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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Salmonelosis y campilobacteriosis, las zoonosis emergentes de mayor expansión en el mundo]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[En la actualidad, la salmonelosis y la campilobacteriosis son las zoonosis de mayor prevalencia en países desarrollados, debido a la contaminación de alimentos de origen animal. La propagación de Salmonella enterica serotipo Enteritidis y Salmonella enterica serotipo Typhimurium va en aumento a partir de la segunda mitad del siglo XX, cuando ocurrieron dos cambios mundiales en la epidemiología de la salmonelosis: el surgimiento de infecciones en humanos por Salmonella Enteritidis, y la múltiple resistencia a los antibióticos de cepas de Salmonella Typhimurium. La mayoría de los análisis retrospectivos sugieren que existe relación epidemiológica entre las aves y los humanos: La modernización de la avicultura y las exportaciones de aves progenitoras son de importancia en la diseminación de Salmonella Enteritidis. La campilobacteriosis es la enfermedad entérica bacteriana más común en países desarrollados. Campylobacter jejuni es la causa más frecuente de diarreas infecciosas agudas, y las fuentes de esta infección son principalmente productos avícolas. En la presente revisión se incluyen aspectos relevantes de taxonomía y patogenia de estos organismos, y se hace hincapié en la problemática del diagnóstico y detección, analizando las técnicas para detectar rápidamente la existencia de animales portadores. Finalmente, se discuten hallazgos preliminares aún no publicados que sugieren que la prevalencia de salmonelosis y campilobacteriosis en granjas avícolas mexicanas debe ser semejante a la de otros países que tienen avicultura tecnificada, y se recomiendan los estudios epidemiológicos para determinar la frecuencia de estas infecciones en humanos, derivadas del consumo de alimentos de origen aviar.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culo de revisi&oacute;n</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Salmonelosis y campilobacteriosis, las zoonosis emergentes de mayor expansi&oacute;n en el mundo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Salmonellosis and campylobacteriosis, the most prevalent zoonosis in the world</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Adriana del Carmen Guti&eacute;rrez Castillo*      Leopoldo Henri Paasch Mart&iacute;nez* Norma Leticia Calder&oacute;n Apodaca*</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>* Departamento de Aves, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, 04510, M&eacute;xico, D. F.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el 25 de octubre 2006    <br>   Aceptado el 6 de diciembre de 2007.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nowadays salmonellosis and campylobacteriosis are the most prevalent diseases transmitted to humans through contaminated food of animal origin in developed countries. Propagation of <i>Salmonella enterica </i>serotype Enteritidis and <i>Salmonella enterica </i>serotype Typhimurium has increased since the second half of the twentieth century, derived from two changes in the epidemiology of salmonellosis that occurred worldwide: the emergence of human infections caused by <i>Salmonella </i>Enteritidis, and the multiple resistances against antibiotics of <i>Salmonella </i>Typhimurium strains. Most retrospective studies suggest an epidemiological relationship between human infections and poultry products. Modernization of poultry industry and exportation of progenitor stock birds have played an important roll disseminating <i>Salmonella </i>Enteritidis. Campylobacteriosis is the most frequent enteric bacterial diseases in developed countries. <i>Campylobacter jejuni </i>is the most frequent cause of acute infectious diarrheas, and the sources of infection are mainly poultry products. The present review includes relevant taxonomic and pathogenic aspects of these organisms; and stresses the problematic of diagnosis and detection, analyzing techniques that permit rapid detection of animal carriers. Finally, some preliminary findings, not yet published, suggest that a prevalence of salmonellosis and campylobacteriosis in Mexican poultry farms must be similar to that found in other countries with massive poultry production; therefore, epidemiological studies to determine the frequency of human infections, derived from poultry consumption, are recommended.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: <i>Salmonella </i>Enteritidis, <i>Salmonella </i>Typhimurium, <i>Campylobacter jejuni, Campylobacter COLI, </i>Epidemiology, Zoonosis</b><b>.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la actualidad, la salmonelosis y la campilobacteriosis son las zoonosis de mayor prevalencia en pa&iacute;ses desarrollados, debido a la contaminaci&oacute;n de alimentos de origen animal. La propagaci&oacute;n <i>de Salmonella enterica </i>serotipo Enteritidis y <i>Salmonella enterica </i>serotipo Typhimurium va en aumento a partir de la segunda mitad del siglo XX, cuando ocurrieron dos cambios mundiales en la epidemiolog&iacute;a de la salmonelosis: el surgimiento de infecciones en humanos por <i>Salmonella </i>Enteritidis, y la m&uacute;ltiple resistencia a los antibi&oacute;ticos de cepas de <i>Salmonella </i>Typhimurium. La mayor&iacute;a de los an&aacute;lisis retrospectivos sugieren que existe relaci&oacute;n epidemiol&oacute;gica entre las aves y los humanos: La modernizaci&oacute;n de la avicultura y las exportaciones de aves progenitoras son de importancia en la diseminaci&oacute;n <i>de Salmonella </i>Enteritidis. La campilobacteriosis es la enfermedad ent&eacute;rica bacteriana m&aacute;s com&uacute;n en pa&iacute;ses desarrollados. <i>Campylobacter jejuni </i>es la causa m&aacute;s frecuente de diarreas infecciosas agudas, y las fuentes de esta infecci&oacute;n son principalmente productos av&iacute;colas. En la presente revisi&oacute;n se incluyen aspectos relevantes de taxonom&iacute;a y patogenia de estos organismos, y se hace hincapi&eacute; en la problem&aacute;tica del diagn&oacute;stico y detecci&oacute;n, analizando las t&eacute;cnicas para detectar r&aacute;pidamente la existencia de animales portadores. Finalmente, se discuten hallazgos preliminares a&uacute;n no publicados que sugieren que la prevalencia de salmonelosis y campilobacteriosis en granjas av&iacute;colas mexicanas debe ser semejante a la de otros pa&iacute;ses que tienen avicultura tecnificada, y se recomiendan los estudios epidemiol&oacute;gicos para determinar la frecuencia de estas infecciones en humanos, derivadas del consumo de alimentos de origen aviar.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: <i>Salmonella </i>Enteritidis, <i>Salmonella </i>Typhimurium, <i>Campylobacter jejuni, Campylobacter COLI, </i>Epidemiolog&iacute;a, Zoonosis</b><b>.</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los alimentos de origen animal son fuente de importante n&uacute;mero de infecciones en humanos. El riesgo, aunque es conocido, a&uacute;n est&aacute; en v&iacute;a de caracterizaci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n a nivel global.<sup>1</sup> En la actualidad, la salmonelosis y la campilobacteriosis son las zoonosis de mayor prevalencia en pa&iacute;ses desarrollados. En Estados Unidos de Am&eacute;rica, Canad&aacute;, Inglaterra, Noruega y Dinamarca, entre otras naciones, se han comprobado brotes de salmonelosis transmitida por alimentos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha calculado que en Estados Unidos de Am&eacute;rica, la salmonelosis causa m&aacute;s de 18 mil hospitalizaciones y 500 defunciones anuales.<sup>2</sup> En Dinamarca, el costo de la infecci&oacute;n en humanos se calcula en 15.5 millones de d&oacute;lares anuales, en ese pa&iacute;s se ha implementado un programa de control y erradicaci&oacute;n de la infecci&oacute;n en animales destinados al consumo, con costo anual de 14.1 millones de d&oacute;lares que, sin embargo, se considera redituable en la medida en que se estima una reducci&oacute;n de 25.5 millones de d&oacute;lares por concepto de las p&eacute;rdidas ocasionadas por incumplimiento laboral y tratamientos m&eacute;dicos.<sup>3</sup> Los datos relacionados con el costo de las enfermedades transmitidas por alimentos, por lo general no son calculadas ni publicadas en los pa&iacute;ses en desarrollo.<sup>3</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En algunos pa&iacute;ses, los problemas de salmonelosis han aumentado 20 veces entre las d&eacute;cadas de 1980 y 1990, y aunque existen ejemplos de pa&iacute;ses que han logrado limitar y aun revertir estos incrementos, en general la propagaci&oacute;n de <i>Salmonella enterica </i>serotipo Enteritidis y <i>Salmonella enterica </i>serotipo Typhimurium va en aumento.<sup>4</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Un an&aacute;lisis retrospectivo de casos de salmonelosis llevado a cabo en Noruega entre 1966 y 1996 sugiere que existe relaci&oacute;n epidemiol&oacute;gica entre las aves y los humanos.<sup>5</sup> En el Reino Unido se comprob&oacute; que la salmonelosis y campilobacteriosis se incrementan entre junio y agosto, lo que se atribuye a que los alimentos no son almacenados oportunamente en refrigeraci&oacute;n justamente cuando la temperatura ambiental se eleva y tambi&eacute;n debido a la costumbre de consumir barbacoa durante el verano, ya que la carne no se cuece adecuadamente.<sup>2</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante la d&eacute;cada pasada, el n&uacute;mero de casos de salmonelosis registrado en Suecia se ha duplicado debido al aumento en el n&uacute;mero de casos causados por <i>Salmonella </i>Enteritidis. En ese pa&iacute;s, durante 2001, 60% de los casos detectados fueron causados por cuatro serotipos: <i>Salmonella </i>Typhimurium (22.1%), <i>Salmonella </i>Enteritidis (17.7%), <i>Salmonella enterica </i>serotipo Newport (10%) y <i>Salmonella enterica </i>serotipo Heidelberg (5.9%).<sup>6</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En Francia, en 2005, m&aacute;s de 70% de casos en humanos fueron ocasionados por tres serotipos: <i>Salmonella </i>Enteritidis (33%), <i>Salmonella </i>Typhimurium (32%) y <i>Salmonella </i>Hadar (6%).<sup>7</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico los serotipos m&aacute;s frecuentemente aislados entre 1972 y 1999, son, en orden decreciente, <i>Salmonella </i>Enteritidis, <i>Salmonella </i>Typhimurium, <i>Salmonella </i>Derby, <i>Salmonella </i>Agona y <i>Salmonella </i>Anatum.<sup>8</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En humanos, la forma cl&iacute;nica de la infecci&oacute;n por <i>Salmonella </i>Enteritidis generalmente se manifiesta como un episodio de enterocolitis autolimitante, con s&iacute;ntomas que se resuelven en cinco d&iacute;as. El periodo de incubaci&oacute;n es generalmente de 8 a 72 horas, los s&iacute;ntomas m&aacute;s comunes son diarrea acuosa y dolor abdominal. La mayor&iacute;a de las personas se recuperan sin recibir tratamiento con antibi&oacute;ticos. Sin embargo, la diarrea puede ser severa y la persona puede requerir hospitalizaci&oacute;n. La susceptibilidad es mayor en ni&ntilde;os, ancianos y personas inmunodeficientes. En estos pacientes, la infecci&oacute;n puede diseminarse desde los intestinos hacia el torrente sangu&iacute;neo y de all&iacute; hacia otros sitios y puede causar la muerte, a menos de que la persona sea tratada inmediatamente con antibi&oacute;ticos.<sup>9</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En una amplia variedad de especies animales, <i>Salmonella </i>Enteritidis causa infecci&oacute;n intestinal sin signos, especialmente en aves. <i>Salmonella </i>Enteritidis infecta silenciosamente los ovarios de gallinas en apariencia sanas y contamina los huevos antes de que el cascar&oacute;n sea formado. En pollos menores de dos semanas de edad pueden ocurrir brotes de enfermedad cl&iacute;nica con alta mortalidad.<sup>7</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La campilobacteriosis es a&uacute;n m&aacute;s frecuente que la salmonelosis y se calcula que es la enfermedad ent&eacute;rica bacteriana m&aacute;s com&uacute;n en los pa&iacute;ses desarrollados; se ha confirmado que, en particular, <i>Campylobacter jejuni </i>ha sido la causa m&aacute;s frecuente de diarreas infecciosas agudas, que supera incluso a las infecciones causadas por <i>Salmonella </i>spp y <i>Shigella </i>spp.<sup>10</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las fuentes de esta infecci&oacute;n se relacionan generalmente con alimento de origen animal, principalmente los productos av&iacute;colas.<sup>11</sup> En Inglaterra y Gales, los alimentos de origen aviar son los que con mayor frecuencia se asocian con brotes de campilobacteriosis.<sup>12</sup> Asimismo, en Dinamarca se ha encontrado que el consumo de carne de pollo insuficientemente cocida es un factor de riesgo importante para contraer la infecci&oacute;n.<sup>13</sup> En M&eacute;xico, son escasos los informes sobre la campilobacteriosis en animales para abasto, y se desconoce su impacto en la salud.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Caracterizaci&oacute;n de la salmonelosis</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El g&eacute;nero <i>Salmonella </i>es representativo de la familia Enterobacteriaceae, son bacilos gramnegativos que no forman esporas y que en este g&eacute;nero en particular presentan tres tipos de ant&iacute;genos: som&aacute;tico O, flagelar H y capsular Vi, cuyas propiedades de aglutinaci&oacute;n se emplean para diferenciar a m&aacute;s de 2 500 serotipos. Cada a&ntilde;o se aumentan nuevos serotipos a la lista de Kauffmann&#150;White.<sup>14</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El g&eacute;nero <i>Salmonella </i>consta de s&oacute;lo dos especies, <i>Salmonella bongori </i>y <i>Salmonella enterica, </i>esta &uacute;ltima se divide en seis subespecies: entericae, salamae, arizonae, diarizonae, houtenae e indica. Los serotipos de la subespecie entericae causan 99% de las salmonelosis en humanos y animales superiores.<sup>15</sup> Para fines pr&aacute;cticos de diagn&oacute;stico y epidemiolog&iacute;a, la nomenclatura se basa en los nombres de los serotipos de la subespecie, por ejemplo <i>Salmonella enterica, </i>subespecie entericae, serotipo Enteritidis, se abrevia como <i>Salmonella </i>Enteritidis.<sup>16</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la realizaci&oacute;n de estudios m&aacute;s detallados de taxonom&iacute;a y patogenia, los serotipos pueden subdividirse mediante el establecimiento de biotipos y fagotipos. El biotipo es la variaci&oacute;n bioqu&iacute;mica entre organismos del mismo serotipo, mientras que el fagotipo expresa la diferente susceptibilidad a la lisis por bacteri&oacute;fagos de organismos del mismo serotipo.<sup>16</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los diversos serotipos tienen diferentes grados de adaptaci&oacute;n y patogenicidad para los humanos y las especies animales; por ejemplo, <i>Salmonella enterica </i>serotipo Typhi y <i>Salmonella enterica serotipo </i>Parathyphi causan enfermedades severas en humanos, conocidas como s&iacute;ndrome septic&eacute;mico y fiebre tifoidea, pero estos serotipos no son pat&oacute;genos para los animales. Asimismo, los serotipos <i>Salmonella </i>Gallinarum y <i>Salmonella </i>Abortus&#150;ovis son, respectivamente, causantes de la tifoidea aviar y de abortos infecciosos en las ovejas, pero s&oacute;lo ocasionalmente producen infecciones leves o asintom&aacute;ticas en humanos. Existen, sin embargo, serotipos como <i>Salmonella </i>Choleraesuis que causa enfermedad severa en su principal portador, que es el cerdo, pero tambi&eacute;n puede causar enfermedad sist&eacute;mica grave en humanos. Los serotipos <i>Salmonella </i>Enteritidis y <i>Salmonella </i>Typhimurium infectan tanto a humanos como a animales, pero en &eacute;stos, principalmente en los pollos, producen infecciones asintom&aacute;ticas.<sup>15,17</sup> En la segunda mitad del siglo XX ocurrieron dos cambios importantes en la epidemiolog&iacute;a de la salmonelosis en el mundo; en primer lugar, el surgimiento de infecciones en humanos provocadas por el consumo de alimentos contaminados por <i>Salmonella </i>Enteritidis, y en segundo, la m&uacute;ltiple resistencia a los antibi&oacute;ticos de cepas de <i>Salmonella </i>Typhimurium.<sup>7</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los factores responsables del incremento en el n&uacute;mero de infecciones por <i>Salmonella </i>Enteritidis en aves no han sido completamente dilucidados, por lo que es dif&iacute;cil detectar la infecci&oacute;n en pollos aparentemente sanos. Se ha comprobado que <i>Salmonella </i>Enteritidis causa infecciones sin signos cl&iacute;nicos aparentes, en una amplia gama de especies animales, especialmente en las aves dom&eacute;sticas, en las que no se han identificado brotes agudos con mortalidad.<sup>16</sup> Sin embargo, estos portadores sanos pueden diseminar la infecci&oacute;n por la contaminaci&oacute;n fecal de la carne y huevo. Resulta particularmente dif&iacute;cil detectar <i>Salmonella </i>Enteritidis cuando el n&uacute;mero de bacterias presentes es menor a nueve por pieza.<sup>18</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La modernizaci&oacute;n de la avicultura y las exportaciones de aves progenitoras son importantes en la diseminaci&oacute;n de <i>Salmonella </i>Enteritidis en el mundo. En Estados Unidos de Am&eacute;rica, por ejemplo, es com&uacute;n forzar la muda de las gallinas ponedoras retirando el alimento para producir una p&eacute;rdida de peso intencional en las aves, este m&eacute;todo acelera la muda, pero hace m&aacute;s susceptibles a las gallinas a la infecci&oacute;n por <i>Salmonella </i>Enteritidis, y una vez infectadas excretan el microorganismo en las heces en concentraciones significativamente altas, ello aumenta el riesgo de contaminaci&oacute;n del huevo.<sup>19</sup> Para el caso espec&iacute;fico de <i>Salmonella </i>Enteritidis, los huevos pueden contaminarse con heces o infectarse en el ovario al momento de la ovulaci&oacute;n.<sup>20</sup> Investigaciones realizadas en Holanda indican que las parvadas de gallinas ponedoras se infectan principalmente por contacto directo con el ambiente contaminado de la granja;<sup>21 </sup>sin embargo, la epidemia ocurrida en Reino Unido a principios de la d&eacute;cada de 1980, se atribuye a la introducci&oacute;n de l&iacute;neas de aves progenitoras infectadas con el fago tipo 4.<sup>22</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Varios autores han sugerido que <i>Salmonella </i>Enteritidis puede ser introducida en las parvadas por roedores, los cuales son susceptibles a la infecci&oacute;n, al grado que se lleg&oacute; a usar la infecci&oacute;n intencional para destruir ratones.<sup>23,24</sup> La <i>Salmonella </i>Enteritidis usada en Reino Unido como pesticida en 1940 fue fago tipo 6; <sup>24,25 </sup> sin embargo, se ha comprobado que la adquisici&oacute;n del pl&aacute;smido IncX convierte las cepas fago tipo 4 en fago tipo 6.<sup>26</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dram&aacute;tico incremento de infecci&oacute;n por <i>Salmonella </i>Enteritidis fago tipo 4 en humanos en Europa desde 1980, sugiere que la bacteria ha adquirido recientemente nuevos genes de virulencia.<sup>27</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En a&ntilde;os recientes se han secuenciado y comparado un mayor n&uacute;mero de genomas microbianos, lo que ha permitido estimar la frecuencia de mutaciones. Una importante fuente de evoluci&oacute;n son los mecanismos de recombinaci&oacute;n que est&aacute;n impl&iacute;citos en el proceso de replicaci&oacute;n mediante la adquisici&oacute;n o p&eacute;rdida de regiones que portan genes. Adem&aacute;s, la transmisi&oacute;n horizontal de fragmentos de ADN puede ocurrir mediante pl&aacute;smidos, islas gen&oacute;micas, bacteri&oacute;fagos, transposones y secuencias de inserci&oacute;n. Estos elementos m&oacute;viles pueden proveer a los microorganismos, de ventajas para adaptarse e infectar a determinadas c&eacute;lulas.<sup>28</sup> Los genes asociados con virulencia, tambi&eacute;n llamados islas de patogenicidad, se originan fuera de las bacterias como elementos m&oacute;viles. Las islas de patogenicidad adquiridas contribuyen a la naturaleza virulenta de las bacterias en la medida en que contienen grupos de genes que incrementan la virulencia del microorganismo y pueden transformar un organismo benigno en uno pat&oacute;geno. Hasta ahora, se han descrito 12 islas de patogenicidad para <i>Salmonella </i>spp, algunas de ellas son conservadas por todos los serotipos del g&eacute;nero, pero algunas son espec&iacute;ficas de ciertos serotipos.<sup>7</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha comprobado que <i>Salmonella </i>Gallinarum puede generar inmunidad en la parvada contra el serotipo 09, o sea que presenta inmunidad cruzada con <i>Salmonella </i>Enteritidis. Como consecuencia de esta caracter&iacute;stica inmunol&oacute;gica, se ha sugerido que en la medida que <i>Salmonella </i>Gallinarum se ha eliminado mediante la vacunaci&oacute;n y el sacrificio de las aves infectadas, su erradicaci&oacute;n pudo haber permitido el establecimiento de <i>Salmonella </i>Enteritidis.<sup>7,29</sup> En forma inversa, en el Reino Unido, el descenso de 50% en infecci&oacute;n por <i>Salmonella </i>Enteritidis en aves desde 1997, coincide con la introducci&oacute;n de nuevas vacunas vivas contra el serotipo 09, en sustituci&oacute;n de las vacunas con bacterias muertas en formalina.<sup>22</sup> Para fines pr&aacute;cticos, en t&eacute;rminos de control de las zoonosis transmisibles, la vacunaci&oacute;n de aves contra la <i>Salmonella </i>Enteritidis del serotipo 09, puede estar indicada aun en situaciones en las que se haya erradicado <i>Salmonella </i>Gallinarum.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Otra importante fuente de diversidad microbiana la constituyen los integrones, que generalmente llevan uno o m&aacute;s genes de resistencia a los antibi&oacute;ticos.<sup>30</sup> Un inevitable efecto del uso de antibi&oacute;ticos es el surgimiento y diseminaci&oacute;n de bacterias resistentes. Existen algunos biotipos y fagotipos del g&eacute;nero <i>Salmonella </i>que son resistentes a penicilina, cloranfenicol, estreptomicina, sulfonamidas, tetraciclinas, e incluso a fluoroquinolonas, esta resistencia se atribuye a mutaciones puntuales del gen gyrA.<sup>31</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Teniendo en cuenta que los genes resistentes a los antibi&oacute;ticos pueden propagarse por integrones, adem&aacute;s de transposones, islas gen&oacute;micas y pl&aacute;smidos, el tratamiento con agentes antimicrobianos contribuye al aumento de la poblaci&oacute;n de bacterias resistentes a los agentes antimicrobianos relacionados entre s&iacute;, y por ello el uso de antimicrobianos en el alimento de los animales puede tener efectos adversos para la salud humana,<sup>7</sup> debido a su efecto de selecci&oacute;n en la poblaci&oacute;n bacteriana resistente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Caracterizaci&oacute;n de la campilobacteriosis</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La clasificaci&oacute;n del g&eacute;nero  ha sido objeto de revisiones y en la actualidad se aceptan 16 especies.<sup>32</sup> Estos microorganismos tienen forma de bastones espirales o curvados, son gramnegativos, poseen flagelos que les dan movilidad y son microaerof&iacute;licos. Las tres especies de importancia m&eacute;dica y veterinaria son: <i>Campylobacter jejuni, Campylobacter coli </i>y <i>Campylobacter lari. Campylobacter jejuni </i>se divide en dos subespecies: <i>Campylobacter jejuni jejuni, </i>referido simplemente como <i>Campylobacter jejuni, </i>el cual es pat&oacute;geno para humanos, y <i>Campylobacter jejuni doylei, </i>que s&oacute;lo espor&aacute;dicamente infecta a humanos.<sup>33</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bioqu&iacute;micamente, los <i>Campylobacter </i>son oxidasa positivos, reducen nitratos, son negativos a rojo de metilo y Voges&#150;Proskauer y no hidrolizan la gelatina. La mayor&iacute;a de las especies son urea negativas, excepto algunas cepas de <i>Campylobacter lari. </i>La exposici&oacute;n prolongada al agua hace que los microorganismos adquieran forma de cocos, que son m&aacute;s dif&iacute;ciles de cultivar e incluso pueden no ser cultivables.<sup>34,35</sup> <i>Campylobacter jejuni, Campylobacter coli </i>y <i>Campylobacter lari </i>son termof&iacute;licos, es decir, crecen bien entre 42&deg;C y 43&deg;C y no crecen a menos de 25&deg;C. El cultivo en medios selectivos requiere dos d&iacute;as y se necesitan dos d&iacute;as m&aacute;s para realizar las pruebas confirmatorias a especie.<sup>36</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La infecci&oacute;n en humanos se limita al tracto alimentorio y produce diversos tipos de diarrea. Raras veces la infecci&oacute;n ocasiona trastornos neurol&oacute;gicos.<sup>37 </sup>La mayor&iacute;a de los casos se producen por la ingesti&oacute;n de carne de pollo y cerdo. Adem&aacute;s de <i>Campylobacter jejuni, </i>tambi&eacute;n <i>Campylobacter coli </i>y <i>Campylobacter lari </i>producen gastroenteritis en humanos; sin embargo, este &uacute;ltimo, cuyo origen es porcino, representa s&oacute;lo 3% de los aislamientos.<sup>10</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Aspectos relevantes de los mecanismos de patogenicidad</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Salmonella </i>Enteritidis inicia la infecci&oacute;n adhiri&eacute;ndose a la superficie de la mucosa intestinal y posteriormente invade las c&eacute;lulas epiteliales. La adherencia de <i>Salmonella </i>Enteritidis a la superficie del epitelio depende de las fimbrias y flagelos. Las principales fimbrias de <i>Salmonella </i>Enteritidis son SEF14, SEF17 y SEF21. El ciego es el sitio primario de colonizaci&oacute;n de <i>Salmonella </i>Enteritidis en las aves. Se ha investigado que el glucoesfingol&iacute;pido (GSL) GlcCer (N&#150;1) y el gangli&oacute;sido GM3 (G&#150;1) de la mucosa intestinal de los pollos, presentes en el intestino delgado, ciego y recto, son los receptores de la fimbria SEF21 de <i>Salmonella </i>Enteritidis.<sup>38</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuando <i>Salmonella </i>Enteritidis atraviesa el epitelio y llega a la l&aacute;mina propia intestinal, invade a los macr&oacute;fagos y como es resistente a la acci&oacute;n de &eacute;stos, dichas c&eacute;lulas le sirven de veh&iacute;culo para invadir otros &oacute;rganos, principalmente el h&iacute;gado.<sup>39</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Campylobacter jejuni </i>y <i>Campylobacter coli </i>viven como comensales en el tracto intestinal de muchos animales, incluyendo las aves dom&eacute;sticas. Pueden sobrevivir en el ambiente a 4&deg;C durante varias semanas.<sup>40</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Muchas cepas, principalmente de <i>Campylobacter jejuni, </i>producen enterotoxinas y citotoxinas, que son la causa principal de los s&iacute;ntomas digestivos en humanos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hasta hace poco se pensaba que la principal fuente de transmisi&oacute;n de <i>Campylobacter </i>en las aves era horizontal a partir de basura, agua, insectos, equipo y fauna silvestre. Ante los fracasos en los intentos de cultivar <i>Campylobacter de </i>las incubadoras o de los pollitos reci&eacute;n nacidos,<sup>41,42</sup> en diversos estudios se sugiere la transmisi&oacute;n vertical a trav&eacute;s del huevo, tomando en cuenta que <i>Campylobacter jejuni </i>se ha encontrado en todos los segmentos del tracto reproductivo de las gallinas y en el semen de gallos progenitores.<sup>43</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>La problem&aacute;tica del diagn&oacute;stico y detecci&oacute;n</b></i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El principal problema es que <i>Salmonella y Campylobacter </i>son habitantes del intestino de las aves y en ese medio crecen muchas especies de organismos bacterianos. Por ello, al intentar aislar alguna especie pat&oacute;gena, es posible que no se pueda detectar si el n&uacute;mero es proporcionalmente muy bajo y se oculte por el crecimiento de los dem&aacute;s organismos. Por tal raz&oacute;n se ha recomendado el empleo de t&eacute;cnicas inmunol&oacute;gicas y de biolog&iacute;a molecular que permiten detectar en poco tiempo la existencia de animales portadores. El aislamiento e identificaci&oacute;n de <i>Campylobacter </i>es dif&iacute;cil porque es de lento crecimiento y se confunde f&aacute;cilmente con bacterias del g&eacute;nero <i>Arcobacter, </i>y el mayor inconveniente es que se trata de organismos inertes que no metabolizan los az&uacute;cares que se emplean tradicionalmente para diferenciar las enterobacterias. Por ello, <i>Campylobacter </i>requiere de la evaluaci&oacute;n de su crecimiento bajo diferentes condiciones atmosf&eacute;ricas, de temperatura y de sensibilidad antimicrobiana, as&iacute; como de la hidr&oacute;lisis del hipurato y del acetato de indoxyl.<sup>44</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se han desarrollado t&eacute;cnicas de PCR para la detecci&oacute;n de salmonelas en alimentos contaminados natural y experimentalmente.<sup>45</sup> Tambi&eacute;n varios m&eacute;todos de PCR, sensibles y espec&iacute;ficos, se han desarrollado para la detecci&oacute;n de <i>Campylobacter </i>spp, los cuales reducen el tiempo de diagn&oacute;stico a menos de dos d&iacute;as,<sup>33</sup> adem&aacute;s de que detectan cantidades peque&ntilde;as de hasta una unidad formadora de colonia por mililitro de muestra.<sup>46</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Prospectiva en M&eacute;xico</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En un estudio reciente efectuado en pollo de engorda comercial de una granja convencional en M&eacute;xico, de 30 aves muestreadas ocho fueron positivas a <i>Salmonella </i>Enteritidis y dos a <i>Salmonella </i>Typhimurium. Sin pretender inferir comparaciones a partir del muestreo de una sola granja, dadas las condiciones homog&eacute;neas en las que se lleva a cabo la avicultura contempor&aacute;nea, los hallazgos preliminares encontrados, a&uacute;n no publicados, sugieren que la prevalencia en M&eacute;xico de salmonelas en granjas av&iacute;colas es semejante a la de los dem&aacute;s pa&iacute;ses que tienen avicultura tecnificada.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el mismo estudio, de 30 aves muestreadas, en nueve de ellas se aisl&oacute; <i>Campylobacter jejuni y </i>en dos <i>Campylobacter coli. </i>De acuerdo con estos resultados preliminares, es probable que <i>Campylobacter jejuni y Campylobacter coli </i>vivan como comensales en el tracto intestinal del pollo de engorda en las parvadas comerciales en M&eacute;xico, ello indica la utilidad, en el futuro inmediato, de realizar estudios que involucren segmentos representativos de la avicultura nacional. En M&eacute;xico deben ser frecuentes las campilobacteriosis en humanos, derivadas del consumo de alimentos de origen aviar, por ello resultan prioritarios los estudios epidemiol&oacute;gicos al respecto. El empleo del m&eacute;todo de PCR, dada su sensibilidad y especificidad, es indicado para detectar salmonelosis y campilobacteriosis en animales, en alimentos de origen animal y en el medio ambiente, con el fin de que se sustenten las bases para establecer marcadores epidemiol&oacute;gicos &uacute;tiles en M&eacute;xico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Hinton MH. Infections and intoxications associated with animal feed and forage which may present a hazard to human health. Vet J 2000; 159:124&#150;138.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140857&pid=S0301-5092200800010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. World Health Organization. Global aspects of emerging and potential zoonoses: a WHO perspective. Emerg Infect Dis. 1997; 3:223&#150;228.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140858&pid=S0301-5092200800010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. International    Food    Safety    Authorithies    Network (INFOSAN) Red Internacional de Autoridades de Inocuidad de los alimentos. Nota de informaci&oacute;n INFOSAN 3/2005&#150;<i>Salmonella. </i>13 de abril de 2005. Uni&oacute;n Europea. Trends and sources of zoonotic agents</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140859&pid=S0301-5092200800010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. in animals, feeding stuffs, food and man in the European Union and Norway in 2002. Serial online:2004 Sept 29. Cited: 2004 Oct 28. Available from: <a href="http://ec.europa.eu/food/food/biosafety/salmonella/index_en.htm" target="_blank">http://europa.eu.int/comm/food/food/biosafety/salmonella/zoonoses</a>.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140860&pid=S0301-5092200800010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Kapperud G, Stenwig H, Lassen J. Epidemiology of <i>Salmonella </i>Typhimurium 0:4&#150;1 infection in Norway: evidence of transmission from an avian wildlife reservoir. Am J Epidemiol. 1998; 147:774&#150;782.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140861&pid=S0301-5092200800010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Wierup M, Engstr&ouml;m B, Engavall A, Wahlstr&ouml;m H. Control of <i>Salmonella </i>Enteritidis in Sweden. Food Microbio 1995; 25:219&#150;226.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140862&pid=S0301-5092200800010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Velge P, Cloeckaert A, Barrow P. Emergence of <i>Salmonella </i>epidemics: The problems related to <i>Salmonella enterica </i>serotype Enteritidis in multiple antibiotic resistance in other major serotypes. Vet Res 2005; 36:267&#150;288.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140863&pid=S0301-5092200800010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Guti&eacute;rrez&#150;Gogco L, Montiel&#150;V&aacute;zquez E, Aguilera&#150;P&eacute;rez P,   Gonz&aacute;lez&#150;Andrade   MC.   Serotipos   de <i>Salmonella </i>identificados en los servicios de salud de M&eacute;xico. Salud P&uacute;blica de M&eacute;xico 2000; 42:490&#150;495.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140864&pid=S0301-5092200800010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Food  and Agriculture  Organization  of the  United Nations/World Health Organization. Discussion paper on risk management strategies for <i>Salmonella </i>spp in poultry; 2003 Jan 27&#150;Febr 1; Orlando (Florida) USA. Orlando (Florida) USA: Joint FAO/WHO Food Standards Programme Codex Committee on Food Hygiene. Third&#150;fifth Session. 2003:11.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140865&pid=S0301-5092200800010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Lamoureux M, Mackay A, Messier S, Fliss I, Blais BW, Holley RA <i>et al. </i>Detection of <i>Campylobacter jejuni </i>in food and poultry viscera using immunomagnetic separations and microtitre hibridation. J Appl Microbiol 1997; 83:641&#150;651.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140866&pid=S0301-5092200800010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11.&nbsp;Nielsen EM, Nielsen NL. Serotypes and typability of <i>Campylobacter jejuni </i>and <i>Campylobacter coli </i>isolated from poultry products. Int J Food Microbiol 1999; 46:199&#150;205.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140867&pid=S0301-5092200800010000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Pearson AD, Greenwood MH, Feltham RK, Healing TD, Donaldson J, Jones DM <i>et al. </i>Microbial ecology of <i>Campylobacter jejuni </i>in a United Kingdom chicken supply chain:  intermittent common source, vertical transmission, and amplification by flock propagation. Appl Environ Microbiol 1996; 62:4614&#150;4620.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140868&pid=S0301-5092200800010000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Neimann J, Engberg J, Molbak K, Wegener, H.C. Risk Factors associated with sporadic campylobacteriosis in Denmark. 4th World Congress, Food borne Infections and intoxications; 1998 June 7&#150;12; Berlin, Germany. Berlin, Germany: Federal Institute for Risk Assessment, 1998: 43&#150;54.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140869&pid=S0301-5092200800010000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Popoff MY, Bockemuhl J, Gheesling LL. Supplement 2001  (No. 45) to the Kauffmann&#150;White scheme. Res Microbiol 2003; 154:173&#150;174.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140870&pid=S0301-5092200800010000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Uzzau S, Brown DJ, Wallis T, Rubino S, Leori G, Bernard S <i>et al.  </i>Host adapted serotypes  of <i>Salmonella enterica. </i>Epidemiol Infect 2000; 125: 229&#150;255.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140871&pid=S0301-5092200800010000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Ward LR, de Sa JD, Rowe B. A phagetyping scheme for <i>Salmonella </i>Enteritidis. Epidemiol Infect 1987; 99: 291&#150;294.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140872&pid=S0301-5092200800010000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Duchet SM, Mompart F,  Berthelot F, Beaumont C, Lechopier P, Pardon P. Differences in frequency, level and duration of cecal carriage between four outbreed chicken lines infected orally with <i>Salmonella </i>Enteritidis. Avian Dis 1997; 41:559&#150;567.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140873&pid=S0301-5092200800010000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Humphrey TJ. Contamination of egg shell and contents with <i>Salmonella </i>Enteritidis: a review. Int J Food Microbiolol 1994; 21:31&#150;40.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140874&pid=S0301-5092200800010000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Holt PS. Molting and <i>Salmonella enterica </i>serovar Enteritidis infection: the problem and some solutions. Poult Sci 2003; 82:1008&#150;1010.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140875&pid=S0301-5092200800010000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Mollenhorst H, Van Woudenbergh CJ, Bokkers EGM, y Boer IJM. Risk factors for <i>Salmonella </i>Enteritidis infection in laying hens. Poult Sci 2005; 84: 1308&#150;1313.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140876&pid=S0301-5092200800010000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Van de Giessen AW, Ament AJHA, Notermans SHW. Intervention   strategies  for <i>Salmonella </i>Enteritidis  in poultry flocks: a basic approach. International J Food Microbiol 1994; 21:145&#150;154.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140877&pid=S0301-5092200800010000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Ward LR, Therefall J, Smith HR, O'Brien SJ, Riemann H, Kass P <i>et al. Salmonella </i>Enteritidis epidemic. Science 2000; 287:1753&#150;1754.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140878&pid=S0301-5092200800010000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Henzler DJ, Opitz HM. The role of mice in the epizootiology of <i>Salmonella </i>Enteritidis infection on chicken layer farms. Avian Dis 1992; 36:625&#150;631.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140879&pid=S0301-5092200800010000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. Friedman CR, Malcom G, Rigau&#150;Perez JG, Arambulo P, Tauxe RV.   Public health risk from <i>Salmonella&#150;based </i>rodenticides. Lancet 1996; 347:1705&#150;1706.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140880&pid=S0301-5092200800010000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Guard PJ, Henzler DJ, Rahmann MM, Carlson RW. On&#150;farm monitoring of mouse&#150;invasive <i>Salmonella enterica </i>serovar Enteritidis and a model for its association with the production of contaminated eggs. Appl Environ Microbiol 1997; 63:1588&#150;1593.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140881&pid=S0301-5092200800010000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. Threlfall EJ, Ridley AM, Ward LR, Rowe B. Assessment of health risk from <i>Salmonella&#150;based </i>rodenticides. Lancet 1996; 348:616&#150;617.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140882&pid=S0301-5092200800010000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27. Helmuth R, Schroeter A. Molecular typing methods for <i>S. </i>Enteritidis. Int J Food Microbiol 1994; 21:69.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140883&pid=S0301-5092200800010000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28. Ochman H, Lawrence JG, Groisman EA. Lateral gene transfer and the nature of bacterial innovation. Nature 2000; 405:299&#150;304.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140884&pid=S0301-5092200800010000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29. Chacana PA, Terzolo HR. Protection Conferred by a Live <i>Salmonella </i>Enteritidis Vaccine Agaist Fowl Typhoid in Laying Hens. Avian Dis 2006; 50:280&#150;283.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140885&pid=S0301-5092200800010000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30. Boyd D, Peters GA, Cloeckaert A, Boumedine KS, Chaslus&#150;Dancla  E,  Imbereschts  H <i>et al.  </i>Complete nucleotide sequence of a 43 kilobase genomic island associated with the multidrug resistance region of <i>Salmonella enterica </i>serovar Typhimurium DT 104 and its identification in phage type DT 120 and serovar Agona. J Bacteriol 2002; 5725&#150;5732.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140886&pid=S0301-5092200800010000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">31. Angulo FJ, Johnson KR, Tauxe RV. Origins and consequences of antimicrobial&#150;resistant nontyphoidal <i>Salmonella: </i>implications for the use of fluoroquinolones in food animals. Microb Drug Resist 2000; 6:77&#150;83.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140887&pid=S0301-5092200800010000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">32. Petersen L, Nielsen EM, On SWL. Serotype and genotype diversity and hatchery transmission of <i>Campylobacter jejuni </i>in commercial poultry flocks. Vet Microbiol 2001; 82:141&#150;145.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140888&pid=S0301-5092200800010000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">33. Phillips, CA. Incidence, epidemiology and prevention of food borne <i>Campylobacter </i>species. Trends Food Sci Technol 1995; 6: 83&#150;87.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140889&pid=S0301-5092200800010000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">34. Federighi M. <i>Campylobacter </i>et hygi&egrave;ne des aliments. Paris, France: Ed. Polytechnica, 1999.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140890&pid=S0301-5092200800010000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">35. Talibart R, Denis M, Castillo A, Cappelier JM, Ermel G. Survival and recovery of viable but noncultivable forms of <i>Campylobacter </i>in aqueous microcosm. Int J Food Microbiol 2000; 55:263&#150;267.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140891&pid=S0301-5092200800010000700035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">36. Wassenaar TM, Newell DG. The Genus <i>Campylobacter. </i>New York: Springer New York, 2007.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140892&pid=S0301-5092200800010000700036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">37. Barrow PA, Page K. Inhibition of colonization of the alimentary tract in young chickens with <i>Campylobacter </i><i>jejuni </i>by pre&#150;colonization with strains of <i>C.jejuni. </i>FEMS Microbiol Lett 2000; 182:87&#150;91.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140893&pid=S0301-5092200800010000700037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">38. Kramer J, Visscher AH, Wagenaar JA, Jeurissen SHM. Entry and survival of <i>Salmonella enterica </i>serotype Enteritidis PT4 in chicken macrophage and lymphocyte cell lines. Vet Microbiol 2003; 91:147&#150;155.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140894&pid=S0301-5092200800010000700038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">39. Asheg   AA,   Levkut   M,   Revajova   V,   Sevcikova   Z, Kolodzieyski  L,   Pistl J.   Dynamics   of Lymphocyte Subpopulations  in   Inmmune   Organs  of Chickens Infected with <i>Salmonella </i>Enteritidis. Acta Vet Brno 2003; 72:359&#150;364.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140895&pid=S0301-5092200800010000700039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">40. Brooks BW, Robertson RH; Henning D. Garcia MM. Production   and   Western   blot   characterization   of monoclonal antibodies specific for <i>Campylobacter jejuni </i>and <i>Campylobacter coli. </i>J Rapid Methods Automation Microbiol 1995; 4:155&#150;164.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140896&pid=S0301-5092200800010000700040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">41. Neil SD, Campell NJ, Greene JA. <i>Campylobacter </i>species in broiler chickens. Avian Pathol 1984; 13:777&#150;785.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140897&pid=S0301-5092200800010000700041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">42. Clark AG, Bueschkens DH. Survival and growth of <i>Campylobacter jejuni </i>in egg yolk and albumen. J Food Prot 1986; 49:135&#150;141.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140898&pid=S0301-5092200800010000700042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">43. Cox NA, Hofacre CL, Bailey JS, Buhr RJ, Wilson JL, Hiett KL. Presence of <i>Campylobacter jejuni </i>in Various Organs One Hour, One Day, and One Week Following Oral or Intracoacal Inoculations of Broiler Chicks. Avian Dis 2005; 49:155&#150;158.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140899&pid=S0301-5092200800010000700043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">44. Oyarzabal O, Murphy B. <i>Campylobacterand </i>Arcobacter. Int Food Hyg 1998; 9:29&#150;30.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140900&pid=S0301-5092200800010000700044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">45. B&uuml;lte M, Jakob P. The use of PCR&#150; generated invA probe for the detection of <i>Salmonella </i>spp in artificially and naturally contaminated foods. Int J Food Microbiol 1995; 26:335&#150;344.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140901&pid=S0301-5092200800010000700045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">46. Skanseng B, Kaldhusdal M, Knut R. Comparison of chicken gut colonizations by pathogens <i>Campylobacter jejuni </i>and <i>Clostridium perfringens </i>by real&#150;time quantitative PCR. Mol Cell Probes 2006; 20:269&#150;279.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10140902&pid=S0301-5092200800010000700046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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