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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The technique of random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis was used to identify whitefly biotypes present in tomato fields on the Baja California, Mexico. We determined that 75% B. tabaci biotype B, 12% biotype A, 10% Trialeurodes vaporariorum, and 3% indeterminate species. According to PCR analysis Tomato chino La Paz virus was detected in 95% of the population and the virus was present in almost all the geographical areas.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Notas fitopatol&oacute;gicas</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Identificaci&oacute;n y Distribuci&oacute;n Geogr&aacute;fica de <i>Bemisia tabaci </i>Gennadius y su Relaci&oacute;n con Enfermedades Begomovirales en Tomate <i>(Solanum lycopersicum </i>L.) de Baja California, M&eacute;xico</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Identification and Geographical Distribution of <i>Bemisia tabaci</i> Gennadius and its Relationship with Begomovirales Diseases inTomato (<i>Solanum lycopersicum</i> L.) in the Baja California Peninsula, Mexico.</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Ram&oacute;n Jaime Holgu&iacute;n&#150;Pe&ntilde;a<b><b><b></b></b></b>, Luis Guillermo Hern&aacute;ndez&#150;Montiel y Hever Latisnere&#150;Barrag&aacute;n<b><b><b></b></b></b></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Centro de Investigaciones Biol&oacute;gicas del Noroeste, Mar Bermejo 195, Col. Playa de Santa Rita, C.P. 23090, La Paz, BCS, M&eacute;xico. </i>Correspondencia: <a href="mailto:jholguin04@cibnor.mx">jholguin04@cibnor.mx</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: Noviembre 3, 2009     <br> Aceptado: Febrero 10, 2010</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mediante el an&aacute;lisis del DNA amplificado al azar, se realiz&oacute; la identificaci&oacute;n de biotipos de mosca blanca en las regiones productoras de tomate en la Pen&iacute;nsula de Baja California, M&eacute;xico. Se determin&oacute; un 75% de <i>B. tabaci</i> biotipo B, 12% del biotipo A, 10% de <i>Trialeurodes vaporariorum </i>y un 3% de especies no determinadas. Los an&aacute;lisis de PCR detectaron virus del enchinado del tomate de La Paz en el 95% de la poblaci&oacute;n y distribuido en casi todas las zonas geogr&aacute;ficas muestreadas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Mosca blanca, biotipos, marcador molecular, virus del enchinado del tomate de La Paz.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The technique of random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis was used to identify whitefly biotypes present in tomato fields on the Baja California, Mexico. We determined that 75% <i>B. tabaci </i>biotype B, 12% biotype A, 10% <i>Trialeurodes vaporariorum, </i>and 3% indeterminate species. According to PCR analysis Tomato chino La Paz virus was detected in 95% of the population and the virus was present in almost all the geographical areas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> Whiteflies, biotypes, DNA markers, Tomato chino de La Paz virus.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mosca blanca (mb) <i>Bemisia tabaci </i>(Gennadius, 1899) (Hom&oacute;ptera: Aleyrodidae) es una de las plagas m&aacute;s importantes que ocasiona da&ntilde;o a las hortalizas cultivadas en La Rep&uacute;blica Mexicana. Su principal impacto es como transmisor de enfermedades virales. espec&iacute;ficamente el biotipo B, es considerado el m&aacute;s importante, debido a su amplia gama de plantas hu&eacute;sped, velocidad reproductiva y generaci&oacute;n de resistencia a insecticidas. el prop&oacute;sito de este trabajo fue la identificaci&oacute;n a trav&eacute;s de la t&eacute;cnica PCR&#150;RAPD de los biotipos de mb distribuidos sobre la Pen&iacute;nsula de Baja California, para correlacionar su presencia con la diseminaci&oacute;n de enfermedades begomovirales en plantaciones comerciales de tomate <i>(Solanum lycopersicum </i>L.).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante los ciclos agr&iacute;colas 2007&#150;2008, se colectaron ninfas y adultos de mb en plantaciones de tomate tipo saladette en regi&oacute;n Norte y Sur de Baja California. Se colectaron 30 mb adultas por cada sitio con un succionador de insectos y 30 ninfas del cuarto estadio en forma manual. La identificaci&oacute;n preliminar de los biotipos A y B se llevo a cabo mediante el an&aacute;lisis de la cuarta seta sub&#150;marginal en la parte anterior de la pupa. Para la extracci&oacute;n de los &aacute;cidos nucleicos se sigui&oacute; la metodolog&iacute;a descrita por Delatte <i>et al., </i>(2005). Se utilizaron adultos y ninfas del cuarto estadio de mb. En la caracterizaci&oacute;n molecular de mb se usaron los iniciadores H9 (5'TGTAGCTGGG3') y H16 |(5TCTCAGCTGG 3'). Se utiliz&oacute; un testigo de <i>B. tabaci </i>biotipo B de la colecci&oacute;n entomol&oacute;gica del CIBNOR.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La detecci&oacute;n de geminivirus se realiz&oacute; por PCR, utilizando los iniciadores degenerados AV494 y AC1048. Las condiciones de PCR se realizaron de acuerdo a lo propuesto por Torres&#150;Pacheco <i>et al. </i>(1996). Se determin&oacute; el porcentaje de infestaci&oacute;n, donde el 50% corresponde al 35.7% de las hojas infestadas con tres o m&aacute;s adultos (Ellsworth y Mart&iacute;nez&#150;Carrillo, 2001).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Del total de adultos analizados, el 87% correspondi&oacute; a <i>B. tabaci, </i>el 10% a <i>Trialeurodes vaporariorum </i>y el 3% a especies no determinadas. De acuerdo a la observaci&oacute;n de las ninfas se identific&oacute; a <i>B. tabaci </i>biotipo A en el 25% del total de los espec&iacute;menes colectados y el biotipo B en el 75% (<a href="/img/revistas/rmfi/v28n1/a6f1.jpg" target="_blank">Fig. 1 A</a> y <a href="/img/revistas/rmfi/v28n1/a6f1.jpg" target="_blank">B</a>). La identificaci&oacute;n por PCR&#150;RAPD correspondi&oacute; a <i>B. tabaci </i>biotipo A y B (<a href="/img/revistas/rmfi/v28n1/a6f1.jpg" target="_blank">Fig. 1 D</a>). Los biotipos A y B fueron determinados como vectores de begomovirus al observarse una banda de 387pb que corresponde a la amplificaci&oacute;n del ToChLPV (<a href="/img/revistas/rmfi/v28n1/a6f1.jpg" target="_blank">Fig. 1 D</a>). Este virus se encontr&oacute; en el 95% de la poblaci&oacute;n. Dentro de las regiones, la presencia de <i>B. tabaci </i>biotipo B fue mayor en relaci&oacute;n al biotipo A. En el norte, San Quint&iacute;n tuvo la poblaci&oacute;n m&aacute;s alta del biotipo B con el 60%, mientras que el biotipo A fue mayor en Ensenada. En el sur, La Paz y Todos Santos presentaron las mayores poblaciones del biotipo B con el 87% y 76%, respectivamente. Para el biotipo A, existi&oacute; mayor presencia en San Juan de la Costa y El Carrizal (23% y 21%, respectivamente). <i>T. vaporariorum </i>fue mayor en San Juan de la Costa, El Carrizal y Maneadero. La infestaci&oacute;n de <i>B. tabaci </i>sobre las plantas de tomate (<a href="/img/revistas/rmfi/v28n1/a6f1.jpg" target="_blank">Fig. 1 C</a>), fue m&aacute;s alta en La Paz (80%), El Carrizal (72%) y Todos Santos (65%). El ToChLPV se detect&oacute; en toda la Pen&iacute;nsula de Baja California, exceptuando Ensenada, Rodolfo S&aacute;nchez Taboada&#150;Maneadero y Vizca&iacute;no. La poblaci&oacute;n del biotipo B fue superior al biotipo A en la pen&iacute;nsula, debido a las ventajas adaptativas que presentan los biotipos introducidos (B), en relaci&oacute;n a los nativos (A).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los biotipos A y B de <i>B. tabaci </i>y <i>T. vaporarioum </i>se encuentran dentro del complejo mb en la Pen&iacute;nsula de Baja California. El biotipo B, es el principal diseminador de las enfermedades begomovirales en las regiones productoras de tomate. La mayor ocurrencia del biotipo B y la detecci&oacute;n del ToChLPV, permiten se&ntilde;alar una posible relaci&oacute;n espec&iacute;fica entre ellos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Delatte, H., Holota, H., Naze, F., Peterschmitt, M., Reynaud, B., and Lett, J.M. 2005. The presence of both recombinant and nonrecombinant strains of <i>Tomato yellow leaf curl virus </i>on tomato in Reunion Island. Plant Pathology 54:262.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8476137&pid=S0185-3309201000010000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ellsworth, P.C., and Mart&iacute;nez&#150;Carrillo, J.L. 2001. IPM for <i>Bemisia tabaci: </i>a case study from North America. Crop Protection 20:853&#150;869.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8476139&pid=S0185-3309201000010000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Torres&#150;Pacheco, I., Garz&oacute;n&#150;Tiznado, A., Brown, J.K., Becerra&#150;Flora, A., and Rivera&#150;Bustamante, R.F. 1996. Detection and distribution of geminiviruses in Mexico and and the southern United States. Phytopathology 86:1186&#150;1192.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8476141&pid=S0185-3309201000010000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
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