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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto antibacteriano del aceite esencial de orégano (Lippia berlandieri) en bacterias patógenas de camarón Litopenaeus vannamei]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antibacterial effect of essential oregano oil (Lippia berlandieri) on pathogenic bacteria of shrimp Litopenaeus vannamei]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[An alternative for antibiotics use is the employment of vegetal oil extracts with unspecific antagonistic activity. In the present study, two fractions of essential oil from the oregano Lippia verlandieri, fraction high in thymol (FT) and fraction high in carvacrol (FC) were evaluated and compared to commercial antibiotics for the bacteria Aeromonas hydrophila, A. salmonicida, Pseudomonas putida, P. fluorescens, Vibrio mimicus, V. alginolyticus, V. fluvialis y V. vulnificus, isolated from shrimp Litopenaeus vannamei. The minimal inhibitory concentration (MIC) as well as the inhibition capacity in agar plates of these antimicrobials were evaluated and compared to commercial antibiotics. The survival of shrimp infected with V. alginolyticus and treated with the antimicrobials FT, FC and the antibiotic Enrofloxacine was also tested. The MIC of the FT and FC were from 50 to 100 µg/mL, the commercial antibiotic showed a MIC from 10 to 50 µg/mL. V. alginolyticus had the highest (p &#8805; 0.05) sensitivity level (50 to 56 mm of inhibitory halo) with FC and Enrofloxacine. Shrimp survival was 70, 50 y 50% with application of FC, FT and Enrofloxacine, respectively. Both FT and FC fractions are able to control in vitro growth of pathogenic bacteria in shrimp. It was concluded that the fraction high in carvacrol from essential oregano oil, could be a viable alternative or a suplement to commercial antibiotics for the control of Vibrio spp. pathogens in penaeid shrimps.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Aceite esencial de orégano]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Efecto antibacteriano del aceite esencial de or&eacute;gano (<i>Lippia berlandieri</i>) en bacterias pat&oacute;genas de camar&oacute;n <i>Litopenaeus vannamei</i></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Antibacterial effect of essential oregano oil (<i>Lippia berlandieri</i>) on pathogenic bacteria of shrimp <i>Litopenaeus vannamei</i></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Martina Hilda Gracia&#45;Valenzuela,<sup>1</sup> C&eacute;sar Orozco&#45;Medina<sup>2</sup> y Carmen Molina&#45;Maldonado<sup>1</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Instituto Tecnol&oacute;gico del Valle del Yaqui, A. P. 797, Block 611, Valle del Yaqui, Mpio. de B&aacute;cum, Sonora. 85276. M&eacute;xico</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Centro de Estudios Superiores del Estado de Sonora, Carretera a Huatabampo Km 6.5 y Perif&eacute;rico, Col. Ju&aacute;rez. Navojoa, Sonora. 85800. M&eacute;xico.</i> E&#45;mail: <a href="mailto:hgracia@itvalledelyaqui.edu.mx">hgracia@itvalledelyaqui.edu.mx</a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 14 de septiembre del 2011.    <br> 	Aceptado: 18 de julio de 2012.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una alternativa al uso de antibi&oacute;ticos comerciales son los extractos de aceites vegetales con actividad antimicrobiana no espec&iacute;fica. En el presente estudio, se evalu&oacute; la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria (CMI) as&iacute; como la capacidad de inhibici&oacute;n en placa del aceite esencial de or&eacute;gano <i>Lippia verlandieri</i>, con fracci&oacute;n alta en timol (FT) y fracci&oacute;n alta en carvacrol (FC), comparados con antibi&oacute;ticos comerciales, para las bacterias <i>Aeromonas hydrophila, A. salmonicida, Pseudomonas putida, P. fluorescens, Vibrio mimicus, V. alginolyticus, V. fluvialis y V. vulnificus</i>, aisladas de camar&oacute;n blanco <i>Litopenaeus vannamei</i>. Adem&aacute;s, se determin&oacute; la supervivencia de camarones infectados con <i>V. alginolyticus</i> tratados con las fracciones FT, FC y Enrofloxacina. Las CMI de las FT y FC fueron de 50 a 100 &micro;g/mL, mientras que el antibi&oacute;tico comercial present&oacute; una CMI de 10 a 50 &micro;g/mL. La bacteria <i>V. alginolyticus</i> present&oacute; el m&aacute;s alto (<i>p</i> &#8805; 0.05) grado de sensibilidad (50 a 56 mm de halo de inhibici&oacute;n) con FC y Enrofloxacina. Por otro lado, la supervivencia de camar&oacute;n fue de 70, 50 y 50% con la aplicaci&oacute;n de FC, FT y Enrofloxacina, respectivamente. Ambas fracciones del extracto de aceite esencial de or&eacute;gano tienen la capacidad de controlar el crecimiento <i>in vitro</i> de bacterias pat&oacute;genas en camar&oacute;n. Se concluye, que la fracci&oacute;n alta en carvacrol de aceite esencial de or&eacute;gano es una alternativa viable o un complemento a los antibi&oacute;ticos comerciales para el control de <i>Vibrio</i> spp., pat&oacute;genos en camarones peneidos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave</b>: Aceite esencial de or&eacute;gano, camaronicultura, sustituci&oacute;n de antibi&oacute;ticos, <i>Vibrio</i>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">An alternative for antibiotics use is the employment of vegetal oil extracts with unspecific antagonistic activity. In the present study, two fractions of essential oil from the oregano <i>Lippia verlandieri</i>, fraction high in thymol (FT) and fraction high in carvacrol (FC) were evaluated and compared to commercial antibiotics for the bacteria <i>Aeromonas hydrophila,</i> <i>A.</i> <i>salmonicida, Pseudomonas putida, P. fluorescens, Vibrio mimicus, V. alginolyticus, V. fluvialis y V. vulnificus</i>, isolated from shrimp <i>Litopenaeus vannamei</i>. The minimal inhibitory concentration (MIC) as well as the inhibition capacity in agar plates of these antimicrobials were evaluated and compared to commercial antibiotics. The survival of shrimp infected with <i>V. alginolyticus</i> and treated with the antimicrobials FT, FC and the antibiotic Enrofloxacine was also tested. The MIC of the FT and FC were from 50 to 100 &micro;g/mL, the commercial antibiotic showed a MIC from 10 to 50 &micro;g/mL. <i>V. alginolyticus</i> had the highest (<i>p</i> &#8805; 0.05) sensitivity level (50 to 56 mm of inhibitory halo) with FC and Enrofloxacine. Shrimp survival was 70, 50 y 50% with application of FC, FT and Enrofloxacine, respectively. Both FT and FC fractions are able to control <i>in vitro</i> growth of pathogenic bacteria in shrimp. It was concluded that the fraction high in carvacrol from essential oregano oil, could be a viable alternative or a suplement to commercial antibiotics for the control of <i>Vibrio</i> spp. pathogens in penaeid shrimps.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words</b>: Antibiotics substitution, essential oregano oil, shrimp culture, <i>Vibrio</i>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La incidencia de enfermedades infecciosas ocasionadas por bacterias es uno de los principales problemas en la producci&oacute;n acu&iacute;cola de camarones peneidos (Hettiarachchi <i>et al</i>., 2005; Gracia&#45;Valenzuela <i>et al</i>., 2011). Un m&eacute;todo de control para enfermedades infecciosas en organismos acu&iacute;colas ha sido la aplicaci&oacute;n de antibi&oacute;ticos como la Enrofloxacina, Florfenicol y Oxitetraciclina entre otros (Roque <i>et al</i>., 2001; Xu <i>et al</i>., 2006; Santiago <i>et al</i>., 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Algunos compuestos fen&oacute;licos obtenidos de extractos vegetales, se han reportado como alternativas viables a los antibi&oacute;ticos para el tratamiento de agentes infecciosos en la acuicultura (Citarasu, 2010). En este contexto, componentes qu&iacute;micos del aceite esencial de or&eacute;gano (AEO), han mostrado capacidad antibi&oacute;tica sobre bacterias pat&oacute;genas que afectan a peces (Paredes&#45;Aguilar <i>et al.</i>, 2007; Rattanachaikunsopon &amp; Phumkhachorn, 2010). Bajo condiciones de cultivo, las bacterias del g&eacute;nero <i>Vibrio</i> y <i>Pseudomonas</i> son los principales agentes infecciosos en camarones peneidos (Hettiarachchi <i>et al</i>., 2005; Citarasu, 2010). Es posible que estas bacterias pat&oacute;genas para el camar&oacute;n tambi&eacute;n sean susceptibles a los compuestos antimicrobianos del aceite esencial de or&eacute;gano.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo del presente estudio, fue comparar la capacidad antibi&oacute;tica de dos fracciones de aceites esenciales de or&eacute;gano (AEO), una fracci&oacute;n con alto contenido de carvacrol (FC) y la otra de timol (FT), en condiciones <i>in vitro</i> ante algunas especies de bacterias pat&oacute;genas de camar&oacute;n. Adem&aacute;s, evaluar la capacidad anti&#45;infectiva <i>in vivo</i> en el camar&oacute;n, comparada con un antibi&oacute;tico comercial de uso com&uacute;n en la acuicultura.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Extracto de aceite esencial de or&eacute;gano.</b> Los extractos de aceite esencial de or&eacute;gano <i>Lippia verlandieri</i> Schauer fueron facilitados por el Centro de Investigaci&oacute;n de los Recursos Naturales (CIRENA), en Salaices, Chihuahua, M&eacute;xico. Se evaluaron dos fracciones, la fracci&oacute;n alta en timol (FT), que contiene 23% de carvacrol y 48% de timol; y la fracci&oacute;n alta en carvacrol (FC), con 40% carvacrol y 25% de timol.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria (CMI) de antibi&oacute;ticos en bacterias.</b> Se determin&oacute; la CMI para los antibi&oacute;ticos naturales FT y FC, y los antibi&oacute;ticos comerciales Enrofloxacina, Florfenicol, Fosfomicina C&aacute;lcica y Oxitetraciclina (Avimex<sup>TM</sup>), a concentraciones de 2.5, 5, 10, 50 y 100 &micro;g/mL (en medio Mueller&#45;Hinton, DIFCO<sup>TM</sup> con 2.5% de NaCl), rango com&uacute;nmente usado para probar actividad antibacteriana (Roque <i>et al</i>., 2001; Paredes&#45;Aguilar <i>et al</i>., 2007). Las especies de bacterias evaluadas fueron: <i>Aeromonas hydrophila</i> (Chester, 1901) Stanier, 1943; <i>A. salmonicida</i> (Lehmann &amp; Neumann, 1896) Griffin <i>et al.,</i> 1953; <i>Pseudomonas putida</i> (Trevisan, 1889) Migula, 1895; <i>P. fluorescens</i> (Migula, 1895); <i>Vibrio mimicus</i> Davis <i>et al.,</i> 1982; <i>V. alginolyticus</i> (Miyamoto <i>et al</i>., 1961) Sakazaki, 1968; <i>V. fluvialis</i> Lee <i>et al.,</i> 1981 <i>y V. vulnificus</i> (Reichelt <i>et al.,</i> 1979) Farmer, 1980; aisladas de camarones blancos <i>Litopenaeus vannamei</i> (Boone, 1931). La identificaci&oacute;n de las bacterias se llev&oacute; a cabo mediante determinaciones fenot&iacute;picas con el kit comercial API20E y API20NE (BioM&eacute;reux) (G&oacute;mez&#45;Gil <i>et al.</i>, 2003); los resultados de identificaci&oacute;n bacteriana no son mostrados en el presente trabajo. Los medios de cultivo en tubo de Mueller&#45;Hinton se incubaron durante 24 h a 30 &ordm;C. Posteriormente, se observ&oacute; la turbidez en cada tratamiento para todas las r&eacute;plicas. La CMI se defini&oacute; como la concentraci&oacute;n m&aacute;s baja del antibi&oacute;tico que inhibi&oacute; el crecimiento visible de la bacteria despu&eacute;s de su incubaci&oacute;n (Andrews, 2001).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Grado de inhibici&oacute;n de bacterias en placas con aceites esenciales de or&eacute;gano (AEO).</b> Los antibi&oacute;ticos naturales de AEO en sus fracciones FT y FC, y el antibi&oacute;tico comercial Enrofloxacina fueron utilizados para evaluar el grado de inhibici&oacute;n de crecimiento de las colonias de bacterias en las especies mencionadas. Con base a resultados del presente estudio de CMI, se utiliz&oacute; la Enrofloxacina por mostrar valores similares de CMI en las especies de bacterias evaluadas, al compararse con las fracciones FT y FC; adem&aacute;s de ser un antibi&oacute;tico efectivo en bacterias pat&oacute;genas en cultivos de camar&oacute;n (Roque <i>et al</i>., 2001; Santiago <i>et al</i>., 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Placas de medio con agar Mueller&#45;Hinton y 2.5% de NaCl, fueron previamente inoculadas por dispersi&oacute;n en toda la superficie con 100 &micro;L de suspensi&oacute;n bacteriana. Posteriormente, se colocaron discos de papel est&eacute;ril con di&aacute;metro de 5 mm (Oxoid<sup>TM</sup>), embebidos con 20 &micro;L de los extractos de or&eacute;gano FT, FC y Enrofloxacina a una concentraci&oacute;n de 50 &micro;g/mL, respectivamente. Como control negativo, se utiliz&oacute; soluci&oacute;n salina al 2.5% de NaCl. Los ensayos en placas se realizaron por triplicado e incubaron durante 24 h a 30 &deg;C. Finalmente, se midi&oacute; el di&aacute;metro en mm del halo de inhibici&oacute;n generado por los antibi&oacute;ticos sobre el medio de cultivo (Roque <i>et al</i>., 2001).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Supervivencia de camarones infectados y tratados con AEO.</b> La capacidad anti&#45;infectiva del extracto de AEO fue evaluado <i>in vivo</i> con pruebas de sobrevivencia de camar&oacute;n blanco (<i>L. vannamei</i>) con un peso de 15&#45;18 g, cultivados en un sistema est&aacute;tico con 20 camarones por acuario de 50 L. Las condiciones de cultivo se mantuvieron bajo los siguientes valores: temperatura de 23 a 25 &ordm;C, salinidad de 34 a 36 UPS, concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno disuelto de 4.5 a 5.5 mg/L y pH de 7.5 a 8. La infecci&oacute;n en los camarones se realiz&oacute; con la bacteria <i>Vibrio alginolyticus,</i> para lo cual, el agua de cultivo fue inoculada con la bacteria en fase de crecimiento exponencial a fin de obtener una concentraci&oacute;n final de 10<sup>6</sup> unidades formadoras de colonia por mL (UFC/mL). Posteriormente, los camarones fueron alimentados con base en 5 tratamientos (20 camarones por cada tratamiento). En todos los tratamientos se utiliz&oacute; el mismo tipo de alimento; as&iacute; como igual volumen (5 mL) y concentraci&oacute;n de antibi&oacute;tico o fracci&oacute;n, los cuales fueron previamente mezclados con lecitina de soya como agente disolvente a una proporci&oacute;n 1:1. Tratamiento FT: alimento comercial para camar&oacute;n (Purina 35 <sup>TM</sup>, M&eacute;xico) impregnado por aspersi&oacute;n con 5 mL de fracci&oacute;n de timol (a concentraci&oacute;n de 50 &micro;g/mL/g de alimento). Tratamiento FC: alimento con fracci&oacute;n de carvacrol. Tratamiento EN: alimento con Enrofloxacina. Tratamiento CP (control positivo): alimento comercial con agente disolvente sin antibi&oacute;tico y sin in&oacute;culo de <i>V. alginolyticus</i>. Tratamiento CN (control negativo): alimento con agente disolvente sin antibi&oacute;tico, con in&oacute;culo de <i>V. alginolyticus</i>. La sobrevivencia se registr&oacute; diariamente hasta el d&eacute;cimo d&iacute;a de cultivo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico.</b> Los resultados de los grados de inhibici&oacute;n de bacterias en placas entre los distintos tratamientos, fueron analizados mediante una prueba de distribuci&oacute;n de Kruskal&#45;Wallis, con el programa Statistica Versi&oacute;n 6.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria de antibi&oacute;ticos en bacterias.</b> La Fracci&oacute;n FC de AEO mostr&oacute; una CMI de 50 &micro;g/mL en todas las especies de bacterias evaluadas. La CMI para la FT present&oacute; valores en el rango de 50 a 100 &micro;g/mL en todas las especies. El antibi&oacute;tico comercial Enrofloxacina present&oacute; una CMI entre 10 a 50 &micro;g/mL, mientras que la Fosfomicina C&aacute;lcica y el Florfenicol mostraron las menores CMI con 5 a 50 &micro;g/mL en las 8 especies de bacterias evaluadas (<a href="/img/revistas/hbio/v22n3/a2t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>). La Oxitetraciclina exhibi&oacute; una CMI de 100 &micro;g/mL en cada cepa evaluada, siendo este el m&aacute;s alto valor detectado para todos los antibi&oacute;ticos probados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Grado de inhibici&oacute;n de bacterias en placas con AEO.</b> En cuanto a la inhibici&oacute;n en placas, la FC y Enrofloxacina fueron estad&iacute;sticamente similares (<i>p</i> &#8805; 0.05) en todas las especies excepto con <i>Aeromonas hydrophila</i>, en donde la Enrofloxacina mostr&oacute; una mayor inhibici&oacute;n en el crecimiento, con un halo de 36.7 a 37.3 mm. En las especies de <i>Aeromonas</i>, la FT mostr&oacute; una menor capacidad inhibitoria con respecto a FC y EN (<i>p</i> &#8804; 0.05), en contraste, la FT inhibi&oacute; significativamente solo sobre <i>P. fluorescens</i> con 24.9 a 25.1 mm de halo (<i>p</i> &#8804; 0.05). Por otro lado, la Enrofloxacina en reto con <i>V.</i> <i>mimicus</i> mostr&oacute; una inhibici&oacute;n menor a las FT y FC, esto es 17 a 24 mm de halo (<i>p</i> &#8804; 0.05) (<a href="/img/revistas/hbio/v22n3/a2f1.jpg" target="_blank">Fig. 1</a>). De acuerdo a la clasificaci&oacute;n de los grados de sensibilidad bacteriana a los antibi&oacute;ticos, en relaci&oacute;n al di&aacute;metro de inhibici&oacute;n en placas (&#8804; 8 mm no sensible, 9&#45;14 mm sensible, 15&#45;19 mm muy sensible, &#8805; 20 mm extremadamente sensible) propuesto por Celikel &amp; Kavas (2008), todas las especies de <i>Vibrio</i> evaluadas fueron sensibles ante los extractos de FT, FC y Enrofloxacina; adem&aacute;s, el grado de sensibilidad fue diferente seg&uacute;n la especie de bacteria y el tipo de antibi&oacute;tico aplicado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La respuesta de inhibici&oacute;n de FC y Enrofloxacina en <i>V. alginolyticus</i> result&oacute; "extremadamente sensible" y significativamente mayor comparada al resto de los tratamientos en todas las especies (<i>p</i> &#8804; 0.05), con halos de inhibici&oacute;n de 50 a 56 mm de di&aacute;metro; excepto para <i>A. salmonicida</i> con FC (<a href="/img/revistas/hbio/v22n3/a2f1.jpg" target="_blank">Fig. 1</a>). Los tratamientos evaluados (FT, FC y EN), al ser comparados dentro de cada una de las especies: <i>P. putida</i>, <i>V. fluvialis</i> y <i>V. vulnificus</i> (<a href="/img/revistas/hbio/v22n3/a2f1.jpg" target="_blank">Fig. 1</a>), resultaron estad&iacute;sticamente similares (<i>p</i> &#8805; 0.05) y estuvieron acorde a lo observado en la evaluaci&oacute;n de las CMI.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Sobrevivencia de camarones infectados y tratados con AEO.</b> La sobrevivencia de camarones en cultivo con 10 d&iacute;as de tratamiento con FC fue del 70%, significativamente mayor a la obtenida con FT (50%), Enrofloxacina (50%) y el tratamiento control negativo (45%). Los camarones no infectados presentaron el 100% de sobrevivencia (<a href="/img/revistas/hbio/v22n3/a2f2.jpg" target="_blank">Fig. 2</a>). En el tratamiento FC, el 100% de los camarones se mantuvieron vivos hasta el d&iacute;a cinco, en contraste con los tratamientos FT y EN donde sobrevivieron hasta el d&iacute;a dos y en el tratamiento CN solo durante el primer d&iacute;a (<a href="/img/revistas/hbio/v22n3/a2f2.jpg" target="_blank">Fig. 2</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de la CMI en las bacterias evaluadas frente a los antibi&oacute;ticos comerciales Florfenicol y Enrofloxacina, 5 a 50 &micro;g/mL y 10 a 50 &micro;g/mL respectivamente, mostraron concentraciones superiores a las reportadas por Roque <i>et al</i>. (2001) para bacterias del g&eacute;nero <i>Vibrio</i>, aisladas de camarones enfermos cultivados en el noroeste del Pac&iacute;fico mexicano, con valores de 1.79 y 0.45 &micro;g/mL. Por otro lado, la Oxitetraciclina present&oacute; menor CMI con 100 &micro;g/mL en el presente estudio comparado con los 304 &micro;g/mL reportado por los mismos autores. Los resultados mostrados anteriormente con valores variables de CMI ante los antibi&oacute;ticos, pueden ser considerados como una propiedad de amplia variabilidad sensitiva en las bacterias del g&eacute;nero <i>Vibrio</i> (Santiago <i>et al</i>., 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La aplicaci&oacute;n de las dos fracciones de aceite esencial de or&eacute;gano fue efectiva en la inhibici&oacute;n de <i>Vibrio mimicus, V. alginolyticus, V. fluvialis y V. vulnificus</i> a una concentraci&oacute;n m&iacute;nima de 50 mg/L. Paredes&#45;Aguilar <i>et al.</i> (2007), estudiaron el efecto antimicrobiano de cinco fracciones de AEO (con diferentes proporciones de carvacrol&#45;timol), sobre las especies de <i>Vibrio alginolyticus</i>, <i>V</i>. <i>cholerae</i> No&#45;01, <i>V. mimicus</i>, <i>V</i>. <i>parahaemolyticus</i> y <i>V.</i> <i>vulnificus</i>, utilizando concentraciones de 50 a 600 mg/L; sus resultados mostraron efecto antibacteriano en todas las fracciones, sin encontrar diferencias entre las CMI de las especies de <i>Vibrio</i> evaluadas, con concentraciones de 100&#45;200 mg/L. Dichos resultados de CMI fueron mayores a los obtenidos en este estudio. La diferencia en los valores de las CMI entre ambos, pudo ser causada por el manejo distinto en las variables experimentales como la concentraci&oacute;n bacteriana del in&oacute;culo y la concentraci&oacute;n del inhibidor (Lambert, 2000). En este contexto, se ha reportado que el efecto antibacteriano en la fracci&oacute;n con alto contenido de timol (26% carvacrol, 54% timol) es mayor comparado con la fracci&oacute;n con alto contenido de carvacrol (81% carvacrol, 3% timol) (Paredes&#45;Aguilar <i>et al</i>., 2007). Sin embargo, en el presente estudio, los resultados indicaron un mayor efecto antibacteriano en la fracci&oacute;n con alto contenido de carvacrol (FC, 40% carvacrol, 25% timol) que en la fracci&oacute;n de bajo contenido (FT, 23% carvacrol, 48% timol).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Seg&uacute;n Lambert <i>et al</i>. (2001) existe un efecto de inhibici&oacute;n aditivo de la mezcla de carvacrol y timol, pero no un efecto sin&eacute;rgico ni antag&oacute;nico. Adem&aacute;s de los dos principales antibacterianos, puede existir una sinergia con otros compuestos menores (en cuanto a concentraci&oacute;n) como el cimeno, otro de los componentes principales del or&eacute;gano y que puede potenciar la actividad antibacteriana del carvacrol en pat&oacute;genos acu&iacute;colas (Rattanachaikunsopon &amp; Phumkhachorn, 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de CMI y la capacidad anti&#45;infectiva de AEO ante pat&oacute;genos de camar&oacute;n, evaluados con base en la supervivencia, tambi&eacute;n sugieren una capacidad inhibitoria efectiva de este aceite esencial. No obstante, se desconocen los mecanismos espec&iacute;ficos por los cuales se lleva a cabo el efecto inhibitorio. La respuesta de inhibici&oacute;n de crecimiento o efecto bactericida por diferentes fracciones de AEO est&aacute; relacionada con la forma de acci&oacute;n qu&iacute;mica de los compuestos carvacrol y timol ante las c&eacute;lulas bacterianas; toda vez que la composici&oacute;n, la estructura, as&iacute; como el grupo funcional de los aceites juegan un papel importante en la determinaci&oacute;n de su actividad antimicrobiana (Celikel &amp; Kavas, 2008). El carvacrol y el timol act&uacute;an en la bicapa de fosfol&iacute;pidos de la membrana celular, provocando su desestabilizaci&oacute;n e incrementando su permeabilidad (Ultee <i>et al.</i>, 2002; Lambert <i>et al.</i>, 2001). La actividad antibi&oacute;tica de fracciones de AEO est&aacute; influida adem&aacute;s, por la temperatura (Paredes&#45;Aguilar <i>et al.</i>, 2007; Burt, 2004), el pH (Juven <i>et al.</i>, 1994), la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno disuelto, el sinergismo entre los componentes antibi&oacute;ticos presentes en la fracci&oacute;n de aceite esencial (Burt, 2004) y la complejidad de las poblaciones bacterianas en donde act&uacute;an (Ortega&#45;Morente <i>et al.</i>, 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En &eacute;ste estudio, se encontraron diferencias entre los experimentos <i>in vitro</i> e <i>in vivo</i>. <i>In vivo</i> la sobrevivencia fue mayor en la fracci&oacute;n alta en carvacrol mientras que la fracci&oacute;n alta en timol se comport&oacute; de manera similar al antibi&oacute;tico sint&eacute;tico y sin mucha ventaja sobre el control negativo. Adicionalmente, se observ&oacute; un efecto de la solubilidad tanto del carvacrol como del timol en los diferentes medios. De esta manera dado que el carvacrol es ligeramente m&aacute;s soluble en agua que el timol (Lide, 1998), por ello puede difundirse mas rapidamente en el medio de cultivo y por tanto una mayor &aacute;rea de exposici&oacute;n para el contacto con las bacterias. Esta cualidad puede coadyuvar en el mayor efecto antibacteriano observado de la fracci&oacute;n rica en carvacrol (FC) comparado con los resultados de la fracci&oacute;n rica en timol (FT) en las pruebas tanto <i>in vitro como in vivo.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se considera necesario realizar otros estudios sobre el mecanismo de acci&oacute;n de los componentes antibacterianos presentes en los extractos naturales y su respuesta espec&iacute;fica ante las comunidades bacterianas potencialmente pat&oacute;genas en ambientes de cultivo, con el fin de conocer su efectividad y alcance como aditivo en alimentos, para la sanidad acu&iacute;cola. En conclusi&oacute;n, ambas fracciones del extracto de aceite esencial de or&eacute;gano tuvieron la capacidad de inhibir el crecimiento <i>in vitro</i> de bacterias pat&oacute;genas del camar&oacute;n. Adem&aacute;s, se corrobor&oacute; que el extracto esencial de or&eacute;gano con alto contenido de carvacrol, es una alternativa profil&aacute;ctica o complemento viable a los antibi&oacute;ticos comerciales, para el tratamiento de camarones en cultivo contra bacterias pat&oacute;genas u oportunistas principalmente del g&eacute;nero <i>Vibrio</i>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta investigaci&oacute;n fue apoyada por el proyecto SEP&#45;DGEST con clave 3417.10&#45;P. Los autores agradecen al M.C. Ram&oacute;n Silva V&aacute;zquez del Centro de Investigaci&oacute;n de los Recursos Naturales por facilitar las fracciones del aceite esencial de or&eacute;gano.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Andrews, J. M. 2001. Determination of minimum inhibitory concentrations. <i>Journal of Antimicrobial Chemotherapy</i> 48 (Suppl. 1): 5&#45;16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098895&pid=S0188-8897201200030000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Burt, S. 2004. Essential oils: their antibacterial properties and potential applications in foods&#45;a review. <i>International Journal of Food Microbiology</i> 94 (3): 223&#45;253.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098897&pid=S0188-8897201200030000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Celikel, N. &amp; G. kavas. 2008. Antimicrobial properties of some essential oils against some pathogenic microorganisms. <i>Czech Journal of Food Science</i> 26 (3): 174&#45;181.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098899&pid=S0188-8897201200030000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Citarasu, T. 2010. Herbal biomedicines: a new opportunity for aquaculture industry. <i>Aquaculture International</i> 18 (3): 403&#45;414.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098901&pid=S0188-8897201200030000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gracia&#45;Valenzuela, M. H., L. A. &Aacute;vila&#45;Villa, G. Yepiz&#45;Plascencia, J. Hern&aacute;ndez&#45;L&oacute;pez, F. Mendoza&#45;Cano, G. Garc&iacute;a&#45;S&aacute;nchez &amp; T. Gollas&#45;Galv&aacute;n. 2011. Assessing the viability of necrotizing hepatopancreatitis bacterium (NHPB) stored at &#150;20 &deg;C for use in forced&#45;feeding infection of Penaeus (<i>Litopenaeus vannamei</i>). <i>Aquaculture</i> 311 (1&#45;4): 105&#45;109.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098903&pid=S0188-8897201200030000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">G&oacute;mez&#45;Gil, B., F. L. Thompson, C. C. Thompson &amp; J. Swings. 2003. <i>Vibrio pacinii</i> sp. nov., from cultured aquatic organisms. <i>International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology</i> 53 (5): 1569&#45;1573.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098905&pid=S0188-8897201200030000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hettiarachchi, M., S. G. Pathirage &amp; D. C. Hettiarachchi. 2005. Isolation of bacterium <i>Vibrio harveyi</i> from cultured shrimp <i>Penaeus monodon</i> and production of vaccines against the bacterium. <i>Journal of the National Science Foundation of Sri Lanka</i> 33 (4): 257&#45;263.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098907&pid=S0188-8897201200030000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Juven, B., J. Kanner, F. Schved &amp; H. Weisslowicz. 1994. Factors that interact with the antibacterial action of thyme essential oil and its active constituents. <i>Journal of Applied Microbiology</i> 76 (6): 626&#45;631.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098909&pid=S0188-8897201200030000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lambert, R. J. W. 2000. Susceptibility testing: inoculum size dependency of inhibition using the Colworth MIC technique. <i>Journal of Applied Microbiology</i> 89 (2): 275&#45;279.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098911&pid=S0188-8897201200030000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lambert, R. J. W., P. N. Skandamis, P. J. Coote &amp; G&#45;J. E. Nychas. 2001. A study of the minimum inhibitory concentration and mode of action of oregano essential oil, thymol and carvacrol. <i>Journal of Applied Microbiology</i> 91 (3): 453&#45;462.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098913&pid=S0188-8897201200030000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lide, D. R. 1998. <i>Handbook of Chemistry and Physics</i>, 87th Edition. CRC Press, Boca Raton, FL. 2608 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098915&pid=S0188-8897201200030000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ortega&#45;Morente, E., H. Abriouel, R. Lucas&#45;L&oacute;pez, N. Ben&#45;Omar &amp; A. G&aacute;lvez. 2010. Antibacterial activity of carvacrol and 2&#45;nitro&#45;1&#45;propanol against single and mixed populations of foodborne pathogenic bacteria in corn flour dough. <i>Food Microbiology</i> 27 (2): 274&#45;279.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098917&pid=S0188-8897201200030000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Paredes&#45;Aguilar, M. C., M. G. Gast&eacute;lum&#45;Franco, R. Silva&#45;V&aacute;zquez &amp; G. V. Nev&aacute;rez&#45;Moorill&oacute;n. 2007. Efecto antimicrobiano del or&eacute;gano mexicano (<i>Lippia berlandieri</i> Schauer) y de su aceite esencial sobre cinco especies del g&eacute;nero <i>Vibrio</i>. <i>Revista Fitotecnia Mexicana</i> 30 (3): 261&#45;267.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098919&pid=S0188-8897201200030000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rattanachaikunsopon, P. &amp; P. Phumkhachorn. 2010. Potential of cinnamon (<i>Cinnamomum verum</i>) oil to control <i>Streptococcus iniae</i> infection in tilapia (<i>Oreochromis niloticus</i>). <i>Fisheries Science</i> 76 (2): 287&#45;293.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098921&pid=S0188-8897201200030000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Roque, A., A. Molina&#45;Aja, C. Bol&aacute;n&#45;Mej&iacute;a &amp; B. Gomez&#45;Gil. 2001. In vitro susceptibility to 15 antibiotics of vibrios isolated from penaeid shrimps in Northwestern Mexico. <i>International Journal of Antimicrobial Agents</i> 17: 383&#45;387.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098923&pid=S0188-8897201200030000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Santiago H., M. L., A. Espinosa P. &amp; M. del C. Berm&uacute;dez A. 2009. Uso de antibi&oacute;ticos en la camaronicultura. <i>Revista Mexicana de Ciencias Farmac&eacute;uticas</i> 4 (3): 22&#45;32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098925&pid=S0188-8897201200030000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ultee, A., M. H. J. Bennik &amp; R. Moezelaar. 2002. The Phenolic Hydroxyl Group of Carvacrol Is Essential for Action against the Food&#45;Borne Pathogen <i>Bacillus cereus</i>. <i>Applied and Environmental Microbiology</i> 68 (4): 1561&#45;1568.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098927&pid=S0188-8897201200030000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Xu, W., X. Zhu, X. Wang, L. Deng &amp; G. Zhang. 2006. Residues of enrofloxacin, furazolidone and their metabolites in Nile tilapia (<i>Oreochromis niloticus</i>). <i>Aquaculture</i> 254 (1&#45;4): 1&#45;8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4098929&pid=S0188-8897201200030000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Determination of minimum inhibitory concentrations]]></article-title>
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