>2001).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Contenido de prote&iacute;na soluble, antioxidantes y per&oacute;xido de hidr&oacute;geno</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En las hojas testigo el mayor contenido de PS (11.0&plusmn;0.49 mg g<sup>&#150;1</sup> tejido) ocurri&oacute; a los 14 DDC en hojas maduras, pero luego disminuy&oacute; con la edad (<a href="#f2">Figura 2</a>. A los 47 DDC las hojas presentaron 30&#150;40% de senescencia y 50&#150;60% a los 59 DDC. En contraste, las hojas asperjadas con BAP mantuvieron el contenido de PS e incluso aument&oacute; (p<u>&lt;</u>0.05) 18% a los 47 DDC respecto a los 14 DDC, y 64% respecto a las testigo. A los 59 DDC las plantas con BAP tuvieron 2.5 veces m&aacute;s PS que las testigo (senescentes). Estos resultados concuerdan con lo observado en hojas de trigo, donde aplicaciones de BAP retuvieron 60% de clorofila y 77% de PS (Zavaleta&#150;Mancera <i>et al., </i>2007). Las citocininas pueden promover la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas cloropl&aacute;sticas, las cuales constituyen 70% de la PS en una hoja verde (Dangl <i>et al., </i>2000). As&iacute;, en el presente experimento, la aplicaci&oacute;n de BAP en pasto ovillo retras&oacute; la p&eacute;rdida de PS durante la senescencia, pero promovi&oacute; su acumulaci&oacute;n a los 47 y 59 DDC.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v42n7/a6f2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de AA aument&oacute; (p<u>&lt;</u>0.05) en los primeros 47 DDC, (1.5 <i>&micro;</i>mol mg<sup>&#150;1</sup> tejido), pero disminuy&oacute; (p<u>&lt;</u>0.05) durante la senescencia (59 DDC) en las plantas testigo (<a href="#f3">Figura 3A</a>). En contraste, en las hojas asperjadas con BAP el contenido de AA aument&oacute; (p&gt;0.05) a los 47 DDC (2.1 <i>&micro;</i>mol mg<sup>&#150;1</sup> tejido) y a los 59 DDC (2.5 <i>&micro;mol </i>mg<sup>&#150;1</sup> tejido) respecto a las plantas testigo (1.5 y 1.2<i> &micro;</i>mol mg<sup>&#150;1</sup>tejido). La actividad de APX tambi&eacute;n aument&oacute; (p<u>&lt;</u>0.05) a los 47 DDC (27%) y 59 DDC (79.5%) respecto a las hojas testigo (<a href="#f3">Figura 3B</a>). Estos resultados concuerdan con Liu y Huang (2002) y Zavaleta&#150;Mancera <i>et al., </i>(2007), quienes proponen que las citocininas activan la defensa antioxidante y retrasan el da&ntilde;o oxidativo durante la senescencia.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v42n7/a6f3.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El BAP puede retrasar el da&ntilde;o oxidativo no s&oacute;lo induciendo la actividad de algunas enzimas antioxidantes como APX, sino tambi&eacute;n aumentando el contenido total de AA; esto estimul&oacute; la actividad de APX y la capacidad antioxidante en hojas de t&eacute; (<i>Camellia sinensis</i>) (Chen y Asada, 1989). Adem&aacute;s, en fragmentos senescentes de trigo incubados en obscuridad, el BAP aument&oacute; la actividad de CAT y APX en contraste con las hojas sin citocinina (Zavaleta&#150;Mancera <i>et al., </i>2007). En el presente experimento el an&aacute;lisis de los datos sugiere que mecanismos similares de protecci&oacute;n al da&ntilde;o oxidativo en trigo operan en el pasto ovillo con el efecto del BAP: promueven la acumulaci&oacute;n de AA, aumentan la actividad de APX, y disminuyen el da&ntilde;o oxidativo caracter&iacute;stico de la senescencia. Lo anterior previene la peroxidaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos en la membrana y la muerte celular (Scandalios, 2005). Las concentraciones de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> en las hoja de pasto ovillo asperjadas con BAP a los 47 DDC (30&#150;40% senescencia) y 59 DDC (50&#150;60% senescencia) superaron (p<u>&lt;</u>0.05) a las plantas testigo en 52% y 53% (<a href="#f4">Figura 4</a>). El H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> en altas concentraciones puede ser t&oacute;xico para la planta, pero tambi&eacute;n puede funcionar como una mol&eacute;cula se&ntilde;alizadora que induce la expresi&oacute;n de genes de protecci&oacute;n al estr&eacute;s (Neill <i>et al., </i>2002). Entonces, los aumentos en H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> en pasto ovillo asperjado con BAP pueden estar asociados con la se&ntilde;alizaci&oacute;n de genes de defensa al estr&eacute;s de la senescencia, mientras que el aumento en el contenido de prote&iacute;na y de actividad APX pueden asociarse a mecanismos de se&ntilde;alizaci&oacute;n del H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> por efecto de BAP que condujeron a un retraso en el envejecimiento celular; adem&aacute;s, la actividad antioxidante de AA y APX pueden regular la acumulaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> en la se&ntilde;alizaci&oacute;n, sin ser letales a la c&eacute;lula. En la papa <i>(Solanum tuberosum), </i>una acumulaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> indujo tolerancia a choques de calor adem&aacute;s, tratamientos con H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> pueden aumentar la actividad de catalasa (CAT) y la supervivencia de pl&aacute;ntulas de papa <i>(Solanum tuberosum) </i>a bajas temperaturas en 44 y 92%, seg&uacute;n la variedad (Mora&#150;Herrera y L&oacute;pez&#150;Delgado, 2006).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v42n7/a6f4.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La aplicaci&oacute;n de 6&#150;bencilaminopurina BAP (0.1 mM) retras&oacute; la senescencia foliar del pasto ovillo; a las 17 semanas se redujo 28.6% y a los 59 d la PS aument&oacute; 2.5 veces. Adem&aacute;s, BAP promovi&oacute; la acumulaci&oacute;n de &aacute;cido asc&oacute;rbico (AA). Se propone que uno de los mecanismos de retraso de senescencia en el pasto ovillo es mediante el aumento de los antioxidantes APX, AA aumentando la protecci&oacute;n al da&ntilde;o de membranas durante la senescencia foliar. Entonces, se podr&iacute;a manipular la senescencia en una pradera lo cual ofrece ventajas para su aprovechamiento y manejo, adem&aacute;s de los aumentos en prote&iacute;na y AA que podr&iacute;a mejorar su calidad nutritiva.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El presente trabajo fue financiado por el proyecto CONACYT&#150;SEP 43866&#150;Z y es parte de la investigaci&oacute;n de maestr&iacute;a del primer autor.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bircham, J. S., and J. Hodgson. 1983. The influence of sward conditions on rates of herbage growth and senescence in mixed swards under continuous grazing management. Grass Forage Sci. 38 (4): 323&#150;331.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526363&pid=S1405-3195200800070000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bradford, M. M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantization of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein&#150;dye binding. Anal. Biochem. 72: 248&#150;254.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526364&pid=S1405-3195200800070000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Buchanan&#150;Wollaston, V. 1997. The molecular biology of leaf senescence. J. Exp. Bot. 48: 181&#150;199.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526365&pid=S1405-3195200800070000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Buchanan&#150;Wollaston, V, S. Earl, E. Harrison, E. Mathas, S. Navabpour, and T. Page. 2003. The molecular analysis of leaf senescence&#150;a genomic approach. Plant Biotechnol. J. 1:3&#150;22.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526366&pid=S1405-3195200800070000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chapman, D. F., and G. Lemaire. 1993. Morphogenetic and structural determinants of plants regrowth after defoliation. Proc. XVII Int. Congress. Palmerston North, N. Z. pp: 95&#150;104.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526367&pid=S1405-3195200800070000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chen, G&#150;X., and K. Asada 1989. Ascorbate peroxidase in tea leaves: occurrence of two isozymes and the differences in their enzymatic and molecular properties. Plant and Cell Physiol. 30: 987&#150;998.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526368&pid=S1405-3195200800070000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dangl, J, R.A Dietrich, and H. Thomas. 2000. Senescence and programed cell death. <i>In: </i>Buchanan, B. B., W. Gruissem, R. and L. Jones (eds). Biochemistry and Molecular Biology of Plants. American Society of Plant Physiologists Press. Rockville, USA.pp: 1044&#150;1100.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526369&pid=S1405-3195200800070000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Foyer, C. H., and G. Noctor. 2005. Oxidant and antioxidant signalling in plants: a re&#150;evaluation of the concept of oxidative stress in a physiological context. Plant Cell Environ. 28: 1056&#150;1071.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526370&pid=S1405-3195200800070000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gan, S., and R. M. Amasino. 1996. Cytokinins in plant senescence: from spray and pray to clone and play. Bio Essays 18: 557&#150;565.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526371&pid=S1405-3195200800070000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">He, P., M. Osaki, M. Takebe, T. Shinano, and J. Wasaki. 2005. Endogenous hormones and expression of senescence&#150;related genes in different senescent types of maize. J. Exp. Bot. 56: 1117&#150;1128.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526372&pid=S1405-3195200800070000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hern&aacute;ndez&#150;Garay, A., C. Matthew, and J. Hodgson. 1997. Effect of spring grazing management on perennial ryegrass and ryegrass&#150;white clover pastures. 2. Tiller and growing point densities and population dynamics. New Zealand J. Agric. Res. 40: 37&#150;50.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526373&pid=S1405-3195200800070000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hodgson, J., and I. M. Brookes. 1999. Nutrition of grazing animals. <i>In: </i>White, J., and J. Hodgson (eds). New Zealand Pasture and Crop Science. Auckland, New Zealand Oxford University Press. 323 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526374&pid=S1405-3195200800070000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jacobs, T. W. 1995. Cell cycle control. Ann. Rev.Plant. Physiol. Plant Mol. Biol. 46: 317&#150;319.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526375&pid=S1405-3195200800070000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jim&eacute;nez, A., J. A. Hern&aacute;ndez, L. A. Del R&iacute;o, and F. Sevilla. 1997. Evidence for the presence of the ascorbate&#150;glutathione cycle in mitochondria and peroxisomes of pea leaves. Plant Physiol. 114: 275&#150;284.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526376&pid=S1405-3195200800070000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Li, Q., J. E. Bettany, I. Donninson, C. M. Griffths, H. Thomas, and I. M. Scott. 2000. Characterization of a cysteine protease cDNA from <i>Lolium multiflorum </i>leaves and its expression during senescence and cytokinin treatment. Biochim. Biophys. Acta 1492:233&#150;236.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526377&pid=S1405-3195200800070000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Liu, X., and B. Huang. 2002. Cytokinin effects on creeping bentgrass response to heat stress. II. Leaf senescence and antioxidant metabolism. Crop Sci. 42:466&#150;472.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526378&pid=S1405-3195200800070000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Neill, S. J., R. Desikan, and J. T. Hancock. 2002. Hydrogen peroxide signalling. Curr. Opin. Plant Biol. 5:388&#150;395.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526379&pid=S1405-3195200800070000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mora&#150;Herrera, M. E., y H. L&oacute;pez&#150;Delgado. 2006. Tolerancia a baja temperatura inducida por &aacute;cido salic&iacute;lico y per&oacute;xido de hidr&oacute;geno en microplantas de papa. Fit. M&eacute;x. 29:81&#150;85.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526380&pid=S1405-3195200800070000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Noctor, G., and C. H. Foyer 1998. Ascorbate and glutathione: keeping active oxygen under control. Physiol. Plant Mol. Biol. 49:249&#150;279.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526381&pid=S1405-3195200800070000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ookawa, T., Y. Naruoka, A. Sayama, and T. Hirasawa 2004. Cytokinin effects on ribulose 1&#150;5&#150;biphosphate carboxilase/ oxigenase and nitrogen partitioning in rice during ripening. Crop Sci. 44: 2107&#150;2115.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526382&pid=S1405-3195200800070000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Prochazkova, D., R. K. Sairam, G. C. Srivastava, and D. V. Singh. 2001. Oxidative stress and antioxidant activity as the basis of senescence in maize leaves. Plant Sci. 161:765&#150;771.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526383&pid=S1405-3195200800070000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SAS Institute Inc. 1995. User's Guide. Statistics. Version 6. Fourth ed. SAS Inc. Cary North America, USA. 956 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526384&pid=S1405-3195200800070000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Scandalios, J. G. 2005. Oxidative stress: molecular perception and transduction of signals triggering antioxidant gene defenses. Braz. J. Medical Biol. Res. 38: 995&#150;1014.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526385&pid=S1405-3195200800070000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Taiz, L., and E. Zeiger. 2002. Plant Physiology. Third ed. Sinauer Associates, Inc. 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Loza&#150;Tavera, M. Mora&#150;Herrera, C. Trevilla&#150;Garc&iacute;a, M. Vargas&#150;Suarez, and H. J. Ougham. 2007. Cytokinin promotes catalase and ascorbate peroxidase activities and preserves the chloroplast integrity during dark&#150;senescence. J. Plant Physiol. 164:1572&#150;1582.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=526389&pid=S1405-3195200800070000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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