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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto antifúngico de extractos de gobernadora (Larrea tridentata L.) sobre la inhibición in vitro de Aspergillus flavus y Penicillium sp.]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Mexico is important as a producer and consumer of grains, of which maize is paramount owing to its extensive use as human food. The problematic phytosanitary issue with this crop is the high susceptibility of the grains to contamination by dangerous mycotoxins produced principally by the genera Aspergillus and Penicillium. In this experiment the antifungal activity of gobernadora (Larrea tridentata L.) extracts was evaluated on the in vitro growth of Aspergillus flavus and Penicillium sp. To evaluate the antifungal activity we used two techniques: the agar-well diffusion method with addition of 50 &#956;L of the extract at four concentrations (100, 200, 400 and 600 mg/ mL) and the agar-dilution method. This consisted of making a homogeneous mixture of the extracts at a concentration of 100 mg/ mL and potato dextrose agar (PDA). The extract activity was reflected in the formation of an inhibition halo in the first technique and radial mycelial growth in the second. The results obtained from both techniques suggest clear antifungal effects, especially with ethanol and methanol extracts. These were highly efficient, showing minimal inhibitory concentrations that ranged from 3 to 7 mg/mL and achieving up to 100% inhibition of both fungi.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Efecto antif&uacute;ngico de extractos de gobernadora (<i>Larrea tridentata</i> L.) sobre la inhibici&oacute;n <i>in vitro </i>de<i> Aspergillus flavus</i> y <i>Penicillium</i> sp.</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Antifungal effect of gobernadora extracts (<i>Larrea tridentata</i> L.) on <i>in vitro</i> inhibiton of <i>Aspergillus flavus</i> and <i>Penicillium</i> sp.</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>S. Moreno&#45;Lim&oacute;n<sup>1*</sup>, L.N. Gonz&aacute;lez&#45;Sol&iacute;s<sup>2</sup>, S.M. Salcedo&#45;Mart&iacute;nez<sup>1</sup>, M.L. C&aacute;rdenas&#45;Avila<sup>3</sup> y A. Perales&#45;Ram&iacute;rez<sup>1</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>1</sup> <i>Departamento de Bot&aacute;nica, UANL. Apartado Postal F16. San Nicol&aacute;s de los Garza, N.L. M&eacute;xico.</i></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>2</sup> <i>Unidad de Fitopatolog&iacute;a del Laboratorio de Micolog&iacute;a y Fitopatolog&iacute;a del Departamento de Microbiolog&iacute;a e Inmunolog&iacute;a, UANL. Apartado Postal F16. San Nicol&aacute;s de los Garza, N.L. M&eacute;xico.</i></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>3</sup> <i>Departamento de Biolog&iacute;a Celular y Gen&eacute;tica, Facultad de Ciencias Biol&oacute;gicas, UANL. Apartado Postal F16. San Nicol&aacute;s de los Garza, N.L. M&eacute;xico.</i> *Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:morenolimon@yahoo.com.mx">morenolimon@yahoo.com.mx</a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 10 noviembre 2009.    <br> 	Aceptado: 9 mayo 2011.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">M&eacute;xico es un pa&iacute;s importante como productor y consumidor de granos, de los cuales, el ma&iacute;z destaca por su gran utilizaci&oacute;n como alimento de consumo humano. La problem&aacute;tica fitosanitaria se expresa por la alta susceptibilidad de los granos a ser contaminados por micotoxinas cuando son colonizados principalmente por hongos de los g&eacute;neros <i>Aspergillus</i> y <i>Penicillium.</i> En esta investigaci&oacute;n se evalu&oacute; la actividad fungicida de extractos alcoh&oacute;licos de gobernadora <i>(Larrea tridentata</i> L.) sobre el crecimiento de <i>Aspergillus flavus</i> y <i>Penicillium</i> sp. La evaluaci&oacute;n de la actividad se realiz&oacute; mediante dos t&eacute;cnicas; la t&eacute;cnica del pozo en agar con la adici&oacute;n de 50 &#956;L del extracto en concentraciones de 100, 200, 400 y 600 mg/mL; y la t&eacute;cnica diluci&oacute;n de extracto en agar, consisti&oacute; en hacer una mezcla homog&eacute;nea entre los extractos en concentraci&oacute;n de 100 mg/mL y el agar papa dextrosa (PDA). La actividad del extracto se reflej&oacute; por la formaci&oacute;n de un halo de inhibici&oacute;n en la primera t&eacute;cnica y por el crecimiento radial del hongo en la segunda. Los resultados arrojados por ambas t&eacute;cnicas permitieron detectar los efectos antif&uacute;ngicos que presentaron los extractos; destacando especialmente los etan&oacute;licos y metan&oacute;licos, ya que con ellos se lograron inhibiciones de hasta el 100&#37; en ambas cepas, mostrando concentraciones m&iacute;nimas inhibitorias que van de 3 a 7 mg/mL.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> hongos fitopat&oacute;genos, poscosecha, micotoxinas, extractos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mexico is important as a producer and consumer of grains, of which maize is paramount owing to its extensive use as human food. The problematic phytosanitary issue with this crop is the high susceptibility of the grains to contamination by dangerous mycotoxins produced principally by the genera <i>Aspergillus</i> and <i>Penicillium.</i> In this experiment the antifungal activity of gobernadora <i>(Larrea tridentata</i> L.) extracts was evaluated on the in vitro growth of <i>Aspergillus flavus</i> and <i>Penicillium</i> sp. To evaluate the antifungal activity we used two techniques: the agar&#45;well diffusion method with addition of 50 &#956;L of the extract at four concentrations (100, 200, 400 and 600 mg/ mL) and the agar&#45;dilution method. This consisted of making a homogeneous mixture of the extracts at a concentration of 100 mg/ mL and potato dextrose agar (PDA). The extract activity was reflected in the formation of an inhibition halo in the first technique and radial mycelial growth in the second. The results obtained from both techniques suggest clear antifungal effects, especially with ethanol and methanol extracts. These were highly efficient, showing minimal inhibitory concentrations that ranged from 3 to 7 mg/mL and achieving up to 100&#37; inhibition of both fungi.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> extracts, fungi, mycotoxins, plant pathogens, postharvest.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ma&iacute;z es un grano que tiene numerosos y diversos usos nutricionales e industriales a nivel mundial. M&eacute;xico es un pa&iacute;s importante como productor y consumidor de granos, de los cuales el ma&iacute;z destaca por su gran utilizaci&oacute;n principalmente como alimento para los humanos. Los factores de importancia que influyen en la contaminaci&oacute;n y deterioro de la calidad de los granos son de dos clases: en primer lugar, los de origen bi&oacute;tico, fundamentalmente insectos, microorganismos, roedores y aves. En segundo lugar est&aacute;n los factores abi&oacute;ticos, que comprenden la humedad relativa, la temperatura y el tiempo de almacenamiento. La problem&aacute;tica fitosanitaria se expresa por la alta susceptibilidad de los granos a ser contaminados por micotoxinas cuando son colonizados principalmente por hongos de los g&eacute;neros <i>Aspergillus, Penicillium</i> y <i>Fusarium.</i> Las aflatoxinas producidas por <i>A. flavus</i> y <i>A. parasiticus,</i> las fumonisinas, por varias especies de <i>Fusarium</i> y las ocratoxinas por especies de <i>Penicillium</i> son ejemplos de toxinas producidas por dichos hongos en ma&iacute;z. Estos hongos requieren humedad relativa ambiente entre 70&#45;90&#37;, contenido de agua en las semillas entre 15&#45;20&#37; y un rango de temperatura amplio (0&#45;45&#176;C) y pueden crecer a menor concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno (Christensen, 1987). La presencia de estas especies y sus toxinas en los granos, representa un problema de primer orden para la industria del ma&iacute;z en el mundo por las enormes implicaciones que tienen tanto en la calidad del grano como en la salud p&uacute;blica y animal (Bacon y Nelson, 1994; Bean, 1989).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una opci&oacute;n que ha sido considerada para prevenir enfermedades f&uacute;ngicas en el grano de ma&iacute;z, es utilizar compuestos de origen natural, que tengan la habilidad de inhibir el crecimiento del hongo y/o la producci&oacute;n de micotoxinas. La actividad antif&uacute;ngica de las plantas ha sido muy estudiada por la resistencia a los distintos funguicidas comerciales utilizados normalmente en el control de enfermedades de cultivos agr&iacute;colas lo que ha estimulado en los &uacute;ltimos a&ntilde;os la b&uacute;squeda de nuevas sustancias antif&uacute;ngicas entre los productos naturales, algunos de los cuales se han mostrado efectivos contra fitopat&oacute;genos tanto en condiciones <i>in vitro</i> como <i>in vivo</i> (Prego <i>et al.,</i> 1999).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Existen recursos forestales como <i>Larrea tridentata</i> L. (gobernadora), que es un arbusto perteneciente a la familia Zygophyllaceae, de porte erecto, ramificado desde la base, perennifolio, de 0.6 a 3 m de altura. Se distribuye abundantemente en el norte del pa&iacute;s, de la Pen&iacute;nsula de Baja California a Tamaulipas e Hidalgo en altitudes que van en el rango de 400 a 1800 m.s.n.m. Crece en los sitios m&aacute;s secos de M&eacute;xico, en terrenos planos, laderas, lomer&iacute;os bajos (originados de materiales geol&oacute;gicos del cret&aacute;cico superior e inferior) y en planicies aluviales (Rivera, 1986), cuya importancia crece al descubrir diferentes propiedades y aplicaciones en la industria de agroqu&iacute;micos y farmac&eacute;utica. Numerosos estudios han demostrado que los extractos de gobernadora tienen acci&oacute;n antif&uacute;ngica bajo condiciones <i>in vitro</i> en al menos 17 hongos fitopat&oacute;genos de importancia econ&oacute;mica. De igual manera, extractos y material vegetativo molido en polvo e incorporado al suelo han confirmado inhibir o controlar <i>in vivo</i> seis hongos en cultivos agr&iacute;colas (Lira&#45;Saldivar <i>et al.</i>, 2003; Vargas Arispuro <i>et al.,</i> 2006; Jasso <i>et al.,</i> 2007). El efecto antif&uacute;ngico de extractos de <i>L. tridentata,</i> arbusto localmente conocido como "gobernadora" o "arbusto de creosota" del norte de M&eacute;xico fue investigado mediante bioensayos inhibitorios para <i>Pythium</i> sp, a dosis de 0, 500, 1000, 2000, 4000 y 8000 &#956;L. Los resultados mostraron que el valor promedio de resina de las muestras colectadas est&aacute; entre 22.60&#37; y 25.49&#37;. El efecto fungicida de los extractos de gobernadora se mostr&oacute; consistente, independientemente del solvente usado para la extracci&oacute;n (Lira&#45;Sald&iacute;var <i>et al.,</i> 2003).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha reportado que la resina extra&iacute;da de <i>L. tridentata</i> muestra actividad fungicida contra <i>Rhizoctonia solani, Fusarium oxysporum, Pythium</i> spp y otros hongos fitopat&oacute;genos (Brinker, 1993). Tequida&#45;Meneses <i>et al.,</i> 2002 reportan que extractos alcoh&oacute;licos de <i>L. tridentata</i> inhibieron el crecimiento de <i>A. flavus, A. n&iacute;ger, Penicilium chrysogenum, P. expansum, Fusarium poae</i> y <i>F. moniliforme</i> en un rango de 41.5&#37; hasta 100&#37; tomando en cuenta tanto los extractos metan&oacute;licos como etan&oacute;licos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad antif&uacute;ngica del extracto de resina hidrosoluble de gobernadora <i>(L. tridentata)</i> fue investigada <i>in vitro</i> contra <i>Botrytis cinerea, Colletotrichum coccodes</i> y <i>F. oxysporum</i> f. sp <i>licopersici,</i> aislados de rosas de invernadero y de lotes comerciales de papa y tomate, respectivamente. El extracto manifest&oacute; su efecto fungicida a 1 000 y 2000 ppm (Lira&#45;Saldivar <i>et al.</i>, 2003). Por otra parte, Araujo (1997) observ&oacute; que el extracto de <i>L. tridentata</i> en diclorometano inhibi&oacute; el 92&#37; del crecimiento radial de <i>A. flavus.</i> Mientras que Jasso <i>et al.,</i> (2007) reportaron que el extracto de esta especie a 4 000 ppm present&oacute; inhibici&oacute;n para <i>Colletotricum gleosporides</i> de 100&#37;, en <i>Alternaria alternata</i> 66.4&#37; y 78.9&#37; para <i>Rhizopus</i> sp.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad antif&uacute;ngica de los lignanos fue evaluada por la inhibici&oacute;n del crecimiento radial de <i>A. flavus</i> y <i>A. parasiticus.</i> El &aacute;cido nordihidroguayar&eacute;tico (NDGA) extra&iacute;do de <i>L. tridentata</i> fue muy efectivo inhibiendo ambos hongos a 300 y 500 ppm. Este compuesto quiz&aacute; tiene potencial para el control de hongos productores de aflatoxinas (Vargas&#45;Arispuro <i>et al.,</i> 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con base en esta informaci&oacute;n queda claro el potencial que tiene este arbusto de las zonas &aacute;ridas para elaborar productos org&aacute;nicos vegetales derivados de su resina, que ayuden a promover una agricultura sostenible y de menor impacto ambiental (Lira&#45;Saldivar <i>et al.,</i> 2003).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El presente estudio se plante&oacute; para evaluar la actividad fungicida de extractos de gobernadora para inhibir el crecimiento de algunos hongos productores de toxinas presentes en ma&iacute;z y de esta manera contribuir a evitar el deterioro de la calidad del ma&iacute;z, creando as&iacute; una alternativa para contrarrestar el uso de fungicidas qu&iacute;micos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIAL Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Muestras vegetales</b>. Se realiz&oacute; una colecta de plantas de gobernadora <i>(L. tridentata),</i> obteni&eacute;ndose material en el ejido el Potos&iacute; del municipio de Galeana N.L., la corroboraci&oacute;n de la especie se realiz&oacute; en el Herbario de la Facultad de Ciencias Biol&oacute;gicas UANL. Este material se sec&oacute; a temperatura ambiente bajo sombra durante aproximadamente una semana hasta peso constante. Posteriormente cada muestra se limpi&oacute; cuidadosamente, para separar las hojas, a partir de las cuales se realizaron los extractos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Obtenci&oacute;n y aislamiento de hongos</b>. Veinte semillas de ma&iacute;z comercial y sin desinfectar se distribuyeron en cuatro placas Petri conteniendo papa&#45;dextrosa&#45;agar (PDA) y se incubaron a 28&#176;C durante 96 horas en una c&aacute;mara de incubaci&oacute;n. Una vez obtenidas las colonias fungosas fueron resembradas para su aislamiento y posterior purificaci&oacute;n e identificaci&oacute;n taxon&oacute;mica (L&oacute;pez, 1978).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n de extractos bot&aacute;nicos</b>. Los extractos bot&aacute;nicos fueron obtenidos a partir de hojas secas, las cuales se molieron mec&aacute;nicamente hasta obtener un tama&ntilde;o de part&iacute;cula de 0.5&#45;1 mm. El polvo obtenido se utiliz&oacute; para la preparaci&oacute;n de extractos utilizando cuatro diferentes solventes (etanol, metanol y acetona concentrados e hidroalcoh&oacute;lico agua:etanol 70:30).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A 150 g de material molido se le agregaron 500 mL de hexano y se dej&oacute; reposar por cinco d&iacute;as a temperatura ambiente (27&#176;C), los frascos fueron cubiertos con papel aluminio para evitar la incidencia de la luz. Posteriormente se filtr&oacute; con papel Whatman n&uacute;mero 4. Luego, el material vegetal se dej&oacute; secar a temperatura ambiente hasta la completa evaporaci&oacute;n del hexano y una vez seco se dividi&oacute; en tres porciones de 50g que se depositaron en matraces distintos con 150 mL de cada uno de los solventes, se agitaron durante 12 horas y posteriormente se dejaron en reposo durante cinco d&iacute;as. Se filtraron y se obtuvieron los extractos crudos, los cuales se colocaron en placas de vidrio y se cubrieron con papel aluminio para evitar la posible p&eacute;rdida de actividad de algunos de sus compuestos y se introdujeron en una c&aacute;mara de secado durante 72 horas, finalmente se recuperaron en forma s&oacute;lida para prepararse en concentraciones de: 100, 200, 400 y 600 mg/mL para cada solvente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La concentraci&oacute;n de los extractos se determin&oacute; utilizando la t&eacute;cnica de diferencia en peso seco. Para esto se pes&oacute; un vial previamente tarado (P1), al cual se le agreg&oacute; un mL de extracto, se pasa a una estufa a 50&#176;C hasta que se obtenga el peso seco constante del vial (P2). Una vez obtenidos estos pesos, se utiliz&oacute; la f&oacute;rmula P2&#45;P1 para obtener la diferencia en el peso, la cual corresponde a la cantidad en mg/mL que se obtuvo del extracto de inter&eacute;s.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n del in&oacute;culo</b>. Cada una de las especies de hongo previamente obtenidas a partir de semillas de ma&iacute;z correspondientes a <i>Aspergillus flavus</i> y <i>Penicillium</i> sp, fueron cultivadas sobre placas con agar papa dextrosa (PDA) a 25&#177;2&#176;C por siete d&iacute;as en cajas Petri. Una vez crecidas las colonias fueron cubiertas con 10 mL de soluci&oacute;n salina est&eacute;ril al 0.85&#37; y con 0.1&#37; de Tween 80 (Polisorbato 80, Sigma, EU) y se agitaron durante tres minutos y mediante una asa bacteriol&oacute;gica est&eacute;ril, se frot&oacute; la superficie del hongo, de manera firme y suave. La suspensi&oacute;n as&iacute; obtenida se vaci&oacute; directamente a un tubo de ensayo est&eacute;ril y se utiliz&oacute; para la realizaci&oacute;n de las diferentes pruebas homogeneizando antes de su uso. La turbidez de la suspensi&oacute;n celular fue medida por espectrofotometr&iacute;a de acuerdo a la t&eacute;cnica de Julman <i>et al.</i> (1998).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de la actividad antif&uacute;ngica</b>. Se realiz&oacute; mediante dos t&eacute;cnicas: <i>a)</i> T&eacute;cnica del pozo en agar, la cual consisti&oacute; en preparar placas de Petri con medio de cultivo PDA y sembrar por extensi&oacute;n cada una de las cepas mediante el uso de un asa Driblasky. Posteriormente en cada placa Pertri se realizaron seis perforaciones de 5 mm de di&aacute;metro (R&iacute;os <i>et al.,</i> 1988) distribuidas en las orillas de cada placa, en las cuales se coloc&oacute; respectivamente cada uno de los tratamientos (extracto etan&oacute;lico, metan&oacute;lico o acet&oacute;nico en concentraciones de 100, 200, 400 y 600 mg/mL y los controles Capt&aacute;n como control positivo y los solventes como control negativo) cuidando de no rebasar la orilla del pocillo, para evitar que se derrame. Los ensayos se realizaron por triplicado, teni&eacute;ndose de esta manera 18 tratamientos y 54 placas en total para cada uno de los hongos. Las placas se incubaron a 25&#177;2&#176;C por siete d&iacute;as, tomando como resultado positivo la aparici&oacute;n de un halo de inhibici&oacute;n de crecimiento, alrededor de las perforaciones. <i>b)</i> T&eacute;cnica de diluci&oacute;n de extracto en agar, esta t&eacute;cnica consisti&oacute; en preparar una mezcla homog&eacute;nea entre el PDA y cada uno de los tratamientos que consistieron en extractos acet&oacute;nicos, metan&oacute;licos, etan&oacute;licos e hidroalcoh&oacute;lico a una concentraci&oacute;n de 100 mg/mL respectivamente, as&iacute; como cada uno de los controles solo PDA y solventes (metanol, etanol, acetona e hidroalc&oacute;holico). La mezcla se realiz&oacute; cuando el PDA estaba a una temperatura de 50&#176;C, posteriormente cada mezcla se verti&oacute; en placas Petri que se colocaron en refrigeraci&oacute;n para su solidificaci&oacute;n y posterior uso. Por otra parte en placas Petri se realizaron cultivos de cada una de las cepas, a partir de los cuales se tomaron discos de 5 mm que sirvieron como in&oacute;culo y se colocaron en el centro de las placas previamente preparadas con los diferentes tratamientos. Este ensayo se realiz&oacute; por triplicado, teniendo as&iacute; 36 placas por hongo. Las placas se incubaron a 25&#177;2&#176;C por siete d&iacute;as. Posteriormente se calcul&oacute; el di&aacute;metro de crecimiento radial. El porcentaje de inhibici&oacute;n de crecimiento fue calculado tomando en cuenta que la inhibici&oacute;n es el inverso del crecimiento y los resultados fueron calculados mediante la siguiente f&oacute;rmula (Tequida <i>et al.,</i> 2002):</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/polib/n32/a12e1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria (CMI)</b>. Se utiliz&oacute; caldo Papa Dextrosa para determinar la CMI, en el cual se inocularon 12 tubos con 1.8 mL del caldo con 200 &#956;L de una suspensi&oacute;n de esporas ajustada a 530 nm 90&#37; de transmitancia (Julman <i>et al.</i>, 1998). A cada uno de estos tubos se les agreg&oacute; una concentraci&oacute;n conocida de extracto, utilizando primeramente rangos amplios (100, 50, 10 mg/mL) y despu&eacute;s se acortaron hasta obtener la concentraci&oacute;n m&iacute;nima para la inhibici&oacute;n del crecimiento de los hongos analizados (8, 6, 4, 2, 1 mg/mL).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Rendimiento de los extractos en funci&oacute;n del solvente utilizado</b>. El rendimiento promedio de las resinas en cada uno de los extractos utilizados, mostr&oacute; variabilidad en relaci&oacute;n a los diferentes solventes. El mayor rendimiento se presenta con los solventes hidroalcoh&oacute;lico y metan&oacute;lico con 59.2 y 53.3 mg/mL; mientras que el menor rendimiento se present&oacute; con el solvente acetona, con 31.2 mg/mL. Estos resultados est&aacute;n relacionados al grado de polaridad de los diferentes solventes utilizados. Por otra parte en los extractos obtenidos se deben encontrar principalmente lignanos fen&oacute;licos, saponinas, flavonoides, amino&aacute;cidos y minerales, componentes que de acuerdo con Lira&#45;Saldivar (2003) son los principales constituyentes en base al peso seco del follaje. Dentro de los principios activos encontrados en la resina de Larrea diversos autores (Brinker, 1993; Gnabre <i>et al.,</i> 1995; Clark, 1999) se&ntilde;alan a los lignanos fen&oacute;licos y en especial al &aacute;cido nordihidroguaiar&eacute;tico (NDA) como el metabolito secundario que confiere las propiedades biocidas de la gobernadora.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de la actividad antif&uacute;ngica</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>a)</i> T&eacute;cnica del pozo en agar</b>. Respecto a los resultados obtenidos con la t&eacute;cnica del pozo en agar para <i>A. flavus</i> se observ&oacute; que los halos de inhibici&oacute;n var&iacute;an de 5 a 23 mm de di&aacute;metro, siendo esta inhibici&oacute;n muy similar en las cuatro concentraciones evaluadas, cuyos valores oscilan entre 12 a 21 mm para etanol, 5 a 20 mm para acetona y entre 7 y 20 mm para metanol. Respecto a <i>Penicillium</i> sp los halos de inhibici&oacute;n var&iacute;an de 6 a 12 mm para la acetona, entre 8 y 18 mm para etanol y entre 4 y 15 mm para metanol.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis de varianza demostr&oacute; que tanto para <i>A. flavus,</i> como para <i>Penicillium</i> sp se presenta diferencia altamente significativa (P &lt; 0.01) entre los solventes utilizados; as&iacute; como entre las concentraciones, mientras que en la interacci&oacute;n de ambos factores no hay diferencia significativa en ambas cepas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con respecto a la comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias se puede observar (<a href="/img/revistas/polib/n32/a12t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>) que en relaci&oacute;n al crecimiento de <i>A. flavus,</i> con los extractos acet&oacute;nicos se presenta la formaci&oacute;n de tres grupos estad&iacute;sticamente diferentes, obteni&eacute;ndose el mayor halo de inhibici&oacute;n con el fungicida comercial capt&aacute;n (14.0 mm), siendo estos resultados estad&iacute;sticamente iguales a los obtenidos con las concentraciones de 100, 200 y 600 mg/mL, mientras que con los extractos etan&oacute;licos y metan&oacute;licos, no existe diferencia estad&iacute;sticamente significativa entre el capt&aacute;n y el resto de los tratamientos, excepto en el control negativo donde no hay inhibici&oacute;n. Por otra parte, en <i>Penicillium</i> sp el mayor halo de inhibici&oacute;n se present&oacute; con el fungicida capt&aacute;n (31.50 mm) el cual es estad&iacute;sticamente diferente a los halos registrados con los extractos acet&oacute;nicos, etan&oacute;licos y metan&oacute;licos. Los resultados obtenidos al aplicar los extractos etan&oacute;licos superan a los obtenidos con la aplicaci&oacute;n del fungicida comercial (capt&aacute;n) en cada una de las concentraciones, destacando la de 600 mg/mL al registrarse en promedio 14.5 mm y 19.0 mm, de di&aacute;metro en el halo de inhibici&oacute;n, respectivamente. Se resalta tambi&eacute;n el hecho que para los tres tipos de extractos la mayor inhibici&oacute;n se observa a 600 mg/mL, en el caso de los extractos acet&oacute;nicos y etan&oacute;licos la menor inhibici&oacute;n se present&oacute; en las concentraciones de 400 mg/mL; mientras que en los extractos metan&oacute;licos se observ&oacute; a 100 mg/mL. Esta tabla de comparaci&oacute;n hace evidente la superioridad de la actividad fungicida del capt&aacute;n comparada con la obtenida por los tres tipos de extractos en sus diferentes concentraciones, la actividad fungicida m&aacute;s alta en cuanto a los extractos se obtuvo con el solvente metanol a 200 mg/mL al registrarse un halo de inhibici&oacute;n de 19 mm.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al respecto Tequida&#45;Meneses <i>et al.</i> (2002) quienes observaron que los extractos alcoh&oacute;licos de <i>Larrea tridentata</i> L. mostraron una inhibici&oacute;n del crecimiento de <i>A. flavus</i> de 71.2 y 76&#37;, con los solventes metanol y etanol respectivamente. Por otra parte reportan que el crecimiento de <i>P. expansum</i> se vio afectado con extractos etan&oacute;licos y metan&oacute;licos de <i>L. tridentata,</i> ya que el hongo present&oacute; un desarrollo de 0.5 cm de di&aacute;metro; mientras que el testigo tuvo un crecimiento de 1.2 cm, esto represent&oacute; una inhibici&oacute;n de 58.3 y 50&#37; respectivamente, la prueba se llev&oacute; a cabo mediante la t&eacute;cnica de diluci&oacute;n de extracto en agar. Probablemente estas diferencias se deban a las concentraciones de los solventes, al m&eacute;todo utilizado y/o a las concentraciones de los extractos, entre otros factores.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los porcentajes de inhibici&oacute;n del crecimiento de <i>Penicillium</i> sp por efecto de los diferentes extractos de <i>L. tridentata</i> con respecto al efecto del fungicida comercial capt&aacute;n (asumiendo que la inhibici&oacute;n de este es del 100&#37;), est&aacute;n muy por debajo y adem&aacute;s muestran una alta variabilidad al registrarse un 31.74&#37; con los extractos acet&oacute;nicos en concentraci&oacute;n de 400 mg/mL hasta en 67.85&#37; con los extractos metan&oacute;licos en la concentraci&oacute;n de 200 mg/mL.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>b)</i> T&eacute;cnica de diluci&oacute;n del extracto en agar</b>. Las observaciones generales sobre el crecimiento de <i>A. flavus</i> y <i>Penicillium</i> sp al aplicar los diferentes extractos pueden ser apreciadas en la <a href="/img/revistas/polib/n32/a12f1.jpg" target="_blank">figura 1</a> donde se refleja un comportamiento muy similar en cuanto al desarrollo del micelio, que se interpreta como inhibici&oacute;n de hasta el 100&#37; con el extracto etan&oacute;lico para <i>A. flavus</i> y con los extractos acet&oacute;nico, etan&oacute;lico y metan&oacute;lico para <i>Penicillium</i> sp.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis de varianza evidencia diferencia significativa (P &lt; 0.01) entre las dos especies de hongos y entre los diferentes tratamientos aplicados, as&iacute; como en la interacci&oacute;n de ambas fuentes de variaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con base en esto, la comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias para los di&aacute;metros de crecimiento se presenta en la <a href="/img/revistas/polib/n32/a12t2.jpg" target="_blank">tabla 2</a>, donde para <i>A. flavus,</i> en relaci&oacute;n a los solventes utilizados demostr&oacute; la formaci&oacute;n de cuatro grupos estad&iacute;sticamente diferentes, agrup&aacute;ndose en el primero los di&aacute;metros obtenidos con los controles PDA (63.33 mm) y metanol (61.66 mm), en el segundo se presentan los di&aacute;metros de los controles etanol y acetona, en el tercero los controles acetona e hidroalcoh&oacute;lico y finalmente en el tercer grupo se presentan los resultados de los extractos en concentraci&oacute;n de 100 mg/mL con valores que van de 0.0 a 5.0 mm de di&aacute;metro de crecimiento. Por otra parte, para <i>Penicillium</i> sp se presentan cinco grupos estad&iacute;sticamente diferentes, el primero de ellos corresponde al crecimiento bajo el control de PDA con 38.33 mm de di&aacute;metro, el segundo con 20.33 mm corresponde al control de etanol, en el tercer grupo est&aacute;n los resultados de control acetona y control hidroalcoh&oacute;lico, en el cuarto con 11.0 mm el control metanol, en el quinto grupo los resultados de los extractos con 0.0 y 1.66 mm. Como es evidente, en comparaci&oacute;n con el crecimiento que se observa en las placas que s&oacute;lo contienen PDA, los extractos en 100 mg/mL, independientemente del solvente inhiben significativamente el crecimiento de ambas especies.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con esta t&eacute;cnica se pudieron determinar los porcentajes de crecimiento e inhibici&oacute;n del crecimiento de <i>A. flavus</i> y <i>Penicillium</i> sp con respecto a cada uno de los controles establecidos en el estudio. Con respecto a los ensayos preliminares efectuados para observar la inhibici&oacute;n del crecimiento f&uacute;ngico, las t&eacute;cnicas presentaron algunas diferencias, en cuanto a la demostraci&oacute;n de la actividad inhibitoria de los extractos, ya que en la t&eacute;cnica del pocillo en agar, se probaron cuatro concentraciones distintas; y en algunos casos como en los extractos acet&oacute;nicos, la concentraci&oacute;n del extracto y el efecto inhibitorio no fueron directamente proporcionales; probablemente se deba a que los componentes de la planta responsables de tal efecto var&iacute;an en cuanto a la concentraci&oacute;n para tener una difusi&oacute;n &oacute;ptima, esto se observa al realizar la prueba de diluci&oacute;n de extracto en agar donde se mezclan de manera homog&eacute;nea ambos componentes logrando una total difusi&oacute;n de los metabolitos, donde los porcentajes de inhibici&oacute;n del crecimiento son mayores al 99.0 por ciento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Concentraci&oacute;n M&iacute;nima Inhibitoria (CMI).</b> Los valores de la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria (CMI) de cada uno de los extractos vari&oacute; de 3 a 7 mg/ml. El extracto hidroalcoh&oacute;lico requiere mayor cantidad de extracto que el resto en ambas cepas ya que para <i>A. flavus</i> el requerimiento es de 7 mg/mL y en <i>Penicillium</i> sp. 5 mg/mL, mientras que para el resto de los extractos la CMI se encuentra en 3 mg/mL para ambas cepas. Jasso <i>et al.,</i> 2007 reportan que el extracto de <i>L. tridentata</i> a 4 mg/mL present&oacute; inhibici&oacute;n para <i>C. gleosporides</i> de 100 &#37;, para <i>A. alternata</i> 66.4 &#37; y para <i>Rhizopus</i> sp 78.9&#37;. Lira&#45;Sald&iacute;var <i>et al.</i>, 2003 realizaron ensayos inhibitorios para <i>Pythium</i> sp, a dosis de 0.5, 1, 2, 4, y 8 mg/mL. Los valores obtenidos est&aacute;n dentro del margen establecido por otros estudios y otras cepas, lo que manifiesta el amplio espectro de acci&oacute;n de la planta independientemente de la t&eacute;cnica aplicada.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cabe se&ntilde;alar que de acuerdo con R&iacute;os, <i>et al.</i>; (1988) es sumamente dif&iacute;cil estandarizar un procedimiento para el estudio de las plantas como antimicrobianos, ya que existen diversos factores que est&aacute;n involucrados y que pueden influir de manera importante en los resultados obtenidos; se puede mencionar, la composici&oacute;n del medio de cultivo, m&eacute;todo de extracci&oacute;n, pH, solubilidad de la muestra en el medio de cultivo, y el microorganismo en cuesti&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con base en los efectos que presentaron los extractos, especialmente etan&oacute;licos y metan&oacute;licos, se propone que se efect&uacute;en estudios m&aacute;s profundos para determinar su potencialidad para el control de microorganismos fitopat&oacute;genos que atacan cultivos de alto valor, ya sea en campo cuando se encuentran en pleno desarrollo o producci&oacute;n, o bien durante la cosecha y posterior almacenamiento. Incluso se pueden hacer las extracciones con otros solventes diferentes o con mezclas de &eacute;stos, ya que la cantidad y tipos de compuestos extraidos pueden variar dependiendo del solvente utilizado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>L. tridentata</i> inhibe el crecimiento de <i>A. flavus</i> y <i>Penicillium</i> sp. <i>in vitro.</i> El tipo de solvente no fue un factor determinante en el efecto inhibitorio, para el caso de <i>Penicillium</i> sp, no as&iacute;, en el caso de <i>A. flavus</i> donde los extractos etan&oacute;licos demostraron un mayor efecto. La t&eacute;cnica de diluci&oacute;n del extracto en agar permite una mayor difusi&oacute;n de los componentes en el medio. La Concentraci&oacute;n M&iacute;nima Inhibitoria para <i>A. flavus</i> fue de 3 mg/mL en acetona y de 7 mg/mL en hidroalcoh&oacute;lico, mientras que para <i>Penicillium</i> sp fue de 3 mg/mL en acetona y de 5 mg/mL en hidroalcoholico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Araujo, B.S.R., 1997. "Evaluaci&oacute;n de la actividad fungicida y aflatoxig&eacute;nica de extractos de plantas del estado de Sonora para el control de <i>Aspergillus flavus</i> y <i>Aspergillus parasiticus".</i> Tesis profesional. Universidad Aut&oacute;noma de Sonora, M&eacute;xico.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6074681&pid=S1405-2768201100020001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bacon, C.W., Nelson, P.E., 1994. "Fumonisin production in corn by toxigenic strains of <i>Fusarium moniliforme</i> and <i>Fusarium proliferatum". J. of Food Protection,</i> <b>57</b>(6): 514&#45;521.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6074683&pid=S1405-2768201100020001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bean, G.A., 1989. "Maize mycotoxins in Latin America". <i>Plant Dis.,</i> <b>73</b>: 597600.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6074685&pid=S1405-2768201100020001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brinker, F., 1993. <i>"Larrea tridentata</i> (D.C) (Chaparral or cresote bush)". <i>British Journal of Phytoterapy,</i> <b>3</b>: 10&#45;30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6074687&pid=S1405-2768201100020001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Christensen, C.M., 1987. <i>Field and Storage Fungi.</i> Beuchat LR, ed. Food and Beverage Mycology. New York, Van Nostrand Reinhold. pp. 211&#45;232.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6074689&pid=S1405-2768201100020001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Clark, D., 1999. <i>Treating Herpes Naturally with</i> Larrea tridentate. Published by U.S. Botanicals. Tempe, Arizona, USA. 42 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6074691&pid=S1405-2768201100020001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Craigo, J., Callahan, M., Huang, R.C.C., DeLucia, A.L., 2000. "Inhibition of Human Papillomavirus Type 16 Gene Expression by Nordihydroguaiaretic Acid Plant Lignan Derivatives". <i>Antiviral Research,</i> <b>47</b>: 19&#45;28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6074693&pid=S1405-2768201100020001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gnabre, J.N., Brady, J.L., Clanton, D.J., 1995. "Inhibition of human immunodeficiency virus type I transcription and replication by NDA sequence&#45;selective plant lignin". <i>Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA,</i> <b>92</b>: 11239&#45;11246.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6074695&pid=S1405-2768201100020001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jasso de Rodr&iacute;guez, D., Rodr&iacute;guez&#45;Garc&iacute;a R., Hern&aacute;ndez&#45;Castillo, F.D., Villarreal Quintanilla, J.A., Galv&aacute;n&#45;Cendejas, A., 2007. "Antifungal effects <i>in vitro</i> of semiarid plant extracts against post&#45;harvest fungi". <i>AAIC Annual Meeting: Bringing Industrial Crops into the Future.</i> October 7&#45;10. Portland, Maine.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6074697&pid=S1405-2768201100020001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Julman, R., Cerme&ntilde;o, V., Torres Josep, R.,1998. "M&eacute;todo espectrofotom&eacute;trico en la preparaci&oacute;n del in&oacute;culo de hongos demati&aacute;ceos". <i>Rev Iberoam Micol.,</i> <b>15</b>: 155&#45;157.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6074699&pid=S1405-2768201100020001200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lira&#45;Saldivar, R.H., 2003. "Estado Actual del Conocimiento Sobre las Propiedades Biocidas de la Gobernadora <i>&#91;Larrea tridentata</i> (D.C.) 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Biblioteca Central, ENA, Chapingo.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6074705&pid=S1405-2768201100020001200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Prego, M., D&iacute;az, J., Merino, F., 1999. "Actividad antif&uacute;ngica de la capsicina frente a varios hongos fitopat&oacute;genos". <i>Memorias, XIII Reuni&oacute;n Nacional de Sociedad Espa&ntilde;ola de Fisiolog&iacute;a Vegetal.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6074707&pid=S1405-2768201100020001200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></i></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">R&iacute;os, J., Recio, M., Villar, A., 1988. Screening methods for natural products with antimicrobial activity. <i>Journal of Ethnopharmacology,</i> <b>23</b>(2&#45;3): 127&#45;149.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6074709&pid=S1405-2768201100020001200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stege, P.W., Davicino, R.C., Vega, A.E., Casali, Y.A., Correa, S., Micalizzi, B., 2006. "Antimicrobial activity of aqueous extracts of <i>Larrea divaricata</i> Cav (jarilla) against <i>Helicobacter pylori". 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