Grupos de interesterilidad y productividad de cepas de Pleurotus de regiones tropicales y subtropicales de México

Intersterility groups and productivity of Pleurotus strains from tropical and subtropical regions of Mexico

Graciela Huerta^1*, Daniel Martínez–Carrera², José E. Sánchez¹, Hermilo Leal–Lara³

¹ El Colegio de la Frontera Sur, Unidad Tapachula, Km. 2.5 Carr. Ant. Aeropuerto, Tapachula, Chiapas 30700, México.

² Colegio de Posgraduados campus Puebla. Km.1.5 Ant. Carr. Cholula, Puebla, México.

^*Autor para correspondencia:
Graciela Huerta ghuerta@ecosur.mx

Recibido 3 de noviembre 2008
Aceptado 22 de octubre 2009

Abstract

The intersterility groups Pleurotus djamor, P. pulmonarius, P. ostreatus were identified in a Mexican wild strain collection through crossing the strains with reference monosporics and dikarion – monokarion. Due to lack of reference strains or the similarity between compatibility alleles, P. levis, P. agaves and P. smithii were identified by phylogenetic analysis of ribosomal DNA ITS1–5.8S–ITS2 region sequences. The strains were cultivated on coffee pulp in order to evaluate its productivity and describe the variety in form, size, color, texture and flavor of the fresh basidiomes. In relation to productivity it was found six strains of P. djamor with early fructification (12 days) and five with outstanding productivity (116–178% of Biological Efficiency). One strain of P. pulmonarius showed a continued productivity (non intermittent) and other two with excellent productivity (110–140% of BE). The P. smithii and P. agaves strains did not show fructification to 26°C.

Resumen

En una colección de cepas silvestres mexicanas se identificaron los grupos de interesterilidad Pleurotus djamor, P. pulmonarius, P. ostreatus mediante cruzamientos con monospóricos de referencia y dicarión– monocarión. P. levis, P. agaves y P smithii fueron identificados por análisis filogenético de secuencias de la región ITS1–5.8S–ITS2 del ADN ribosómico, debido a falta de cepas de referencia o la similaridad entre alelos de compatibilidad. Las cepas fueron cultivadas sobre pulpa de café, para evaluar su productividad y describir la variedad en forma, tamaño, color, textura y sabor de los basidiomas en fresco. Con relación a su productividad, se encontraron seis cepas de P. djamor con fructificación temprana (12 días) y cinco con productividad sobresaliente, con una Eficiencia Biológica (EB) de 116–178%. Para P. pulmonarius una de las cepas mostró fructificación continua (no intermitente) y dos productividad sobresaliente (EB 110–140%). Las cepas de P. smithii y P. agaves no fructificaron a 26°C.

Palabras clave: basidiomycetes, especies biológicas, productividad, cultivo de hongos, México.

Introducción

El cultivo de Pleurotus en México es considerado una opción para aumentar la producción de alimento por unidad de superficie en las regiones rurales. Su tecnología de producción se basa en el uso de residuos agroindustriales como sustrato, permitiendo aprovechar la energía que estos contienen en la producción de alimento y aminorando los problemas que ocasiona su acumulación (Martínez–Carrera et al., 1984, 1992). En zonas de clima tropical y subtropical abundan desechos agrícolas que pueden utilizarse como sustratos para el cultivo de hongos. Sin embargo, el cultivo de Pleurotus en estas regiones ha tenido un éxito limitado, porque las cepas comerciales crecen y fructifican pobremente a altas temperaturas (28–30 °C).

En años recientes, el cultivo de este hongo fue propuesto como una alternativa para resolver la falta de alimento de alta calidad en el sector rural. Esto produjo el surgimiento de un gran número de módulos de producción en diversas áreas del país. Por lo que la producción de hongos frescos pasó de 27,825 toneladas en 1995 a 38,708 en el 2001, correspondiendo el 5% a Pleurotus (Martínez–Carrera, 2002).

La Secretaría de Desarrollo de los Pueblos Indios (SEPI) reportó que en Chiapas existen 100 módulos rurales de producción. En el municipio de Tenejapa hay 53 módulos manejados por mujeres de origen Tseltal, que producen alrededor de 63.14 Kg de hongos en tres cosechas, con eficiencias biológicas de 67.7%. Utilizan cepas de P. ostreatus y como sustrato, olote, rastrojo de maíz y pergamino de café tratados por inmersión alcalina, pH 10.9 ± 0.2 (De León–Monzón et al., 2004). La baja producción de hongos que se obtiene en esta comunidad puede deberse a la falta de técnicas de cultivo estandarizadas, baja calidad de inóculo y/o a falta de adaptación de las cepas comerciales para crecer en las condiciones climáticas que predominan en estas regiones.

Por otro lado, también se ha mencionado que algunas producen basidiomas pequeños de textura correosa y sabor no agradable (Corner, 1981).

Es necesario desarrollar investigaciones tendientes a caracterizar el germoplasma silvestre presente en regiones tropicales, para que mediante métodos de mejoramiento genético, se obtengan cepas que puedan adaptarse fácilmente a condiciones tropicales y mejorar sus características morfológicas y organolépticas, entre otras. Esto permitiría implementar la producción de hongos en condiciones ambientales poco controladas.

Esta investigación forma parte de un proyecto más amplio, que tiene como objetivo la caracterización genética y fisiológica de cepas silvestres mexicanas de Pleurotus que servirá de base para desarrollar un programa de mejoramiento genético de este hongo. Los objetivos de este trabajo fueron: a) Identificar los grupos de interesterilidad presentes en una colección de 31 cepas de Pleurotus de regiones tropicales y subtropicales, b) Describir las características de productividad, diversidad morfológica y de velocidad de crecimiento de cepas.

Materiales y métodos

Origen de las cepas y estimación de la velocidad de crecimiento micelial

Se estudiaron 31 cepas silvestres del género Pleurotus procedentes de los estados de: Chiapas (8), Hidalgo (1), Jalisco (3), Michoacán (1), Morelos (4), Nuevo León (2), Puebla (3), Tabasco (1), Tlaxcala (1), Veracruz (5) y Yucatán (2) (Tabla 1).

Se estimó la velocidad de crecimiento utilizando las mediciones diarias del diámetro micelial de cepas, crecidas sobre 17 mL de agar con extracto de malta (AEM), pH 5.5 e incubadas a 26°C, durante siete días. Para calcular la velocidad de crecimiento se utilizó la formula de Sinclair y Cantero (1989). Velocidad de crecimiento= (Df–Di)/ (Tf–Ti) Donde: Df = Diámetro final de crecimiento; Di = Diámetro inicial de crecimiento; Tf–Ti=Días de crecimiento micelial.

Compatibilidad sexual de las cepas

La separación de los grupos de compatibilidad se logró al aparear 12 monospóricos procedentes de un mismo cuerpo fructífero, en cajas de Petri con AEM, pH 5.5. Se hicieron todas las confrontaciones posibles, evitando las cruzas recurrentes (Eger et al., 1979). Después de 3 a 5 días de incubación a 26°C se determinó el tipo de reacción, observando al microscopio compuesto la presencia de fíbulas en el micelio de la zona de contacto. Se consideró reacción positiva, aquella que presentó fíbulas y como negativa la ausencia de éstas.

Identificación de grupos de interesterilidad

Representantes de cada grupo de incompatibilidad de diez cepas catalogadas bajo criterios morfológicos como afines a P. djamor y a P. ostreatus, fueron apareadas entre sí (Mon × Mon), para separar los grupos de interesterilidad (Corner, 1981; Eger et al., 1979). Posteriormente, los grupos de interesterilidad identificados entre las cepas silvestres mexicanas fueron apareados con el juego de monospóricos de referencia de las especies de P. ostreatus ex. epitypus, P. pulmonarius, P. dryinus, P. levis, P. cornucopiae y P. djamor. Las 21 cepas restantes se identificaron por apareamiento de dicarión–monocarión de cepas de referencia (Vilgalys et al., 1993).

Evaluación de productividad

El potencial productivo de las cepas se determinó al cultivarlas sobre pulpa de café estéril. La pulpa se obtuvo de un beneficio húmedo de café de la región y para su almacenaje fue secada al sol. Para la preparación de las muestras, pulpa con un pH inicial de 5.5 a 5.7, se hidrató hasta alcanzar un 70% de humedad, se colocó en bolsas y se esterilizó a 121°C por 20 minutos. Posteriormente se adicionaron 50 g de inóculo por kg de sustrato húmedo (Villa–Cruz et al., 1999). La producción de las cepas se evaluó durante dos cosechas y se contabilizaron los días transcurridos desde la siembra del sustrato hasta la primera cosecha. Con los datos de producción se calculó la eficiencia biológica (EB) y rendimiento (R) por cepa (Sánchez, 2001).

Descripción morfológica de los basidomas

Usando los basidiomas obtenidos en la primera cosecha, se describió la diversidad de formas, color, olor, sabor y textura en fresco, el color de la esporada, el tipo de estípite y su posición con relación al píleo (Corner, 1981). Los colores se describieron usando las cartas de color de suelo Munsell (2000). Con un microscopio Nikon Ys2 alpaphot con reglilla calibrada en ocular alphaphot, se hicieron medidas de esporas, basidios, queilocistidios y se determinó el tipo de sistema hifal cerca del estípite.

Diseño experimental y análisis estadístico

Se utilizó un diseño completamente al azar en el ensayo de velocidad de crecimiento micalial, bloques completos al azar en la evaluación de productividad y en ambos casos se tuvieron cinco muestras por tratamiento. Todas los datos fueron sometidos a un análisis de varianza (ANOVA de una sola vía) y a comparación de medias por el método de rangos múltiples de Tukey, utilizando el programa "Statistica 7 (StatSoft, 2003).

Resultados

Grupos de interesterilidad

Los resultados obtenidos de los apareamientos monocarión–monocarión, provenientes de cepas con afinidad morfológica a P. djamor, se presentan en la Tabla 2 y las que se agruparon como afines a P. ostreatus se muestran en la Tabla 3. Éstas y las cruzas entre monocarión–dicarión (Tabla 4), permitieron diferenciar tres grupos de interesterilidad identificados como P. pulmonarius (IE–8, HEMIN–47 e IE–202), P. ostreatus (CFR) y P. djamor (14 cepas). La falta de cepas de referencia o la similaridad en alelos de compatibilidad, no permitió identificar la especie de algunas de ellas. Estas fueron identificadas mediante criterios filogenéticos usando la región ITS1–5.8S–ITS2 del ADN ribosómico, como: P. agaves (HEMIN–30, CP–194, –98), P. levis (CP–30), P. smithii (CP–18) y P. pulmonarius (P2) (Huerta et al., 2010).

Sistema de apareamiento sexual y relaciones de compatibilidad

Las autocruzas de monospóricos revelaron un sistema de apareamiento heterotálico bifactorial, con alelos múltiples, para todas las cepas examinadas. Corroborando toda la información generada en estudios de compatibilidad de Pleurotus, previos a este trabajo (Eger et al., 1979; Vilgalys et al., 1993; Petersen, 1995a, 1995b; Petersen y Hughes, 1993).

Las pruebas de compatibilidad entre 26 monospóricos provenientes de 7 cepas de P. djamor mostraron porcentajes de apareamientos positivos de 25 a 100%, y el 29% del total de éstos fueron 100% positivos. Se identificaron 5 alelos A y 6 B (Tabla 2). Mientras que en P. pulmonarius, al aparear 11 monospóricos provenientes de 3 cepas, se encontró un número balanceado de alelos diferentes en el control de la compatibilidad, tres alelos A y B (Tabla 3). Los ensayos de apareamiento entre dicarión–monocarión de referencia, agruparon catorce cepas más en P. djamor, tres en P. pulmonarius y una en P. ostreatus (Tabla 4).

Velocidad de crecimiento

Los valores del crecimiento micelial en AEM y la productividad de 19 cepas mexicanas silvestres de P. djamor, 6 de P. pulmonarius, 1 de P. ostreatus, 1 de P. levis en pulpa de café, se observan en la Tabla 5. Las cepas HEMIN–30, CP–194, CP–98 de P. agaves y CP–18 de P. smithii no se incluyen, debido a que colonizaron el sustrato pero no fructificaron a 26°C y sólo la cepa HEMIN–30 formó un reducido número de basidiomas a 21°C. Es probable que las cepas de P. agaves y de P. smithii, hayan perdido su habilidad para formar la fase sexual por el continuo subcultivo que se da a las cepas en los bancos de germoplasma.

Las cepas formaron micelio blanco, bien ramificado, con fíbulas conspicuas, vacuolas abundantes y estructuras simples productoras de micro gotas nemostáticas. Se observaron algunas diferencias en el crecimiento del micelio entre las cepas: micelio poco denso, pegado al medio y con cristales de oxalato de calcio en P. djamor; crecimiento denso, subaéreo, aéreo para P. ostreatus y P. pulmonarius; P. levis formó micelio denso pero pegado al medio, con bordes de crecimiento irregulares, con cerdas sobre el micelio y obscurece el medio al envejecer, pero no produce clamidosporas. Estas dos últimas características permiten diferenciarlo de P. dryinus y de las otras especies de Pleurotus (Petersen y Hughes, 2006; Stalpers, 1978).

Productividad
1) P. djamor (Rumph.: Fr.) Boedijn
Capacidad productiva

El micelio de la mayoría de las cepas colonizó el sustrato en 7–10 días después de inoculado, formaron una cubierta algodonosa poco densa y fructificaron 5–7 días después de someterlos a 26–28°C y 95% de humedad relativa. Sin embargo, según las temperaturas que prevalecen en los sitios donde este hongo se encuentra en forma silvestre, hace suponer que las cepas que pertenecen a esta especie pueden fructificar de 30 a 35 ° C. La producción de basidiomas fue intermitente, con cosechas separadas por períodos de 7–10 días. Con relación a su capacidad productiva, las cepas de P. djamor mas sobresalientes fueron la IBUG–65, IBUG–3 e IBUG–7₂ con 178.3, 148.1 y 138.4 % de EB, respectivamente, y las de menor EB fueron la ECS–0128 (64.4%) y la ECS–0150 (63.0%) (Tukey, α =0.05). El inicio de la fructificación fue variable, cinco de las cepas originarias de Chiapas y una de Morelos requirieron de 12 días, mientras que cuatro produjeron hongos entre los 25 a 45 días, pero la mayoría fructificó a los 15 a 18 días. Con relación al rendimiento, las cepas IBUG–65, IBUG–7₂ y CP–170 mostraron los valores más altos, con 10.5, 8.1 y 7.8 %, respectivamente. Por otra parte, las cepas con rendimientos menores fueron la CP–171 y HEMIN–34 (Tabla 5).

Morfología del basidioma

Basidioma con píleo de (30) 45–85 (100) mm de diámetro y (3) 4–8 mm de grosor, estipitado a subestipitado en posición lateral y muy raramente central. Estípite blanco de (8) 15– 38 × 2.5– 4.0 mm, sólido, coriáceo, con superficie aterciopelada a glabra. Olor y sabor del basidioma harinoso, rancio o agradable a hongo. Hábito de crecimiento imbricado.

Píleo flabeliforme, conchado, de color blanco con tonos amarillentos en la base (7.5YR 8/1, 8/2), blanco grisáceo (28/10B, 7/10B, 8/5B, 18/1). Primordios rosa claro (10R 8/2), que al madurar cambian a blanco (10R de 8/1) o a rosa pálido (10R 7/2, 7/3). Superficie lisa a finamente tomentosa con la edad, con márgenes enteros, ondulados o lobulados. Himenio con láminas decurrentes que se anastomosan hacia la base del estípite, delgadas, con bordes enteros, de color blanco amarillento (10R de 8/1) a rosa pálido (10R 7/2, 7/3). Contexto blanco, blanco amarillento o rosa pálido, delgado. Textura subcoriácea, coriácea y muy raramente subcarnosa.

El color de la esporada varió de blanco cremosa (2.5Y 8/1), amarillo pálido (2.5Y 8/3, 7/3), o a rosa pálido (7.5YR 8/2, 7/3). Esporas fueron cilíndricas con ápice hilar, lisas, de pared delgada, hialinas, no amiloides, de (6.4–) 7.2–9.6 x 3–2.4 µm. Sistema hifal dimítico, basidios de (17.7–) 18.9– 23.6 (–25) × (3.5–) 4.7– 7 (–8.2) y queilocistidios (17.7–) 20–24 µm.

Hábitat y distribución

2) P. pulmonarius (Fr.) Quél.
Capacidad Productiva

El micelio de todas las cepas cubrió el sustrato en 7–13 días, formando una capa algodonosa muy densa; las fructificaciones se obtuvieron 5–7 días después de retirar la bolsa plástica. La producción fue intermitente, con flujos de producción separados entre sí por períodos de 8 a 10 días, sin embargo, la cepa CP–15 presentó fructificación continua. Las cepas más sobresalientes fueron la HEMIN–47 e IE–202 con 140.1 y 110.5% de EB y con un rendimiento de 7.4 y 5.8%, respectivamente. El tiempo requerido por las cepas evaluadas para fructificar fue de 17 a 19 días, excepto la CP–15 que fructificó a los 12 días (Tabla 5).

Morfología del basidioma

Basidiomas de (20) 55–80 (100) mm de diámetro y 4–10 mm de grosor, con estípite excéntrico a lateral, raramente central, sólido, coriáceo a subcoriáceo, blanquecino de 18–25 (35) × 7–19 mm y superficie aterciopelada a glabra. De olor suave a anís y sabor rafinoide o agradable a hongo, y con un crecimiento cespitoso.

Píleo umbonado, flabelado o conchado, blanco hacia el centro (2.5 YR 8/1, 5YR 8/1 a 10R 8/1) y tonos café grisáceos, café rojizo o café amarillento en los bordes (5YR 6/1 a 4/1, 2.5YR 6/1, 10R 7/1). Superficie lisa a finamente tomentosa con la edad, con márgenes enteros, ondulados o lobulados. Himenio con láminas decurrentes hacia la base del estípite, con lamélulas que rara vez se anastomosan; delgadas, con bordes enteros, de color blanco amarillento (10R de 8/1). Contexto blanco a marfil, delgado y textura carnosa y quebradiza.

Esporada blanca cremosa (2.5Y 8/1), con tonos lila grisáceo, blanco cremoso con tonos lilas, violácea con tonos grises, o gris con tonos cremosos, gris con tonos violáceos. Esporas cilíndricas con apice hilar, lisas, de pared delgada, hialinas, no amiloides, de (4.72–) 5.9 – 9.84 (–10.62) × (3.24–) 3.54–4.8 µm. Sistema hifal monomítico, basidios de (21.6–) 25.2–26.4 x (–5.2) 7.2– 9.12 µm.

Hábitat, distribución y algunas características fisiológicas

Fructifica en los meses lluviosos del verano. Crecen sobre troncos y ramas muertas de diversos árboles y arbustos: madera de cazahuate (Ipomea wolcottiana Rose), pulpa de café (Coffea arabica), con un hábito de crecimiento cespitoso. Esta especie estuvo representada por aislamientos provenientes de zonas subtropicales del Norte (Nuevo León), centro (Morelos) y Este (Veracruz) de México. Fue identificada con anterioridad como P. ostreatus por la similitud morfológica que existe entre ambas especies (Martínez– Carrera, 1988; Martínez– Carrera et al., 1986; Guzmán et al., 1994).

La cepa fructificó a los 17 días a una temperatura ambiente de 21°C. La EB fue de 74.6%, con un rendimiento de 4.4%. A diferencia de las demás cepas, ésta presentó fructificación continua.

Morfología del basidioma

Basidiomas de (20) 50–70 mm de diámetro × 4–8 mm de grosor, con estípite excéntrico a central, sólido, subcoriáceo, superficie aterciopelada a glabra, blanquecino de 18–20 (25) × 7–9 mm. De olor agradable a hongo y con crecimiento cespitoso a solitario.

Pileo de forma conchada a subumbilicada, gris azul claro (Gley 2 8/5PB) cuando joven a blanco. Superficie lisa, con bordes enteros, ondulados. Láminas decurrentes, delgadas, blancas y de bordes enteros. Textura carnosa y quebradiza.

Esporada de color blanco cremosa (2.5Y 8/1) con tonos lila grisáceo. Esporas cilíndricas con ápice hilar, lisas, de pared delgada, hialinas, no amiloides de (7.67–) 8.26–8.85 (–9.44) x (2.95–) 3.54–4.13 µm. Sistema hifal monomítico, basidios de (25–) 27.6–33 × 6.2–8 µm.

Hábitat y distribución

Es posible que esta especie se encuentre principalmente en el norte del país, asociada a bosques caducifolios y con fructificaciones en otoño.

4) P. levis (Berk. y M.A. Curtis) Singer ]]> Capacidad productiva

La cepa requirió de 44 días para colonizar el sustrato y 21 para producir basidiomas a 21°C. La EB fue de 71.34% al crecer sobre sustrato de paja de Digitaria decumbens (70%) y pulpa de café (30%). El uso de esta mezcla redujo los problemas de colonización provocados por la fermentación del substrato.

Morfología del basidioma

Basidiomas de 30–100 mm de diámetro y 4–10 mm de grosor, con estípite central a excéntrico, mas delgado hacia la base, duro y fibroso, con superficie tomentosa a subescuamulosa por los remanentes del velo, blanquecino de 30 a 70 mm × 7–10 mm. Cuando joven presenta velo parcial de color blanco, que desaparece al madurar. Con olor suave a fruta y sabor a hongo. Hábito de crecimiento cespitoso.

Pileo convexo a infundibuliforme, con márgenes enrollados de color blanco amarillento (Hue5Y 8/2) cambiando a amarillo pálido al dañarlo (Hue 5Y 8/6). Superficie tomentosa a fibrilosa, subescuamuloso en los márgenes, algunas veces apendiculado. Láminas decurrentes, enteras, densas, delgadas, que se anastomosan en el área cercana al estípite, pero no forman red. Contexto blanco, delgado (4 mm de ancho). Textura carnosa y quebradiza.

Esporada blanca cremosa con tonos amarillentos (Hue 5Y 8/2). Esporas cilíndricas con apéndice hilar, lisas, de pared delgada, hialinas, no amiloides de (10) 10.4– 12 x 3.0–5.50 ìm. Sistema hifal dimítico, basidios de (16.8) 18–21.6 (22.8) ìm y queilocistidios 25.2–28 x 9.8–11.2 µm.

Hábitat y distribución

Crece formando basidiomas simples en otoño, se recolectó sobre madera en descomposición en la ciudad de Cholula, Puebla. Esta especie fue reportada en las localidades de Cartago y Chontla en Costa Rica, sobre Quercus copeyensis C.H. Mull., Q. seemannii Liebm., y los ejemplares se depositaron en el Jardín Botanico de New York (The New York Botanical Garden, NYBG) y en el Instituto Nacional de Biodiversidad (INBio) en Costa Rica (Punta Arenas). En México fue citada como Lentinus levis por Sobal et al. (1997), pero no ha sido descrita con anterioridad.

Discusión

Todas las cepas estudiadas presentaron un sistema de cruza bifactorial y ninguna mostró capacidad excepcional para cruzarse con monospóricos provenientes de diferentes grupos de interesterilidad, contrario a lo reportado por Petersen y Ridley (1996). El análisis de sistemas de cruza reveló la presencia de los grupos de interesterilidad I. P. ostreatus, II. P. pulmonarius, V. P. djamor, VIII. P. levis, XI. P. agaves, en México, anteriormente establecidas por Vilgalys et al. (1996). El nombre de P. agaves fue sinonimizado con P. opuntiae por Petersen y Hughes (2006) aduciendo la antigüedad del nombre, sin embargo, el especimen tipo de esta especie no corresponde al material con el que fue descrito el grupo de interesterilidad XI. Ellos proponen asignar un lectotipo, debido a las condiciones precarias en las que se encuentra el tipo. La situación no clara de esta especie sugiere la necesidad de desarrollar estudios mas detallados tendientes a esclarecer si P. opuntiae y P. agaves son la misma especie con diferente origen geográfico o son dos especies diferentes.

Sin considerar las diferencias en cepas y sustratos, se observó que cinco de las cepas de P. djamor (EB 116–178%) superaron la EB reportada por Gaitán–Hernández y Salmones (1999) y Salmones et al. (2004), para cruzas seleccionadas y sus parentales de esta especie (62–123% y 73–114% de EB, respectivamente), pero fueron inferiores a las EB citadas por Valencia et al. (2001–2003) para la cepa denominada POROS (184.1–205.3%). Las 15 cepas restantes de P. djamor tuvieron una productividad semejante a la reportada en otros trabajos (Hernández–Ibarra et al., 1995; Salmones et al., 1997).

Por otra parte, a pesar de la variabilidad en velocidad de crecimiento y eficiencia biológica entre las cepas de P. pulmonarius, la morfología y el color de los basidiomas fue muy similar entre ellas. El número reducido de recolectas incluidas en este trabajo y las incongruencias ocasionadas por el uso exclusivo de caracteres morfológicos en la identificación de esta especie limitó el uso de los reportes bibliográficos, para describir su distribución geográfica en México.

Las mejores cepas P. pulmonarius alcanzaron eficiencias biológicas de 110–140%, coincidiendo con lo reportado por la literatura (Tabla 5) (Martínez–Carrera, 1988; Martínez–Carrera et al., 1986). La única cepa de P. ostreatus (CFR) que incluyó la colección estudiada, tuvo una EB ligeramente inferior (74.6%) a la de los híbridos mejorados para fructificar a 27°C, que generaron Gaitán–Hernández y Salmones en 2008 (EB 84.17%).

El análisis de las características de crecimiento y distribución de las especies de Pleurotus, sugiere que son necesarios dos programas de mejoramiento genético; uno basado en germoplasma nativo e introducido de las especies P.ostreatus y P. pulmonarius, que genere cepas para regiones de clima templado–frío y templado y otro basado en el germoplasma nativo de P. djamor, para producir cepas cultivables en regiones tropicales y subtropicales.

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