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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Cambios postcosecha del hongo comestible huitlacoche (Ustilago maydis (D. C.) Corda)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Huitlacoche (Ustilago maydis (D.C.) Corda) has been an important food in the diet of the inhabitants of the Central-Southern region of Mexico since pre-Columbian times. Recently, its acceptance has increased all around the world. Although it is a highly perishable mushroom, there are no postharvest studies. For these reasons the objective of this work was to identify changes in physical and physiological postharvest parameters of huitlacoche on the corn ear and of cut huitlacoche galls stored at room temperature, 10 °C, and 3 °C for 11 d. The measured variables were changes in appearance, color, weight loss, respiration, production of ethylene and amino acids. The average respiration rate of huitlacoche on the ear at room temperature, 10 and 3 °C was 320.8, 120.8 and 71.5 mLCO2·kg-1·h-1, respectively, and 372.8, 346.7 and 164.1 mLCO2·kg-1·h-1 in cut galls, respectively. Weight loss was above 80, 60 and 22% at room temperature, 10 and 3 °C at 7 days, respectively. Huitlacoche contains 18 amino acids, of these, essential amino acids accounted for 37.8% of the total. Lysine was 27.2% of the essential amino acids. After the storage period, there was no major change in amino acid content. The huitlacoche kept its appearance, color and weight better when it was stored at 3 °C on the ear. Ethylene production by huitlacoche was not detected.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Cambios postcosecha del hongo comestible huitlacoche (<i>Ustilago maydis </i>(D. C.) Corda)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Postharvest changes in the edible mushroom huitlacoche (<i>Ustilago maydis </i>(D.C.) Corda)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>A. Mart&iacute;nez&#150;Flores<sup>1</sup>, J. J. Corrales&#150;Garc&iacute;a<sup>1*</sup>, T. Espinosa&#150;Solares<sup>1</sup>, P. G. Garc&iacute;a&#150;Gatica<sup>1</sup> y </b><b>C. Villanueva&#150;Verduzco<sup>2</sup></b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Departamento de Ingenier&iacute;a Agroindustrial, Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. km 38.5 Carretera M&eacute;xico&#150;Texcoco. Chapingo, Estado de M&eacute;xico, C. P. 56230. M&eacute;xico. Correo&#150;e:</i> <a href="mailto:joelcorrales@hotmail.com">joelcorrales@hotmail.com</a> <i>(*Autor responsable)</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Departamento de Fitotecnia, Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. km 38.5 Carretera M&eacute;xico&#150;Texcoco. Chapingo, Estado de M&eacute;xico, C. P. 56230. M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 4 de septiembre, 2007    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Aceptado: 12 de noviembre, 2008</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El huitlacoche &#91;(<i>Ustilago maydis </i>(D.C.) Corda)&#93; ha sido un importante alimento en la dieta de los habitantes de la regi&oacute;n Centro&#150;Sur de M&eacute;xico desde &eacute;pocas precolombinas. Recientemente, su aceptaci&oacute;n a nivel mundial se ha incrementado. A pesar de que es un producto muy perecedero no existen estudios postcosecha, por lo cual, el objetivo de este estudio fue identificar el cambio de par&aacute;metros f&iacute;sicos y fisiol&oacute;gicos en postcosecha de huitlacoche entero (mazorca) y desgranado (agallas) a temperatura ambiente, 3 y 10 &deg;C, durante 11 d&iacute;as. Se evalu&oacute; el cambio de aspecto, color, p&eacute;rdida de peso, respiraci&oacute;n, producci&oacute;n de etileno y cambio en amino&aacute;cidos. La respiraci&oacute;n promedio del huitlacoche entero a temperatura ambiente, 10 y 3 &deg;C fue de 320.8, 120.8 y 71. 5 mlCO<sub>2</sub>&middot;kg<sup>&#150;1</sup>&middot;h<sup>&#150;1</sup>, respectivamente; en tanto que para el desgranado fue de 372.8, 346.7 y 164.1 mlCO<sub>2</sub>&middot;kg<sup>&#150;1</sup>&middot;h<sup>&#150;1</sup> a temperatura ambiente, 10 y 3 &deg;C respectivamente. A los 7 d&iacute;as de almacenamiento, el hongo present&oacute; p&eacute;rdida de peso arriba del 80, 60 y 22% a temperatura ambiente, 10 y 3 &deg;C respectivamente. Se encontraron 18 amino&aacute;cidos, del contenido total los esenciales representaron 37.8% de los cuales lisina represent&oacute; el 27.2%. Despu&eacute;s del almacenamiento, el huitlacoche no mostr&oacute; un cambio importante en el contenido de amino&aacute;cidos. A 3 &deg;C el huitlacoche entero conserv&oacute; mejor su apariencia, color y peso. No se detect&oacute; producci&oacute;n de etileno en las temperaturas evaluadas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b>cambio de color, p&eacute;rdida de peso, respiraci&oacute;n, etileno, amino&aacute;cidos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Huitlacoche (<i>Ustilago maydis </i>(D.C.) Corda) has been an important food in the diet of the inhabitants of the Central&#150;Southern region of Mexico since pre&#150;Columbian times. Recently, its acceptance has increased all around the world. Although it is a highly perishable mushroom, there are no postharvest studies. For these reasons the objective of this work was to identify changes in physical and physiological postharvest parameters of huitlacoche on the corn ear and of cut huitlacoche galls stored at room temperature, 10 &deg;C, and 3 &deg;C for 11 d. The measured variables were changes in appearance, color, weight loss, respiration, production of ethylene and amino acids. The average respiration rate of huitlacoche on the ear at room temperature, 10 and 3 &deg;C was 320.8, 120.8 and 71.5 mLCO<sub>2</sub>&middot;kg<sup>&#150;1</sup>&middot;h<sup>&#150;1</sup>, respectively, and 372.8, 346.7 and 164.1 mLCO<sub>2</sub>&middot;kg<sup>&#150;1</sup>&middot;h<sup>&#150;1</sup> in cut galls, respectively. Weight loss was above 80, 60 and 22% at room temperature, 10 and 3 &deg;C at 7 days, respectively. Huitlacoche contains 18 amino acids, of these, essential amino acids accounted for 37.8% of the total. Lysine was 27.2% of the essential amino acids. After the storage period, there was no major change in amino acid content. The huitlacoche kept its appearance, color and weight better when it was stored at 3 &deg;C on the ear. Ethylene production by huitlacoche was not detected.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b>color changes, weight loss, respiration, ethylene, amino acids.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El hongo <i>Ustilago maydis </i>(D.C.) Corda es conocido en el mundo por causar la enfermedad llamada carb&oacute;n com&uacute;n en ma&iacute;z (<i>Zea mays</i>), esta enfermedad propicia la formaci&oacute;n de grandes tumores o agallas que se pueden desarrollar sobre todas las partes verdes de la planta, tallos, hojas, espiga y mazorca; cuando el micelio del hongo prolifera dentro de los tumores su tama&ntilde;o puede ser muy notorio (Bolker, 2001). En M&eacute;xico, desde el periodo precolombino las agallas que se forman en la mazorca son usadas en la preparaci&oacute;n de diferentes platillos (Ru&iacute;z y Mart&iacute;nez, 1998), y se le conoce como "huitlacoche" o "cuitlacoche", nombre que los Aztecas utilizaron para nombrar a las agallas comestibles que se forman cuando el ma&iacute;z (<i>Zea mays </i>L.) est&aacute; infectado por este basidiomiceto (Pataky y Chandler, 2003).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Actualmente, es una enfermedad tolerada y en ocasiones hasta promovida por los mismos productores de ma&iacute;z de la regi&oacute;n Centro&#150;Sur de M&eacute;xico, pues es consumido y vendido en algunos mercados regionales y enlatado por algunas empresas de alimentos (Villanueva, 1997). Su venta representa importantes ingresos econ&oacute;micos, pues su precio supera por mucho el precio del ma&iacute;z en grano.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recientemente, el huitlacoche ha sido considerado como un cultivo alternativo debido al incremento de su popularidad como alimento (Venegas <i>et al., </i>1995), y ha sido introducido en la alta cocina (Ru&iacute;z y Mart&iacute;nez, 1998). El incremento en la aceptabilidad de este hongo podr&iacute;a estar relacionado, por un lado, a su alto contenido de amino&aacute;cidos (Lizarraga&#150;Guerra y L&oacute;pez, 1996), por lo cual se le considera un buen alimento, pero, principalmente por su excelente sabor.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al ser un producto altamente perecedero, el huitlacoche se consume fresco y en forma casi inmediata a su recolecci&oacute;n o cosecha, debido a su corta vida &uacute;til (dos o tres d&iacute;as); probablemente esto se debe a que presenta un metabolismo muy activo y cambios muy r&aacute;pidos, sin embargo, &eacute;stos no han sido evaluados, o por lo menos no existe informaci&oacute;n en la literatura al respecto. Por la importancia que tiene este hongo para nuestro pa&iacute;s y lo que podr&iacute;a representar conocer los cambios en postcosecha del hongo, es necesario identificarlos a fin de contribuir en la generaci&oacute;n de par&aacute;metros de conservaci&oacute;n para el manejo apropiado del huitlacoche en postcosecha. Por lo anterior, el objetivo de este estudio fue caracterizar los cambios f&iacute;sicos, fisiol&oacute;gicos y contenido de amino&aacute;cidos del huitlacoche entero y desgranado, almacenado a temperatura ambiente y en condiciones de refrigeraci&oacute;n, durante 11 d&iacute;as.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; huitlacoche (<i>Ustilago maydis</i>) adquirido en la Central de Abasto de Iztapalapa del Distrito Federal, recolectado por la tarde del d&iacute;a anterior, de plantas de ma&iacute;z infectadas en forma espont&aacute;nea. Se transport&oacute; cuidadosamente al laboratorio, para evitar da&ntilde;os mec&aacute;nicos. Del lote adquirido, se seleccionaron mazorcas completamente cubiertas por las agallas, de un color preferentemente blanco y de la mejor apariencia. La mitad de las mazorcas se utilizaron completas y la otra mitad del lote se desgran&oacute; (desprendiendo las agallas en forma manual).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Tratamientos</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Huitlacoche entero y desgranado se almacen&oacute; durante 11 d&iacute;as a temperatura ambiente (H. R. 77% aprox.), 3 y 10 &deg;C (H. R. 90&#150;95% aprox.) gener&aacute;ndose seis tratamientos derivados de la combinaci&oacute;n de las dos formas de manipulaci&oacute;n y las tres temperaturas. La unidad experimental para el huitlacoche entero fue una mazorca y para el desgranado fue de 100 g de agallas; cada tratamiento con cinco o tres repeticiones, dependiendo de la variable evaluada. Los resultados se sometieron al an&aacute;lisis de varianza univariado, con base en un dise&ntilde;o completamente al azar, cuando se detectaron diferencias significativas se aplic&oacute; la prueba de comparaci&oacute;n de medias de acuerdo con la prueba de Tukey, a una <i>P</i>=0.05, en el software SAS (Statistical Analysis System) 9.1, 2004.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cambio de apariencia y par&aacute;metros de color</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La apariencia se describi&oacute; con ayuda de fotograf&iacute;as tomadas al inicio, a la mitad y al final del periodo de almacenamiento, utilizando una c&aacute;mara SAMSUNG digital modelo DIGIMAX 6 MPx. El color del huitlacoche (entero y desgranado) fue determinado con un color&iacute;metro Hunter Lab modelo Mini Scan XE Plus No. 45/0&#150;L, con el que se obtuvieron las dimensiones CIELAB L*, a* y b*. Se determin&oacute; la luminosidad (L*), cambio total de color (<img src="/img/revistas/rcsh/v14n3/a16e4.jpg">E), el &aacute;ngulo de tono <i>(Hue) </i>y la pureza de color <i>(Chroma). </i>Lo anterior mediante las siguientes ecuaciones (Hutchings, 1999):</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v14n3/a16e1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>P&eacute;rdida de peso</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; una balanza digital Adam Equipment Co. Modelo ADP 2100L (0.01 g). Se determin&oacute; el porcentaje de peso perdido con respecto al peso inicial del huitlacoche fresco, el c&aacute;lculo se realiz&oacute; con base en la siguiente f&oacute;rmula:</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v14n3/a16e2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde:</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">% PP = porcentaje de peso perdido </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pi = peso inicial </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pf = peso final</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Patr&oacute;n de respiraci&oacute;n y producci&oacute;n de etileno</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La respiraci&oacute;n se determin&oacute; con base en el m&eacute;todo colorim&eacute;trico de Claypool y Keefer (1942) modificado y adaptado para estudios postcosecha por Pratt y Mendoza (1979). Se mantuvo un flujo conocido y constante de aire, sobre el huitlacoche (en este caso fue 18.0 litro&middot;h<sup>&#150;1</sup>), el cual arrastra el CO<sub>2</sub> producido por el hongo, mismo que se atrapa en una soluci&oacute;n de azul de bromotimol y bicarbonato de sodio. El di&oacute;xido de carbono provoca un cambio de pH de la soluci&oacute;n, lo que origina un cambio en la transmitancia, la cual se determin&oacute; con un espectrofot&oacute;metro "Spectronic 20" a 615 nm. Se obtuvieron registros de transmitancia de la soluci&oacute;n antes y despu&eacute;s de capturar el CO<sub>2</sub> producido por el hongo. El porcentaje de CO<sub>2</sub> se determin&oacute; con base en una curva de calibraci&oacute;n de porcentaje de CO<sub>2</sub> <i>vs</i>. porcentaje de transmitancia elaborada previamente, con diluciones de un est&aacute;ndar de CO<sub>2</sub>. La ecuaci&oacute;n (r<sup>2</sup> = 0.953) de la curva est&aacute;ndar de CO<sub>2</sub> encontrada fue la siguiente:</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">% CO<sub>2</sub> = &#150;2.39509 + (0.133224 x X)</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"> + (&#150;0.0025356 x X<sup>2</sup>)</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"> + (2.0988x10<sup>&#150;5</sup> x X<sup>3</sup>)</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde: X = transmitancia de la soluci&oacute;n</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con este m&eacute;todo la tasa de respiraci&oacute;n se puede expresar en mL de CO<sub>2</sub> por kg de peso fresco de tejido por hora, utilizando la siguiente f&oacute;rmula:</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v14n3/a16e3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde: ml de CO<sub>2</sub> = CO<sub>2</sub> producido por la respiraci&oacute;n del huitlacoche.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#91;CO<sub>2</sub>&#93;= concentraci&oacute;n de CO<sub>2</sub> en % calculada a partir de la curva est&aacute;ndar.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Flujo = flujo de aire comprimido utilizado en el sistema (18 litros&middot;h<sup>&#150;1</sup>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El etileno (C<sub>2</sub>H<sub>4</sub>) se cuantific&oacute; por cromatograf&iacute;a de gases. Las muestras de huitlacoche se colocaron dentro de c&aacute;maras (recipientes de pl&aacute;stico sellados herm&eacute;ticamente) durante una hora, entonces se extrajo una muestra de 0.1 mL y se inyect&oacute; en un cromat&oacute;grafo Varian modelo 3,400 usando el software Star Chromatography Workstation Versi&oacute;n 4.5, Varian, 1996. Se emple&oacute; una columna capilar Chrompack de 25 m, 0.32 mm de di&aacute;metro interno y 0.45 mm de di&aacute;metro externo. La presi&oacute;n en la cabeza de la columna fue de 29 a 30 psi. Las condiciones de temperatura fueron, 80 &deg;C en columna, 150 en el inyector, 150 en el auxiliar, 170 en el detector de ionizaci&oacute;n de flama (FID) y 200 en el filamento. El tiempo de corrida fue de 4 minutos. Bajo estas condiciones, el tiempo promedio de retenci&oacute;n del etileno fue de 3.063 min.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar la concentraci&oacute;n se utiliz&oacute; una curva est&aacute;ndar con concentraciones conocidas de etileno <i>vs</i>. &aacute;rea del pico producido. La ecuaci&oacute;n (r<sup>2</sup> = 0.9903) de la curva est&aacute;ndar fue la siguiente:</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">Etileno = 4.81605 + 0.0245X</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde:</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Etileno = Concentraci&oacute;n de etileno en partes por mill&oacute;n (ppm)</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">X = &Aacute;rea del cromat&oacute;grama producido por la muestra</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cambio en amino&aacute;cidos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Doce muestras adicionales (100 g) de huitlacoche desgranado fueron congeladas con nitr&oacute;geno l&iacute;quido. Cuatro muestras de huitlacoche fresco (sin almacenamiento), cuatro despu&eacute;s de 11 d&iacute;as de almacenamiento a 3 &deg;C y cuatro m&aacute;s despu&eacute;s del mismo per&iacute;odo a 10 &deg;C. Inmediatamente despu&eacute;s de su congelaci&oacute;n, las muestras fueron liofilizadas a &#150;47 &deg;C y presi&oacute;n de 1 x 10<sup>&#150;3</sup> mbar, en un equipo LABCONCO modelo FREEZE SISTEM/LYPH LOCK<sup>&reg;</sup>. Las muestras liofilizadas se enviaron al Departamento de Ciencia y Tecnolog&iacute;a de los Alimentos, del Instituto Nacional de Ciencias M&eacute;dicas y Nutrici&oacute;n Salvador Zubir&aacute;n, para la determinaci&oacute;n de amino&aacute;cidos. El m&eacute;todo utilizado fue Cromatograf&iacute;a de Intercambio I&oacute;nico.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cambios de apariencia y par&aacute;metros de color</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <a href="#figura1">Figura 1</a>, muestra al huitlacoche con una coloraci&oacute;n blanca ligera con ciertas &aacute;reas grises, al respecto algunos consumidores suelen mencionar que tiene una tonalidad plateada, adem&aacute;s muestra agallas completamente llenas, sin rugosidades evidentes en la superficie. Los cambios de coloraci&oacute;n se presentaron progresivamente durante los d&iacute;as de almacenamiento y se hicieron notables en forma generalizada, a los 11 d&iacute;as (<a href="#figura1">Figura 1c</a>), tiempo en el cual el huitlacoche de todos los tratamientos present&oacute; &aacute;reas grises y negras. Por otro lado, la p&eacute;rdida de humedad provoc&oacute; la aparici&oacute;n de rugosidades en la cubierta (peridio), que origin&oacute; su rompimiento.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="figura1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v14n3/a16f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A temperatura ambiente, el deterioro del hongo fue muy evidente a partir del tercer d&iacute;a, mostr&oacute; una coloraci&oacute;n negra, agallas deshidratadas y rotas, por lo cual no se comparan las fotos con las de la temperatura de refrigeraci&oacute;n. En refrigeraci&oacute;n, la mayor p&eacute;rdida de color y presencia de hendiduras o rugosidades lo present&oacute; el huitlacoche desgranado almacenado a 10 &deg;C, estos cambios fueron menos evidentes en el huitlacoche entero almacenado a 3 &deg;C.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El cambio visual de color, guard&oacute; cierta relaci&oacute;n con los par&aacute;metros de color determinados a partir de los valores de L*, a* y b*, proporcionados por el color&iacute;metro. Durante el almacenamiento, en todos los tratamientos se observ&oacute; un decremento progresivo en la luminosidad L* y un aumento progresivo en el cambio total de color (AE) La disminuci&oacute;n de brillantez indica que el huitlacoche se obscureci&oacute;, as&iacute;, al disminuir la brillantez, el cambio total de color se increment&oacute; (<a href="/img/revistas/rcsh/v14n3/a16c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). A temperatura ambiente, la luminosidad disminuy&oacute; a la mitad en los primeros siete d&iacute;as; no fue posible determinar par&aacute;metros de color a los 11 d&iacute;as, debido a la avanzada alteraci&oacute;n de las muestras (deshidrataci&oacute;n, rompimiento de agallas y exposici&oacute;n de micelio). La refrigeraci&oacute;n retard&oacute; la p&eacute;rdida de luminosidad de forma significativa, siendo la mejor temperatura la de 3 &deg;C, con la cual a los 11 d&iacute;as se tuvo la mayor luminosidad. El huitlacoche entero conserv&oacute; mejor su luminosidad que el desgranado, en las tres temperaturas utilizadas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El &aacute;ngulo de tono se mantuvo alrededor de 90 &deg; en todos los tratamientos, con este valor la escala CIELAB indica la zona de colores amarillos (<a href="#figura2">Figura 2</a>); sin embargo, la pureza de color no pas&oacute; de las doce unidades, por lo tanto el color del huitlacoche se encontr&oacute; en el &aacute;rea de los tonos grises, esto significa que el amarillo se encuentra muy mezclado con el gris, lo que indica color de baja pureza. Sin cambios importantes en la pureza de color y al &aacute;ngulo de tono, la luminosidad (brillantez) se convirti&oacute; en el par&aacute;metro m&aacute;s importante para explicar el cambio total de color del huitlacoche en postcosecha.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="figura2"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v14n3/a16f2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>P&eacute;rdidas de peso</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La p&eacute;rdida de peso fue mayor y sumamente r&aacute;pida en el huitlacoche conservado a temperatura ambiente, en el s&eacute;ptimo d&iacute;a, el huitlacoche entero perdi&oacute; m&aacute;s del 50% de su peso y 80% el desgranado. La refrigeraci&oacute;n en ambas temperaturas disminuy&oacute; la p&eacute;rdida de peso; a los siete d&iacute;as a 3 &deg;C la p&eacute;rdida fue de 20 y 10% en huitlacoche desgranado y entero, respectivamente. Para el mismo tiempo, a 10 &deg;C la p&eacute;rdida de peso fue de 60 y 23% en huitlacoche entero y desgranado, respectivamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <a href="#figura3">Figura 3</a> muestra que el efecto de la temperatura fue determinante tanto en el huitlacoche entero como en el desgranado: con la menor temperatura se redujo hasta cuatro veces el peso perdido, comparado con el de la temperatura ambiente. Al final de la refrigeraci&oacute;n, la mayor p&eacute;rdida de peso ocurri&oacute; con 10 &deg;C en el huitlacoche desgranado (78.9%) y la menor con 3 &deg;C con el huitlacoche entero (13.1%). Para ambas temperaturas y per&iacute;odo de almacenamiento, el huitlacoche desgranado present&oacute; mayor p&eacute;rdida de peso que el entero.</font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="figura3"></a></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v14n3/a16f3.jpg"></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Patr&oacute;n de respiraci&oacute;n y producci&oacute;n de etileno</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En general, las tasas de respiraci&oacute;n que present&oacute; el huitlacoche entero y desgranado fueron sumamente altas durante su almacenamiento en las diferentes temperaturas probadas (<a href="/img/revistas/rcsh/v14n3/a16f4.jpg" target="_blank">Figura 4</a>). A temperatura ambiente, la respiraci&oacute;n promedio del huitlacoche entero y desgranado fue de 320.8 y 372.8 mlCO<sub>2</sub>kg<sup>&#150;1</sup>&middot;h<sup>&#150;1</sup>, respectivamente. El huitlacoche entero almacenado a 3 y 10 &deg;C present&oacute; una tasa de respiraci&oacute;n promedio de 71.5 y 120.9 mlCO<sub>2</sub>kg<sup>&#150;1</sup>&middot;h<sup>&#150;1</sup>, respectivamente, mientras que para el desgranado fueron considerablemente menores: 164.0 y 346.7 mlCO<sub>2</sub>kg<sup>&#150;1</sup>&middot;h<sup>&#150;1</sup> a 3 y 10 &deg;C. En s&iacute;ntesis, la respiraci&oacute;n disminuy&oacute; significativamente con la refrigeraci&oacute;n y particularmente en el huitlacoche entero y a la menor temperatura.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En algunos d&iacute;as de almacenamiento, los registros de respiraci&oacute;n del huitlacoche entero fueron significativamente menores a los del huitlacoche desgranado. Para ambas temperaturas de refrigeraci&oacute;n, la producci&oacute;n de CO<sub>2</sub> del huitlacoche fue disminuida por debajo del 50% del valor inicial, manteni&eacute;ndose as&iacute; en la mayor&iacute;a de los tratamientos, excepto para el huitlacoche desgranado a 10 &deg;C, que tuvo un comportamiento anormal.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el huitlacoche entero y desgranado no se detect&oacute; producci&oacute;n de etileno en ninguna de las temperaturas probadas en este trabajo.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cambio en amino&aacute;cidos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados indicaron que el huitlacoche contiene 18 amino&aacute;cidos; destacando la presencia de todos los esenciales que representaron el 37.8% del total. Los amino&aacute;cidos esenciales presentes en mayor cantidad fueron la lisina, fenilalanina y leucina con 27.2, 20.6 y 15.5% del total de los amino&aacute;cidos esenciales, respectivamente. Dos amino&aacute;cidos no esenciales, destacan por su alto contenido en el huitlacoche, &eacute;stos son el &aacute;cido asp&aacute;rtico y acido glut&aacute;mico, que juntos representan el 27.6% del total de los amino&aacute;cidos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <a href="#figura5">Figura 5</a> permite ver que despu&eacute;s de 11 d&iacute;as de almacenamiento a 3 o 10 &deg;C, el huitlacoche no present&oacute; cambios importantes, s&oacute;lo hubo diferencia estad&iacute;stica en tres amino&aacute;cidos. Metionina y &aacute;cido asp&aacute;rtico almacenados 11 d&iacute;as a 10 &deg;C, presentaron una disminuci&oacute;n con respecto al huitlacoche fresco, mientras que arginina tambi&eacute;n disminuy&oacute; pero con 3 &deg;C. Por lo anterior, se considera que el huitlacoche refrigerado en postcosecha mantiene su contenido de amino&aacute;cidos y por lo tanto no pierde su calidad nutricia.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="figura5"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v14n3/a16f5.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A temperatura ambiente la p&eacute;rdida de peso, apariencia visual, color y respiraci&oacute;n del huitlacoche presentaron los registros m&aacute;s altos, las temperaturas de refrigeraci&oacute;n probadas lograron disminuir estos procesos relacionados con el deterioro del huitlacoche, lo que impacta en el incremento de su vida &uacute;til. Pues de acuerdo con Brosnan y Sun (2001) la velocidad de deterioro est&aacute; relacionada a los procesos metab&oacute;licos del producto, y la velocidad de deterioro se incrementa logar&iacute;tmicamente con el incremento de la temperatura.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El cambio de color ocurrido en el huitlacoche, puede estar relacionado a lo que ocurre en otros hongos comestibles, donde el inicio del cambio de color ha sido atribuido (Neyra <i>et al., </i>2005) a la oxidaci&oacute;n enzim&aacute;tica de fenoles tales como tirosina, para formar pigmentos caf&eacute;s, o a la oxidaci&oacute;n no enzim&aacute;tica de los fenoles inducida por otros factores. La enzima que origina los cambios de color es la tirosinasa, que pertenece a la familia de las polifenol oxidasas (PFO) que se sabe es crucial en la s&iacute;ntesis de la melanina (Nerya <i>et al., </i>2006). Se ha encontrado (Jiying <i>et al., </i>2006) que en <i>Agaricus bisporus </i>la baja temperatura inhibe la actividad de la PFO y por lo tanto el grado de obscurecimiento. Si el cambio de color del huitlacoche (sobre el peridio) se relaciona a un proceso enzim&aacute;tico, es entonces entendible que a 3 &deg;C el cambio fue menor, pues probablemente la o las enzimas responsables de este proceso son sensibles a esta temperatura. Sin embargo, hay que considerar que con la rotura de agallas del huitlacoche se expone micelio y teliosporas que son de color negro, lo que influye en la coloraci&oacute;n final del hongo; pero, con agallas &iacute;ntegras el peridio ser&iacute;a la estructura que determina el cambio de color.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al no presentarse alteraciones importantes en los par&aacute;metros de &aacute;ngulo de tono y pureza de color, la luminosidad es el par&aacute;metro que m&aacute;s impact&oacute; en el cambio total de color del huitlacoche. Entonces es fundamental conservar la luminosidad el mayor tiempo posible, lo que se consigui&oacute; con la temperatura m&aacute;s baja (3 &deg;C). Sin embargo, en otros trabajos, se ha encontrado que al utilizar bajas temperaturas cercanas entre s&iacute;, es posible no encontrar diferencia significativa al tratar de conservar este valor, tal como fue reportado para <i>Pleurotus </i>por Villaescusa y Gil (2003) quienes observaron que la luminosidad baj&oacute; de 96.9, a 61.9, 63.3 y 61.7% a 0, 4 y 7 &deg;C, despu&eacute;s de 11 d&iacute;as de almacenamiento, pero sin diferencia entre estas temperaturas.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como se esperaba, la p&eacute;rdida de peso fue mayor en el huitlacoche desgranado y &eacute;sta se increment&oacute; con la temperatura. Este hecho puede estar relacionado a que durante su manipulaci&oacute;n; es decir, al separar las agallas, &eacute;stas sufren da&ntilde;os mec&aacute;nicos y rompimiento de tejido, lo que origina que se pierda agua con mayor facilidad, lo que impacta directamente en la p&eacute;rdida de peso. Adem&aacute;s, la superficie de transferencia o expuesta es mayor, lo que implica mayor transpiraci&oacute;n; pero, tambi&eacute;n se debe considerar que este hongo no posee epidermis o estructuras que limiten el flujo de vapor de agua a la atm&oacute;sfera circundante, como ocurre en los productos hortofrut&iacute;colas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las tasas de respiraci&oacute;n del huitlacoche desgranado fueron mayores a la del huitlacoche entero, en cualquier temperatura (ambiente, 3 y 10 &deg;C). Resultados similares fueron reportados por Cliffe y O' Borne (2007), quienes encontraron que el champi&ntilde;&oacute;n cortado en rodajas, respira aproximadamente 22% m&aacute;s que el entero. La acci&oacute;n de desprender las agallas, puede llevar a un rompimiento de tejido que provoque un incremento en el metabolismo, y por lo tanto un incremento en la respiraci&oacute;n. Esto es relevante pues seg&uacute;n Kader (2002) la velocidad de deterioro de los productos hortofrut&iacute;colas generalmente es proporcional a su velocidad de respiraci&oacute;n. Por otro lado, al disminuir la temperatura, la respiraci&oacute;n del huitlacoche disminuy&oacute; significativamente, aun cuando se encontraron variaciones durante su almacenamiento. Lo anterior es congruente con lo reportado por Jiying <i>et al. </i>(2006) quienes mencionan que temperaturas bajas en postcosecha disminuyen la tasa de respiraci&oacute;n del hongo <i>Agaricus bisporus </i>y en general tambi&eacute;n disminuyen muchos procesos metab&oacute;licos que se desarrollan durante su almacenamiento. Villaescusa y Gil (2003) reportan datos que confirman lo anterior, el hongo <i>Pleurotus </i>respira 40.0, 79.2 y 98.4 mlCO<sub>2</sub> kg<sup>&#150;1</sup>&middot;h<sup>&#150;1</sup> a la temperatura de 0, 4 y 7 &deg;C, despu&eacute;s de 12 horas de refrigeraci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">No se detect&oacute; producci&oacute;n de etileno por el huitlacoche, este resultado es similar a lo planteado por Villaescusa y Gil (2003), quienes mencionan que durante el periodo de almacenamiento del hongo comestible <i>Pleurotus </i>no se detect&oacute; producci&oacute;n de etileno en ninguna temperatura probada (0, 4, 7 &deg;C). Aun cuando es un g&eacute;nero distinto, puede ayudarnos a sostener nuestro resultado. Por otro lado, la producci&oacute;n de etileno es realizada casi exclusivamente por tejidos del reino vegetal y los hongos comestibles no pertenecen a &eacute;ste.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de amino&aacute;cidos del huitlacoche refrigerado en general no sufre un cambio evidente durante su almacenamiento. Sin embargo, puede ser prudente realizar un trabajo con mayor detalle. No obstante, existen evidencias de que otros hongos si presentan cambio de amino&aacute;cidos en postcosecha. Tseng y Mau (1999) al trabajar con <i>Agaricus bisporus </i>conservado por 12 d&iacute;as a 12 &deg;C, encontraron que el contenido de az&uacute;cares totales, manitol y fructosa se redujeron, mientras que el contenido total de amino&aacute;cidos se increment&oacute; de 77.9 g&middot;kg<sup>&#150;1</sup> a 140.6 y 151.6 g&middot;kg<sup>&#150;1</sup> a los 6 y 12 d&iacute;as respectivamente. El hecho de que el huitlacoche contiene todos los amino&aacute;cidos esenciales, no es exclusivo de este hongo, de acuerdo con Crisan y Sands (1978) los hongos comestibles, generalmente contienen todos los amino&aacute;cidos esenciales y representan del 20 al 40% del contenido total. Por otro lado, Lizarraga&#150;Guerra y L&oacute;pez (1996) encontraron 17 amino&aacute;cidos libres en huitlacoche, de los cuales lisina fue el m&aacute;s abundante con 3.2 mg&middot;g<sup>&#150;1</sup> de materia seca. Los resultados de este trabajo indican que el huitlacoche contiene mayor cantidad de lisina, comparado con otros hongos comestibles (datos no mostrados). Es bueno considerar que, aun cuando el contenido de lisina es alto, la cantidad de prote&iacute;na en el huitlacoches es del orden del 10&#150;14% base seca (Venegas <i>et al., </i>1995).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El huitlacoche mantenido a temperatura ambiente en general present&oacute; altas tasas de respiraci&oacute;n, r&aacute;pida p&eacute;rdida de peso (transpiraci&oacute;n) y mayores cambios de coloraci&oacute;n (obscurecimiento), mientras que la refrigeraci&oacute;n redujo considerablemente estos par&aacute;metros. Almacenar el huitlacoche entero presenta mejor respuesta a la refrigeraci&oacute;n, comparada con el desgranado, lo que permite incrementar su vida &uacute;til.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se comprob&oacute; que el huitlacoche es un hongo altamente perecedero, por su alta tasa de respiraci&oacute;n y que no produce etileno. Se identific&oacute; que el principal problema para incrementar la vida &uacute;til del huitlacoche, es evitar la r&aacute;pida p&eacute;rdida de peso (deshidrataci&oacute;n), que origina rompimiento de agallas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTO</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se agradece el apoyo financiero del Consejo Nacional de Ciencia y Tecnolog&iacute;a (CONACYT) a trav&eacute;s del proyecto SEP&#150;2004&#150;C01&#150;47725 "Producci&oacute;n controlada e intensiva de huitlacoche (<i>Ustilago maydis </i>D. C. Corda) y alternativas para su manejo en postcosecha" y al Programa Universitario de Investigaci&oacute;n en Alimentos de la Universidad Aut&oacute;noma Chapingo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BOLKER, M. 2001. <i>Ustilago maydis </i>a valuable model system for the study of fungal dimorphism and virulence. Microbiology 147: 1395&#150;1401.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651014&pid=S1027-152X200800030001600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BROSNAN, T.; SUN, D. W. 2001. Precooling techniques and applications for horticultural products&#150; a review. Intenational Journal of Refrigeration 24: 154&#150;170.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651016&pid=S1027-152X200800030001600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CLAYPOOL, L.; KEEFER, R. M. 1942. A colorimetric method for CO<sub>2 </sub>determination in respiration. Proc. Amer. Soc. Hort. Sci. 40: 177&#150;188.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651018&pid=S1027-152X200800030001600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CLIFFE, B. V.; D. O'BEIRNE. 2007. Effects of GAS atmosphere and temperature on the respiration rates of whole and sliced mushrooms (<i>Agaricus bisporus</i>) implications for film permeability in Modified Atmosphere Packages. Food Engineering and Physical Properties. 72(4): 197&#150;204.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651020&pid=S1027-152X200800030001600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CRISAN, E. V.; SANDS, A. 1978. Nutricional Value. <i>In</i>: CHANG, S. T.; HAYES, W. A. (eds.). The biology and cultivation of edible mushrooms. Academic Press. London. 137&#150;166 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651022&pid=S1027-152X200800030001600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">HUTCHINGS, B. J. 1999. Food color and appearance. Second Edition. Ed. Aspen Publishers. USA. pp. 610.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651024&pid=S1027-152X200800030001600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">JIYING, Z.; WANG, X.; XU, Y. 2006. Effects of the Postharvest Storage Temperature and its Fluctuations on the Keeping Quality of <i>Agaricus bisporus. </i>International Journal of Food Engineering. Vol. 2. No. 1.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651026&pid=S1027-152X200800030001600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">KADER, A. A. 2002. Postharvest Technology of Horticultural Crops. University of California. Division de agriculture and Natural Resources. 535 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651028&pid=S1027-152X200800030001600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">LIZARRAGA&#150;GUERRA, R.; LOPEZ, M. G. 1996. Content of Free Amino Acids in Huitlacoche (<i>Ustilago maydis</i>). Journal Agric. Food Chem. 44: 2556&#150;2559</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651030&pid=S1027-152X200800030001600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">NERYA, O.; BEN&#150;ARIE, R.; DANAI, O.; TAMIR, S.; VAYA, J. 2005. Inhibition of mushroom browning. Acta Hort. (ISHS) 682: 1885&#150;1888.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651031&pid=S1027-152X200800030001600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">NERYA, O.; BEN&#150;ARIE, R.; LUZZATTO, T.; MUSA, R.; KHATIV, S.; VAYA, J. 2006. Prevention of <i>Agaricus bisporus </i>postharvest browning with tyrosinase inhibitors. Postharvest Biology and Technology. 39(3): 272&#150;277.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651033&pid=S1027-152X200800030001600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">PATAKY, J. K.; CHANDLER, M. A. 2003. Production of huitlacoche, <i>Ustilago maydis: </i>timing inoculation and controlling pollination. Mycologia. 95(6): 1261&#150;1270</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651035&pid=S1027-152X200800030001600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">PRATT, H. K.; MENDOZA, D. B. 1979. Calorimetric determination of carbon dioxide for respiration studies. <i>HortScience </i>14(2): 175&#150;176</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651036&pid=S1027-152X200800030001600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">RUIZ&#150;HERRERA, J.; MART&Iacute;NEZ&#150;ESPINOSA, A. D. 1998. The fungus <i>Ustilago maydis, </i>from the aztec cuisine to the research laboratory. Internatl Microbiol. 1: 149&#150;158</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651037&pid=S1027-152X200800030001600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">TSENG, Y. H.; MAU, J. L. 1999. Contents of sugars, free amino acids and free 5&#150;nucleotides in mushrooms, Agaricus bisporus, during post&#150;harvest storage. Journal of Science of Food and Agriculture. 79(11): 1519&#150;1523 (resumen)</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651038&pid=S1027-152X200800030001600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">VENEGAS, P. E.; VALVERDE, M. E.; PAREDES&#150;L&Oacute;PEZ, O.; PATAKY, J. K. 1995. Production of the edible fungus huitlacoche (<i>Ustilago maydis</i>): effect of maize genotype on chemical composition. Journal of fermentation and bioengineering. 80(1): 104&#150;106</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651039&pid=S1027-152X200800030001600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">VILLAESCUSA, R.; GIL, I. M. 2003. Quality improvement of <i>Pleurotus </i>mushrooms by modified atmosphere packaging and moisture absorbers. Postharvest Biology and Technology. 28: 169&#150;179</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651040&pid=S1027-152X200800030001600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">VILLANUEVA, V. C. 1997. Huitlacoche (<i>Ustilago </i>maydis) as a food in Mexico. Micol Neotrop. Apl. 10: 73&#150;81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6651041&pid=S1027-152X200800030001600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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