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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Diseño y evaluación de una ovitrampa para el monitoreo y control de Aedes aegypti, principal vector del dengue]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective. To design and evaluate in field conditions an ovitrap with chemical attractants and a population regulator for the monitoring and control of dengue vectors. Materials and methods. CRISPP ovitrap (OC) effectiveness was evaluated in comparison with a standard ovitrap (OE). A septum containing two chemical attractants and a mesh tricot on the surface of the water was collocated in the OC. The number of eggs in both ovitraps and the mortality of the emerged adults were counted. Also the residual effect was determined. Results. There were a total of 7168 eggs, 4659 (65%) were layed in the OC and 2509 (35%) in the OE and the emergence of adults in the OC was 0% compared with 93% in the OE. The residual effect was four days. Conclusions. The OC contained more eggs and caused minor emergency dengue vector adults in comparison with the OE.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culo original</font></p>    	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>    	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Dise&ntilde;o y evaluaci&oacute;n de una ovitrampa</b> <b>para el monitoreo y control de <i><i>Aedes aegypti</i></i>, principal vector del dengue</b></font></p>    	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>    	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Design and evaluation of a ovitrap for monitoring and control of <i><i>Aedes aegypti</i></i>, dengue fever vector</b></font></p>    	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>    	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Jos&eacute; Luis Torres&#45;Estrada, D en C,<sup>(1)</sup> Nery del Carmen Rodiles&#45;Cruz, MB.<sup>(2)</sup><sup></sup></b></font></p>    	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>(1) Centro Regional de Investigaci&oacute;n en Salud P&uacute;blica, Instituto Nacional de Salud P&uacute;blica. Tapachula, Chiapas, M&eacute;xico.</i></font></p>    	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>(2) Centro de Biociencias, Universidad Aut&oacute;noma de Chiapas. Tapachula, Chiapas, M&eacute;xico.</i></font></p>    	    <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><a href="#f-1" id="f-1-backlink" name="f-1-backlink">Autor de correspondencia</a></font></p>        <p align="justify">&nbsp;</p>  <hr>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>        <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Objetivo.</b> Dise&ntilde;ar y evaluar en condiciones de campo una ovitrampa con atrayentes qu&iacute;micos y un regulador de poblaciones para el monitoreo y control de los vectores del dengue.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material y m&eacute;todos.</b> A la ovitrampa CRISPP (OC) se le colocaron dos atrayentes qu&iacute;micos y una malla tricot sobre la superficie del agua. La efectividad de la OC fue evaluada y comparada contra una ovitrampa est&aacute;ndar (OE); adem&aacute;s se determin&oacute; el efecto residual de los atrayentes.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados.</b> Se contabilizaron un total de 7168 huevos; 4659 (65%) fueron puestos en la OC y 2509 (35%) en la OE; la emergencia de adultos en la OC fue 0% contra 93% en la OE, y el efecto residual fue de cuatro d&iacute;as.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusi&oacute;n.</b> La OC atrajo un mayor n&uacute;mero de huevos y control&oacute; a 100% de los adultos emergidos en comparaci&oacute;n con la OE.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> trampas; oviposici&oacute;n; Aedes; dengue; M&eacute;xico</font>.</p>  <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Objective.</b> To design and evaluate in field conditions an ovitrap with chemical attractants and a population regulator for the monitoring and control of dengue vectors.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materials and methods.</b> CRISPP ovitrap (OC) effectiveness was evaluated in comparison with a standard ovitrap (OE). A septum containing two chemical attractants and a mesh tricot on the surface of the water was collocated in the OC. The number of eggs in both ovitraps and the mortality of the emerged adults were counted. Also the residual effect was determined.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Results.</b> There were a total of 7168 eggs, 4659 (65%) were layed in the OC and 2509 (35%) in the OE and the emergence of adults in the OC was 0% compared with 93% in the OE. The residual effect was four days.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusions.</b> The OC contained more eggs and caused minor emergency dengue vector adults in comparison with the OE.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> traps; oviposition; Aedes; dengue; Mexico</font>.</p>  <hr>      <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><i>Aedes aegypti</i></i> Linneus (Diptera: Culicidae) es el principal vector de cualquiera de los cuatro serotipos de virus que causan el dengue.<sup>1,2</sup> Esta enfermedad se ha dispersado ampliamente en el mundo afectando a 50 millones de personas anualmente, y aproximadamente 2 500 millones est&aacute;n en riesgo.<sup>3</sup></font></p>        <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A falta de una vacuna, el control del dengue est&aacute; basado en la disminuci&oacute;n de las poblaciones de los mosquitos vectores. Para ello, se aplican grandes cantidades de insecticidas, conjuntamente con campa&ntilde;as de descacharrizaci&oacute;n y un constante llamado a la participaci&oacute;n de la comunidad.<sup>4</sup> Estas campa&ntilde;as hacen que la incidencia de la enfermedad permanezca un tanto estable. Sin embargo, el costo econ&oacute;mico y ecol&oacute;gico es elevado y la cobertura de estas medidas dif&iacute;cilmente llegar&aacute; a ser total y sustentable.<sup>5&#45;8</sup> Debido a estas pr&aacute;cticas se necesitan otras estrategias de control que se integren al tradicionalmente utilizado y que lo haga m&aacute;s eficiente. El control etol&oacute;gico, es decir, aquel fundado en el conocimiento del comportamiento, puede ser una buena opci&oacute;n.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><i>Aedes aegypti</i></i> tiene h&aacute;bitos dom&eacute;sticos y se reproduce en una gran variedad de recipientes que almacenan agua limpia cercanos a la vivienda de los humanos.<sup>9&#45;11</sup> El conocimiento sobre las preferencias de los sitios de oviposici&oacute;n ha resultado en el desarrollo de ovitrampas para el monitoreo de las poblaciones<sup>12,13</sup> y para la evaluaci&oacute;n de las medidas de control.<sup>14</sup> A partir de las primeras ovitrampas se han realizado modificaciones en ellas con la finalidad de aumentar su efectividad.<sup>12,15&#45;19</sup> La incorporaci&oacute;n tanto de atrayentes como de reductores de poblaciones modifica la funci&oacute;n de las ovitrampas convirti&eacute;ndolas, de un sistema de monitoreo pasivo, a una medida de control bajo el concepto de "atraer y matar".<sup>20</sup> El 3&#45;metil&#45;indol (Skatole) identificado en infusiones de pasto bermuda,<sup>21</sup> y el n&#45;heneicosano, identificado en agua conteniendo larvas de esta especie, son sus principales atrayentes de oviposici&oacute;n.<sup>22,23</sup> Recientemente se dise&ntilde;&oacute; y evalu&oacute; en condiciones de laboratorio una ovitrampa a partir de material reciclable y utilizando cuatro atrayentes qu&iacute;micos en forma individual e integrada.<sup>24</sup> En el presente estudio se modific&oacute; dicha ovitrampa agreg&aacute;ndole dos atrayentes qu&iacute;micos: un liberador y un regulador de poblaciones para ser evaluada en condiciones de campo.</font></p>    	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material y m&eacute;todos</b></font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>&Aacute;rea de estudio</b></font></p>        <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dise&ntilde;o y la impregnaci&oacute;n de los septos con atrayentes qu&iacute;micos fueron realizados en el Laboratorio de Ecolog&iacute;a Qu&iacute;mica del Centro Regional de Investigaci&oacute;n en Salud P&uacute;blica (CRISP), localizado en la ciudad de Tapachula, Chiapas (14&deg;54&rsquo;29"N, 92&deg;15&lsquo;38"O); mientras que los estudios para evaluar la efectividad de la ovitrampa fueron realizados en dos colonias con altos &iacute;ndices entomol&oacute;gicos, seleccionadas al azar a partir de informes de la Jurisdicci&oacute;n Sanitaria VII de la SSa de Tapachula, Chiapas.<sup>25</sup></font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Dise&ntilde;o de la ovitrampa CRISPP y costos</b></font></p>        <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La ovitrampa fue denominada CRISPP (OC) y se dise&ntilde;&oacute; reutilizando recipientes de politereftalato de etileno (PET) con capacidad de 2.5 L, pintados de color negro mate (pintura acr&iacute;lica en espray Comex). La OC presenta tres caracter&iacute;sticas principales; a) color oscuro y superficie rugosa; b) un septo de corcho conteniendo 1 &micro;L de 10 ppm de n&#45;heneicosano 98% (Sigma&#45;Aldrich Chemicals, St Louis, MO, USA presentaci&oacute;n de 1g) y 1 &micro;L de 500 ppm de 3&#45;metil&#45;indol 98% (Sigma&#45;Aldrich, St Louis, MO, USA presentaci&oacute;n 5g) sostenido por un alambre de acero, y c) una malla tricot cubriendo la superficie del agua para evitar la salida del adulto emergido.26,27 Sobre las paredes internas de la ovitrampa se coloc&oacute; una tira de papel filtro Whatman #2 (Sigma&#45;Aldrich Chemicals, St Louis, MO, USA) que sirvi&oacute; como sustrato de oviposici&oacute;n (<a href="/img/revistas/spm/v55n5/a8f1.jpg" target="_blank">figura 1</a>). El costo de la elaboraci&oacute;n de la OC fue aproximadamente de 13 pesos (incluye: septo, pintura, malla, papel filtro, solventes y atrayentes): el septo result&oacute; ser el material m&aacute;s costoso (9.17 pesos c/u), mientras que el costo por la impregnaci&oacute;n de un septo con la mezcla de ambos atrayentes fue de 0.00004668 pesos (1g de n&#45;heneicosano cuesta aproximadamente 618.00 pesos y 5g de 3&#45;metil&#45;indol 405.00 pesos).</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de la efectividad de la ovitrampa CRISPP</b></font></p>        <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se seleccionaron al azar 20 casas de las dos colonias. La OC y la OE fueron colocadas a cinco cent&iacute;metros de distancia entre ambas<sup>28</sup> en los patios de las casas sobre &aacute;reas sombreadas y h&uacute;medas. Diariamente (siete d&iacute;as continuos) el sustrato de las ovitrampas fue revisado y remplazado. Los sustratos con los huevos contenidos fueron transportados al laboratorio para su conteo utilizando un microscopio estereosc&oacute;pico. Se realizaron tres repeticiones de los muestreos, cada uno con duraci&oacute;n de siete d&iacute;as consecutivos durante el periodo junio&#45;septiembre del 2011.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de la efectividad del reductor para poblaciones de mosquitos aedinos</b></font></p>        <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Posterior a los siete d&iacute;as del muestreo ambas ovitrampas permanecieron en el mismo sitio durante cinco d&iacute;as m&aacute;s y se contabilizaron las larvas contenidas en ellas. Las larvas fueron concentradas en una OC y en una OE separadamente dentro de jaulas de 80 cm por lado con la finalidad de contabilizar el n&uacute;mero de adultos que emerger&iacute;an de ellas y evaluar el efecto de la malla tricot sobre la mortalidad del adulto.</font></p>    	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Volatilidad de los atrayentes impregnados en los septos</b></font></p>        <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La abundancia de los atrayentes fue monitoreada utilizando siete OC colocadas a la intemperie en un &aacute;rea de 200 m<sup>2</sup>. Diariamente (siete d&iacute;as consecutivos) un septo fue extra&iacute;do de su ovitrampa y colocado dentro de un matraz Erlenmeyer de 250 mL sellado con papel aluminio. Una jeringa SPME (Solid Phase Microextraction) con una fibra de polidimetil siloxano PDMS (Supelco, Bellefonte, PA, EUA)<sup>29</sup> fue insertada a trav&eacute;s del papel aluminio para la captura de los vol&aacute;tiles liberados por el septo. La fibra fue expuesta durante una hora a una temperatura de 24 &deg;C.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis cromatogr&aacute;ficos</b></font></p>        <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los vol&aacute;tiles colectados por SPME fueron deabsorbidos en el puerto de inyecci&oacute;n de un cromat&oacute;grafo de gases (Agilent Technologies modelo 6890) acoplado a un espectr&oacute;metro de masas (Agilent Technologies modelo 5973N) a 200 &deg;C.<sup>30</sup> Este mismo m&eacute;todo fue utilizado para analizar 1 &micro;L de 3&#45;metil&#45;indol y n&#45;heneicosano grado t&eacute;cnico. La identificaci&oacute;n fue corroborada comparando los espectros de masa de los est&aacute;ndares comerciales contra los registrados en la biblioteca espectral NIST 2002.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>        <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos del n&uacute;mero de huevos contabilizados en la OC y la OE fueron convertidos en porcentajes y analizados por medio de una prueba t de Student no pareada despu&eacute;s de la prueba de normalidad de Shapiro&#45;Wilk. Los resultados para determinar el d&iacute;a de mayor efecto de atracci&oacute;n y la residualidad fueron analizados por medio de un Anova utilizando una prueba de Tukey como comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias. Finalmente, se realiz&oacute; la prueba t de Student no pareada para determinar las diferencias entre los mosquitos emergidos muertos o vivos entre ambas ovitrampas<sup>31</sup> con la finalidad de evaluar el efecto reductor de poblaciones de la malla. Todos los an&aacute;lisis fueron realizados con el paquete PASW Statistics 18.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Criterio de exclusi&oacute;n:</i> los datos no se consideraron para el an&aacute;lisis cuando ambas ovitrampas no contuvieron huevos, debido a que esto indica ausencia de hembras gr&aacute;vidas m&aacute;s que ausencia de efecto. Tampoco se consideraron los datos cuando alguna de las ovitrampas no se encontr&oacute;, cuando estaban tiradas o las casas estaban cerradas.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Consideraciones &eacute;ticas:</i> todas las consideraciones &eacute;ticas fueron revisadas y aprobadas por la comisi&oacute;n de &eacute;tica del INSP para el proyecto FOMIX&#45;COCYTECH 78917 "Desarrollo y evaluaci&oacute;n a mediana escala de una ovitrampa con atrayentes qu&iacute;micos para el monitoreo y control de <i>Aedes aegypti</i>, vector del dengue"</font>.</p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>    	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se revisaron un total de 348 ovitrampas de 420 posibles (82.8%) y 73 (17.2%) fueron excluidas. Un total de 7168 huevos fueron contabilizados, de los cuales 4659 (65%) correspondieron a la OC mientras que 2509 (35%) correspondieron a los depositados en la OE, siendo esta diferencia estad&iacute;sticamente significativa (<i>t</i>= 8.01; gl= 19; <i>p</i>=0.0001).</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de atracci&oacute;n obtenidos entre las dos ovitrampas indican que la OC mostr&oacute; un porcentaje mayor en el n&uacute;mero de huevos puestos en el sustrato en comparaci&oacute;n de la OE; en el primero (<i>t=</i> 24; gl= 19; <i>p=</i> 0.002); segundo (<i>t=</i>17.83; gl= 19; <i>p=</i>0.003), tercero (<i>t=</i>10.09; gl= 19; <i>p=</i> 0.01) y cuarto d&iacute;a (<i>t=</i>5.6; gl= 19; <i>p=</i>0.03). Los resultados del an&aacute;lisis de varianza muestran que el mayor porcentaje de atracci&oacute;n se present&oacute; al primer d&iacute;a y la residualidad observada fue de cuatro d&iacute;as (F=17.05; gl= 19; <i>P=</i>0.0001) (<a href="#a8f2">figura 2</a>).</font></p>    	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="a8f2" id="a8f2"></a></font></p>    	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/spm/v55n5/a8f2.jpg"></font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado, la mortalidad de adultos emergidos indica que la malla tricot colocada en la OC result&oacute; ser un buen reductor de poblaciones al provocar que 0% de las larvas contenidas en ellas (N=3 779) sobrevivieran como adultos, contra 93% de larvas que llegaron a su estado adulto y salieron de la OE (2 129 de 2 289 larvas), siendo esta diferencia estad&iacute;sticamente significativa (<i>t=</i>265; gl=1; <i>p=</i>0.002).</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Finalmente, los an&aacute;lisis cromatogr&aacute;ficos muestran que el n&#45;heneicosano se evapor&oacute; desde el primer d&iacute;a, con lo cual se le atribuye el efecto de atracci&oacute;n y la residualidad al 3&#45;metil&#45;indol. La <a href="/img/revistas/spm/v55n5/a8f3.jpg" target="_blank">figura 3A</a> muestra el perfil cromatogr&aacute;fico del 3&#45;metil&#45;indol a 500 ppm y n&#45;heneicosano inyectado en soluci&oacute;n; en este cromatograma se observa que el tiempo de retenci&oacute;n para el 3&#45;metil&#45;indol fue de 9:94 min, mientras que para el n&#45;heneicosano fue de 17:8 min. La <a href="/img/revistas/spm/v55n5/a8f3.jpg" target="_blank">figura 3B</a> muestra el perfil cromatogr&aacute;fico de la mezcla del 3&#45;metil&#45;indol y n&#45;heneicosano de muestras colectadas del septo al segundo d&iacute;a, donde se observa la ausencia del n&#45;heneicosano.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados obtenidos en el estudio muestran que la ovitrampa CRISPP puede ser una opci&oacute;n para ser considerada dentro de los programas de monitoreo y control de los vectores de dengue. Al colocarle a la OC un septo conteniendo 3&#45;metil&#45;indol y n&#45;heneicosano, los cuales han sido reportados como atrayentes de oviposici&oacute;n de diferentes especies de mosquitos,<sup>22,23</sup> y una malla tricot cubriendo la superficie del agua,<sup>26</sup> la ovitrampa cambia su funci&oacute;n de ser un sistema de monitoreo pasivo a un sistema de monitoreo y control bajo el esquema de "atraer y matar". La utilizaci&oacute;n de ovitrampas est&aacute;ndares ha sido un m&eacute;todo efectivo para detectar la presencia de hembras gr&aacute;vidas, y es usado en los sistemas de vigilancia entomol&oacute;gica y para evaluar medidas de control vectorial, sin embargo, su uso requiere de una costosa log&iacute;stica que incluye su revisi&oacute;n semanal debido a que, de no hacerlo, la ovitrampa se convierte en un criadero m&aacute;s.<sup>27</sup> Para evitar esto, se han elaborado y evaluado ovitrampas letales utilizando, entre otros, infusiones de pasto bermuda (<i>Cynodon dactylon</i>) como atrayente de oviposici&oacute;n<sup>32,33</sup> y <i>Bacillus thuringiensis var. israelensis</i><sup>34</sup> como reductor de poblaciones con resultados alentadores, sin embargo, al ser las infusiones sistemas de fermentaci&oacute;n din&aacute;mica y no controlada, permiten que el efecto cambie de atrayente a repelente por aumento de concentraci&oacute;n a trav&eacute;s del tiempo. A pesar de que en los resultados del presente estudio se observa que los est&aacute;ndares comerciales permanecieron atrayendo a las hembras gr&aacute;vidas cuatro d&iacute;as (el cual es bajo a comparaci&oacute;n de los 15 que fueron reportados por infusiones de pasto bermuda), la residualidad se considera que puede aumentarse mediante un procesamiento de los compuestos atrayentes con t&eacute;cnicas de microencapsulaci&oacute;n con liberaci&oacute;n controlada, como ya han sido realizados para algunas sustancias con diversos efectos sobre mosquitos.<sup>35</sup> En el presente estudio, la efectividad m&aacute;xima producida por los atrayentes se encontr&oacute; a las 24 horas y fue reduci&eacute;ndose a trav&eacute;s del tiempo coincidiendo con la p&eacute;rdida del n&#45;heneicosano, lo cual sugiere que la mezcla de los atrayentes deber&iacute;a estar regulada mediante la utilizaci&oacute;n de liberadores m&aacute;s efectivos.<sup>36</sup></font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Resultados de estudios realizados en condiciones de laboratorio han demostrado un efecto residual de atracci&oacute;n de cuatro d&iacute;as con una mezcla de compuestos que incluyeron 3&#45;metil&#45;indol, <i>p</i>&#45;cresol y fenol agregados sobre papel filtro (sustrato de oviposici&oacute;n) y n&#45;heneicosano que fue agregado directamente al agua.<sup>24</sup> La similitud entre la residualidad obtenida en ambos estudios indican que los factores ambientales no afectaron la residualidad como se ha reportado para las feromonas sexuales de algunas especies de lepid&oacute;pteros.<sup>37</sup></font></p>    	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Otros estudios sobre el dise&ntilde;o y efectividad de una ovitrampa con caracter&iacute;sticas ovicidas mostraron un decremento en el &iacute;ndice de Breteau de 36%, en comparaci&oacute;n con los sitios con ovitrampas est&aacute;ndares cuyo &iacute;ndice se increment&oacute; hasta 500%.<sup>26,27</sup> La alta efectividad mostrada por la trampa ovicida se debi&oacute; a una integraci&oacute;n de estrategias como la eliminaci&oacute;n de criaderos y participaci&oacute;n comunitaria, entre otros. En el presente estudio no se determinaron los &iacute;ndices entomol&oacute;gicos como una forma de evaluaci&oacute;n de la efectividad de la OC, sin embargo, los resultados exhibidos aqu&iacute; son un indicador de que adem&aacute;s de ser una medida de monitoreo, la OC puede funcionar como una medida de control (captura masiva) y su utilizaci&oacute;n puede realizarse de forma integral con otros m&eacute;todos. Otras ovitrampas letales conteniendo insecticidas organofosforados, piretroides, <i>Bacillus thuringiensis</i> var. israelensis y cop&eacute;podos (<i>Mesoscyclops longisetus</i>) como reguladores de poblaciones<sup>34,38&#45;40</sup> han sido evaluadas con buenos resultados, aunque, en el primer y segundo caso su uso no se recomienda en &aacute;reas que presenten resistencia por lo que el monitoreo de ella debe hacerse continuamente, adem&aacute;s de que una vez que se pierda la toxicidad del insecticida (aproximadamente cuatro semanas) la ovitrampa se vuelve un criadero m&aacute;s, con lo cual se reducir&iacute;a su costo&#45;efectividad. En el tercer y cuarto caso no es recomendable en &aacute;reas con poca infraestructura para el cultivo y cr&iacute;a de enemigos naturales. En este estudio, la incorporaci&oacute;n de una malla tipo tricot (que es de bajo costo y de f&aacute;cil obtenci&oacute;n) provoc&oacute; la mortalidad total de los adultos emergidos en comparaci&oacute;n con la ovitrampa est&aacute;ndar. Esta mortalidad sugiere la utilizaci&oacute;n de la OC en los sistemas de vigilancia entomol&oacute;gica en lugar de la OE, ya que evitar&iacute;a, en caso de que no se pueda revisar semanalmente, que &eacute;sta pase de ser un sistema de monitoreo a un criadero m&aacute;s como ocurre actualmente.<sup>26</sup> Otra utilizaci&oacute;n de la OC estar&iacute;a dirigida a su incorporaci&oacute;n en espacios bald&iacute;os o donde se complique el acceso para su monitoreo. Por lo tanto, la posibilidad de incorporar la OC a los sistemas de vigilancia y control de los vectores del dengue es una opci&oacute;n viable por el hecho de incorporar material de reciclaje, contener atrayentes de bajo costo (1g de n&#45;heneicosano alcanza para impregnar 100 millones de septos y con 5g de 3&#45;metil&#45;indole se pueden impregnar 10 millones de septos) y f&aacute;cil obtenci&oacute;n, as&iacute; como la utilizaci&oacute;n una malla tricot para provocar la muerte del adulto. Finalmente, se sugieren m&aacute;s estudios que impliquen investigar la probabilidad de la ovitrampa CRISPP como una medida sustentable dentro de los sistemas de vigilancia y control del dengue en M&eacute;xico, as&iacute; como la implementaci&oacute;n de un sistema de captura para las hembras gr&aacute;vidas atra&iacute;das y un an&aacute;lisis que sustente el riesgo real de la no revisi&oacute;n semanal de las ovitrampas est&aacute;ndares utilizadas actualmente en los sistemas de vigilancia entomol&oacute;gica en el pa&iacute;s.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El presente estudio fue parte del proyecto 78917 "Desarrollo y evaluaci&oacute;n a mediana escala de una ovitrampa con atrayentes qu&iacute;micos para el monitoreo y control de <i><i>Aedes aegypti</i></i>, vector del dengue" financiado por el FOMIX&#45;COCYTECH. Se agradece a, Farah Zamira Vera Maloof, Sandra Meza Robles y Crescencio D&iacute;az Espinoza por su apoyo en la realizaci&oacute;n de este estudio.</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Gubler DJ. Dengue and dengue hemorrhagic fever: its history and surgence as a global public health problem. En: Gubler DJ, Kuno G, eds. Dengue and dengue hemorrhagic fever. London: CAB International, 1997:1&#45;22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369660&pid=S0036-3634201300070000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Salazar MI, Richardson JH, S&aacute;nchez&#45;Vargas I, Olson KE, Beaty BJ. Dengue virus type 2: replication and tropisms in orally infected <i><i>Aedes aegypti</i></i> mosquitoes. BMC Microbiology 2007;7:9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369662&pid=S0036-3634201300070000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Hu W, Clements A, Williams G, Tong S. Spatial analysis of notified dengue fever infections. Epidemiol Infect 2011;139:391&#45;399.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369664&pid=S0036-3634201300070000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Lloyd L. Mejores pr&aacute;cticas para la prevenci&oacute;n y el control del dengue en las Am&eacute;ricas. Environmental Health Project, Resumen Ejecutivo 2003:20&#45;22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369666&pid=S0036-3634201300070000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Gubler DJ, Clark GG. Community involvement in the control of <i><i>Aedes aegypti</i></i>. Acta Tropica 1996;61:169&#45;179.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369668&pid=S0036-3634201300070000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Arias J. El dengue en Cuba. Rev Panam Salud P&uacute;blica 2002;11:221&#45;222.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369670&pid=S0036-3634201300070000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Spiegel JM, Yassi A, Tate R. Dengue in Cuba: mobilization against <i><i>Aedes aegypti</i></i>. Lancet Infectious Diseases 2002;2:207&#45;208.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369672&pid=S0036-3634201300070000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Spiegel JM, Bennett S, Hattersley L, Hayden MH, Kittayapong P, Nalin S, <i>et al</i>. Barriers and bridges to prevention and control of dengue: the need for a social&#45;ecological approach. EcoHealth Journal 2005;2:273&#45;290.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369674&pid=S0036-3634201300070000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Defoliart GR, Watts DM, Grimstad PR. Changing patterns in mosquito&#45;borne arboviruses. J Am Mosq Control Assoc 1986;2:437&#45;455.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369676&pid=S0036-3634201300070000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Garc&iacute;a&#45;Rej&oacute;n JE, Loro&ntilde;o&#45;Pino MA, Farfan&#45;Ale JA, Flores&#45;Flores L, Rosado&#45;Paredes EP, Rivero&#45;C&aacute;rdenas N, et al. Dengue virus&#45;infected <i><i>Aedes aegypti</i></i> in the home environment. Am J Trop Med Hyg 2008;79: 940&#45;950.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369678&pid=S0036-3634201300070000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Garc&iacute;a&#45;Rej&oacute;n JE, L&oacute;pez&#45;Uribe MP, Loro&ntilde;o&#45;Pino MA, Farf&aacute;n&#45;Ale JA, N&aacute;jera&#45;V&aacute;zquez MR, Lozano&#45;Fuentes S, <i>et al</i>. Productive container types for <i><i>Aedes aegypti</i></i> immature in M&eacute;rida, M&eacute;xico. J Med Entomol 2011;48:644&#45;650.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369680&pid=S0036-3634201300070000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Fay RW, Perry AS. Laboratory studies of ovipositional preferences of <i><i>Aedes aegypti</i></i>. Mosq News 1965;25:276&#45;281.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369682&pid=S0036-3634201300070000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Fay RW, Eliason DA. A preferred oviposition site as a surveillance method for <i><i>Aedes aegypti</i></i>. Mosq News 1966;26:531&#45;535.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369684&pid=S0036-3634201300070000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Reiter P, Nathan M. Guidelines for assessing the efficacy of insecticidal space sprays for control of the dengue vector <i>Aedes aegypti</i>. Geneva World Health Organization, 2001.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369686&pid=S0036-3634201300070000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Kloter KO, Bowman DD, Carroll MK. Evaluation of some ovitrap materials used for <i>Aedes aegypti</i> surveillance. Mosq News 1983;43:438&#45;441.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369688&pid=S0036-3634201300070000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Ritchie SA, Long S, Hart A, Webb CE, Russell RC. An adulticidal sticky ovitrap for sampling container&#45;breeding mosquitoes. J Am Mosq Control Assoc 2003;19:235&#45;242.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369690&pid=S0036-3634201300070000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Chua KB, Chua IL, Chua IE, Chua KH. Differential preferences of oviposition by <i>Aedes</i> mosquitos in man&#45;made containers under field condition. Southeast Asian J Trop Med Public Health 2004;35:599&#45;607.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369692&pid=S0036-3634201300070000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Lenhart AE, Walle M, Cedillo H, Kroeger A. Building a better ovitrap for detecting <i>Aedes aegypti</i> oviposition. Acta Tropica 2005;96:56&#45;59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369694&pid=S0036-3634201300070000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Chadee, DD. Oviposition strategies adopted by gravid <i>Aedes aegypti</i> (L) (Diptera: Culicidae) as detected by ovitraps in Trinidad, West Indies (2002&#45;2006). Acta Tropica 2009;111:279&#45;283.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369696&pid=S0036-3634201300070000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Williams CR, Ritchie SA, Long S, Dennison N, Russell RC. Impact of a bifenthrin&#45;treated lethal ovitrap on <i>Aedes aegypti</i> oviposition and mortality in North Queensland, Australia. J Med Entomol 2007;44:256&#45;262.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369698&pid=S0036-3634201300070000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Millar JG, Chaney JD, Mulla MS. Identification of oviposition attractants for <i>Culex quinquefasciatus</i> from fermented bermuda grass infusions. J Am Mosq Control Assoc 1992;8:11&#45;17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369700&pid=S0036-3634201300070000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Mendki MJ, Ganesan K, Prakash S, Suryanarayana MVS, Malhotra RC, Rao KM, et al. Heneicosane: an oviposition attractant of larval origin in <i>Aedes aegypti</i>. Curr Sci India 2000;78:1295&#45;1296.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369702&pid=S0036-3634201300070000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Seenivasagan T, Sharma KR, Sekhar K, Ganesan K, Prakash S, Vijayaraghavan R. Electroantennogram, flight orientation, and oviposition responses of <i>Aedes aegypti</i> to the oviposition pheromone n&#45;heneicosane. Parasitol Res 104 2009;827&#45;833.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369704&pid=S0036-3634201300070000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. Baak&#45;Baak CM, Rodr&iacute;guez&#45;Ram&iacute;rez AD, Garc&iacute;a&#45;Rej&oacute;n JE, R&iacute;os&#45;Delgado SM, Torres&#45;Estrada JL. Development and laboratory evaluation of chemically&#45;based baited ovitrap for the monitoring of <i>Aedes aegypti</i>. J Vector Ecol 2013, 38(1):175&#45;181.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369706&pid=S0036-3634201300070000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Briones&#45;Roblero CI, V&aacute;zquez Corzo S, Del Carpio&#45;Estrada LA, Orozco&#45;Magdaleno CE, P&eacute;rez&#45;Garc&iacute;a G, Ram&iacute;rez&#45;Aguilar FJ. Factores asociados e &iacute;ndice de correlaci&oacute;n entre el diagn&oacute;stico cl&iacute;nico y de laboratorio de dengue. Hig Sanid Ambient 2011: 807&#45;814.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369708&pid=S0036-3634201300070000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. Chan, KL, Kiat NS, Koth TK. An autocidal ovitrap for the control and possible eradication of <i>Aedes aegypti</i>. Southeast Asian J Trop Med Public Health 1977;8:56&#45;61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369710&pid=S0036-3634201300070000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27. Cheng Min&#45;Lee, Beng&#45;Chuan Ho, Bartnett E, Goodwin N. Role of a modified ovitrap in the control of <i>Aedes aegypti</i> in Houston, Texas, EUA. Bull World Health Organ 1982;60:291&#45;296.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369712&pid=S0036-3634201300070000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">28. Service MW. Mosquito ecology. Field sampling methods. London, England: Applied Science Publishers LTD. 1976;582.</font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29. Pawliszyn J. Solid phase microextraction&#45;theory and practice. New York: Wiley, 1997.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369715&pid=S0036-3634201300070000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30. R&iacute;os&#45;Delgado SM, Rodr&iacute;guez&#45;Ram&iacute;rez AD, Cruz&#45;L&oacute;pez L, Escobar&#45;P&eacute;rez LA, Aburto&#45;Ju&aacute;rez ML, Torres&#45;Estrada JL. Respuesta de <i>Anopheles albimanus</i> a compuestos vol&aacute;tiles de casas del sur de Chiapas, M&eacute;xico. Salud Publica Mex 2008;50:367&#45;374.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369717&pid=S0036-3634201300070000800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">31. Zar JH. Biostatistical analysis. 4th ed. Englewood Cliffs, NJ: Prentice Hall, 1999.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369719&pid=S0036-3634201300070000800031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">32. Reiter P, Amador MA, Colon N. Enhancement of the CDC ovitrap with hay infusions for daily monitoring of <i>Aedes aegypti</i> populations. J Am Mosq Control Assoc 1991;7:52&#45;55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369721&pid=S0036-3634201300070000800032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">33. Polson KA, Curtis Ch, Seng Ch M, Olson JG, Chantla N, Rawlins SC. The use of ovitrap baited with hay infusion as a surveillance tool for <i>Aedes aegypti</i> mosquitoes in Cambodia. Dengue Bull 2002;26:178&#45;184.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369723&pid=S0036-3634201300070000800033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">34. Santos SRA, Melo&#45;Santos MAV, Regis L, Albuquerque CR. Field evaluation of ovitraps consociated with grass infusion and <i>Bacillus thuringiensis</i> var. israelensis to determine oviposition rates of <i>Aedes aegypti</i>. Dengue Bulletin 2003;27:156&#45;162.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369725&pid=S0036-3634201300070000800034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">35. Michaelakis A, Mihou AP, Koliopoulos G, Couladouros EA. Influence of the microencapsulated pheromone from aged infusion as an oviposition medium of the West Nile virus vector <i>Culex pipiens</i>. Parasitol Res 2009;104:1005&#45;1009.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369727&pid=S0036-3634201300070000800035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">36. Atterholt AC, Delwiche MJ, Rice RE, Krochta JM. Study of biopolymers and paraffin as potential controlled&#45;release carriers for insect pheromones. J Agric Food Chem 1998;46:4429&#45;4434.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369729&pid=S0036-3634201300070000800036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">37. Webster RP, Yin C&#45;M. Effects of photoperiod and temperature on calling behaviour of the gypsy moth, <i>Lymantria dispar</i> l. (Lepidoptera: Lymantriidae). The Canadian Entomologist 1997;129:843&#45;854.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369731&pid=S0036-3634201300070000800037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">38. Zeichner BC, Perich MJ. Laboratory testing of a lethal ovitrap for <i>Aedes aegypti</i>. Med and Vet Entomol 1991;13:234&#45;238.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369733&pid=S0036-3634201300070000800038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">39. Sithiprasasna R, Mahapibul P, Noigamol C et al. Field evaluation of a lethal ovitrap for the control of <i>Aedes aegypti</i> (Diptera: Culicidae) in Thailand. J Med Entomol 2003;40:455&#45;462.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369735&pid=S0036-3634201300070000800039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>    	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">40. Torres&#45;Estrada JL, Rodr&iacute;guez MH, Cruz&#45;L&oacute;pez L, Arredondo&#45;Jim&eacute;nez JI. Selective oviposition by <i>Aedes aegypti</i> (Diptera: Culicidae) in response to mesocyclops longisetus (Copepoda: Cyclopoidea) under laboratory and field conditions. J Med Entomol 2001;38:188&#45;192</font>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9369737&pid=S0036-3634201300070000800040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fecha de recibido: 28 de enero de 2012    <br>  	Fecha de aceptado: 17 de junio de 2013</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><a href="#f-1-backlink" id="f-1" name="f-1"><img src="/img/revistas/spm/v55n5/flecha.jpg"></a>Autor de correspondencia:    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  	<b>Dr. Jos&eacute; Luis Torres Estrada.</b>    <br>  	Centro Regional de Investigaci&oacute;n en Salud P&uacute;blica. 4&deg;    <br>  	Avenida Norte y 19 Calle Poniente, col. Centro.    <br>  	30700 Tapachula, Chiapas, M&eacute;xico.    <br>  	Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:jltorres@insp.mx">jltorres@insp.mx</a></font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>    	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Declaraci&oacute;n de conflicto de intereses:</i> Los autores declararon no tener conflicto de intereses.</font></p>       ]]></body><back>
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