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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Diagnóstico de Mycoplasma genitalium por amplificación de los genes MgPa y ARN ribosomal 16S]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[OBJECTIVE: Mycoplasma genitalium has been associated with nongonococcal urethritis (NGU). Diagnosis by PCR has become the primary detection method for this organism. Thus, diagnosis by DNA amplification using the PCR technique should be utilized. MATERIAL AND METHODS: GMF/GMR and MgpF/MgpR primer pairs, complementary to the M. genitalium 16S rRNA and MgPa genes, respectively, were selected. Specificity and sensibility assays were conducted and clinical samples were studied. RESULTS: The PCR with each primer pair was specific only for M. genitalium, and the sensibility was higher with the GMF/GMR primers. In the study of 34 clinical samples, 18,5% were positive for M. genitalium, with more positive samples when the MgpF/MgpR primers were used. CONCLUSIONS: DNA amplification by PCR should be applied in clinical practice to the diagnosis of M. genitalium in patients with NGU should using.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana"><b>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="4" face="verdana"><b>Diagn&oacute;stico de Mycoplasma genitalium    por amplificaci&oacute;n de los genes MgPa y ARN ribosomal 16S</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>Diagnosis of Mycoplasma genitalium by MgPa    and rRNA 16S gene amplification.</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>Carmen Fern&aacute;ndez&#45;Molina, M en C<sup>I</sup>;    Nadia Rodr&iacute;guez&#45;Preval, M en C<sup>I</sup>; Islay Rodr&iacute;guez&#45;Gonz&aacute;lez,    M en C<sup>I</sup>; Mar&iacute;a Agnese&#45;Latino, Esp en Microbiol<sup>II</sup>;    Jos&eacute; Antonio Rivera&#45;Tapia, M en C<sup>III</sup>; Idalia Ayala&#45;Rodr&iacute;guez,    Esp en Microbiol.<sup>IV</sup></b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><sup>I</sup>Instituto de Medicina Tropical Pedro    Kour&iacute;. La Habana, Cuba    <br>   <sup>II</sup>Departamento de Microbiologia, Hospital Santa Anna. Tur&iacute;n,    Italia    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <sup>III</sup>Instituto de Ciencias de la Benem&eacute;rita Universidad Aut&oacute;noma    de Puebla. Puebla, M&eacute;xico    <br>   <sup>IV</sup>Hospital Militar Dr. Carlos J. Finlay. Cuba</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr size="1" noshade>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><B>OBJETIVO:</b> El microorganismo <I>Mycoplasma    genitalium</I> se ha relacionado con la uretritis no gonoc&oacute;cica (UNG).    La t&eacute;cnica de PCR se ha convertido en el principal m&eacute;todo de detecci&oacute;n    de este pat&oacute;geno. En consecuencia, debe aplicarse un m&eacute;todo de    diagn&oacute;stico mediante la amplificaci&oacute;n de fragmentos de ADN por    la t&eacute;cnica PCR.    <br>   <B>MATERIAL Y M&Eacute;TODOS:</B> Se seleccionaron los cebadores MGF&#45;MGR y MgPaF&#45;MgPaR,    complementarios de los genes de ARNr 16S y MgPa de <I>M. genitalium,</I> respectivamente.    Se efectuaron ensayos de especificidad y sensibilidad y se estudiaron muestras    cl&iacute;nicas.    <br>   <B>RESULTADOS:</B> La PCR con cada grupo de cebadores utilizado fue espec&iacute;fica    s&oacute;lo para <I>M. genitalium</I> y la sensibilidad fue mayor con el grupo    de cebadores MGF&#45;MGR. En el estudio de 34 muestras cl&iacute;nicas, 18.5% fue    positivo a <I>M. genitalium</I> y se encontr&oacute; un mayor n&uacute;mero    de muestras positivas al utilizar los cebadores MgPaF&#45;MgPaR.    <br>   <B>CONCLUSIONES:</B> Debe aplicarse en la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica el    diagn&oacute;stico de <I>M. genitalium</I> mediante la amplificaci&oacute;n    del ADN por PCR en los pacientes con UNG.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>Palabras clave:</b> diagn&oacute;stico; <I>Mycoplasma    genitalium</I>; PCR; Cuba</font></p> <hr size="1" noshade>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="VERDANA"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><B>OBJECTIVE:</b> Mycoplasma genitalium has been    associated with nongonococcal urethritis (NGU). Diagnosis by PCR has become    the primary detection method for this organism. Thus, diagnosis by DNA amplification    using the PCR technique should be utilized.    <br>   <B>MATERIAL AND METHODS:</B> GMF/GMR and MgpF/MgpR primer pairs, complementary    to the M. genitalium 16S rRNA and MgPa genes, respectively, were selected. Specificity    and sensibility assays were conducted and clinical samples were studied.    <br>   <B>RESULTS:</B> The PCR with each primer pair was specific only for M. genitalium,    and the sensibility was higher with the GMF/GMR primers. In the study of 34    clinical samples, 18,5% were positive for M. genitalium, with more positive    samples when the MgpF/MgpR primers were used.    <br>   <B>CONCLUSIONS:</B> DNA amplification by PCR should be applied in clinical practice    to the diagnosis of M. genitalium in patients with NGU should using. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>Key words:</b> diagnosis; Mycoplasma genitalium;    PCR; Cuba</font></p> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I>Mycoplasma genitalium</i> (<I>M. genitalium</I>)    es uno de los agentes infecciosos relacionados con la uretritis no gonoc&oacute;cica    (UNG). De manera original, este microorganismo se aisl&oacute; de muestras uretrales    de pacientes con uretritis y desde entonces se ha demostrado que existe una    relaci&oacute;n paras&iacute;tica con c&eacute;lulas epiteliales ciliadas del    tracto genital, as&iacute; como del tracto respiratorio humano.<SUP>1,2</sup></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">El diagn&oacute;stico de <I>M. genitalium</I>    por los m&eacute;todos convencionales, como el cultivo bacteriol&oacute;gico    y las t&eacute;cnicas serol&oacute;gicas y bioqu&iacute;micas, resulta en extremo    laborioso y se necesitan hasta tres meses para obtener un diagn&oacute;stico    confirmatorio.<SUP>3&#45;5 </sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"> La amplificaci&oacute;n de fragmentos de ADN    mediante la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR, por sus siglas    en ingl&eacute;s) es uno de los m&eacute;todos m&aacute;s aplicados en el diagn&oacute;stico    de especies insidiosas, como es el caso de <I>M. genitalium</I>, y para este    microorganismo se han notificado diversos genes como secuencias blanco para    su identificaci&oacute;n.<SUP>6,7</sup></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> El objetivo de este estudio fue aplicar un m&eacute;todo    diagn&oacute;stico para <I>M. genitalium</I> mediante la amplificaci&oacute;n    de fragmentos de ADN a partir de dos grupos de cebadores se&ntilde;alados con    frecuencia en las publicaciones especializadas y evaluarlos adem&aacute;s en    muestras cl&iacute;nicas de pacientes con UNG.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Material y m&eacute;todos</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I>Muestra de ADN de referencia.</i> El ADN de    <I>M. genitalium</I>, correspondiente a la cepa R32G, se obtuvo gracias    a la donaci&oacute;n del Dr. Branko Kokotovic, del Laboratorio de Micoplasmas    del Instituto Dan&eacute;s para Investigaciones Veterinarias y Alimentos, de    Copenhague, Dinamarca. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I>Grupos de cebadores empleados en el m&eacute;todo    PCR para </i>M. genitalium. Se utilizaron el grupo de cebadores MGF&#45;MGR    complementarios de un fragmento del gen del ARN ribosomal 16S de <I>M. genitalium</I>,    que describieron Jensen y colaboradores,<SUP>7</SUP> y el grupo de cebadores    MgPaF&#45;MgPaR complementarios de una regi&oacute;n del gen de la prote&iacute;na    adhesiva de <I>M. genitalium </I>(MgPa), que describieron Jensen y colegas<I>.</I><SUP>8</sup></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I>Mezcla de reacci&oacute;n.</i> El volumen    final de 50 </font><font>&#181;</font><font size="2" face="verdana">l conten&iacute;a 37.25 </font><font>&#181;</font><font size="2" face="verdana">l de agua bidestilada est&eacute;ril,    5 </font><font>&#181;</font><font size="2" face="verdana">l de tamp&oacute;n para PCR al 10X, 20 mM de cada dNTP, 1.25 </font><font>&#181;</font><font size="2" face="verdana">l de cada cebador    en una concentraci&oacute;n de 10 pmol/</font><font>&#181;</font><font size="2" face="verdana">l, 0.25 </font><font>&#181;</font><font size="2" face="verdana">l (1.25 U) de polimerasa<I>    Taq</I> y 5 </font><font>&#181;</font><font size="2" face="verdana">l de ADN de muestra.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I>Amplificaci&oacute;n del ADN.</i> La    amplificaci&oacute;n del ADN se realiz&oacute; en un termociclador &quot;Mastercycler    personal"(Eppendorf, Alemania). El programa de amplificaci&oacute;n fue    el siguiente: 95ºC por cuatro minutos, seguido de 35 ciclos de 94ºC    por 30 segundos, 55ºC por 30 segundos y 72ºC por un minuto,    con una extensi&oacute;n final a 72ºC por cinco minutos.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I>An&aacute;lisis de los productos amplificados.</i>    Los productos de ADN amplificados se analizaron por electroforesis submarina    en gel de agarosa al 4% y los resultados de las electroforesis se observaron    a trav&eacute;s de un transiluminador con luz ultravioleta (LKB 2011, Suecia),    y se determinaron sus tallas por comparaci&oacute;n con marcadores de peso molecular    de ADN (DNA Molecular Weight Marker VIII, Roche, Germany).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I>Ensayo de especificidad y sensibilidad de    la PCR para </i>M. genitalium<I>.</I> Con los grupos de cebadores MGF&#45;MGR y    MgPaF&#45;MgPaR y la metodolog&iacute;a de la PCR ya descrita se realizaron los    experimentos de especificidad en ADN de <I>M. genitalium</I> (R32G), <I>Mycoplasma    hominis</I> (ATCC 23114),<I> Ureaplasma urealyticum </I>(ATCC 27618) y <I>Ureaplasma    parvum </I>(ATCC 2815), adem&aacute;s de los experimentos de sensibilidad en    ADN de <I>M. genitalium</I> (R32G); para ello se llevaron a cabo diluciones    seriadas de 1:2 a partir de una concentraci&oacute;n de 400 pg/</font><font>&#181;</font><font size="2" face="verdana">l hasta 12.5    pg/</font><font>&#181;</font><font size="2" face="verdana">l, y desde esta &uacute;ltima se continuaron con diluciones seriadas de    1:10 hasta una concentraci&oacute;n de 0.0125 pg/</font><font>&#181;</font><font size="2" face="verdana">l. De cada diluci&oacute;n    se tomaron 5 </font><font>&#181;</font><font size="2" face="verdana">l para realizar el experimento de sensibilidad de la PCR.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"><I>Estudio de muestras cl&iacute;nicas.</i> Para    las muestras cl&iacute;nicas, el universo se conform&oacute; con todos los pacientes    masculinos con diagn&oacute;stico de UNG que acudieron al Laboratorio del Hospital    Carlos J. Finlay, en el periodo comprendido entre octubre y noviembre del a&ntilde;o    2005<B>. </B>Se obtuvo el consentimiento informado de los pacientes que participaron    en el estudio. El Comit&eacute; de Evaluaci&oacute;n &Eacute;tica del Instituto    de Medicina Tropical Pedro Kouri (IPK) aprob&oacute; el protocolo de investigaci&oacute;n    . Se analizaron 34 muestras de exudado uretral, negativas en los ex&aacute;menes    para la detecci&oacute;n de <I>Neisseria gonorreae</I>, de igual n&uacute;mero    de pacientes masculinos. Las muestras cl&iacute;nicas en medio l&iacute;quido    de transporte espec&iacute;fico para micoplasmas se trasladaron en un contenedor    de seguridad biol&oacute;gica al Laboratorio de Micoplasmas del IPK. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I>Extracci&oacute;n del ADN de la muestra.</i>    La extracci&oacute;n del ADN se realiz&oacute; de acuerdo con la descripci&oacute;n    de Fern&aacute;ndez y colaboradores,<SUP>9</SUP> con base en cambios bruscos    de temperaturas y el fen&oacute;meno de &oacute;smosis, tras mantener el ADN    extra&iacute;do a &#45;20ºC hasta su uso.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I>Identificaci&oacute;n de </i>M. genitalium<I>    en muestras cl&iacute;nicas por el m&eacute;todo PCR.</I> El ADN obtenido    de cada muestra cl&iacute;nica se analiz&oacute; mediante la t&eacute;cnica    PCR&#45;Clase espec&iacute;fica para Mollicutes, seg&uacute;n el informe de Fern&aacute;ndez    y colegas.<SUP>10</SUP> Las muestras que resultaron positivas se sometieron    a PCR espec&iacute;fica para <I>M. genitalium, </I>como se indic&oacute; con    anterioridad, y se emplearon los grupos de cebadores MGF&#45;MGR y MgPaF&#45;MgPaR.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Resultados</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I>Especificidad del m&eacute;todo PCR para </i>M.    genitalium<I>. </I>Al analizar el ADN de referencia con el grupo de cebadores    MGF&#45;MGR se obtuvo un fragmento de 425 pb correspondiente a la regi&oacute;n    del gen del ARNr 16S de <I>M. genitalium</I>; por su parte, con el grupo de    cebadores MgPaF&#45;MgPa se obtuvo un fragmento de 78 pb correspondiente a la regi&oacute;n    del gen de la prote&iacute;na de adhesi&oacute;n de <I>M. genitalium. </I>No    se encontraron bandas similares en las muestras de ADN de <I>M. hominis</I>,    <I>U. parvum</I> y <I>U. urealyticum</I>, lo que demuestra que el m&eacute;todo    PCR no tuvo reacci&oacute;n cruzada con estas especies de micoplasmas genitales    estudiadas con los cebadores usados y condiciones establecidas.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I>Sensibilidad del m&eacute;todo PCR para </i>M.    genitalium. En las diluciones seriadas de 1:2 se obtuvieron amplificaciones    del ADN hasta 12.5 pg/</font><font>&#181;</font><font size="2" face="verdana">l con ambos grupos de cebadores. Al continuar con las    diluciones seriadas de 1:10 se consigui&oacute; una amplificaci&oacute;n hasta    0.125 pg/</font><font>&#181;</font><font size="2" face="verdana">l con el grupo de cebadores MGF&#45;MGR; por su parte, con el grupo de    cebadores MgPaF&#45;MgPaR se logr&oacute; una amplificaci&oacute;n en una diluci&oacute;n    menor, es decir, hasta 1.25 pg/</font><font>&#181;</font><font size="2" face="verdana">l. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I>Identificaci&oacute;n de </i>M. genitalium<I>    en muestras cl&iacute;nicas por m&eacute;todos PCR.</I> De las muestras    cl&iacute;nicas de exudado uretral estudiadas, 79.4% (27/34) fue positivo por    PCR&#45;Clase <I>Mollicutes</I> y de ellas 18.5% (5/27) result&oacute; positivo    a <I>M. genitalium</I> por PCR . El grupo de cebadores complementarios del gen    MgPa detect&oacute; 14.8% (4/27) de muestras positivas a <I>M. genitalium</I>,    mientras que el grupo de cebadores del gen del ARNr 16S reconoci&oacute; s&oacute;lo    7.4% (2/27), esto es, coincidi&oacute; una muestra por ambos grupo de cebadores.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">Por lo general, las infecciones por micoplasmas    y ureaplasmas son silentes, su duraci&oacute;n es limitada y muestran s&iacute;ntomas    inespec&iacute;ficos. Estos microorganismos constituyen elementos de la flora    normal, lo cual dificulta el diagn&oacute;stico de estas infecciones. Los m&eacute;todos    de cultivo y pruebas serol&oacute;gicas se utilizan para el diagn&oacute;stico    com&uacute;n de las infecciones por micoplasmas y ureaplasmas, pero no son &oacute;ptimos    en grado suficiente, lo que ha propiciado el desarrollo y uso de m&eacute;todos    moleculares, como la PCR y sus variantes.<SUP>11</SUP> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> En este estudio, el m&eacute;todo de PCR utilizado,    en el que se amplifican fragmentos de ADN de 425 pb y 78 pb, s&oacute;lo fue    espec&iacute;fico para <I>M. genitalium</I> y no para otros ADN. Esto concuerda    con las notificaciones de Jensen y colegas, quienes tambi&eacute;n emplearon    estos cebadores complementarios del fragmento del gen de la prote&iacute;na    de adhesi&oacute;n<SUP>7</SUP> y los cebadores complementarios de un fragmento    del gen del ARN ribosomal 16S.<SUP>8</SUP> Sin embargo, estos autores encontraron    una mayor sensibilidad que la obtenida en el presente protocolo, lo cual puede    deberse al m&eacute;todo de purificaci&oacute;n del ADN de <I>M. genitalium</I>    empleado como referencia en ambos estudios, que fue diferente y puede modificar    los resultados conseguidos. Tambi&eacute;n deben tomarse en cuenta los programas    usados para la amplificaci&oacute;n del ADN, ya que se emplearon diferentes    n&uacute;meros de ciclos. En el caso del PCR dirigido al gen MgPa, estos autores    utilizaron el PCR en tiempo real, m&eacute;todo m&aacute;s sensible que la t&eacute;cnica    PCR convencional desarrollada en este trabajo.<SUP>7,8</sup></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> En el an&aacute;lisis de las muestras cl&iacute;nicas    de exudado uretral, la positividad a <I>M. genitalium</I> de 18.5% coincide    con los resultados obtenidos en otras investigaciones. Gubelin y colaboradores    investigaron, mediante PCR dirigida al gen MgPa, la presencia de <I>M. genitalium</I>    en muestras de secreci&oacute;n uretral de 23 hombres con UNG, identificaron    esta especie en 13.04% y encontraron adem&aacute;s <I>Ureaplasma spp.</I>    en 34.7% de las muestras.<SUP>12</SUP> Jensen y colegas, en un protocolo realizado    en muestras de secreci&oacute;n uretral de 73 varones con s&iacute;ntomas uretrales,    reconocieron 9.6% de muestras positivas a <I>M. genitalium</I> mediante PCR.<SUP>7</SUP>    Luo Dan y colaboradores, en un estudio conducido en China, hallaron 16.17% de    positividad a <I>M. genitalium</I> con dos grupos de cebadores para la PCR;<SUP>13</SUP>    por su parte, Anagrius y colegas detectaron <I>M. genitalium</I> en 13.6% de    125 hombres con uretritis sintom&aacute;tica y observaron un nexo significativo    entre este microorganismo y los s&iacute;ntomas y signos microsc&oacute;picos.<SUP>14</SUP>    Dolapci y colaboradores, en un estudio realizado en Turqu&iacute;a, investigaron    la incidencia de <I>M. genitalium</I> en muestras de orina de 63 pacientes con    s&iacute;ntomas de uretritis y hallaron 6.34% de positividad, 4.76% a <I>U.    urealyticum</I> y 3.17% a <I>M. hominis</I>;<SUP>15</SUP> esta muestra fue m&aacute;s    simple y el m&eacute;todo de obtenci&oacute;n no invasivo , lo que pudo influir    en estos resultados. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> En el presente estudio se obtuvo una mayor positividad    con la PCR para <I>M. genitalium</I> mediante los cebadores complementarios    del fragmento del gen MgPa, en comparaci&oacute;n con el uso de los cebadores    complementarios de un fragmento del gen de ARNr 16S. Estos resultados coinciden    con los de Edberg y colaboradores, quienes realizaron un estudio comparativo    entre tres m&eacute;todos de PCR para la detecci&oacute;n de <I>M. genitalium</I>    en muestras cl&iacute;nicas y obtuvieron una mayor sensibilidad al aplicar la    PCR para el gen MgPa.<SUP>16</SUP> Hardick y colegas desarrollaron un m&eacute;todo    de PCR para m&uacute;ltiples blancos, dirigidos a los genes ARNr 16S y MgPa,    y reconocieron un mayor n&uacute;mero de muestras positivas al utilizar como    blanco la regi&oacute;n del gen MgPa.<SUP>17</SUP> Algunos estudios sugieren    que la discrepancia en la temperatura de hibridaci&oacute;n puede interferir    en las diferentes sensibilidades anal&iacute;ticas de cada blanco de la reacci&oacute;n    y que la regi&oacute;n blanco del ARNr 16S es menos sensible para la detecci&oacute;n    de <I>M. genitalium</I> en muestras cl&iacute;nicas, respecto de otros sitios,    como la prote&iacute;na de adhesi&oacute;n MgPa, la cual se vincula con la patogenicidad    del microorganismo, que es un determinante de virulencia.<SUP>18</SUP> Aunque    el ensayo de sensibilidad mostr&oacute; resultados en los cuales la sensibilidad    de la PCR del gen del ARN ribosomal es apenas mayor que la PCR del gen de la    prote&iacute;na de adhesi&oacute;n, en el caso del ADN de referencia se ha descrito    que la secuencia del gen del ARNr 16S es relativamente estable y por tanto contiene    pocos o ning&uacute;n polimorfismo en la poblaci&oacute;n de <I>M. genitalium</I>.    Sin embargo, los ant&iacute;genos expresados en la superficie muchas veces tienen    secuencias de genes inestables y se han notificado variaciones intraespecie    en el gen de la prote&iacute;na MgPa.<SUP>19</SUP> Eastick y colegas desarrollaron    un ensayo de PCR para detectar <I>M. genitalium</I> en 54 muestras de orina    de hombres con uretritis e identificaron una mayor positividad al emplear PCR    dirigida al ARNr 16S.<SUP>20</sup></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> La relaci&oacute;n informada en las publicaciones    de <I>M. genitalium</I> con diferentes enfermedades y los resultados obtenidos    en este estudio se&ntilde;alan la necesidad de establecer en la pr&aacute;ctica    cl&iacute;nica el diagn&oacute;stico de <I>M. genitalium</I> en todos los individuos    con UNG; esto es posible mediante la amplificaci&oacute;n del ADN por PCR y    la utilizaci&oacute;n de los grupos de cebadores complementarios del gen de    la prote&iacute;na adhesiva.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Agradecimientos</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Los autores reconocen las facilidades del Centro    Internacional de Ingenier&iacute;a Gen&eacute;tica y Biotecnolog&iacute;a de    Trieste, Italia, que contribuy&oacute; con el desarrollo de experimentos mediante    becas posdoctorales otorgadas a uno de los autores de este estudio. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Referencia</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">1. Jensen JS. <I>Mycoplasma genitalium</I>: an    etiological agent of urethritis and other sexually transmitted diseases. J Eur    Acad Dermatol Venerol 2004;18:1&#45;11.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9313404&pid=S0036-3634200800050000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">2. Wikstrom A, Jensen JS. <I>Mycoplasma genitalium</I>:    a common cause of persistent urethritis among men treated with doxycycline.    Sex Transm Infect 2006;82(4):276&#45;279.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9313405&pid=S0036-3634200800050000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">3. Jurstrand M, Jensen JS, Fredlund H, Falk L,    Molling P. Detection of Mycoplasma genitalium in urogenital specimens by real&#45;time    PCR and by conventional PCR assay. J Med Microbiol 2005;54:23&#45;29.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9313406&pid=S0036-3634200800050000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">4. Yoshida T, Maeda S, Deguchi T, MiyazawaT,    Ishiko H. Rapid detection of <I>Mycoplasma genitalium</I>, <I>Mycoplasma hominis</I>,    <I>Ureaplasma parvum</I>, and <I>Ureaplasma urealyticum</I> organisms in genitourinary    samples by PCR&#45; microtiter plate hibridization assay. J Clin Microbiol 2003;41(5):1850&#45;1855.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9313407&pid=S0036-3634200800050000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">5. Hamasuna R, Osada Y, Jensen JS. Isolation    of <I>Mycoplasma genitalium</I> from first&#45;void urine specimens by coculture    with vero cells. J Clin Microbiol 2007;45(3):847&#45;850.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9313408&pid=S0036-3634200800050000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">6. Hardick J, Giles J. Performance of the gen&#45;probe    transmission&#45; mediated amplification research assay compared to that of    a multitarget real&#45;time PCR for <I>Mycoplasma genitalim</I> detection. J    Clin Microbiol 2006;44(4):</font><font size="2" face="Verdana">1236&#45;1240.    </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9313409&pid=S0036-3634200800050000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">7. Jensen J, Borre M, Dohn B. Detection of <I>Mycoplasma    genitalium</I> by PCR amplification of the 16S rRNA gene. J Clin Microbiol 2003;41(1):261&#45;266.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9313410&pid=S0036-3634200800050000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">8. Jensen JS, Bjornelius E, Dohn B, Lidbrink    P. <B>Use of TaqMan 5' nuclease real&#45;time PCR for quantitative detection of    </B><I>Mycoplasma genitalium</I><B> DNA in males with and without urethritis    who were attendees at a sexually transmitted disease clinic. </B><I>J Clin Microbiol    </I>2004;<B>42:</B>683&#45;692.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9313411&pid=S0036-3634200800050000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">9. Fernandez CM, Alvarez K, Muy L, Martinez M.    Detection using molecular biology techniques of <I>Mycoplasma hominis</I> and    <I>Ureaplasma urealyticum</I> in urogenital samples. 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Gubelin W, Mart&iacute;nez MA, C&eacute;spedes    P, Fich F, Fuenzalida H, De la Parra R, <I>et al</I>. Aplicaci&oacute;n de m&eacute;todo    molecular en la detecci&oacute;n de <I>M. genitalium</I> en hombres y en mujeres    embarazadas. Rev Chil Infect 2006;23(1):15&#45;19.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9313415&pid=S0036-3634200800050000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">13. Dan L, Wenyuan Z, Xiaojun Z, Xiping C, Shukui    W, Zizheng W, <I>et al.</I> Molecular epidemiologic study of <I>Mycoplasma genitalium</I>    infection in high risk populations of sexually transmitted diseases in China.    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Detecting of <I>Mycoplasma genitalium</I> in male patients with    urethritis symptoms in Turkey by plymerase chain reaction. Saudi Med J 2005;26(1):64&#45;68.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9313418&pid=S0036-3634200800050000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">16. Edberg A, Johansson E, Wikander E, Hoog A,    Ahlqvist T, Jurstrand M, <I>et al</I>. A comparative study of three different    PCR assays for detection of <I>Mycoplasma genitalium</I> in genital specimens    from men and women. 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J Clin Microbiol 2006;44    (4):1236&#45;1240. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9313420&pid=S0036-3634200800050000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">18. Svenstrup HF, Jensen JS, Bjornelius E, Lidbrink    P, Birkelund S, Gunna C. Development of a quantitative real&#45;time PCR assay for    detection of <I>Mycoplasma genitalium</I>. J Clin Microbiol 2005;43:3121&#45;3128.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9313421&pid=S0036-3634200800050000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">19. Baseman JB, Cagle M, Korte JE, Herrera C,    Rasmussen WG, Baseman JG, <I>et al.</I> Diagnostic assessment of <I>Mycoplasma    genitalium</I> in culture&#45;positive women. J Clin Microbiol 2004;42(1):203&#45;211.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9313422&pid=S0036-3634200800050000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">20. Eastick K, Leeming JP, Caul EO, Horner PJ,    Millar MR. A novel polymerase chain reaction assay to detect Mycoplasma genitalium.    Mol Pathol 2003;56(1):25&#45;28.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9313423&pid=S0036-3634200800050000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana">Fecha de recibido: 19 de junio de 2007    <br>   Fecha de aceptado: 18 de abril de 2008</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana">Solicitud de sobretiros: Dra. Carmen Fern&aacute;ndez    Molina. Instituto de Medicina Tropical Pedro Kour&iacute;.    <br>   Autopista Novia del Mediod&iacute;a Km 6 ½, AP 601, Marianao 13. Ciudad de La    Habana.    <br>   Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:carmen@ipk.sld.cu">carmen@ipk.sld.cu</a></font></p>      ]]></body><back>
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