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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Tolerancia y solubilización de cobre por rizobacterias aisladas de sitios contaminados con elementos potencialmente tóxicos]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[This research was developed to contribute to knowledge of environment friendly and low cost biological alternatives for remediation of soils polluted with potentially toxic elements (PTE). The objectives of this study were to determine Cu tolerance in 133 rhizobacteria isolated from plants growing in PTE polluted soils, to evaluate the ability of the most tolerant strains to solubilize metallic Cu and to bioabsorb and bioaccumulate Cu in diluted solutions and metallic Cu. Only 6% of strains were Cu tolerant (3 mM). In the most tolerant strains, Cu content in the medium significantly augmented bacterial biomass. The highest biomass increment (in relation to growth at 0 mM Cu) was found in strains 29 (655%), 101 (457%) and 135 (313%). Strain 95 produced the highest biomass at all tested levels of Cu. Strain 21 had the highest Cu biosorption capacity. Strain 29 significantly bioaccumulated more Cu. The most Cu tolerant strains showed similar metallic Cu solubilization capacity (from 9 to 14 mg). Higher biosorption (44 times) and bioaccumulation (13 times) were observed in the Cu metallic tests than in the diluted solutions.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Divisi&oacute;n II</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Tolerancia y solubilizaci&oacute;n de cobre por rizobacterias aisladas de sitios contaminados con elementos potencialmente t&oacute;xicos</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Tolerance and Solubilization of Copper by Rhizobacteria Isolated from Sites Polluted by</b> <b>Potentially Toxic Elements</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Ma. del Carmen A. Gonz&aacute;lez&#45;Ch&aacute;vez<sup>1</sup>*, Rosalba Argumedo&#45;Delira<sup>1</sup>, Rogelio Carrillo&#45;Gonz&aacute;lez<sup>1</sup>, Patricia Gonz&aacute;lez&#45;Ram&iacute;rez<sup>1</sup>, Guillermo Carrillo&#45;Casta&ntilde;eda<sup>1</sup>, Reyna Rojas<sup>1</sup> y Jaime Cruz&#45;D&iacute;az<sup>1</sup></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Colegio de Postgraduados, Campus Montecillo. 56230 Montecillo, Estado de M&eacute;xico. * Autor responsable </i>(<a href="mailto:carmeng@colpos.mx">carmeng@colpos.mx</a>).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="left"><font face="verdana" size="2">Recibido: noviembre de 2006.    <br> 	Aceptado: agosto de 2008.</font></p>  	    <p align="left"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="left"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este estudio se realiz&oacute; para contribuir al conocimiento de alternativas biol&oacute;gicas, econ&oacute;micas y amigables con el ambiente, para la remediaci&oacute;n de sitios contaminados con elementos potencialmente t&oacute;xicos (EPT). Los objetivos del presente trabajo fueron determinar la tolerancia al cobre (Cu) de 133 rizobacterias aisladas de plantas que crecen en suelos contaminados con EPT, adem&aacute;s de la habilidad de las cepas m&aacute;s tolerantes para solubilizar Cu met&aacute;lico, y para biosorber y bioacumular Cu en soluciones diluidas y con Cu met&aacute;lico. Los resultados mostraron que s&oacute;lo 6% de las cepas fueron tolerantes a Cu (3 mM). En las cepas m&aacute;s tolerantes se observ&oacute; que el incremento de Cu en soluci&oacute;n favoreci&oacute; su crecimiento. Los mayores incrementos en biomasa se observaron en las cepas 29 (655%), 101 (457%) y 135 (313%) con respecto a su crecimiento en 0 mM de Cu. La cepa 95 fue la que present&oacute; biomasa superior en todos los niveles de Cu probados, mientras que la cepa 21 tuvo mayor capacidad que las otras para biosorber Cu. La cepa 29 bioacumul&oacute; significativamente m&aacute;s cantidad de Cu. Se observ&oacute; que las cepas seleccionadas como m&aacute;s tolerantes no se diferenciaron en su capacidad para solubilizar Cu (entre 9 y 14 mg). Se observ&oacute; mayor biosorci&oacute;n (44 veces) y bioacumulaci&oacute;n (13 veces) en las pruebas de Cu met&aacute;lico que en las de soluciones diluidas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> bioacumulaci&oacute;n, biosorci&oacute;n, biorremediaci&oacute;n, metales pesados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">This research was developed to contribute to knowledge of environment friendly and low cost biological alternatives for remediation of soils polluted with potentially toxic elements (PTE). The objectives of this study were to determine Cu tolerance in 133 rhizobacteria isolated from plants growing in PTE polluted soils, to evaluate the ability of the most tolerant strains to solubilize metallic Cu and to bioabsorb and bioaccumulate Cu in diluted solutions and metallic Cu. Only 6% of strains were Cu tolerant (3 mM). In the most tolerant strains, Cu content in the medium significantly augmented bacterial biomass. The highest biomass increment (in relation to growth at 0 mM Cu) was found in strains 29 (655%), 101 (457%) and 135 (313%). Strain 95 produced the highest biomass at all tested levels of Cu. Strain 21 had the highest Cu biosorption capacity. Strain 29 significantly bioaccumulated more Cu. The most Cu tolerant strains showed similar metallic Cu solubilization capacity (from 9 to 14 mg). Higher biosorption (44 times) and bioaccumulation (13 times) were observed in the Cu metallic tests than in the diluted solutions.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> bioaccumulation, biosorption, bioremediation, heavy metals.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con los avances biotecnol&oacute;gicos, la remediaci&oacute;n de sitios contaminados utilizando plantas y microorganismos para reducir la toxicidad de elementos potencialmente t&oacute;xicos (EPT) es una alternativa que se est&aacute; desarrollando r&aacute;pidamente para la recuperaci&oacute;n de suelos contaminados (Thacker y Madamwar, 2005; Kuffner <i>et al.,</i> 2008). La bioaumentaci&oacute;n (adici&oacute;n de microorganismos nativos o al&oacute;ctonos al suelo) se puede utilizar como una opci&oacute;n para reducir la biodisponibilidad de algunos EPT en suelos agr&iacute;colas y contaminados (Jezequel <i>et al.</i> 2005). Sin embargo, se debe tener especial cuidado en la introducci&oacute;n de organismos al&oacute;ctonos en el suelo, ya que este proceso se relaciona con la invasi&oacute;n y perturbaci&oacute;n de los sistemas, as&iacute; como con las alteraciones en la funci&oacute;n de los ecosistemas nativos (Angle <i>et al.,</i> 2001; Carrillo&#45;Gonz&aacute;lez y Gonz&aacute;lez&#45;Ch&aacute;vez, 2006). Una alternativa para este problema es el aislamiento y la caracterizaci&oacute;n de microorganismos de cada sitio para usarlos en las &aacute;reas afectadas de la misma regi&oacute;n. En teor&iacute;a, estos microorganismos estar&aacute;n mejor adaptados al suelo y las condiciones clim&aacute;ticas locales, y se podr&aacute;n utilizar para producir in&oacute;culo espec&iacute;fico para estas &aacute;reas contaminadas (Khan, 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Algunos autores sugieren que el uso de bacterias de la rizosfera facilita la proliferaci&oacute;n de las plantas, especialmente en condiciones altamente perturbadas (Kuffner <i>et al.,</i> 2008). En consecuencia, se induce la estabilizaci&oacute;n de los contaminantes en el suelo, se favorece la revegetaci&oacute;n y recuperaci&oacute;n de las &aacute;reas contaminadas (Glick, 2003; Gonz&aacute;lez&#45;Ch&aacute;vez, 2005; Khan, 2005). La fitorremediaci&oacute;n se puede hacer m&aacute;s r&aacute;pida y eficiente con ayuda de rizobacterias (Glick, 2003). Sin embargo, es necesario entender los mecanismos involucrados en la movilizaci&oacute;n y transferencia de EPT para desarrollar estrategias que optimicen este proceso. El conocimiento de las propiedades bacterianas es vital en el momento de realizar estos procesos, pues de esta manera se favorecer&aacute; la supervivencia y, por lo tanto, se tendr&aacute; &eacute;xito (Khan, 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los objetivos del presente trabajo fueron, determinar la tolerancia al cobre (Cu) de 133 rizobacterias aisladas de plantas que crecen en suelos contaminados con EPT, adem&aacute;s de la habilidad de las cepas m&aacute;s tolerantes para solubilizar Cu met&aacute;lico, y para biosorber y bioacumular Cu en soluciones diluidas y con Cu met&aacute;lico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El trabajo se realiz&oacute; en tres etapas: 1) determinaci&oacute;n de la tolerancia a Cu en 133 bacterias aisladas de la rizosfera de plantas creciendo en suelos contaminados con EPT; 2) cuantificaci&oacute;n de la biosorci&oacute;n y bioacumulaci&oacute;n de Cu en las bacterias m&aacute;s tolerantes (seleccionadas de la primera etapa), y 3) an&aacute;lisis de la capacidad de estas cepas para biosorber y bioacumular Cu met&aacute;lico.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fase 1. Tolerancia a cobre en rizobacterias</b></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se prob&oacute; la tolerancia a Cu de 133 cepas bacterianas que se aislaron del rizoplano y endorrizosfera de plantas que crecen en suelos contaminados por altas concentraciones de EPT (Gonz&aacute;lez&#45;Ram&iacute;rez, 2005). Los sitios de aislamiento se localizan en cuatro &aacute;reas contaminadas del estado de Zacatecas y una en Temascaltepec, M&eacute;xico (S&aacute;nchez&#45;Guzm&aacute;n, 2005; Gonz&aacute;lez&#45;Ch&aacute;vez <i>et al.,</i> 2005). Todas contienen altas concentraciones de Cu, Zn, Pb, Cd entre otros (Carrillo&#45;Gonz&aacute;lez, 2005).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se prepar&oacute; un medio de cultivo (agar nutritivo, grado reactivo) con las siguientes concentraciones de Cu: 0, 0.7, 1, 2 y 3 mM (CuCl<sub>2</sub>). Las dosis de Cu establecidas se basaron en estudios previos realizados por Gordon <i>et al.</i> (1993), Hanssen <i>et al.</i> (1998) y Martin <i>et al.</i> (2004). Hanssen <i>et al.</i> (1998) reportaron que las cepas de <i>Pseudomonas aeruginosa</i> (S15) y <i>Providencia rettgeri</i> (S7) m&aacute;s tolerantes a Cu crecieron a 1.8 y 1.6 mM. Martin <i>et al.</i> (2004) utilizaron entre 0 y 1.2 mM para la selecci&oacute;n de cepas tolerantes a Cu de <i>Xanthomonas campestris</i> pv. <i>versicatoria.</i> Mientras que Gordon <i>et al.</i> (1993) reportaron que concentraciones iguales o mayores de 20 &#956;M de Cu se consideran altas y, por lo tanto, los microorganismos que crecen en &eacute;stas se pueden denominar tolerantes a Cu.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El pH del medio se ajust&oacute; a 5.5 (pH promedio de las rizosferas donde se aislaron las bacterias) con &aacute;cido clorh&iacute;drico diluido y, posteriormente, se esteriliz&oacute; en autoclave por 18 min a 1.1 kg cm<sup>&#45;2</sup> de presi&oacute;n. Una vez que el medio se enfri&oacute;, se verific&oacute; el pH y se procedi&oacute; al vaciado de &eacute;ste en cajas de Petri. La inoculaci&oacute;n se realiz&oacute; por triplicado y se utilizaron 10 &#956;L de una suspensi&oacute;n bacteriana con concentraci&oacute;n de 10<sup>6</sup> UFC mL<sup>&#45;1</sup> de cada una de las 133 cepas bacterianas bajo estudio. Las cajas de Petri se incubaron por 48 h a 28 &deg;C (incubadora Riossa Model 556).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Despu&eacute;s del per&iacute;odo de incubaci&oacute;n, el crecimiento se cuantific&oacute; midiendo el &aacute;rea de las colonias bacterianas en cada uno de las concentraciones de Cu probadas. Esto se realiz&oacute; con ayuda de un analizador de im&aacute;genes Digital Image Tool 1.1.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fase 2. Biosorci&oacute;n y bioacumulaci&oacute;n de cobre en cepas bacterianas altamente tolerantes en soluciones diluidas</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta fase se realiz&oacute; con la finalidad de conocer m&aacute;s sobre el comportamiento de bacterias rizosf&eacute;ricas altamente tolerantes a Cu seleccionadas de la primera fase (que crecieron en concentraci&oacute;n de 3 mM de Cu). La metodolog&iacute;a utilizada se bas&oacute; en las investigaciones realizadas por Chen <i>et al.</i> (2005), Kadukov&aacute; y Vir&iacute;kov&aacute; (2005) y Tangaromsuk <i>et al.</i> (2002).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con la finalidad de analizar algunos mecanismos que pueden diferenciar a las bacterias bajo estudio, se utiliz&oacute; caldo nutritivo con las siguientes concentraciones de Cu (CuCl<sub>2</sub>): 0, 0.02, 0.1, 1.6, 2.5 y 3 mM. Estas concentraciones se confirmaron con cuantificaci&oacute;n por espectrofotometr&iacute;a de absorci&oacute;n at&oacute;mica (EAA) (Perkin Elmer 3110). Se adicionaron 10 mL de estos medios a tubos de incubaci&oacute;n de 50 mL. Los tubos se esterilizaron en una autoclave a 1.1 kg cm<sup>&#45;2</sup> de presi&oacute;n por 15 min. Una vez fr&iacute;os los tubos, se procedi&oacute; a confirmar la concentraci&oacute;n disponible de Cu en todas las dosis bajo prueba y el pH. Posteriormente, los medios se inocularon por separado con 300 &#956;L de cada una de las cepas bacterianas tolerantes. Esto se realiz&oacute; mediante suspensiones bacterianas a una concentraci&oacute;n de 10<sup>6</sup> UFC mL<sup>&#45;1</sup>. Se dejaron durante 48 h a 28 &deg;C en una incubadora con agitaci&oacute;n (Shel Lab Model 514). Despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n se separ&oacute; el paquete bacteriano del sobrenadante por centrifugaci&oacute;n a 6500 <i>g</i> durante 8 min (Centrifuga Hermle Z 223). &Eacute;ste se lav&oacute; dos veces con 10 mL de agua destilada utilizando las mismas condiciones de centrifugaci&oacute;n y tiempo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La habilidad de las bacterias para biosorber Cu se determin&oacute; con base en la cantidad de Cu adsorbido a las c&eacute;lulas. Al paquete bacteriano se le adicionaron 10 mL de HCl 0.1 M, se dej&oacute; en esa soluci&oacute;n por 10 min. Despu&eacute;s se centrifug&oacute; a 6500 <i>g</i> durante 8 min y se decant&oacute; el sobrenadante. En este &uacute;ltimo se determin&oacute; la concentraci&oacute;n de Cu por EAA (Perkin Elmer 3110). El paquete bacteriano se sec&oacute; en una estufa (VWR Scientific Model 1350FSM) a 60 &plusmn; 2 &deg;C durante 48 h hasta peso constante, se pes&oacute; y la biomasa se expres&oacute; como peso seco.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La habilidad de las bacterias para bioacumular Cu se determin&oacute; con base en el contenido de este elemento en las c&eacute;lulas. El paquete bacteriano seco y pesado se coloc&oacute; en un tubo de digesti&oacute;n, al cual se le adicionaron 2 mL de HNO<sub>3</sub> concentrado. La digesti&oacute;n se realiz&oacute; a 120 &deg;C durante 7 h. Finalmente, las muestras se aforaron a 10 mL y se analizaron por EAA para cuantificar la concentraci&oacute;n de Cu.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fase 3. Capacidad de bacterias altamente tolerantes para solubilizar cobre met&aacute;lico, biosorberlo y bioacumularlo</b></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En esta etapa se estudi&oacute; la capacidad para solubilizar Cu met&aacute;lico de las cepas bacterianas consideradas tolerantes a Cu, mismas que se seleccionaron en la primera etapa. Se colocaron 10 mL de caldo nutritivo (pH = 5.5) en tubos de incubaci&oacute;n de 50 mL. Los tubos se esterilizaron en una autoclave a 1.1 kg cm<sup>&#45;2</sup> de presi&oacute;n por 15 min. En las mismas condiciones de tiempo, presi&oacute;n y temperatura se esterilizaron, en cajas de Petri, fragmentos de alambre de Cu de 3 cm de largo (aproximadamente 1.4 g cada uno). Una vez fr&iacute;os los tubos, el alambre de Cu se coloc&oacute; en condiciones est&eacute;riles. Los tubos se inocularon por separado con 300 &#956;L de cada suspensi&oacute;n con 10<sup>6</sup> UFC mL<sup>&#45;1</sup> de las cepas bacterianas seleccionadas como tolerantes a Cu. Se dejaron incubar por 48 h a 28 &deg;C. Despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n se extrajo el alambre, se sec&oacute; y determin&oacute; su peso. El paquete bacteriano tambi&eacute;n se separ&oacute; del sobrenadante por centrifugaci&oacute;n a 6500 g durante 8 min. Se lav&oacute; dos veces con 10 mL de agua destilada, utilizando las mismas condiciones de centrifugaci&oacute;n y tiempo que en la etapa 2. De igual manera se determin&oacute; la biomasa bacteriana y la capacidad de biosorci&oacute;n y bioacumulaci&oacute;n de Cu en &eacute;sta, siguiendo la metodolog&iacute;a que se present&oacute; en la etapa anterior. Todos los experimentos se realizaron una sola vez con tres repeticiones en cada tratamiento.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fase 1. Tolerancia a cobre en rizobacterias</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De las 133 cepas estudiadas s&oacute;lo 8.3% fue altamente sensible al Cu, ya que su crecimiento se inhibi&oacute; totalmente aun a la concentraci&oacute;n m&aacute;s baja de este elemento (0.7 mM). De las cepas inoculadas, 2.2% se desarrollaron a 0.7 mM, mientras que 15.7% a 1 mM, 9.8% a 2.5 mM y 6% a la concentraci&oacute;n m&aacute;s alta de Cu (3 mM). La mayor&iacute;a de las cepas crecieron a 2 mM (58%). Estos resultados permiten observar que no todas las cepas bacterianas que habitan en la zona radical de las plantas que crecen en suelos contaminados son tolerantes, al menos a este metal. As&iacute;, una poblaci&oacute;n que crece en suelos contaminados donde no todas las bacterias son tolerantes y pueden sobrevivir la condici&oacute;n de contaminaci&oacute;n, muestra las relaciones cooperativas entre los microorganismos (Gordon <i>et al.,</i> 1993). Adicionalmente, s&oacute;lo un bajo porcentaje de las cepas es altamente tolerante (3 mM). Spain y Alm (2003) reportaron que la concentraci&oacute;n inhibitoria para <i>Escherichia coli</i> en un medio con Cu fue de 1 mM. Tambi&eacute;n, Martin <i>et al.</i> (2004) reportaron que cepas de <i>Xanthomonas campestris</i> pv. vesicatoria se consideraron tolerantes al crecer a 1 mM de CuSO<sub>4</sub>. Los resultados del presente trabajo permiten corroborar que las rizobacterias de suelos contaminados presentan mayor tolerancia al Cu, al menos hasta la m&aacute;s alta concentraci&oacute;n probada (3 mM). Kuffner <i>et al.</i> (2008) tambi&eacute;n reportaron alta tolerancia de algunas bacterias a Cd, Zn y Pb aisladas de zonas contaminadas.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De las cepas que fueron tolerantes a 1 mM de Cu, algunas crecieron significativamente m&aacute;s que otras (<a href="/img/revistas/tl/v27n1/a3g1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). La cepa 86 produjo una colonia con &aacute;rea mayor de 1.5 cm<sup>2</sup>; en contraste, la cepa 54 no alcanz&oacute; los 0.5 cm<sup>2</sup>. </font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De las cepas que toleraron 2 mM de Cu, la 63 produjo el menor tama&ntilde;o de colonia, mientras que la 58 y 74 fueron las que mayor crecimiento tuvieron (<a href="/img/revistas/tl/v27n1/a3g2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). La mayor&iacute;a de las cepas que toleraron niveles entre 2.5 mM de Cu en el medio de cultivo presentaron crecimiento muy homog&eacute;neo, excepto las cepas 10 y 17, las cuales tuvieron &aacute;reas de crecimiento mayores de 1.5 cm<sup>2</sup>, pero menores de 2 cm<sup>2</sup>. En el caso de aquellas que fueron altamente tolerantes a Cu y crecieron a 3 mM, su crecimiento no super&oacute; 1 cm<sup>2</sup> de &aacute;rea de colonia (<a href="/img/revistas/tl/v27n1/a3g3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>). Futuras investigaciones deben considerar el efecto de estas cepas tolerantes sobre el crecimiento de las plantas hospederas y su protecci&oacute;n contra la toxicidad por Cu.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fase 2. Biosorci&oacute;n y bioacumulaci&oacute;n de cobre en</b> <b>cepas bacterianas altamente tolerantes</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <a href="/img/revistas/tl/v27n1/a3g4.jpg" target="_blank">Figura 4</a> muestra la biomasa de cepas con diferentes concentraciones de Cu. Se observ&oacute; que, con respecto a 0 mM, las diferentes concentraciones incrementaron significativamente la biomasa de todas las cepas, excepto en la cepa 21 <i>(Pseudomonas</i> sp.) a 0.02 mM. Las mayores biomasas las produjo la cepa 29 (sin identificaci&oacute;n molecular, con 655%), la 101 <i>(Salmonella</i> sp.) con 457% y la 135 <i>(Bacillus cereus)</i> con 313% de incremento con respecto a 0 mM de Cu. Se observ&oacute; que la biomasa aument&oacute; significativamente hasta 0.1 mM de cobre en casi todas las cepas bacterianas, pero en el caso espec&iacute;fico de la cepa 95 (<i>Pseudomonas plecoglossicida</i>) esto se observ&oacute; hasta 1.6 mM. Las cepas 21 (<i>Pseudomonas</i> sp.) y 29 (sin identificaci&oacute;n molecular) mantuvieron su biomasa significativamente igual desde 1.6 a 3 mM, pero la 101 y 135 mostraron un ligero decremento en &eacute;sta. La cepa 95 present&oacute; una alta producci&oacute;n celular en todos los niveles de cobre probados. </font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al analizar los mecanismos que tienen estas bacterias para tolerar Cu, se observ&oacute; que la cepa 21 present&oacute; mayor capacidad que las otras para biosorber Cu, pero la cepa 29 bioacumul&oacute; significativamente mayores cantidades que los otros aislados (<a href="/img/revistas/tl/v27n1/a3g5.jpg" target="_blank">Figura 5</a>). La cepa 101 present&oacute; la menor capacidad en biosorci&oacute;n. Se observ&oacute; que, mientras la cepa 21 no absorbi&oacute; altas concentraciones de Cu en sus c&eacute;lulas, la cepa 29 lo bioacumul&oacute;. Esto muestra la variabilidad natural de las especies para adaptarse a estas condiciones.</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados obtenidos muestran que las bacterias tolerantes, presentan alta capacidad de biosorci&oacute;n a Cu. Resultados similares fueron reportados por Chen <i>et al.</i> (2005), quienes observaron que el aislado CZ1 de <i>Pseudomonas putida</i> fue tolerante a metales como el Cu (1 mM) y el zinc (Zn) (1 mM), y tuvo alta capacidad de biosorci&oacute;n de &eacute;stos (40&#45;50%). Chovanova <i>et al.</i> (2004) observaron resultados similares en bacterias aisladas de lodos residuales con alta capacidad para tolerar y remover Cadmio (Cd) de soluciones acuosas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vullo <i>et al.</i> (2005) mostraron que cepas bacterianas de <i>Pseudomonas putida</i> y <i>P. fluorescens</i> presentaron alta capacidad para extraer EPTs como Cd (65%) y Zn (35%) de soluciones acuosas. Por lo anterior y con base en los resultados del presente trabajo, las rizobacterias pueden usarse no s&oacute;lo en el suelo contaminado sino tambi&eacute;n en el tratamiento de aguas contaminadas y en la posible extracci&oacute;n de Cu de minerales. Todo ello contribuir&iacute;a para disminuir contaminaci&oacute;n por EPT en suelo y agua.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fase 3. Capacidad de bacterias altamente tolerantes para solubilizar cobre met&aacute;lico</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Varios autores han reportado que los microorganismos son capaces de movilizar fuentes no disponibles de EPT (Ryan <i>et al.,</i> 2005). Por lo tanto, se analiz&oacute; esta capacidad en las rizobacterias, para conocer su comportamiento frente a Cu met&aacute;lico. Cuando estos aislados bacterianos crecieron en caldo nutritivo conteniendo un alambre de Cu met&aacute;lico, se observ&oacute; que todos solubilizaron entre 9 y 14 mg de Cu (<a href="/img/revistas/tl/v27n1/a3g6.jpg" target="_blank">Figura 6</a>), lo cual corresponde al 0.64 y 1% del peso inicial del alambre. La capacidad de biosorci&oacute;n se increment&oacute; 44 veces y de bioacumulaci&oacute;n 13 veces respecto a la capacidad de estos mecanismos cuando se utiliz&oacute; Cu en forma de sal (CuCl<sub>2</sub>) (<a href="/img/revistas/tl/v27n1/a3g7.jpg" target="_blank">Figura 7</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la actualidad, se contin&uacute;a analizando la tolerancia a otros EPTs de las rizobacterias usadas en este trabajo. Tambi&eacute;n se estudia su funci&oacute;n en la promoci&oacute;n de crecimiento en las plantas, as&iacute; como su efecto sobre la tolerancia de las plantas a la exposici&oacute;n de diferentes EPTs, ya que recientes hallazgos enfatizan su importancia (Wu <i>et al.,</i> 2006). Varios autores han mostrado que las bacterias aisladas de sitios contaminados pueden ser tolerantes a m&aacute;s de un EPT. Piotrowska&#45;Seget y Cycon Kozdroj (2005) reportaron que <i>Methylobacterium mesopilicum</i> y <i>Flavobacterium</i> aisladas de un suelo limoso, <i>Pseudomonas gladioli</i> de un suelo arcilloso y <i>Variovorax paradoxus</i> aislada de desechos de minas presentaron fuerte tolerancia a Zn, Cu y Cd, o Ag, respectivamente. Belimov <i>et al.</i> (2005) mostraron que bacterias tolerantes a Cd, tambi&eacute;n lo fueron a Zn, Cu, Ni y Co, por lo que no se descarta la posibilidad de encontrar cotolerancia en las cepas tratadas a lo largo de este estudio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>&#45;&nbsp;</b>La biosorci&oacute;n y bioacumulaci&oacute;n en la remoci&oacute;n de cobre de soluciones diluidas (en forma de sal, CuCl<sub>2</sub>) dependieron de la especie bacteriana.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#45;&nbsp;Las rizobacterias solubilizaron cobre met&aacute;lico y los procesos de biosorci&oacute;n y bioacumulaci&oacute;n fueron 44 y 13 veces mayores respecto a estos mismos procesos en pruebas con soluciones diluidas de cobre.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&#45;&nbsp;Las diferentes capacidades de estas bacterias, aisladas de la rizosfera de plantas que se desarrollan en sitios contaminados con elementos potencialmente t&oacute;xicos (Cu, Ni, Zn, Pb y Cd, entre otros), se debe explorar con mayor profundidad para la implementaci&oacute;n de alternativas biol&oacute;gicas para la remediaci&oacute;n de suelos y limpieza de aguas.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta investigaci&oacute;n forma parte del proyecto SEMARNAT&#45;CONACyT&#45;CO&#45;01 &#45;2002&#45;0739.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Angle, J., R. Chaney, Y. M. Li, and A. Baker. 2001. The risk associated with the introduction of native and hyperaccumulator plants. Agricultural Research Service. US Department of Agriculture. Washington, DC, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797301&pid=S0187-5779200900010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Belimov, A. A., N. Hotzeas, V. I. Safronova, S.V. Demchinskaya, G. Piluzza, S. Bulitta and B. R. Glick. 2005. Cadmium&#45;tolerant plant growth&#45;promoting bacteria associated with the roots of Indian mustard <i>(Brassica juncea</i> L. Czern.). Soil Biol. Biochem. 37: 241&#45;250.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797303&pid=S0187-5779200900010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Carrillo&#45;Gonz&aacute;lez, R. 2005. Niveles de contaminaci&oacute;n de los suelos y las plantas. pp. 34&#45;60. <i>In:</i> Gonz&aacute;lez&#45;Ch&aacute;vez, M.C., J. P&eacute;rez&#45;Moreno y R. Carrillo&#45;Gonz&aacute;lez (eds.). El sistema planta&#45;microorganismo&#45;suelo de &aacute;reas contaminadas con residuos de minas. Colegio de Postgraduados. Montecillo, Estado de M&eacute;xico.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797305&pid=S0187-5779200900010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Carrillo&#45;Gonz&aacute;lez, R. and M. C. Gonz&aacute;lez&#45;Ch&aacute;vez. 2006. Metal accumulation in wild plants surrounding mining wastes. Environ. Pollut. 144: 84&#45;92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797307&pid=S0187-5779200900010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chen, X. C., Y. P. Wang, Q. S. J. Y. Lin, W. X. Wu, and Y. X. Chen. 2005. Biosorption of copper(II) and zinc(II) from aqueous solution by <i>Pseudomonas putida</i> CZ1. Colloids Surfaces Biointerfases 46: 101&#45;107.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797309&pid=S0187-5779200900010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chovanova, K., D. Sladekova, V. Kmet, M. Proksova, J. Harichova, A. Puskarova, B. Polek, and P. Ferianc. 2004. Identification and characterization of eight cadmium resistant bacterial isolates from a cadmium&#45;contaminated sewage sludge. Biol. 59: 817&#150;827.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797311&pid=S0187-5779200900010000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Glick, B. R. 2003. Phytoremediation: synergistic use of plants and bacteria to clean up the environment. Biotech. Adv.21: 383&#45;393.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797313&pid=S0187-5779200900010000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez&#45;Ch&aacute;vez, M. C. 2005. Recuperaci&oacute;n de suelos contaminados con metales pesados utilizando plantas y microorganismos rizosf&eacute;ricos. Terra Latinoamericana 23: 29&#45;37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797315&pid=S0187-5779200900010000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez&#45;Ch&aacute;vez, M. C., J. P&eacute;rez&#45;Moreno y R. Carrillo&#45;Gonz&aacute;lez. 2005. Introducci&oacute;n y aspectos generales de los suelos contaminados con residuos de minas y su recuperaci&oacute;n. pp. 1&#45;8. <i>In:</i> Gonz&aacute;lez&#45;Ch&aacute;vez, M. C., J. P&eacute;rez&#45;Moreno, R. Carrillo&#45;Gonz&aacute;lez (eds.). El sistema planta&#45;microorganismo&#45;suelo de &aacute;reas contaminadas con residuos de minas. Colegio de Postgraduados. Montecillo, Estado de M&eacute;xico.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797317&pid=S0187-5779200900010000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez&#45;Ram&iacute;rez, P. 2005. Bacterias de la rizosfera en suelos contaminados con metales pesados. pp. 109&#45;116. <i>In</i>: Gonz&aacute;lez&#45;Ch&aacute;vez, M. C., J. P&eacute;rez&#45;Moreno, R. Carrillo&#45;Gonz&aacute;lez (eds.). El sistema planta&#45;microorganismo&#45;suelo de &aacute;reas contaminadas con residuos de minas. Colegio de Postgraduados, Montecillo, Estado de M&eacute;xico.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797319&pid=S0187-5779200900010000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gordon, A. S., J. V. Harwood, and S. Sayyar. 1993. Growth, copper&#45;tolerant cells, and extracellular protein production in copper&#45;stressed chemostat cultures of <i>Vibrio alginolyticus.</i> Appl. Environ. Microbiol. 59: 60&#45;66.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797321&pid=S0187-5779200900010000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hanssen A., N. Saidi, M. Cherif and A. Boudabous. 1998. Resistance of environmental bacteria to heavy metals. Bioresour. Tech. 64: 7&#45;15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797323&pid=S0187-5779200900010000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jezequel, K., J. Perrin, and T. Lebeau. 2005. Bioaugmentation with a <i>Bacillus</i> sp. to reduce the phytoavailable Cd of an agricultural soil: comparison of free and immobilized microbial inocula. Chemosphere 59: 1323&#45;1331.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797325&pid=S0187-5779200900010000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kadukov&aacute;, J. and E. Vir&iacute;kov&aacute;. 2005. Comparison of differences between copper bioaccumulation and biosorption. Environ. Int. 31: 227&#45; 232.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797327&pid=S0187-5779200900010000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Khan, A. G. 2005. Role of soil microbes in the rhizospheres of plants growing on trace metal contaminated soils in phytoremediation. J. Trace Elements Med. Biol. 18: 355&#45;364.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797329&pid=S0187-5779200900010000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kuffner, K., M. Puschenreiter, G. Wieshammer, M. Gorfer, and A. Sessitsch. 2008. Rhizosphere bacteria affect growth and metal uptake of heavy metal accumulating willows. Plant Soil 304: 35&#45;44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797331&pid=S0187-5779200900010000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Martin, H. L., V. A. Hamilton, and R. A. Kopittke. 2004. Copper tolerance in Australian populations of <i>Xanthomonas campestris</i> pv. vesicatoria contributes to poor field control of bacterial spot of pepper. Plant Dis. 88: 921&#45;924.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797333&pid=S0187-5779200900010000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Piotrowska&#45;Seget, Z. and A. Cycon Kozdroj. 2005. Metal&#45;tolerant bacteria occurring in heavily polluted soil and mine spoil. Appl. Soil Ecol. 28: 237&#45;246.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797335&pid=S0187-5779200900010000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ryan, R. P., D. J. Ryan, and D. N. Dowling. 2005. Multiple metal resistant transferable phenotypes in bacteria as indicators of soil contamination with heavy metals. J. Soil Sediment5: 95&#45;100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797337&pid=S0187-5779200900010000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">S&aacute;nchez&#45;Guzm&aacute;n, P. 2005. Caracter&iacute;sticas de los suelos aleda&ntilde;os a los dep&oacute;sitos de residuos de minas. pp. 126&#45;136. <i>In:</i> M. C. Gonz&aacute;lez&#45;Ch&aacute;vez, J. P&eacute;rez&#45;Moreno, R. Carrillo&#45;Gonz&aacute;lez (eds.). El sistema planta&#45;microorganismo&#45;suelo de &aacute;reas contaminadas con residuos de minas. Colegio de Postgraduados. Montecillo, Estado de M&eacute;xico.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797339&pid=S0187-5779200900010000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Spain, A. and E. Alm. 2003. Implications of microbial heavy metal tolerance in the environment. Rev. Undergraduate Res. 2: 1&#45;6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797341&pid=S0187-5779200900010000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tangaromsuk, J., P. Pokethitiyook, M. Kruatrachue, and E. S. Upatham. 2002. Cadmium biosorption by <i>Sphingomonas paucimobilis</i> biomass. Bioresour. Tech. 85: 103&#45;105.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797343&pid=S0187-5779200900010000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Thacker, U. and D. Madamwar. 2005. Reduction of toxic chromium and partial localization of chromium reductase activity in bacterial isolate DM1. World J. Microbiol. Biotech. 21: 891&#45;899.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797345&pid=S0187-5779200900010000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vullo D. L., H. M. Ceretti, E. A. Hughes, S. Ramirez, and A. Zalts. 2005. Indigenous heavy metal multiresistant microbiota of Las Catonas stream. Environ. Monit. Assessment 105: 81&#45;97.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797347&pid=S0187-5779200900010000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wu, S. C., K. C. Cheung, Y. M. Luo, and M. H. Wong. 2006. Effects of inoculation of plant growth&#45;promoting rhizobacteria on metal uptake by <i>Brassica juncea.</i> Environ. Pollut. 140 : 124&#45;135.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9797349&pid=S0187-5779200900010000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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