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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Anaerobic digestion (AD) of the organic fraction (OF) of municipal solid waste (MSW) at landfill sites generates biogas that have a negative effect on plants. However no methodology is available to evaluate this effect and information on the effect of biogas on plant physiology is scarce. Thus, a model to simulate the effect of biogas diffusion on the plant radical system, based in the gas diffusion through the soil to relate with exposing time and biogas concentration is required. The aim of this research was to design an ex situ experimental model to analyze the effect of biogas on the roots of zucchini squash (Cucurbita pepo L.). Considering this, we designed and built a system model to expose the plant seed and root system to biogas. The effect was measured in terms of germination percentage, fresh and dry foliage and root weight. The results indicated that the biogas perfusion caused inhibition of the germination of zucchini squash as well as the seedling growth level compared to the control plant that germinated and grew with no stress signs.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Modelo experimental de difusi&oacute;n de biog&aacute;s en ra&iacute;ces vegetales</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Experimental model of biogas diffusion in the plant radical system</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Eduardo BALTIERRA&#45;TREJO<sup>2</sup>, Liliana M&Aacute;RQUEZ&#45;BENAVIDES<sup>1</sup>* y Juan Manuel S&Aacute;NCHEZ&#45;Y&Aacute;&Ntilde;EZ<sup>2</sup></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i>&nbsp;Laboratorio de Residuos S&oacute;lidos y Medio Ambiente del Instituto de Investigaciones Agr&iacute;colas y Forestales, Universidad de Michoac&aacute;n de San Nicol&aacute;s de Hidalgo, Morelia 58341, Michoac&aacute;n, M&eacute;xico </i>*Autora responsable; <a href="mailto:lmarquez@umich.mx" target="_blank">lmarquez@umich.mx</a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup>&nbsp;Laboratorio de Microbiolog&iacute;a Ambiental del Instituto de Investigaciones Qu&iacute;mico&#45;biol&oacute;gicas, UMSNH, Morelia 58140, Michoac&aacute;n, M&eacute;xico</i>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido agosto 2011    <br>     aceptaso marzo 2012 </font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La digesti&oacute;n anaerobia (DA) de la fracci&oacute;n org&aacute;nica (FO) de los residuos s&oacute;lidos urbanos (RSU) en los rellenos sanitarios (RESA), genera biog&aacute;s que tiene efecto negativo sobre algunas de las plantas que ah&iacute; crecen. Sin embargo no existe metodolog&iacute;a para evaluarla, ni informaci&oacute;n del da&ntilde;o del biog&aacute;s sobre la fisiolog&iacute;a vegetal. Es necesario un modelo que simule su difusi&oacute;n sobre el sistema radical de plantas para determinar con precisi&oacute;n el efecto del biog&aacute;s en funci&oacute;n de la concentraci&oacute;n en el sitio de exposici&oacute;n. El objetivo de esta investigaci&oacute;n fue dise&ntilde;ar un modelo experimental <i>ex situ</i> para analizar el efecto del biog&aacute;s sobre las ra&iacute;ces de calabaza <i>(Cucurbita pepo</i> L.). Para ello se dise&ntilde;&oacute; y construy&oacute; un sistema de simulaci&oacute;n de la DA de la FO de los RSU que difunde biog&aacute;s en un suelo, donde creci&oacute; la calabaza. El efecto del biog&aacute;s sobre esa planta se midi&oacute; con las variables respuesta: porcentaje de germinaci&oacute;n, peso fresco y seco foliar y radical. Los resultados mostraron que la difusi&oacute;n de biog&aacute;s en el suelo artificial provoc&oacute; la inhibici&oacute;n de la germinaci&oacute;n de semillas de calabaza y su crecimiento a nivel de pl&aacute;ntula en comparaci&oacute;n con la misma planta sin exponer a biog&aacute;s, que germin&oacute; y creci&oacute; sin signos de estr&eacute;s.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave</b>: digesti&oacute;n anaerobia, relleno sanitario, fisiolog&iacute;a vegetal.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Anaerobic digestion (AD) of the organic fraction (OF) of municipal solid waste (MSW) at landfill sites generates biogas that have a negative effect on plants. However no methodology is available to evaluate this effect and information on the effect of biogas on plant physiology is scarce. Thus, a model to simulate the effect of biogas diffusion on the plant radical system, based in the gas diffusion through the soil to relate with exposing time and biogas concentration is required. The aim of this research was to design an <i>ex situ</i> experimental model to analyze the effect of biogas on the roots of zucchini squash <i>(Cucurbita pepo</i> L.). Considering this, we designed and built a system model to expose the plant seed and root system to biogas. The effect was measured in terms of germination percentage, fresh and dry foliage and root weight. The results indicated that the biogas perfusion caused inhibition of the germination of zucchini squash as well as the seedling growth level compared to the control plant that germinated and grew with no stress signs.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words</b>: anaerobic digestion, landfill site, plant physiology.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los residuos s&oacute;lidos urbanos (RSU) son com&uacute;nmente dispuestos en rellenos sanitarios (RESA) o ilegalmente en tiraderos al aire libre. En el caso de M&eacute;xico, la fracci&oacute;n org&aacute;nica (FO) de los RSU es la mayor con 40 a 65 %, la cual bajo digesti&oacute;n anaerobia (DA) genera biog&aacute;s y lixiviados con un riesgo potencialmente alto de contaminaci&oacute;n ambiental (Tchobanoglous 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El biog&aacute;s en un RESA es una mezcla constituida principalmente por metano (CH<sub>4</sub>) en 45&#45;60 %, di&oacute;xido de carbono (CO<sub>2</sub>) en un 40&#45;55 %, y menor concentraci&oacute;n de otros gases como: nitr&oacute;geno (N<sub>2</sub>) en 2&#45;5 %, sulfuro de hidr&oacute;geno (H<sub>2</sub>S) en un 0&#45;1 %, amoniaco (NH3) 0.1&#45;1 %, hidr&oacute;geno (H<sub>2</sub>) 0&#45;0.2% y trazas de compuestos org&aacute;nicos vol&aacute;tiles (COV) 0.01&#45;0.6 % (Flower <i>et al.</i> 1978 citado por Chan <i>et al.,</i> 1991 y Tchobanoglous y Kreith 2005). Sin embargo, la emisi&oacute;n de biog&aacute;s no se limita a la superficie del RESA, ocurre en los sitios adjuntos por un desplazamiento denominado migraci&oacute;n lateral de biog&aacute;s (MLB) (Franzidis <i>et al.</i> 2008), sobre todo en sitios o RESA que no cuentan con un sistema de recolecci&oacute;n activa de biog&aacute;s (Tchobanoglous y Kreith 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lo anterior se ha correlacionado con la p&eacute;rdida de vegetaci&oacute;n en estos lugares. De acuerdo con la literatura, la concentraci&oacute;n natural de CO<sub>2</sub> en el suelo en contacto con las ra&iacute;ces vegetales es de 0.1 a 2 %, su incremento disminuye la actividad respiratoria radical, en especial cuando en el suelo no existe un intercambio adecuado de gases. Se ha reportado que una concentraci&oacute;n menor al 5 % de CO<sub>2</sub> estimula el crecimiento de la ra&iacute;z por un mecanismo de resistencia al estr&eacute;s an&oacute;xico, pero se inhibe si es mayor al 6.5 %, mientras que valores superiores a 15 a 20 % son letales para la mayor&iacute;a de las ra&iacute;ces de plantas (Stolwijk y Thimman 1987 citados por Chan <i>et al.</i> 1991). Por otro lado, el CH<sub>4</sub> es un componente extra&ntilde;o en la mayor&iacute;a de los suelos, salvo en los suelos anegados por un periodo prolongado de tiempo donde alcanza hasta 14 %, lo que provoca estr&eacute;s an&oacute;xico en la vegetaci&oacute;n, aunque existen plantas como el arroz <i>(Oryza sativa</i> L.) que desarrollan mecanismos para tolerar esta condici&oacute;n adversa (Jackson 2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En general, son escasos los reportes sobre la inhibici&oacute;n del crecimiento de plantas cuyas ra&iacute;ces fueron expuestas al flujo de biog&aacute;s producto de la DA de residuos s&oacute;lidos en RESA. Wong <i>et al.</i> (1992) investigaron los factores que afectan la diversidad y distribuci&oacute;n de la vegetaci&oacute;n en un RESA en sitios de baja emisi&oacute;n de biog&aacute;s con 10 % de CH<sub>4</sub> comparada con los de alta emisi&oacute;n con 41 %. Los resultados indicaron que en zonas con baja emisi&oacute;n de biog&aacute;s hubo un promedio de 6 especies herb&aacute;ceas con 68.5 % de cobertura y 12 de arb&oacute;reas con 100 %, mientras que en sitios con alta emisi&oacute;n hubo 6 especies de herb&aacute;ceas que cubrieron el 51.2 % y 3 de arb&oacute;reas con 7.6 %. Concluyeron que existe una relaci&oacute;n entre la concentraci&oacute;n de biog&aacute;s y el porcentaje de cobertura de arb&oacute;reas y herb&aacute;ceas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado, Chan <i>et al.</i> (1991) estudiaron el impacto del biog&aacute;s de un RESA en zonas de baja (10 % v/v de CH<sub>4</sub> y 4.7 % v/v de CO<sub>2</sub>) y de alta emisi&oacute;n de biog&aacute;s (41 % v/v de CH<sub>4</sub> y 39 % v/v de CO<sub>2</sub>) sobre las ra&iacute;ces de 10 especies de plantas le&ntilde;osas subtropicales. Los resultados se&ntilde;alaron que en zonas con baja concentraci&oacute;n de biog&aacute;s hubo poca mortalidad, en tanto en &aacute;reas con alta concentraci&oacute;n se registr&oacute; la inhibici&oacute;n del crecimiento de la parte a&eacute;rea con mortalidad de pl&aacute;ntulas entre 10 y 50 %.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La hip&oacute;tesis de este trabajo fue que exponer semillas y ra&iacute;ces de calabaza <i>(Cucurbita pepo</i> L.) a elevadas concentraciones de biog&aacute;s derivado de DA, tendr&iacute;a un efecto negativo en la germinaci&oacute;n y en el crecimiento dependiente del nivel en el sitio de exposici&oacute;n, si se cuenta con un modelo experimental que lo demuestre. El objetivo de este trabajo fue dise&ntilde;ar un modelo experimental <i>ex situ</i> para analizar el efecto de biog&aacute;s en la germinaci&oacute;n y en el crecimiento de la calabaza.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los RESA de P&aacute;tzcuaro, Michoac&aacute;n, se encontr&oacute; una especie de calabaza que crece de manera silvestre sobre las celdas selladas, por ello se decidi&oacute; usar la como planta modelo en el estudio del efecto del biog&aacute;s en el crecimiento vegetal.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se dise&ntilde;&oacute; un modelo de an&aacute;lisis <i>ex situ</i> para demostrar el efecto del biog&aacute;s en las ra&iacute;ces de calabaza, para ello se construyeron reactores de digesti&oacute;n anaerobia de sustrato s&oacute;lido (RDASS) y aprovechar la producci&oacute;n de biog&aacute;s simulando al generado en un RESA. El biog&aacute;s se hizo circular en el sistema de medici&oacute;n del volumen de biog&aacute;s (SMB) y luego fluy&oacute; a trav&eacute;s de la unidad acoplada biog&aacute;s&#45;planta (UABIP) la cual contuvo el suelo artificial en el que se sembr&oacute; y creci&oacute; la calabaza, como se describe a continuaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Operaci&oacute;n del reactor de digesti&oacute;n anaerobia de sustrato s&oacute;lido</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la producci&oacute;n de biog&aacute;s se usaron RDASS, cada uno consisti&oacute; en un reservorio de vidrio de 2 L, con una mezcla de 350 g de excreta fresca de vaca, 350 mL de la fase acuosa de lodos biol&oacute;gicos, 350 g de suelo org&aacute;nico, 3 g de carbonato de sodio (NaCO3, Alyt) y 3 g de sacarosa (C<sub>12</sub>H<sub>22</sub>O<sub>11</sub>, Fermont). Para alimentar los RDASS se prepar&oacute; una mezcla que consisti&oacute; en 60 % de residuos alimenticios dom&eacute;sticos y 40 % papel bond, enriquecida con lodos biol&oacute;gicos en proporci&oacute;n 59:1, esta mezcla se deshidrat&oacute; en horno a 105 &deg;C y se tritur&oacute; en molino con criba de 4 mm. Los RDASS se sellaron herm&eacute;ticamente, se incubaron a 35 &deg;C y se alimentaron cada 5 d&iacute;as con 21 g de la mezcla de residuos org&aacute;nicos y 39 mL de H<sub>2</sub>O destilada.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estandarizaci&oacute;n de la medici&oacute;n de biog&aacute;s</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El SMB estaba constituido por 2 frascos de vidrio de 4 L graduados con 3.5 L de soluci&oacute;n salina (SS) al 20 %. El volumen de biog&aacute;s generado por cada RDASS se determin&oacute; por desplazamiento de la SS entre los frascos, se adapt&oacute; un mecanismo de llaves para cambiar la direcci&oacute;n del flujo una vez desplazado el volumen total de SS y finalmente dirigirlo a la UABIP</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ubicaron sitios de muestreo en el RDASS y en el SMB (a y b en <a href="#f1">Fig. 1</a>) para determinar el contenido de CH<sub>4</sub> en el biog&aacute;s por medio del cromat&oacute;grafo de gases Varian Clarius CP&#45;3800 con detector FID y una columna empacada HAY&#45;ESEP&#45;Q&#45;80&#45;100&#45;mesh. Las temperaturas de operaci&oacute;n del inyector, el detector y la columna fueron 200, 210 y 90 &deg;C, respectivamente.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28s1/a18f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realiz&oacute; el seguimiento del volumen y composici&oacute;n del biog&aacute;s en un periodo de 45 d&iacute;as; se prob&oacute; si la acidez a pH 4 &oacute; la alcalinidad a pH 10 de la SS influy&oacute; en la concentraci&oacute;n de CH<sub>4</sub> del biog&aacute;s proveniente de los RDASS despu&eacute;s de su difusi&oacute;n por el SMB.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Difusi&oacute;n de biog&aacute;s en la unidad de crecimiento vegetal</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la difusi&oacute;n del biog&aacute;s en la ra&iacute;z de la calabaza se construy&oacute; la UABIP haciendo uso de un cilindro de tereftalato de polietileno (PET) de 40 cm de altura x 11 cm de di&aacute;metro. El cilindro conten&iacute;a 2 kg de suelo artificial construido con una textura arena 50 %, arcilla 20 % y limo 30 %.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ubic&oacute; un tercer punto de muestreo adapt&aacute;ndose para esta prueba una bolsa al cuello de la UABIP (c en <a href="#f1">Fig. 1</a>) con el prop&oacute;sito determinar si la concentraci&oacute;n de CH<sub>4</sub> en el biog&aacute;s generado en el RDASS era similar despu&eacute;s de difundir en el suelo de la UABIP bajo dos condiciones: en suelo seco e hidratado a capacidad de campo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto del biog&aacute;s en las de ra&iacute;ces de plantas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Finalmente, probados los componentes del modelo se examin&oacute; el efecto del biog&aacute;s en el crecimiento de calabaza. Para ello se tuvieron dos grupos de RDASS en diferente estado en el proceso de DA, los de mayor producci&oacute;n de biog&aacute;s se denominaron de "alta concentraci&oacute;n" y los de menor de "baja concentraci&oacute;n" y se monitorearon a lo largo del experimento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se sembraron 4 semillas de calabaza, previamente desinfectadas durante 5 min con soluci&oacute;n hipoclorito de sodio 5 % y lavadas con agua destilada est&eacute;ril, en el suelo artificial de cada UABIP. Luego de germinar las pl&aacute;ntulas crecieron bajo un ciclo de iluminaci&oacute;n 16/8 h luz/oscuridad con l&aacute;mpara fluorescente a 8600 Lux y a 25 &deg;C. Las plantas se alimentaron con soluci&oacute;n nutritiva (g/L): NH<sub>4</sub>NO<sub>3</sub> 10, K2HPO<sub>4</sub> 2, KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> 2.5, MgSO<sub>4</sub>'7H<sub>2</sub>O 1, NaCl 0.1, CaCl<sub>2</sub>, FeSO<sub>4</sub>&laquo;7H<sub>2</sub>O 0.001; H<sub>3</sub>BO<sub>3</sub> 0.00286, ZnSO4&laquo;7H<sub>2</sub>O 0.00022, MgSO<sub>4</sub>&laquo;7H<sub>2</sub>O 0.0001, Na<sub>2</sub>MoO<sub>4</sub>'2H<sub>2</sub>O 0.0001 (Baker), pH 6.6. Las variables respuesta consideradas fueron: el porcentaje de germinaci&oacute;n, el peso fresco y seco foliar y el radical de calabazas cosechadas a los 15 y 30 d&iacute;as despu&eacute;s de su germinaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para medir el efecto del biog&aacute;s sobre la germinaci&oacute;n de las semillas y el crecimiento de la calabaza se probaron los tres componentes descritos en el dise&ntilde;o experimental: RDASS, SMB y UABIP para estandarizar las condiciones de su operaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Operaci&oacute;n del reactor de digesti&oacute;n anaerobia de sustrato s&oacute;lido</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se estableci&oacute; que el volumen de biog&aacute;s generado por los RDASS fue constante en el periodo entre cada alimentaci&oacute;n a partir del d&iacute;a 15 de la din&aacute;mica de la DA de la FO de los RSU; con un volumen de 782 a 3200 mL/d&iacute;a, de los cuales 55 a 75 % era CH<sub>4</sub> en el periodo de tiempo entre cada alimentaci&oacute;n (<a href="#f2">Fig. 2</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28s1/a18f2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estandarizaci&oacute;n de la medici&oacute;n de biog&aacute;s</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se prob&oacute; si la SS que se us&oacute; en el SMB a pH 4 &oacute; 10 influy&oacute; en la concentraci&oacute;n de CH<sub>4</sub> en el biog&aacute;s generado en cada RDASS. Haciendo uso de la SS alcalina aument&oacute; la concentraci&oacute;n de CH<sub>4</sub> en funci&oacute;n del volumen de la SS desplazada tras fluir por el SMB, que inicialmente fue 8 % mayor que en el RDASS, pero a partir del d&iacute;a 8 fue similar en los puntos de muestreo colocados antes y despu&eacute;s del SMB (<a href="#f3">Fig. 3</a>). Al finalizar el experimento se determin&oacute; el pH de la SS &aacute;cida, que subi&oacute; levemente de 4 a 4.8 y el de la alcalina baj&oacute; dr&aacute;sticamente de 10 a 5.6, por lo que en las pruebas posteriores se us&oacute; la SS &aacute;cida.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28s1/a18f3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Difusi&oacute;n de biog&aacute;s en la unidad de crecimiento vegetal</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se analiz&oacute; si el biog&aacute;s producido en cada RDASS fluy&oacute; por el sistema y fue constante en su composici&oacute;n luego de difundir en la UABIP bajo las dos condiciones probadas. En suelo seco la concentraci&oacute;n de CH<sub>4</sub> en la UABIP fue de 58 %, mientras que en capacidad de campo fue de 46 %, por lo que en esta &uacute;ltima condici&oacute;n hubo una diferencia significativa en la composici&oacute;n, comparado con el biog&aacute;s en el RDASS que registr&oacute; un 63 % de CH<sub>4</sub> en ambas condiciones (<a href="#f4">Fig. 4</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28s1/a18f4.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto del biog&aacute;s en las de ra&iacute;ces de plantas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los RDASS que se registraron como de "alta concentraci&oacute;n" tuvieron un volumen promedio de 79.27 L biog&aacute;s/mes del que el 58.90 % fue CH<sub>4</sub> y los de "baja concentraci&oacute;n" un volumen promedio de 46.98 L biog&aacute;s/mes de los que el 49.18 % fue CH4.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La germinaci&oacute;n de semillas expuesta a elevada concentraci&oacute;n fue de 25 % y, en contraste, la de baja concentraci&oacute;n fue de 75 % comparada con las semillas de calabaza sin exponer al biog&aacute;s usadas como control relativo (<a href="#f5">Fig. 5</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28s1/a18f5.jpg" alt=""></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La germinaci&oacute;n fue notoriamente inhibida por la concentraci&oacute;n de biog&aacute;s. Las semillas expuestas a biog&aacute;s que germinaron lo hicieron con un retardo de 2 a 4 d&iacute;as respecto del control (sin exponer a biog&aacute;s), lo que confirm&oacute; que esta es una etapa cr&iacute;tica por la necesidad de mayor aporte de O<sub>2</sub> para activar el metabolismo de hidr&oacute;lisis de almid&oacute;n de reserva en el cotiled&oacute;n (Hess 1980).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El biog&aacute;s tuvo un efecto inhibitorio del crecimiento de pl&aacute;ntulas de calabaza en funci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de biog&aacute;s y el tiempo de exposici&oacute;n, que no fue diferente en pl&aacute;ntulas de 15 d&iacute;as, mientras que en 30 d&iacute;as la inhibici&oacute;n del expresado en biomasa fue evidente con aval de la prueba estad&iacute;stica (<a href="#f6">Fig. 6</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f6"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v28s1/a18f6.jpg"></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La SS usada en el SMB tuvo una reacci&oacute;n qu&iacute;mica diferente en condiciones &aacute;cida y alcalina. De acuerdo con Mu&ntilde;oz <i>et al.</i> (2009) la alcalinidad de la SS permite la disoluci&oacute;n del CO<sub>2</sub> con formaci&oacute;n de H<sub>2</sub>CO<sub>3</sub>, sin embargo en el modelo experimental se observ&oacute; que esta reacci&oacute;n fue limitada y se evita al descender el pH de la soluci&oacute;n salina. Lo anterior es &uacute;til si se desea probar &uacute;nicamente el efecto del CH<sub>4</sub> producto de la DA de la FO de los RSU, sin embargo ser&iacute;a necesario dise&ntilde;ar un sistema para mantener la condici&oacute;n de pH para la disoluci&oacute;n del CO<sub>2</sub> a largo plazo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dise&ntilde;o de la UABIP permiti&oacute; medir una concentraci&oacute;n de CH<sub>4</sub> similar a la reportada en respiraderos de RESA, en promedio de ~60 % con suelo seco, en tanto que en el suelo la capacidad de campo fue de ~45 %. &Eacute;sta &uacute;ltima condici&oacute;n fue una barrera f&iacute;sica para el flujo del biog&aacute;s generado en el RDASS, por lo que el efecto en el crecimiento vegetal en este modelo planteado ser&aacute; diferente al aplicarse un suelo distinto.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los pocos estudios realizados se&ntilde;alan que el efecto negativo en el crecimiento de las plantas en RESA es causado por la condici&oacute;n de anoxia por desplazamiento del O<sub>2</sub>. Se considera que CH<sub>4</sub> y CO<sub>2</sub> no son gases que alteren la fisiolog&iacute;a vegetal, lo que sugiere que el da&ntilde;o es por asfixia de la ra&iacute;z y no por alteraci&oacute;n de una ruta metab&oacute;lica (Chan <i>et al.</i> 1991), aunque no existe suficiente investigaci&oacute;n al respecto para una explicaci&oacute;n definitiva.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La investigaci&oacute;n sobre el estado del arte del efecto del biog&aacute;s de RESA en el crecimiento vegetal es incipiente y poco clara, por lo que es dif&iacute;cil contrastar los resultados obtenidos en este modelo experimental con trabajos previos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aunque los resultados confirman que el biog&aacute;s producto de la DA de la FO de los RSU tiene un efecto inhibitorio en el crecimiento vegetal aun no es posible dar una explicaci&oacute;n precisa acerca del mecanismo que lo produce, por lo que ser&aacute; necesaria mayor investigaci&oacute;n para obtener una conclusi&oacute;n al respecto.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tambi&eacute;n es necesario investigar si el efecto fitot&oacute;xico del biog&aacute;s se debe al CO<sub>2</sub> al CH<sub>4</sub> &oacute; a la combinaci&oacute;n de ambos y si el da&ntilde;o es similar en los diversos grupos vegetales.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La estandarizaci&oacute;n de las condiciones de estudio como se propone en este trabajo, permitir&aacute; adem&aacute;s probar el efecto del biog&aacute;s en las poblaciones microbianas del suelo, encontrar g&eacute;neros vegetales sensibles o resistentes al biog&aacute;s y los mecanismos morfofisiol&oacute;gicos que en ellos act&uacute;an, lo que podr&iacute;a derivar en la obtenci&oacute;n de bioindicadores de la calidad del aire del suelo en los RESA.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El desarrollo de esta investigaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo gracias al financiamiento otorgado al Proyecto 2.7 y 5.15 (2010&#45;2011) de la CIC&#45;UMSNH y a la Beca 239180 del Consejo Nacional de Ciencia y Tecnolog&iacute;a (CONACyT).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chan G. Y. S., Wong M. H. y Whitton B. A. (1991). Effects of landfill gas on subtropical woody plants. Environ. Manage. 15, 411&#45;431.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7216055&pid=S0188-4999201200050001800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Flower F. B., Leone I.A., Gilman E. F. y Arthur J. J. (1978). A study of vegetation problems associated with refuse landfills. EPA. EUA. 600, 78&#45;94.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7216057&pid=S0188-4999201200050001800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Franzidis J. P., H&eacute;roux M., Nastev M. y Guy C. (2008). Lateral migration and offsite surface emission of landfill gas at City of Montreal landfill site. Waste Manage. Res. 26, 121&#45;131.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7216059&pid=S0188-4999201200050001800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hess D. (1980). <i>Fisiolog&iacute;a vegetal. Fundamentos moleculares y fisiol&oacute;gicos del metabolismo y el desarrollo.</i> Omega, Barcelona, Espa&ntilde;a, pp:40&#45;43</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7216061&pid=S0188-4999201200050001800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jackson M. (2002). Long&#45;distance signaling from roots to shoots assessed: the flooding story. J. Ex. Bot. 53, 175&#45;181.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7216062&pid=S0188-4999201200050001800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mu&ntilde;oz J. D., Camargo D. A. y Gallego D. (2009). Aplicaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a de superficie de respuesta en un proceso de absorci&oacute;n del CO<sub>2</sub> de un biog&aacute;s en una soluci&oacute;n alcalina. Dyna 76, 135&#45;144.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7216064&pid=S0188-4999201200050001800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stolwijk A. J. y Thimann K. V. (1987). On the uptake of carbon dioxide and bicarbonate by roots, and its influence on growth. Plant Physiol. 32, 513&#45;520.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7216066&pid=S0188-4999201200050001800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tchobanoglous G. y Kreith F. (2005). <i>Handbook of solid wasted management.</i> McGraw&#45;Hill, Nueva York, Cap.14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7216068&pid=S0188-4999201200050001800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wong M. H., Cheung K. C. y Lan C. Y. (1992). Factors related to the diversity and distribution of soil fauna on Gin Drinkers' Bay landfill, Hong Kong. Waste Manage. Res. 10, 423&#45;344.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7216070&pid=S0188-4999201200050001800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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