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<journal-title><![CDATA[Revista internacional de contaminación ambiental]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estudio para la rehabilitación de una planta de tratamiento de vinazas tequileras mediante un floculante polimérico de poliacrilamida (PAM)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[This paper reports the results of a coagulation/flocculation study for the primary treatment of tequila vinasse, with the intention of rehabilitating a treatment plant using a cationic polyacrylamide (PAM) polymer flocculant. The PAM concentration required to obtain the required floc formation was determined with seven different flocculant concentrations (200, 300, 400, 500, 600, 700 y 800 mg/L). In a second experiment, six pilot-scale batch runs were conducted in a 798-liter container using PAM concentrations of between 400 and 800 mg/L of vinasse. The flocculated solids were separated in a rotating screen separator and the treated vinasse collected in a 327-liter stainless steel tank. For each batch run, the parameters pH-value, settleable solids, total solids, total suspended solids, total dissolved solids and chemical oxygen demand were evaluated for both treated and non-treated vinasse. In addition, the balance between the untreated vinasse volume as related to the recovered flocculated solids and the residual liquid vinasse was determined. Based on the observed parameters within the range of the PAM concentrations used, it was concluded that the higher the floculant dose, the higher the removal of vinasse pollutants, recovering up to 43.7 L of flocs/100 L of treated vinasse when 700 mg of PAM/L of vinasse was used. These results proved very useful for optimizing the operational condition of the vinasse treatment plant.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Estudio para la rehabilitaci&oacute;n de una planta de tratamiento de vinazas tequileras mediante un floculante polim&eacute;rico de poliacrilamida (PAM)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Study for rehabilitation of a vinasses treatment plant using a polyacrylamide (PAM) polymer flocculant</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Gilberto &Iacute;&Ntilde;IGUEZ y Rosaura HERN&Aacute;NDEZ</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Universidad de Guadalajara, Departamento de madera, celulosa y papel. Km 15.5 carretera Guadalajara&#150;Nogales. Las Agujas, Municipio de Zapopan, Jalisco. Apartado Postal 52&#150;93. C.P. 45020, Guadalajara, Jalisco</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido octubre 2009    <br>   Aceptado julio 2010</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b> RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realiz&oacute; un tratamiento primario por coagulaci&oacute;n/floculaci&oacute;n a vinazas tequileras para la rehabilitaci&oacute;n de una planta de tratamiento; para ello se utiliz&oacute; una poliacrila </B>mida cati&oacute;nica (PAM) como floculante. Se realizaron pruebas iniciales de laboratorio para conocer la concentraci&oacute;n necesaria de PAM para obtener una buena formaci&oacute;n de fl&oacute;culos, por lo que se aplicaron concentraciones de 200, 300, 400, 500, 600, 700 y 800 mg de floculante/L de vinazas. Posteriormente se realizaron seis corridas por lote en un contenedor de 798 L para la coagulaci&oacute;n/floculaci&oacute;n de las vinazas. Los fl&oacute;culos formados fueron recuperados en un separador cil&iacute;ndrico rotatorio. La concentraci&oacute;n de floculante fue entre 400 y 800 mg/L de vinazas. Por separado, en un tanque de acero inoxidable se recolectaron las vinazas tratadas. En cada corrida se determin&oacute; el pH, s&oacute;lidos sedimentables, s&oacute;lidos totales, s&oacute;lidos suspendidos totales, s&oacute;lidos disueltos totales y demanda qu&iacute;mica ox&iacute;geno a las vinazas con y sin tratamiento. Tambi&eacute;n se realiz&oacute; un balance entre los vol&uacute;menes de vinazas por tratar y de fl&oacute;culos recuperados y vinazas tratadas. Con base en los par&aacute;metros estudiados y el rango de dosis utilizado, se encontr&oacute; que a mayor dosis de floculante, mayor remoci&oacute;n de contaminantes, con una capacidad de recuperaci&oacute;n de hasta 45.4 kg de fl&oacute;culos/100 L de vinazas tratadas al utilizar 700 mg de floculante/L de vinazas. Con los resultados obtenidos se determinaron las condiciones m&aacute;s importantes de operaci&oacute;n de la planta.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> vinazas de tequila, poliacrilamida, floculaci&oacute;n, separaci&oacute;n de s&oacute;lidos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">This paper reports the results of a coagulation/flocculation study for the primary treatment of tequila vinasse, with the intention of rehabilitating a treatment plant using a cationic polyacrylamide (PAM) polymer flocculant. The PAM concentration required to obtain the required floc formation was determined with seven different flocculant concentrations (200, 300, 400, 500, 600, 700 y 800 mg/L). In a second experiment, six pilot&#150;scale batch runs were conducted in a 798&#150;liter container using PAM concentrations of between 400 and 800 mg/L of vinasse. The flocculated solids were separated in a rotating screen separator and the treated vinasse collected in a 327&#150;liter stainless steel tank. For each batch run, the parameters pH&#150;value, settleable solids, total solids, total suspended solids, total dissolved solids and chemical oxygen demand were evaluated for both treated and non&#150;treated vinasse. In addition, the balance between the untreated vinasse volume as related to the recovered flocculated solids and the residual liquid vinasse was determined. Based on the observed parameters within the range of the PAM concentrations used, it was concluded that the higher the floculant dose, the higher the removal of vinasse pollutants, recovering up to 43.7 L of flocs/100 L of treated vinasse when 700 mg of PAM/L of vinasse was used. These results proved very useful for optimizing the operational condition of the vinasse treatment plant.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> tequila vinasses, polyacrylamide, flocculation, solids separation.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La industria tequilera es de gran importancia econ&oacute;mica para M&eacute;xico y principalmente para el estado de Jalisco, donde se localiza la mayor&iacute;a de las empresas certificadas para la fabricaci&oacute;n de tequila. En 2008, el Consejo Regulador del Tequila (CTR 2008) ten&iacute;a reportadas 146 destiler&iacute;as de tequila entre grandes, medianas, peque&ntilde;as y micros. A pesar de la crisis econ&oacute;mica que se vive en M&eacute;xico, este sector industrial ha presentado un aumento considerable en su producci&oacute;n en los &uacute;ltimos cinco a&ntilde;os, de 97.2 millones de litros de tequila en 2003, a 231.2 millones de litros reportados en septiembre de 2008 (40 % Alc. Vol., CTR 2008). La creciente producci&oacute;n de tequila trae consigo el aumento de subproductos como el bagazo y las vinazas. De acuerdo a Cede&ntilde;o (1995), se generan 1200 g de bagazo y entre 7 y 10 L de vinazas por litro de tequila. De acuerdo a lo anterior, para septiembre de 2008 se generaron entre 1618 y 2312 millones de litros de vinazas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las vinazas son las aguas residuales producto de la destilaci&oacute;n del tequila; tienen un alto contenido de materia org&aacute;nica, con una demanda qu&iacute;mica de ox&iacute;geno (DQO) superior a 38 215 mg/L y s&oacute;lidos totales (ST) superiores a 21 883 mg/L, y poseen pH bajo, de 3.5&#150;3.9 (&Iacute;&ntilde;iguez y Peraza 2007). Se descargan a una temperatura de 90 &deg;C, lo que las convierte en un contaminante t&eacute;rmico. Su color probablemente se deba al pigmento caf&eacute; oscuro de las melanoidinas, la presencia de fenoles, caramelo y melanina, propios del licor de destiler&iacute;as de melazas (Sirianuntapiboon <I>et al.</I> 1988, Godshall 1999, Kalavathi <I>et al</I>. 2001), que se pueden formar por las reacciones amino&#150;carbonil de Maillar (Wedzicha y Kaputo 1992) al hidrolizar por calentamiento los az&uacute;cares de las pencas de agave.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El alto contenido de materia org&aacute;nica y el color reducen la penetraci&oacute;n de luz en r&iacute;os, lagos y lagunas, haciendo que disminuya la actividad fotosint&eacute;tica de organismos acu&aacute;ticos; esto disminuye la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno disuelto, lo que causa un deterioro de la vida acu&aacute;tica. Por otro lado, utilizar los suelos para la disposici&oacute;n final de las vinazas tequileras sin tratamiento alguno puede favorecer la presencia de organismos pat&oacute;genos para algunos cultivos. Amador (2002) report&oacute; que el uso de vinazas tequileras en riego de plantas de agave (<I>Agave tequilana weber</I> var. Azul) facilit&oacute; la presencia de bacterias fitopat&oacute;genas en plantas atacadas por <I>Fusarium oxysporum</I> y <I>Fusarium solani</I>. En vinazas de la destilaci&oacute;n del alcohol et&iacute;lico, Bautista y Dur&aacute;n de Baz&uacute;a (1998) concluyeron que es mejor someterlas a un tratamiento biol&oacute;gico para despu&eacute;s aplicarlas en suelos, debido a que las formas qu&iacute;micas del carbono son mol&eacute;culas con propiedades coloidales que mejoran las propiedades f&iacute;sicas, qu&iacute;micas y biol&oacute;gicas de los suelos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Actualmente, las autoridades intentan frenar el impacto ambiental de la industria tequilera y obligan a los responsables a que tomen medidas para disminuir la contaminaci&oacute;n. La ley establece (SEMARNAT 1996) que para descargar aguas residuales en un cuerpo de agua, &eacute;stas no deben contener m&aacute;s de 150 mg/L de DBO<Sub>5</Sub>, 150 mg/L de s&oacute;lidos suspendidos totales (SST) y 1 mL/L de s&oacute;lidos sedimentables (SS), valores que las vinazas tequileras rebasan por mucho, lo que puede provocar costosas multas y, en &uacute;ltima consecuencia, el cierre de las instalaciones. Depende de las condiciones, pero por lo general, el tratamiento de aguas residuales &#150;como es el caso de las vinazas tequileras&#150; debe incluir como primer paso la separaci&oacute;n de s&oacute;lidos, constituidos principalmente por part&iacute;culas de agave (celulosa y pectinas), c&eacute;lulas de levaduras, as&iacute; como prote&iacute;nas y algunos &aacute;cidos org&aacute;nicos (Cede&ntilde;o 1995).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pocas compa&ntilde;&iacute;as tequileras, en particular las grandes, realizan actualmente algunos esfuerzos para cumplir con la norma ambiental de descarga. Sin embargo, las tecnolog&iacute;as implementadas, como la termoevaporaci&oacute;n y la &oacute;smosis inversa, distan mucho de ser sustentables; de cualquier manera, estos procesos requieren forzosamente de un pretratamiento para la remoci&oacute;n de s&oacute;lidos sedimentables y suspendidos. El objetivo del presente trabajo consisti&oacute; en realizar los estudios pertinentes que sirvieran de base para la rehabilitaci&oacute;n de una planta de tratamiento de vinazas tequileras. El tratamiento estudiado fue por coagulaci&oacute;n/floculaci&oacute;n a fin de reducir la carga org&aacute;nica que dificulta el manejo y procesos posteriores de tratamiento, o la saturaci&oacute;n por materia org&aacute;nica en suelos que entorpecer&iacute;a el aprovechamiento de nutrientes.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Origen de las vinazas</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><I>Vinazas at&iacute;picas</I>. Las vinazas que se utilizaron para el presente estudio son consideradas at&iacute;picas por la forma en que se extraen los jugos de las cabezas de agave. El proceso es el siguiente: en la f&aacute;brica de tequila que facilit&oacute; el estudio, las cabezas de agave son cocidas a 110 &deg;C durante 36 horas en 5 hornos de mamposter&iacute;a, 3 hornos de 50 toneladas cada uno y 2 de 25 toneladas. Despu&eacute;s del cocimiento, las cabezas de agave pasan por una desgarradora (Molinos Onofre<Sup>&reg;</Sup>) consistente en una peque&ntilde;a flecha provista de varias hileras de cortadoras a manera de "cabezas de hacha" alineadas horizontalmente, con otra hilera de cabezas de hachas colocada en forma fija frente a la flecha en movimiento. De la desgarradora, el material destrozado pasa por dos desmeduladoras en serie, consistentes en cilindros de acero inoxidable con un eje central provisto de varias aspas para facilitar el desprendimiento de la m&eacute;dula y el transporte del material destrozado de un extremo a otro. Los mismos cilindros est&aacute;n provistos, a lo largo de la parte alta, de llaves de agua para la extracci&oacute;n de los az&uacute;cares fermentables mediante el lavado del material destrozado. La parte baja de los cilindros est&aacute; provista de una malla por donde salen los jugos en conjunto con la m&eacute;dula desprendida de las fibras del agave. Al final de los dos cilindros se encuentra una prensa de rodillos para extraer lo m&aacute;s posible de az&uacute;cares a las fibras de agave. El jugo extra&iacute;do pasa a fermentaci&oacute;n y destilaci&oacute;n, de donde se obtuvieron las vinazas para ser tratadas conforme a la <B><a href="/img/revistas/rica/v26n4/a5f1.jpg" target="_blank">figura 1</a></B>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><I>Vinazas t&iacute;picas</I>. Las vinazas t&iacute;picas provienen por lo general del siguiente proceso: las cabezas de agave son cocinadas en hornos de mamposter&iacute;a o autoclaves, para luego pasarse por una desgarradora con las mismas caracter&iacute;sticas de la descrita en el p&aacute;rrafo anterior. Despu&eacute;s de la desgarradora, el material destrozado pasa por una serie de molinos a manera de rodillos donde el material destrozado es lavado con agua y exprimido para extraer al m&aacute;ximo los az&uacute;cares fermentables para la elaboraci&oacute;n del tequila.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Pruebas de laboratorio</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las pruebas de laboratorio se realizaron con vinazas at&iacute;picas recolectadas de la fosa de captaci&oacute;n, provista de un inyector de aire para asegurar la homogeneidad y el mezclado de las mismas durante la toma de muestras o extracci&oacute;n de la fosa.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><I>Tama&ntilde;o de part&iacute;cula</I>. Para el an&aacute;lisis f&iacute;sico del tama&ntilde;o de part&iacute;culas de las vinazas tequileras se utilizaron cinco cribas de aro de laboratorio (20.3 cm de di&aacute;metro por 7.6 cm de altura) con aberturas de malla de 0.25, 0.50, 1.0, 1.98 y 4.76 mm. Por cada una de ellas se pas&oacute; un litro de muestra de vinazas. Se determin&oacute; el contenido de s&oacute;lidos totales (ST, mg/L) de las muestras, antes y despu&eacute;s de pasarse por la criba, para establecer la relaci&oacute;n de ST retenidos por tama&ntilde;o de abertura de la malla.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><I>Pruebas de floculaci&oacute;n.</I> Para las pruebas iniciales de floculaci&oacute;n se utiliz&oacute; un floculante patentado de poliacrilamida cati&oacute;nica &#91;PAM (SNF Floerger&reg;), Francia&#93;. La viscosidad de la PAM fue de 1190 cps, viscosidad UL de 5.55 cps y el porcentaje de s&oacute;lidos no vol&aacute;tiles de 50.6 %. Se utilizaron concentraciones de 200, 300, 400, 500, 600, 700 y 800 mg de floculante/L de vinazas. En vasos de precipitados de pl&aacute;stico de 2 L se mezclaron lentamente con una propela a aproximadamente 30 revoluciones por minuto (rpm) durante 10 minutos, muestras de 1 L de vinazas con peque&ntilde;as cantidades de PAM hasta alcanzar la concentraci&oacute;n final deseada de acuerdo a la dosis aplicada.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><I>Pruebas de neutralizaci&oacute;n</I>. Las pruebas de neutralizaci&oacute;n se realizaron con muestras de vinazas con y sin tratamiento. Para ello se utiliz&oacute; hidr&oacute;xido de sodio (NaOH) y cal viva (CaO). El volumen de las muestras fue de 1 L, que se mantuvo en agitaci&oacute;n constante en una parrilla de agitaci&oacute;n magn&eacute;tica durante la aplicaci&oacute;n del reactivo hasta alcanzar valores de pH por arriba de 10. Por cada adici&oacute;n de reactivo se registraron los gramos a&ntilde;adidos, as&iacute; como los cambios de pH; para dichas mediciones se utiliz&oacute; un potenci&oacute;metro Hanna (modelo 211 de Hanna Instruments, Portugal).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Pruebas piloto</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <B><a href="/img/revistas/rica/v26n4/a5f1.jpg" target="_blank">figura 1</a> </B>presenta en forma esquem&aacute;tica el desarrollo de las pruebas piloto por lote. Este esquema consisti&oacute; de las siguientes partes: fosa recolectora de vinazas, tanque de coagulaci&oacute;n/floculaci&oacute;n, filtro rotatorio y tanque de vinazas tratadas. Las caracter&iacute;sticas de los equipos fueron las siguientes: tanque de coagulaci&oacute;n/floculaci&oacute;n de acero inoxidable de 798 L de capacidad, con fondo c&oacute;nico (39&deg;) y una v&aacute;lvula de descarga de 7.62 cm de di&aacute;metro en la parte baja para conectarse con un separador cil&iacute;ndrico rotatorio a trav&eacute;s de un tubo de PVC (&Iacute;&ntilde;iguez y Peraza 2007). Del separador, el l&iacute;quido filtrado fue recolectado en un tanque de acero inoxidable de 327 L de capacidad. En el tanque de coagulaci&oacute;n/floculaci&oacute;n, las vinazas se mezclaron con el floculante con la ayuda de un difusor en forma de cruz, hecho con tubos de cobre (1.6 cm de di&aacute;metro) perforados por una de las caras; por medio de un compresor de 6 galones y 1.5 HP, se distribuy&oacute; el aire en el fondo del tanque. El separador de acero inoxidable ten&iacute;a 63 cm de di&aacute;metro y 1.22 m de largo, provisto de una malla de 0.2 mm de abertura. El cilindro rotatorio estaba soportado en un par de flechas movidas por un motor de 0.5 HP. La velocidad del cilindro fue de 12 rpm.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Corridas en planta piloto</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para los estudios por lote se realizaron seis corridas, la primera, segunda y sexta con 700, 800 y 400 mg de floculante/L de vinazas respectivamente y la tercera, cuarta y quinta con 600; en cada una de ellas se trabaj&oacute; de la siguiente manera: las vinazas homogeneizadas en la fosa de captaci&oacute;n se bombearon hasta el contenedor de coagulaci&oacute;n/floculaci&oacute;n, de donde se tom&oacute; una muestra de 5 litros de vinazas sin tratar una vez mezcladas con aireaci&oacute;n. La adici&oacute;n del floculante hasta la dosis deseada (400, 600, 700 y 800 mg de floculante/L de vinazas) se hizo por medio de la abertura de una llave de paso del contenedor mientras las vinazas eran mezcladas con aire. Despu&eacute;s de la adici&oacute;n del floculante, el l&iacute;quido se dej&oacute; decantar durante 45 minutos antes de abrir la llave para la separaci&oacute;n de fl&oacute;culos en el separador cil&iacute;ndrico rotatorio; el tiempo de descarga fue de 30 minutos. Del sobrenadante se tomaron muestras para el an&aacute;lisis qu&iacute;mico posterior (SS, ST, SST, SDT &#150;s&oacute;lidos disueltos totales&#150;, y DQO). En cada una de las corridas se tomaron muestras de vinazas con y sin tratamiento para el an&aacute;lisis de pH, SS, ST, SST, SDT y DQO. En cada corrida se hizo un balance entre el volumen de vinazas sin tratar y el volumen de fl&oacute;culos recuperados y vinazas tratadas. De una muestra compuesta de fl&oacute;culos recuperados se determin&oacute; el contenido de agua, nitr&oacute;geno total Kjeldahl (NTK), cenizas, materia org&aacute;nica, carbono org&aacute;nico total, pH, conductividad, total de P, K, Ca, Mg, Na, Cu, Be, Al, Ba, Cd, Cr, Pb, Co, Fe, Mn, Mo, Ni, Ag, Zn, Sb, Tl y V.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis qu&iacute;mico</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el an&aacute;lisis de SS las muestras se vertieron en conos Imhoff de un litro para dejarse sedimentar durante 45 minutos. Se utiliz&oacute; una varilla de vidrio para retirar los s&oacute;lidos floculados pegados en las paredes del cono, dejando reposar los fl&oacute;culos por 15 minutos m&aacute;s para completar una hora de prueba. Los resultados se leyeron y reportaron en mL/L (APHA 1992). Los ST se determinaron mediante el calentamiento y secado de muestras, calcul&aacute;ndolos en mg/L al comparar el peso inicial con el final (APHA 1992). Para medir la concentraci&oacute;n de SST se pesaron filtros de fibra de vidrio, puestos previamente a peso constante; se colocaron los filtros en un embudo de filtraci&oacute;n sujeto a vac&iacute;o y se pas&oacute; un volumen conocido de la muestra a trav&eacute;s de los filtros, posteriormente se secaron en una estufa, se enfriaron y se pesaron. La concentraci&oacute;n de SST se calcul&oacute; con base en la diferencia del peso previo y posterior al secado (APHA 1992). Los resultados se reportaron en mg/L. Los SDT se calcularon por la diferencia de los ST y SST (APHA 1992). La DQO fue determinada mediante un sistema de reflujo y un m&eacute;todo colorim&eacute;trico (APHA 1992). Para medir la temperatura de las muestras se utiliz&oacute; un term&oacute;metro de mercurio de escala Celsius de 0 a 150 &deg;C, el cual se sumergi&oacute; en la muestra; cuando la columna de mercurio se estabiliz&oacute;, se tom&oacute; la lectura. Los valores de pH fueron determinados con un potenci&oacute;metro Hanna (modelo 21 Hanna Instruments, Portugal) en escala de unidades est&aacute;ndar de 0 a 14. Para los fl&oacute;culos, el contenido de agua se determin&oacute; mediante el secado de una muestra por 24 h a 105 &deg;C, comparando el peso inicial y final; el resultado se reporta en % (AOAC 1990). El NTK se determin&oacute; de acuerdo a la t&eacute;cnica descrita por la AOAC (1990), utilizando mezcla sel&eacute;nica como catalizador y &aacute;cido b&oacute;rico a 4 % para captar el amoniaco. Para el an&aacute;lisis de cenizas se puso una muestra de peso conocido en una mufla a 550 &deg;C por 2 h; el peso del material residual se consider&oacute; como el contenido de cenizas. El material vol&aacute;til fue considerado como materia org&aacute;nica (Bateman 1970). El pH y la conductividad de las muestras s&oacute;lidas fueron determinados de extractos en agua en una relaci&oacute;n peso/volumen 1:5 (CWMI 1995). El pH se midi&oacute; con un potenci&oacute;metro Hanna y la conductividad se determin&oacute; con un medidor modelo 407303 Extech, Instruments. El carbono org&aacute;nico total (COT) fue calculado mediante la siguiente ecuaci&oacute;n (Golueke 1977):</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v26n4/a5s1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El total de P, K, Ca, Mg, Na, Cu, Be, Al, Ba, Cd, Cr, Pb, Co, Fe, Mn, Mo, Ni, Ag, Zn, Sb, Tl y V, fue determinado por espectroscop&iacute;a de emisi&oacute;n at&oacute;mica en plasma, acoplado inductivamente en un espectr&oacute;metro de emisi&oacute;n at&oacute;mica (modelo FMA&#150;03), previa digesti&oacute;n de las muestras con agua regia de acuerdo a la t&eacute;cnica descrita por el TMECC (2001).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Vinazas</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo a los datos recabados en la f&aacute;brica de tequila de donde se tomaron las vinazas para su estudio, la relaci&oacute;n de L de vinazas generados/L de tequila producido fue de 10&#150;10.7, a diferencia de Cede&ntilde;o (1995) de 7&#150;10 L de vinazas/L de tequila. Esta tequilera produce entre 7000 y 8000 L de tequila/d&iacute;a y genera entre 75 000 y 80 000 L de vinazas/d&iacute;a. Las descargas de vinazas provienen de cuatro alambiques de destilaci&oacute;n, tres de los cuales tienen una capacidad de 5000 L cada uno (con una descarga por unidad aproximada de 3500 L de vinazas por corrida) y otro de 2500 L (con una descarga aproximada de 1500 L de vinazas por corrida).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las caracter&iacute;sticas de las vinazas utilizadas en este estudio fueron las siguientes: pH 3.6, SS 943 mL/L, ST 38 473 mg/L, SST 14 138 mg/L, SDT 24 335 mg/L, DQO 55 916 mg/L.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Pruebas de laboratorio</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><I>Pruebas de floculaci&oacute;n.</I> En la <B><a href="#f2">figura 2</a></B> se presentan los resultados gr&aacute;ficos de c&oacute;mo evolucion&oacute; la coagulaci&oacute;n y formaci&oacute;n de fl&oacute;culos conforme se incrementaba la adici&oacute;n de PAM (200, 300, 400, 500, 600, 700 a 800 mg/L) en vinazas tequileras con pH de 3.8 y una concentraci&oacute;n de ST de 39 630 mg/L. &Iacute;&ntilde;iguez y Peraza (2007), trabajando en pruebas de laboratorio con muestras de 500 mL de vinazas, encontraron buenas formaciones de fl&oacute;culos con concentraciones de PAM de 20 a 180 mg/L, pero con concentraciones de SS y ST de 150 mL/L y 26 267 mg/L, respectivamente. En pruebas con 200 L de vinazas de cinco f&aacute;bricas diferentes de tequila, tambi&eacute;n tuvieron buenas formaciones de fl&oacute;culos utilizando 200 mg/L de PAM, al tener concentraciones de SS desde 72 hasta 400 mL/L y de ST desde 21 883 hasta 41 578 mg/L. En vinazas con 900 mL/L de SS y 56 900 mg/L de ST se utiliz&oacute; una concentraci&oacute;n de 400 mg/L de PAM para tener una buena formaci&oacute;n de fl&oacute;culos, con remociones de SS y ST de 99.3 y 49.5 %, respectivamente.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v26n4/a5f2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><I>An&aacute;lisis f&iacute;sico de part&iacute;culas</I>. La <B><a href="#f3">figura 3</a></B> presenta el porcentaje de s&oacute;lidos totales (ST) recuperados de muestras de vinazas sometidas a pruebas de filtraci&oacute;n en mallas con abertura de 0.25, 0.50, 1.0, 1.98 y 4.76 mm. Como se puede observar en la figura, entre m&aacute;s cerrada es la malla, mayor es el porcentaje de ST recuperados, de tal manera que al utilizar una malla con una abertura de 0.25 mm se recuper&oacute; hasta 20.3 % de los ST; sin embargo, existe el inconveniente de una lenta velocidad de drenado, lo cual dificultar&iacute;a la operaci&oacute;n en planta para la remoci&oacute;n de ST. En cambio, como se puede apreciar en esta misma figura, al utilizar el floculante PAM, se recuper&oacute; hasta 45 % de los ST con la misma abertura de malla (0.25 mm) sin problemas de drenado, lo cual justifica su utilizaci&oacute;n para la remoci&oacute;n de una parte importante de los ST.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v26n4/a5f3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><I>Pruebas de neutralizaci&oacute;n</I>. La <B><a href="#f4">figura 4</a></B> presenta los cambios de pH para vinazas con y sin la adici&oacute;n de PAM al a&ntilde;adirse hidr&oacute;xido de sodio (NaOH) y cal viva (CaO). Las vinazas para esta prueba tuvieron un pH de 3.8 y una concentraci&oacute;n de ST de 23 519 mg/L (vinazas tratadas con PAM) y 39 630 mg/L (vinazas no tratadas). Las vinazas sin PAM necesitaron de mayores cantidades de NaOH y CaO para alcanzar valores de pH 11, lo que significa que el contenido de s&oacute;lidos en las vinazas influye en el mayor consumo de reactivos. Por otro lado, para alcanzar valores de neutralizaci&oacute;n (pH 7) en las vinazas con y sin tratamiento, se requiri&oacute; de menor cantidad de CaO que de NaOH, a pesar de que el segundo era grado reactivo. Para alcanzar pH 7 en vinazas tratadas con PAM, se requirieron 1.26 g/L de CaO y 1.7 g/L de NaOH. En cambio, en vinazas no tratadas con PAM, se requirieron 1.5 g/L de CaO y 1.95 g/L de NaOH. Esto definitivamente favorece la neutralizaci&oacute;n de vinazas al utilizar menos reactivo de un compuesto qu&iacute;mico m&aacute;s barato. En la neutralizaci&oacute;n de vinazas obtenidas de la producci&oacute;n de alcohol a partir de la fermentaci&oacute;n de mieles finales de ca&ntilde;a de az&uacute;car, Berm&uacute;dez <I>et al</I>. (2000) reportaron resultados inversos, ya que para neutralizar sus muestras de vinazas se requiri&oacute; de menor cantidad de sosa c&aacute;ustica que de cal viva (4.98 y 10 g/L, respectivamente).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v26n4/a5f4.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Pruebas en planta piloto</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><I>Tratamiento por lote. </I>El <B><a href="/img/revistas/rica/v26n4/a5c1.jpg" target="_blank">cuadro I</a></B> presenta los resultados de seis corridas realizadas en las pruebas de planta piloto; se determin&oacute; la temperatura de las vinazas antes de la adici&oacute;n del floculante, as&iacute; como pH, SS, ST, SST, SDT y DQO antes y despu&eacute;s del tratamiento con diferentes dosis de PAM. En las corridas se consider&oacute; el volumen de vinazas tratadas para determinar el volumen de s&oacute;lidos floculados recuperados y por diferencia conocer el volumen remanente de vinazas para neutralizarse o ser tratadas en un proceso posterior. Tambi&eacute;n se determin&oacute; el peso de s&oacute;lidos floculados separados, as&iacute; como su contenido de humedad.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El <B><a href="/img/revistas/rica/v26n4/a5c2.jpg" target="_blank">cuadro II</a></B> presenta una s&iacute;ntesis de los resultados obtenidos en las seis corridas. De acuerdo con los resultados, en la <B><a href="#f5">figura 5</a></B> se ilustra la relaci&oacute;n entre la concentraci&oacute;n de ST y SS de las vinazas sin tratamiento, donde se aprecia que esta relaci&oacute;n no es lineal: una alta concentraci&oacute;n de ST no necesariamente implica tener una alta concentraci&oacute;n de SS. En una muestra con 57 407 mg/L de ST se tuvo un valor de SS de 740 mL/L; en cambio con otra de 31 666 mg/L de ST, se tuvo inclusive un valor mayor de SS (850 mL/L). Estos resultados dan una idea de la heterogeneidad de las vinazas y lo poco pr&aacute;ctico que es remover ST por simple sedimentaci&oacute;n; en cambio, con la adici&oacute;n de PAM, la situaci&oacute;n puede cambiar al removerse un buen porcentaje de los ST por floculaci&oacute;n, con la obvia inclusi&oacute;n de los SS. El <B><a href="#c3">cuadro III</a> </B>presenta algunos an&aacute;lisis f&iacute;sicos y qu&iacute;micos que se les practicaron a los s&oacute;lidos recuperados con el floculante PAM. Como era de esperarse estos s&oacute;lidos contienen una gran cantidad de agua (93.3%) lo que puede dificultar su manejo posterior, sin embargo, pueden integrarse al proceso de compostaje del bagazo de agave, ya que la mayor&iacute;as de las plantas de tequila han optado por este sistema de disposici&oacute;n del bagazo. Si a lo anterior se agrega el contenido de materia org&aacute;nica y elementos como N, P, K, Mg, Na, Cu, Al, Cd, Mn, Ni y Zn que contienen los s&oacute;lidos recuperados, significa que la adici&oacute;n de estos s&oacute;lidos al bagazo de agave mejorar&aacute; las condiciones de compostaje y la calidad de la composta al final del proceso.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v26n4/a5f5.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v26n4/a5c3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <B><a href="#f6">figura 6</a></B> presenta la relaci&oacute;n de dosis de PAM (mg/L), concentraci&oacute;n y remoci&oacute;n de los ST en muestras de vinazas. En la figura se aprecia que a mayor dosis de PAM (mg/L), mayor remoci&oacute;n de ST; aparentemente, la concentraci&oacute;n de ST en las vinazas sin tratamiento no influye en la remoci&oacute;n, ya que teniendo la misma dosis de floculante, en la cuarta corrida se removieron 12 185 mg/L (concentraci&oacute;n inicial, 31 666 mg/L) y en la quinta 10 240 mg/L (concentraci&oacute;n inicial, 57 407 mg/L).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f6"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v26n4/a5f6.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <B><a href="#f7">figura 7</a></B> presenta la relaci&oacute;n de dosis de PAM (mg/L), concentraci&oacute;n y remoci&oacute;n de los SS (mL/L) en muestras de vinazas. Se aprecia tambi&eacute;n que a mayor concentraci&oacute;n de SS, mayor remoci&oacute;n, habiendo aplicado a las muestras la misma dosis de floculante. En las corridas 3, 4 y 5 &#150;teniendo una concentraci&oacute;n inicial de SS en vinazas de 927, 850 y 740 mL/L&#150; se removieron 847, 818 y 707 mL/L, respectivamente.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f7"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v26n4/a5f7.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <B><a href="#f8">figura 8</a></B> presenta la relaci&oacute;n de dosis de PAM (mg/L), concentraci&oacute;n y remoci&oacute;n de la DQO (mg/L) en muestras de vinazas. Al igual que en los casos anteriores, a mayor dosis de floculante (mg/L), mayor remoci&oacute;n de DQO (mg/L). En este caso, los valores de remoci&oacute;n tuvieron que ver con la concentraci&oacute;n inicial de la DQO (mg/L), de tal manera que con la misma dosis de PAM, a mayor concentraci&oacute;n de DQO (mg/L), mayor valor de remoci&oacute;n. En las corridas 3, 4 y 5, en muestras con una DQO de 51 462, 41 280 y 87 123 mg/L, se removieron 13 205, 8600 y 23 323 mg/L, respectivamente.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f8"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v26n4/a5f8.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <B><a href="#f9">figura 9</a></B> presenta la relaci&oacute;n de dosis de PAM (mg/L), concentraci&oacute;n y remoci&oacute;n de los SST (mg/L). En esta figura se aprecia que la remoci&oacute;n de SST (mg/L) se vio influenciada tambi&eacute;n por el valor de la dosis del PAM (mg/L), de tal manera que a mayor dosis, mayor remoci&oacute;n de SST (mg/L), sin aparente influencia de la concentraci&oacute;n inicial en las muestras de vinazas. En las corridas 3, 4 y 5, en donde se utiliz&oacute; la misma dosis de PAM (mg/L), se tuvieron remociones (10 549, 11 674 y 10 029 mg/L, respectivamente) relativamente proporcionales a las concentraciones de SST (12 398, 13 063 y 10 917 mg/L, respectivamente).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f9"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v26n4/a5f9.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <B><a href="#f10">figura 10</a></B> presenta la relaci&oacute;n de la dosis de PAM (ppm) y los s&oacute;lidos floculados recuperados/100 L de vinazas. Como prueba de los resultados anteriores &#150;en los que se vio que a mayores dosis de PAM (mg/L), mayores remociones de SS (mL/L), ST (mg/L), DQO (mg/L) y SST (mg/L)&#150;, en esta figura se presenta que a mayor dosis de PAM, mayor recolecci&oacute;n de L o kg de s&oacute;lidos floculados/100 L de vinazas tratadas. En el tratamiento con 700 mg/L de PAM se recolectaron 43.7 L de s&oacute;lidos/100 L de vinazas, mientras que con 400 mg/L se recolectaron 28.3 L. Por otro lado, en la <B><a href="#f11">figura 11</a></B> se muestra que a mayor dosis de floculante y mayor recolecci&oacute;n de s&oacute;lidos floculados/100 L de vinazas tratadas, menor volumen de vinazas remanentes por neutralizar.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f10"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v26n4/a5f10.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f11"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v26n4/a5f11.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><I>Datos de operaci&oacute;n para la planta de tratamiento. </I>La planta tratadora de vinazas tiene una una fosa de captaci&oacute;n de 88 m<Sup>3</Sup> (4 &times; 2.65 &times; 8.3 m; profundidad, ancho y largo, respectivamente) y una generaci&oacute;n de vinazas de 80 m<Sup>3</Sup>/d&iacute;a, por lo que no hay limitante para la captaci&oacute;n de las aguas residuales. Se han acondicionado seis celdas de coagulaci&oacute;n/floculaci&oacute;n con una capacidad total de 15.6 m<Sup>3</Sup>. Cada celda cuenta con un sistema de desag&uuml;e individual, por lo que se tendr&aacute;n que llenar y vaciar 5.1 veces para cumplir la carga de aguas residuales generadas. Esto implica que en una jornada de trabajo de ocho horas, el llenado y vaciado de las fosas se tendr&aacute; que realizar en 1.5 horas y la capacidad del separador de los s&oacute;lidos tendr&aacute; que ser de 173 L/min. Si se considera que se generan 43.7 L de s&oacute;lidos floculados por cada 100 L vinazas tratadas, se deber&aacute; contar con un sistema de recolecci&oacute;n, traslado y disposici&oacute;n en compostaje de s&oacute;lidos floculados de 75.6 L/min. Para la captaci&oacute;n de vinazas tratadas se cuenta con una fosa de 56 m<Sup>3</Sup> (2.45 &times; 3.86 &times; 5.96 m; profundidad, ancho y largo, respectivamente), pero dado que la generaci&oacute;n de vinazas tratadas con 700 mg/L de PAM ser&aacute; de 58 080 L, se requerir&aacute; remover algunos litros de vinazas en una jornada de ocho horas. Los requerimientos para la neutralizaci&oacute;n de 58 080 L de vinazas remanentes de la floculaci&oacute;n ser&aacute;n del orden de 73.2 kg de CaO (ver <a href="#f4">figura 4</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados obtenidos en esta investigaci&oacute;n, en concordancia con experiencias previas, indicaron que para la &oacute;ptima aplicaci&oacute;n del floculante PAM y la eficiente remoci&oacute;n de contaminantes, es importante homogeneizar lo m&aacute;s posible las vinazas antes de iniciar el tratamiento de coagulaci&oacute;n/floculaci&oacute;n. Aplicar un exceso de floculante, aparte de la repercusi&oacute;n econ&oacute;mica, trae consigo la formaci&oacute;n de un fl&oacute;culo pegajoso y de poca consistencia. La formaci&oacute;n de un buen fl&oacute;culo facilit&oacute; la separaci&oacute;n de s&oacute;lidos y l&iacute;quido mediante la filtraci&oacute;n. La neutralizaci&oacute;n de vinazas tratadas con PAM result&oacute; m&aacute;s econ&oacute;mica con CaO que con NaOH. La relaci&oacute;n en la concentraci&oacute;n de ST y SS en vinazas sin tratamiento, demostr&oacute; que una alta concentraci&oacute;n de ST no necesariamente implica tener una alta concentraci&oacute;n de SS. Por otro lado en este trabajo se demostr&oacute; que a mayor dosis de floculante, mayor remoci&oacute;n de ST, SS, SST y DQO, lo que signific&oacute; una mayor recolecci&oacute;n de L o kg de s&oacute;lidos floculados/100 L de vinazas tratadas. La aplicaci&oacute;n del floculante PAM a vinazas tequileras para la remoci&oacute;n de la mayor carga org&aacute;nica puede ser una alternativa t&eacute;cnica y econ&oacute;micamente viable, sobre todo para vinazas con alto contenido de SS y ST.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores expresan su agradecimiento al Ing. Carlos A. Hern&aacute;ndez Ramos, due&ntilde;o de la f&aacute;brica de tequila La Cofrad&iacute;a, por las facilidades y beca otorgadas para la realizaci&oacute;n de este trabajo de investigaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Amador M. (2002). Efecto de vinazas en agave tequilero en la nutrici&oacute;n y su relaci&oacute;n con problemas fitosanitarios. Tesis de Licenciatura. Departamento de fitotecnia. Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. Chapingo, Estado de M&eacute;xico, M&eacute;xico.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7202169&pid=S0188-4999201000040000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">AOAC (1990). <I>Official methods of analysis</I>. 15a. ed. Association of Official Analytical Chemists. Washington, EUA. 11&#150;18 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7202171&pid=S0188-4999201000040000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">APHA (1992). <I>Standard methods for the examination of water and wastewater</I>. 18a. ed. American Public Health Association, Washington, EUA. Secciones 5&#150;8, 5&#150;9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7202173&pid=S0188-4999201000040000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bateman J.V. (1970). <I>Nutrici&oacute;n animal</I>. <I>Manual de m&eacute;todos anal&iacute;ticos</I>. Herrero Hermanos, M&eacute;xico. pp. 146&#150;149<I>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7202175&pid=S0188-4999201000040000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></I></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bautista Z.F. y Dur&aacute;n de Baz&uacute;a C. (1998). An&aacute;lisis del beneficio y riesgo potenciales de la aplicaci&oacute;n al suelo de vinazas crudas y tratadas biol&oacute;gicamente. Rev. Int. Contam. Ambient. 14, 13&#150;19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7202177&pid=S0188-4999201000040000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Berm&uacute;dez S., Hoyos H. y Rodr&iacute;guez P. (2000). Evaluaci&oacute;n de la disminuci&oacute;n de la carga contaminante de la vinaza de destiler&iacute;a por tratamiento anaerobio. Rev. Int. Contam. 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Consejo Regulador del Tequila. <a href="http://www.crt.org.mx/" target="_blank">http://www.crt.org.mx</a>. 06/11/2008.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7202183&pid=S0188-4999201000040000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CWMI (1995). Monitoring compost pH. Cornell Waste Management Institute. &#91;en l&iacute;nea&#93; <a href="http://cwmi.css.cornell.edu/composting.htm" target="_blank">http://cwmi.css.cornell.edu/composting.htm</a> ~Large Scale Composting/Siting and Operation/Monitoring compost pH 29/10/2008.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7202185&pid=S0188-4999201000040000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Godshall M.A. (1999). Removal of colorants and polysaccharides and the quality of white sugar. En: Proceedings of the 6<Sup>th</Sup> International Symposium of the Association Andrew van Hook (AvH)<I>.</I> Marzo 25, 1999. 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Van Nostrand Reinhold, Nueva York, pp. 197&#150;225.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7202189&pid=S0188-4999201000040000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">&Iacute;&ntilde;iguez G. y Peraza F. (2007). Reduction of solids and organic load concentrations in tequila vinasses using a polyacrylamide (PAM) polymer flocculant. Rev. Int. Contam. Ambient. 23, 17&#150;24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7202191&pid=S0188-4999201000040000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kalavathi D.F., Uma L. y Subramanium G. (2001). Degradation and metabolization of the pigment&#150;melanoidin in distillery effluent by the marine cyanobacterium <I>Oscillatoria boryana </I>BDU 92181. Enzyme Microb. Tech. 29, 246&#150;251.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7202193&pid=S0188-4999201000040000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SEMARNAT (1996). NOM&#150;001&#150;ECOL.SEMARNAT. Establece los l&iacute;mites m&aacute;ximos permisibles de contaminantes en las descargas de aguas residuales en aguas y bienes nacionales. Diario Oficial de la Federaci&oacute;n. 11 de diciembre de 1996.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7202195&pid=S0188-4999201000040000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sirianuntapiboon S., Somchai P., Ohmomo S. y Atthasampunna P. (1988). Screening of filamentous fungi having the ability to decolourize molasses pigments. Agric. Biol. Chem. 52, 387&#150;392.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7202197&pid=S0188-4999201000040000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">TMECC (2001). Method 04.12&#150;E. Test methods for the examination of composting and compost. &#91;en l&iacute;nea&#93;. <a href="http://tmecc.org/tmecc" target="_blank">http://tmecc.org/tmecc</a> 25/07/2009.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7202199&pid=S0188-4999201000040000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wedzicha, B.L. y Kaputo M.T. (1992). Melanoidins from glucose and glycine: composition, characteristics and reactivity towards sulphite ion. Food Chem. 43, 359&#150;367.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7202201&pid=S0188-4999201000040000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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